植物生理学实验-2
植物生理学实验 实验报告
植物生理学实验实验报告植物生理学实验实验报告摘要：本实验旨在探究植物的生理反应和适应机制。
通过观察植物在不同环境条件下的生长和生理指标的变化，我们可以更好地理解植物的生理过程和适应策略。
本实验采用了盆栽植物的生长观察和测量方法，结合实验室中的设备和技术手段，得出了一系列有关植物生理学的结论。
1. 引言植物生理学是研究植物生长、发育和适应环境的科学，它涉及植物的生理过程、代谢调节、信号传导等方面。
通过实验研究，我们可以揭示植物在不同环境条件下的生理反应和适应机制，为植物的生产和保护提供理论依据。
2. 材料与方法本实验选取了常见的盆栽植物作为实验对象，包括绿萝、仙人掌和吊兰。
为了模拟不同环境条件，我们设置了三组实验组：阳光组、阴影组和干旱组。
每组实验设置五个重复，以保证实验结果的可靠性。
3. 结果与讨论3.1 生长观察在阳光组中，绿萝的叶片呈现出深绿色，茂密且向阳生长；仙人掌的刺变得更加粗壮，颜色也更加鲜艳；吊兰的叶片展开较大，叶色浅绿。
而在阴影组中，绿萝的叶片变得较为苍白，茂密度下降；仙人掌的刺变得细长，颜色较为暗淡；吊兰的叶片展开较小，叶色深绿。
在干旱组中，绿萝的叶片开始出现萎蔫现象；仙人掌的刺变得干瘪，颜色变得暗淡；吊兰的叶片开始卷曲，叶色变黄。
3.2 生理指标测量我们通过测量叶片的光合速率、蒸腾速率和叶绿素含量等指标，来进一步了解植物在不同环境条件下的生理变化。
在阳光组中，绿萝的光合速率较高，蒸腾速率也较高；仙人掌的光合速率较低，蒸腾速率也较低；吊兰的光合速率和蒸腾速率处于中等水平。
而在阴影组中，绿萝的光合速率和蒸腾速率下降明显；仙人掌的光合速率和蒸腾速率几乎停止；吊兰的光合速率和蒸腾速率也有所下降。
在干旱组中，绿萝的光合速率和蒸腾速率急剧下降；仙人掌的光合速率和蒸腾速率几乎停止；吊兰的光合速率和蒸腾速率也有所下降。
叶绿素含量的测量结果与光合速率和蒸腾速率的变化趋势一致。
4. 结论通过本实验的观察和测量，我们可以得出以下结论：1) 植物在阳光充足的环境下生长更加茂盛，叶片颜色更加鲜艳。
植物生理学题库-02 植物矿质营养作业及答案
第二章植物矿质营养一、名词解释1. 矿质营养: 是指植物对矿质元素的吸收、运输与同化的过程。
2．灰分元素：亦称矿质元素，将干燥植物材料燃烧后，剩余一些不能挥发的物质称为灰分元素。
3．大量元素：在植物体内含量较多，占植物体干重达万分之一以上的元素。
包括钙、镁、硫、氮、磷、钾、碳、氢、氧等9种元素。
4．微量元素：植物体内含量甚微，稍多即会发生毒害的元素包括：铁、锰、硼、锌、铜、钼和氯等7种元素。
5. 单盐毒害和离子拮抗：单盐毒害是指溶液中因只有一种金属离子而对植物之毒害作用的现象；在发生单盐毒害的溶液中加入少量其他金属离子，即能减弱或消除这种单盐毒害，离子间的这种作用称为离子拮抗。
6. 平衡溶液：在含有适当比例的多种盐溶液中，各种离子的毒害作用被消除，植物可以正常生长发育，这种溶液称为平衡溶液。
7. 胞饮作用：物质吸附在质膜上，然后通过膜的内折而转移到细胞内的攫取物质及液体的过程。
8. 诱导酶：又称适应酶，指植物体内本来不含有，但在特定外来物质的诱导下可以生成的酶。
如硝酸还原酶可为NO3-所诱导。
9. 生物固氮：某些微生物把空气中游离氮固定转化为含氮化合物的过程。
二、填空题1．植物生长发育所必需的元素共有种，其中大量元素有种，微量元素有种。
16、9、7 2．植物必需元素的确定是通过法才得以解决的。
水培3．解释离子主动吸收的有关机理的假说有和。
载体学说质子泵学说4．果树的“小叶病”往往是因为缺元素的缘故。
Zn5. 缺氮的生理病症首先表现在叶上，缺钙的生理病症首先表现在叶上。
老、嫩6．根系从土壤吸收矿质元素的方式有两种：和。
通过土壤溶液得到、直接交换得到7．(NH4)2S04属于生理性盐，KN03属于生理性盐、NH4NO3属于生理性盐。
酸、碱、中8．硝酸盐还原成亚硝酸盐的过程由酶催化，亚硝酸盐还原成氨过程是叶绿体中的酶催化的。
硝酸还原酶、亚硝酸还原酶9．影响根部吸收矿物质的条件有、、和。
温度、通气状况、溶液浓度、氢离子浓度、离子间的相互作用10．植物地上部分对矿质元素吸收的主要器官是，营养物质可从运入叶内。
植物生理学实验 2
氧化态DCIP在620 nm有最大吸收。故以 3 号管为空白，测定 1，2 号 管的 OD620 值。加入DCIP后立即测定，此为时间为0的 OD620 起始值。然 后每光照 0.5 min 测定一次，共 5～6 次。记录结果。 5、作业 分别对 1、2 管号的测定值，以△OD620 /min为纵坐标，时间（min）为 横坐标作图，并对两条曲线进行比较分析。
3、叶绿体色素理化性质的鉴定与结果分析（p.54-55）
①叶绿素荧光现象观察：取提取液（2 ml）于一支试管中，比较在入 射光和反射光下颜色的差异，并解释之。
②光对叶绿素的破坏作用：2 支试管盛取提取液少许（0.5 ～1 ml）分 别置于强光和黑暗下，实验结束时，观察其颜色的变化，并解释之。
③铜代反应：取提取液少许（1 ml）于一支试管内，逐滴加入浓 HCl 至提取液变成褐色，然后加入CuAC2（醋酸铜）晶体少许，并于酒精 灯上加热，再观察颜色变化，并解释之。
（2）混合组分的OD值等于各组分在此波长下的OD值之和，则 OD663=ka-663 · Ca+kb-663 · Cb OD645=ka-645 · Ca+kb-645 · Cb 代入已知 k值，经单位换算可得： Ca=12.7 OD663－2.69 OD645 Cb=22.9 OD645－4.68 OD663 （mg/L） （3 ） （4） （1） （2）
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2、材料 菠菜（叶）
3、操作步骤（一组/ 2人）
菠菜叶（去主脉）0.5 g → 加少许CaCO3，石英砂 → 丙酮 2 ml → 研磨成匀浆→ 80 %丙酮 8 ml → 离心（3 000 rpm, 2 min） → 上清用80 % 丙酮定 容至 20 ml →取 1 ml + 80 % 丙酮 4 ml → 比色 （空白：80 %丙酮）
植物生理学实验报告
实验一植物组织水势的测定（小液流法）——2013.3.11 一、目的用小液流法（落滴法）测定植物组织的水势，由水势大致了解植物体内的水分状况二、原理水势表示水分的化学势，象电流由高电位处流向低电位处一样，谁从水势高处流向低处。
植物体细胞之间，组织之间以及植物体和环境间的水分移动方向都由水势插决定。
三、材料与设备植物材料：阔叶树叶片（大叶女贞）实验器具：细滴管一支；试管及指形管各五支（带塞）；100mL烧杯一只；镊子、剪刀各一把；2mL、5mL移液管各一支；标签纸；钻孔器；木板试剂：1ml/L蔗糖溶液；甲烯蓝溶液四、操作步骤1.用短滴管吸取1,mol/L蔗糖液配制一系列浓度递增的蔗糖溶液（0.05,0.1,0.2,0.3,0.4mol/L）各10 ml，加入干燥刻度试管内，各管都加上塞子，充分混合，并编号。
用移液管从浓度各试管中吸取1ml注入第二指形管内，各管均加塞，并贴上标签。
2.用钻孔器（取相同部位）钻取同大小叶片。
每支指形管中放入10片，加塞，放置20~30分钟（期间摇动2~3次），到时间后，加入2~3滴甲烯蓝溶液于指形管中，使其溶液呈蓝色，以区别原来的颜色。
3.用细长滴管从各指形管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入相同编号（原相同浓度）试管的中部，缓慢从细长滴管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液，在无色透明背景上观察小液滴移动的方向。
如果有色液滴向上移动，说明细胞液中水分外流，试验比重比原来小；如果有色液向下移动，则说明细胞从溶液中吸收了水分，溶液变浓，比重变大；如果液滴不动，向外扩散则说明两者的浓度相等或接近，即植物组织的水势等于溶液的渗透势。
记录液滴不动的试管中蔗糖溶液的浓度，若找不到改浓度，取在下降上升转变时量浓度的均值。
五、作业1.记录小液流在试管内的移动方向2.按下列公式计算组长的水势：ψW（细胞水势）=ψs=-CRT式中：ψs——溶液的渗透势，以Mpa为单位R——气体常数，为0.008314Mpa*L/（mol*K）。
植物生理学实验报告
植物生理学实验报告摘要：本实验旨在通过一系列实验来研究植物的生理特性及其对外界环境的响应。
我们使用了单子叶植物蔗糖苦苣菜（Saccharum officinarum L.）作为研究对象，并分别对其光合作用、光反应及水分运输进行了分析。
通过实验结果，我们得出了一些重要结论，对于深入了解植物生理学及其应用具有重要的意义。
引言：植物生理学是研究植物如何在内外环境的调节下进行生长和发育的科学。
通过对植物的生理特性进行研究，我们可以更好地了解植物生活的基本规律。
因此，本实验旨在通过一系列实验来深入研究植物的生理学特性。
材料与方法：1. 实验材料：蔗糖苦苣菜植株、草状质量秤、光谱辐射计、叶绿素荧光仪、离心机等。
2. 实验步骤：- 实验一：光合作用a. 将蔗糖苦苣菜植株放置在恒温暗房内恢复一段时间。
b. 将光谱辐射计放在适当位置，记录光照强度和光质。
c. 将一片健康的叶片置于夹层式草状质量秤上，记录叶片重量。
d. 将叶片暴露在光源下，测量一定时间内的叶片重量。
e. 重复实验步骤c和d，以获得多组数据并进行统计分析。
- 实验二：光反应a. 将蔗糖苦苣菜叶片置于叶绿素荧光仪上，等待测量稳定。
b. 记录初始叶绿素荧光（F_o）值。
c. 迅速打开强光源，记录最大叶绿素荧光（F_m）值。
d. 计算有效光能利用率（Yield）和光化学淬灭（qP）等参数。
- 实验三：水分运输a. 随机选取两片蔗糖苦苣菜叶片，将其离枝并切割横截面。
b. 快速将一片叶片放置在自来水中，随即用另一片叶片封住叶脉。
c. 将样品放置在离心机上，启动离心机以模拟植物体内水分运输。
d. 一段时间后，观察叶片的水分状态，并记录数据。
结果与讨论：1. 实验一的结果显示，蔗糖苦苣菜的光合作用明显受到光照强度和光质的影响。
光照强度越高，光合速率越快。
同时，特定波长范围的光对光合作用的促进作用更为明显。
2. 实验二的结果表明，蔗糖苦苣菜的光反应能力非常高，有效光能利用率和光化学淬灭都表现出良好的性能。
本科课件-植物生理学实验(完整)
放蓝色液流时，不可震动小瓶。
12
根系活力的测定(TTC法)
植物生理生化教研室 曾汉来 2012.03.12
一、实验目的 • 理解植物根系活力的内涵 • 掌握TTC法测根系活力的原理与方法
提供合成所需能量; 合成氨基酸和植物激素 （ABA、CTK、GA等）
H2O 无机盐
硫酸，其他 操作相同。
加入1mol/L硫酸2ml
取出根吸 干水分
与3～4ml乙酸乙酯在研钵 内磨碎
查标准曲线， TTC还原量(mg)
空白试验作参比测 红色提取液移入试管且 485nm下吸光度 用乙酸乙酯定容到10ml
五、实验结果
TTC还原能力 （mg/g(根鲜重)/h）
＝
四氮唑还原量（mg） [根重（g）×时间(h)]
(5)手持测糖仪4 分别测定蔗糖原液浓度（C ）
四、结果计算 自由水的含量(%)=
植物组织中束缚水的含量(%) = 组织总含水量 － 组织中自由水含量
5
注意事项： 1. 清洗植物组织后应注意用
吸水纸擦干其表面的游离水分。 2. 植物组织与外部溶液之间
达到充分平衡。
6
实验01-2 植物组织水势的测定 （小液流法）
根的生长情况和活力水平直接影响地上部的生长 测定根系活力，为植物生长状况、营养供应研究提供依据。
二、验原理
氯化三苯基四氮唑（TTC）的标准氧化电位为80mV的氧化还 原物质，获得H的能力强。溶于水为无色溶液，还原后即生成 红色而不溶于水的三苯基甲腙 （TTF）。
—
生成的TTF比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，可用 分光光度法定量测定。
实验01-1 植物组织中自由水和束缚水 含量的测定
植物生理学实验 实验报告
植物生理学实验实验报告
《植物生理学实验实验报告》
实验目的：
本实验旨在探究植物生长过程中的生理学特性，通过实验观察和数据分析，了
解植物对外界环境的适应能力。
实验材料：
本次实验所需材料包括小麦种子、培养皿、水、土壤、温度计、光照计、湿度
计等。
实验步骤：
1. 将小麦种子放置于培养皿中，分别在不同的条件下进行实验观察。
其中包括
不同的温度、光照和湿度条件。
2. 记录每组实验条件下小麦种子的发芽率、生长速度、叶片颜色等生理学特征。
3. 对实验数据进行统计分析，比较不同条件下植物生长的差异，分析植物对外
界环境的适应能力。
实验结果：
经过实验观察和数据分析，我们发现在不同的温度、光照和湿度条件下，小麦
种子的生长状况存在显著差异。
在适宜的温度和湿度条件下，小麦种子的发芽
率和生长速度较高，叶片颜色也更加翠绿。
而在极端的温度和湿度条件下，小
麦种子的生长受到抑制，甚至出现枯萎现象。
实验结论：
通过本次实验，我们深刻认识到植物对外界环境的适应能力，以及不同环境条
件对植物生长的影响。
这不仅有助于我们更好地了解植物生理学特性，也为农
业生产和植物保护提供了重要的理论依据。
总结：
植物生理学实验是深入了解植物生长过程和生理特性的重要手段，通过实验观察和数据分析，我们可以更加全面地了解植物对外界环境的适应能力，为植物生长和保护提供科学依据。
希望本次实验能够对植物生理学研究和相关领域的发展起到一定的推动作用。
植物生理学实验-实验二 植物组织水势的测定(液体交换法)
实验二植物组织水势的测定(液体交换法)[实验目的]：了解植物组织中水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法和它们的优缺点。
[实验原理]：植物组织的水分可用水势来表示。
植物体细胞之间、组织之间以及植物体与环境之间的水分移动方向都由水势差决定。
将植物组织放在已知水势的一系列溶液中，如果植物组织的水势(Ψcell)小于某一溶液的水势(Ψout),则组织吸水，反之组织吸水。
若两者相等，水分交换保持动态平衡。
组织的吸水或失水会使溶液的浓度、密度、电导率以及植物组织本身的体积与质量发生变化。
根据这些参数的变化情况可确定与植物组织等水势的溶液。
小液流法[器材与试剂]：1.实验仪器：试管，移液管，毛细滴管，直径0.5cm打孔器，镊子2．实验试剂：1.00mol/L蔗糖溶液，甲烯蓝3．实验材料：菠菜叶片[实验步骤]：1.用1.00mol/L蔗糖母液配制一系列不同浓度的蔗糖溶液(0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8mol/L)各10mL，注入8支编好号的试管中，各试管都加上塞子，按编号在试管架上排成一排，作为对照组。
2．另取8支试管对应于对照组各管编号，作为试验组。
然后从对照组的各管中分别取4mL溶液移入相同编号的试验组试管中，并都加上塞子。
3．用打孔器在菠菜叶片中部靠近主脉附近打取叶圆片，随机取样，向试验组的每一支试管中放入相等数目(15-30)的圆叶片，加塞，放置30分钟，期间摇动数次。
到时间后，用大头针沾取少许甲烯蓝粉末加入到每一支试管中，并振荡，此时溶液呈蓝色。
4．用8支毛细滴管从试验组的各管中依次吸取着色的液体少许，然后深入对照组同样浓度溶液的中部缓慢从毛细滴管尖端横向放出一滴蓝色溶液，轻轻取出滴管，观察蓝色溶液的移动方向。
如果蓝色液滴向上移动，说明溶液从叶片细胞中吸出水分而被冲淡，密度比原来小了；如果液滴向下移动，则说明叶片细胞从溶液中吸了水分，溶液密度变大；如果液滴不移动，则说明叶片与溶液的水分交换平衡，即叶片的水势与此种浓度的溶液的渗透势相等。
植物生理学-实验2气孔开度的测定精选全文
2. 实验材料、仪器和试剂
（1） 材料：蚕豆叶 （2） 仪器：显微镜、温箱、培养皿等 （3） 试剂：0.5%KNO3、0.5NaNO3、蒸馏水
3. 实验步骤
➢ 取3 个培养皿编号，分别放入15ml 0.5%KNO3、 0.5%NaNO3、蒸馏水。
• 吸水后，作用于外壁上的 （净）压力通过微纤丝传到 内壁，成为作用于内壁、背 离气孔口方向的拉力
实验目的
1 掌握测定气孔密度和开度的方法； 2 学会分析外界因素对气孔运动的调节； 3 学会利用物镜测微尺标定目镜测微尺及测定视野
直径的方法。※
（Ⅰ）气孔状态的观察
1、 实验原理
1) 印迹法 原理：以有机物质的溶胶涂在植物的表面，胶体风干后就凝成薄膜，这 层膜就印有表皮组织各细胞的边界痕迹。除用来观察气孔状况外，还 可用于观测植物表皮上的细胞、茸毛以及蜜腺、蜜盘、刺鳞片等。 优点: 非破坏性取样，方便快捷； 缺点: 边界痕迹不明显的样品印迹模糊，凹陷气孔难以取到印迹，清晰 薄膜制作有难度。
➢ 撕蚕豆叶下表皮分别放入3 个培养皿。 ➢ 将3 个培养皿放入人工光照条件下，保温1 小时。 ➢ 分别取出叶表皮放在载玻 片上，盖上盖玻片，在显微 镜下观察气孔的开度。
开度
4. 数据记录及处理
不同溶液处理后的气孔开度
方法 气孔开度
KNO3 12345
NaNO3 12345
水 12345
气孔平均开度
定量： 3）气孔密度测定：
A 标定目镜测微尺，并利用物镜测微尺计算 视野的直径
B 镜检，随机取3 个视野，观察气孔数；并算 出单位面积气孔数= a/s = a/πr2
植物生理学实验指导高俊凤主编王建国
实验2 高等植物叶绿体的分离制备与活性鉴定原理叶绿体的颗粒比较大，分离和制备时一般采用差速离心技术，当细胞破碎后，选择500-1500 g 的离心力进行分步离心，即能分理沉淀出叶绿体。
再通过测定叶绿体的光合速率或希尔反应中的放氧情况则可以鉴定其生理活性。
离体后的完整叶绿体与2,6-二氯酚靛酚（2,6-D）由原来的蓝色被还原为无色或粉红色。
可用分光光度计测定反应前后染料吸光度的变化，表示氧气的释放量。
叶绿体中的叶绿素含量可用丙酮提取后，用Anon法计算。
仪器设备1.高速离心机2.匀浆器3.分光光度计4.生物显微镜5.400W白炽灯6.玻璃水槽7.15ml具塞刻度试管8.烧杯、玻璃研钵、移液管等试剂1.85%丙酮溶液。
2.叶绿体制备液，由以下成分组成：山梨糖醇0.33M；EDTA 2mmol/L；MgCl21mmol/L; K2HPO4 0.5mmol/L; Na2P2O7 5m M ;HEPES 50m M ;Ph 7.6(用1M NaOH调节)。
3.叶绿体悬浮液用叶绿体制备液代替。
4.叶绿体反应介质：在叶绿体悬浮液中加入10 m M NaHCO3, pH调节至7.35.0.3 M 2,6-D：称取8.7mg 2,6-D钠盐，加蒸馏水定容至100mL。
6.0.1 MpH7.3 磷酸缓冲液。
以上所有的试剂为分析纯。
材料：菠菜、豌豆和大麦等植物的新鲜叶片方法步骤：1.叶绿体制备1.1.摘取5g 新鲜菠菜叶片，去叶脉后用自来水洗净，再用蒸馏水洗1-2次。
在0-4摄氏度冰箱中放置1h左右预冷（注意避免叶片冻结，放置时间不宜过长）1.2.将预冷后的叶片剪碎，在玻璃研钵中（研钵置于冰浴中）加入少许石英砂和少量叶绿体制备液，快速磨成匀浆，然后再加2倍量的制备液（制备液：材料=2:1，V/W），磨成匀浆后立即用4层纱布过滤（需要带上一次性手套），滤液移至离心管。
1.3.4摄氏度下，500g离心3分钟，将上清液收集在另一离心管，用1500g 离心5分钟，倾去上清液即得叶绿体沉淀。
植物生理学
生命科学学院 龙云
方法： H2O 下表皮 → 0.5 % KNO3→ 光照0.5 h→镜检 0.5 % NaNO3 注意事项：镜检时一定要保证使用的是活体 装片，且处理液不变。 作业：比较3种处理中哪中的气孔开度最大， 为什么？
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小孔扩散效应（示范）
原理：小孔扩散具边缘效应，即：水分通过小孔扩 散的量与小孔的周长成正比，而不与小孔的面积成 正比。 扩散物质：酒精、丙酮等（易挥发液体） 操作：
① 0.1 mol/L 磷酸缓冲液（pH=7.5）5 ml + 蒸馏水 5 ml ② 0.1 mol/L 磷酸缓冲液（pH=7.5）5 ml + 0.2 mol/L KNO3 5 ml
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4、步骤 材料 0.3～0.4 g + 处理液 → 三角瓶 → 抽气 5 min → 30℃，酶促反应 30 min →反应液 1 ml → 30℃，显 色30min →测定OD520
6、作业 计算材料由KNO3 （NO3-）诱导产生的硝酸还原酶的活性 （NO2-：µg · h-1· g-1 FW）
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3、处理 ① 0.1 mol/L 磷酸缓冲液（pH=7.5）5 ml + 蒸馏水 5 ml ② 0.1 mol/L 磷酸缓冲液（pH=7.5）5 ml + 0.2 mol/L KNO3 5 ml 4、实验步骤 材料 0.3～0.4 g + 处理液→三角瓶→抽气 5 min → 30℃，酶促反应 30 min →反应液 1 ml → 30℃，显色 30 min → 测定OD520 5、标准曲线的制作 、标准曲线的制作 NaNO2浓度梯度设为：0、0.5、1、2、3、4、5 µg/mL。 取各标准液 1 ml 于试管中→加磺胺试剂 2 ml ，摇匀→ 加α-萘胺试 剂 2 ml，摇匀→ 30℃，显色 30 min → 测定OD520 6、作业 计算材料由KNO3 （NO3-）诱导产生的硝酸还原酶的活性（NO2-： µg · h-1· g-1 FW） （分子量NO2-/NaNO2=46/69=2/3）
植物生理学实验方法指南
植物生理学实验方法指南实验01 植物组织中自由水和束缚水含量的测定植物组织中的水分以自由水和束缚水两种不同的状态存在。
自由水与束缚水含量的高低与植物的生长及抗性有密切关系。
自由水／束缚水比值高时，植物组织或器官的代谢活动旺盛，生长也较快，抗逆性较弱；反之，则生长较缓慢，但抗性较强。
因此，自由水和束缚水的相对含量可以作为植物组织代谢活动及抗逆性强弱的重要指标。
一、原理:自由水未被细胞原生质胶体颗粒吸附而可以自由移动、蒸发和结冰，也可以作为溶剂。
束缚水则被细胞原生质胶体颗粒吸附而不易移动，因而不易被夺取，也不能作为溶剂。
基于上述特点以及水分依据水势差而移动的原理，将植物组织浸入高浓度（低水势）的糖溶液中一定时间后，自由水可全部扩散到糖液中，组织中便留下束缚水。
自由水扩散到糖液后（相当于增加了溶液中溶剂）便增加了糖液的重量，同时降低了糖液的浓度。
测定此降低了的糖液的浓度，再根据原先已知的高浓度糖液的浓度及重量，可求出浓度降低了的糖液的重量。
用浓度降低了的糖液的重量减去原来高浓度糖液的重量即为植物组织中的自由水的量（即扩散到高浓度糖液中的水的量）。
最后，用同样的植物组织的总含水量减去此自由水的含量即是植物组织中束缚水的含量。
二、材料、仪器设备及试剂（一）材料：小白菜、棉花叶片。
（二）仪器设备：1.阿贝折射仪；2.分析天平或电子顶载天平（感量0.1mg）；3.烘箱；4.干燥器；5.称量瓶；6.打孔器（面积0.5cm2左右）；7.烧杯；8.瓷盘；9.托盘天平（1/100g）；10.量筒。
（三）试剂：重量百分浓度为60％～65％的蔗糖溶液：用托盘天平称取蔗糖60～65g，置烧杯中，加蒸馏水40～35g，使溶液总重量为100g，溶解后备用。
三、实验步骤1.植物组织中总含水量的测定（1）取称量瓶3只（三次重复，下同），依次编号并分别准确称重。
（2）在田间选取生长一致的待测的植物数株，各选部位、长势、叶龄一致的有代表性叶子数片。
植物生理学实验2
五. 实验课内容和具体安排
实验理论。（书面作业：谈谈小液流法和质壁分离法测定植 物组织水势的区别，并就小液流法测定植物组织水势写一份 实验报告）（第1周） 2. 植物组织培养，研究植物细胞脱分化、再分化与激素的关 系。如果自定植物材料，培养基配制要自己提出方案，并有 切实可行的参考文献为依据，并且自己准备实验材料。从愈 伤组织诱导到最后组培苗生根移栽要有详细记录、照片为重 要依据，最后（约2个月）提供完整实验报告（第2、3周） 3. 乙烯对植物生长效应的观察（三重反应，用拟南芥和绿豆） （第3周） 4. 叶绿体色素的提取、分离和理化性质分析；（要求自己采集 实验材料） （第5周） 5. 现代农业设施参观（孙桥），考察后从植物生理的某个角度 写一观后考察报告。（时间待定） 6. 探究性实验 1.
三. 植物生理学研究的基本思路
1. 根据研究的目标确定研究内容，根据内 容选择研究方法； 2. 多数生物学问题的研究包括：形态，生 理生化水平变化，内源调节物变化，基 因表达和蛋白质调控水平变化； 3. 要注意研究内容（或所选择的研究指 标）和研究目标的相关性
四. 实验课的开展形式植物生理学
1. 以书面作业，自学方式理解和掌握实验原理； 2. 教师讲解，学生动手操作 3. 以学生为主体，以组为单位选择研究目标，设计 研究方案，在教师指导下完成
3. 光合作用
光合作用是植物生理学中的核心知识，从知识结构上包括两部分， 一是光合作用的机理，二是环境条件和光合作用效率的关系，前者 是后者的基础。反应光合作用效率大小的常用指标包括： ①光合器官的结构和光合色素：叶绿体的超微结构、片层结构往往 反应其功能（C3, C4超微结构的不同）； 色素是光能吸收、传导和 转化的重要物质基础，色素的含量、比例变化往往和光合效率、环 境条件有着一定的对应关系，往往是分析的重要指标； ②光合作用强度：底物CO2的消耗或产物O2的增加，或光合碳同化 产物的变化多种方法，其中红外线CO2测定是相对较准确的方法； ③反映光合磷酸化能力的 叶绿体偶联因子腺苷三磷酸酶(ATPase)活 力； ④碳同化过程中的酶活力等。
植物生理学实验 植物组织水势的测定(小液流法)
一、原
理
当植物细胞或组织放在溶液中时，如果植物的水 势小于溶液的渗透势（溶质势），则组织吸水而 使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流 而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的 渗透势相等，则二者水分保持动态平衡，外部溶 液浓度不变，此溶液的渗透势即等于所测植物的 水势。可以利用溶液的浓度不同其比重也不同的 原理来测定试验前后溶液浓度的变化。然后根据 公式计算其渗透势。
二、仪 器 药 品
试管 毛细吸管（尖端弯成90度）
移液管
单面刀片 镊子 次甲基蓝 打孔器 常春藤叶
三、实 验 步 骤
1．首先配制一定浓度蔗糖溶液 （0.1,0.2,0.3,0.4,0.5,0.6,0.7,0.8M）各10ml， 注入试管中，各管都加上塞子，并编号。按编号 顺序排成一列，放在试管架上，作为对照组。 2．另取8支试管(或青霉素瓶），编好号，按顺序放 在试管架上，作为试验组。然后由对照组中之各 试管中分别取溶液4ml移入相同编号的试验组试管 中，再将各试管都加上塞子。
3．用打孔器把常春藤叶打成大小相等的小圆块， 向试验组的每一试管中各加相等数目的叶片， 塞好塞子，放置30分钟，在这段时间内摇动数 次，到时间后，向每一试管中各加次甲基蓝粉 末少许，并振荡，使溶液着色均匀。
4．用毛细吸管从试验组的各试管中依次吸取着 色的液体少许，然后伸入对照组的相同编号试 管的液体的中部，缓慢放出一滴蓝色试验溶液， 并观察小液流移动的方向，并记录之。
5．计算 记录小液流不动的试管中蔗糖溶液的浓度，按 ψπ=－RTiC计算水势值。 C＝等渗浓度（mol/L） R＝气体常数（0.008314MPa/L/mol/K） T＝绝对温度 i＝解离系数（蔗糖＝1，CaCl2＝2.60）
《植物生理学实验》
植物生理学实验引言植物生理学实验是研究植物生长和发育过程中的生理过程的一种科学方法。
通过对植物进行不同条件下的实验观察和分析，可以了解植物对外界环境的适应能力、生长调控机制等重要信息。
本文将介绍几个常见的植物生理学实验，包括光合作用实验、呼吸作用实验和植物生长调控实验。
实验一：光合作用实验实验目的研究光合作用在植物生理过程中的影响。
实验材料和仪器•适用于实验的植物样本•光照箱•光合作用测定仪器（如光合速率测定仪）实验步骤1.准备植物样本，并将其放置于光照箱中。
2.分别设置不同光照强度（如低光、中光、高光）的条件，并记录光照强度。
3.使用光合速率测定仪器，测定每个条件下的光合速率。
4.分析结果并得出结论。
实验结果和讨论根据实验结果，可以得出光照强度对光合作用速率的影响。
光照强度越高，光合作用速率越快，因为光合作用需要光能作为能量来源。
这个实验表明了光合作用对植物生长和发育的重要性，同时也可以用于评估植物对不同光照条件下的适应能力。
实验二：呼吸作用实验实验目的研究植物呼吸作用的过程和机制。
实验材料和仪器•成活的植物样本•呼吸速率测定仪器实验步骤1.准备植物样本并放置于呼吸速率测定仪器中。
2.记录植物在不同条件下的呼吸速率，如不同温度、不同光照等。
3.分析结果并得出结论。
实验结果和讨论通过呼吸速率的测定，可以了解到不同条件下植物呼吸的强度和速率。
温度对植物呼吸速率的影响比较显著，一般情况下，随着温度的升高，植物呼吸速率也会提高。
这个实验可以帮助我们理解植物的能量代谢过程，为植物生长和发育的调控机制提供重要信息。
实验三：植物生长调控实验实验目的研究不同条件对植物生长和发育的调控作用。
实验材料和仪器•可控环境设备（如生长箱）•不同生长因子的处理液（如植物激素）实验步骤1.准备植物样本，并将其种植在生长箱中。
2.设置不同生长条件，如温度、湿度、光照等，并记录相关参数。
3.分别加入不同处理液，如植物激素，观察植物生长和发育的变化。
植物生理学综合实验 (2)
植物生理学综合实验烯效唑（S3307）浸种对小麦幼苗生长的影响摘要：分别用0，10，20，40㎎/L植物生长延缓剂烯效唑(S3307)浸种对小麦幼苗生长的影响。
结果表明，在S3307处理后，麦苗的生长速度减缓，麦苗粗壮，根冠比提高；幼苗叶片叶绿素含量增加，根系活力增强，呼吸强度下降；抗逆性较好。
并且且发现20㎎/L浓度烯效唑处理效果最好。
关键词：烯效唑；S3307；浸种；小麦；生理特性。
前言：S3307(烯效唑或优康唑)是日本住友公司80年代研制成功的一种高效植物生长延缓剂，它被植物体吸收以后后，可以阻碍植物细胞内源赤霉素的生物合成，从而延缓植株的营养生长。
植物生长延缓剂S3307在许多作物上应用都表现出较好的壮苗及增产效果，作为四川农业大学的课堂教学实验，本实验主要研究了烯效唑(S3307)对小麦种子成苗的影响。
一材料与方法1.1供试材料：渝麦7号1.1.2实验试剂：烯效唑（S3307）1.2试验方法1.2.1把烯效唑(S3307)分别配成0㎎/L,10㎎/L,20㎎/L,40㎎/L溶液,清水(C K)为对照。
在25℃条件下对已消毒（0.1%的H g C l2浸种10m i n）的小麦种子浸种24h后，用清水冲洗3次，然后在恒温箱内催芽三天，温度保持25-30℃。
选取发芽一致的种子插于装有自来水的培养杯中，每杯30粒，一组两杯，然后放在在栽培室里培养1.2.2小麦幼苗形态指标的测定。
分别在1～2叶期随机选取10株幼苗，测定小麦平均株高、根长、根量、地上及地下干重，并计算根冠比值10050第一季度第四季度二结果与分析2.1小麦幼苗根系活力的测定（T T C法）表12.2小麦幼苗叶片叶绿素含量的测定（分光光度法）表22.3小麦幼苗叶片丙二醛(M D A)含量的测定（分光光度法）表32.4小麦幼苗叶脯氨酸好量的测定（分光光度法）表4三结论与讨论3.1S3307可降低株高，促进小麦幼苗根系发育，提高根冠比。
植物生理学实验讲义2
植物生理学实验讲义2实验一植物组织渗透势的测定（质壁分离法）实验目的：观察植物组织在不同浓度溶液中细胞质壁分离的产生过程及其用于测定植物组织渗透势的方法。
道德原则当植物组织细胞内的汁液与其周围的某种溶液处于渗透平衡状态，植物细胞内的压力势为零时，细胞汁液的渗透势就等于该溶液的渗透势。
该溶液的浓度称为等渗浓度。
当用一系列梯度浓度溶液观察细胞壁分离现象时，细胞的等渗浓度将介于仅引起初始细胞壁分离的浓度和不能引起细胞壁分离的浓度之间。
可以通过代入公式来计算渗流势。
器材与试剂：1.显微镜、载玻片和盖玻片、镊子和刀片2．100ml浓度为1mol/l蔗糖溶液:用蒸馏水配成0.1、0.15、0.20、0.25、0.30、0.35、0.40、0.45、0.50mol/l的蔗糖溶液各50ml。
称取34.23g蔗糖，用蒸馏水配制100ml，浓度为1mol/L（母液）。
然后配制以下浓度：0.50mol/l:25ml母液+25ml水45mol/l:22.5ml母液+27.5ml水40mol/l:20.0ml母液+30.0ml水35mol/l:17.5ml母液+32.5ml水0.5ml 30mol/l:15.0ml母液+35.0ml水25mol/l:12.5ml母液+37.5ml水20mol/l:10.0ml母液+40.0ml水15mol/l：母液：7.5ml+水42.5ml 0.5ml 10mol/L:5.0ml母液+45.0ml水3。
实验材料洋葱鳞茎实验步骤：1.含有色素的植物组织（叶）通常从着色洋葱鳞片和紫色鸭皮的外表皮中选择跖草、苔藓、红甘蓝或黑藻、丝状藻等水生植物，也可用蚕豆、玉米、小麦等作物叶的表皮。
一撕取下表皮，迅速分别投入各种浓度的蔗糖溶液中，使其完全浸入，5―10分钟。
2.从0.5mol/l开始，依次取出表皮薄片，用相同的溶液放在载玻片上，盖上盖玻片片，于低倍显微镜下观察，如果所有细胞都产生质壁分离的现象，则取低浓度溶液中的制片作同样观察，并记录质壁分离的相对程度。
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课程名称：植物生理学及实验实验类型：探索、综合或验证
实验项目名称：植物组织水势测定
学生姓名：专业：农业资源与环境学号：
同组学生姓名：
指导老师：
实验地点：实验日期：2019年 9 月25日
一、实验目的和要求
1. 巩固植物组织水势概念和植物组织水势的组成
2. 掌握小液流法测定植物组织水势原理
3. 了解其他水势测定方法原理。
二、实验内容和原理
1.小液流法测定新鲜白萝卜的组织水势。
植物细胞是一个渗透系统。
当组织水势低于溶液渗透势，组织吸水，溶液变浓，比重增加，小液流下沉。
当组织水势高于溶液渗透势，组织失水，溶液变稀，比重下降，小液流上浮。
当组织水势等于溶液渗透势，组织与溶液达到水分进出动态平衡，溶液浓度和比重不变，小液流不动。
2.压力室法测定海桐叶片组织水势。
植物叶片通过蒸腾作用产生蒸腾拉力。
导管中的水分由于内聚力的作用而形成连续的水柱。
因此，对于蒸腾着的植物，其导管中的水柱由于蒸腾拉力的作用，使水分连贯地向上运输。
当叶片或枝条被切断时，木质部中的液流由于张力解除迅速缩回
木质部。
将叶片装入压力室钢筒，切口朝外，逐渐加压，直到导管中
的液流恰好在切口处显露时，所施加的压力正好抵偿了完整植株导管中的原始负压。
三、主要仪器设备
小液流法：白萝卜、打孔器、10ml离心管（10个）、小刀、镊子、注射器、1mol/L蔗糖溶液、甲基橙
压力室法：植物水势仪
四、操作方法与实验步骤
小液流法：
1、用1mol/l的蔗糖溶液配制0.05、0.10、0.20、0.30、0.40M一系列不同浓度的蔗糖溶液(10mL)，充分摇匀。
2、分别取4ml不同浓度的溶液到另一组相应的试管中。
每管加入厚度约为1mm的萝卜圆片，加塞放置30-40min。
期间晃动（3-4次）。
3、用针蘸取少量甲基橙放入每支试管，混匀。
4、用注射器取少许黄色溶液，伸入对应浓度的蔗糖溶液中部，缓慢挤出一滴小液滴，观察小液滴移动方向并记录。
Ψw(Mpa) = -iCRT = -0.0083×(273+t o C) ×浓度
压力室法：
1、根据植物材料选取枝条（或叶片）型的压力室盖
2、将试样装入压力室盖的孔（或槽）中夹紧，压入压力室并顺时针旋转紧固。
打开钢瓶阀门，使控制阀朝向加压，缓慢打开测定阀
3、仔细观察伸出压力室盖的植物样品，一发现木质部转湿润液体溢出，立即关闭测定阀，记录压力表读数。
组织Ψw(Mpa) = -0.1×压力室压力表读数
五、实验数据记录和处理
根据公式计算得到萝卜组织液浓度
Ψw(Mpa) = -iCRT = -0.0083×(273+t℃) ×浓度
= -0.0083×(273+20) ×0.1
= -0.2432Mpa
萝卜组织液浓度约为0.2mol/L，水势约为-0.2432Mpa
压力室法测定结果：
室温20℃，测出出水压力读数为14，水势 -1.4Mpa
六、实验结果与分析
1、小液流法测定植物组织水势时，应保证所用试管干燥，为了防
止外来的水稀释了蔗糖溶液。