生理学实验一神经干动作电位引导_副本

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神经干动作电位的引导及其传导速度的测定课件

神经干动作电位的引导及其传导速度的测定课件
结果与讨论
根据实验结果,分析各因素对神经干动作电位引导及其传导速度的 影响程度和机制,探讨其生理意义和实际应用价值。
BIG DATA EMPOWERS TO CREATE A NEW ERA
04
神经干动作电位引导及其传导速度的 应用
神经干动作电位引导的应用
诊断神经疾病
神经干动作电位引导可以用于检测神经系统的异常,如神 经损伤、神经炎等,有助于诊断神经性疾病。
神经干动作电位引导的影响因素
刺激强度
刺激强度的大小直接影响神经干动作电位的产生和幅度。
刺激频率
刺激频率的高低影响神经干动作电位的发放频率和波形。
神经干状态
神经干的状态如兴奋性、传导性等对动作电位的引导有重要影响 。
神经干动作电位传导速度的影响因素
神经纤维直径
01
神经纤维的直径越大,传导速度越快。
神经干传导速度的精确测定
通过采用高精度的电生理技术,本研究成功地实现了对神经干传导速度的精确测定,为 神经科学研究提供了重要的实验依据。
神经干动作电位特征的深入理解
本研究对神经干动作电位的特征进行了深入探讨,揭示了其与神经元动作电位之间的差 异和联系,为神经科学理论的发展做出了贡献。
研究展望
01
神经干动作电位引导 技术的进一步优化
神经干动作电位引导
BIG DATA EMPOWERS TO CREATE A NEW
ERA
神经干动作电位概述
神经干动作电位是神经细胞膜电位变化的一种表现形式,是神经细胞兴奋 时所发生的电位变化。
它是由大量神经细胞膜电位同时发生变化而形成的电位变化,是神经细胞 兴奋传递的基础。
神经干动作电位具有“全或无”的特性,即动作电位的幅度不随刺激强度 的增加而增加,只与刺激强度是否达到阈值有关。

神经干动作电位的引导实验报告

神经干动作电位的引导实验报告

神经干动作电位的引导实验报告神经干动作电位的引导实验报告引言:神经干动作电位(N1)是一种被广泛应用于神经科学研究中的电生理信号。

它是大脑对外界刺激做出反应时产生的一种特殊电位,能够提供关于感知、认知和运动等神经活动的重要信息。

本实验旨在通过对被试者进行视觉刺激,观察和记录N1的变化,来探讨神经活动与认知过程之间的关系。

实验设计:本实验采用单盲、交叉设计,共招募了20名健康成年被试者(10男性,10女性)。

被试者在实验前接受了详细的说明和知情同意,并被告知实验的目的和过程。

实验材料:实验中使用的材料包括:电脑、视觉刺激软件、脑电图(EEG)采集设备、触发器和眼动仪。

实验过程:每位被试者均被要求坐在舒适的座椅上,头部被固定在脑电图采集设备上。

实验开始前,被试者进行了简单的眼动校准。

实验过程中,被试者需要盯着电脑屏幕上的十字标记,同时观看一系列视觉刺激。

这些刺激包括不同颜色和形状的图案,以及一些文字和数字。

每个刺激呈现时间为200毫秒,间隔时间为500毫秒。

数据采集与分析:实验过程中,我们使用脑电图采集设备记录被试者的脑电信号。

同时,我们还使用眼动仪记录被试者的眼动轨迹。

脑电信号和眼动数据被实时传输到计算机上进行存储和分析。

数据分析的主要方法包括:1. 神经干动作电位(N1)的提取:通过对脑电信号进行滤波和平均化,我们可以提取出N1的波形特征。

2. 眼动数据的分析:通过分析眼动数据,我们可以了解被试者在不同刺激条件下的注意力分配和眼球运动情况。

3. 统计分析:通过使用统计学方法,我们可以比较不同刺激条件下的N1幅值和潜伏期,并探讨其与认知过程的关系。

结果与讨论:经过数据分析,我们观察到在不同刺激条件下,被试者的N1幅值和潜伏期存在显著差异。

例如,当被试者观看红色图案时,N1幅值较大,潜伏期较短;而在观看蓝色图案时,N1幅值较小,潜伏期较长。

这表明神经活动与颜色刺激之间存在一定的关联性。

此外,眼动数据的分析结果显示,被试者在观看不同刺激条件下的眼球运动模式也存在差异。

神经干动作电位的引导实验报告

神经干动作电位的引导实验报告

神经干动作电位的引导实验报告一、实验目的1、学习并掌握神经干动作电位的引导方法。

2、观察神经干动作电位的基本特征,包括双相动作电位和单相动作电位。

3、了解刺激强度、刺激频率对神经干动作电位的影响。

二、实验原理神经干由许多神经纤维组成,在神经干的一端给予电刺激,产生的兴奋会沿着神经纤维传导。

由于不同神经纤维的兴奋性和传导速度不同,因此记录到的神经干动作电位是由多个神经纤维动作电位复合而成的。

动作电位是指可兴奋细胞在受到刺激时,细胞膜电位在静息电位的基础上发生的一次快速、可逆、可传播的电位变化。

在神经纤维上,动作电位表现为“全或无”的特性,即刺激强度达到阈值时,动作电位产生,且幅度不随刺激强度的增加而增大。

当在神经干的一端给予刺激时,兴奋会向两端传导,在记录电极处可记录到双相动作电位。

如果将两个记录电极之间的神经干损伤,兴奋只能通过未损伤的部位向一个方向传导,此时记录到的是单相动作电位。

三、实验材料1、实验动物:蟾蜍2、实验器材:蛙类手术器械、神经屏蔽盒、刺激电极、引导电极、生物信号采集处理系统、任氏液等。

四、实验步骤1、制备蟾蜍坐骨神经干标本破坏蟾蜍的脑和脊髓,将其仰卧固定在蛙板上。

从脊柱的下部开始,沿脊柱两侧剪开皮肤,分离肌肉,暴露脊柱。

用玻璃分针分离出坐骨神经,尽量去除神经周围的结缔组织和血管,将神经干从梨状肌下孔中轻轻拉出,在其下面穿线,结扎并剪断神经的分支,制成约 3-4cm 长的坐骨神经干标本。

将标本放入装有任氏液的培养皿中备用。

2、连接实验装置将神经干标本置于神经屏蔽盒内,用棉花蘸取任氏液保持标本湿润。

刺激电极连接刺激输出端,引导电极连接信号输入端,接地电极接地。

3、调节实验参数打开生物信号采集处理系统,选择合适的采样频率和增益。

设置刺激参数,包括刺激强度、刺激波宽、刺激频率等。

4、引导神经干动作电位给予神经干单个刺激,观察并记录双相动作电位。

逐渐增加刺激强度,观察动作电位的幅度变化,确定阈值和最大刺激强度。

神经干动作电位的引导实验报告

神经干动作电位的引导实验报告
2、测定了神经干动作电位的传导速度,了解了影响传导速度的因素。
3、观察到了普鲁卡因对神经干动作电位的抑制作用,进一步理解了神经兴奋传导的机制。
八、注意事项
1、制备神经干标本时,要小心操作,避免损伤神经纤维。
2、实验过程中要保持神经干的湿润,以维持其正常的生理功能。
3、刺激强度和刺激频率要适中,避免过度刺激导致神经损伤。
4、滴加药物时要注意量的控制,避免药物扩散影响实验结果。
通过本次实验,我们对神经干动作电位的产生、传导和特点有了更深入的理解,为进一步研究神经生理功能奠定了基础。同时,也让我们认识到在实验操作中要认真细致,严格控制实验条件,以获得准确可靠的实验结果。
4、药物对神经干动作电位的影响
滴加普鲁卡因溶液后,动作电位的幅度逐渐减小,传导速度逐渐减慢,最终动作电位消失。
六、实验讨论
1、神经干动作电位的特征
神经干动作电位为双相动作电位,这是由于神经干中的神经纤维在兴奋传导过程中,兴奋部位与未兴奋部位之间存在电位差,从而形成了双向传导的动作电位。
动作电位的幅度与刺激强度有关,当刺激强度达到阈值时,动作电位的幅度达到最大值,这是因为所有的神经纤维都被兴奋。
动作电位的产生是由于细胞膜对离子通透性的改变,导致膜电位的快速变化。在静息状态下,细胞膜对钾离子的通透性较高,对钠离子的通透性较低,因此膜内电位较膜外低,表现为静息电位。当受到刺激时,细胞膜对钠离子的通透性迅速增加,钠离子大量内流,导致膜电位迅速去极化,形成动作电位的上升支。随后,细胞膜对钠离子的通透性迅速降低,对钾离子的通透性增加,钾离子大量外流,导致膜电位迅速复极化,形成动作电位的下降支。
动作电位具有“全或无”的特性,即刺激强度未达到阈值时,不产生动作电位;刺激强度达到阈值后,动作电位的幅度不再随刺激强度的增加而增大。

神经干动作电位的引导实验报告

神经干动作电位的引导实验报告

神经干动作电位的引导实验报告实验目的,探究神经细胞的动作电位在外部刺激下的变化规律,以及观察不同刺激条件下神经细胞的兴奋传导过程。

实验原理,神经细胞的动作电位是由于细胞膜上的离子通道在受到刺激时打开或关闭而产生的瞬时电压变化。

在实验中,我们将通过外部刺激来引导神经细胞产生动作电位,并记录其变化过程。

实验材料,小鼠脑组织切片、电极、药物溶液、振荡器、示波器等。

实验步骤:1. 将小鼠脑组织切片置于培养皿中,加入含氧气的培养液,使其细胞得到充分的氧气供应。

2. 将电极插入脑组织切片中,通过振荡器提供外部刺激,观察神经细胞的反应。

3. 在不同条件下,如改变刺激频率、强度或加入药物溶液,记录神经细胞动作电位的变化情况。

实验结果:1. 在低频刺激条件下,神经细胞的动作电位较为平稳,幅度较小,频率较低。

2. 随着刺激频率的增加,神经细胞的动作电位幅度逐渐增大,频率也随之增加,表现出兴奋传导的特征。

3. 加入药物溶液后,观察到神经细胞动作电位的变化受到抑制或增强,进一步说明了外部环境对神经细胞的影响。

实验结论:通过本次实验,我们观察到了神经细胞在不同刺激条件下动作电位的变化规律,以及外部环境对其兴奋传导的调控作用。

这为进一步研究神经细胞的生理活动和神经递质释放机制提供了重要的实验基础。

实验意义:神经细胞的动作电位是神经信号传导的基础,了解其变化规律对于理解神经系统的功能和疾病机制具有重要意义。

本次实验为进一步探究神经细胞兴奋传导机制提供了重要的实验数据和参考。

实验局限性:本次实验仅使用小鼠脑组织切片进行观察,实验结果可能受到切片保存条件、细胞状态等因素的影响,对于活体神经细胞的动作电位变化仍需进一步研究。

总结:神经细胞的动作电位是神经信号传导的重要基础,通过外部刺激可以引导神经细胞产生不同的电位变化。

本次实验结果为进一步研究神经细胞兴奋传导机制提供了重要的实验数据和参考,对于神经系统的功能和疾病机制具有重要意义。

实验一 神经干动作电位的引导,兴奋传导速度及不应期的测定

实验一 神经干动作电位的引导,兴奋传导速度及不应期的测定

实验一神经干动作电位的引导,兴奋传导速度及不应期的测定神经干动作电位、传导速度及不应期的测定【目的和原理】神经纤维的兴奋表现为动作电位的产生和传导,神经纤维上传导的动作电位通常称为神经冲动。

在神经细胞外表面,已兴奋部位带“负电”,未兴奋部位带“正电”,用引导电极引导出此电位差,输入到示波器,则可记录到动作电位的波形。

本实验用细胞外记录法,可引导出坐骨神经的复合动作电位。

神经纤维兴奋的标志是产生一个可以传导的动作电位,它依局部电流或跳跃传导的方式沿神经纤维传导。

其传导速度取决于神经纤维的直径、内阻、有无髓鞘等因素,可用电生理学方法来记录和测量。

神经纤维在一次兴奋过程中,其兴奋性可发生周期性变化,包括绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期。

本实验主要目的是学习电生理仪器的使用方法,掌握离体神经干动作电位的细胞外记录法及其基本波形的判断和测量。

掌握神经干动作电位传导速度及其不应期的测定方法,通过调整条件刺激和测试刺激之间的时间间隔,来测定坐骨神经干的绝对不应期。

【实验对象】蟾蜍或蛙。

【实验器材和药品】蛙类手术器械一套、电子刺激器、示波器(或计算机实时分析系统)、神经屏蔽盒、任氏液。

【实验步骤】1(制备坐骨神经——胫、腓神经标本操作方法详见3(8。

2(连接装置(见图8-1-1)。

3(准备仪器:(1)刺激器:调节刺激器各项参数:刺激方式连续刺激,频率16Hz,刺激强度0.5v,波宽0.1ms。

调节延迟使动作电位的图像位于示波器荧光屏的中央。

(2)示波器:灵敏度:1,2mv/cm,扫描速度:1,2ms/cm,引导电极输入到示波器的“AC”端,双边输入,刺激器的“同步输出”接示波器“外触发输入”,触发选择设置为“同步触发”。

4(观察项目:屏蔽盒S1 S2 R1 R2 R3 R4N输出上线下线刺示激波器器图8-1-1 神经干动作电位引导装置图(1)测量单、双相动作电位的潜伏期、时程和振幅,填入下表:时程振幅潜伏期动作电位格毫秒格毫伏格毫秒第一相双相动作电位第二相(2)测算动作电位的传导速度:V=S/?t (米/秒)式中:S为R1到R3的神经干长度,以米为单位。

4神经干动作电位的引导及神经兴奋传导速度的测定

4神经干动作电位的引导及神经兴奋传导速度的测定

4神经干动作电位的引导及神经兴奋传导速度的测定西安交通大学医学院教案, 引导蟾蜍坐骨神经动作电位,并观察其基本波形(包括双相和单相动作电位)。

, 学习和掌握神经干动作电位传导速度测定的原理和方法。

, 学习和掌握蟾蜍坐骨神经-腓神经标本制备方法。

, 复习讲解神经干动作电位和神经纤维动作电位的区别、神经干动作电位形成的过程及神经干兴奋传导速度的测定原理等。

, 制备坐骨神经—腓神经标本。

, 引导单、双相动作电位及测定兴奋传导速度。

, 神经干双相动作电位的形成机制。

, 兴奋传导速度的测定原理。

【】1. 引导蟾蜍坐骨神经动作电位,并观察其基本波形(包括双相和单相动作电位)。

2. 学习和掌握神经干动作电位传导速度测定的原理和方法。

3. 学习和掌握蟾蜍坐骨神经-腓神经标本制备方法。

【】动作电位是神经细胞兴奋的客观标志,当神经纤维或神经干受到有效刺激时,必然会产生可传导的动作电位,也称为神经冲动。

由于神经干动作电位是许多单根神经纤维动作电位的复合,所以它的特征不同于单根神经纤维的动作电位。

本实验采用离体细胞外记录法,记录神经干兴奋时两个记录电极之间的电位变化。

动作电位可沿神经纤维进行双向传导,其传导速度取决于纤维直径、内阻、有无髓鞘等因素。

通过测定动作电位传导的距离和时间,可算出动作电位在神经纤维上的传导速度。

【】1. 动物蛙或蟾蜍。

2. 试剂和药品任氏液3. 装置和器材计算机、蛙类手术器械、神经屏蔽盒、直尺、圆规、培养皿。

【】1. 神经干动作电位的引导1)制备坐骨神经-腓神经标本制备方法与制备坐骨神经-腓肠肌标本基本相同,只是当把坐骨神经游离至膝关节后,在腓肠肌一侧继续分离腓神经至足趾,用线结扎,并在结扎线远端剪断。

将制备好的坐骨神经-腓神经标本浸入盛有任氏液的培养皿内备用。

2)将神经标本置于神经屏蔽盒的电极上。

将神经的近中枢端置于刺激电极一侧,外周端置于记录电极侧。

3)进入BL-410生物信号采集、处理系统,单击菜单栏中实验项目,在肌肉、神经实验中选择神经干动作电位的引导。

生理学实验课件 蛙类神经干动作电位的引导及其传导速度、不应期的测定

生理学实验课件 蛙类神经干动作电位的引导及其传导速度、不应期的测定

上相幅值 刺激
伪迹
mV
0
-35
潜下伏相期幅值
时程
刺激伪迹:刺激形成的电变化在神经干表面 的传导,可作为刺激开始的标志。
S
R1
R2 R3
R4
神经干
神经干
标本屏蔽盒
S1 S2
R1 R2 R3 R4
神经干动作电位传导速度测定原理:
V=s/t
通道1 通道2 通道3
t1
t t2
神经干动作电位不应期的测定原理:
三、测定神经干动作电位的传导速度、不应期
实验报告封面
班级: 组别: 姓名: 学号:
日期: 温度:
蛙类神经干动作电位的引导及传导速度、不应期的测定 一、实验目的 二、实验材料及步骤 略(详见《生理科学实验》P83~P87) 三、结果
图1 1通道神经干双相动作电位
表1 蛙类神经干动作电位的引导及传导速度、不应期的测定结果
5-3
本实验中相关数据的记录
•阈刺激 •最大刺激强度 •双相动作电位上下相幅值 •双相相动作电位上下相时程 •动作电位潜伏期(t1、t2) •动作电位间隔时间(t)
实验后数据处理:
• 打印1通道双相动作电位的图谱; • 按表5-2列出实验结果的相关数据; • 分析实验结果,并写出实验报告。
图1 1通道双相动作电位
相呼应。
预习:
实验二 影响血液凝固的因素; 实验三 红细胞渗透脆性的测定。 要点: 各种处理因素对血液凝固的影响及其原理;
红细胞渗透脆性的测定方法,渗透性溶血的 原理。
S
中枢端
R1
R2 R3
R4
神经干
神经干
外周端
标本屏蔽盒
S1 S2

实验一_神经干动作电位的引导及其传导速度和不应期的测定

实验一_神经干动作电位的引导及其传导速度和不应期的测定

一目的要求:1.学习蛙类动物单毁髓与双毁髓的方法。

2.学习并掌握蛙类坐骨神经干标本的制备方法。

3.学习电生理学实验方法。

4.观察蟾蜍坐骨神经干复合动作电位的波形,了解其产生的基本原理。

二基本原理:神经干在受到有效刺激后,可以产生动作电位,标志着神经发生兴奋。

如果在神经干另一端引导传来的兴奋冲动,可以引导出双相的动作电位,如在两个引导电极之间将神经麻醉或损坏,则引导出的动作电位即为单相向动作电位。

神经细胞的动作位是以”全或无”方式发生的。

坐骨神经干是由很多不同类型的神经纤维组成的,所以,神经干的动作电位是复合动作电位。

复合动作电位的幅值在一定刺激强度下是随刺激强度的变化而变化的。

三动物与器材:蟾蜍、常用手术器械(手术剪、手术镊、金冠剪、眼科剪、毁髓针和玻璃分针)、蛙板、固定针、不锈钢盘、污物缸、粗棉线、任氏液、计算机生理信号处理系统、神经屏蔽盒。

四方法步骤:1.蟾蜍的单毁髓与双毁髓一手握住蛙或蟾蜍(可用纱布包裹蟾蜍躯干部),背部向上。

用拇指压住蛙或蟾蜍的背部,食指按压其头部前端,使头端向下低垂; 另一手持毁髄针,由两眼之间沿中线向后触划,当触及到两耳中间的凹陷处(此处与两眼的联机成等边三角形)时,持针手即感觉针尖下陷,此处即是枕骨大孔的位置。

将毁髄针由凹陷处垂直刺入,即可进入枕骨大孔(图t-1)。

然后将针尖向前刺入颅腔,在颅腔内搅动,以捣毁脑组织。

如毁髄针确在颅腔内,实验者可感到针尖触及颅骨。

此时的动物为单毁髓动物。

再将毁髓针退至枕骨大孔,针尖转冋后方,与脊柱平行刺入椎管,以捣毁脊髓。

彻底捣毁脊髓时,可看到动物的后肢突然蹬直,而后瘫痪如棉(图t-2),此时的动物为双毁髓动物。

如动物仍表现肢肌肉紧张或活动自如,必须重新毁髓。

操作过程中应注意使蟾蜍头部向外侧(不要挤压耳后腺),防止耳后腺分泌物射入实验者眼内(如被射入,则需立即手生理盐水冲洗眼睛)。

2.坐骨神经干标本制备(1) 剥制后肢标本(图t-3)(2) 分离两后肢(图t-4)(3) 分离坐骨神经(图t-5)3.测定:阈刺激、最大刺激,打印不同刺激引起的动作电位重叠显示波形。

生理学实验指导

生理学实验指导

生理学实验指导(生物工程2012级3、4班用)实验一、神经干复合动作电位的引导【目的要求】1. 学习电生理实验方法。

2. 观察蛙坐骨神经干复合动作电位的波形,并了解其产生的基本原理。

【基本原理】神经干在受到有效刺激后,可以产生动作电位,标志着神经发生兴奋。

如果在神经干另一端引导传来的兴奋冲动,可以引导出双相的动作电位,如果在两个引导电极之间将神经麻醉或损坏,则引导出的动作电位即为单相动作电位。

神经细胞的动作电位是以“全或无"方式产生的。

坐骨神经干是以由很多不同类型的神经纤维组成的,所以,神经干的动作电位是复合动作电位。

复合动作电位的幅值在一定刺激强度下是随刺激强度的变化而变化的。

【动物与器材】蟾蜍或蛙、常用手术器械、计算机采集系统、神经屏蔽盒、任氏液。

【方法与步骤】1. 制备蛙或蟾蜍坐骨神经干标本。

2. 将蛙的坐骨神经干标本置于屏蔽盒内的电极上,神经干的中枢端置于刺激电极一侧,从末梢端引导动作电位3. 实验观察与记录(1) 神经干兴奋阈值的测定刺激强度从0.1V开始,逐渐增加刺激强度,当刚刚出现动作电位时的刺激强度,即为神经干的兴奋阈值。

(2) 双相动作电位在刺激阈值的基础上逐渐加大刺激强度,可见动作电位的图形为双相,而且其幅值随刺激强度增大而加大。

当刺激增加到一定强度时,可见动作电位的幅值不再增大。

(3) 动作电位参数的测量用鼠标点击“快捷工具栏”的“观察”,移动鼠标,测出动作电位的一系列参数。

(4) 单相动作电位在两个引导点击之间损伤神经干标本,可使原来的双相动作电位的下相小时,变为单相;注意上相动作电位的图形有什么变化。

【注意事项】a) 实验过程中注意保持标本的活性良好,经常用任氏液湿润之。

b) 如果在显示窗上发现动作电位图形倒置,将引导电极位置交换即可实验二、反射时的测定与反射弧的分析【目的要求】1.学习测定反射时的方法。

2.了解反射弧的组成。

【基本原理】从皮肤接受刺激至机体出现反应的时间为反射时。

神经干动作电位实验报告

神经干动作电位实验报告

神经⼲动作电位实验报告神经⼲动作电位实验报Experimental report of neUhtstem action potential告Intern ship report实验报告⼀、实验⽬的:1. 学习蛙坐⾻神经⼲标本的制备2. 观察坐⾻神经⼲的双相动作电位波形,并测定最⼤刺激强度3. 测定坐⾻神经⼲双相动作电位的传导速度4. 学习绝对不应期和相对不应期的测定⽅法5. 观察机械损伤或局⿇药对神经兴奋和传导的影响⼆、实验材料1. 实验对象:⽜蛙2. 实验药品和器材:任⽒液,2%普鲁卡因,各种带USB接⼝或插头的连接导线,神经屏蔽盒,蛙板,玻璃分针,粗剪⼑,眼科剪,眼科镊,培养⽫,烧杯,滴管,蛙毁髓探针,BL-420N 系统三、主要⽅法和步骤:1. 捣毁脑脊髓2. 分离坐⾻神经3. 安放引导电极4. 安放刺激电极5. 启动试验系统6. 观察记录7. 保存8. 编辑输出四、实验结果和讨论1. 观察神经⼲双相动作电位引导(单通道,单刺激)如图,观察到⼀个双相动作电位波形。

Pm 驴:i SQOQOKi 2.0 ms 7 射¥也00z 时间⼀—j .................... : .................. 频率:最⼤值-...... ' ........ ' ......... [ ........ ;...... [协⼩值:-15 --20 _oo: oo. m兀卫EQ创2. 神经⼲双相动作电位传导速度测定(双通道,单刺激)kUUUChz L.U ns ZlT m¥ii J.ttmzj .................. ■:- I2? 1. WV1 I ----------- 14 I I 4 I I IooTio mo oa nr iins on oo oru oom coe co nr no⽇on m nn oo oo ni2 DO on rtu OO CIJ ri^oo oc OIA(1) 选择“神经⾻骼肌实验”⼀“…传导速度测定”(2) 改变单刺激强度(3) 传导速度=传导距离(R1--R2-)/传导时间(t 2-t 1)如图所⽰,两个波峰之间的传导时间△ t = (t 2-t 1) = 0.66ms实验中,我们设定在引导电极1和3之间的距离△ R = (R 1--R2-) = 1cm故传导速度v = △ R/ △ t = 1cm / 0.66ms = 15.2 m/s1 OOY-ID释: 最⼤ii;■⼩值:平均值:嶂赠但?⾯租BJ祠;最知宜.环值:平均值:⽽租3. 神经⼲双相动作电位不应期观察-1B - -20 _I OOV, 4丐砂 |110:00.614 O0:0tJ.fil3 00:00.S22 CiO:OO.S2S 00:00.S30⼆黒 HL LJ倒 UJ S3时间:最⼤值; 最⼩值- 平均値删值时间:[Q1D |CO.QL. 3H g DI 3耨 OD Cd 00 W 3好 0⼝⽫ 11T 0Q D3 驀 1 OO.QJI 3R M :0i S? QIXQ1,諮孝 00:01.^7由上图可知,当刺激间隔时间为 4.61ms时,两双相动作电位开始融合,此时为总不应期;当刺激间隔时间为1.05ms时,双相动作电位完全融合,此时为绝对不应期。

第2课神经干动作电位的引导及神经兴奋传导速度的测定

第2课神经干动作电位的引导及神经兴奋传导速度的测定

神经干动作电位的引导及神经兴奋传导速度的测定【实验目的】1. 引导蟾蜍坐骨神经动作电位,并观察其基本波形(包括双相和单相动作电位)。

2. 学习和掌握神经干动作电位传导速度测定的原理和方法。

3. 学习和掌握蟾蜍坐骨神经-腓神经标本制备方法。

【实验原理】动作电位是神经细胞兴奋的客观标志,当神经纤维或神经干受到有效刺激时,必然会产生可传导的动作电位,也称为神经冲动。

由于神经干动作电位是许多单根神经纤维动作电位的复合,所以它的特征不同于单根神经纤维的动作电位。

本实验采用离体细胞外记录法,记录神经干兴奋时不同位置记录电极之间的电位变化。

动作电位可沿神经纤维进行双向传导,其传导速度取决于纤维直径、内阻、有无髓鞘等因素。

通过测定动作电位传导的距离和时间,可算出动作电位在神经纤维上的传导速度。

【实验材料】1. 动物蛙或蟾蜍。

2. 试剂和药品任氏液3. 装置和器材计算机、蛙类手术器械、神经屏蔽盒、直尺、圆规、培养皿。

【实验方法】1. 神经干动作电位的引导1)制备坐骨神经-腓神经标本制备方法与制备坐骨神经-腓肠肌标本基本相同,只是当把坐骨神经游离至膝关节后,在腓肠肌一侧继续分离腓神经至足趾,用线结扎,并在结扎线远端剪断。

将制备好的坐骨神经-腓神经标本浸入盛有任氏液的培养皿内备用。

2)将神经标本置于神经屏蔽盒的电极上。

将神经的近中枢端置于刺激电极一侧,外周端置于记录电极侧。

3)进入BL-420生物信号采集、处理系统,单击菜单栏中实验项目,在肌肉、神经实验中选择神经干动作电位的引导,观察所引导出的动作电位。

4)观察刺激强度对动作电位幅度的影响。

实验项目(单击)——>肌肉、神经实验——>阈强度与动作电位的关系——>设置起始刺激强度、刺激增量与时间间隔——>单击OK——>观察显示器所显示的随着刺激强度大增大,双向动作电位从无到有、到随着刺激强度的增大而增大、再到刺激强度增大到某一值时,动作电位不再随之增大的变化过程。

神经干动作电位实验报告

神经干动作电位实验报告

神经干动作电位实验报告篇一:泥蛙神经干动作电位的引导传导速度的测定实验报告神经干动作电位传导速度的测定一实验目的一掌握坐骨神经标本的制备方法。

二掌握引导神经干复合动作电位和测定其传导速度的基本原理。

二相关知识(一)兴奋及兴奋性的概念(二)动作电位的潜伏期、动作电位时程和幅值1、动作电位:各种可兴奋细胞在受到刺激而兴奋时,可以在细胞膜静息电位的基础上发生一次短暂的,可向周围扩布的电位波动。

这种电位波动称为动作电位。

(三)、动作电位的传导局部电流的形式(一)、细胞外记录1(二)、神经干的动作电位神经干是由许多粗细不等的有髓和无髓神经纤维组成的混合神经,故神经干动作电位与单根神经纤维的动作电位不同,它是由许多神经纤维的动作电位合成的一种复合电位。

四实验原理(一)、单根神经纤维动作电位的引导及其传导1、记录出了一个先升后降的双相动作电位的原理当神经纤维未受刺激时,膜外与电极所接触的两点之间没有电位差,所以两电极之间也无电位差存在,扫描线为一水平基线。

在神经干左端给予电刺激后,则产生一个向右传导的冲动(负电位),当冲动传到1电极(负电极)下方时,此处电位较2处为低,产生了电位差,扫描线向上偏转,记录出一个向上的波形(在电生理实验中,为了便于观察,习惯上规定负波向上)。

随后,冲动继续向右侧传导,离开1电极传向2电极处。

当它到达2电极(正电极)下方时,因1电极处神经差不多已恢复到原来的状态,于是2电极处又较1电极处为负,引起扫描线向下偏转,记录出一个向下的波形。

这样,在神经冲动向右传导的过程中,就记录出了一个先升后降的双相动作电位。

负电极在前时,它首先记录到神经干表面由正变负的电位变化,经历了由正到负再到正的过程,因此记录出动作电位2的上相。

当在后的正电极记录到这种同样的电位变化过程时,显示相反的情况,记录出动作电位的下相。

如果互换正、负电极的位置,则记录到先降后升的双相动作电位。

C.A点神经纤维多于B点(次要原因)。

神经干动作电位的引导和观察/动作电位传导速度的测定

神经干动作电位的引导和观察/动作电位传导速度的测定

姓名:学号:实验报告说明:1、实验报告务必独完成,对抄袭者将按不及格处理;2、实验报告的格式请按下面的各项要求来填写,不要改动;3、正文字体统一用“仿宋-GB2312”、,小四号,单倍行距,小标题加黑;4、下面的“替换这里”字体底纹在完成后去除;5、实验报告按时上传,上传时文件名统一按照网上说明来命名;实验名称:神经干动作电位的引导和观察/动作电位传导速度的测定同组姓名:实验日期:室温:气压:成绩:教师:一、实验结果(一)神经干动作电位的引导和观察(二)动作电位传导速度的测定二、分析与讨论分析:(一)神经干动作电位的引导和观察神经元以动作电位的形式传送神经冲动,给具有兴奋性的神经干以一定强度的刺激,会产生动作电位并传导。

细胞膜外兴奋部位的膜外电位负于静息部位,冲动通过后,膜外电位又恢复到静息水平。

因此兴奋部位与邻近部位之间会出现电位差,用引导电极引导出此电位差,则可记录到动作电位的波形。

本实验采用细胞外记录法引导出坐骨神经的复合动作电位。

1. 单相动作电位:两个引导电极之间的神经组织有损伤,兴奋波只通过第一个引导电极,不能传导至第二个引导电极,则只能记录到一个方向的电位偏转波形。

2. 双相动作电位:如果将两引导电极置于正常完整的神经干表面,当神经干一端兴奋之后,兴奋波先后通过两个引导电极,可记录到两个方向相反的电位偏转波形。

在实验中,两记录电极放置在神经干表面,记录已兴奋区域与未兴奋区域间的电位差。

由于动作电位传导到神经干两记录电极放置点的时间先后差异,将在两记录电极间引导出电位波动,出现类似于正弦波的电位变化,这就是神经干复合动作电位。

双相动作电位特点:①第一相峰值总高于第二相;②第二相持续时间总大于第一相;③每相的上升支与下降支都不对称。

神经干动作电位与单根神经纤维中的动作电位不同:对单一的神经纤维而言,其动作电位呈“全或无”现象;在神经干中,它是由许多传导速度、幅度不同的神经纤维组成,在一定的范围内,随着刺激强度的增大,兴奋的纤维数目逐渐增多,神经干动作电位幅度也逐渐增强。

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生理学实验
实验一
一、生理学实验操作方法、仪器介绍 二、蟾蜍坐骨神经腓神经标本制备 三、神经干动作电位的引导 四、局麻药对生物电活动的影响
实验目的
1.掌握生理学实验的基本操作方法。 2.了解神经干动作电位的基本波形及 其机理。 3.观察局麻药对生物电活动的影响。
实验原理
一、生物电现象 1.Resting Potential 2.Action potentia经干动作电位的引导 三、局麻药对生物电活动的影响
注意事项
1.神经干标本应足够长。 2.操作轻柔,勿污染。 3.不断滴加任氏液,保持神经干湿润,维 持其良好的兴奋性。 4.分离神经过程中,将分支全部剪除干净。
结果与分析
一、动作电位的引导
二、局麻药对生物电活动的影响
思考题
实验对象 Toad
药品、器材
1.药品:任氏液、1%普鲁卡因 2.器材:BL-420生物机能实验系统、 蛙类手术器械、屏蔽盒、刺激 线、引导线、蛙板、培养皿。
方法、步骤
一、蟾蜍坐骨神经-腓神经标本制备
1.破坏脑和脊髓
2.剪除躯干上部及内脏
3.剥 皮
清洗双手及所用器械
4.分离两腿 5.坐骨神经-腓神经标本制备
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