分子生物学实验
分子生物学实验
分子生物学实验分子生物学是一门在微观层面研究生物大分子结构与功能的科学,而分子生物学实验则是探索生命奥秘的重要手段。
通过一系列精确设计的实验操作,我们能够揭示基因的表达、遗传信息的传递以及生物体内各种分子的相互作用。
在分子生物学实验中,有几个关键的技术和方法常常被运用。
其中之一就是核酸提取技术。
核酸,包括 DNA 和 RNA,是携带遗传信息的重要分子。
要对其进行深入研究,首先就得有效地从细胞或组织中提取出来。
这可不是一件简单的事情,需要小心翼翼地操作,以避免核酸的降解和污染。
比如说,提取 DNA 时,通常会先将细胞破碎,使细胞核内的 DNA 释放出来。
然后,通过加入各种试剂,去除蛋白质、脂质等杂质,最后得到纯净的 DNA 溶液。
这个过程中,每一步所使用的试剂浓度、温度和反应时间都需要严格控制。
RNA 的提取则更为棘手,因为 RNA 很容易被环境中的 RNA 酶降解。
所以,实验过程中要使用无 RNA 酶的试剂和器材,操作也要尽可能迅速。
另一个重要的技术是 PCR 扩增,也就是聚合酶链式反应。
这就像是一个神奇的魔法,能让我们把微量的 DNA 片段大量复制。
想象一下,我们手里只有一点点 DNA 样本,但是通过 PCR 技术,就能够在短时间内获得足够多的相同 DNA 片段,用于后续的分析和研究。
PCR 反应需要特定的引物,这些引物就像是导航仪,告诉聚合酶从哪里开始合成新的 DNA 链。
反应还需要精确控制温度的循环变化,包括高温变性、低温退火和适温延伸这几个步骤。
在分子生物学实验中,还有一项常用的技术是电泳。
这就好比是一场分子的赛跑比赛。
我们把 DNA 或蛋白质样品放入凝胶中,然后通电,由于分子的大小和电荷不同,它们在电场中的移动速度也不一样。
这样,我们就能根据它们移动的距离和位置来分析样品的特性。
比如说,DNA 电泳可以帮助我们判断 DNA 片段的大小,看看有没有我们想要的那个片段。
蛋白质电泳则能让我们了解蛋白质的分子量、纯度等信息。
分子生物学实验方法
分子生物学实验方法1.DNA提取与纯化DNA提取是分子生物学实验中最常用的技术之一,用于从不同种类样本中提取纯化DNA。
常见的提取样本包括细菌、动植物组织以及人体样本。
提取过程通常包括细胞破碎、蛋白质除去、DNA溶解和纯化等步骤。
常用的提取方法包括酚/氯仿提取法、CTAB提取法和商业化提取试剂盒。
2.PCR(聚合酶链反应)PCR是一种高效扩增DNA的技术,可将一小段目标DNA序列扩增成数百万个拷贝。
PCR反应通常包括DNA模板、两个引物、dNTPs(四种核苷酸单元)和DNA聚合酶等成分。
反应的核心步骤是多个高温循环,包括变性(解开DNA的双链)、退火(引物结合到目标序列)和延伸(DNA聚合酶合成新链)等步骤。
PCR广泛应用于分子克隆、基因表达研究、疾病诊断等领域。
3.转染和转化转染和转化是将外源DNA导入宿主细胞中的技术。
转染是指将DNA导入非真核细胞(如细菌)或真核无性细胞中,常用的方法包括电穿孔法、化学法和病毒载体介导等。
转化是指将外源DNA导入真核多细胞直至整个个体范围内,常见的方法包括冷冻转化、冲击转化和基因枪法等。
4.蛋白质表达和纯化蛋白质表达和纯化是研究蛋白质结构和功能的关键步骤。
常见的表达系统包括细菌系统(如大肠杆菌)、酵母系统(如酵母菌)和哺乳动物细胞系统(如CHO细胞)。
表达后,蛋白质需要经过多个步骤进行富集和纯化,如离心、柱层析和亲和层析等。
以上仅是分子生物学实验方法中的一部分,随着技术的发展,分子生物学实验方法也在不断更新和扩展。
这些实验方法在疾病诊断、基因工程、生物学研究等领域发挥了重要作用。
分子生物学实验报告
分子生物学实验报告分子生物学实验报告引言分子生物学是一门研究生物大分子结构、功能和相互作用的学科,通过实验手段揭示生命现象的分子机理。
本实验旨在探究DNA复制过程中的关键步骤,以及RNA转录和蛋白质翻译的基本原理。
实验一:DNA复制DNA复制是细胞分裂过程中必不可少的步骤,它保证了遗传信息的传递和维持。
本实验通过模拟DNA复制过程,研究DNA复制酶的作用和复制的准确性。
材料:- DNA模板- DNA聚合酶- 引物- dNTPs- 缓冲液方法:1. 准备反应体系,包括DNA模板、DNA聚合酶、引物、dNTPs和缓冲液。
2. 在适当的温度下,将反应体系放入PCR仪中进行反应。
3. 取样并进行凝胶电泳分析,观察DNA复制产物。
结果:通过凝胶电泳分析,我们观察到DNA复制产物的出现。
这表明DNA聚合酶能够在模板DNA上合成新的DNA链,并且复制的过程较为准确。
讨论:DNA复制的准确性是生命传递遗传信息的基础。
DNA聚合酶具有校正功能,能够识别和修复错误的碱基配对。
这种精确性保证了基因组的稳定性和可靠性。
实验二:RNA转录RNA转录是将DNA信息转录成RNA的过程,它是基因表达的第一步。
本实验旨在研究RNA转录的机制和调控。
材料:- DNA模板- RNA聚合酶- 引物- NTPs- 缓冲液方法:1. 准备反应体系,包括DNA模板、RNA聚合酶、引物、NTPs和缓冲液。
2. 在适当的温度下,将反应体系放入PCR仪中进行反应。
3. 取样并进行凝胶电泳分析,观察转录产物。
结果:凝胶电泳分析显示出RNA转录产物的出现。
这表明RNA聚合酶能够在DNA模板上合成RNA链。
讨论:RNA转录是基因表达的第一步,它决定了细胞内特定基因的表达水平。
RNA聚合酶通过与DNA模板的互作用,选择性地合成特定的RNA链。
这种选择性转录是基因调控的关键。
实验三:蛋白质翻译蛋白质翻译是将RNA信息翻译成蛋白质的过程,它是生物体内蛋白质合成的关键步骤。
分子生物学实验方法与步骤【可编辑全文】
可编辑修改精选全文完整版分子生物学实验方法与步骤表达蛋白的SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分析一、原理细菌体中含有大量蛋白质,具有不同的电荷和分子量。
强阴离子去污剂SDS与某一还原剂并用,通过加热使蛋白质解离,大量的SDS 结合蛋白质,使其带相同密度的负电荷,在聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)上,不同蛋白质的迁移率仅取决于分子量。
采用考马斯亮兰快速染色,可及时观察电泳分离效果。
因而根据预计表达蛋白的分子量,可筛选阳性表达的重组体。
二、试剂准备1、30%储备胶溶液:丙烯酰胺(Acr)29.0g,亚甲双丙烯酰胺(Bis)1.0g,混匀后加ddH2O,37O C溶解,定容至100ml, 棕色瓶存于室温。
2、1.5M Tris-HCl(pH 8.0:Tris 18.17g加ddH2O溶解, 浓盐酸调pH至8.0,定容至100ml。
3、1M Tris-HCl(pH 6.8:Tris 12.11 g加ddH2O溶解, 浓盐酸调pH至6.8,定容至100ml。
4、10% SDS:电泳级SDS 10.0 g加ddH2O 68℃助溶,浓盐酸调至pH 7.2,定容至100ml。
5、10电泳缓冲液(pH 8.3:Tris 3.02 g,甘氨酸18.8 g,10% SDS 10ml加ddH2O溶解, 定容至100ml。
6、10%过硫酸铵(AP): 1gAP加ddH2O至10ml。
7、2SDS电泳上样缓冲液:1M Tris-HCl (pH 6.82.5ml,-巯基乙醇1.0ml,SDS 0.6 g,甘油2.0ml,0.1%溴酚兰1.0ml,ddH2O 3.5ml。
8、考马斯亮兰染色液:考马斯亮兰0.25 g,甲醇225ml,冰醋酸 46ml,ddH2O 225ml。
9、脱色液:甲醇、冰醋酸、ddH2O以3∶1∶6配制而成。
二、操作步骤采用垂直式电泳槽装置(一)聚丙烯酰胺凝胶的配制1、分离胶(10%的配制:ddH2O 4.0ml30%储备胶 3.3ml1.5M Tris-HCl2.5ml10% SDS 0.1ml10% AP 0.1ml取1ml上述混合液,加TEMED(N,N,N’,N’-四甲基乙二胺10μl 封底,余加TEMED4μl ,混匀后灌入玻璃板间,以水封顶,注意使液面平。
常见分子生物学实验方法
常见分子生物学实验方法1.DNA/RNA提取DNA和RNA提取是进行分子生物学实验的第一步。
常见的提取方法包括酚/氯仿法、离心法、基于载体的提取等。
这些方法可以从细胞、组织或血液中提取出高质量的DNA或RNA用于后续实验。
2.PCR扩增聚合酶链反应(PCR)是一种常用的体外DNA扩增技术,用于复制特定DNA片段。
通过PCR,可以从少量的DNA样本中扩增目标序列,并与特异性引物一起进行扩增。
PCR具有高度特异性和灵敏度,广泛应用于基因克隆、基因检测和定量分析等领域。
3.基因克隆基因克隆是指将特定目标基因从一个有机体中分离并插入到另一个有机体中。
常见的基因克隆方法包括限制性内切酶消化、连接、转化、筛选等。
基因克隆可以用于生成重组DNA、构建表达载体、设计并构建突变基因、重组蛋白质等。
4.蛋白质表达和纯化蛋白质表达和纯化是研究蛋白质功能和结构的重要步骤。
常见的表达系统包括细菌、酵母、昆虫细胞、哺乳动物细胞等。
表达后,通过亲和纯化、离子交换层析、凝胶过滤等手段纯化所得蛋白质。
5.基因敲除/敲入基因敲除或敲入是通过改变目标基因的DNA序列来研究基因功能的方法。
基因敲除可以通过CRISPR-Cas9系统、RNA干扰、转座酶介导的基因敲入等方法实现。
6.DNA测序DNA测序是分析DNA序列的方法。
常见的测序技术包括Sanger测序、下一代测序(包括Illumina、Ion Torrent、PacBio等)等。
DNA测序可以应用于基因组学、转录组学、评估其中一区域的突变等领域。
7.西方印迹西方印迹是一种蛋白质检测方法,用于检测和定量特定蛋白质的存在和表达水平。
通过电泳将蛋白质分离,然后转移到膜上,并使用特异性抗体与目标蛋白质结合,最后通过酶标记二抗或荧光二抗的检测。
8.荧光定量PCR荧光定量PCR(qPCR)是一种用于定量分析DNA或RNA浓度的方法。
通过特异性引物、探针与目标序列的结合,实时检测并记录PCR扩增产物的信号,进而测定起始目标序列的数量。
分子生物学实验
分子生物学实验分子生物学实验是一种研究生物体分子结构、功能和交互作用的实验方法。
本文将介绍分子生物学实验的一般步骤和常用技术,并以DNA提取和PCR扩增为例,详细描述了实验的具体步骤和操作。
分子生物学实验一般包括以下几个步骤:实验前的准备、生物样品的采集和处理、核酸提取、酶切和电泳、PCR扩增、蛋白质表达等。
实验前的准备包括实验设计、试剂的准备和设备的调试。
根据实验目的和问题,确定实验设计和具体操作步骤,选择适当的试剂和设备,并对实验条件进行优化。
生物样品的采集和处理是分子生物学实验的基础。
根据研究对象不同,可以采集细胞、组织、血液等生物样品,并进行预处理,如细胞培养、组织切片、离心等。
核酸提取是从生物样品中分离出核酸的步骤。
核酸提取可以使用化学方法或基于特定原理的商业试剂盒。
其中,常用的方法有酚/氯仿法、骨架蛋白法、磁珠法等。
酶切和电泳是分子生物学实验中常用的技术手段。
酶切是通过限制性内切酶对DNA进行特异性切割,生成特定大小的DNA片段。
电泳是利用电场对DNA片段进行分离和检测,可通过琼脂糖凝胶电泳或聚丙烯酰胺凝胶电泳进行。
PCR扩增是一种重要的分子生物学实验技术。
PCR通过不断循环的变性、退火和延伸过程,在体外扩增DNA序列。
PCR 需要DNA模板、引物、核苷酸和聚合酶等关键试剂。
PCR扩增过程包括初始变性、循环扩增和最终延伸。
扩增产物可通过琼脂糖凝胶电泳进行分析和检测。
蛋白质表达是研究蛋白质功能和结构的重要实验手段。
常用的蛋白质表达系统包括原核表达系统和真核表达系统。
表达载体经过构建和转染后,利用细胞的表达机制使蛋白质在体内合成。
总之,分子生物学实验是研究生物体分子结构和功能的重要方法。
通过实验前的准备、生物样品的采集和处理、核酸提取、酶切和电泳、PCR扩增、蛋白质表达等步骤,可以获得关于生物体分子结构和功能的有价值的信息。
分子生物学实验
实验一.质粒提取与琼脂糖电泳一、目的掌握质粒的提取方法及原理;琼脂糖凝胶电泳及观察评判方法。
二、原理1.质粒是携带外源基因进入细菌中扩增或表达的主要载体,它在基因操作中具有重要作用。
质粒的分离与提取是最常用、最基本的实验技术。
在pH 12.0-12.6碱性环境中,细菌的线性大分子量染色体DNA变性分开,而共价闭环的质粒DNA 虽然变性但仍处于拓扑缠绕状态。
将pH 调至中性并有高盐存在及低温的条件下,大部分染色体DNA、大分子量的RNA和蛋白质在去污剂SDS的作用下形成沉淀,而质粒DNA仍然为可溶状态。
硅基质树脂在高盐状态下,特异性吸附DNA,而在低盐状态下,DNA被洗脱下来。
2.带电荷的物质在电场中的趋向运动称为电泳。
电泳的种类多,应用非常广泛,它已成为分子生物学技术中分离生物大分子的重要手段。
琼脂糖凝胶电泳由于其操作简单、快速、灵敏等优点,已成为分离和鉴定核酸的常用方法。
在pH值为8.0~8.3时,核酸分子碱基几乎不解离,磷酸全部解离,核酸分子带负电,在电泳时向正极移动。
采用适当浓度的凝胶介质作为电泳支持物,在分子筛的作用下,使分子大小和构象不同的核酸分子泳动率出现较大的差异,从而达到分离核酸片段检测其大小的目的。
核酸分子中嵌入荧光染料(如EB)后,在紫外灯下可观察到核酸片段所在的位置。
三、实验材料、仪器、试剂(1)菌种:大肠杆菌DH5α(2)分子生物学试剂10mg/ml溴化乙锭(EB):按10mg/ml浓度将EB溶于去离子水中,剧烈搅拌,完全溶解后,室温下避光保存。
50×TAE电泳缓冲液:24.2g Tris5.71g 冰乙酸10ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0)加去离子水至100ml,室温保存备用,工作液为1×TAE。
6×上样缓冲液:0.25% 溴酚蓝40%(W/V)蔗糖水溶液1% 琼脂糖凝胶:称取1g琼脂糖溶于100ml 1×TAE电泳缓冲液中,溶化后加入5μl 10mg/ml EB贮存液,使凝胶中EB终浓度达到0.5mg/ml。
分子生物学实验
分子生物学实验分子生物学实验是研究生命分子结构和功能的基础。
分子生物学的研究对象是生命体内的DNA、RNA、蛋白质等生物分子,通过实验可深入了解生命分子的结构及其功能,为治疗疾病等产生重要的科研意义。
本文将着重介绍PCR扩增、基因克隆、蛋白质表达和酶联免疫吸附实验等分子生物学实验。
PCR扩增PCR扩增是分子生物学领域中使用最广泛的实验技术之一。
PCR扩增技术是通过不断的复制,使DNA分子增多。
PCR主要操作步骤包括:DNA样品提取、模板DNA扩增、DNA回收纯化和定量检测等。
PCR扩增实验分为两部分:第一部分是制备PCR反应混合物,包括模板DNA、引物(Primer)、反应缓冲液、酶、脱离剂、种子液等。
制备反应混合物的过程中,需要将所有的试剂按照一定比例混合后,将混合液均匀吸入PCR管内。
第二部分是PCR反应实验本身,包括控制PCR反应温度变化、确保每个PCR 反应的时间和温度一致、等等。
PCR反应时间通常在2-6小时之间,取决于所扩增的DNA片段的长度和针对不同目标所使用的引物。
基因克隆基因克隆是利用重组DNA技术将外源DNA和载体DNA组装重组成新的DNA分子,然后通过转化等方式将新的DNA分子转移到感受态宿主细胞中,使得新的DNA分子被细胞所接受并复制,从而达到克隆目的的一种实验方法。
基因克隆实验的主要操作步骤包括:选取适当的载体,将所需要的外源DNA和载体DNA连接起来组成重组DNA分子,将重组DNA分子转化至感受态宿主细胞中,最后从发酵液中提取所需的目标DNA分子。
基因克隆技术在分子生物学实验研究中起到了重要的作用,使得我们能够制备大量目标分子用于进一步的研究。
蛋白质表达蛋白质表达是一种将蛋白质合成出来的实验技术。
蛋白质表达技术的主要目的是利用外源基因的扩增技术,将目标蛋白表达并纯化出来,从而进一步深入了解蛋白质的结构及其功能。
蛋白质表达实验的主要操作步骤是:蛋白质的基因落库、基因克隆到重组基因载体中、启动子、子纯化表达及活性鉴定等。
分子生物学实验3篇
分子生物学实验第一篇:PCR技术在分子生物学中的应用PCR(聚合酶链式反应)是分子生物学中一项广泛应用的技术,被用于DNA的扩增和检测。
PCR技术已经成为了分子生物学和生物医学研究的基础技术之一。
PCR技术被广泛的应用于遗传学、人类学、医学研究、植物学和动物学研究等各领域。
PCR技术的基本原理是:通过提取DNA,将DNA特异性引物与模板DNA相结合,利用热稳定DNA聚合酶和四种脱氧核苷酸为反应体系提供能量,使其在一定条件下循环扩增目标DNA片段。
通过PCR扩增后的DNA片段可以进行进一步的分析和检测。
PCR技术的扩增具有明显的优势,可同时扩增不同长度的DNA片段,扩增时间短,扩增的精度和重复性高,且所需的样本量小。
PCR技术在分子诊断、基因组学和分子系统学等领域的应用不断扩展和深化。
随着PCR技术的不断发展,PCR在分子生物学研究中的应用越来越广泛,成为分子生物学研究的重要工具。
第二篇:RNA干扰技术在分子生物学中的应用RNA干扰(RNAi)是分子生物学中一种重要的现象,其中小分子RNA片段通过RNAi途径参与靶基因的沉默和调节。
RNAi技术是人类基因功能研究中最具前途的一种技术之一。
RNA干扰技术的基本原理是通过利用RNAi分子的特异性配对功能,引导RNAi分子与靶基因mRNA相结合,导致mRNA的降解和翻译的抑制,实现对基因表达的调控。
RNA干扰技术在分子生物学研究中有广泛的应用,如:功能基因的筛选、基因表达调节、基因功能验证等。
RNA干扰技术具有多种优点,如高效性、特异性强、节约时间、资源和成本等方面的优势,逐步成为生命科学研究中的重要工具。
在研究过程中,RNA干扰技术常用于寻找分子病理学中新的治疗靶点,鉴定靶点基因和靶点蛋白,为新药物的开发和临床治疗提供了重要的理论和实验基础。
第三篇:基因克隆技术在分子生物学中的应用基因克隆技术始于20世纪70年代,是指将DNA分子导入到载体中,使其在细胞中进行表达的过程。
分子生物学基本实验操作
分子生物学基本实验操作1.DNA提取:DNA提取是分子生物学中的基础实验操作,目的是从生物组织或细胞中提取出纯净的DNA样品。
常用的DNA提取方法包括酚氯仿法、盐法和商业化提取试剂盒。
该实验操作通常包括细胞破碎、蛋白质去除、DNA沉淀和洗涤等步骤。
2.PCR:聚合酶链反应(PCR)是分子生物学中常用的方法,用于扩增特定的DNA片段。
PCR通过加入DNA模板、引物、碱基和聚合酶,利用循环反应的方式在体外合成特定序列的DNA。
PCR通常包括三个步骤:变性、退火和延伸。
3.凝胶电泳:凝胶电泳是一种分离和分析DNA、RNA和蛋白质的常用方法。
通过将待测样品加载到凝胶中,然后通过电场使DNA、RNA或蛋白质在凝胶中迁移,可以根据迁移速度和分子大小进行分离和定性。
4. Western blot:Western blot是一种用于检测特定蛋白质的方法。
该方法通过将待测样品进行电泳分离,然后将蛋白质转移到膜上,并用特异性抗体与目标蛋白质结合,最后再用染色剂或化学发光来检测目标蛋白质的存在。
5.DNA克隆:DNA克隆是将DNA片段插入到载体DNA中的过程,用于研究和重组DNA。
常用的DNA克隆方法包括限制性内切酶切割、连接酶反应和转化。
通过将DNA片段插入载体中并转化至宿主细胞,可以大量复制目标DNA并随后进行研究。
6.基因测序:基因测序是确定DNA或RNA序列的方法,用于分析基因组、转录组和序列变异。
常用的基因测序方法包括链终止法(Sanger测序)和下一代测序(NGS)。
通过测序,可以获取DNA或RNA的序列信息,并进一步研究基因功能和变异。
7.基因表达分析:基因表达分析通过检测RNA水平来研究基因的表达情况。
常用的方法包括实时定量PCR、Northern blot和转录组测序。
这些方法可以定性和定量地研究基因的表达水平,并帮助解析基因调控和信号通路。
这些是分子生物学的一些基本实验操作。
当然,随着技术和方法的不断发展,分子生物学领域中还有许多其他的实验操作,用于研究生物分子结构和功能。
分子生物学实验
分子生物学实验在分子生物学领域,实验是非常重要的手段,可以帮助科学家们深入研究细胞和遗传信息的奥秘。
本文将介绍分子生物学实验的一般步骤和常见技术,为读者提供一个全面的了解。
实验准备在进行任何分子生物学实验之前,实验室必须准备好所有必需的试剂和器材。
这些试剂包括DNA酶、引物、缓冲液等,而器材则包括PCR仪、电泳仪、热循环仪等。
此外,实验室还需要保持清洁、有序,以确保实验结果的准确性和可重复性。
核酸提取在进行分子生物学实验时,研究人员通常需要提取目标细胞或组织中的核酸,如DNA和RNA。
这个步骤非常关键,因为核酸是遗传信息的载体,对后续实验至关重要。
PCR扩增PCR(聚合酶链反应)是一种常用的技术,可以在体外复制DNA片段。
通过PCR扩增,科学家们可以快速获得大量特定DNA序列,为后续实验提供充足的材料。
凝胶电泳凝胶电泳是一种常用的分离和分析DNA片段的技术。
通过在凝胶电泳仪中施加电场,可以使DNA片段根据大小在凝胶中移动,从而实现分离和检测。
蛋白表达和纯化在分子生物学研究中,研究人员经常需要表达和纯化特定蛋白。
通过基因工程技术,科学家们可以将目标基因插入表达载体中,在宿主细胞中大量表达目标蛋白,并通过纯化步骤获得纯净的蛋白样品。
分子克隆分子克隆是将某一DNA片段插入到另一DNA分子中的过程,常用于构建重组DNA、重组蛋白等。
通过分子克隆技术,科学家们可以研究和改变生物体内的基因组成。
实验结果分析一旦实验完成,科学家们需要对实验结果进行分析和解读。
这通常涉及到数据处理、图表绘制、统计学分析等工作,以确保实验结论的准确性和可靠性。
结论与展望分子生物学实验在揭示生命的奥秘和解决重大疾病方面起着至关重要的作用。
随着技术的不断发展和创新,我们相信分子生物学实验将在未来展现出更广阔的发展前景,为人类健康和生活质量带来更多的希望。
希望本文能够帮助读者更好地了解分子生物学实验的基本原理和方法,激发更多人对分子生物学这一神奇领域的兴趣和热爱。
分子生物学实验室常见实验
分子生物学实验室常见实验1.基因克隆实验:基因克隆实验是一种常见的分子生物学实验,其目的是将感兴趣的DNA序列克隆到重组DNA分子中。
这个实验通常包括DNA的摘取、PCR扩增、限制性内切酶的消化、连接载体、转化大肠杆菌等步骤。
2. 蛋白质表达实验:蛋白质表达实验是一种常见的分子生物学实验,其目的是将感兴趣的蛋白质表达到大肠杆菌等宿主细胞中。
这个实验通常包括将感兴趣的基因克隆到表达载体中,表达载体转化至宿主细胞,利用诱导剂等物质诱导表达蛋白质等步骤。
3. PCR实验:PCR实验是一种基于酶催化反应的分子生物学实验。
该实验通过模板DNA、引物、酶及核苷酸等原料,经一系列温度变化,扩增目标DNA片段。
该实验通常用于基因克隆、DNA测序、点突变检测等领域。
4. DNA测序实验:DNA测序实验是一种常见的分子生物学实验,其目的是确定DNA序列。
这个实验通常包括PCR扩增、DNA纯化、测序反应、数据分析等步骤。
5. RNA干扰实验:RNA干扰实验是一种常见的分子生物学实验,其目的是利用RNA干扰技术抑制特定基因的表达。
这个实验通常包括制备siRNA、合成siRNA、转染细胞等步骤。
6. 蛋白质纯化实验:蛋白质纯化实验是一种常见的分子生物学实验,其目的是将感兴趣的蛋白质从混合物中提纯出来。
这个实验通常包括细胞裂解、纯化、检测等步骤。
7. 荧光检测实验:荧光检测实验是一种常见的分子生物学实验,其目的是利用荧光分子标记分子或细胞等,观察其分布、表达及功能等。
这个实验通常包括荧光染色、荧光显微镜观察等步骤。
8. 基因编辑实验:基因编辑实验是一种新兴的分子生物学实验,其目的是通过基因编辑技术,直接改变DNA序列,从而实现对基因的修饰。
这个实验通常包括CRISPR/Cas9等基因编辑技术的设计、实现、检测等步骤。
分子生物学实验室常见实验
分子生物学实验室常见实验
1.基因克隆:通过PCR扩增目标基因或外源基因,将其克隆到载体中,如质粒、病毒等,使其能够在宿主细胞中表达。
2. PCR:聚合酶链式反应,是一种可在体外扩增DNA序列的技术,适用于从少量DNA样品中扩增特定区域的DNA片段。
3. 蛋白质表达与纯化:通过基因克隆,将目标蛋白质表达于宿主细胞中,并通过蛋白质纯化技术将其纯化出来。
4. DNA测序:通过测序仪对DNA序列进行测定,可以用于基因组测序、基因突变分析等。
5. RNA干扰:通过RNA干扰技术,将RNA分子导入到细胞中,靶向特定的基因,从而抑制基因表达。
6. 细胞培养:将细胞放入培养皿中,提供合适的营养物,使其在体外生长并繁殖,可用于体外实验研究。
以上是分子生物学实验室常见实验,这些实验技术广泛应用于生命科学领域的基础研究和应用研究,为疾病诊断和治疗等方面提供了重要的科学支持。
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分子生物学实验报告全解(有图有真相)
分子生物学实验报告慕蓝有志班梦想学院目录实验一细菌的培养 (2)实验二质粒DNA的提取 (4)实验三琼脂糖凝胶电泳法检测DNA (7)实验四质粒DNA酶切及琼脂糖电泳分析鉴定 (9)实验五聚合酶链反应(PCR)技术体外扩增DNA (11)实验六植物基因组DNA提取、酶切及电泳分析 (14)实验七RNA分离与纯化 (17)实验八RT-PCR扩增目的基因cDNA (19)实验九质粒载体和外源DNA的连接反应 (21)实验十感受态细胞的制备及转化 (23)实验十一克隆的筛选和快速鉴定 (25)实验十二地高辛标记的Southern杂交 (27)实验十三阿拉伯糖诱导绿色荧光蛋白的表达 (31)思考题 (32)分子实验心得总结 (33)实验一细菌的培养一、目的学习细菌的培养方法及培养基的配置。
二、原理在基因工程实验和分子生物学实验中,细菌是不可缺少的实验材料。
质粒的保存、增殖和转化;基因文库的建立等都离不开细菌。
特别是常用的大肠杆菌。
大肠杆菌是含有长约3000kb的环状染色体的棒状细胞。
它能在仅含碳水化合物和提供氮、磷和微量元素的无机盐的培养基上快速生长。
当大肠杆菌在培养基中培养时,其开始裂殖前,先进入一个滞后期。
然后进入对数生长期,以20~30min复制一代的速度增殖。
最后,当培养基中的营养成分和氧耗尽或当培养基中废物的含量达到抑制细菌的快速生长的浓度时,菌体密度就达到一个比较恒定的值,这一时期叫做细菌生长的饱和期。
此时菌体密度可达到1×109~2×109/mL。
培养基可以是固体的培养基,也可以是液体培养基。
实验室中最常用的是LB培养基。
三、实验材料、试剂与主要仪器(一)实验材料大肠杆菌(二)试剂1. 胰蛋白胨2. 酵母提取物3. 氯化钠4. 1mol/L NaOH5. 琼脂粉6. 抗生素(氨苄青霉素、卡那霉素等)(三)仪器1. 培养皿2. 带帽试管3. 涂布器4. 灭菌锅5. 无菌操作台(含酒精灯、接种环、灭菌牙签等)6. 恒温摇床四、操作步骤(一)LB培养基的配制配制每升培养基,应在950m1去离子水中加入:细菌培养用胰蛋白胨10g细菌培养用酵母提取物5gNaCl 10g摇动容器直至溶质完全溶解,用1mol/L NaOH调节pH位至7.0。
分子生物学实验
分子生物学实验分子生物学实验I. 实验概述分子生物学是生物学的一个重要分支,主要研究生物分子的结构、功能及其在生命过程中的作用。
在现代生命科学研究中,分子生物学技术的应用越来越广泛,包括基因克隆、基因表达、蛋白质结构、信号转导等多个方面。
本实验将介绍几种基本的分子生物学实验操作,包括DNA的提取、PCR扩增、电泳检测和蛋白质的SDS-PAGE分析,旨在提高学生对分子生物学基础知识和实验技能的掌握。
II. 实验材料及设备1. 细菌培养基、磷酸盐缓冲液、EDTA、裂解液等试剂;2. 离心管、洗涤管、PCR管、电泳槽等设备;3. 离心机、PCR仪、电泳仪等设备。
III. 实验步骤1. DNA的提取(1) 收集细胞收集需要提取DNA的细胞,如细菌、白细胞等。
将细胞转移到1.5mL离心管中。
(2) 细胞裂解加入200μl裂解液,轻轻摇晃离心管,使细胞充分裂解。
离心管可置于65°C水浴中处理10分钟,使DNA完全裂解。
(3) DNA提取加入500μl磷酸盐缓冲液和10μl EDTA,混匀后离心5分钟。
取上清液转移至新的离心管中,加入等体积的异丙醇,并轻轻倒置,使DNA在异丙醇界面上结团。
放置室温下10分钟,使用洗涤管将DNA结团转移到另一离心管中。
加入70%乙醇溶液洗涤2-3次,最后去除乙醇,用无菌水溶解DNA。
2. PCR扩增(1) 设计引物、制备PCR反应液按照所需扩增的DNA序列设计引物,制备PCR反应液,包括所需模板DNA、引物、Taq聚合酶、MgCl2等。
(2) PCR条件将PCR反应管放置PCR仪中,经过若干个循环,达到最终PCR产物的扩增。
PCR条件通常应选择对应引物特异性、Tm温度适中,并根据Taq聚合酶的活性和反应体系的最适条件优化所得。
常用的PCR条件为95℃预变性5min,94℃变性30s,Tm温度退火30s,72℃延伸1min,循环30-35次,最后72℃加延伸10min。
分子生物学实验
分子生物学实验引言分子生物学实验是研究生物体分子层面的结构和功能的实验方法。
通过在分子水平上研究细胞中的基因表达、蛋白质合成和代谢等过程,可以全面了解生物体的生理机制和疾病发生的分子基础。
本文将介绍常见的分子生物学实验方法和技术。
1. DNA提取实验DNA提取是分子生物学实验中的基础步骤,它的目的是从细胞中分离出DNA。
常用的DNA提取方法有酚/氯仿法、CTAB法和商业试剂盒法等。
以下是酚/氯仿法的步骤:1.收集样本组织或细胞:可以使用动植物组织、细菌、真菌等样本。
2.细胞破碎:使用细胞破碎缓冲液将样本破碎,释放出内部的细胞和胞浆。
3.蛋白质沉淀:加入酚/氯仿缓冲液,使蛋白质从细胞裂解物中沉淀。
4.DNA沉淀:将上一步的上清液加入异丙醇中沉淀DNA。
5.洗涤和溶解:用乙醇洗涤并净化DNA沉淀,最后用缓冲液溶解DNA。
2. PCR实验PCR(聚合酶链反应)是分子生物学中的一种重要技术,用于扩增特定的DNA片段。
PCR实验一般包括以下步骤:1.DNA模板准备:提取好的DNA作为PCR反应的模板。
2.反应组分配置:配置PCR反应体系,包括引物、脱氧核苷酸(dNTPs)、聚合酶和缓冲液等。
3.反应条件设定:设置PCR反应的温度和时间参数,包括变性、退火和延伸步骤。
4.PCR扩增反应:将PCR反应体系放入热循环仪中进行循环扩增。
5.PCR产物分析:使用凝胶电泳等方法对PCR产物进行分析和检测。
3. 克隆实验克隆实验是将DNA片段插入到载体DNA中,并通过细胞转化和筛选得到含有目标DNA的克隆。
以下是常见的克隆实验步骤:1.DNA片段选择:根据需要选择目标DNA片段,并通过酶切或PCR方法制备。
2.载体准备:选择适当的载体,如质粒或噬菌体,并进行酶切或PCR扩增。
3.构建重组体:将目标DNA片段和载体DNA连接,形成重组DNA。
4.细胞转化:将重组DNA引入宿主细胞中。
5.筛选克隆:通过筛选方法(如抗生素筛选)获得含有目标DNA的克隆。
分子生物学实验方法
分子生物学实验方法
分子生物学实验方法是研究生物分子结构、功能和相互作用的技术手段。
以下是常用的分子生物学实验方法:
1. PCR(聚合酶链式反应):PCR是一种通过体外DNA扩增技术来复制DNA 片段的方法,可以快速、高效地扩增特定DNA序列。
2. 基因克隆:通过将目标DNA片段插入到载体DNA中,形成重组DNA分子,再将重组DNA导入到宿主细胞中,从而得到大量目标DNA的方法。
3. 电泳:电泳是一种利用电场将DNA、RNA或蛋白质分子按照大小和电荷进行分离的方法。
常用的电泳包括琼脂糖凝胶电泳和聚丙烯酰胺凝胶电泳。
4. 蛋白质表达与纯化:通过在宿主细胞中表达目标蛋白质的基因,然后利用蛋白质的特异性结构、功能或抗体亲和纯化技术,从宿主细胞中纯化目标蛋白质。
5. 免疫沉淀:利用抗体与特定蛋白质结合来纯化对应的蛋白质复合物的方法。
6. 荧光显微镜:利用荧光探针标记目标生物分子,通过荧光显微镜观察和分析分子在细胞或组织中的位置和数量。
7. Northern blot和Western blot:用于检测和分析RNA和蛋白质的方法。
Northern blot可以检测特定的RNA序列,Western blot可以检测特定蛋白质。
8. 基因敲除和基因转染:通过基因敲除技术可以去除或禁止特定基因的表达,而基因转染技术可以将外源基因导入细胞中,从而改变细胞的表型。
9. 蛋白质相互作用分析:利用蛋白质相互作用分析技术,如酵母双杂交、质谱分析等,研究蛋白质之间的相互作用关系。
这些方法是分子生物学研究中常用的实验技术,可以用于从分子水平解析生物学问题,探索生物的结构和功能。
分子生物学实验
分子生物学实验分子生物学实验是一种基于分子水平研究生物学现象和分子机制的实验方法。
它通过对DNA、RNA、蛋白质等生物分子的研究,揭示生物体内发生的各种生物学现象及其分子机制,从而推动生物学的发展和进步。
分子生物学实验的方法多种多样,常用的实验手段包括DNA提取、PCR、Western blot、RT-PCR等。
其中,DNA提取是一项常用的实验技术,用于从生物样品中提取出DNA分子。
这一技术可以应用于许多领域,如基因检测、疾病诊断和亲子鉴定等。
PCR是一种用于扩增DNA片段的技术,可以快速获得大量特定的DNA序列。
Western blot则是用于检测蛋白质的一种实验方法,可以用来研究蛋白质的表达水平和功能。
RT-PCR是一种将RNA逆转录为DNA的技术,可以用于检测和测定RNA的含量及其转录水平。
在分子生物学实验中,实验者需要进行一系列实验操作,如样品处理、核酸或蛋白质分离、电泳、转染等。
在样品处理过程中,实验者需要注意样品的选择、保存和预处理,确保实验结果的准确性。
核酸或蛋白质分离是将混合物中的目标分子从其他成分中分离出来的过程。
电泳则是一种利用电场将分子按照大小和电荷进行分离的方法,常用于检测DNA、RNA和蛋白质。
转染是将外源DNA或RNA导入到细胞中的过程,通常用于基因表达、基因沉默以及细胞信号传导等研究中。
分子生物学实验还需要合理选择实验方法和实验设计,制定实验方案和步骤,并采集实验数据进行分析和解释。
通过科学的实验设计和精确的实验操作,可以获得可靠的实验结果,为生物学研究提供有力的支持。
总之,分子生物学实验是一种重要的实验方法,它为我们深入了解生物体内分子机制提供了有力的手段。
通过不断开展分子生物学实验,我们可以揭示更多生物学现象的分子机制,推动生物学领域的发展和进步。
分子生物学实验
分子生物学实验引言分子生物学是研究生物分子结构与功能的一门学科,通过实验手段来研究分子水平上的生物现象。
分子生物学实验是该学科的基础,通过实验可以得到有关分子生物学的重要数据和结论。
本文将介绍分子生物学实验的基本原理、实验方法和常用技术。
实验目的分子生物学实验的目的是为了研究和探究生物分子结构、功能和相互作用,揭示生物体内基因表达和调控的机制。
具体实验目的可以根据研究方向和课题的需求来确定。
实验材料和仪器•DNA/RNA样品:可通过提取方法从细胞或组织中获得。
•酶:常见的酶有限制性核酸内切酶、DNA/RNA聚合酶等。
•缓冲液和试剂:用于调节反应条件和提供必要的物质。
•电泳仪:用于分离和检测DNA/RNA片段。
•PCR仪:用于DNA扩增反应。
•逆转录仪:用于合成cDNA。
•光镜和荧光显微镜:用于观察和记录实验结果。
基本原理DNA/RNA提取DNA/RNA提取是分子生物学实验的基础步骤,通过此步骤可以从细胞或组织中提取出DNA或RNA,并用于后续反应。
提取方法主要包括细胞破碎、蛋白酶处理、有机溶剂抽提和纯化等。
聚合酶链式反应(PCR)PCR是一种在体外合成DNA的方法,能快速扩增DNA序列。
PCR反应需要DNA模板、引物、聚合酶和核苷酸等组分,通过多个循环的温度变化,重复进行DNA的核酸链分离、引物结合和DNA合成等步骤,达到扩增目标序列的目的。
凝胶电泳凝胶电泳是一种常用的分离DNA/RNA片段的方法。
将DNA/RNA样品加入琼脂糖凝胶孔隙中,加电使其迁移,根据片段大小不同,进行分离和检测。
凝胶电泳主要分为琼脂糖凝胶电泳和聚丙烯酰胺凝胶电泳等。
聚合酶链反应-限制性片段长度多态性(PCR-RFLP)PCR-RFLP是一种通过PCR扩增后的DNA样品再经由限制性核酸内切酶的切割,根据不同的酶切位点产生不同的DNA片段组合,从而区分不同基因型的方法。
PCR-RFLP常用于基因型鉴定和基因突变检测等。
基因克隆基因克隆是研究分子生物学的重要方法之一,通过将DNA片段插入到载体DNA中,形成重组DNA,再将其转化到宿主细胞中,实现大量复制和表达目的基因。
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时间节点:3月12日
序号 实验内容 并行实验 1(上) pET28a+eGFP连接产物转化BL21(DE3) 2 pFastBacHTA质粒的抽提 及酶切和纯化 3(下) 构建重组质粒pFastBacHTA-eGFP:载体和克隆片段的连接 4 pFastBacHTA+eGFP连接产物转化TG1 5 13日下午挑斑接种培养
4.1目的基因DNA与载体的连接(一组一份)
连接反应:
试剂 pET-28a/EcoRI +HindIII PCR/EcoRI +HindIII 连接酶Solution I 总体积 • 室温,连接过夜。
用量 2ul 8ul 10ul 20ul
4.2 BL21(DE3)感受态细胞的制备(1人一份)
1. 实验目的: • 掌握常规的化学法制备大肠杆菌感受态细胞的方法
时间节点:3月19日
序号 实验内容 并行实验 1(上午) SDS-PAGE分析重组蛋白的表达 2(下午) Western Blot鉴定重组蛋白 3 20日蓝白斑筛选重组克隆:挑斑接种培养
时间节点:3月25日
1. 重组Bacmid的抽提与鉴定
时间节点:3月26日
1. Bacmid转染sf9细胞,制备重组病毒 2. 慢病毒载体转染293T细胞制备慢病毒 3. 3日后,即3月29日通过荧光显微镜观察细胞状态及发荧光情况。
五、BL21(DE3)感受态细胞的转化(3.12)
1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. BL21(DE3)培养物 LB培养基 100 mM CaCl2 Kan平板 Kan 质粒抽提试剂盒 内切酶 PCR试剂
5.1 BL21(DE3)感受态细胞的转化
• 取上次实验连接产物5ul加入到BL21(DE3)感受态细胞(100-200ul)中, • 轻弹管壁,混匀细胞和连接产物; • • • • • • • • • 冰上放置30min; 然后将感受态细胞置于恒温金属块中,42 C 热激BL21(DE3)感受态细胞90 sec; 取出感受态细胞冰浴5min; 加n; 5000rpm,离心5min;弃去上清1mL 余下100 ul菌液重悬,涂Kan平板 平板放入37 C生化培养箱中,正置培养30min后,倒置培养过夜(16hr)。 次日取出,挑斑接种LB/Kan液体培养基培养( 37 C ,220rpm )。 每人限挑一个斑接种(每组最多4斑)
第2周
第3周
第4周
时间节点:3月11日
序号 实验内容 1(上午) 总RNA的抽提 2 RT-PCR克隆 3(下午) PCR产物的纯化 4 5 6 并行实验 pET28a质粒的制备
PCR产物的酶切和回收 pET28a质粒的酶切回收 构建重组质粒pET28a-eGFP:载体和克隆片段的连接 BL21(DE3) 感受态细胞制备
2.3 pET28a质粒的制备(一组一份)
1. 目的:学习质粒DNA的抽提方法 2. 操作步骤
实验步骤
1. 硅膜法抽提质粒DNA
① ② ③
取3 ml TG1挑斑培养过夜的菌液,12,000×g,离心1 min,弃尽上清。 加250 μl S1 重悬细菌沉淀,悬浮需均匀,不应留有小的菌块。 加250 μl S2,温和并充分地上下颠倒数次混合均匀,使菌体充分裂解,直至形成透亮的溶液。此 步骤不宜超过5 min。
二、 RT-PCR克隆目的基因
1. 2. 3. 4. 逆转录合成第一链cDNA; PCR扩增目的基因; PCR产物的纯化; 制备目的DNA克隆片段
2.1 逆转录合成第一链cDNA(一组一份)
建议:大家使用3L总RNA样品
2.2 PCR扩增目的基因(一人一份)
1、PCR反应体系
试剂 浓度 用量
分子生物学实验安排
实验项目
1. E.coli重组表达GFP; 2. 利用杆状病毒在昆虫细胞中表达GFP; 3. 组装慢病毒表达目的蛋白。
三周(周六、周日)
1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 总RNA的抽提:从病毒感染的sf9中抽提总RNA RT-PCR:以总RNA为模板克隆eGFP基因 原核表达载体的构建:构建pET28a-GFP 感受态细胞的制备:制备BL21(DE3)感受态细胞 原核诱导表达GFP: 构建克隆GFP的重组杆状病毒:在sf9细胞中表达GFP。 构建克隆RFP的慢病毒: GFP的表达与鉴定
• 12,000 g, 4℃离心10分钟。一般在离心后,试管底部会出现沉淀。
3. RNA沉淀的清洗
• 小心弃去上清,缓慢地沿离心管壁加入DEPC配制的75%乙醇1ml(切勿触及 沉淀); • 轻轻上下颠倒数次,12,000 g, 4℃离心5分钟后小心弃去上清;
4. RNA的溶解
• 室温自然晾干沉淀2~5分钟 • 加入20l的RNase-free水溶解沉淀 • 必要时可用移液枪轻轻吹打沉淀,待RNA沉淀完全溶解后-80℃保存,或暂时 于冰上保存。 • 取10 l总RNA与10 x Loading Buffer混合与1% agarose gel凝胶电泳。 • 100V,电泳20min,拍照记录。 • 剩余的RNA样品用于RT-PCR
洗涤一次。弃滤液。
⑧ 将制备管置回2 ml 离心管中,12,000×g 离心1 min。
⑨ 取出制备管移入新的1.5 ml 离心管(试剂盒内提供)中,在制备管
膜中央加30 μl 预热的去离子水,室温静置1 min。12,000×g 离心1
min。
⑩ 洗脱下来的溶液即质粒DNA样品。
11 取5 μl DNA样品1%Agarose凝胶电泳检测。
H2O
总体积
41l 100l
H2O
总体积
41l 100l
• 混匀上述反应体系,37C水浴60min; • 酶切产物的纯化:同PCR产物的纯化,最后用25l水洗脱。
四、 pET28a-GFP表达载体的构建(一组一份)
1. 目的:学习利用逆转录PCR克隆目的基因以及克隆基因重组表达 载体的构建; 2. 材料: • pET-28a/ EcoRI + HindIII: • 内切酶:EcoRI + HindIII • 连接酶:Solution I • Kan平板: • DNA酶切/PCR产物纯化试剂盒:
离心5min;
• 弃去上清,并倒置于吸水纸上1分钟;
• 加入1 ml的RNAiso Plus,反复振荡数次使细胞完全裂解; • 可用移液枪反复吹吸直至裂解液中无明显沉淀。 • 室温静置5分钟。
2. Total RNA的提取
• 向匀浆裂解液中加入200L氯仿(RNAiso Plus的1/5体积量),盖紧离心管盖; • 用手剧烈振荡15秒(氯仿沸点低、易挥发,振荡时应小心离心管盖突然弹开); • 待溶液充分乳化(无分层现象)后,再室温静置5分钟。
2.4 PCR产物的纯化(一组一份)
此实验方法针对DNA样品中75bp以上的DNA进行纯化,去除小分子DNA、寡核
苷酸链、单核苷酸、盐离子、蛋白质等。可用于:
① PCR产物的纯化 ② DNA酶切产物的纯化 其原理:硅柱法分离DNA
硅柱吸附法
1. 合并PCR产物至150 μl。 注:若PCR产物不足150 μl,用水补足。 2. 在PCR产物中,加入450 μl的 PCR-A。 3. 混合均匀后转移到制备管中,将制备管置于2 ml 离心管,12,000×g 离心1 min, 弃滤液。 4. 将制备管置回2 ml 离心管,加700 μl W2,10,000rpm 离心1 min,弃滤液。 5. 将制备管置回 2 ml 离心管,加 400 μl W2,10,000rpm离心1 min; 6. 将制备管置于洁净的1.5 ml 离心管中,在制备管膜中央加 60 μl ddH2O (65℃预 热),室温静置1 min。 7. 10,000rpm 离心1 min 洗脱DNA。即离心下来的溶液即为纯化的PCR样品。 8. 每组取5 μl样品1%Agarose凝胶电泳。
④
⑤
加350 μl S3,温和并充分地上下颠倒数次,12,000×g 离心5 min。
吸取步骤4 中离心产生的上清并转移到制备管中(之前置于2 ml 离心管),12,000×g离心1 min, 弃滤液。
⑥ ⑦
将制备管置回离心管,加500 μl W1,12,000×g 离心1 min,弃滤液。 将制备管置回离心管,加700 μl W2,12,000×g 离心1 min,弃滤液;以同样的方法再用700 μl W2
试剂安排
• 69人上课 • 按照4人一组进行分组,共17组 • 教室:512;517. • 每组一套试剂和工具
一、总RNA的抽提(一人一份,3.26)
1. 目的:学习总RNA的抽提以及RNA的操作。 2. 试剂: • 细胞:每组一瓶 • Trizol:RNAiso • 氯仿: • 异丙醇 • DEPC水 • 70%的乙醇:DEPC水配制 • DNase/RNase-Free Tips and Tubes • 逆转录酶: • 引物 • DEPC水 • dNTPmix
实验注意事项
1. 接种培养示范; 2. 每组一管5ml LB液体培养基; 3. 除离心和培养外,所有操作均在超净工作台完成。
2、实验步骤
1. 于超净台中,按1%(V/V)的接种量,即取50 L大肠杆菌BL21(DE3)菌液接种于5mL LB液体培养基中。
(一组接种一管);
2. 3. 4. 37℃摇床培养1.5~2.0 h至OD600为0.4左右,此时大肠杆菌培养液呈现出一种“雾”状。 将装有大肠杆菌培养液的试管置于冰水浴中预冷10分钟。 于超净台中,取1.5mL大肠杆菌BL21(DE3)菌液至1.5mL Eppendorf管中,4℃,4,000rpm,离心5min。(每 人做一份); 5. 弃尽上清液,加入1ml预冷的100mmol/L CaCl2溶液,轻弹管壁重悬菌体沉淀,使之混匀,4℃恒温, 4000rpm离心5min。 6. 7. 8. 弃尽上清液,加入0.5ml预冷的100mmol/L CaCl2溶液,冰水浴中放置30min。4℃恒温,4000rpm离心5min。 弃上清液,将菌体沉淀用100L预冷的的100mmol/L CaCl2甘油溶液重新轻轻悬浮。 置4℃冰箱保存,次日(4-16hr内)使用。