香蕉的组织培养与快速繁殖

香蕉的组织培养与快速繁殖

摘要

香蕉，芭蕉科芭蕉属植物，又指其果实。热带地区广泛栽培食用。香蕉味香、富于营养，终年可收获，在温带地区也很受重视。香蕉也是一种绿色开花植物，它如其他绿色开花植物一样，也会开花结籽儿。野生香蕉中有一粒粒很硬的种子，吃起来极为不便。因此，有人把野生香蕉树和四倍体的芭蕉杂交产生了三倍体的香蕉。也就是现在的香蕉。这样的香蕉中就

没有种子了。香蕉的种子退化了，人们常通过香蕉地下的根蘖幼芽来繁殖它的后代，现在随植物细胞工程的发展，植物组织培养及快速繁殖更加高效进行香蕉繁殖，同时为其优良品种

的保存扩大提供有利条件。

关键词：香蕉；植物组织培养；快速繁殖；转化

1•香蕉植物组织培养

长期以来,香蕉生产上主要采用吸芽繁殖，用这种常规方法繁殖，不但故量有限，而且挖取吸芽还会伤及母株的地下真茎及挖断母株的根群，从而影响当年产量。同时,挖取的种苗切口大，成活率低。为了提供发展香蕉生产所需的大量种苗，应用植物组织培养技术，繁殖大量香蕉苗是非常必要的。此外，通过组织培养还可加快优良品种的繁殖速度，以满足生产上品种更新的需要。

1.1香蕉组培苗的培育技术

1.1.1品种的选择

选用适宜当地栽培、高产、优质、抗逆性强的品种，选取剑状吸芽若干个进行脱毒。

1.1.2原种吸芽苗的选择

选作吸芽的母株果梳应是果梳整齐、果大均匀、产量高、无病害症状、健壮的母株。用作外植体的剑叶吸芽必须按株系进行编号并建立株系档案，必要时拍照全株相片。

1.1.3香蕉吸芽外植体的消毒与接种

从田间取回来的吸芽用自来水冲洗干净后，用不锈钢刀将吸芽切去根和顶端，剥去外层包片并切成高2厘米X直径1.5厘米左右的圆锥体。在超净工作台上,用75%酒精消毒2分钟，倒掉酒精，再用0.1%升汞，另加2〜3滴吐温80，消毒20〜30分钟。消毒剂一定要浸过料，消毒过程中要经常摇动以便材料充分灭菌。用无菌水清洗4次，使药液彻底洗净。用解剖刀剥去外层叶鞘，留用5毫米左右的基座，并将此圆锥型外植体十字形切为4块，编号后，置入诱导培养基中培养，培养温度为27 C〜31C。开始培养时，可只用自然弱光，待长小芽后光照采用800〜1000LXS。

1.1.4.继代苗的培养

将已开始增殖的芽顶部叶片切除，切除的叶片可作为病毒检测的材料。将基部切成含有2〜4个芽的小块，转接到继代培养基中培养。培养温度27 C〜31C, 光照为800〜1000LXS，经检测不带生产上检定病毒的株系方可作为繁殖材料继代增殖。20〜30天继代一次，继代培养次数不超过12代。」

1.1.5生根苗的培育

将假茎生长至2厘米左右的无根继代苗转入生根培养基中培养，培养温度为27 T〜31 T，光照2500〜3000LXS，每天光照的时间为10小时左右。

1.1.6组培苗的炼苗培养

将培养室内培养的约3厘米高以上的组培苗转换至外界自然光温条件下培 养，待叶片转浓绿色后（时间大约 7〜10天）开始移栽。移栽时最好先打开塑

料袋一个晚上，第二天用清水冲洗掉根部的培养基，并根据苗的大小进行分级。 1.1.7检疫性有害生物的检测和变异株的剔出 1.1.7.1病毒的种类

主要检测束顶病（BBTV ）和花叶心腐病（CMV ）。 1.1.7.2检测方法

采用血清学DAS-ELISA 法检测。 1.1.7.3变异株的剔出

按香蕉组培检定苗质量标准中规定的 6种变异株予以剔出。变异株的6种类型:

①假茎和叶片、叶脉变红；②假茎变青、叶片尖形，叶柄细长；③假茎矮粗，叶 距较密集、叶片短圆（矮变）；④叶片卷曲对称；⑤叶片出现黄、白色条纹或缺 绿斑块；⑥植株生长特快，和一般的植株不一样，叶片特大，杆特粗（高变）。 1.2不同植物生长调节剂对香蕉组织培养的影响

以MS+3%蔗糖+0.6%琼脂作基 本培养基，每个处理3次重复，每个 重复10株（块）,接种后置于室内日

光 灯下培养,光照强度为1 500~2

OOOIx,每天光照12 h,培养温度为 （28 ± 2）°C 。诱导培养于第二代接种 后30天、分化培养于接种后20天、 生根培养于接种后 30天进行调

查 观察，计算各处理的芽诱导率、

增殖 率（倍）和生根率。 诱导培养试验设NAA 添加浓度 为 0、0.02、0.04、0.06、0.08 mg/L

和6-BA 添加浓度为2.5、5.0、7.5、

10.0、12.5 mg/L 共 25 个处理。各 供

试品种取嫩球茎，在自来水冲浴下 除去外层叶片,置于0.1% HgCI2溶 液中

浸泡15 min,无菌水冲洗5次, 然后在

超净工作台上沿球茎生长点 纵切成2~4块，每块大小约3 cm3, 分别接种到诱导培养基中进行培养， 每代培养30天。 分化培养试验设NAA 添加浓度

为 0.0、0.1、0.2、0.3、0.4 mg/L 和6-BA 添加浓度为2.0、4.0、6.0、 8.0、10.0 mg/L 共25个处理,将经2 代培养并诱导成功的芽体分别转接

到分化培养基进行分化培养，每代培养25天。生根培养试验设NAA 添加浓度为

0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mg/L 和 6-BA 添加浓度为 0、0.02、0.04、0.06、0.08 mg/L 共25个处理，将分化的丛芽切成单株，分别转接到生根培养基中进行培养。

6- BA NAA 诱导率｛怖、 普通衿苗 粉琵 贡苗

2. 5 n 43 19 47

2. 5 0 02 47 27

2. 5 0. 04 42 36 壮 2,5 0.06 3M 30 40

2. 5 0 DM 31 22 30

5.0 0 W 37 SO

5,0 D. 02 y? 4b

丸 5.0 0 04 42 S7

50 0. Ofi 81 40 E5

5.0 0. 08 77 37 70 7,5 0

66

7. 5 0 02 84 70

92 7,5 0 04 so 74 S7

7. 5 0佃 6ft 72 61

7. 5 0 08 50 69 59 10.0 0 JO 77 42 10.0 0.02 45 79 44

J0.0 0 04 45 M2 34 10.0 0. Ofi 37 80 32 10,0

.如 76

J2. 5 0

61 29 11. 5 0 02 31 70 39

J2. 5 O. 04 29 73 33

n. 5

O. 06 20 60 23 12. 5 O OS 17 51 ig 表1 2 BA 与NAA 对各香蕾品种外植怵诱导威芽的影响

注：衷屮数据为谨导培养第】代樓种后刃天的调奁结果.