分子标记遗传图谱构建方法---完整

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分子标记辅助育种技术

分子标记辅助育种技术

分子标记辅助育种技术分子标记辅助育种技术第一节分子标记的类型和作用原理遗传标记是指可以明确反映遗传多态性的生物特征。

在经典遗传学中,遗传多态性是指等位基因的变异。

在现代遗传学中,遗传多态性是指基因组中任何座位上的相对差异。

在遗传学研究中,遗传标记主要应用于连锁分析、基因定位、遗传作图及基因转移等。

在作物育种中,通常将与育种目标性状紧密连锁的遗传标记用来对目标性状进行追踪选择。

在现代分子育种研究中,遗传标记主要用来进行基因定位和辅助选择。

1、形态标记形态标记是指那些能够明确显示遗传多态性的外观性状。

如、株高、穗型、粒色等的相对差异。

形态标记数量少,可鉴别标记基因有限,难以建立饱和的遗传图谱。

有些形态标记受环境的影响,使之在育种的应用中受到限制。

2、细胞学标记细胞学标记是指能够明确显示遗传多态性的细胞学特征。

如染色体的结构特征和数量特征。

核型:染色体的长度、着丝粒位置、随体有无。

可以反映染色体的缺失、重复、倒位、易位。

染色体结构特征带型:染色体经特殊染色显带后,带的颜色深浅、宽窄和位置顺序,可以反映染色体上常染色质和异染色质的分布差异。

染色体数量特征—是指细胞中染色体数目的多少。

染色体数量上的遗传多态性包括整倍体和非整倍体变异。

细胞学标记优点:克服了形态标记易受环境影响的缺点。

缺点:(1)培养这种标记材料需花费大量的人力物力;(2)有些物种对对染色体结构和数目变异的耐受性差,难以获得相应的标记材料;(3)这种标记常常伴有对生物有害的表型效应;(4)观察鉴定比较困难。

3、蛋白质标记用作遗传标记的蛋白质分为酶蛋白质和非酶蛋白质两种。

非酶蛋白质:用种子储藏蛋白质经一维或二维聚丙烯酰胺凝胶电泳,根据显示的蛋白质谱带或点,确定其分子结构和组成的差异。

酶蛋白质:利用非变性淀粉凝胶或聚丙烯酰胺凝胶电泳及特异性染色检测,根据电泳谱带的不同来显示酶蛋白在遗传上的多态性。

蛋白质标记的不足之处:(1)每一种同工酶标记都需特殊的显色方法和技术;(2)某些酶的活性具有发育和组织特异性;(3)标记的数量有限。

第3章 分子图谱的构建总结

第3章 分子图谱的构建总结

干扰的程度用符合系数C表示。
C=实际双交换值/理论双交换值
要计算两个相距较远的基因座之间的图距时,如 果中间没有其他基因座可用,则两个基因座之间实际 发生的双交换就不能被鉴定出来。而由于双交换的结
果,会使根据重组值估计的两个基因座位间的距离估
计值偏低。因此,采用一些数学的方法矫正。
Haldane作图函数 :
Dist cM
1
Mar ker Id Name (71) RG472 RG246 K5 U10 RG532 W1 RG173 Amy1B RZ276 RG146 RG345 RG381 RZ19 RG690 RZ730
Dist cM
1-轮回亲本的纯合基因型(aa)
2-杂合体(ab) 3-非轮回亲本的纯合基因型(bb) 0-缺资料
群体的特点:
优点:
群体容易产生;
直接反映了F1代配子的分离比例,作图效率高; 适合亲缘关系较远的亲本;
缺点:
非永久性群体;
当显性时表现型和基因型鉴定都有麻烦;
对人工杂交困难的植物,不易建立大的群体,且易 出现假杂种。
的重组率。
3、图谱制作的统计学原理
(1)两点测验:对两个基因座之间的连锁关系
进行检测。
▲χ2检测标记座位是否符合孟得尔分离比例,严重异常 分离的标记一般不能用于连锁作图; ▲ 重组率是根据分离群体中重组型个体占个体总数的比 率来估算的。这种估算方法无法得到估算值的标准误,因此 无法对估算进行显著性检验。采用最大似然法估计 (maximum likelihood estimation,MLE)方法进行重组率
△排序(sequence):
通过多点分析,可以计算出在同一连锁群内不同排列 顺序下,各座位之间的距离和连锁群的总长度。

分子标记技术原理方法及应用-图文

分子标记技术原理方法及应用-图文

分子标记技术原理方法及应用-图文一、遗传标记的类型及发展遗传标记(geneticmarker):指可追踪染色体、染色体某一节段、某个基因座在家系中传递的任何一种遗传特性。

它具有两个基本特征,即可遗传性和可识别性;因此生物的任何有差异表型的基因突变型均可作为遗传标记。

包括形态学标记、细胞学标记、生化标记和分子标记四种类型。

形态学标记:主要包括肉眼可见的外部形态特征,如:矮秆、紫鞘、卷叶等;也包括色素、生理特性、生殖特性、抗病虫性等有关的一些特性。

优点:形态学标记简单直观、经济方便。

缺点:(1)数量在多数植物中是很有限的;(2)多态性较差,表现易受环境影响;(3)有一些标记与不良性状连锁;(4)形态标记的获得需要通过诱变、分离纯合的过程,周期较长细胞学标记:植物细胞染色体的变异:包括染色体核型(染色体数目、结构、随体有无、着丝粒位置等)和带型(C带、N带、G带等)的变化。

优点:能进行一些重要基因的染色体或染色体区域定位。

缺点:(1)材料需要花费较大的人力和较长时间来培育,难度很大;(2)有些变异难以用细胞学方法进行检测生化标记:主要包括同工酶和等位酶标记。

分析方法是从组织蛋白粗提物中通过电泳和组织化学染色法将酶的多种形式转变成肉眼可辩的酶谱带型。

优点:直接反映了基因产物差异,受环境影响较小。

缺点:(1)目前可使用的生化标记数量还相当有限;(2)有些酶的染色方法和电泳技术有一定难度分子标记:主要指能反映生物个体或种群间基因组中某种差异特征的DNA片段,它直接反映基因组DNA间的差异,也叫DNA标记。

(1)数量多,高多态性,信息量大(2)与生长发育无关,取材不受限制(3)能明确辨别等位基因(4)均匀分布于整个基因组(5)选择中性,不影响目标性状的表达(6)检测手段简单、快速(7)成本低廉(8)稳定,重复性好(9)共显性遗传在遗传学研究中广泛应用的DNA分子标记已经发展了很多种,一般依其所用的分子生物学技术大致可以分为三大类:第一类是以分子杂交为核心的分子标记,包括RFLP、DNA指纹技术等,这类分子标记被称为第一代分子标记;几种主要的DNA分子标记二、几种常见分子标记的原理及方法1.RFLP2.RAPD3.AFLP4.SSR5.ISSR6.SNP1.RFLP:RetrictionFragmentLengthPolymorphimbyBottein(1980)基本原理:物种的基因组DNA在限制性内切酶作用下,产生相当多的大小不等的片段,用放射性同位素标记的DNA作探针,把与被标记DNA相关的片段检测出来,从而构建出多态性图谱。

分子标记的实验原理及操作流程

分子标记的实验原理及操作流程

AFLP分子标记实验扩增片段长度多态性 Amplified fragment length polymorphism(AFLP 是在随机扩增多态性(RAPD和限制性片段长度多态性(RFLP技术上发展起来的DNA多态性检测技术,具有RFLP技术高重复性和RAPD技术简便快捷的特点,不需象RFLP 分析一样必须制备探针,且与RAPD标记一样对基因组多态性的检测不需要知道其基因组的序列特征,同时弥补了 RAPD技术重复性差的缺陷。

同其他以PCR为基础的标记技术相比,AFLP技术能同时检测到大量的位点和多态性标记。

此技术已经成功地用于遗传多样性研究,种质资源鉴定方面的研究,构建遗传图谱等。

其基本原理是:以PCR(聚合酶链式反应为基础,结合了 RFLP、RAPD的分子标记技术。

把DNA进行限制性内切酶酶切,然后选择特定的片段进行PCR扩增(在所有的限制性片段两端加上带有特定序列的’接头”用与接头互补的但3-端有几个随机选择的核苷酸的引物进行特异PCR扩增,只有那些与3-端严格配对的片段才能得到扩增,再在有高分辨力的测序胶上分开这些扩增产物,用放射性法、荧光法或银染染色法均可检测之。

一、实验材料采用青稞叶片提取总DNA实验设备1. 美国贝克曼库尔特CEQ8000毛细管电泳系统,2. 美国贝克曼库尔特台式冷冻离心机,3. 美国MJ公司PCR仪,4. 安玛西亚电泳仪等。

三、实验试剂1. 试剂:请使用高质量产品,推荐日本东洋坊TOYOBO公司的相关产品DNA提取试剂盒;EcoRI酶,Msel酶,T4连接酶试剂盒;Taq 酶,dNTP, PCR reactio n buffer;琼脂糖电泳试剂:琼脂糖,无毒GeneFinder核酸染料替代传统EB染料;超纯水(18.2M ? • cm2. 其他实验需要物品微量移液枪(一套及相应尺寸Tip头,PCR管,冰浴等。

四、实验流程1、总DNA提取使用DNA提取试剂盒提取植物基因组DNA,通过紫外分光光度计检测或用标准品跑胶检测。

实验三 分子标记连锁图的构建

实验三  分子标记连锁图的构建

遗传标记
有可以识别的标记, 有可以识别的标记,才能确定目标的方位 及彼此之间的相对位置。 及彼此之间的相对位置。 构建遗传图谱就是寻找基因组不同位置上 的特征标记。 的特征标记。 包括: 包括: 形态标记 细胞学标记 生化标记 DNA分子标记 DNA分子标记
多态性( 多态性(polymophism) )
所有的标记都必须具有 多态性! 多态性
花色:白色、 花色:白色、红色 株高:高、矮 株高: 淀粉: 淀粉:糯、非糯
形态标记
形态性状:株高、颜色、 形态性状:株高、颜色、白化症等 又称表型标记 数量少 很多突变是致死的 受环境、 受环境、生育期等因素的影响
最早建立的果蝇连锁图, 最早建立的果蝇连锁图,就是利用控制 果蝇眼睛的形状、颜色,躯体的颜色、 果蝇眼睛的形状、颜色,躯体的颜色、 翅膀的形状等形态性状作为标记, 翅膀的形状等形态性状作为标记,分析 它们连锁关系及遗传距离,绘制而成的。 它们连锁关系及遗传距离,绘制而成的。 控制性状的其实是基因, 控制性状的其实是基因,所以形态标记 实质上就是基因标记。 实质上就是基因标记。
总数
6708
交换值的计算
sh-wx sh-c
+ wx c sh + + + + c
2708 2538 626 601 113 116 4 2 6708
}亲 型
}单交换
18.29%
sh wx + sh + c + wx + + + +
}单交换
3.41%
} 双交换
0.09%
0.09%
sh wx c 总数 交换值
18.38%
3.50%

分子标记ppt课件

分子标记ppt课件
设计出各种能与SSR序列结合的PCR引物,这些引物 的3‘端或5’端加上2-4个随机核苷酸,通过PCR反应,对 两个相距较近,方向相反的重复序列之间的DNA序列进 行扩增。所扩增的inter SSR区域的多个条带通过聚丙烯 酰胺凝胶电泳或者琼脂糖凝胶电泳得以分辩,扩增带多 为显性表现。
5’锚定引物
• 分子标记
( molecular marker )
分子标记 广义的分子标记是指可遗传的、可检测的、与生物的表性性状连锁的
DNA序列或蛋白质。 狭义的分子标记只是指DNA标记。
DNA分子标记有其独特的优势: (1) 直接以DNA的形式表现,在生物体的各个组织、各个发 育阶段均可检测到,不受季节、环境限制,不存在表达与否等 问题; (2) 自然界存在许多等位变异,无需人为创造,多态性高 ; (3) 遍布整个基因组,可检测的基因座位是无限的。
一个基因组的所有碱基中一般只有大约2%的碱基来 组成编码蛋白质的基因,因此测序基因组已不再是一种创 建基因目录的有效途径。大量的实验证明,cDNA的大规 模测序才是了解基因组的先驱。
EST标记技术的原理是将mRNA反转‘端或3’端进行一步法测序,一般长度为300- 500bp,平均长度为360±120bp。所获得序列与基因数 据库已知序列比较,从而获得对生物体T标记技术也是一种相对简便和快捷鉴定大批基 因表达的技术。
M
…ACCGAATGCGC…
2 常用分子标记方法
2.1 限制性片段长度多态性标记
(Restriction Fragment Length Polymorphism,RFLP) RFLP标记是用限制性内切酶酶解具有相对性状的两个群
体的DNA,然后通过电泳和Southern杂交技术在酶切后形成的 DNA片段中发现这种不同。这种不同就是目的性状的RFLP标 记。

遗传标记基因图谱解析

遗传标记基因图谱解析
细胞杂交又称细胞融合,是将来源不同的两种细胞融合成 一个新细胞。大多数体细胞杂交是用人的细胞与小鼠、大
鼠或仓鼠的体细胞进行杂交产生杂种细胞。杂种细胞含有
双亲不同的染色体,但会在其繁殖过程中,保留啮齿类一 方的染色体而逐渐丢失人类的染色体,最后只剩一条或几 条。这种仅保留少数甚至一条人染色体的杂种细胞正是进 行基因连锁分析和基因定位的有用材料
个体表型性状组合类型 ① ② ③ ④ ⑤ ⑥ ec + + + sc cv ec sc + + + cv + sc + ec + cv 个体数量 810 828 62 88 89 103
根据这些数据和重组频率公式可计算出每两个基因之间的互换值:
62 88 ec — sc互换值= 100% 7.6% (810 828 89 103) (62 88)
( 5 )对标记基因型数据进行连锁分析, 构建标记连锁图

设计大量的已知连锁基因个体的杂交试 验; 获得的 F1 再同纯隐性个体测交计算重组 频率;


以重组频率的 1% 作为 1 个摩尔根单位 (即1cM)将基因定位在一条直线上。
杂交:♀ec++/ec++ × ♂+sccv/Y ↓ ♀ec++/+sccv ♂ec++/Y 测交:♀ec++/+sccv×♂ecsccv/Y ↓
例如我们根据试验得出如下结果:
人的 标记 基因 人的 染色 体
α β γ ε 1 2 3
A + — + + — + —
B — + — + + — —

第16章同位素示踪在植物病理学研究中的应用-精选文档

第16章同位素示踪在植物病理学研究中的应用-精选文档

在扩增时,可以掺入35S标dATP或dCT P或其它标记,经测序胶电泳(分辨500bp), 对光片暴光,可以鉴别出对比材料中有差 异的DNA片段,将其从胶上切因克隆.。 该方法较传统差异法有巨大的优势,但要使 15000种mRNA均可扩增,考虑测序胶能 显示50多个带,则需至少20个引物,进行 12×20次组合PCR,工作量很大,通过对T 1已2有M实N用.简的并试和剂提盒高。测序胶的容量 ,该法
标记配体(放射性,荧光)
体内(引入) 器官、组织显像
体外 组织孵育 显微 单细胞孵育 显微、电镜
参考文献
1) 常青,用配体结合放射性自显影定位分析过敏性哮喘豚 鼠肺M胆碱能受体的变化, 中国病理生理杂志 ,1995, 11(1):11~14
2)曾伸奎, 棉花凝集素对枯萎病的抑制作用与受体的研究, 四川大学学报,1995,32(3):328~341
7
玉米种子携带的MDMV
8
葡萄扇叶病毒
方法
作者
RIA IRMA 125I-A蛋白 ELISA ELISA ELISA ELISA ELISA
董以德 金子渔 王公金 刘常宏 陆字融 范国成 马占鸿 谷洪包
年代
1981 1986 1990 1995 1995 1999 1997 1994
§4病理学研究的相关技术
3.1检测的一般程序
1)试剂制备
培养病原菌
免疫
标记
普通
杂交瘤 标记抗原
多克隆抗体 单克隆抗体
(PcAb)
(McAb)
标记 标记抗体
2)样品制备
植物试样经匀浆或液氮冷冻研磨用缓冲液提 取,上清液用于测试。
3)测试程序
测定可采用基于饱和竞争结合的放射免疫 (RIA)或免疫放射分析。

基于SNP分子标记构建黄瓜指纹图谱

基于SNP分子标记构建黄瓜指纹图谱

基于SNP分子标记构建黄瓜指纹图谱目录一、内容概要 (3)1. 研究背景与意义 (4)2. 国内外研究进展概述 (4)3. 研究内容与方法 (5)二、材料与方法 (6)1. 材料收集与处理 (8)黄瓜品种选择 (9)样本采集与保存 (10)DNA提取与纯化 (10)2. SNP分子标记开发 (12)遗传学原理与技术路线 (13)SNPs筛选与验证 (14)分子标记数据整合 (16)3. 花纹图谱构建 (17)条形码技术与数据编码 (17)图谱构建与优化 (19)图谱验证与比较 (19)三、结果与分析 (20)1. SNP位点分布与多样性 (21)SNPs数量与分布规律 (22)遗传多样性分析 (23)物种鉴定与分类 (24)2. 花纹图谱特征提取 (25)图谱特征参数选取 (26)图谱相似性计算 (27)花纹模式识别 (28)3. 综合分析与评价 (28)不同品种间差异分析 (29)花纹图谱的稳定性与重复性评估 (30)分子标记在黄瓜指纹图谱中的应用价值 (31)四、讨论与展望 (32)1. 研究成果总结 (33)SNP分子标记在黄瓜指纹图谱构建中的优势 (34)花纹图谱在黄瓜品种鉴定中的应用前景 (35)2. 研究局限与不足 (35)技术方法的局限性 (36)数据来源的局限性 (37)3. 未来研究方向与展望 (38)深入挖掘SNP标记信息 (40)开发新型分子标记技术 (41)推广黄瓜指纹图谱在农业生产中的应用 (42)一、内容概要本文档旨在介绍基于单核苷酸多态性(SNP)分子标记构建黄瓜指纹图谱的方法和技术流程。

黄瓜指纹图谱是一种利用基因组中特定SNP位点的多态性,为黄瓜个体提供独特遗传标识的技术。

通过构建黄瓜指纹图谱,可以更有效地进行黄瓜种质资源的鉴定、评价和利用,推动黄瓜遗传育种和种业发展。

SNPID与引物的设计与筛选:根据黄瓜基因组中的SNP位点信息,设计并筛选出适用于指纹图谱构建的特异性引物。

分子标记—SNP

分子标记—SNP

技术路线图
Multiplex SNaPshot-多重单碱基延伸技 术
1. 在一个含有测序酶,四种荧光标记的ddNTP, 紧挨多 态位点5’端的不同长度延伸引物和PCR产物模板的 反应体系中,引物延伸一个碱基即终止
2. 经ABI测序仪跑胶后,根据峰的颜色可知掺入的碱基 种类,从而确定该样本的基因型
Taqman技术
1. PCR 反应时,加入一对两端有不同荧光标记的特异探针 来识别不同的等位基因(allele1和allele2),5’端为 报告荧光基团(reporter),3’端为淬灭荧光基团 (quencher)
2. PCR过程中,两个探针能与正向引物和反向引物之间的互 补序列特异退火结合。当探针以完整形式存在时,由于 能量共振转移,荧光基团只发出微弱荧光
等位基因特异性PCR (AS- PCR)
* AS- PCR 技术主要是依赖引物的设计及优化PCR 反应条件,根据基因SNP 位点设计引物,使引物 最后一个碱基与突变位点互补,使得只有完全互 补的序列才能扩增,因此只需根据PCR 产物的有 无来判定结果
* 近来研究发现错配的3’末端仍可以低于正常配对 末端的速度延伸,干扰判定结果。改进的方法是 在引物人为引入错配碱基、降低3’末端特异性碱 基不匹配的扩增产物,不影响或较小影响完全匹 配的特异性产物的生成。引入长度差异性引物和 双向等位特异PCR 是近年来常用的方法。
等位基因特异寡核苷酸 片段分析(ASO)
突变错配扩增检验 (MAMA)
SNP的应用
➢ 遗传图谱的构建
在许多物种中发现、收集与鉴定的SNPs已 经构成了庞大的序列变异数据库, 极大地促进 了遗传图谱的构建工作,使得原来冗长乏味的 事情变得轻松而有趣
用SNP标记还有助于将遗传图谱和物理图 谱进行进一步的整合

分子标记

分子标记
年国际水稻基因组测序计划在Nature 上发文,短碱基插入缺失位点(1-14bp) 的比率因不同染色体不同而不同,并且这些插入缺失位点在方向上没有偏爱性。
SNP (single nucleotide polymorphism) 标记,是同一位点的不同等位基因之间单核苷酸的差异。2005年国际水稻基因组测序计划通过比较两品种发现相应区段差异共有80,127个位点,其中SNP 频率差异因染色体不同而不同,每100bp 发生SNP 的几率从0.53%-0.78%。这为开发SNP 标记提供令人鼓舞的开端。
构建遗传图谱是研究数量性状基因定位的重要工具,而构建图谱必须有合适的标记。目前应用的遗传标记可分为形态标记、细胞学标记、同工酶标记和DNA 分子标记四类。形态标记和细胞学标记曾在上世纪七十、八十年代大量采用,但这些标记数目少,对环境的影响较为敏感,并且人为因素对形态标记的界定影响较大,从而限制了其在植物遗传研究中的应用。同工酶是一种共显性标记,相对表型标记而言数量较多,受环境影响较小。但不同的同工酶系统常常要求特定的检测程序,有些同工酶具有组织和发育阶段的特异性,而且在大多数的育种群体中一般只能找到10-20个具有多态性的同工酶位点,因而限制了该方法的应用。而基于DNA 水平上多态性的分子标记,能直接反映DNA序列水平的差异,覆盖整个基因组,数量几乎无限,而且其遗传相对稳定,不受环境和发育阶段的影响,因此自出现之日起就得到广泛应用和迅相补充,通过各种分子标记的结合应用可提高遗传图谱标记密度。
自PCR 技术问世后,便以其简单、快捷、高效等特点,迅速成为分子生物学研究的重要工具,一些基于PCR 的分子标记也应运而生。
SSR (simple sequence repeat) 标记,也称微卫星DNA (microsatellite DNA)标记,它是一类由1-6 个碱基组成的基序(motif) 串联重复而形成的DNA 序列,如(AT)n、(GTT)n、(AATT)n 等各种形式,广泛存在于基因组的不同位置,长度一般在200bp 以下( Morgant 和Olivieri, 1993)。其两端的侧翼序列多是相对保守的单拷贝序列,可以对它们设计一对特异引物,扩增每个位点的微卫星DNA。SSR 标记是其在数量上的变异和扩增产物在长度上的变化导致产生多态性,它覆盖整个基因组,数量丰富,揭示的多态性高,呈共显性。同时SSR 显带技术用银染代替了传统的放射性技术,从而使之更加快速、安全。2002年,Cornell 大学McCouch 等开发出2240 对新的水稻SSR 分子标记。2005年国际水稻基因组测序计划在Nature 上发表文章指出,水稻基因组总共含有18,828个SSR 位点,平均每Mb有51个SSR 位点。其中第三染色体的SSR 位点密度最高,第四染色体SSR位点密度最低。

植物的遗传学研究实验

植物的遗传学研究实验

05
突变体库建立与应用
突变体来源及筛选策略
自然突变
利用自然界中存在的突变体,通过筛选或诱变育种获得具有研究 价值的突变体。
人工诱变
利用物理(如射线、激光等)或化学(如诱变剂等)方法诱导植 物产生突变,创建突变体库。
T-DNA插入突变
利用农杆菌转化法将T-DNA插入植物基因组,导致基因失活或 表达异常,产生突变体。
生理性状
指植物生理生化特性的性状, 如抗旱性、抗病性等。
遗传规律探究
分离定律
在杂合子细胞中,位于一对同源染色体上的等位基因,具有一定的独立性;在减数分裂形 成配子的过程中,等位基因会随同源染色体的分开而分离,分别进入两个配子中,独立地 随配子遗传给后代。
自由组合定律
控制不同性状的遗传因子的分离和组合是互不干扰的;在形成配子时,决定同一性状的成 对的遗传因子彼此分离,决定不同性状的遗传因子自由组合。
随着生物技术的不断发展,未来可以 期待更多新技术方法应用于植物遗传 学研究,如单细胞测序技术、基因编 辑技术等,为揭示植物的遗传奥秘提 供有力工具。
03
加强跨学科合作
植物遗传学研究涉及多个学科领域的 知识和技术,未来应加强与其他相关 学科的交叉融合和合作,共同推动植 物遗传学研究的深入发展。
THANKS
稳定性评估
对转化植株进行多代自交或回交,观 察其表型性状和遗传稳定性,评估外 源基因在植物基因组中的稳定性和表 达情况。
07
实验结果总结与展望
实验结果汇总分析
遗传变异研究
通过对不同植物种群的遗传物质进行分析, 揭示了种群间的遗传变异程度和分布模式。
基因功能鉴定
利用遗传学手段,成功鉴定了多个与植物生长发育 、抗逆性相关的基因,并解析了它们的生物学功能 。

分子标记遗传图谱构建方法---完整

分子标记遗传图谱构建方法---完整

分子标记遗传图谱的构建检测出的每个分子标记反映的都是相应染色体座位上的遗传多态性状态。

为了有效地分析利用分子标记所提供的遗传信息,人们希望知道不同分子标记在染色体上的相对位置或排列情况,也就是要构建分子标记的遗传连锁图谱。

利用DNA标记构建遗传连锁图谱在原理上与传统遗传图谱的构建是一样的。

其基本步骤包括:选择适合作图的DNA标记;根据遗传材料之间的DNA多态性,选择用于建立作图群体的亲本组合;建立具有大量DNA标记处于分离状态的分离群体或衍生系;测定作图群体中不同个体或株系的标记基因型;对标记基因型数据进行连锁分析,构建标记连锁图。

至今为止,已构建了许多植物的高密度分子标记连锁图。

本章侧重介绍利用DNA标记构建分子遗传连锁图谱的原理与方法。

第一节作图群体的建立要构建DNA标记连锁图谱,必须建立作图群体。

建立作图群体需要考虑的重要因素包括亲本的选配、分离群体类型的选择及群体大小的确定等。

一、亲本的选配亲本的选择直接影响到构建连锁图谱的难易程度及所建图谱的适用范围。

一般应从四个方面对亲本进行选择,首先要考虑亲本间的DNA多态性。

亲本之间的DNA多态性与其亲缘关系有着密切关系,这种亲缘关系可用地理的、形态的或同工酶多态性作为选择标准。

一般而言,异交作物的多态性高,自交作物的多态性低。

例如,玉米的多态性极好,一般自交系间配制的群体就可成为理想的RFLP作图群体;番茄的多态性较差,因而只能选用不同种间的后代构建作图群体;水稻的多态性居中,美国康乃尔大学S.D.Tanksley实验室1988年发表的RFLP连锁图谱是以籼稻和爪哇稻之间的杂交组合为基础构建的(McCouch et al. 1988)。

在作物育种实践中,育种家常将野生种的优良性状转育到栽培种中,这种亲源关系较远的杂交转育,DNA多态性非常丰富。

第二,选择亲本时应尽量选用纯度高的材料,并进一步通过自交进行纯化。

第三,要考虑杂交后代的可育性。

亲本间的差异过大,杂种染色体之间的配对和重组会受到抑制,导致连锁座位间的重组率偏低,并导致严重的偏分离现象,降低所建图谱的可信度和适用范围;严重的还会降低杂种后代的结实率,甚至导致不育,影响分离群体的构建。

兰花分子图谱的构建

兰花分子图谱的构建

兰花分子图谱的构建兰花(Cymbidium)具有很高的观赏价值、经济价值和文化价值,目前其新品种的选育多采用杂交育种方法,育种周期长,效率低。

分子标记辅助选择育种能有效缩短育种周期,提高育种效率和效果,但迄今兰花上未见到有关分子图谱构建和分子标记辅助选择的研究报道。

本研究采用‘玉女兰’(C.‘Yunv’)和‘黄叶红花墨兰’(C.sinense‘Huangyehongmo’)杂交构建F1作图群体,通过转录组测序开发SSR标记,并利用这些标记构建兰花分子遗传图谱。

主要研究结果如下:1.作图群体的构建。

对‘玉女兰’ב黄叶红花墨兰’杂交种子进行离体培养,共获得513个株系。

对各株系的组培快繁特性和试管苗性状进行观测,结果表明,各株系在中间繁殖体增殖、分化能力以及芽苗生长速度上差异明显,试管苗形态多样,有松散、较紧凑和紧凑等各种类型,叶片长和叶片宽差异明显,说明杂种后代群体具有遗传多样性。

从该群体中随机选取94个后代组成作图群体,该群体在组培快繁特性、株型和叶片性状上具有多样性,各类型的比例与原杂种后代群体相近。

2.兰花转录组测序和SSR标记开发。

对‘企剑白墨墨兰’(C.sinense‘Qijianbaimo’)的营养器官和生殖器官进行转录组测序,共获得51764个unigenes,利用MISA软件对1 kb以上的unigenes 进行SSR位点的筛选,得到4419个SSR位点,出现频率为8.54%。

墨兰转录组中的SSR类型丰富,从二核苷酸到六核苷酸重复基序均有分布,主要集中在二和三核苷酸,分别占57.00%和33.76%,AG/CT核苷酸基序占总核苷酸基序数的比例最高,为3.73%。

利用Primer Premier 5.0进行引物设计,从4419对SSR引物中筛选出了318对SSR引物,从大花蕙兰转录组中获得185对SSR引物。

以‘玉女兰’和‘黄叶红花墨兰’为材料进行通用性和多态性引物筛选,318对墨兰SSR引物共有235对引物在双亲中扩增出清晰的条带,其有效扩增率为73.89%,61对引物具有多态性,占可扩增引物的19.18%;185对大花蕙兰SSR引物中有143对引物扩增出清晰的条带,有效扩增率为77.29%,17对引物扩增出多态性条带,占可扩增引物的9.19%。

第3章-分子图谱的构建(1)

第3章-分子图谱的构建(1)

2、基因重组和连锁理论
■ 细胞减数分裂中,非同源染色体上的基因相互独立,
自由组合;同源染色体上的基因产生交换和重组,交换的频 率随基因间的距离的增加而增大。
■ 位于同一染色体上的基因在遗传中一般倾向于维系在
一起,表现为连锁(linkage);它们之间的重组是通过一 对同源染色体的两个非姊妹染色单体之间的交换来实现的。
■ 重组型配子占总配子的比例称为重组率 (r)
重组型配子数 重组率 (%) = ———————— x 100
配子总数
重组率的高低取决于交换的频率,而两对基因之间的 交换频率取决于它们之间的直线距离。
重组率可用来表示基因间的遗传图距,图距单位用厘 摩(centi-Mogan,cM)表示,1 cM的大小大致符合1% 的重组率。
第3章 分子图谱的构建
一、作图群体的发展 二、图谱构建的基本理论 三、数据处理 四、图谱的完善 五、比较基因作图
遗传作图 (Genetic mapping) 即遗传图谱的构 建。它是利用遗传学的原理和方法,构建能反映 基因组中遗传标记之间遗传关系的图谱。
传统遗传图中的遗传标记主要是形态学标记。 形态学标记的数量不多,但利用形态学标记作图 的时间很长,在二十世纪的前八十年主要是利用 形态学标记作图。
多点测验通常也采用似然比检验法。对于 m!/2种可能的基因排列顺序,都可以得到一个 各自最大的对数似然值(log-likelihood)。比 较这些可能的排列,对数似然值最大者即为最 佳的顺序。
(3)交换干扰与作图函数
随着两基因间距离的增大,染色体上两基因座位之 间便有可能在两个地方同时发生遗传物质的交换,即双 交换。
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分子标记遗传图谱的构建检测出的每个分子标记反映的都是相应染色体座位上的遗传多态性状态。

为了有效地分析利用分子标记所提供的遗传信息,人们希望知道不同分子标记在染色体上的相对位置或排列情况,也就是要构建分子标记的遗传连锁图谱。

利用DNA标记构建遗传连锁图谱在原理上与传统遗传图谱的构建是一样的。

其基本步骤包括:选择适合作图的DNA标记;根据遗传材料之间的DNA多态性,选择用于建立作图群体的亲本组合;建立具有大量DNA标记处于分离状态的分离群体或衍生系;测定作图群体中不同个体或株系的标记基因型;对标记基因型数据进行连锁分析,构建标记连锁图。

至今为止,已构建了许多植物的高密度分子标记连锁图。

本章侧重介绍利用DNA标记构建分子遗传连锁图谱的原理与方法。

第一节作图群体的建立要构建DNA标记连锁图谱,必须建立作图群体。

建立作图群体需要考虑的重要因素包括亲本的选配、分离群体类型的选择及群体大小的确定等。

一、亲本的选配亲本的选择直接影响到构建连锁图谱的难易程度及所建图谱的适用范围。

一般应从四个方面对亲本进行选择,首先要考虑亲本间的DNA多态性。

亲本之间的DNA多态性与其亲缘关系有着密切关系,这种亲缘关系可用地理的、形态的或同工酶多态性作为选择标准。

一般而言,异交作物的多态性高,自交作物的多态性低。

例如,玉米的多态性极好,一般自交系间配制的群体就可成为理想的RFLP作图群体;番茄的多态性较差,因而只能选用不同种间的后代构建作图群体;水稻的多态性居中,美国康乃尔大学S.D.Tanksley实验室1988年发表的RFLP连锁图谱是以籼稻和爪哇稻之间的杂交组合为基础构建的(McCouch et al. 1988)。

在作物育种实践中,育种家常将野生种的优良性状转育到栽培种中,这种亲源关系较远的杂交转育,DNA多态性非常丰富。

第二,选择亲本时应尽量选用纯度高的材料,并进一步通过自交进行纯化。

第三,要考虑杂交后代的可育性。

亲本间的差异过大,杂种染色体之间的配对和重组会受到抑制,导致连锁座位间的重组率偏低,并导致严重的偏分离现象,降低所建图谱的可信度和适用范围;严重的还会降低杂种后代的结实率,甚至导致不育,影响分离群体的构建。

由于各种原因,仅用一对亲本的分离群体建立的遗传图谱往往不能完全满足基因组研究和各种育种目标的要求,应选用几个不同的亲本组合,分别进行连锁作图,以达到相互弥补的目的。

第四,选配亲本时还应对亲本及其F1杂种进行细胞学鉴定。

若双亲间存在相互易位,或多倍体材料(如小麦)存在单体或部分染色体缺失等问题,那末其后代就不宜用来构建连锁图谱。

二、分离群体类型的选择根据其遗传稳定性可将分离群体分成两大类:一类称为暂时性分离群体,如F2、F3、F4、BC、三交群体等,这类群体中分离单位是个体,一经自交或近交其遗传组成就会发生变化,无法永久使用。

另一类称为永久性分离群体,如RI、DH群体等,这类群体中分离单位是株系,不同株系之间存在基因型的差异,而株系内个体间的基因型是相同且纯合的,是自交不分离的。

这类群体可通过自交或近交繁殖后代,而不会改变群体的遗传组成,可以永久使用。

构建DNA连锁图谱可以选用不同类型的分离群体,它们各有其优缺点,因此应结合具体情况选用。

(一)F2代群体F2群体是常用的作图群体,迄今大多数植物的DNA标记连锁图谱都是用F2群体构建的。

不论是自花授粉植物,还是异花授粉植物,建立F2群体都是容易的,这是使用F2群体进行遗传作图的最大优点。

但F2群体的一个不足之处是存在杂合基因型。

对于显性标记,将无法识别显性纯合基因型和杂合基因型。

由于这种基因型信息简并现象的存在,会降低作图的精度。

而为了提高精度,减小误差,则必须使用较大的群体,从而会增加DNA标记分析的费用。

F2群体的另一个缺点是不易长期保存,有性繁殖一代后,群体的遗传结构就会发生变化。

为了延长F2群体的使用时间,一种方法是对其进行无性繁殖,如进行组织培养扩繁。

但这种方法不是所有的植物都适用,且耗资费工。

另一种方法是使用F2单株的衍生系(F3株系或F4家系)。

将衍生系内多个单株混合提取DNA,则能代表原F2单株的DNA组成。

为了保证这种代表性的真实可靠,衍生系中选取的单株必须是随机的,且数量要足够多。

这种方法对于那些繁殖系数较大的自花授粉植物(如水稻、小麦等)特别适用。

(二)BC1群体BC1(回交一代)也是一种常用的作图群体。

BC1群体中每一分离的基因座只有两种基因型,它直接反映了F1代配子的分离比例,因而BC1群体的作图效率最高,这是它优于F2群体的地方。

BC1群体还有一个用途,就是可以用来检验雌、雄配子在基因间的重组率上是否存在差异。

其方法是比较正、反回交群体中基因的重组率是否不同。

例如正回交群体为(A×B)×A,反回交群体为A×(A×B),则前者反映的是雌配子中的重组率,后者反映的是雄配子中的重组率。

虽然BC1群体是一种很好的作图群体,但它也与F2群体一样,存在不能长期保存的问题。

可以用F2中使用的类似方法来延长BC1群体的使用时间。

另外,对于一些人工杂交比较困难的植物,BC1群体也不太合适,因为一是难以建立较大的BC1群体,二是容易出现假杂种,造成作图的误差。

顺便一提,对于一些自交不亲和的材料,可以使用三交群体,即(A×B)×C。

由于存在自交不亲和性,这样的三交群体中不存在假杂种现象。

(三)RI群体RI(重组自交系)群体是杂种后代经过多代自交而产生的一种作图群体,通常从F2代开始,采用单粒传的方法来建立。

由于自交的作用是使基因型纯合化,因此,RI群体中每个株系都是纯合的,因而RI群体是一种可以长期使用的永久性分离群体。

理论上,建立一个无限大的RI群体,必须自交无穷多代才能达到完全纯合;建立一个有限大小的RI群体则只需自交有限代。

然而,即使是建立一个通常使用的包含100~200个株系的RI群体,要达到完全纯合,所需的自交代数也是相当多的。

据吴为人等(1997)从理论上推算,对一个拥有10条染色体的植物种,要建立完全纯合的RI作图群体,至少需要自交15代。

可见,建立RI群体是非常费时的。

在实际研究中,人们往往无法花费那么多时间来建立一个真正的RI群体,所以常常使用自交6~7代的“准”RI群体。

从理论上推算,自交6代后,单个基因座的杂合率只有大约3%,已基本接近纯合。

然而,由于构建连锁图谱时涉及到大量的DNA标记座位,因而虽然多数标记座位已达到或接近完全纯合,但仍有一些标记座位存在较高的杂合率,有的高达20%以上(李维明等2000)。

尽管如此,实践证明,利用这样的“准”RI群体来构建分子标记连锁图谱仍是可行的。

在RI群体中,每一分离座位上只存在两种基因型,且比例为1:1。

从这点看,RI群体的遗传结构与BC1相似,也反映了F1配子的分离比例。

但值得注意的是,当分析RI群体中两个标记座位之间的连锁关系时,算得的重组率比例并不等于F1配子中的重组率,这是因为在建立RI群体的过程中,两标记座位间每一代都会发生重组,所以RI群体中得到的重组率比例是多代重组频率的积累。

不过,从理论上可以推算出,RI群体中的重组比例(R)与F1配子中的重组率(r)之间的关系为:R=2r/(1+2r)。

因此,用RI群体仍然可以估计重组率,亦即RI群体仍然可以用于遗传作图。

RI群体的优点是可以长期使用,可以进行重复试验。

因此它除了可用于构建分子标记连锁图外,特别适合于数量性状基因座(QTL)的定位研究。

但是,考虑到构建RI群体要花费很长时间,如果仅是为了构建分子标记连锁图的话,选用RI群体是不明智的。

另外,异花授粉植物由于存在自交衰退和不结实现象,建立RI群体也比较困难。

(四)DH群体高等植物的单倍体(Haploid)是含有配子染色体数的个体。

单倍体经过染色体加倍形成的二倍体称为加倍单倍体或双单倍体(DH)。

DH群体产生的途径很多,亦因物种不同而异,最常见的方法是通过花药培养,即取F1植株的花药进行离体培养,诱导产生单倍体植株,然后对染色体进行加倍产生DH植株。

DH植株是纯合的,自交后即产生纯系,因此DH群体可以稳定繁殖,长期使用,是一种永久性群体。

DH群体的遗传结构直接反映了F1配子中基因的分离和重组,因此DH群体与BC1群体一样,作图效率是最高的。

另外,由于DH群体跟RI群体一样,可以反复使用,重复试验,因此也特别适合于QTL定位的研究。

DH群体直接从F1花粉经培养产生,因而建立DH群体所需时间不多。

但是,产生DH 植株有赖于花培技术。

有些植物的花药培养非常困难,就无法通过花培来建立DH群体。

另外,植物的花培能力跟基因型关系较大,因而花培过程会对不同基因型的花粉产生选择效应,从而破坏DH群体的遗传结构,造成较严重的偏分离现象,这会影响遗传作图的准确性。

因此,如果是以构建分子标记连锁图为主要目的的话,DH群体不是一种理想的作图群体。

三、群体大小的确定遗传图谱的分辨率和精度,很大程度上取决于群体大小。

群体越大,则作图精度越高。

但群体太大,不仅增大实验工作量,而且增加费用。

因此确定合适的群体大小是十分必要的。

合适群体大小的确定与作图的内容有关。

大量的作图实践表明,构建DNA标记连锁图谱所需的群体远比构建形态性状特别是数量性状的遗传图谱要小,大部分已发表的分子标记连锁图谱所用的分离群体一般都不足100个单株或家系。

而如果用这样大小的群体去定位那些控制农艺性状尤其是数量性状的基因,就会产生很大的试验误差。

从作图效率考虑,作图群体所需样本容量的大小取决于以下两个方面:一是从随机分离结果可以辨别的最大图距,二是两个标记间可以检测到重组的最小图距。

因此,作图群体的大小可根据研究的目标来确定。

作图群体越大,则可以分辨的最小图距就越小,而可以确定的最大图距也越大。

如果建图的目的是用于基因组的序列分析或基因分离等工作,则需用较大的群体,以保证所建连锁图谱的精确性。

在实际工作中,构建分子标记骨架连锁图可基于大群体中的一个随机小群体(如150个单株或家系),当需要精细地研究某个连锁区域时,再有针对性地在骨架连锁图的基础上扩大群体。

这种大小群体相结合的方法,既可达到研究的目的,又可减轻工作量。

作图群体大小还取决于所用群体的类型。

如常用的F2和BC1两种群体,前者所需的群体就必须大些。

这是因为,F2群体中存在更多种类的基因型,而为了保证每种基因型都有可能出现,就必须有较大的群体。

一般而言,F2群体的大小必须比BC1群体大约大一倍,才能达到与BC1相当的作图精度。

所以说,BC1的作图效率比F2高得多。

在分子标记连锁图的构建中,DH群体的作图效率在统计上与BC1相当,而RI群体则稍差些。

总的说来,在分子标记连锁图的构建方面,为了达到彼此相当的作图精度,所需的群体大小的顺序为F2>RI>BC1和DH。

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