禽流感病毒分子生物学检测方法综述
禽流感病毒的分子生物学研究
禽流感病毒的分子生物学研究近年来,禽流感一直是人类严重关注的问题之一。
随着科技的发展,研究人员在禽流感病毒的分子生物学研究方面取得了许多进展,包括病毒的基因组组成、进化和传染机制等方面的研究。
本文将简要介绍这些研究成果,以及未来的发展前景。
病毒的基因组组成禽流感病毒是一种RNA病毒,其基因组由八段负链RNA组成。
其中,每段RNA分别编码了十多种不同的蛋白质,包括衣壳蛋白、神经氨酸酶、甲基转移酶、复制酶等等。
这些蛋白质在病毒的生命周期中起到了重要的作用。
进化和分类禽流感病毒是一种高度变异的病毒,不同的亚型之间有着明显的差异。
根据血凝抑制试验和神经氨酸酶基因序列分析的结果,人们将禽流感病毒分为H1-H18和N1-N11两个基因型。
其中,H5N1亚型是最具有威胁性的亚型之一,因为它可以感染人类,而且死亡率非常高。
传染机制禽流感病毒主要通过空气传播和直接接触传播而传播。
病毒可以在家禽和野生鸟类中不断变异,形成新的亚型,引发严重的疫情。
人们可以通过控制家禽和野生鸟类的转移、屠宰和处理等工作来控制禽流感病毒的传播。
未来的研究方向禽流感病毒的研究还有很多待解决的问题。
例如,研究人员可以继续深入研究病毒的进化和传染机制,寻找更加有效的预防和控制方法。
此外,研究人员还可以借助新的分子生物学技术,如PCR和NGS等技术,快速鉴定病毒的亚型和抗原特征,并对病毒的抗药性进行研究。
总之,禽流感病毒是一种严重的病毒,对人类和动物的生命安全构成了威胁。
随着分子生物学技术的发展,研究人员在禽流感病毒的分子生物学研究方面取得了很多进展。
未来,研究人员可以继续深入研究病毒的进化和传染机制,并开发出更加有效的预防和控制方法。
禽流感病毒分子生物学检测方法
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家禽和野禽的病毒性传染病 。该 病于 17 88年在 意 术 的飞速 发展 , 流 感 病毒 分 子 生 物学 检 测 方 法不 禽 大利鸡群中首次暴发 , 现已遍布世 界许 多国家 。世 断 取得新 的进展 。
界 各地 的高致病 性 禽 流感 主要 由 H5和 H7亚 型 禽
收 稿 日期 :0 60 —0 2 0 —81
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禽流感 的诊 断包括 临 床诊 断 和实 验室诊 断 。由
于流感病毒的亚型众多, 毒力差别很大, 所以临床症 状也千差万别 , 难以与其他有类 似症状的传染病 区 分。而且流感的临床症状和病理变化因感染动物的
重视 , 文章 就禽 流 感 病毒 分 子 生物 学检 测 方
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禽流感病毒的监测及诊断
定结 果 为 阳 性,则 说 明 尿 囊 液 中 很 可 能 含 有 AIV。 如果第一代分离物 血 凝 试 验 结 果 呈 阴 性,尿 囊 液 样 本 再 用 鸡 胚 传 1~2 代 ,采 用 相 同 方 法 观 察 鸡 胚 的 发 育情况和检测尿囊液中的血凝活性。因为有些检测 样本中的病毒含量 很 低,需 要 通 过 鸡 胚 连 续 培 养 来 获得高滴度的病毒。 经鸡胚培养分离出具有血凝活性的 AIV 后,可 以通过血 凝 抑 制 试 验 (HI)、神 经 氨 酸 酶 抑 制 试 验 (NI)来鉴定 AIV 的 亚 型。 病 毒 分 离 法 和 血 清 学 方 法的优点 在 于 它 们 可 以 用 来 准 确 判 断 是 否 发 生 了 AIV 的感染。 然 而 它 们 却 难 以 监 测 环 境 中 由 于 突 变不断产 生 的 新 的 AIV 变 异 株[10],这 主 要 是 由 于 人们常常缺乏 针 对 新 出 现 的 AIV 抗 原 变 异 株 起 特 异 性 反 应 的 血 清 、抗 体 及 相 关 的 标 准 诊 断 试 剂 。 2.2 病毒特异性抗 原 的 检 测 法 病 毒 特 异 性 抗 原 检测法采用的 原 理 主 要 利 用 针 对 AIV 特 异 性 抗 原 的抗体来捕获 AIV 特异性抗原,例如琼脂扩散试验 及酶联免疫吸 附 试 验 等 。 [11] 目 前 已 有 检 测 AIV 特 异 性 抗 原 的 试 剂 盒 问 世 。 [12] 由 于 AIV 的 核 蛋 白 (NP)相对保守,不 易 变 异,所 以 目 前 采 用 的 病 毒 抗 原捕获免 疫 测 定 主 要 是 用 来 检 测 AIV 的 核 蛋 白。 AIV 特异性抗原检测法的优点是快速,据报道有些 方法可以在30min 之 内 得 到 检 测 结 果 。 [13] 目 前 可 以检 测 AIV N1、N2、N3 及 N7 亚 型 的 抗 体 的 ELISA 方法均已 建 立 。 [14] 但 抗 原 测 定 法 目 前 存 在 的主要问题是检测敏感度低于病毒分离法及病毒核 酸检测法,同时 对 所 测 样 品 的 质 量 要 求 较 高。 检 测 AIV 特异性抗 体 的 试 剂 盒 则 可 用 于 评 估 鸟 类 或 禽 类是否曾接触或感染过 AIV。 2.3 AIV 的 毒 力 测 定 AIV 的 毒 力 主 要 是 通 过 6w龄 鸡 体 实 验 的 静 脉 内 致 病 指 数 (Intravenous pathogenicity index,IVPI)来判定,即若 AIV 在6w 龄 鸡 体 内 的IVPI大 于1.2 时 ,则 认 为 被 检 毒 株 属 于 HPAIV[9]。另一 常 用 的 判 定 毒 力 方 法 是,当 AIV 经静脉途 径 感 染 4~8 w 龄 鸡 后,若 在 10d内 引 起 至少 75% 的 鸡 群 死 亡,则 也 可 以 将 所 测 定 的 AIV 毒株划 归 为 HPAIV[9]。 研 究 结 果 表 明,目 前 所 发 现的 HPAIV 大多是 H5 或 H7 亚 型。 尽 管 仍 有 不 少 H5或 H7亚型的 AIV 是 LPAIV,可是一旦它们 经基 因 突 变 或 基 因 重 配 后 就 很 有 可 能 形 成 HPAIV,感 染 新 的 宿 主 。 判 断 H5 或 H7 亚 型 的 LPAIV 有 无 可 能 成 为 HPAIV 的一个 常 用 标 准 是:通 过 序 列 测 定 检 查 病 毒 HA 前体 中 的 蛋 白 酶 裂 解 位 点 附 近 是 否 含 有 多 个碱性氨 基 酸。 人 们 发 现 在 HA 前 体 蛋 白 裂 解 位
禽流感实验室检测技术方案
禽流感实验室检测技术方案禽流感,这个让无数人闻之色变的词汇,已经成为我们生活中无法回避的一部分。
如何快速、准确地检测出禽流感病毒,成为了当务之急。
今天,就让我来为大家详细介绍一下禽流感实验室检测技术方案。
我们需要明确检测的目标。
禽流感病毒有多种亚型,我们要检测的是哪些亚型,需要根据实际情况来确定。
一般来说,H5和H7亚型的禽流感病毒对我国养殖业和公共卫生安全威胁较大,因此,我们将重点检测这两种亚型。
我们要选择合适的检测方法。
目前,实验室检测禽流感病毒的主要方法有病毒分离、血清学检测和分子生物学检测。
病毒分离是传统的检测方法,准确性较高,但操作复杂,耗时较长。
血清学检测通过检测抗体来判断病毒感染情况,速度快,但准确性相对较低。
分子生物学检测,尤其是实时荧光定量PCR技术,具有高灵敏度、高特异性、快速简便等优点,成为近年来禽流感病毒检测的主流方法。
下面,我将详细介绍实时荧光定量PCR技术在禽流感实验室检测中的应用。
一、实验材料1.样本:采集疑似感染禽流感的家禽咽喉拭子、泄殖腔拭子等。
2.试剂:实时荧光定量PCR试剂盒、病毒提取试剂盒等。
3.仪器:实时荧光定量PCR仪、离心机、恒温箱等。
二、实验步骤1.样本处理:将采集的拭子样本放入病毒提取试剂盒中,按照说明书操作,提取病毒RNA。
2.模板制备:将提取的病毒RNA与实时荧光定量PCR试剂盒中的缓冲液、酶混合,进行模板制备。
4.结果分析:观察实时荧光定量PCR仪上的扩增曲线和溶解曲线,判断样本是否为阳性。
三、注意事项1.实验过程中要严格遵循无菌操作原则,防止样本污染。
2.实验室人员要具备一定的分子生物学实验技能,确保实验顺利进行。
3.实验结果要及时记录,并与临床诊断相结合,为疫情防控提供有力支持。
通过实时荧光定量PCR技术,我们可以快速、准确地检测出禽流感病毒,为我国养殖业和公共卫生安全保驾护航。
当然,实验室检测只是禽流感防控工作的一部分,我们还需要加强疫情监测、疫苗接种、生物安全等措施,共同抵御禽流感病毒的侵袭。
禽流感实验室检测方法
禽流感实验室检测方法一、标本的采集与处理(一)标本的采集1、病毒分离标本的采集病毒分离成功与否很大程度上取决于采集标本的质量,及其保存、运输等环节。
多数标本取自患者上呼吸道鼻咽腔,其次为气管和支气管分泌物,有时也采用肺活检材料等。
标本采集后应立即放入适当的采样液中低温保存,常用的采样液为:普通肉汤,pH7.4-7.6的Hank's、Eagle's或水解乳蛋白液。
为防止细菌和真菌生长,在采样液中需加入抗菌素,以往抗菌素多用青、链霉素,近来发现不少种类细菌对它们具有耐药性,故近来多用庆大霉素(其终浓度为每ml采样液中加入0.1 ml的10mg/ml)和抗真菌药物(终浓度为每毫升采样液中加入0.008 ml的250ug/ ml)。
主要的采集方法有以下几种:1)鼻拭子:将棉签轻轻插入鼻道内鼻腭处,停留片刻后缓慢转动退出。
以同一拭子拭两侧鼻孔。
将棉签浸入4-5 ml采样液中,尾部弃去。
2)咽拭子:用棉签擦拭双侧咽扁桃体及咽后壁,同样将棉签头浸入4-5 ml 采样液中,尾部弃去。
注:亦可将鼻、咽拭子收集于同一采样管中,以便提高分离率,减少工作量。
3)鼻咽抽取物:用与负压泵相连的收集器(国外有售)从鼻咽部抽取粘液。
先将收集器头部插入鼻腔,接通负压,旋转收集器头部并缓慢退出。
收集抽取的粘液,并用采样液涮洗收集器3次。
由于该收集器国内难买到,也可采用国内一种设计装置(见郭元吉、程小雯著,流行性感冒病毒及其实验技术。
中国三峡出版社P186,1997)。
4)鼻洗液:患者取坐姿,头微后仰,用移液管将1-1.5ml洗液注入一侧鼻孔,嘱患者同时发K音以关闭咽腔。
然后让患者低头使洗液流出,用平皿或烧杯收集洗液。
重复此过程数次。
洗两侧鼻孔最多可用10-15 ml洗液。
5)漱口液:用10 ml洗液漱口。
漱时让患者头部微后仰,发“噢声”,让洗液在咽部转动。
然后,用平皿或烧杯收集洗液。
注:取鼻洗液和漱口液时,需预先了解患者是否对抗菌素有过敏史,如有则洗液和含漱液中不应含有抗菌素。
禽流感病毒分子克隆技术路线
禽流感病毒分子克隆/分子生物学技术路线:Virus提RNA[先virus纯化]反转录(vRNA cDNA)PCR扩增(RT-PCR)[cDNA]回收特异阳性带(即PCR引物中所需带)(切胶)连接[连接克隆载体如PMD 18-T Vector]转化(Competent Cell JM109或DH5α)涂菌(涂板)挑菌酚氯仿异戊醇或异丙醇硅脂法粗提质粒试剂盒细提质粒[小量质粒抽提纯化试剂盒]PCR质粒鉴定保存细菌/菌种测序序列分析比较第一步 AI virus RNA提取250μl 未浓缩的病毒液+750μl的 Trizol 或Trizol Ls Reagent(裂解液) 摇匀 5min 15~30℃(室温)加入200μl氯仿1~2min 15~30℃(室温)摇匀≤12000g 10min RCF 2~8℃吸取上清约500μl,加入500μl异丙醇 注:①勿吸下层液-20℃(过夜)可以 ②上清液:异丙醇=1:1≤12000g 10min 2~8℃弃上清 注:rpm(转速)与相对离心力(RCF,g)的换算公式:70%DEPC乙醇1000μl rpm=1000×(RCF/1.12r)1/2r:转子轴心到离心管底的水平距离7500g 5min 2~8℃超净台内充分干燥后或抽真空后加入40μl DEPC水,-20℃保存注意:①用DEPC水处理高压的离心管和枪头②带手套操作注意:DEPC水配制:DEPC:过柱水(mili水)=1:1000,配制时充分摇匀,均一。
离心管、枪头DEPC水处理:用配好的DEPC水加入到饭盒中,放入离心管和枪头,DEPC水浸没离心管与枪头。
第二步反转录试验(RT:reverse transcription)20μl反应体系:12bp Ui primer 1μl70℃ 5minvRNA 5μl冰浴10minRNase inhibitor 1μl(≤100μl体系最大为1μl)5× First buffer 4μl2.5M dNTP 2μl 冰上操作0.1M DDT 2μlDEPC水4μlReverase M-ML-V(反转录酶) 1μl(≤100μl体系最大为2μl)37℃ 60 min、 90min、 120min 或2~4小时,依序列长短而定试剂: RNAOUT RNase inhibitor,Reverase M-MLV 购自Invitrogen.第三步PCR 扩增试验反应体系:RT prduct(cDNA) 5μl 10× Ex Taq buffer10μldNTP 6μlp1(up primer)1μl 19μlp2(down primer)1μlEx Taq 1μlddH2O 76μl注:①p1、p2分别为上、下游引物,扩增不同片段用不同的引物。
浅析研究禽流感病毒检测方法相关进展
浅析研究禽流感病毒检测方法相关进展禽流感是一种高度传染性的疾病,对禽类产业造成了巨大的损失,同时对人类健康也带来了极大的威胁。
因此,准确、快速地检测禽流感病毒对于防控禽流感具有重要意义。
本文将对禽流感病毒检测方法相关进展进行浅析。
一、传统检测方法1. 细胞培养法细胞培养法是一种常用的传统禽流感病毒检测方法。
该方法将病毒接种到特定的细胞培养物中并进行培养,观察细胞的形态变化、病毒感染区域出现的细胞变形、塑像等特征来判断样本中是否存在禽流感病毒。
该方法具有操作简单、成本较低等优点,但需要一定时间进行细胞培养以便检测,且检测结果需要通过显微镜观察,此法的数据精度相对较低,不能对病毒毒株作差异分析。
此外,细胞培养法只能检测能够感染特定细胞系的禽流感病毒株,不能检测全部毒株。
2. 血清学方法血清学方法是利用血清学技术,检测血清中是否存在禽流感病毒特异性抗体或抗原的方法。
血清学方法具有操作方便、标本保存期长等优点,同时可对不同毒株作差异分析,且可以作为定量方法来测定病毒的抗体或抗原含量。
但是该方法的灵敏度相对较低,不能检测到病毒感染初期的病例;同时抗体响应不稳定,因此不能用于诊断急性感染,只能用于长期的流行病学监测。
二、分子生物学检测法随着现代分子生物学技术的不断发展,在禽流感病毒检测方面也出现了一系列基于分子生物学技术的新型检测方法,如PCR法、实时荧光定量PCR法(RT-PCR法)、LAMP法、核酸微芯片法等。
1. PCR法PCR法是指用聚合酶链反应技术,通过扩增目标病毒基因片段使其呈指数倍增长从而检测样本中的禽流感病毒。
PCR法具有闭管式系统、扩增特异性高、灵敏度高、快速检测等优点,但PCR法检测中存在假阳性、假阴性等误差,并且PCR扩增后的目的产物需要进行凝胶电泳分析,需要一定实验经验,操作相对较复杂。
RT-PCR法是在传统PCR法基础上,通过引入逆转录过程得到RNA模板进行扩增,从而实现对RNA病毒如禽流感病毒检测。
禽流感疫情的检测技术和预防方法
禽流感疫情的检测技术和预防方法近年来,禽流感疫情频频爆发,对人类和动物的健康造成极大威胁。
禽流感是世界性应激源,也是人类最担心的传染疾病之一。
如何及早发现和防范禽流感成为全球关注的话题。
本文将介绍禽流感疫情的检测技术和预防方法。
一、禽流感疫情的检测技术1. PCR 检测技术PCR 检测技术是目前最普遍的禽流感检测技术之一。
它的敏感和特异性较高,可以在短时间内检测出病毒核酸。
PCR 检测技术通过扩增样品中的病毒核酸,建立病毒RNA 和DNA 的检测模型,实现禽流感病毒的快速检测。
同时,PCR 检测技术试剂盒价格相对较低,可以广泛应用于实验室。
2. 传统的病毒学检测技术传统的病毒学检测技术包括:细胞培养、鸟胚传递、抗体检测等,这些技术常用于检测禽流感病毒。
其中鸟胚传递和细胞培养技术是主要的检测方法,通过这些技术,能够根据病毒的特性、形态和外壳来检测病毒。
这些检测方法不仅具有较高的准确性,而且可用于病毒复原、病毒培养和抗原表征,有助于对病毒的深入研究。
二、禽流感疫情的预防方法禽流感疫情的预防方法主要包括以下几种:1. 禽流感疫苗预防禽流感疫苗预防是最常用的禽流感预防方法之一。
疫苗可以帮助鸟类产生免疫力,使它们能够对病毒产生抵抗力,从而减少被感染的机会。
由于禽流感具有高度变异性,因此根据病毒菌株的变化需要不断更新和传统疫苗的研制。
但是,疫苗预防的生产时间较长、疫苗成功率较低是质疑其效果的主要原因。
2. 密切监控和管理密切的监控和管理是防止禽流感疫情发生的其他重要手段之一。
监控和提高人与禽类之间的距离,同时监控禽畜市场,加强宣传和警示,以减少病毒的传播。
在过去的几次严重的禽流感疫情中,对禽类进口、出口等进行严格管理,有助于防止疫情扩散。
3. 健康卫生教育健康卫生教育是预防禽流感疫情的重要途径之一。
定期开展健康卫生教育,加强人们的健康意识和卫生知识,增强人们知晓和控制禽流感疫情的能力,有助于减少病毒的传播。
某某公司H亚型禽流感病毒荧光RT-PCR检测方法(一)
某某公司H亚型禽流感病毒荧光RT-PCR检测方法(一)某某公司H亚型禽流感病毒荧光RT-PCR检测方法随着科技的不断发展,越来越多的检测方法被发明,其中包括了患者、食品和环境等多个方面。
其中,针对禽流感病毒的检测方法也是日益完善。
下面,我们介绍某某公司H亚型禽流感病毒荧光RT-PCR检测方法,希望能在禽流感防控中发挥作用。
1.检测方法原理H亚型禽流感病毒荧光RT-PCR检测方法属于分子生物学检测方法,主要是利用荧光定量PCR技术检测H亚型禽流感病毒的特异性基因,可以快速、准确地检测出病毒是否存在及其数量。
2.样品的准备首先,将样品收集储存在68℃及以下条件下,以保持样品的活性。
待需要时,将样品从储存温度中取出,经标准方法处理后制成核酸提取物,供实验参考。
3.实验步骤a.检测试剂的配制将检测试剂中的反转录酶、Taq酶及反应缓冲液等标准试剂按照配方比例制成反应体系试剂。
b.核酸反应将样品提取得到的核酸溶液与上述反应体系试剂混合后进行核酸反应,目的是将RNA转化为cDNA,并进行PCR扩增。
c.荧光检测将PCR扩增产物与某某公司特制荧光探针掺入至荧光定量PCR体系中,并进行荧光检测。
病毒的存在可以从荧光检测的数据中快速判断。
4.检测结果的判读样品核酸浓度与检测荧光值成正比,因此,通常用荧光值来判别样品的阳性或阴性,同时可根据不同的荧光值来判断样品中病毒含量的高低。
总之,某某公司H亚型禽流感病毒荧光RT-PCR检测方法是基于分子生物学原理的一种高灵敏、高特异性和高通量的禽流感检测方法。
其具有快速、准确和高通量的特点,是禽流感防控领域中一种重要的检测方法。
禽流感病毒检测方法研究进展
禽流感检测方法研究进展郑胜男本硕21摘要:禽流感是一种可以感染多种禽类和人的烈性传染病,其病毒亚型众多,宿主范围广,容易发生变异和重组,由于各亚型之间无交叉反应性,使得禽流感病毒的检测工作较为困难。
目前,该病毒的检测方法主要有病毒分离鉴定、血清学方法和分子生物学方法,同时,人们也正致力于用一些新兴检测方法来检测禽流感病毒。
现就禽流感病毒的检测方法做一综述。
关键词:禽流感病毒;检测方法;AIV;血清;诊断;分子生物;禽流感是由正黏病毒科、A型流感病毒属中的不同亚型引起的禽类的一种急性高度接触性传染病。
目前已知禽流感病毒的血凝素包括16种亚型,[1]神经氨酸酶包括9种亚型。
其中H5和H7亚型常为高致病性的禽流感病毒。
1.病原学检测方法1 .1病毒分离与鉴定病毒的分离鉴定是禽流感的经典诊断方法,最常用的为细胞接种和鸡胚接种法,以细胞发生病变,鸡胚死亡或培养物尿囊液具有凝集红细胞特性作为判定依据作初步鉴定,也可用针对NP的单抗,用免疫荧光染色作病毒的初步鉴定。
[2]确诊还需其它辅助检测手段。
其检测结果准确可靠,灵敏,极少量病毒也可检出。
但其操作程序繁杂,费用高,实验室要求高,耗时费力,周期长,检测时间需1~3 周,大面积应用推广受到较大限制。
1 .2电镜检测技术用电镜技术或免疫电镜技术诊断禽流感病毒,可以在电子显微镜下清楚观察到粒子形态,确定病毒的有无。
[3]、[4]电镜技术快速、准确,但检验结果与样品制备技术、取病材料的部位和时间有关,且本方法不能用于亚型及致病性的测定。
2.免疫学检测2 .1血凝(HA )和血凝抑制(HI)试验HA 和HI 简单、快速、特异性好,但是操作繁琐费时,不能用已知HA亚型的抗血清检出禽流感新的HA亚型。
HI试验是WHO进行全球流感监测所采用的普及方法。
[5]一般先将可疑病料接种适龄鸡胚或细胞进行病毒分离,然后用HA试验检测出培养物是否具血凝素活性,再用已知阳性血清进行HI试验来验证。
高致病性禽流感病毒实验室检测分析
高致病性禽流感病毒实验室检测分析摘要:禽流感即禽流行性感冒,属于甲型流感病毒所致禽类传染性疾病,可在鸡、鸟类中大范围传播。
禽流感包括非致病性、低致病性及高致病性等类型,其中高致病性禽流感具有传播速度快、病死率高及危害性大等特点,并可感染人类,因此国家将其列为一类动物疫病。
为有效防控高致病性禽流感,需采取有效实验室检测方案。
本文分析研究高致病性禽流感病毒实验室检测方法及检查过程中的风险防控措施,希望为相关人员提供参考。
关键词:高致病性禽流感病毒;实验室检测;检测方法高致病性禽流感属于禽类急性传染性疾病,致病菌为甲型流感病毒,其主要特点是传播速度快,病死率较高,可对禽养殖行业造成严重不良影响。
近年来,我国部分地区开展家禽检疫过程中多次检出高致病性禽流感病毒,为此需不断加强实验室检测分析工作,并在检测中采取有效的风险防控措施,以实现对高致病性禽流感的有效防控。
一、高致病性禽流感概述高致病性禽流感属于世界范围多发常见禽类疫病,可对公共卫生安全构成严重威胁。
高致病性禽流感病毒致病性较强,可寄生于多种宿主体内,人类及哺乳动物均可感染,不同禽流感感染病原亚型临床表现存在差异,H7N9亚型感染症状较为严重,可导致呼吸系统病变及多器官功能衰竭,致死率较高,H7亚型感染可导致呼吸道相关症状,H9N2亚型感染症状与普通流感近似[1]。
高致病性禽流感危害性较强,为此需及早确诊,并采取有效的防控措施,以避免其持续蔓延。
二、高致病性禽流感病毒实验室检测方法(一)病毒培养分离病毒培养分离是诊断高致病性禽流感病毒的常规方法,具有较高的灵敏度、特异度及准确度。
实验室检测人员利用临床标本获取毒株,通过培养分离操作技术可确定毒株的生物学特性与抗原基因,进而为疫苗的选用提供参考。
同时,病毒培养分离操作相对复杂,样品运输条件、采用时间及采样方式等均可影响检测结果,不适合应用于普查中。
另外,开展病毒培养分离过程中,高致病性H5N1毒株需在生物安全级别达到BSL-3的实验室中完成[2]。
禽流感病毒的检测方法
I 血细胞 凝集抑制试验 (I H)鉴定病毒或血 的 AV诊 断技 术包括病毒分离鉴 定试验
清抗体 的亚 型 ,以及神经氯酸酶 抑制试 周期长 的缺点 , AV 期快速诊 断提供 为 I早 验 (I N) 鉴定病毒或血清抗体亚型等 . 这些 了敏感 , 快速、实用的方法 , 而且研究试 检测方法步骤繁琐 .但特异性好 。 验发现 R — C T P R的灵敏度高于 E I L A,可 S
起 的禽 类全 身性或 呼吸 器官性传 染病 , 结合 , 来特异的定性 、 定量 的检测病毒 的 OE把该病定为 A类烈性传染病 。 I 禽流感 存 在 。 于 标 记酶 酶 促 反 应 的 放 大 作 用 , 由
病毒 ( -v n i l navrsAV)隶属 其 灵敏 度 比常 规 血清 学 检 测 要 灵 敏 的 多 , A i n u z i . I a fe u
有 无和 滴度变化 。如琼脂 凝胶扩散试验 如 果检测 出了相 应的扩增带 ,则 判为阳 无扩增带则 为阴性反应 。 (G) A P 和血细胞凝集抑制试验 (I。A P 性 反应。反之 . H) G
试 验鉴 定病毒或检测 特异性的血清 抗体 R - C 分 子诊断技术 , T PR 可从基 因水平检 I 具有高度 的敏感性和特异性 , 并 或基 质蛋白 MPmar rti) ( tx poen .检测特 测 AV. i 异 性核 蛋白 N 。血细胞凝集试验 (A) P H 和 可大大缩短 AV I的检 出时 间 , 克服 了传统
动物保 健 ’ 0 2 6年第 3期 0_ J3 0 总第 o 斯
维普资讯
猪 免疫 抑 制 病 的 危 害 与 防制
已 发 现 有 1 种 , 经 氯酸 酶 有 1 种 .其 印迹 免 疫 测 定 法 可 以 显 示 病 禽 不 同 部 位 6 神 0
禽流感病毒诊断技术研究进展
禽流感病毒诊断技术研究进展一、引言禽流感是一种高致病性病毒性疾病,目前已在世界范围内造成大量的家禽死亡和经济损失。
禽流感病毒的快速检测和准确诊断对于疫情的防控和阻断至关重要。
该文将介绍目前禽流感病毒诊断技术的研究进展。
二、免疫学诊断技术1. 细胞培养法细胞培养法是禽流感病毒的最早诊断方法之一,通过将感染样品接种细胞培养物中,观察是否有细胞损伤和病毒分离情况。
但由于该方法需要特定实验室条件,并且需要较长时间,因此已渐被其他更先进的诊断技术所取代。
2. 补体结合反应(CFT)CFT是一种免疫学诊断方法,它通过观察血清中禽流感特异性抗体和禽流感病毒抗原之间的补体结合情况来诊断病毒。
但是,由于该方法对试剂质量和操作技巧要求较高,且存在假阴性和假阳性等问题,因此不常用于临床检测。
3. 酶联免疫吸附试验(ELISA)ELISA是一种快速、准确和经济的诊断方法。
该方法利用特异性抗体与抗原之间的特异性结合,通过酶标记活性物质,使结合物可定量检测。
目前,ELISA已被广泛应用于疫情监测和疫苗效果评估等方面。
4. 荧光素酶联免疫吸附试验(F-ELISA)F-ELISA是一种对传统ELISA方法的改进,它利用荧光素作为标记物,从而提高了灵敏度和特异性。
F-ELISA操作简单、快速、可靠,已被广泛用于临床检测和疫情监测。
三、分子诊断技术1. 聚合酶链反应(PCR)PCR是一种高度敏感和特异的分子诊断技术,它能够从样品中扩增病毒DNA或RNA片段,从而进行病毒诊断。
PCR具有快速、准确、可靠的优点,因此已成为禽流感病毒诊断的首选方法之一。
2. 实时荧光定量PCR(RT-qPCR)RT-qPCR将常规PCR与荧光标记技术相结合,能够快速、准确地扩增、检测禽流感病毒。
该方法可用于样品的快速筛选和诊断。
此外,RT-qPCR还可用于研究禽流感病毒的毒株差异和基因变异。
3. 巢式PCR巢式PCR是将PCR的灵敏度和特异性提高到更高水平的方法。
禽流感综述
禽流感综述禽流感综述尹杰超 任晓峰*(东北农业大学动物医学院 哈尔滨 150030)禽流感(Avian Influenza,AI),是由禽流感病毒(Avian Influenza Virus, AIV)引起的禽类的一种烈性传染病.由于AI 具有临床症状复杂,病死率高,病原体亚型多以及容易发生抗原漂移和转换等特点,使其防治难度加大,相应地造成了严重的经济损失,影响畜禽业的发展。
1997年在香港发生的AIV 感染人的事件,突出了其公共卫生意义(1)。
本文就AI 的病原学,流行病学,发病机制,临床表现与诊断,防治等方面进行综述,目的是在丰富专业数据库的同时,增加公众对AI 的大体了解,便于普及AI 的 预防知识和应急处理。
关键词关键词:: 禽流感,禽流感病毒,预防,综述1 1 病原学病原学病原学1.1 AIV 1 AIV 一般特性与命名原则一般特性与命名原则一般特性与命名原则禽流感病毒为正粘病毒科流感病毒属A 型流感病毒,病毒粒子一般呈球形,直径约80-120nm,但也具有其它的多形性。
病毒表面有具有囊膜,囊膜上有12-14nm 的两种不同的纤突,即红细胞凝集素(HA)和神经氨酸酶(NA)(2)。
根据HA 和NA 的不同,又分为许多亚型。
目前报道已分离的HA 有15种,NA 有9种。
根据流感病毒核蛋白(NP)和基质蛋白(MS)抗原性的不同,将其分为A、B、C 三个血清型。
按致病力不同又分为高致病力(HPAI)、低致病力(LPAI)和不致病力(NPAI)毒株。
A 型流感毒除有可能感染人外,还感染许多其他种属的动物,如马、猪、禽类、海豹等,而B 型则主要感染人,但C 型也可从猪分离到。
应用不同亚型特异的抗血清组合,对分离物进行血凝抑制和神经氨酸酶抑制试验,可鉴定病毒的HA 和NA 亚型,并据此进行AIV 毒株的分类。
流感病毒的命名包括型(A、B 或C),宿主来源(除人外),地理来源。
毒株编号(如果有)和分离的年代,后面及圆括号内附以HA(H)和(N)的抗原性说明, 如A/鸡/香港/258/97 H5N1 和A/香港/156/97 H5N1。
禽流感病毒和新城疫病毒的检测方案
禽流感病毒和新城疫病毒的检测方案实验目的对实验室送检样品进行禽流感病毒(AIV)、新城疫病毒(NDV)的检测及鉴定。
实验原理(1)AIV和NDV均能凝集鸡红细胞,可先使用血清学实验进行初步鉴定,即用已知标准抗体即可检测未知的病毒抗原.(2)通过分子生物学实验技术(RT-PCR)做进一步的检测鉴定,AIV 和NDV均为单股副链RNA病毒,故提取得到的病毒核酸需先进行反转录再PCR扩增。
(一)样品处理及病毒分离1.1 实验试剂100,000 IU的双抗(青霉素和链霉素)。
1.2 试验设备及材料设备:低温离心机,冰箱,孵化培养箱,超净台,照蛋器。
材料:移液枪,灭菌吸管,9~11日龄非免疫鸡胚(最好使用SPF鸡胚),1 mL注射器,石蜡,铅笔,打孔器,酒精灯,酒精棉,镊子。
1.3 操作步骤(1)样品的处理:向样品中加入双抗使终浓度为10000 IU~20000 IU,4℃冰箱作用至少2 h,4℃ 8000~10000 rpm离心15 min。
(2)接胚:取上清液接种9~11日龄非免疫鸡胚,采用尿囊腔接种,0.2~0.3mL/胚,每个样品接种2~3枚鸡胚。
弃去24h内死亡的鸡胚,48 h内死亡的鸡胚及时置于4℃冰箱至少4 h,于超净台内收胚测血凝(若同一份样品的两个鸡胚均无血凝,可将两个鸡胚尿囊液收为1管)。
(3)将第一次收取的鸡胚尿囊液同样的方法继续接胚,直至第三代,若均无血凝,则结果可判为禽流感和新城疫感染阴性;若有血凝,则继续做HI试验,可初步鉴定为禽流感或者新城疫感染。
1.4 注意事项:接胚及收胚过程中避免污染。
(二)血凝抑制试验(HI)2.1 试验设备及材料器材:离心机、记号笔、酒精灯、100P量程的移液枪、200uL枪头、排枪、排枪枪头、96孔V形血凝反应板。
试剂:pH7.2磷酸盐缓冲液(PBS)、1%鸡红细胞悬液、新城疫病毒抗原。
2.2 操作步骤(1)取96孔V形微量反应板,用排枪1至12孔每孔加0.025 mL PBS;(3)吸取0.025 mL 病毒悬液加入第一孔中,吹打8次至10次充分混匀;(3)从第一孔中取0.025 mL 混匀后的病毒液加到第2孔,混匀后吸取0.025 mL加入到第3孔,依次进行系列倍比稀释到第11孔,最后从第11孔吸取0.025 mL弃之,设第12孔为PBS对照;(4)每孔加入0.025 mL的1%的鸡红细胞悬液;(5)震荡混匀反应混合液,室温下静置15 min后观察结果,PBS对照孔的红细胞成明显的纽扣状沉到孔底时判定结果。
浅析研究禽流感病毒检测方法相关进展
浅析研究禽流感病毒检测方法相关进展禽流感是一种由禽流感病毒引起的高度传染性疾病,严重威胁着禽类养殖业的发展和人类健康。
因此,快速、敏感和准确的禽流感病毒检测方法显得尤为重要。
本文将对现有的禽流感病毒检测方法进行分析和评价。
传统方法:病毒分离和鉴定病毒分离和鉴定是禽流感检测的传统方法,包括细胞培养、鸡胚和动物实验等。
虽然这些方法已经有很长时间的应用历史,但是操作时间长,需要耗费大量的经费和资源,且存在易受外界因素干扰、检测结果不稳定等缺点。
此外,这些方法对相关操作人员的技能要求较高,易导致误判和误诊。
分子诊断方法与传统方法相比,分子诊断方法具有检测速度快、灵敏度高、特异性好和结果可靠等独特优势,已经成为禽流感病毒检测的主要方法。
1、 PCRPCR技术是一种基于DNA靶标的检测方法,已被广泛应用于禽流感的检测中。
其主要优势在于检测灵敏度高,可检测到非常低浓度的病毒。
但PCR技术受到污染和样本预处理质量的影响较大,还需对检测结果进行序列鉴定,以确保结果的准确性。
2、实时荧光PCR实时荧光PCR是PCR技术的一种改进,它能够在扩增过程中实时监测PCR产物的累积量,实现了PCR过程的定量分析,从而提高了检测的精确度和特异性。
该技术可将细胞基因与病毒基因区分开来,提高了检测效率。
然而,这种方法的检测成本高,且对设备和技术要求高。
3、LAMP环介导等温扩增(Loop-mediated Isothermal Amplification,简称LAMP)是一种较新的分子诊断方法,它不需要高温循环扩增,在等温条件下扩增,其检测效果优于PCR技术。
LAMP反应过程不依赖于恒温恢复,提高了检测速度和可靠性,但是需要对扩增产物进行后续检测和鉴定,一定程度上增加了成本。
4、microRNA检测microRNA(miRNA)是一种短链非编码RNA,其在禽流感病毒的检测中具有较高的特异性和敏感性。
基于miRNA的检测方法广泛应用于禽流感的检测中。
禽流感病毒(H9亚型)流行毒株的分离及初步鉴定
禽流感病毒(H9亚型)流行毒株的分离及初步鉴定李凤艳【摘要】对2013~2015年从各省养鸡场采集的口腔及泄殖腔拭子进行病毒分离,用血凝及血凝抑制试验初步鉴定出含H9亚型禽流感病毒的样品,对其进行纯化得到4株H9亚型禽流感病毒,用针对H9亚型禽流感病毒HA基因的特异性引物对分离株进行RT-PCR扩增,分别获得特异性目的片段后进行测序分析,结果显示4个分离株经鉴定均为H9亚型禽流感病毒.对4个分离株的生物学特性进行研究,发现4株H9亚型禽流感病毒分离株均符合低致病禽流感病毒的特点.【期刊名称】《现代畜牧兽医》【年(卷),期】2017(000)008【总页数】6页(P11-16)【关键词】H9亚型禽流感病毒;分离鉴定;生物学特性【作者】李凤艳【作者单位】辽宁益康生物股份有限公司,辽宁辽阳111000【正文语种】中文【中图分类】S858.28禽流行性感冒,简称禽流感(Avian lnflucnza,AI),是由正黏病毒科(Orthomyxoviridae)、流感病毒属、A型流感病毒所引起的一种禽类传染病,OIE根据对家禽所造成的疾病程度,禽流感被分为高致病性禽流感病毒(highly pathogenic avian influenza virus,HPAIV)和低致病性禽流感病毒(lowlypathogenic avian influenza virus, LPAIV)。
H9亚型AIV属于LPAIV,是家禽中最常见的病毒之一。
H9N2亚型AIV最早于1966年从火鸡体内分离到[1]。
此后H9亚型的禽流感病毒也从许国国家的家禽和水禽中分离到[2]。
H9N2亚型AIV在我国广泛存在,且多呈低致病性感染,并呈逐渐蔓延之势[3]。
多数携带该病毒的野禽、水禽、家禽并不表现出临床症状或仅表现轻微临床症状,一旦出现临床症状多表现为呼吸系统症状、蛋鸡产蛋下降、肉鸡生长迟缓等,是影响我国养禽业发展的重要病原。
因此,关注H9N2亚型AIV的研究具有普遍的公共卫生意义。
禽流感病毒H5、H7、H9亚型多重荧光RT-PCR检测方法的建立
禽流感(avian influenza ,AI )是由正粘病毒科、流感病毒属A 型流感病毒引起的禽类(家禽或野禽,以及部分哺乳动物)传染病[1]。
禽流感病毒血清亚型众多,抗原变异性强,宿主范围广泛,亚型间无交叉保护性,使得禽流感频繁暴发,成为养禽业的一大毁灭性疫病。
尤其是高致病性禽流感,是OIE 规定的法定报告A 类动物疫病[2]。
禽流感病毒在流行的过程中不断变异,跨越宿主屏障,H5N1亚型禽流感病毒和H7N9亚型禽流感病毒屡次暴发疫情,给养禽业和人类的生命安全带来巨大的威胁。
H9亚型禽流感病毒并未被规定为高致病性禽流感,往往被人们所忽视,从而造成了以H9亚型为主的低致病性禽流感的大范围流行和对养禽业产生持续危害。
此外,有研究显示H9N2亚型禽流感病毒在全世界范围内广泛传播的同时也以重配的方式产生新型禽流感病毒[3,4]。
目前国内外检测禽流感病毒最常用和经典的方法是鸡胚病毒分离,并且是国际贸易中指定的检测方法,但该方法技术要求高、耗费时间长,在疫情暴发时不利于病原的快速诊断和疫情控制。
以分子生物学技术为基础的荧光PCR 方法已成为病原核酸检测的主要方法,目前市场的禽流感病毒检测手段多以单重RT-PCR 为主,不能区分具体亚型,但在平时疫情检测和实施扑灭措施时对这些病毒亚型进行快速检测和定型非常重要。
本研究基于Taq-Man-MGB 荧光RT-PCR 技术建立一种禽流感病毒H5、H7、H9亚型多重荧光RT-PCR 检测方法,能够在一次反应中对样本中的病毒进行快速定型,满足准确、快速的检测需求。
1材料与方法1.1质粒样品携带禽流感病毒H5亚型、H7亚型、H9亚型HA2靶基因序列片段重组质粒pUC57-AIV-H579,浓度为104copies/μL 。
1.2禽流感病毒核酸样品禽流感病毒H5亚型核酸样品15份、禽流感病毒H7亚型核酸样品15份、禽流感病毒H9亚型核酸样品15份,禽流感病毒阴性核酸样本30份,由扬州大学禽流感病毒专业实验室分离、鉴定、保存和提供。
何为分子生物学检测技术?可以诊断禽流感?你知道吗
何为分子生物学检测技术?可以诊断禽流感?你知道吗近些年来,分子生物学检测技术是非常流行的,也是应该范围非常广泛的一种检测。
对于分子生物学检测技术来说,它与传统检测技术最大的区别就是在快速和精准上,传统的病毒检查方法不但繁琐,而且需要诊断的和时间还很长,所以并不适合新时期下的发展和应用。
而新时期的分子生物学检测技术,不但能对一般的病毒进行诊断,还是可以对禽流感进行诊断的,你知道吗?一说到禽流感病毒,相信很多人都不陌生,禽流感病毒是一种具有高传染性的疾病,属于一种人畜共发的疾病,也正是因为高传染性以及严重的后果,所以对它的检测工作非常重要,而分子生物学技术就能打破传统检测方法的限制,对禽流感病毒进行分析和检测,而且结果还非常的精准。
下面我们就一起来了解一下吧。
1.什么是分子生物学检测技术?分子生物学检测技术属于两个学科下的伟大成就,即现代分子生物学和分子遗传学,是人们在对基因检测结构或者调控等生命本质问题的进一步深化和研究。
近些年来,随着我国科学技术的发展和进步,也推动了分子生物学检测技术的快速发展,并逐渐建立了很多检测方法。
一直持续到90年代的DNA芯片技术,更是将分子生物学检测技术推向了更高的发展阶段。
1.分子生物学检测技术的检测方法为了帮助大家更好的认识分子生物学检测技术,下面小编就将分子生物学检测技术的几种主要方法给大家详细的讲解一下。
1.核酸分子杂交:通俗易懂点来理解其实就是核苷酸单链在液体或者固体中的相互配合与互补,然后形成双链的过程。
这种检测方法对特有的DNA或者RNA的检测有很明显的效果。
就我国分子生物学检测技术的现状来看,此项检测方法的地位和作用还是非常高的,因为杂交种类众多,专业知识也比较多,这里就不做过多的讲解了,只要清楚常用的技术方法就可以了。
2.反转录-聚合酶链式反应技术:此项技术是RNA的逆转录和聚合酶反应结合起来的一种技术,是目前分子生物学中最常用的一种检测方法。
它最大的优点就是具有很强的灵敏性和特异性,而且操作起来也不是很复杂,可以在短时间内完成对病毒的检测工作。
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5基础科学中国畜牧兽医文摘2012年28卷第11期禽流感(AI )是由A 型流感病毒(AIV )引起的一种以禽类呼吸系统及全身性败血症为特征的禽类疾病综合征。
自禽流感被发现至今100多年来,人类并没有掌握特效的防治该病方法。
暴发疫情时,一般还是依靠消毒、隔离、大量宰杀等方法防止其蔓延,经济损失巨大。
能否及时发现该病流行,尽快采取有效措施,是降低经济损失的有效途径。
因此,快速、准确的检测十分重要。
1 聚合酶链式反应1986年,Bea rd 用PCR 技术诊断AI ,大大缩短了AI 的诊断时间。
1993年,Kaw aoka 应用PCR 和Southern-blotting 联合辨别A IV 血凝素基因序列,现已建立了可以直接从临床病料的感染组织中检测AIV 的RT-PCR 诊断技术,可用于所有亚型AIV 感染的早期快速诊断。
1997年,黄平等用PCR-RFL P 方法分析流感病毒H 3N 2亚型毒株,认为该方法作为一种分子流行病学筛选试验在流感变异研究中具有重要作用。
1998年,崔尚金等首次建立了针对H 7亚型A IV 的RT-PCR 诊断技术。
2000年,Schw eiger 等应用荧光PCR 法对呼吸道标本中的流感病毒进行型别、亚型鉴定,并将该方法应用于德国近2个流感流行季节监测中。
2001年,M ing-Shiuh Lee 等建立了以HA 蛋白序列为模板的H 5、H 7亚型特异性RT-PCR 诊断技术和以NP 或M 蛋白序列为模板的型特异性RT-PCR 诊断技术。
同年,Herrmann 报道,用巢式RT-PCR 可以同时检测A 型流感、B 流感。
Spackman 建立了RRT -PCR 方法,将荧光素标记的探针与引物一起在荧光PCR 仪中反应,电脑对整个反应进行实时监测,避免了交叉污染。
利用探查流感M 基因可以迅速诊断病毒感染,同时加入H 5、H 7亚型血凝素特异性探针,研究出一种可以鉴别这2个亚型的RRT-PCR 方法。
2000年,No to mi 等建立了环介导恒等温扩增(LAM P )技术,这是一种新型的核酸扩增技术。
该方法应用广泛,适用于基层实验室进行快速检测。
2008年,侯佳蕾等根据H 5亚型A IV HA 基因序列,设计了一套特异识别HA 基因序列中6个不同区段的环介导恒等温扩增引物,并以此套引物建立了一种基于LAMP 技术的H 5亚型禽流感病毒诊断方法,结果表明,该方法对H 5亚型A IV RNA 的最小检测限为10-6,灵敏度高于RT-PCR 方法,全部反应可在1.5h 内完成。
在反应体系中添加SYBR G REEN I 染料后,可通过肉眼观察有无荧光,直接判定结果。
N ASBA 技术是一项以RNA 为模板的快速等温扩增技术,该技术特别适用于RNA 分子的检测。
Collins 研究小组于2002年首次发表了关于应用NASBA 技术检测禽流感病毒的论文,目前已成功开发出可检测禽流感群特异性(H 1~H 15)(NASBA -AIV )、H 5亚型(N ASBA -H5)、H 7亚型(NA SBA-H 7)的NA SBA/ECLipse 检测试剂盒。
2005年,单松华等也建立了N ASBA 技术进行H 5亚型的禽流感检测。
该技术的特点是整个扩增过程在恒温条件下进行,因此不需要特殊的控温装置,大大避免了R 扩增过程中复杂的温度变化,不仅能检测出具有感染性的完整的病毒颗粒,还能检出非感染性病毒粒子以及错误包装的非感染性病毒粒子。
2 基因芯片技术由于流感病毒拥有众多的型和亚型,无论是现存的哪一种诊断方法,都无法同时对所有的流感病毒进行精确的分型。
基因芯片技术可以对成千上万个基因进行检测,它的出现为同时对流感病毒进行检测和分型提供了可能的途径。
基因芯片是指将大量的核酸分子扩增的cDN A 或合成的特异性寡核苷酸探针以大规模阵列形式固化在载玻片等芯片载体上,通过与Cy3、Cy5荧光素标记的样品进行核酸杂交,检测杂交信号的有无和强弱,进而判断样品中被检分子的种类和数量。
该项技术具有高通量的优点,检测禽流感病毒的时间约为7h 左右。
Li J 等建立了鉴别流感病毒型和亚型的基因芯片检测方法,设计的26对引物可从A 型流感病毒HA (H 1,H 2,H 3)、NA (N 1,N 2)和NP 基因,以及B 型流感病毒的HA (H 1,H 2,H 3)、N A (N 1,N 2)和NP 基因上的目的基因杂交,从而达到鉴别型和亚型的目的。
目前基因芯片技术在流感病毒的检测中,主要用于科研和流行病学调查,操作较繁琐,检测成本及硬件要求均较高,离实际应用还有一段距离。
3 核酸探针技术核酸探针自20世纪70年代末出现以来,在致病因子的检测中,越来越发挥出优于常规方法的长处。
它可以确认血清学反应为阴性的慢性病毒的存在,也可以检出培养困难、或不易制成高滴度抗体、或没有被膜蛋白不能制备抗体、或表面抗原分型较多难以找到共性抗体的病毒。
核酸探针灵敏度高,检测样品数量大,需要的设备要求不高,价格相对便宜,使用的探针从早期的对人体危害较大的放射性同位素,到被安全性较高的非放射性标记物所取代。
目前使用较多的是地高辛(异羟基毛地黄毒苷,Digoxigenin ,DIG )。
D IG 标记探针的标记方法有随机引物法、缺口平移法、末端标记法和PCR 标记法。
其中,PCR 标记法是近年来刚发展起来的一种方法,其原理与PCR 相同,不同之处在于在dNTPs 中的dUTP 带上了DIG 标记物。
黄庚明等利用PCR 技术建立并优化了检测AIV 核酸的D IG 标记的cDNA 探针杂交法。
该探针具有良好的特异性和敏感性,为从分子水平探讨A I V 的发病机理及临床早期快速诊断提供了新的手段。
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一旦暴发疫情,经济损失巨大。
能否及时发现该病的发生,尽快的做出应对措施是降低经济损失的途径之一。
目前,分子生物学检测方法在A I V 病原学检测及诊断方面有着较大优势,可以对其进行快速、准确的检测。
[关键词]禽流感病毒聚合酶链式反应基因芯片技术核酸探针技术7PC E E C A .PC -P H 2J .199717-178.基础科学中国畜牧兽医文摘2012年28卷第11期[4] 崔尚金,陈化兰,唐秀英,等.禽流感RT-PCR诊断法的建立[J].中国预防兽医学报,1998,(2):42-44.[5] SCHWE IGER B,ZADOW I,HECKLER R.Ap p lication of afluo rog enic PCR assay fo r ty ping and subty pin g of influenza viruses in respiratory sam ples[J].J Clin Microbiol,2000,(38):15-52.[6] Ming-Shiuh Lee.Development o f a real-time reverse transcriptasePCR assay for typ e A influenza virus and the avian H5an d H7 hem agglutinin sub types[J].J o f Clinical Micro b iology,2001,29(4):446-449.[7] Herrmann B,Larsso n C,Zweyg berg BW.Sim ultaneo us detectio n andty ping of influenza v iruses A an d B by a nested reverse transcription-PCR:comparison to viru s isolation and an tigen detection b y imm unofluorescence and optical immuno assay(FLU OIA)[J].J Clin M icrobio l.2001;39(1):134-8.[8] SPACKM AN E,DENN IS A S,MYERS T J,et al.Developmento f a real-time rev erse transcriptase PCR assay fo r type A influenza v irus and the avian H5and H7hemag glutinin subty pes[J].J o f Clinical M icrobio logy,2002,40(9):3256-3260.[9] LEE CW,SUAREZD L.Application o f real-tim e RT2PCR fo r th equantiatio n and co mpetitive rep lication study of H5an d H7subtype avian influenza v irus[J].J Viro lM ethods,2004,(119):151-158.[10] DYBKER K,MUNCH M,KURT J H,et al.RT-PCR-ELISA asa to ol for d iagnosis o f low-pathogenicity avian influenza[J].AvianDisease,2003,(47):1075-1078.[11] NOTOMI T,OKAYAM A H,M ASUBUC H IH,et al.Loo p-mediatedisothermal amp lification of DNA[J].Nucleic Acid s Res,2000,28(12):63.[12] 侯佳蕾,罗开健,樊惠英,等.H5亚型禽流感病毒RT2LAM P快速检测方法的建立[J].中国兽医科学,2008,38(12):1070-1074.[13] COL INS R A,KO L S,SO K L,et al.Detection o f highly patho genicand lo w patho genic avian influenza subtype H5(Eurasian lineage)using NASBA[J].J VirolM etho ds,2002,103(2):213-325. [14] 单松华,刘乐庭,陈家华,等.NASBA快速检测禽流感H5亚型病毒[J].中国病毒学,2005(3):74-78.[15] Gy armati P,Co n ze T,Zo hari S,et al.Simultaneo us genotyp ingof all hem agg lutinin and neuram indase subtypes of avian influenza viruses b y use of padlock p ro b es[J].J Clin M icrobiol,2008,46(5):1747-1751.[16] Li J,Chen S,Ev ans D H.Ty ping and sub typing influenza virususing DNA microarrays and multiple ex rev erse t ranscriptasePCR[J].J Clin M icro biol,2001,39(2):696-704.[17] Kessler N,Ferraris O,Palmer K,et e o f t he DNA Flo w-Th ru C hip,a th ree-dim ensional biochip,fo r ty ping and subtyping of influenza virus[J].J Clin Micro bio l,2004,(42):2173-2185.[18] Townsend M B,Dawson E D,M ehlm ann M,et al.Experimentalev aluation o f the Flu Chip diagno stic micro array fo r influ enza v irus surv eillance[J].J Clin M icrobio l,2006,(44):2863-2871. [19] 王秀荣,邓国华,于康震,等.在DNA芯片平台上探测AIV不同亚型cDNA[J].中国农业科学,2005(2):184-188.[20] Daw so n E D,Mo ore C L,Dank bar D M,et al.Identification o f A/H5N1influenza virus usin g a single g en diagnostic microarray[J].Analytical Chem istry,2007,79(1):378~384.[21] 徐秋林.流感病毒寡核苷酸检测芯片的初步研究[D].广东广州:第一军医大学,2005:68-72.[22] Sengupta S,On o dera K,Lai A,et al.M olecular detection an did en tificatio n of influenza viruses b y oligo n ucleo tide microarray hybridizatio n[J].J Clin M icrobio l,2003,(41):4542-4550. [23] 刘毅新,刘仲明,王弘,等.用于禽流感H9亚型检验的牙点免疫蛋白芯片的研制[J].中国卫生检验杂志,2007,17(2):217-219.[24] 黄庚明,辛朝安.PCR制备地高辛标记的探针检测禽流感病毒核酸[J].中国兽医杂志,2001,(12):3-7.康养殖业生产是一项系统工程,任何一项措施的作用效果,都会在时空上受制于其他要素因子的影响。