手术部位感染标本采集及运送操作规程

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感染性标本收集流程

感染性标本收集流程英文回答：Infection Specimen Collection Procedure.Introduction.Collection of infection specimens is crucial for accurate diagnosis and appropriate treatment of infectious diseases. The correct collection and handling of specimens is essential to ensure optimal results and patient safety. This document outlines the general procedure for collecting infection specimens, including types of specimens, collection techniques, and specimen handling.Types of Infection Specimens.The type of specimen collected depends on the suspected infection and the specific diagnostic test being performed. Common types of infection specimens include:Blood: Used for bacterial, viral, and fungal cultures, serology tests, and molecular diagnostics.Urine: Used for urinary tract infections, sexually transmitted infections, and some systemic infections.Stool: Used for gastrointestinal infections, parasites, and ova and cysts.Sputum: Used for respiratory tract infections.Wound swabs: Used for skin and soft tissue infections.Cerebrospinal fluid (CSF): Used for meningitis, encephalitis, and other central nervous system infections.Collection Techniques.The collection technique varies depending on the typeof specimen. General principles for specimen collection include:Use sterile containers: Use sterile, leak-proof containers provided by the laboratory.Collect at the appropriate site: Collect specimens from the site where the infection is suspected.Obtain sufficient volume: Collect an adequate amount of specimen for the required tests.Avoid contamination: Prevent contamination of the specimen with other substances, such as saliva or skin flora.Specific collection techniques for different specimen types include:Blood: Collected from a vein using a sterile needle and syringe.Urine: Collected midstream in a sterile container.Stool: Collected in a sterile container without additives.Sputum: Collected by coughing deeply into a sterile container.Wound swabs: Collected by gently rotating a sterile swab over the wound surface.Cerebrospinal fluid: Collected from the lumbar space using a sterile needle and syringe.Specimen Handling.Once collected, specimens should be properly handled to preserve their integrity and prevent contamination. General principles for specimen handling include:Label specimens: Clearly label containers with the patient's name, date of collection, and specimen type.Transport promptly: Transport specimens to thelaboratory as soon as possible.Keep specimens refrigerated: Refrigerate specimens at 2-8°C if not processed immediately.Follow laboratory instructions: Adhere to the laboratory's specific instructions for specimen handling and transport.Conclusion.Adherence to proper infection specimen collection and handling procedures is essential for accurate diagnosis and appropriate treatment of infectious diseases. By following these guidelines, healthcare professionals can ensure the collection of high-quality specimens that will contribute to optimal patient outcomes.中文回答：感染性标本采集流程。

临床标本的采集和运输

XXXX
XXXXX
2
3
准备采集工具：根据采集方法准备好所需的工具，如注射器、试管、棉签、滤纸等
遵循无菌操作原则：在采集过程中，必须遵循无菌操作原则，以避免污染标本和感染采集人员
4床中最常用的标本采集方法之一，以下是采集过程中的注意事项选择合适的静脉：通常选择肘正中静脉或头静脉等较大且清晰的静脉进行采血
消毒：在采血前，需要对采血部位进行消毒，以避免感染
穿刺：在消毒后，使用采血针进行穿刺，穿刺成功后将针头固定在静脉上
收集血液：将血液收集到试管中，根据需要加入抗凝剂或防腐剂等
拔针：在采血完成后，迅速拔出针头，并压迫采血部位 5-10分钟，以避免出血和感染
2. 尿液采集
尿液采集通常分为两种方式：留置导尿和自然排尿。以下是尿液采集的注意事项
标识：在容器上标识患者信息、标本类型、采集时间和检测要求等
保护标本：在运输过程中，需要保护标本免受震动、污染和光照等影响
及时送检：在规定时间内将标本送至实验室进行检测，以保证检测结果的准确性
BRILLIANT JOURNEY ABOUT NATURE
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目录
CONTENTS
1 临床标本采集前的准备
2
临床标本的采集
3
临床标本的运输
2
1
在进行临床标本采集之前，需要做好以下准备工
作
1
了解患者的基本信息：包括姓名、性别、年龄、病史、用药情况等，以便确定采集的标本类型和数量
确定采集方法：根据标本类型和采集部位的不同，需要采用不同的采集方法，包括静脉采血、尿液采集、呼吸道分泌物采集等

手术标本的管理及注意事项

手术标本的管理及注意事项手术标本的管理是临床工作中非常重要的一环，正确和规范地进行手术标本的管理可以保证医学实验室的工作质量和临床诊断准确性。

下面，我将从手术标本的采集、标识、保存、运送和处理等方面详细介绍手术标本的管理及注意事项。

首先，手术标本的采集是管理的起点。

医护人员在采集手术标本时应具备专业知识和技巧，以避免污染和损伤标本。

常见的手术标本包括组织标本、液体标本和细胞标本。

在采集组织标本时，要选择健康组织、损伤最小的部位进行切除，并尽量保持标本的完整性和新鲜性。

对于液体标本，需要用无菌容器采集，并避免受到空气污染。

细胞标本的采集需要使用适当的刷子或钳子，避免受到刮痕和挤压，保持细胞的完整性。

手术标本的保存也是管理的重要环节。

采集时，应尽快将标本送往医学实验室进行处理，以保证标本的新鲜度。

未送实验室前，应妥善保存标本，防止标本腐败和干燥。

固定组织标本时，需要使用合适的液体固定剂，如福尔马林或乙醛。

对于液体标本和细胞标本，应放置在适当的温度下保存，避免温度过高或过低对其质量造成影响。

保存时，要注意防止震动和振荡，避免标本被损坏。

运送手术标本时，应采取适当的措施，确保标本的安全性。

标本应放置在密封的容器中，避免污染和泄漏。

运输过程中，要避免长时间暴露在高温或低温环境中，以免影响标本的质量。

对于远距离运输或需要保存较长时间的标本，可以使用绝缘材料或干冰进行冷冻保温，保持标本的新鲜度。

同时，需要确保标本运送的过程中不受震动和振荡的影响，防止标本的破损和变形。

最后，对于处理手术标本，应根据标本的特性和所需检测的项目进行适当的处理。

组织标本需要进行切片、染色和显微镜检查等，以观察组织结构和病理变化。

液体标本和细胞标本需要进行离心、染色和显微镜检查等方法，以观察其中的细胞和微生物。

在处理过程中，要注意操作规范，避免污染和误诊，并做好相关记录和报告。

综上所述，手术标本的管理及注意事项主要包括采集、标识、保存、运送和处理等环节。

手术部位感染监测标准操作规程(最全)

手术部位感染监测标准操作规程
一、入选标准
住院时间超过24 h的患者接受手术并有在手术室缝合的切口。

二、排除标准
1．门诊手术。

2．内窥镜手术及无手术切口的手术。

三、感染控制小组的职责
1．每周至少2次到病房随访手术患者情况。

2．查看患者病史及手术记录登记相关危险因素(详见附)。

3．查看护理记录和医生记录，根据体温，切口外观改变、发红、有分泌物，切口敷料变化，应用抗菌药物，提前拆线引流，流出的切口分泌物等确定是否存在切口感染。

必要时到患者床旁查看。

4．切口出现感染迹象时，应采集切口标本进行微生物涂片和培养。

5．患者出院后，无植入物术后30日左右(有植人物术后1年左右)与患者电话联系以确定出院后是否发生感染。

6．每3个月计算特殊手术部位感染率并根据手术编码通知个别医生。

7．分析手术部位感染的特殊原因及共同原因以便进行改进。

8．监测预防性使用抗菌药物的种类、时间和疗程。

9．监测手术相关感染：肺炎、泌尿道感染、导管相关性感染等。

四、临床监控护士的职责
1．每日记录切口情况，特别是当切口发生变化时，详细描述切口分泌物的性状、颜色和量。

2．在发生感染或疑似感染时，应与主管医生沟通采集切口标本进行微生物学涂片和培养。

3．有感染或疑似感染时通知医院感染管理部门。

4．患者出院时，给予出院指导，告知患者一旦切口出现异常，应及时与主管医生联系。

手术标本送检流程

手术标本送检流程手术标本送检是临床医学中非常重要的环节，它直接关系到患者的诊断和治疗。

正确的送检流程可以确保标本的质量和准确性，为患者的诊断提供可靠的依据。

下面将详细介绍手术标本送检的流程。

首先，手术标本的采集非常关键。

在手术过程中，医生需要根据患者的病情和手术部位来采集标本。

在采集标本之前，医生需要对手术部位进行彻底的清洁，以避免细菌的污染。

同时，医生还需要使用无菌器械进行操作，确保标本的无菌状态。

接下来，采集好的标本需要进行正确的标识。

医生需要在标本上标明患者的姓名、年龄、性别等基本信息，并注明标本的采集部位和日期。

这样可以避免标本混淆，确保送检的准确性。

随后，标本需要进行适当的处理。

不同类型的标本需要采取不同的处理方法，比如组织标本需要进行组织固定和包埋，液体标本需要进行离心和抽取上清液。

在处理标本的过程中，医生需要严格遵守操作规程，确保标本的完整性和稳定性。

完成标本处理后，医生需要填写标本送检单。

送检单上需要详细记录标本的信息，包括采集部位、处理方法、送检项目等。

医生需要认真填写送检单上的每一项内容，确保送检单的准确性和完整性。

最后，医生需要将标本送至临床病理科进行检测。

在送检的过程中，医生需要及时将标本送至病理科，并告知病理医生标本的相关信息。

病理医生将根据标本的情况进行相应的检测和分析，并向临床医生提供检测报告，为患者的诊断和治疗提供参考依据。

综上所述，手术标本送检流程包括标本采集、标本标识、标本处理、填写送检单和送检等环节。

每一个环节都至关重要，任何环节的差错都可能影响标本的质量和检测结果。

因此，医生在进行手术标本送检时需要严格遵守操作规程，确保每一个环节的准确性和规范性，为患者的诊断和治疗提供可靠的依据。

医院感染标准操作规程1

医院感染暴发处置标准操作规程制定科室：制定日期：持有部门：执行日期：医院感染管理部门接到发生医院感染聚集性事件的报告时，应积极进行流行病学调查,分析可能的传播环节，并采取预防控制措施。

基本步骤如下：1。

初步定义和确定病例:确定定义感染病例,便于后期行流行病学调查。

首先应明确感染部门、人群和病原体，所有的病例均要确诊,与最初制定的感染病例相核对。

2。

制定控制措施：在流行病学调查的同期制定和组织落实有效地控制措施，并通知相关部门予以落实.包括为患者做适当治疗，进行正确的消毒处理,必要时隔离患者甚至接受新患者或关闭手术室；并随时调查监测新发病例。

3。

标本收集：对感染患者、接触者、可疑感染源、环境、物品、医务人员及陪护人员等进行病原学检查，如环境中检测到病原体，必要时行脉冲凝胶电泳以检测其同源性。

4. 流行病学调查：对感染患者及周围人群进行详细流行病学调查,包括患者的基础情况、症状、体征、医院感染相关危险因素.5。

绘制流行曲线:分析调查资料,对病例的科室分布、人群分布和时间分布进行描述；绘制出以时间为横坐标（时间界限视疾病潜伏期而定）、发病人数为纵坐标的流程图;绘出医院感染暴发病例在病区内的分布图。

6。

完成初步的调查：找到合适的流行病学方法，常规以病例对照研究为宜。

分析流行或暴发的原因，推测可能的感染源、感染途径或感染因素，选择合适的对照组并同样调查其相关因素,进行统计分析，查找可能的危险因素。

7。

控制措施的执行和效果评估:采取措施后，应监测感染发生情况，观察有无感染新发病例出现。

如果还有新发病例出现，应该检查采取的措施是否得到及时严格执行，或者重新评估调查结果是否正确.8. 书写调查报告，总结经验,制定防范措施，报告内容如下：（1) 流行或暴发感染病例的概括及现场工作情况描述；(2）主要假设；（3）临床、流行病学及实验室资料分析的结论;(4）流行或暴发的起源与范围;（5）感染控制和预防措施及其效果；（6）经验教训.医院感染暴发报告标准操作规程制定科室：制定日期：持有部门：执行日期：1.医院应将感染监测信息报告质量纳入医疗质量管理考核体系,确保医院感染监测信息报告及时、有效。

临床微生物标本采集和运送基本原则

临床微生物标本采集和运送基本原则一、临床微生物标本采集基本原则1.标本来源与采集部位临床微生物标本主要来源于患者体内的各类体液、组织和生物材料。

采集部位包括呼吸道、消化道、泌尿生殖道、皮肤、创伤、手术部位等。

采集时应选择感染灶、病变部位或易感部位，以确保标本的代表性和可靠性。

2.采集工具与消毒采集微生物标本时，应使用无菌、一次性采集器具。

采集器具在使用前应进行消毒处理，以确保不会引入外来微生物污染。

消毒方法可选用高温、高压、化学消毒剂等。

3.采集操作步骤（1）准备工作：评估患者病情，向患者及家属解释采集目的和注意事项，取得患者知情同意。

（2）佩戴个人防护装备：口罩、手套、护目镜或面罩。

（3）消毒：使用消毒剂对采集部位进行皮肤消毒。

（4）采集：根据不同标本类型，进行相应操作，如穿刺、刮片、抽取等。

（5）封装：将采集完成的标本放入无菌容器中，密封，注明患者信息、采集部位、日期等。

二、临床微生物标本运送基本原则1.标本容器与标记运送微生物标本时，应选用防漏、耐压、易保存的容器。

容器表面应清晰标记患者信息、采集部位、标本类型等，以便于实验室接收和处理。

2.运送条件与时间要求微生物标本应在采集后尽快送达实验室，一般要求在2-4小时内完成。

运送过程中，应保持标本容器密封，避免剧烈晃动，确保标本质量。

3.运送过程中的注意事项（1）夏季高温时，可采取冰袋降温措施，防止标本变质。

（2）注意标本容器不离手，避免摔碎或泄露。

（3）如需长途运输，应采取适当包装，确保标本在运输过程中不受损。

三、标本质量控制与标准化1.微生物实验室的质量管理体系实验室应建立完善的质量管理体系，包括人员培训、设备维护、检测方法、室内质量控制等，以确保检验结果的准确性和可靠性。

2.标本接收与处理实验室接收标本时，应核对标本信息，检查标本容器、运送条件等。

对标本进行登记、分类、编号，并按照标准化流程进行处理。

3.室内质量控制与外部质量评估实验室应定期进行室内质量控制，包括质控品的检测、方法比对、仪器校准等。

标本采集、运送标准操作规程

4 7
血培养淋球菌培养
立即 30分钟
1小时 30分钟
阳性结果3天以上，阴性结果7天 2天
8
真菌培养
1小时
2小时
3天后
细菌室项目检验周期表
9 解脲、人型支原体培养及药敏、衣原体培养 1小时 2小时 2天后
11
一般涂片革兰氏染色
1小时
2小时
5小时
当天下午
12
涂片找抗酸杆菌
1小时
2小时
5小时
当天下午
Байду номын сангаас
查询申请医师，补足标本信息。
仅有申请单而无标本或无菌容器内无标本
与原送检部门联系，退回申请单，要求重送标本
标本外漏及明显受污染（如开塞）标本收集不符合采集要求样本混入消毒液或防腐剂
与原送检部门联系，退回申请单，建议重送标本。退回申请单，及时通知临床，告知正确收集方法，要求重送标本退回申请单，及时通知临床，建议重送标本。
13
新型隐球菌墨汁染色
1小时
1小时
5小时
当天下午
• 注： 1. 细菌室正常上班时间为周一至周六
全天、周日上午；其他时间（包括中午、夜班、周日下午、）常规培养请送急诊化验室。 • 2．各类血清学检测周一至周五做；支原体、衣原体检查周一至周六上午做，其余时间标本一律不接收。 • 3．空气培养、物表监测周六、周日不做，于周一至周五打电话给细菌室告之数量。
【标准操作程序】
• 3. 粪便样本
养：
• 5.1采集指征： • 当腹泻患者出现以下任何一种情况时建议采集粪便标本，进行细菌培
粪便涂片镜检白细胞＞5/HP 体温＞38.5℃ 重症腹泻血便或便中有脓液未经抗菌药物治疗的持续性腹泻病人

医院手术部位感染标本采集及运送管理制度

医院手术部位感染标本采集及运送管理制度一、一般原则(一)在抗菌药物使用前，且有临床感染症状或伤口恶化或长期不愈合时采集标本。

(二)闭合伤口或穿刺采集标本，皮肤消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5cm以上，消毒不少于2遍，待消毒液挥发干燥后(常需30s以上)穿刺采集。

(三)开放伤口用无菌生理盐水充分冲洗伤口部位，不可以用消毒剂。

(四)采集新鲜的感染组织，避免采集浅表的组织碎屑。

(五)若可以采集穿刺物或活检标本，应避免拭子标本。

(六)较大标本用含有少量生理盐水的无菌塑料容器。

二、采集方法(一)封闭性脓肿1.注射器穿刺抽取脓液。

2.若无法抽到脓液，应先皮下注射少量无菌生理盐水，再穿剌抽吸脓液:若脓液过多，应先切开引流，在基底部或脓肿壁采集标本。

脓液的量以大于1ml为宜。

3.排除注射器内部及针头的气体，用无菌橡皮塞封闭针头送检:或直接打入血培养瓶中。

疑为厌氧菌，应迅速将脓液打入厌氧血培养瓶中。

(二)组织和活检标本:1.尽量采集足够大的组织，避免在坏死区域采集。

2.将小块的组织放在运输培养基内;较大的放在无菌容器中，并加人少量无菌生理盐水。

(三)开放伤口1.无菌生理盐水彻底冲洗浅表部位，去除表面的渗出物和碎屑。

2.用拭子深入伤口的基底部用于培养。

三、标本的标识:填写患者信息、标本类型(深部组织、表浅组织、脓肿和穿刺物等)、标本的来源(腹腔、腿和上臂等)，记录标本采集的日期和时间及是否在使用抗菌药物前采集，选择检查项目(需氧培养或厌氧培养)。

四、标本的送检:为了更好地分离病原菌，标本应在采集后的30min 内送到实验室。

送检时应保持标本的湿润。

在送检前或运送过程中，禁止将标本放于冰箱。

若不能及时送检，运输培养基中标本应室温保存，最长不可超过24h。

临床微生物标本的采集,储存和转运

临床微生物标本的采集，储存和转运微生物检验的基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查2.在抗菌药物使用前采集标本3.采样时严格执行无菌操作4.采样后立即送检5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂6.送检标本应注明来源和检验目的标本采集1.尽早采集2.无菌操作3.合适部位4.适量标本5.适当方法6.安全采集1-尽早采集标本“采集重在时效性”1.1最好是病程早期、急性期1.2尽量在抗生素使用之前采集1.3对已用抗生素又不能停药者，可在下次用药前采集2-合适部位“背景干扰”2.1无菌标本:注意局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作与外界相通的腔道:避开腔道口区标本，以免皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊。

2.2正常菌群寄生部位：采集时应特别小心；应明确检查的目的菌在进行分离培养时，采用特殊选择性培养基2.3血标本采集:应避免输液的影响。

3-无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近皮肤或粘膜常居菌群污染和防止外源性细菌污染标本。

3.1.在采集血液、脑脊液、胸腔积液、关节液等无菌标本时，应注意对局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作；3.2.对于采集与外界相通的腔道标本时，如窦道标本，应从窦道底部取活组织检查，而非从窦道口取标本，以免受皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊；3.3.采集的标本均应盛于无菌容器内送检。

盛装标本的容器须先经高压灭菌、煮沸、干热等物理方法灭菌，或使用一次性无菌容器，不能用消毒剂或酸类处理。

标本中也不得添加防腐剂，一面降低病原菌的分离率。

4-适量标本4.1标本采集应足量。

标本量过少，可能会导致假阴性结果。

4.1.1血液标本:通常成人采血量每瓶8-10ml,儿童每瓶1-5ml;脑脊液、骨髓、4.1.2脓肿、穿刺液、引流液、痰液等标本：三1ml尿液标本：＞3ml4.1.3粪标本：1-3g 或 1-3ml4.2结核标本采集量要求特殊：4.2.1痰、肺泡灌洗液或支气管冲洗液：>5ml;4.2.2清晨中段尿：5-10ml;4.2.3粪标本：>1g;4.2.4穿刺液(胸水、腹水、关节液等)：5- 10ml。

细菌标本的采集和运送

临床细菌检验标本采集指南
1
．所有标本的采集、运送和处理应在无菌操作，防止污染原则下认真进行。
2
．已采集原始标本都应置于、密封的容器中运送，含有明显区分各部门文字标
志。
3
．带针头的注射器运送标本到实验室，用无菌试管或防护装置套住注射针，再
置于防漏塑料袋中运送。
4
．避免来自寄生菌的污染，应当保证每份标本代表感染过程。健康宿主在感染
时，
可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上送检。
幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方，
以诱发咳痰。
粪便标本的采集
当腹泻患者出现以下任何一种情况时建议采集粪便标本，进行细菌培养：
(1)
粪
便涂片镜检白细胞
>5
／
HP
；
(2)
重症腹泻；
(3)
体温大于
38.5
℃；
(4)
血便；
(5)
便中
有脓液；
(6)
未经抗菌药物治疗的持续性腹泻患者；
30s
或
10
％碘伏
60s
，从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域
直径达
3cm
以上。
3)70
％酒精脱碘。对碘过敏的患者，用
70
％酒精消毒
60s
，待酒精挥发干燥后采
血。
9
．培养瓶消毒程序
1)70
％酒精擦拭血培养瓶橡皮塞，作用
60s
。
2)
用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞子表面残余酒精，然后注入血液。如果是自
配带塞子的三角瓶，此步骤可免去。
2
～
3
份血标本，
24
～
36 h
后估计体温升高之前

病原微生物标本的采集运送标准操作程序

SOP_15-5 病原微生物标本的采集运送标准操作程序一、病原微生物标本采集和运送基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查。

2.采样时严格执行无菌操作，将污染情形降至最低。

3.在感染的急性期、使用抗生素前或伤口局部治疗前收集样本。

4.收集真正感染的病灶处的样本，且避免邻近区域常居菌群的污染。

5.采用专用无菌容器收集标本。

容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。

标本中不可添加防腐剂。

6.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的样本，尽量不要以棉花拭子收集样本。

7.采样后立即送检，最好在2h内。

为保持微生物活性，棉拭子等标本宜放入恰当的运送培养基送检。

如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但存放一般不能超过24h。

8.混有正常菌群的标本，不可置肉汤培养。

9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。

（要标明病区、病人姓名、住院号、标本来源、采集部位、采集时间等）二、血培养标本采集和运送1.采集指征：临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血流感染的患者,需做血液细菌培养以明确病原。

及时、准确地从患者血液中分离出病原菌,才能正确实施有效地抗菌治疗,从而有助于治愈率的提高和医疗费用的降低。

2.采集方法：1.采血时机:在患者发热期间越早越好,最好在抗菌治疗前,以正在发冷发热时或发冷发热前半小时为宜。

2.采血次数及间隔:在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌性肺炎,需马上做抗菌治疗;或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者,应立即从两臂分别取2份标本。

对感染性心内膜炎患者,在24h内取血3次,每次间隔不少于30min;必要时次日再做血培养2次。

对发热原因不明者两次抽血间隔60min;必要时于24～48h后再抽血2次。

因为1次血培养不足以说明问题,且会遗漏阳性结果。

国外有人统计1次血培养可检出菌血症的80%,2次检出90%,3次检出99%。

国内统计17家医院1次血培养阳性率10.8%,18家医院2次以上血培养阳性率14.8%。

医院感染标准操作规程sop

重点部位医院感染预防与控制1、手术部位医院感染预防与控制标准操作规程一、手术前1、择期手术患者应尽可能待手术部位以外感染治愈后再行手术.2、充分控制糖尿病手术患者的血糖水平，尤其避免术前高血糖.3、尽可能缩短术前住院时间。

4、若无禁忌症，术前应使用抗菌皂或皂液洗澡.5、避免不必要的备皮，确需备皮应术前即刻进行，尽量使用不损伤皮肤的方法如剪毛或脱毛。

6、需要做肠道准备的患者，术前一天分次口服非吸收性抗菌药物即可。

7、有明显皮肤感染的工作人员，未治愈前不宜参加手术。

二、手术中1、有预防用药指征者,应切皮前30min或麻醉诱导期静脉给药.手术时间超过3小时，或超过所用药物半衰期的2倍以上,或失血量大（＞1500ml），术中应追加一剂。

2、严格遵循《医务人员外科手消毒标准操作规程》.3、手套穿孔率较高的手术,如部分骨科手术,应戴双层手套.4、做好术前皮肤消毒。

5、术中应主动加温，保持患者正常体温.6、手术野冲洗应使用温（37℃）的无菌生理盐水。

7、需引流的切口，首选闭式引流，应远离切口部位戳孔引流，位置适当确保充分引流。

三、手术后1、接触切口以及切口敷料前后均必须进行手卫生.2、换药操作应严格遵守无菌操作原则.3、除非必要，尽早拔除引流管.2．医院内肺炎预防与控制标准操作规程医院内肺炎(HAP)是我国最常见的医院感染类型，呼吸机相关肺炎（V AP）是其中的重要类型，预后较差。

1、对存在HAP高危因素的患者，建议使用含0。

2%的氯己定（洗必泰)漱口或口腔冲洗，，每2-6h一次。

2、如无禁忌症,应将床头抬高约30°.3、鼓励手术后患者（尤其是胸部和上腹部手术患者）早期下床活动。

4、指导患者正确咳嗽，必要时予以翻身、拍背，以利于痰液引流。

5、提倡积极使用胰岛素控制血糖在80—110mg/dl.6、吸痰时应严格遵循无菌操作原则,吸痰前、后，医务人员应做手卫生。

7、应对医务人员定期进行有关预防措施的教育培训。

病理标本采集、运送、接收、取材、保存制度

病理标本收集、运送、接收、取材、保留制度第全军医大学第二隶属医院病理标本收集、运送、接收、取材、保留制度第一章总则第一条为进一步规范病理标本运送流程，提升病理诊疗质量，保证医疗质量和医疗安全，依据等级医院评审及有关规范要求，联合医院实质，制定本制度。

第二条病理标本包含手术前活检、手术中取样冰冻组织、手术后切除组织以及穿刺、零落细胞学标本。

第三条本制度合用于全院各科室医务人员。

第二章病理标本收集第四条采纳标本时，勿用有齿镊或钳夹取，勿挤压，免得发生变形。

手术标本送检前勿自行剖取，应保持原形所有送检。

一定剖取时，最好邀请病理医师在场；或在病理检查申请单中详尽描绘剖取前后状况。

临床科室敌手术标本有特别要求时（如照相等），应提早通知病理科，免得病理科取材时损坏其完好性。

第五条标本应置于敞口容器内，固定液许多于标本体积的 7－10 倍，标本从离体到固定的时间不宜超出半小时。

第六条冰冻切片的手术标本应保持新鲜，不得加用固定液或用含水溶液冲洗，免得影响制片和诊疗。

第七条痰液细胞学检查的标本一定新鲜，从呼吸道深部咯出。

咯痰前先漱口，痰中不该含食品碎渣和唾液，一般连续送检三天。

第八条胸、腹水等体液细胞学检查应保持标本新鲜、实时送检。

第九条宫颈刮/涂片及穿刺液应实时做成涂片送检。

第三章送检病理申请第十条病理申请单上各项内容均应逐项填写，笔迹清楚可辨，并由申请医师署名确认。

痰液细胞学检查、体液细胞学检查、涂片检查的申请单填写参照病理检查申请单的要求，并在“标本根源”一项中注明标本的类型：“痰”、“胸水”、“涂片”等。

第十一条凡需行术中冰冻病理检查者，临床医师应在手术前一天通知病理科，并与患者（或家眷）签署《手术中冰冻切片迅速病理检查知情赞同书》。

第十二条冰冻标本申请单除填写病人一般状况外，还应填写影像学、同位素及腔镜检查等有关结果，并注明手术部位，要点部位应做标志或加以说明，同时注明手术科室医师所在的手术间及手术医师、巡回护士电话，以便病理科与手术医师获得联系。

检验标本运送流程操作规程

检验标本运送流程操作规程
一、个人防护
检验标本运送人员按要求穿工作服、必要时戴好帽子、口罩、手套等。

二、标本运送箱的清洁要求
1、保持标本运送箱清洁干净，内外表面无血迹、灰尘等污物。

2、每日对标本运送箱进行清洁消毒，消毒使用500mg∕1含氯消毒液擦拭。

三、送检标本要求
1、密闭运送，禁止直接裸手送检任何标本。

2、血标本等试管类标本应先放置于试管架上再密闭运送；大小便标本可直接放于标本运送箱密闭运送。

3、注意手卫生：运送标本前后，按照手卫生要求，严格执行手卫生，禁止戴手套代替手卫生，禁止戴手套触摸公共场所物体表面，如电梯、门把手、走廊扶手等。

4、运送过程要求及时运送标本，勿逗留、闲聊等，保证标本运送过程中安全，不影响检验结果及不污染公共环境区域。

14病理标本的采集、运送、接受、取材、保存制度

病理标本的采集、运送、接受、取材、保存制度一、病理标本的采集1、组织标本的收集：在活检或手术过程中，对病变部分应尽量保存完好，完整切除，避免挤压变形，活检组织应取肿瘤的部分，而不要取肿瘤周围、表面或坏死部分。

2、组织标本的固定：手术标本切除后应马上用10%的中性福尔马林固定，以免细胞自溶影响诊断，大标本应间隔3CM用平行切口切开，以利固定液渗透。

3、细胞学标本的收集：脱落细胞学检查标本，包括痰、胸腹水、脑脊液等取材后马上送病理科；咽、喉、宫颈、阴道拭子涂片等，及时涂片固定；穿刺细胞学标本，穿刺后置于载玻片，用另一张载玻片轻柔地推片，将穿刺物均匀地涂在载玻片上（不能太厚），马上固定于95%的乙醇（或乙醚酒精）。

4、标本容器上写上或贴上有病人姓名的标签，涂片应有编号及病人姓名。

二、病理标本的运送1、临床各科室及门诊应安排人员负责标本的清点、查对、登记、运送（不允许让病人或其家属送标本），并与病理科值班人员交接核对，并在专设的标本登记本上签收。

2、手术室标本（含门诊小手术室）：由手术室工作人员根据医师开出的病理会诊单负责清点、查对登记、运送；病理科值班人员签收。

3、病理科验收各种标本，对标本不符合要求及申请单填写不规范、不整洁，单与标本不符合者，应及时退还，待纠正后重新核对、签收。

4、标本的送检及交接时间(1)细胞学标本：痰上午8:00～9:00刮片及穿刺涂片：上午9:00～11:30，下午2:30～5:00胸腹水、尿液等随到随收(2)组织活检标本：每天16：00点前。

(3)冰冻切片诊断，冰冻切片提前一天填写冰检查申请单和知青同意书送至病理科，周一至五上午8:00-下午5:00随送随检，其余时间应预先通知；应专人运送标本，并做好登记交接。

5、病理报告的发出和回送门诊的病理报告及细胞学报告由病理科专人至门诊导诊台并签收；住院病人的病理报告及细胞学报告，每天下午（5:00前）送回各送检科室，由当班医师或护士在专设的报告单登记本上签收。

医院感染临床微生物检查标本采集与送检规范

• 标本接种后轻轻上下颠倒混匀防止血液凝固 • 切勿冷藏
•
血培养标本采集与运送
•
血培养的指征是什么? ? ? ?
血培养的指征是什么? 答案
• 1. 当怀疑血流感染或脓毒症时，应常规行血培养 • 2. 怀疑患者有血流感染的症状有： • – – 不明原因的发烧( ( ＞ 36 ℃) ) 或体温过低( ( ＜ 36 ℃) ) • – – （白细胞增多（＞ 10,000/ul ），粒细胞减少（＜ 1,000ul ） • – – 休克，寒颤，僵直 • – – 严重的局部感染( ( 脑膜炎，心内膜炎，肺炎，肾盂肾炎，腹部术后
针对如此严重的分析前误差微生物室能做什么？
• • 提供准确的“标本采集输送的标准操作程序” • • 持续的临床教育和交流
三、常见标本的采集与运送规范
做好病原学检查要特别重视标本质量
基本原则: • 及时采集微生物标本作病原学检查 • 在抗菌药物使用前采集标本 • 采样时严格执行无菌操作 • 采样后立即送检
应该采集多少血液? ? ? ?
• 采血量是影响灵敏度最关键因素 • 成人一份标本2 个培养瓶（需氧＋厌氧），每瓶8 －10ml ，共
20ml ；要求至少采两份标本，即 40ml 。 • 儿童一般只需采集需氧瓶，在保证采集血量＜1 1 ％总血量下，
一般为1 － 3ml • 新生儿一般0.5ml • 采血量不足时应优先保证需氧瓶，因临床 90 ％以上的感染为需
• 近年来由各种不同细菌引起的感染性疾病越来越多，导致抗生素的过度使用，其结果是耐药菌株的增加。
• 临床微生物室应如何帮助临床医生合理治疗感染性疾病成为我们共同目标。
检验误差发生率哪个阶段最高？
微生物结果的影响因素

临床标本采集运送规程

临床标本采集运送规程临床微生物标本采集与送检是目前临床实验室诊断质量保证中较为薄弱的环节，严重影响临床微生物学实验室对感染样本中致病菌的分离培养的阳性率和医院感染病原体监控，也影响临床诊断，合理选用抗菌药物，降低耐药菌的产生和提高感染的治愈率，而且对预测或及时发现医院感染的暴发流行、杜绝感染蔓延、研究医院感染的发病机制和环节、制定有效的医院感染控制措施等，均具有十分重要的意义。

严格实施正确的微生物标本送检和检验方法，是做好医院感染病原体监测的关键。

鉴此，希望临床各科能按照本操作规范采样送检。

一、医院感染标本的采集和运送基本原则1．发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查，我院总的医院微生物标本送检率应不低于70％。

2．尽量在抗菌药物使用前采集标本。

3．标本采集时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。

4．标本采集后立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。

5．以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子，应立即送检。

6．盛标本容器须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。

7．送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。

二、常见医院感染标本送检方法1．血液与骨髓①通常采血部位为肘静脉。

疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。

切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处采取血标本。

②采血部位的局部皮肤应严格消毒。

将采集的血液注入血培养基前，应更换针头或过火消毒针头。

血培养瓶应在避光室温中保存，不必置冰箱保存。

③每次采血量成人5—10ml，婴幼儿l一5ml，培养基与血液之比以lO：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。

④怀疑菌血症应尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机。

对已用抗菌药物而又不能停药者，可在下次用药前采血。

⑤每例病人至少采血两次，间隔。

.5—lh,以利于提高阳性率和区分感染菌与皮肤污染菌。