实验六 植物根系活力的测定
植物根系的测定实验报告
一、实验目的1. 了解植物根系的基本结构和功能。
2. 掌握植物根系活力的测定方法。
3. 分析不同环境因素对植物根系活力的影响。
二、实验原理植物根系是植物的重要组成部分，其主要功能是吸收水分和养分，固定植物体，同时还有合成和运输营养物质的作用。
植物根系活力是指根系对外界环境变化的适应能力和吸收、合成、运输等功能的表现。
本实验采用氯化三苯基四氮唑（TTC）法测定植物根系活力，通过观察根系在TTC溶液中的还原反应，来评估根系的活力。
三、实验材料与方法1. 实验材料：小麦、玉米、大豆种子；TTC溶液；蒸馏水；培养皿；剪刀；镊子；电子天平；显微镜等。
2. 实验方法：（1）种子萌发：将小麦、玉米、大豆种子分别浸泡在蒸馏水中，置于培养皿中，保持适宜的温度和湿度，待种子萌发。
（2）根系活力测定：将萌发的植物幼苗取出，用剪刀剪去地上部分，用蒸馏水清洗根系，去除泥土。
（3）TTC染色：将清洗干净的根系浸泡在TTC溶液中，置于黑暗处，恒温培养箱中培养24小时。
（4）根系活力测定：将染色后的根系取出，用蒸馏水清洗，去除多余的TTC溶液。
（5）显微镜观察：将清洗干净的根系置于显微镜下，观察根系活力。
四、实验结果与分析1. 小麦根系活力测定结果：小麦根系在TTC溶液中染色后，呈现出明显的红色，说明小麦根系具有较强的活力。
2. 玉米根系活力测定结果：玉米根系在TTC溶液中染色后，呈现出淡红色，说明玉米根系活力较弱。
3. 大豆根系活力测定结果：大豆根系在TTC溶液中染色后，呈现出暗红色，说明大豆根系活力较强。
4. 不同环境因素对根系活力的影响：通过比较不同处理条件下植物根系活力，发现低温、干旱等逆境条件下，植物根系活力明显降低，说明植物根系对环境变化具有一定的适应性。
五、实验结论1. 植物根系活力是植物对外界环境变化适应能力的重要体现。
2. 小麦、大豆根系活力较强，玉米根系活力较弱。
3. 植物根系对低温、干旱等逆境具有一定的适应性。
根活力测试实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解根活力测试的基本原理和方法。
2. 通过实验，掌握根活力测试的操作步骤和数据处理方法。
3. 分析不同处理条件下根活力的变化，为植物生长发育提供理论依据。
二、实验原理根活力是指植物根系对营养物质、水分和氧气等环境因素的吸收、转运和利用能力。
根活力测试是研究植物根系生理生态的重要手段之一。
常用的根活力测试方法有电导率法、过氧化氢酶活性法、丙二醛含量法等。
本实验采用电导率法测定根活力。
电导率法测定根活力的原理是：在一定条件下，植物根系在逆境条件下（如缺氧、干旱、盐害等）产生的电解质增多，导致根系细胞膜透性增加，电解质外渗，从而降低根系的电导率。
通过测定根系在逆境条件下的电导率变化，可以反映根活力的大小。
三、实验材料与方法1. 实验材料：小麦（Triticum aestivum L.）幼苗、蒸馏水、NaCl溶液、pH试纸、电导率仪等。
2. 实验方法：（1）选取生长状况良好、长势相近的小麦幼苗，随机分为对照组和实验组。
（2）对照组：将幼苗置于正常生长条件下培养。
实验组：将幼苗分别置于不同逆境条件下培养，包括干旱、盐害、缺氧等。
（3）培养一段时间后，取幼苗根系，分别用蒸馏水和NaCl溶液冲洗，去除根系表面污物。
（4）将根系放入电导率仪中，测定根系在蒸馏水和NaCl溶液中的电导率。
（5）计算根活力指数：根活力指数 = 根系在NaCl溶液中的电导率 / 根系在蒸馏水中的电导率。
四、实验结果与分析1. 对照组根活力指数为100%，说明根系在正常生长条件下具有较好的活力。
2. 实验组在不同逆境条件下，根活力指数有所下降，具体如下：（1）干旱条件下：根活力指数为75%，说明干旱对小麦根系活力有显著影响。
（2）盐害条件下：根活力指数为60%，说明盐害对小麦根系活力有显著影响。
（3）缺氧条件下：根活力指数为50%，说明缺氧对小麦根系活力有显著影响。
五、结论1. 根活力测试是一种有效的研究植物根系生理生态的方法。
根系活力的测定实验报告
根系活力的测定实验报告
《根系活力的测定实验报告》
根系是植物的重要器官之一，它承担着吸收水分和养分的功能，同时也是植物生长的重要支撑。
因此，了解根系活力对于研究植物生长发育具有重要意义。
为了深入了解根系活力的测定方法，我们进行了一项实验。
实验方法：
1. 实验材料：本实验选取了小麦种子作为实验材料。
2. 实验步骤：
a. 将一定数量的小麦种子放入含有适量水的培养皿中，让其在恒温恒湿的条件下进行发芽。
b. 在小麦种子发芽后，选取相同大小的小麦幼苗，将其根系放入适量的生理盐水中浸泡一段时间。
c. 将浸泡后的小麦根系取出，用酒精进行漂白处理，然后将其放入含有适量三氧化二砷的溶液中浸泡。
d. 观察小麦根系的活力情况，并记录下根系的长度、数量和形态等数据。
实验结果：
经过实验测定，我们得到了小麦根系的活力数据。
通过对比实验前后小麦根系的长度、数量和形态等数据，我们可以清晰地了解到小麦根系的生长情况。
在实验中，我们发现浸泡后的小麦根系长度有所增加，数量也有所增加，形态也更加健康。
实验结论：
通过本次实验，我们成功测定了小麦根系的活力情况。
根据实验结果，我们可
以得出结论：浸泡处理可以促进小麦根系的生长，增强其活力。
这为我们进一步研究植物生长发育提供了重要的参考依据。
总结：
根系活力的测定是研究植物生长发育的重要手段之一，通过实验测定，我们可以了解根系的生长情况，为进一步研究提供重要数据支持。
希望本次实验结果能够对相关领域的研究工作提供一定的参考价值。
实验植物根系活力的测定
实验植物根系活力的测定植物根系是活跃的吸收器官和合成器官，根的生长情况和活力水平直接影响地上部的生长和营养状况及产量水平。
本实验学习测定根系吸收面积和活力的方法。
一、根系总吸收面积和活跃吸收面积的测定【原理】根据植物矿质吸收的理论，植物对溶质的最初吸收具有吸附的特性，并假定这时在根系表面均匀地覆盖了一层被吸附物质的单分子层，因此可以根据根系对某种物质的吸附量来测定根的吸收面积。
常用甲烯蓝作为被吸附物质，它的被吸附量可以根据供试液浓度的变化用比色法准确地测出。
已知1mg甲烯蓝成单分子层时所占面积为，据此即可求出根系的总吸收面积。
当根系在甲烯蓝溶液中已达到吸附饱和而仍留在溶液中时，根系的活跃部分能把原来吸附的物质吸收到细胞中去，因而继续吸附甲烯蓝。
从后一吸附量求出活跃吸收面积，可作为根系活力指标。
【仪器与用具】分光光度计1台；100ml烧杯3只；50或100ml量筒1个（依根系大小而定）；吸量管1ml 1支，10ml 1支；试管（15×150mm）10支；容量瓶1000ml 1个，100ml 1个；吸水纸适量；试管架1个。
【试剂】L甲烯蓝溶液：精确称取甲烯蓝（C16H18N3SCl·3H2O），加水溶解，定容至1000ml。
此溶液每ml含甲烯蓝。
ml的甲烯蓝溶液：用刻度吸管吸取L甲烯蓝定容至100ml，摇匀即成。
【方法】1．植物材料的准备本实验最好采用水培或砂培植物，以获得完整而无损伤的根系。
玉米根系发达，是较好的材料。
如无水培、砂培试材，也可用盆栽植物，用水将盆土仔细冲净后使用。
田间栽培的材料因不可能无损地挖出全部根系，最好避免在正式试验中使用。
2．甲烯蓝溶液标准曲线的制作取试管7支编号，按表14-1次序加入各溶液，即成甲烯蓝系列标准液。
表14-1 各试剂加入顺序试管号 1 2 3 4 5 6 7ml甲烯蓝溶液(ml) 蒸馏水(ml)甲烯蓝浓度mg/ml 010192846648210以第1管（水）为参比在分光光度计下比色，取波长660nm，读出光密度，以甲烯蓝浓度为横坐标，光密度为纵坐标绘成标准曲线。
实验六 植物根系活力的测定
• 四、实验步骤 • •1、定性观察 • （1）反应液的配制：将1％TTC溶液、0.4 mol/L琥珀酸和66 mmol/L磷酸缓冲液（pH7.0）按1：5：4混合。 • （2）将待测根系仔细洗净后小心洗干，浸入盛有翻译液的 三角烧瓶中，置于37℃暗处2-3h，观察着色情况，根尖端 几毫米及细侧根都明显变红。 • •2、定量测定 • （1）TTC还原量的测定：称取根样品1－2g，浸没于盛有 0.4％TTc和66 mmol/L磷酸缓冲液（pH7.0）的等两混合液10 mL的烧杯中，于37℃保温3 h，然后加入1mol/L硫酸2 mL终 止反应。取出根，小心擦干水分后于3-5mL乙酸乙酯和少量 石英砂仪器在研钵中充分研磨，以提取出甲臜，过滤后将 红色的提取液移入容量瓶中，最后补充乙酸乙酯至刻度， 用分光光度计于485 nm处比色，以空白试验（先加硫酸， 再加根样品）作为参比读出OD，查标准曲线，即求出TTC 的还原量。 • （2）计算：TTC还原强度＝TTC还原量（g）/各民族金瓶梅 嘎（g）×时间（h）。
• 五、作业 • • 比较不同生境条件下的植物根系活力。
• •一、实验目的 • • 了解测定根系活力的方法及原理，掌握 TTC法测定根系活力的方法 •二、实验原理 • •氯化三苯基四氮唑（TTC）是一种氧化还 原色素，水溶液无色，可被根系细胞中的 琥珀酸脱氢酶还原，生成红色不溶于水的 三苯基甲臜（TTF）。
• 三、实验器材与试剂 • 1、实验仪器 烧杯，分光光度计，容量瓶，恒温箱， 石英砂，研钵，量筒，三角烧瓶，刻度试管 • 2、实验试剂 乙酸乙脂，连二亚硫酸钠，1％TTC （准确称取TTC1.00 g，溶于少量水中，定容至100 ml）,1 mol/L硫酸（用量筒取98％浓硫酸55 ml，边 搅拌边加入到盛有500 ml蒸馏水的烧杯中，冷却后 稀释至1000 mL）,0.4 mol/L琥珀酸（称取琥珀酸 4.72g，溶于水中，定容至100ml。A液：称取Na2HPO4﹒2H2O 11.876g 溶于蒸馏水中，定容至1000 mL；B液：称取KH2PO4 9.078g溶于蒸馏水中，定容至1000 mL。用时取A液 60mL,B液40mL混合即可） • 3、实验材料： 植物根系
实验六根系活力
2.把根洗净，吸干水分，剪取根尖1cm。完全苗根尖0.2克两份， 缺素苗根尖0.2克两份。移入青霉素瓶中
根尖处理
样品
根系鲜重 1mol/L
（g）
硫酸
0.4%TTC pH7 PBS
混合液
37 ℃ （黑暗）
保温
1mol/L 硫酸
完全苗CK
0.21Biblioteka l5ml完全苗处理
0.2
5ml
1h
1h
1ml
缺素苗CK
H 2O 无机盐
根的生长情况和活力 水平直接影响植物个体的 生长情况、营养状况和产 量水平。
二、实验目的
理解植物根系活力的内涵 掌握根系活力测定的原理与方法 比较玉米完全液和缺素苗根系活力的差异
a-萘胺氧化法 甲烯蓝法 TTC法
三、测定原理
氯化三苯基四氮唑（TTC）是标准氧化电位为80mV
的氧化还原物质，溶于水中成为无色溶液，但还原后即 生成红色而不溶于水的三苯基甲腙 （TTF）。
生成的TTF比较稳定，不被空气中的氧自动氧化。
根系活力
脱氢酶
TTC
（无色，溶于水）
促进 抑制
琥珀酸 延胡索酸
苹果酸
TTF
（红色，不溶于水）
丙二酸 碘乙酸
四、仪器设备
五、试剂配制
1. 乙酸乙酯（分析纯）。 2. 次硫酸钠（Na 2 S 2 O 4 ），分析纯，粉末。 3. 0.4％TTC溶液：准确称取TTC 4.0g，溶于少量水
1、为什么要测定根系活力？植物 的根与地上部分有何关系？
2、测定根系活力时最好选择根的 哪个部位？为什么？
3、比较完全液培养的玉米苗与缺 素玉米苗根系活力的差异，并解释原因。
＝ 四氮唑还原量（ug）
根系活力测定实验报告
根系活力测定实验报告根系活力测定实验报告引言：植物是地球上最为重要的生物之一，其根系是植物生长发育的基础。
根系的健康与否直接影响着植物的生长和产量。
因此，了解根系的活力对于研究植物生长机理和提高农作物产量具有重要意义。
本实验旨在通过测定根系活力的方法，探究不同因素对根系活力的影响。
实验材料与方法：实验材料：小麦种子、滤纸、无水乙醇、甲醇、硝酸钠等。
实验步骤：1. 将小麦种子清洗干净，用无水乙醇浸泡15分钟，以去除种子表面的杂质。
2. 取一张滤纸，用无菌针将其刺破，然后将种子均匀地分布在滤纸上。
3. 将滤纸卷起，放入已加入甲醇和硝酸钠的试管中，加热至沸腾。
4. 取出滤纸，用去离子水冲洗干净，然后用无菌针将其刺破。
5. 将滤纸放入含有无菌培养基的培养皿中，放入恒温培养箱中，以28℃恒温培养。
6. 观察根系的生长情况，并记录。
实验结果与讨论：经过一段时间的培养，我们观察到小麦种子的根系开始生长。
根系的生长情况与根系活力密切相关。
在本实验中，我们采用了甲醇和硝酸钠的处理方式，这是因为甲醇和硝酸钠可以提供植物生长所需的营养物质，并刺激根系的生长。
实验结果显示，经过甲醇和硝酸钠处理的小麦种子的根系生长速度较快，根系活力较高。
根系活力的测定方法有很多种，除了本实验中采用的方法外，还有其他的测定方法。
例如，可以通过测定根系的呼吸速率来评估根系的活力。
根系的呼吸速率是指根系在单位时间内消耗的氧气量或释放的二氧化碳量。
根系的呼吸速率越高，说明根系的活力越强。
此外，根系的形态特征也可以反映根系的活力。
例如，根系的长度、分支数、根毛的密度等都可以用来评估根系的活力。
根系越发达、分支越多、根毛越密集，说明根系的活力越高。
根系活力的测定对于研究植物的生长发育机制具有重要意义。
通过了解根系活力的变化规律，可以揭示植物对环境变化的适应机制，为改良农作物品种、提高农作物产量提供理论依据。
此外，根系活力的测定还可以用于评估土壤质量和环境污染程度，为土壤修复和环境保护提供参考。
实验 植物根系活力的测定
(TTF)
生成的TTF比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，所以TTC被广泛地用作酶试验的氢受体，植物根所引起的TTC还原，可因加入琥珀酸、延胡索酸、苹果酸得到增强，而被丙二酸、碘乙酸所抑制。所以TTC还原量能表示脱氢酶活性，并作为根系活力的指标。
【仪器与用具】
分光光度计；分析天平（感量0.1mg）；恒温箱1台；研钵1套；100ml三角瓶；漏斗；移液管10ml 1支、2ml 1支、0.5ml 1支；20ml刻度试管；10ml容量瓶；小培养皿；试管架，药匙；石英砂适量。
实验植物根系活力的测定
植物根系是活跃的吸收器官和合成器官，根的生长情况和活力水平直接影响地上部的生长和营养状况及产量水平。本实验学习测定根系吸收面积和活力的方法。
一、根系总吸收面积和活跃吸收面积的测定
【原理】
根据植物矿质吸收的理论，植物对溶质的最初吸收具有吸附的特性，并假定这时在根系表面均匀地覆盖了一层被吸附物质的单分子层，因此可以根据根系对某种物质的吸附量来测定根的吸收面积。常用甲烯蓝作为被吸附物质，它的被吸附量可以根据供试液浓度的变化用比色法准确地测出。已知1mg甲烯蓝成单分子层时所占面积为1.1m2，据此即可求出根系的总吸收面积。当根系在甲烯蓝溶液中已达到吸附饱和而仍留在溶液中时，根系的活跃部分能把原来吸附的物质吸收到细胞中去，因而继续吸附甲烯蓝。从后一吸附量求出活跃吸收面积，可作为根系活力指标。
【试剂】
乙酸乙酯；
连二亚硫酸钠（Na2S2O4，为强还原剂，俗称保险粉）；
1%TTC溶液：准确称取TTC 1.0g，溶于少量蒸馏水中，定容至100ml；
0.4%TTC溶液：准确称取TTC 0.4g，溶于少量蒸馏水中，定容至100ml；
磷酸缓冲液（1/15mol/L，pH7.0）；
植物根系活力的测定
植物根系活力的测定实验5植物根系活力的测定（TTC法）植物根系是活跃的吸收器官和合成器官，根的生长情况和活力水平直接影响地上部的营养状况及产量水平。
本实验练习测定根系活力的方法，为植物营养研究提供依据。
一、原理氯化三苯基四氮唑（TTC）是标准氧化电位为80mV的氧化还原色素，溶于水中成为无色溶液，但还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲（TTF），如下式：生成的三苯甲（TTF）比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，所以TTC被广泛用作酶试验的氢受体，植物根系中脱氢酶所引起的TTC还原，可因加入琥珀酸、延胡索酸、苹果酸得到增强，而被丙二酸、碘乙酸所抑制。
所以TTC还原量能表示脱氢酶活性，并作为根系活力的指标。
二、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料水培或砂培小麦、玉米等植物根系。
（二）试剂1.乙酸乙酯（分析纯）。
2.次硫酸钠（Na2S2O4，分析纯），粉末。
3.1％TTC溶液：准确称取TTC1.0g，溶于少量水中，定容到100mL用时稀释至需要的浓度。
4.磷酸缓冲液（1/15mol/L，pH7.0）。
5.1mol/L硫酸：用量筒取比重1.84的浓硫酸55mL，边搅拌边加入盛有500mL蒸馏水的烧杯中，冷却后稀释至1000mL6.0.4mol/L琥珀酸：称取琥珀酸4.72g，溶于水中，定容至100mL即成。
（三）仪器设备小烧杯3个，研钵1个，移液管：0.5mL1支、10mL1支、5mL3支，刻度试管6支，分光光度计，分析天平（感量0.1mg），电子顶载天平（感量0.1g），温箱，试管架，药勺，石英砂适量，滤纸。
三、实验步骤1.定性测定（1）配制反应液把1％TTC溶液、0.4mol／L的琥珀酸和磷酸缓冲液按1:5:4比例混合。
（2）把根仔细洗净，把地上部分从茎基部切除。
将根放入三角瓶中，倒入反应液，以浸没根为度，置37℃左右暗处放1～3h，以观察着色情况，新根尖端几毫米以及细侧根都明显地变成红色，表明该处有脱氢酶存在。
实验-植物根系活力的测定
实验-植物根系活力的测定
植物根系活力是指植物根系在土壤中生长、吸收水分和养分的能力。
测定植物根系活力的方法有很多种，其中常用的方法是测定根长、根数和根重等指标。
下面介绍一种简单的测定植物根系活力的实验方法。
实验目的：
测定不同植物对不同营养液的根系生长情况，比较不同营养液对根系生长的影响。
实验器材：
1. 玻璃培养皿
2. 密闭袋
3. 印度蓝溶液
4. 双面胶带
5. 不同营养液：蔗糖水、盐水、橙汁、矿泉水等。
实验步骤：
1. 将玻璃培养皿控制在 3~7 cm，用双面胶带将玻璃培养皿固定于橙汁、矿泉水、蔗糖水、盐水等不同营养液中。
2. 取几株同龄、同质、同株的植物。
去掉表皮组织，并将植物的根部放入玻璃培养皿里。
3. 将培养皿置于密闭袋内，保证环境温度、光线和空气湿度的一致性。
4. 每天提取一些根系，用印度蓝溶液染色。
将所有染蓝的根系取出，用银砂纸将植物根系的颜色刮干净，然后用千分尺测量根长或者称重等。
实验注意事项：
1. 保持密闭袋的气密性，注意通风、换氧。
2. 保持营养液的稳定性，避免出现水质的变化。
实验结论：
从实验结果来看，不同营养液对植物根系的生长效果不尽相同。
因此，植物的根系发育和生长需要各种不同的营养元素。
营养液中各种无机盐和有机化合物含量的不同，可能会影响植物根系的生长效果。
根系活力的测定(ttc法)实验综述报告
根系活力的测定(ttc法)实验综述报
告
TTC法是一种用来衡量根系活力的有效实验方法，在许多现有的测量植物生长
与发育状况中已被广泛应用。
它是对植物源区域生长活力和发育状况的直接反映，主要通过检测植物根系中是否存在勃起层来量化测量根系的活力。
TTC法的实验步
骤如下：
（1）前期备料：从植物根系挖取一定数量的根系，将其浸入TTC溶液中，然后放
置在25℃恒温环境中诱导根系活力。
（2）TTC测试：以半芯径0.5厘米为主，采用2％——4％TTC溶液测定植物根系
组织的活力，其原理就是那些有活力的根系细胞被黑色染料染色，而死亡的细胞则没有。
（3）固定检测：根据TTC测试结果，将TTC活力分为正活力、弱活力、失活力等
几种，进而检测植物的生长发育状况。
TTC法的实施，可以获知植物根系的情况，也可以作为植物如何应对显著条件
的变化的有效测量依据，因此被广泛应用于植物的生长、发育状况的评价中。
然而，TTC法也有一定的局限性，比如，整个TTC实验过程耗时较长，容易产生假阴性结果，可能误报出尚未出现生长力衰弱的根系组织。
总之，TTC法是衡量植物根系活力的一种有效实验方法，它可以为决定环境要
素对植物生长发育状况的影响提供重要参考意见，是植物学家和拟研究环境因子与植物生长发育关系的科学家的重要研究工具。
但TTC法也具备一定的局限性，在实验步骤的实施中，需要注意控制各项参数，以准确获取植物根系活力的信息。
植物根系活力的测定方法
实验 5 植物根系活力的测定（ TTC 法）植物根系是活跃的吸收器官和合成器官，根的生长情况和活力水平直接影响地上部的营养状况及产量水平。
本实验练习测定根系活力的方法，为植物营养研究提供依据。
一、原理氯化三苯基四氮唑（ TTC ）是标准氧化电位为 80 mV 的氧化还原色素，溶于水中成为无色溶液，但还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲（ TTF ），生成的三苯甲（ TTF ）比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，所以 TTC 被广泛用作酶试验的氢受体，植物根系中脱氢酶所引起的 TTC 还原，可因加入琥珀酸、延胡索酸、苹果酸得到增强，而被丙二酸、碘乙酸所抑制。
所以 TTC 还原量能表示脱氢酶活性，并作为根系活力的指标。
二、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料水培或砂培小麦、玉米等植物根系。
（二）试剂1. 乙酸乙酯（分析纯）。
2. 次硫酸钠（ Na 2 S 2 O 4 ，分析纯），粉末。
3. 1 ％ TTC 溶液：准确称取 TTC g ，溶于少量水中，定容到 100 mL 。
用时稀释至需要的浓度。
4. 磷酸缓冲液（ 1/15 mol/L ，）。
5. 1 mol/L 硫酸：用量筒取比重的浓硫酸 55 mL ，边搅拌边加入盛有 500 mL 蒸馏水的烧杯中，冷却后稀释至 1000 mL 。
6. 0.4 mol/L 琥珀酸：称取琥珀酸 g ，溶于水中，定容至 100 mL 即成。
（三）仪器设备小烧杯 3 个，研钵 1 个，移液管： mL 1 支、 10 mL 1 支、 5 mL 3 支，刻度试管6 支，分光光度计，分析天平（感量 mg ），电子顶载天平（感量 g ），温箱，试管架，药勺，石英砂适量，滤纸。
三、实验步骤1. 定性测定（ 1 ）配制反应液把 1 ％ TTC 溶液、 mol ／ L 的琥珀酸和磷酸缓冲液按 1:5:4 比例混合。
（ 2 ）把根仔细洗净，把地上部分从茎基部切除。
将根放入三角瓶中，倒入反应液，以浸没根为度，置 37 ℃左右暗处放 1 ～ 3 h ，以观察着色情况，新根尖端几毫米以及细侧根都明显地变成红色，表明该处有脱氢酶存在。
植物根系活力的测定(α─萘胺法)及过氧化物酶活性的测定(比色法)_百替生物
植物根系活力的测定（α─萘胺法）及过氧化物酶活性的测定（比色法）薛静23050240宣扬23050230陈鸿飞23050218刘晏23050209【实验目的】1.掌握α─萘胺氧化法测定根系活力方法2.比色法测定过氧化物酶活性的原理和步骤。
【实验原理】植物的根系能氧化吸附在根表面的α─萘胺，生成红色的α—羟基—1—萘胺，沉淀于有氧化力的根表面，使这部分根染成红色，其反应如下：根对α—萘胺的氧化能力与其呼吸强度有密切关系。
日本人相见、松中等认为α—萘胺氧化的本质就是过氧化物酶的催化作用，该酶的活力愈强，对α—萘胺的氧化力也愈强，染色也愈深。
所以，可根据染色深浅定性地判断根的活力；也可测定溶液中未被氧化的α—萘胺量，以确定根系活力的大小。
α—萘胺在酸性环境中与对氨基苯磺酸和亚硝酸盐作用生成红色的偶氮染料，在中性环境下于540nm处有最大吸收峰，可供比色测定α—萘胺含量。
另一方面，过氧化物酶活性反映某一时间植物体内代谢的变化。
在过氧化氢的存在下，过氧化物酶氧化愈创木酚，生成茶褐色物质，该物质在470nm处有最大吸收，可用分光光度计测量470nm处吸光度变化来测定过氧化物酶活性。
【实验过程】1材料、仪器设备及试剂1.1材料：菹草。
取生长季节的新鲜菹草，洗净，用滤纸吸干表面水分，待用。
水培水稻等植物根系1.2仪器设备：分光光度计；电子分析天平；振荡器；刻度试管（或普通试管）；试管架；移液管（10ml、2ml、1ml）；移液管架；吸水纸；洗耳球；黑纸；100ml三角瓶；100ml量筒。
1.3试剂及配制：50μg/mlα－萘胺母液的配制：精确称取0.1000g分析纯α－萘胺溶于约50ml蒸馏水中（微微加热），冷却后定容至100ml，即为1000μg/mlα－萘胺溶液，保存于棕色瓶中，置低温黑暗处保存。
使用前吸取1000μg/mlα－萘胺溶液50ml加蒸馏水稀释至1000ml即为50μg/mlα－萘胺母液。
1％对氨基苯磺酸溶液配制：称取1g对氨基苯磺酸溶于100ml30％乙酸中。
根系活力的测定实验报告
根系活力的测定实验报告根系活力的测定实验报告引言：植物的根系是其生长发育的基础，根系的健康与否直接影响着植物的生长状况和产量。
因此，测定根系活力对于了解植物的生长状态和优化栽培管理具有重要意义。
本实验旨在通过测定根系活力的方法，探究植物根系的健康状况，并为植物栽培提供参考依据。
实验材料与方法：实验材料：小麦种子、培养皿、滤纸、蒸馏水、酒精、石蜡、显微镜等。
实验方法：1. 将小麦种子浸泡在蒸馏水中，放置于室温下孵化24小时，使种子发芽。
2. 准备培养皿，将滤纸铺在底部，加入适量的蒸馏水。
3. 将发芽的小麦种子均匀分布在滤纸上，盖上培养皿盖。
4. 将培养皿放置于光照适宜的环境中，保持适宜的温度和湿度。
5. 在培养过程中，观察小麦根系的生长情况，并记录观察结果。
6. 在观察结束后，将小麦根系取出，用酒精进行固定处理。
7. 将固定后的根系进行染色，常用的染色剂有苏丹红、伊红等。
8. 在染色后，使用显微镜观察并记录根系的形态特征，并进行测量。
实验结果与分析：通过实验观察发现，小麦种子在适宜的温度和湿度条件下，经过一段时间的孵化，根系开始生长并逐渐发展。
根系的生长速度与健康状况密切相关，健康的根系生长迅猛，根系长度较长，根毛丰富，根尖呈白色或浅黄色。
而受到环境不良条件或病害侵袭的根系生长缓慢，根系长度较短，根毛稀疏，根尖呈暗色或变形。
根系的形态特征也是评估根系活力的重要指标之一。
正常生长的根系呈分枝状，根毛发达，根尖锐利。
而受到逆境影响的根系则呈现出畸形生长的特点，如根系弯曲、根毛退化、根尖变形等。
通过实验测量根系的长度、根毛的密度等参数，可以进一步定量评估根系活力。
根系长度的测量可以通过显微镜下的目测或图像处理软件进行，根毛的密度可以通过计数单位面积内的根毛数目来确定。
根系长度和根毛密度的增加通常表明根系的活力较高，植物对环境的适应能力较强。
结论：通过本实验的测定方法，我们可以对植物根系的活力进行初步评估。
植物根系活力的测定（ttc法）
实验概要植物根系是活跃的吸收器官和合成器官，根的生长情况和活力水平直接影响地上部的生长和营养状况及产量水平。
本实验练习测定根系活力的方法，为植物营养研究提供依据。
实验原理氯化三苯基四氮唑（TTC）是标准氧化电位为80mV的氧化还原色素，溶于水中成为无色溶液，但还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲瓒，生成的三苯甲瓒比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，所以TTC被广泛地用作酶试验的氢受体，植物根系中脱氢酶所引起的TTC还原，可因加入琥珀酸，延胡索酸，苹果酸得到增强，而被丙二酸、碘乙酸所抑制。
所以TTC还原量能表示脱氢酶活性并作为根系活力的指标。
主要试剂1.乙酸乙酯（分析纯）。
2. 次硫酸钠（Na2S2O4），分析纯，粉末。
3. 1％TTC溶液准确称取TTC1.0g，溶于少量水中，定容到100ml。
用时稀释至各需要的浓度。
4. 磷酸缓冲液（1／15mol/L，pH7）。
5. 1mol/L硫酸用量筒取比重1.84的浓硫酸55ml，边搅拌边加入盛有500ml蒸馏水的烧杯中，冷却后稀释至1000ml。
6. 0.4mol/L琥珀酸称取琥珀酸4.72g，溶于水中，定容至100ml即成。
主要设备1. 分光光度计；2. 分析天平（感量0.1mg）；3. 电子顶载天平（感量0.1g）；4. 温箱；5. 研钵；6. 三角瓶50ml；7. 漏斗；8. 量筒100ml；9. 吸量管10ml；10. 刻度试管10ml；11. 试管架；12. 容量瓶10ml；13. 药勺；14. 石英砂适量；15. 烧杯10ml、1000ml。
实验材料水培小麦根系。
实验步骤1. 定性测定1）配制反应液把1％TTC 溶液、0.4 mol／L 的琥珀酸和磷酸缓冲液按1:5:4 比例混合。
2）把根仔细洗净，把地上部分从茎基部切除。
将根放入三角瓶中，倒入反应液，以浸没根为度，置37℃左右暗处放1～3h ，以观察着色情况，新根尖端几毫米以及细侧根都明显地变成红色，表明该处有脱氢酶存在。
实验植物根系活力的测定
实验植物根系活力的测定植物根系是活跃的吸收器官和合成器官，根的生长情况和活力水平直接影响地上部的生长和营养状况及产量水平。
本实验学习测定根系吸收面积和活力的方法。
一、根系总吸收面积和活跃吸收面积的测定【原理】根据植物矿质吸收的理论，植物对溶质的最初吸收具有吸附的特性，并假定这时在根系表面均匀地覆盖了一层被吸附物质的单分子层，因此可以根据根系对某种物质的吸附量来测定根的吸收面积。
常用甲烯蓝作为被吸附物质，它的被吸附量可以根据供试液浓度的变化用比色法准确地测出。
已知1mg甲烯蓝成单分子层时所占面积为 1.1m2，据此即可求出根系的总吸收面积。
当根系在甲烯蓝溶液中已达到吸附饱和而仍留在溶液中时，根系的活跃部分能把原来吸附的物质吸收到细胞中去，因而继续吸附甲烯蓝。
从后一吸附量求出活跃吸收面积，可作为根系活力指标。
【仪器与用具】分光光度计1台；100ml烧杯3只；50或100ml量筒1个（依根系大小而定）；吸量管1ml 1支，10ml 1支；试管（15×150mm）10支；容量瓶1000ml 1个，100ml 1个；吸水纸适量；试管架1个。
【试剂】0.0002mol/L甲烯蓝溶液：精确称取74.8mg甲烯蓝（C16H18N3SCl·3H2O），加水溶解，定容至1000ml。
此溶液每ml含甲烯蓝0.0748mg。
0.010mg/ml的甲烯蓝溶液：用刻度吸管吸取0.0002mol/L甲烯蓝13.37ml定容至100ml，摇匀即成。
【方法】1．植物材料的准备本实验最好采用水培或砂培植物，以获得完整而无损伤的根系。
玉米根系发达，是较好的材料。
如无水培、砂培试材，也可用盆栽植物，用水将盆土仔细冲净后使用。
田间栽培的材料因不可能无损地挖出全部根系，最好避免在正式试验中使用。
2．甲烯蓝溶液标准曲线的制作取试管7支编号，按表14-1次序加入各溶液，即成甲烯蓝系列标准液。
表14-1 各试剂加入顺序试管号 1 2 3 4 5 6 70.01mg/ml甲烯蓝溶液(ml)蒸馏水(ml)甲烯蓝浓度mg/ml 010190.001280.002460.004640.006820.008100.01以第1管（水）为参比在分光光度计下比色，取波长660nm，读出光密度，以甲烯蓝浓度为横坐标，光密度为纵坐标绘成标准曲线。
根系活力的测定[TTC法]
![根系活力的测定[TTC法]](https://img.taocdn.com/s3/m/ac8ec1ea5727a5e9846a619d.png)
制作人：刘新 单 位：生命科学学院 植物生理学教研室
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理解植物根系活力的内涵
一、实验目的 掌握根系活力测定的原理与方法
合成氨基酸和植物激素 （ABA、CTK、GA等）
H2O 无机盐
根的生长情况和活力水平直接影响地上部的生长和营养状况及产量 测定根系活力，为植物营养研究提供依据。
操作同上
取出根吸 干水分
与3～4ml乙酸乙酯和少 量石英砂在研钵内磨碎
查标准曲线，求 四氮唑还原量
空白试验作参比测 红色提取液移入试管且 485nm下吸光度 用乙酸乙酯定容到10ml
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五、实验结果
四氮唑还原强度
四氮唑还原量（mg）
（mg/g(根鲜重)/h） ＝ [根重（g）×时间(h)]
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二、实验原理
氯化三苯基四氮唑（TTC）是标准氧化电位为80mV的氧化 还原物质，溶于水中成为无色溶液，但还原后即生成红色而 不溶于水的三苯基甲腙 （TTF）。
生成的TTF比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化
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根系活力
TTC（无色，溶于水）Fra bibliotek脱氢酶
促进
琥珀酸 延胡索酸 苹果酸
TTF
（红色，不溶于水）
吸取0.25mL
加少许 乙酸乙 L
200
TTC加入10mL Na2S2O4 酯定容 容量瓶
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四、实验步骤—0.5g测根尖定样品根系活力与此同时
0.4％TTC和磷酸缓冲液的等量混合液 10ml
做一空白
根充分浸没于溶液中
实验，先 加硫酸，
37℃下暗保温1～3h
再加根样 品，其他
加入1mol/L硫酸2ml
根系活力测定实验报告
一、实验目的通过本次实验，了解根系活力的概念，掌握TTC法测定根系活力的原理和操作步骤，并分析不同因素对根系活力的影响，为植物生长和栽培提供理论依据。
二、实验原理根系活力是指根系吸收水分、养分和合成有机物的能力，是植物生长发育的重要生理指标。
TTC法（氯化三苯基四氮唑法）是一种常用的根系活力测定方法。
该方法利用根系中的脱氢酶将TTC还原为红色三苯甲腙，通过测定三苯甲腙的生成量来反映根系活力。
三、实验材料与方法1. 实验材料- 植物材料：小麦种子、玉米种子等- 试剂：TTC溶液、磷酸缓冲液、丙酮、硫酸等- 仪器：分光光度计、温箱、研钵、漏斗、移液管、容量瓶等2. 实验方法（1）将小麦种子或玉米种子浸泡在磷酸缓冲液中，置于温箱中培养。
（2）培养一定时间后，取出种子，用蒸馏水冲洗干净。
（3）将冲洗干净的种子放入研钵中，加入适量丙酮，研磨充分。
（4）将研磨后的种子溶液转移至容量瓶中，加入硫酸，定容。
（5）将定容后的溶液在分光光度计下测定吸光度。
（6）根据标准曲线计算三苯甲腙的生成量，进而得出根系活力。
四、实验结果与分析1. 标准曲线绘制以不同浓度的TTC溶液为标准品，测定其吸光度，绘制标准曲线。
2. 不同因素对根系活力的影响（1）不同植物品种的根系活力比较实验结果表明，不同植物品种的根系活力存在差异。
例如，小麦的根系活力高于玉米。
（2）不同培养条件对根系活力的影响实验结果表明，不同培养条件对根系活力有显著影响。
例如，在适宜的温度、pH 值和养分条件下，根系活力较高。
（3）不同施肥方式对根系活力的影响实验结果表明，不同施肥方式对根系活力有显著影响。
例如，有机肥施肥的根系活力高于化肥施肥。
五、实验结论1. TTC法是一种简单、快速、准确的根系活力测定方法。
2. 植物根系活力受品种、培养条件、施肥方式等因素的影响。
3. 了解根系活力对植物生长发育具有重要意义，可为植物栽培提供理论依据。
六、实验体会通过本次实验，我们掌握了TTC法测定根系活力的原理和操作步骤，了解了不同因素对根系活力的影响。
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• 四、实验步骤 • •1、定性观察 • （1）反应液的配制：将1％TTC溶液、0.4 mol/L琥珀酸和66 mmol/L磷酸缓冲液（pH7.0）按1：5：4混合。 • （2）将待测根系仔细洗净后小心洗干，浸入盛有翻译液的 三角烧瓶中，置于37℃暗处2-3h，观察着色情况，根尖端 几毫米及细侧根都明显变红。 • •2、定量测定 • （1）TTC还原量的测定：称取根样品1－2g，浸没于盛有 0.4％TTc和66 mmol/L磷酸缓冲液（pH7.0）的等两混合液10 mL的烧杯中，于37℃保温3 h，然后加入1mol/L硫酸2 mL终 止反应。取出根，小心擦干水分后于3-5mL乙酸乙酯和少量 石英砂仪器在研钵中充分研磨，以提取出甲臜，过滤后将 红色的提取液移入容量瓶中，最后补充乙酸乙酯至刻度， 用分光光度计于485 nm处比色，以空白试验（先加硫酸， 再加根样品）作为参比读出OD，查标准曲线，即求出TTC 的还原量。 • （2）计算：TTC还原强度＝TTC还原量（g）/各民族金瓶梅 嘎（g）×时间（h）。
• 五、作业 • • 比较不同生境条件下的植物根系活力。
• •一、实验目的 • • 了解测定根系活力的方法及原理，掌握 TTC法测定根系活力的方法 •二、实验原理 • •氯化三苯基四氮唑（TTC）是一种氧化还 原色素，水溶液无色，可被根系细胞中的 琥珀酸脱氢酶还原，生成红色不溶于水的 三苯基甲臜（TTF）。
• 三、实验器材与试剂 • 1、实验仪器 烧杯，分光光度计，容量瓶，恒温箱， 石英砂，研钵，量筒，三角烧瓶，刻度试管 • 2、实验试剂 乙酸乙脂，连二亚硫酸钠，1％TTC （准确称取TTC1.00 g，溶于少量水中，定容至100 ml）,1 mol/L硫酸（用量筒取98％浓硫酸55 ml，边 搅拌边加入到盛有500 ml蒸馏水的烧杯中，冷却后 稀释至1000 mL）,0.4 mol/L琥珀酸（称取琥珀酸 4.72g，溶于水中，定容至100ml），66 mmol/L磷酸 缓冲液（pH7.0。A液：称取Na2HPO4﹒2H2O 11.876g 溶于蒸馏水中，定容至1000 mL；B液：称取KH2PO4 9.078g溶于蒸馏水中，定容至1000 mL。用时取A液 60mL,B液40mL混合即可） • 3、实验材料： 植物根系
• （3）标准曲线的制作：配制浓度0、0.04％、 0.03％、0.02％、0.01％、0.005％的TTC溶液， 各取5mL放入刻度试管中，各取5 mL乙酸乙酯 和少量Na2S2O4（约2 mg，各管中量要一致）， 充分振荡后产生红色的甲臜，转移到乙酸乙酯 层，待忧色液层分离后，补充5 mL乙酸乙酯， 振荡后静置分层，取上层乙酸乙酯液，以空白 作为参比，在分光光度计上于485 nm处测定各 溶液的OD，然后以TTC浓度作为横坐标，OD作 为纵坐标绘制标准曲线。 • 注意事项 根系应 注意事项： 吸干水分但不能用力挤压伤及细胞，才能测定 准确。