第三章 石蜡制片实例

合集下载
相关主题
  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

实验日程表(固定-包埋)
日期(日/月 )
第一天 /
时间
上午任何时间 下午2:00-5:00
步骤 70%乙醇(4h)-85%乙醇(3h)-95%伊红乙醇(含伊红1%)(过夜)
第二天 / 上午8:00-11:30 无水乙醇(1.5h)-无水乙醇(2.5h)-1/5氯仿,12/5氯仿,3/5氯仿,每次吸出
五、子房纵切片制片法
目的:观察子房和胚珠的结构、大孢子发生、雌配子体发育、受 精过程、胚和胚乳发育。
材料:蚕豆子房(油菜子房、拟南芥子房也可以用此方法制片)。 染色方法:铁矶苏木精切片染色,1%伊红乙醇复染。
丝兰子房横切,
局部放大,示1个心皮中的2个胚珠;
丝兰胚珠的结构(摄影:冯燕妮)
第五天 / 第六天 /
上午8:00-11:30 下午2:00-5:00
蒸馏水过一遍,15%乙醇(3h)-30%乙醇(2h)-50%乙醇(2h)-70%乙醇(过夜)
上午8:00-11:30 下午12:30-4:00
85%乙醇(1h)-95%乙醇(1h)-无水乙醇(1h)-无水乙醇(1h)-1/5氯仿,2/5氛仿,3/5氯仿, 4/5氯仿,每次吸出一格溶液,加人一格纯氯仿(间隔0.5h)-吸出瓶内全部氯仿,加入新氯
制片效果:核紫红色,其余浅红色。
制片步骤
1.取样:12月至翌春2月采油菜苗剥除叶片,只留下极小的茎端,切取茎端约0.5〜0.6 cm长的部位,即 为被小的幼叶所包裹的花芽。 2.固定:FAA液中固定24 h,可保存其中备用。 3.整染:经70%、50%乙醇各2〜4 h,转入爱氏苏木精稀释液(爱氏苏木精原液1份+50%乙醇及乙酸各 半的混合液1份)中整染2〜3 d。 4.水洗、返蓝:蒸馏水浸洗,勤换水至无浮色,再转入自来水,换1〜2次水,至样品由紫色变为深蓝 色为止,共需时约1 d。 5.脱水及复染:经30%乙醇、50%乙醇、70%乙醇、85%乙醇,每级3〜4 h。含0.5%〜%伊红的95%乙 醇中4〜6 h (可过夜),无水乙醇2次,每次2 h。 6.透明、加蜡:5级氯仿透明,每级2〜4 h,纯氯仿2次,每次2 h,加碎蜡,然后置36℃温箱中1 d。 7.透蜡、包埋:经50%蜡、75%蜡各3 h,再经纯蜡A、B、C三杯各 1 h,包埋。 8.修蜡块、切片:纵切花芽,切片厚度8 μm。 9.展片、粘片、烘干:镜检选取花芽中轴的蜡片进行粘片,每张载玻片上粘1〜2 个蜡片。展片后将材 料平放在摊片盘上,放置36 ℃温箱中烘干。 10.脱蜡、透明:二甲苯脱蜡、透明各一次。 11.封片、烘片:加拿大树胶封片。封片后将材料平放在摊片盘上,36℃温箱内烤数天(或自然干燥)。
隔3h)
4/5氯仿,吸出一格溶液,加入一格纯氯仿(2h)-吸出 瓶内全部氯仿,再加入新氯仿(重复,间隔2h)-加碎
蜡(间隔1h)于新氯仿,置36℃温箱中(2-4d)
50%蜡置40〜42℃温箱中(3h)-75%蜡置48〜50℃温箱 中(3h)-纯蜡A杯/B杯/C杯置56〜58℃温箱中(间隔
1h)-纯蜡包埋
制片效果:细胞核紫蓝色,其余部分淡红色。
小麦子房纵切面 A.示孢原细胞; B.大孢子母细胞时期; C.大孢子四分体时期; D.四分体的3个大孢子退化,1 个继续发育 ;E.单核胚囊(大孢子); F.二核胚囊; G.四核胚囊; H.示2个助细胞; I.示3个反足细胞; J.示 2个极核 ; K.成熟胚囊示1个卵细胞; L.成熟胚囊示反足细胞群(摄影:冯燕妮)
三、叶横切片制片法
用于一般根、茎、叶、花药、子房等切片 目的:观察双子叶植物叶的结构。 材料:棉花叶片(南瓜茎、菊芋茎也可以用此方法。 染色方法:苯胺番红、苯胺固绿双重染色。
制片效果:厚壁组织、导管、细胞核红色,其余部分为绿色。
制片步骤
1.取样:取完全成熟棉叶,用单面刀片沿主脉两侧各5〜6 mm处切开,将中央有叶脉的部分再横切成5 mm的小段。 2.固定:FAA液中固定24 h,并保存于固定液中。 3.脱水:70%/85%乙醇(各3~4h),含0.5%〜1%伊红的95%乙醇 3〜4 h (可过夜),无水乙醇2次(各1〜2 h)。 4.透明、加蜡:5级氯仿透明(每级3〜4 h),纯氯仿2次(每次2 h),加碎蜡,置36 ℃温箱1〜2 d。 5.透蜡、包埋:50%蜡、75%蜡各3 h,纯蜡A、B、C三杯,每杯lh, 包埋时将叶片直立。 6.修块、切片:修蜡块时使叶片直立于台木上,并用单面刀片切除先端石蜡, 浸水软化后放在切片机上作叶的横 切面,切片厚度12 μm。 7.展片、粘片、烘干:切片先镜检,每张载玻片放2个蜡片,展片后平放在摊片盘上,36 ℃温箱中烘干。 8.脱蜡、透明:二甲苯脱蜡、透明各1次。 9.染色(番红一固绿双重染色):在已脱蜡的材料上滴注无水乙醇、95%乙醇、 85%乙醇、70%乙醇、50%乙醇、 30%乙醇、蒸馏水各约4〜5 s,苯胺番红染色5〜10 min,用蒸馏水洗去浮色。 10.脱水、透明:各级乙醇脱水(30%、50%、70%、85%、95%乙醇),苯胺固绿复染30〜40 s,再经95%乙醇, 无水乙醇、1/2无水乙醇+1/2 二甲苯、二甲苯(2次)各约4〜5s,最后置二甲苯缸中。 11.封片、烘片:加拿大树胶封片。封片后将材料平放在摊片盘上,36 ℃温箱内烤数天(或自然干燥)。 12.镜检。
南瓜茎导管、筛管纵切
南瓜茎导管、筛管横切 南瓜茎导管、筛管横切局部放大
制片效果:厚壁组织、导管、细胞核红色,其余部分绿色。
制片步骤
1.取样:锋利刀片将南瓜茎切成小段,横切:0.8cm,纵切:lcm,选髓腔较小样品,便于切片。 2.固定:FAA固定24 h,抽气,并保存于固定液中。 3.软化:经70%乙醇、50%乙醇2〜4 h降至蒸馏水,15%氢氟酸中软化10〜15 d。 4.水洗:自来水流水冲洗24 h,蒸馏水浸洗6 h。 5.整染:苯胺番红中染色48 h。 6.脱水:经30%-50%-70%-85%-95%乙醇,每级3〜4 h, 无水乙醇2次,每次1.5〜3 h。 7.透明、加蜡:5级氯仿透明(每级3〜4h),纯氯仿2次(每次2h),加碎蜡2次,置36℃温箱2〜4 d。 8.透蜡、包埋:50%/75%蜡各3 h,纯蜡A/B/C(每杯lh)。包埋时:横切样品竖放,纵切样品卧放。 9.修蜡块、切片:横切片厚度15 μm,纵切片厚度20μm,切前浸水软化。 10.展片、粘片、烘干:每张载玻片粘1个蜡片,展片后将材料平放在摊片盘,36℃温箱中烘干。 11.脱蜡、透明:二甲苯脱蜡、透明各1次。 12.复染、脱水及透明:滴注无水乙醇、95%乙醇各4〜5 s,苯胺固绿约0.5〜1 min,再经95%乙 醇、1/2无水乙醇+1/2二甲苯、二甲苯(2次)各约4〜5s,最后置于二甲苯缸中。 13.封片、烘片:加拿大树胶封片后平放在摊片盘上,36℃温箱烤数天(自然干燥)。 14.镜检。
第三章 石蜡切片实例
常规石蜡切片步骤
•取材(新鲜、特定时期) •固定(FAA、卡诺固定,70%酒精长期保存) •脱水(不同梯度酒精) •透明(二甲苯、氯仿) •浸蜡(石蜡熔点不同,温箱浸蜡温度不同,二甲苯过渡) •包埋(包埋盒(快、准、一次到位)) •切片(修块、切片、捞片、展片、贴片,42~50℃水浴,37℃过夜) •脱蜡(脱蜡彻底,时间宁长勿短) •染色(每种2min, 大约15-20min)(60℃烤箱15min,脱色效果较好) •脱水(伊红染液,二甲苯等每种3-5min,) •透明 (二甲苯) •封片(加拿大树胶、中性树胶,胶量适宜) •显微观察
实验日程表(固定-包埋)
日期(日/月) 第一天 /
时间
第十一天 / 第十二天 / 第十五天 /
下午2:00-5:00 下午5:00
第十六天 / 第十七天 /
上午8:00-11:30 下午2:00-5:00 上午8:00-11:30 下午2:00-5:00
第十八天 / 上午8:00-11:30 下午2:00-4:30
下午2:00-5:00
一格溶液,加入一格纯氯仿,间隔3h,3/5氯仿过夜
第三天
/
上午8:00-11:30 4/5氯仿,吸出一格,加入一格纯氯仿(2h)-纯氯仿,吸出瓶内全部氯仿,再 下午2:00-30 4:30 加入新氯仿(重复,间隔2h)-加碎蜡(间隔1h)于新氯仿,置36℃温箱中
第五天 /
上午8:30-11:30 下午2:00-4:30
50%蜡置40〜42℃温箱中(3h)-75%蜡置48〜50℃温箱中(3h)-纯蜡A杯/B杯 /C杯置56〜58℃温箱中(间隔1h)-纯蜡包埋
植物双受精示意图
四、花芽纵切片制片法
目的:观察花芽分化过程中各期的形态特征。 材料:油菜花芽(桃花芽、拟南芥花芽也可以用此方法制片)。 染色方法:爱氏苏木精整体染色,伊红复染。
上午8:00-11:30 下午2:00-4:30 第二十天 /
步骤 样品取材、固定,转至蒸馏水,入15%氢氟酸软化
10-15 d
流水冲洗除酸液
蒸馏水换数次(0.5h)、苯胺番红整染
30%乙醇 50%乙醇(2.5h)-70%乙醇(2.5h)-85%乙醇(2.5h)-95%
乙醇 无水乙醇(1.5h)-无水乙醇(1.5h)-1/5氯仿,2/5氯仿 ,3/5氯仿(每次吸出一格溶液,加人一格纯氯仿,间
仿(重复,间隔30min)-加碎蜡(重复,间隔30min)置36℃温箱中
第七天
Leabharlann Baidu
/
上午8:00-11: 00
50%蜡置40〜42℃温箱(1h)-75%蜡置48〜50℃温箱中(0.5h)-纯蜡A杯/B杯/C杯置56〜58℃ 温箱中(间隔0.5h),纯蜡包埋
二、茎的纵、横切片制片法
目的:观察茎的结构、各种组织的特征及维管束的组成。 材料:南瓜茎、禾本科植物茎。 染色方法:苯胺番红整染—苯胺固绿复染。
一、根尖纵切片制片法
目的:观察根尖分区细胞的特征及细胞有丝分裂过程。 材料:洋葱根尖。 染色方法:爱氏苏木精整染。
制片效果:核仁与染色质为深蓝色,其余浅蓝色。
制片步骤
1.取样:9〜10月中旬培养/取样,将洋葱鱗茎搁置盛满自来水的玻璃瓶口上,基部接触水面,室温24 h即可生根, 根长至1. 5〜2 cm时切取根尖约0. 8cm固定。每天取根后换水,直至洋葱鳞茎不再发新根。 2.固定:铬酸乙酸液固定24 h。 3.保存:经固定的根尖换入蒸馏水浸洗约24 h,勤换水,以去尽酸液。后经15%乙醇、30%乙醇、50%乙醇、70% 乙醇脱水,每级2〜4 h,并保存于70%乙醇中备用。 4. 整染:50%乙醇2〜4 h,入爱氏苏木精稀释液(原液1份+50%乙醇与乙酸等量混合液1份)整染2〜3 d。 5. 水洗、返蓝:蒸馏水浸洗,勤换水至无浮色,再换入自来水1〜2 次,至根尖由紫色变为深蓝色,约24 h。 6.镜检及分色:取一根尖置载玻片上用刀片切碎后,加1滴水,覆以盖玻片,进行镜检,要求染色体、核仁清晰。 如果发现染色过度,如细胞核为一团深蓝色,则需以 1%盐酸或45%乙酸分色至适度,再用水洗净。 7.脱水:经15%乙醇、30%乙醇、50%乙醇、70%乙醇,每级2〜4 h。 8.透明、加碎蜡:5级氯仿透明,每级l h,最后纯氯仿2次,每次30 min。加碎蜡,所加石蜡量约占透明剂的一半, 然后放入36 ℃温箱中1 d。 9.透蜡、包埋:经50%蜡、75%蜡各30 min,纯蜡A、B、C三杯,每杯30 min,包埋。 10.修蜡块、切片:根尖纵切,切片厚度为8 μm。 11.展片、粘片、烘干:经镜检后选取根尖中轴部位、生长点及根冠分界清晰的蜡片,如果目的是观察有丝分裂 过程,则需注意所切蜡带有无分裂相,每张载玻片上放2 个蜡片,展片后平放摊片盘上,36 ℃温箱中烘干。 12.脱蜡、透明:二甲苯脱蜡、透明各一次。 13.封片、烘片:加拿大树胶封片。封片后平放摊片盘上,36 ℃温箱内烤数天(或自然干燥)。 14.镜检。
实验日程表(固定-包埋)
日期(日/月)
时间
步骤
第一天 / 上午8:00-11:30
50%乙醇 爱氏苏木精稀释液(原液1份加50%乙醇及乙酸等量混合液1份)
第四天 / 上午8:00 下午2:00
蒸馏水浸洗,勤换水,至水中无浮色,镜检。 如需分色则以45%乙酸分色至适度,自来水浸洗,换水数次至根尖变蓝。
相关文档
最新文档