木薯MeASR基因克隆及表达分析

合集下载

木薯MePPD3基因的克隆及功能分析

木薯MePPD3基因的克隆及功能分析

木薯MePPD3基因的克隆及功能分析贾素行;朱寿松;符仁稳;李春霞;陈银华【期刊名称】《热带生物学报》【年(卷),期】2024(15)1【摘要】为了探究PsbP蛋白是否在木薯(Manihot esculenta)抗病中发挥功能,以木薯‘华南8号’总RNA为模板,通过RT-PCR扩增MePPD3基因(Phytozome 数据库编号:Manes.05G127800)。

序列分析结果显示,MePPD3基因全长807 bp,编码268个氨基酸,在氨基酸序列第106~266位存在PsbP结构域,推测其为psbP 蛋白。

蛋白多序列比对、进化树和保守结构域分析表明,木薯MePPD3蛋白与巴西橡胶(Hevea brasiliensis)中PsbP家族蛋白的同源性最高,同源率高达99%。

亚细胞定位显示,MePPD3蛋白定位在叶绿体。

qRT-PCR结果显示,MePPD3基因在木薯不同组织中的表达量具有较大差异,在叶片特别是成熟叶片中表达量最高;此外,该基因表达量受到菜豆黄单胞菌木薯萎蔫致病变种(Xanthomonas phaseolipv.manihotis,Xpm)诱导后显著上升。

利用VIGS技术沉默MePPD3基因,qRT-PCR结果表明,MePPD3基因沉默成功,其表达量显著下降;Xpm侵染植株后,沉默植株pCsCMV-MePPD3叶片的病斑面积显著小于野生型植株,故推测MePPD3可能负调控木薯对细菌性枯萎病的抗病性。

【总页数】9页(P10-18)【作者】贾素行;朱寿松;符仁稳;李春霞;陈银华【作者单位】海南大学热带作物学院【正文语种】中文【中图分类】S533【相关文献】1.一个预测的木薯衰老相关基因的获得及其功能分析2.木薯一个假定的NBS类抗病基因的获得及其功能分析3.木薯糖转运蛋白MeSWEET18的克隆与功能分析4.类黄酮合成关键基因MeF3H在木薯块根采后腐烂中的功能分析5.百合萜烯合成相关基因LiGGPPS大小亚基基因的克隆、表达及功能分析因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

木薯MeNRT2.5基因的克隆及表达分析

木薯MeNRT2.5基因的克隆及表达分析

收稿日期:2018-03-16㊀㊀㊀㊀修回日期:2019-03-19基金项目:国家自然科学基金(31660253)ꎻ海南大学科研团队项目(hdkytg201706)ꎻ海南省重大科技计划项目(HNGDhs201502)ꎻ海南大学科研启动项目(KYQD(ZR)1845)作者简介:任宁(1993-)ꎬ女ꎬ海南大学热带农林学院2016级硕士研究生.E ̄mail:renning_hu@163.com通信作者:周扬(1988-)ꎬ男ꎬ博士ꎬ讲师.研究方向:植物抗逆分子生物学.E ̄mail:zhouyang@hainanu.edu.cn第10卷第2期热带生物学报Vol.10No.22019年6月JOURNALOFTROPICALBIOLOGYJun 2019㊀㊀文章编号:1674-7054(2019)02-0111-08木薯MeNRT2.5基因的克隆及表达分析任㊀宁ꎬ陈秀珍ꎬ夏幽泉ꎬ白雪杨ꎬ江行玉ꎬ周㊀扬(海南大学热带农林学院/海南省热带生物资源可持续利用重点实验室ꎬ海口570228)摘㊀要:木薯具有高产㊁耐旱㊁耐贫瘠等特点ꎬ为了解其耐贫瘠的作用机理ꎬ提高木薯在贫瘠土壤中对氮素的利用率ꎬ以30d龄的 华南8号 组培苗为实验材料ꎬ采用同源克隆技术获得1个高亲和性硝酸根转运蛋白基因NRT2ꎮ生物信息学分析结果表明ꎬ该基因开放阅读框全长1479bpꎬ编码492个氨基酸ꎬ命名为MeN ̄RT2.5ꎮMeNRT2.5蛋白有10个跨膜区域ꎬ与橡胶树㊁油桐树㊁可可树等物种的NRT2.5蛋白具有较高的同源性ꎬ其氨基酸序列相似性分别为94%ꎬ89.84%ꎬ87.40%ꎮ半质量RT ̄PCR结果表明ꎬMeNRT2.5基因在根㊁茎㊁叶㊁花等各个器官均有表达ꎬ在成熟木薯植株的根中和组培苗的叶中表达量较高ꎮ实时荧光定量RT ̄PCR分析表明ꎬMeNRT2.5在低浓度NO3-(0.3mmol L-1)处理后ꎬ其在根中的表达量在6h时达到峰值ꎻ高浓度NO3-(3mmol L-1)处理后ꎬ其表达量在根茎叶中均没有明显变化ꎬ即该基因的表达被高浓度NO3-所抑制ꎮ该研究结果为进一步分析MeNRT2.5在木薯中的功能验证奠定理论基础ꎮ关键词:木薯ꎻ高亲和性硝酸根转运蛋白ꎻ基因克隆ꎻ表达分析中图分类号:Q786㊀㊀㊀文献标志码:A㊀㊀㊀DOI:10.15886/j.cnki.rdswxb.2019.02.003木薯(ManihotesculentaCrantz)原产于美洲热带ꎬ是世界第六大粮食作物(小麦㊁水稻㊁玉米㊁马铃薯㊁大麦)ꎬ其具有适应性强㊁耐旱㊁耐贫瘠等特点ꎬ但要获得高产还需要施加一定的氮肥[1]ꎮ氮是构成生物体的大量元素之一ꎬ在生物体的物质和能量代谢活动中发挥重要作用[2]ꎮ在农业种植中ꎬ农民为获得高产ꎬ常常施加大量氮肥ꎬ国内平均氮利用率只有30%~40%[3]ꎮ过量的氮肥随地表径流引起农田渗漏ꎬ造成水体环境和农业面源污染[4]ꎮ而大多数植物的主要氮源是硝酸盐[5]ꎮ因此ꎬ研究木薯对NO3-的吸收转运㊁积累机制ꎬ对于提高木薯氮利用率ꎬ改善生态环境ꎬ保证食品安全和人口粮食问题具有重要的理论和实际意义ꎮ在高等植物中已发现2种硝酸盐转运系统:当外界NO3-浓度大于1mmol L-1时ꎬ采用低亲和硝酸盐转运系统(low ̄affinitytransportsystemꎬLATS)吸收NO3-ꎻ当外界NO3-浓度低于1mmol L-1时ꎬ则采用高亲和硝酸盐转运系统(high ̄affinitytransportsystemꎬHATS)吸收NO3-[6-8]ꎮ根系中的NO3-吸收转运是由硝酸根转运蛋白NRT实现的[9]ꎮ两种系统对应的NO3-转运蛋白家族分别为低亲和性NO3-转运蛋白NRT1和高亲和性NO3-转运蛋白NRT2[10-11]ꎮNRT2属于硝酸盐-亚硝酸盐转运体家族(Nitrate ̄nitrite ̄porterꎬNNP)ꎬ该家族属于MFS(MajorfacilitatorsuperfamilyꎬMFS)超家族成员之一[12]ꎮNRT2基因一般编码450~600个氨基酸ꎬ具有12个跨膜结构域ꎬ这些跨膜区分为2组ꎬ每组6个跨膜区ꎬ中间由1个较大的亲水环连接[13]ꎮ目前关于NRT2基因的研究主要集中于模式植物拟南芥和粮食作物中ꎬ最早分离获得的植物NRT2基因是大麦HvNRT2.1和HvNRT2.2[14]ꎮ之后ꎬ又从水稻中分离出4个NRT2基因[15-17]ꎬ拟南芥中分离到7个NRT2[18]ꎬ玉米[19]㊁大豆[20]和小麦[21]中也都克隆到NRT2基因ꎮ211热带生物学报㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀2019年㊀AtNRT2.5基因主要在叶脉以及根毛区细胞表达[22]ꎮTodd等人发现ꎬ拟南芥AtNRT2.5可能与氮磷的相互作用有关[23]ꎮ冯素花[24]等研究表明ꎬ茶树NRT2.5基因在茶树不同组织中均有表达ꎬ在嫩芽和茎中的表达量较低ꎬ在成熟叶和根中表达量较高ꎮ平邑甜茶MhNRT2.5主要在叶片表达ꎬ且受NO3-的诱导[25]ꎮ水稻的OsNRT2.1ꎬOsNRT2.2和OsNRT2.4基因都较明显地受低浓度NO3-诱导[26-28]ꎮ胡春吉等人发现ꎬ木薯MeNRT2.1基因在根中特异性表达ꎬ且原生质体瞬时表达发现MeNRT2.1蛋白定位在细胞膜上[29]ꎮ除此之外ꎬ关于木薯的硝酸根转运蛋白NRT2基因家族的研究尚未报道ꎮ从木薯中克隆得到NRT2.5基因全长序列ꎬ并对其核苷酸序列和组织表达情况进行分析ꎬ为该基因的进一步应用和木薯吸收转运NO3-机制的深入研究提供理论依据ꎮ1㊀材料与方法1.1㊀材料及处理㊀选用2年生木薯成熟植株的根㊁茎㊁大叶㊁小叶㊁花㊁块根和1月龄木薯组培苗的根㊁茎㊁叶为实验材料ꎮ选择在培养箱培养(光ʒ暗=16hʒ8hꎬ光强300μmol m-2 s-1ꎬ温度28ħꎬ相对湿度60%)30d后生长状态基本一致的 华南8号 木薯组培苗ꎬ并将组培苗放在不含氮源的阿夫道宁[30]培养液中预培养5dꎬ每天更换培养液ꎬ根部遮光通氧以防根部腐烂ꎬ促使木薯组培苗植株体内的硝酸根消耗ꎮ将用阿夫道宁培养液预培养后的木薯组培苗转到浓度分别为0.3mmol L-1和3mmol L-1的KNO3培养液中培养ꎬ分别在0ꎬ3ꎬ6ꎬ9ꎬ12ꎬ24h各时间点各取3株木薯苗的根㊁茎㊁叶混合ꎬ用滤纸吸干水分ꎬ迅速置于液氮中ꎬ-80ħ冰箱存放ꎬ用于提取RNAꎮ1.2㊀菌种㊁载体和试剂㊀大肠杆菌感受态(E.coli)DH5α购自全式金(TransGenBiotechꎬCD ̄201 ̄01)ꎻpMD19 ̄Tvector(TaKaRaꎬCode:6013)㊁DNA聚合酶2ˑPCRSolutionPrimeSTARHS(Premix)(TaKaRaꎬR040A)和反转录试剂盒[PrimeScriptRTreagentkitwithgDNAEraser(PerfectRealTime)ꎬDRR047A]购自宝生物工程(大连)有限公司ꎻ普通GreenTaqMix酶(P131 ̄AA)购自Vazyme公司ꎻ多糖多酚植物总RNA提取试剂盒(RNAprepPurePlantKitꎬDP441)购自天根生化有限责任公司ꎻ小提质粒PlasmidDNAMini ̄prepKit(CatRTP2102 ̄02)购自北京中科瑞泰生物科技公司ꎻPCR纯化试剂盒Cycle ̄PureKit(D6492 ̄01)购自OMEGA公司ꎮ1.3㊀木薯MeNRT2.5基因的克隆㊀参照说明书ꎬ采用总RNA提取试剂盒提取木薯总RNAꎬ并用w=1.2%的琼脂糖凝胶电泳检测完整性ꎮ参照说明书ꎬ用PrimeScriptRTreagentkit将提取的RNA反转录成cD ̄NAꎮ参照GeneBank收录的拟南芥AtNRT2蛋白序列ꎬ从木薯基因组数据库(https:ʊphytozome.jgi.doe.gov/)中进行Blastp检索ꎬ获得木薯NRT2的氨基酸方剂和基因序列ꎮ采用PrimerPremier5.0软件设计引物ꎬ序列为MeNRT2.5 ̄F:5ᶄ ̄ATGGAAGTGGAAACTGCTGG ̄3ᶄꎻMeNRT2.5 ̄R:5ᶄ ̄CTAAGCTCTTCTGC ̄CTCTTTCA ̄3ᶄꎬ引物由上海生物工程有限公司合成ꎮ扩增程序为94ħ5minꎬ94ħ30sꎬ58ħ30sꎬ72ħ90sꎬ共35个循环ꎬ72ħ10minꎮ反应结束后ꎬ将PCR产物于w=1%的琼脂糖凝胶电泳ꎮ目的条带纯化后与pMD19 ̄Tvector(TaKaRaꎬCode:6013)进行连接ꎬ采用热激法将连接产物转入大肠杆菌感受态DH5α(TransGenBiotechꎬCD ̄201 ̄01)ꎬ挑取阳性克隆送往上海生工测序ꎮ1.4㊀MeNRT2.5蛋白的生物信息学分析㊀利用Protparam在线软件分析MeNRT2.5蛋白的理化性质ꎮSOPMA软件预测蛋白质的二级结构ꎮ通过TMHMM在线软件对木薯MeNRT2.5基因编码的蛋白进行跨膜区预测ꎮ通过NCBI网站的BlastP对MeNRT2.5蛋白与其他高等植物NRT2蛋白进行同源性比较ꎻ利用MEGA7.0软件ꎬ以邻位相近法(Neighbor ̄Joining)构建进化树ꎮ1.5㊀MeNRT2.5基因的表达分析㊀在提取实验材料不同组织的总RNA后ꎬ以反转录得到的cDNA为模板ꎬ进行半定量RT ̄PCRꎮ目的基因引物为MeNRT2.5 ̄semi ̄F(5ᶄ ̄TGCGAGCATTTCAACTGTCTT ̄3ᶄ)和MeNRT2.5 ̄semi ̄R(5ᶄ ̄GCCTCCTGAAGTTCCCATCT ̄3ᶄ)ꎮ内标基因引物为Actin ̄F(5ᶄ ̄GCCTCCCAAGG ̄TAGCTTTCA ̄3ᶄ)和Actin ̄R(5ᶄ ̄GGTTAATGCAGGGCTCCACT ̄3ᶄ)[31]ꎮ用GreenTaqMix酶(VazymeꎬP131 ̄AA)扩增ꎬ扩增体系参照说明书ꎮPCR程序为预变性94ħ5minꎬ变性94ħ30sꎬ退火58ħ30sꎬ延伸72ħ1minꎬ28个循环ꎬ72ħ10minꎮ用w=1%的琼脂糖凝胶电泳ꎮ结果用于研究MeNRT2.5基因在不同组织的表达量ꎮ为了研究MeNRT2.5基因在不同浓度硝酸盐胁迫下的表达模式ꎬ利用实时荧光定量qRT ̄PCR的方法检测MeNRT2.5基因在0.3mmol L-1和3mmol L-1KNO3处理下的表达模式ꎮ荧光定量引物为MeN ̄RT2.5 ̄qRT ̄F(5ᶄ ̄GCTGATTATGCCGCTTGTGTTTG ̄3ᶄ)和MeNRT2.5 ̄qRT ̄R(5ᶄ ̄GCAGCCTCCTGAAGTTC ̄CCATCT ̄3ᶄ)ꎮ内标基因引物为Actin ̄F(5ᶄ ̄GCCTCCCAAGGTAGCTTTCA ̄3ᶄ)和Actin ̄R(5ᶄ ̄GGTTAATG ̄CAGGGCTCCACT ̄3ᶄ)[31]ꎮ采用ABI7500Real ̄timePCRSystem进行定量分析ꎬ按照NOVA公司的TaqSYBRGreenqPCRPremix(code:EG15135R2S)说明书进行ꎮ实验数据采用2-ΔΔCt方法进行分析ꎬΔΔCt=Treat(Ct目的基因 ̄Ct内参基因) ̄CK(Ct目的基因 ̄Ct内参基因)[32]ꎮ2㊀结果与分析2.1㊀MeNRT2.5基因的克隆㊀根据NCBI公布的拟南芥硝酸根转运蛋白AtNRT2序列ꎬ在木薯基因组数据库(https:ʊphytozome.jgi.doe.gov/)中进行比对ꎬ获得1个NRT基因ꎮ进化分析结果(图1)表明ꎬ该蛋白与已报道的橡胶树(Heveabrasiliensis)HbNRT2.5蛋白同源性最高(94%)ꎬ与桐油树(Jatrophacurcas)㊁蓖麻(Ricinuscommunis)㊁可可树(Theobromacacao)㊁毛茛(Populustrichocarpa)㊁碧桃(Prunuspersica)等的NRT2.5蛋白同源性分别达到89.84%ꎬ87.40%ꎬ85.95%ꎬ86.38%ꎬ83.27%ꎬ推测获得的木薯NRT蛋白功能与其他NRT2.5有相似功能ꎬ因此命名为MeNRT2.5ꎮ以木薯cDNA为模板扩增MeNRT2.5基因ꎬ电泳结果(图2)显示获得1条1479bp的单一条带ꎮ经过连接T载体㊁筛选阳性克隆ꎬ送往公司测序ꎬ证明获得的目的基因片段正确ꎬ将测序正确的样品保存备用ꎮM 11479bp图1不同物种NRT2氨基酸序列的进化树分析Fig.1Phylogenetic tree analysis of NRT2proteinsequences from various plant species.图2MeNRT2.5基因的克隆M :DL2000marker ;1:MeNRT2.5基因的扩增产物Fig.2Cloning of the MeNRT2.5gene M:DL2000marker;1:PCR product of MeNRT2.5gene 2.2㊀MeNRT2.5蛋白的序列分析㊀Protparam在线软件分析显示ꎬMeNRT2.5基因编码的蛋白属于稳定蛋白ꎬ其相对分子质量为53250ꎬ理论等电点为9.15ꎬ不稳定系数为39.89ꎬ脂肪系数为95.61ꎬ亲水性系数为0.48ꎬ化学式为C2446H3773N623O657S26ꎮMeNRT2.5蛋白的氨基酸组成包括30个酸性氨基酸残基(Asp+Glu)和46个碱性氨基酸残基(Arg+His+Lys)ꎬ其中Gly(G)氨基酸所占比例最高为10.6%ꎬHis(H)所占比例最低为1.0%ꎬ具体氨基酸组成见表1ꎮ311㊀第2期㊀㊀㊀㊀任㊀宁等:木薯MeNRT2.5基因的克隆及表达分析411热带生物学报㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀2019年㊀表1㊀MeNRT2.5氨基酸组成个数及比例Tab.1㊀CompositionnumberandproportionofMeNRT2.5aminoacids名称Name数目Number比例Proportion/%氨基酸类型AminoacidtypeAla(A)4910.0脂肪族类Arg(R)234.7碱性Asn(N)132.6酰胺类Asp(D)163.3酸性Cys(C)112.2含硫类Gln(Q)122.4酰胺类Glu(E)142.8酸性Gly(G)5210.6脂肪族类His(H)51.0碱性Ile(I)357.1脂肪族类Leu(L)5010.2脂肪族类Lys(K)183.7碱性Met(M)153.0含硫类Phe(F)438.7芳香族类Pro(P)173.5亚氨基酸Ser(S)428.5羟基类Thr(T)265.3羟基类Trp(W)91.8芳香族类Tyr(Y)112.2芳香族类Val(V)316.3脂肪族类㊀㊀利用SOPMA软件预测蛋白质的二级结构(图3)ꎬ氨基酸参与形成的α-螺旋(alphahelixꎬHh)占46.75%ꎬ延伸链(ExtendedstrandꎬEe)占16.26%ꎬβ-折叠(BetaturnꎬTt)占6.10%和无规则卷曲(Ran ̄domcoilꎬCc)占30.89%ꎮ图3㊀MeNRT2.5的二级结构预测h:α ̄螺旋ꎻe:延伸ꎻt:β ̄折叠ꎻc:无规则卷曲Fig.3㊀SecondarystructurepredictionoftheMeNRT2.5proteinh:Alphahelixꎻe:Extendedstrandꎻt:Betaturnꎻc:Randomcoil㊀㊀通过TMHMM软件对木薯MeNRT2.5蛋白进行跨膜区预测ꎬ结果(图4)表明ꎬ该蛋白含有10个跨膜区域ꎬMeNRT2.5蛋白氨基酸N ̄末端和C ̄末端都位于膜内ꎮ2.3㊀MeNRT2.5基因的表达特性2.3.1㊀不同部位MeNRT2.5的表达分析㊀采用半定量RT ̄PCR技术检测MeNRT2.5基因在不同部位中的表达量ꎮ结果(图5)表明MeNRT2.5基因在根㊁茎㊁叶㊁花中均有表达ꎬ但不同组织中的表达量有差异ꎮ在成熟植株中ꎬ根的表达量最高ꎬ老叶和块根中的表达量最少ꎮ在组培苗中ꎬ根㊁茎㊁叶中表达量都较低ꎬ但相对来说ꎬ在组培苗中ꎬ叶中表达量相对较高(图5)ꎮ成熟植株组织培养苗MeNRT2.5Actin根茎老叶嫩叶花块根根茎叶图5MeNRT2.5基因的组织表达分析Fig.5Expression patterns of the MeNRT2.5in cassava tissues 图4MeNRT2.5蛋白的跨膜分析Fig.4Transmembrance analysis of the MeNRT2.5protein 50100150200250300350400450transmembrane insideoutside 1.21.00.80.60.40.20p r o b a b i l i t y TMHMM posterior probabilities for WEBSEQUENCE图6MeNRT2.5在不同处理下的表达模式A :0.3mmol ·L -1KNO 3处理;B :3mmol ·L -1KNO 3处理Fig.6Expression patterns of MeNRT2.5gene under different KNO 3treatmentsA:0.3mmol ·L -1KNO 3treatment;B:3mmol ·L -1KNO 3treatmentRoot Stem Leaf 86420A R e l a t i v e e x p r e s s i o n 03691224t /h Root Stem Leaf 86420R e l a t i v e e x p r e s s i o n B 03691224t /h 2.3.2㊀不同硝酸盐处理下MeN ̄RT2.5基因的表达分析㊀采用实时荧光定量PCR技术研究MeNRT2.5基因在根㊁茎㊁叶中的表达模式ꎮ结果表明ꎬ在0.3mmol L-1KNO3处理下(图6A)ꎬMeNRT2.5基因在根中的表达量逐渐升高ꎬ在6h达到最高值ꎬ与0h相比增高了约6倍ꎻ在9h时表达量又开始降低ꎬ此后逐渐降低恢复到正常水平ꎮ在茎中ꎬ3h时MeNRT2.5基因的表达量达到峰值ꎬ但6h表达量下降ꎬ随后在9h时略微升高ꎬ12h时表达量又达到峰值ꎬ随后在24h时表达量又略微下降ꎮ叶中MeNRT2.5基因呈现上调表达ꎬ在处理后6h表达量达到最大值ꎬ约为起始表达量的3倍ꎬ在9~24h表达量又一直下降ꎬ在24h时表达量近乎检测不出ꎮ在3mmol L-1KNO3处理下(图6B)ꎬMeNRT2.5基因在根中的表达量有微弱的增加ꎬ但变化不明显ꎬ茎和叶中的表达量都没有受到显著影响ꎮ3㊀讨㊀论本实验通过PCR技术首次获得1个木薯NO3-转运蛋白家族NRT2基因ꎬ据生物信息学分析ꎬ其ORF为1479bpꎬ编码492个氨基酸ꎬ具有10个跨膜结构域ꎬ符合NRT2基因家族的共同特征[12-13]ꎮ经过BlastP比对结果和进化树分析结果表明ꎬ木薯NRT2基因与橡胶树㊁油桐树㊁蓖麻等的NRT2.5基因具有较高的同源性ꎬ在进化上亲缘关系较近ꎬ且与其他植物中报道的NRT2.5基因具有相似的表达模式[22-25]ꎬ该511㊀第2期㊀㊀㊀㊀任㊀宁等:木薯MeNRT2.5基因的克隆及表达分析611热带生物学报㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀2019年㊀基因可能是木薯的MeNRT2.5基因ꎮLINA等[33]的研究结果表明ꎬAtNRT2.5蛋白在拟南芥茎皮质区㊁拟南芥根毛区的皮质和成熟叶片的叶脉中表达ꎮ本实验半定量RT ̄PCR结果表明ꎬMeNRT2.5基因在根㊁茎㊁叶㊁花中都有不同程度的表达ꎬ在成熟植株的根部和嫩叶中表达量较高ꎻ这与拟南芥中AtNRT2.5基因[33]和茶树NRT2.5基因[24ꎬ25]的表达情况基本一致ꎬ但也有差异ꎬ推测是因为基因在不同物种中的表达差异性所致ꎮ实时荧光定量qRT ̄PCR结果表明ꎬ低浓度硝态氮(0.3mmol L-1)处理下ꎬ木薯MeNRT2.5基因在根中较短时间内可达到峰值(图6A)ꎮAtNRT2.1具有NO3-感受器或者信号传感器的功能[34]ꎮ孔敏[35]研究的白菜BnNRT2基因在0.2mmol L-1NO3-处理30min后ꎬBcNRT2的表达量迅速上升ꎬ表明其可能是NO3-感受器ꎬ但是其在感受NO3-中的作用仍需证明ꎮ推测木薯MeNRT2.5基因同AtNRT2.1和Bn ̄NRT2基因一样ꎬ是NO3-感受器ꎬ但还需要进一步实验证明ꎮORSEL[36]和MAYA[37]等研究表明ꎬAtNRT2.5基因的表达受到高浓度NO3-的抑制ꎬ在供应NO3-几个小时后ꎬ其在根中的表达量仅为原来的25%ꎮ本研究中ꎬ高浓度硝态氮(3mmol L-1)处理下ꎬ木薯MeNRT2.5基因的表达量变化亦不明显ꎬ在处理24h时ꎬ茎中表达量为原来50%ꎬ这说明MeNRT2.5的表达可能受到高浓度NO3-的抑制ꎬ这与ORSEL[36]和MAYA[37]在拟南芥中研究的结果一致ꎮ目前ꎬ研究者虽然不断发现不同物种中NRT2基因新成员ꎬ但是在木薯中该基因家族成员数量有多少ꎬ分别如何定位ꎬ具有什么功能等ꎬ有待深入研究ꎮ此外ꎬZHOU[38]和TONG[39]等研究表明ꎬ部分高亲和硝酸根转运蛋白独自并不具有NO3-转运功能ꎬ需要依赖于NAR2蛋白的辅助ꎮKOTUR[40]等人证明ꎬAt ̄NRT2.5和拟南芥硝酸盐转运体伴侣蛋白(NitratetransporteraccessoryproteinꎬAtNAR2.1)形成1个相对分子质量150ˑ103的复合物ꎬ在氮饥饿处理的野生型拟南芥的根中发挥作用ꎮ因此ꎬ木薯MeNRT2.5蛋白吸收转运NO3-是否也需要木薯NAR2.1蛋白的辅助ꎬ两者在质膜上是如何发挥作用的还需要进一步研究ꎮ本研究成功克隆出木薯MeNRT2.5基因ꎬ丰富了NRT2蛋白家族的物种来源多样性ꎬ并对其表达模式进行初步分析ꎬ为深入了解木薯对NO3-吸收转运和耐贫瘠机制提供了理论依据ꎬ并为进一步建立低氮高效的农业种植方法提供理论参考ꎮ参考文献:[1]黄洁ꎬ李开绵ꎬ叶剑秋ꎬ等.中国木薯产业化的发展研究与对策[J].中国农业通报ꎬ2006ꎬ22(5):421-426. [2]李建勇ꎬ龚继明.植物硝酸根信号感受与传导途径[J].植物生理学报ꎬ2011ꎬ47:111-118.[3]朱兆良.农田中氮肥的损失与对策[J].土壤与环境ꎬ2000ꎬ9(1):1-6.[4]郭敏ꎬ韩鹏飞.农业面源污染的成因及控制对策[J].河北农业科学ꎬ2009ꎬ13(4):93-96.[5]CRAWFORDNMꎬFORDEBG.Molecularanddevelopmentalbiologyofinorganicnitrogennutrition[J].AmericanSocietyofPlantsBiologistsꎬ2002:e0011.[6]FORDEBG.Nitratetransportersinplants:structureꎬfunctionandregulation[J].BiochimicaetBiophysicaActaꎬ2000ꎬ1465(12):219-235.[7]WILLIAMSLEꎬMILLERAJ.Transportersresponsiblefortheuptakeandpartitioningofnitrogenoussolutes[J].AnnualRe ̄viewofPlantPhysiologyandPlantMolecularBiologyꎬ2001ꎬ52(1):659-688.[8]CRAWFORDNMꎬGLASSADM.Molecularandphysiologicalaspectsofnitrateuptakeinplants[J].TrendsinPlantSci ̄enceꎬ1998ꎬ3(10):389.[9]CHAPMANNꎬMILLERT.NitratetransportersandrootarchitectureʊGEISLERMꎬVENEMAK.Transportersandpumpsinplantsignaling[M].Berlin:Springerꎬ201l:165-190.[10]LEERBꎬCLARKSONDT.Nitrogen ̄13studiesofnitratefluxesinbarleyroots.Compartmentalanalysisfrommeasurementsof13Nefflux[J].TheEMBOJournalꎬ1986(5):1753-1767.[11]TSAYYFꎬCHUCCꎬTSAICBꎬetal.Nitratetransportersandpeptidetransporters[J].FEBSLettersꎬ2001ꎬ581:2290-2300.[12]PAOSSꎬPAULSENITꎬSAIERMH.Majorfacilitatorsuperfamily[J].MicrobiolograndMolecularBiologyReviewꎬ1998ꎬ62(1):1-34.[13]GLAVANAꎬFERNANDEZE.Eukaryoticnitrateandnitritetransporters[J].CellularandMolecularLifeSciencesꎬ2001ꎬ58:225-233.[14]TRUEMANLJꎬRICHARDSONAꎬFORDEBG.Molecularcloningofhigherplanthomologuesofthehigh ̄affinitynitratetransportersofChlamydomonasreinhardtii[J].Geneꎬ1996ꎬ175(1/2):223-231.[15]YANMꎬFANXRꎬFENGHMꎬetal.RiceOsNAR2.1intersectswithOsNRT2.1ꎬOsNRT2.2andOsNRT2.3anitratetrans ̄porterstoprovideuptakeoverhighandlowconcentrationranges[J].PlantCellandEnvironmentꎬ2011ꎬ34(8):1360-1372.[16]XUGꎬFANXꎬMILLERAJ.Plantnitrogenassimilationanduseefficiency[J].AnnualReviewofPlantBiologyꎬ2012ꎬ63(1):153-182.[17]TANGZꎬFANXRꎬLIQꎬetal.Knockdownofaricestellarnitratetransporteralterslongdistancetranslocationbutnotrootinflux[J].PlantPhysiologyꎬ2012ꎬ160(4):2052-2063.[18]CRAWFORDNMꎬGLASSADM.Molecularandphysiologicalaspectsofnitrateinplants[J].TrendsinPlantScienceꎬ1998ꎬ3(10):389-395.[19]QUAGGIOTTISꎬRUPERTIBꎬBORSAPꎬetal.Expressionofaputativehigh ̄affinityNO3-transporterandofanH+ ̄AT ̄Paseinrelationtowholeplantnitratetransportphysiologyintwomaizegenotypesdifferentlyresponsivetolownitrogenavaila ̄bility[J].JournalofExperimentBotanyꎬ2003ꎬ54:1023-1031.[20]AMARASINGHEBHꎬDEBRUXELLESGLꎬBRADDONMꎬetal.RegulationofGmnrt2expressionandnitratetransportactivityinrootsofsoybean(Glycinemax)[J].Plantaꎬ1998ꎬ206(1):44-52.[21]赵学强ꎬ李玉京ꎬ刘建中ꎬ等.小麦NO3-转运蛋白基因TaNRT2.3的克隆和表达分析[J].植物学报ꎬ2004ꎬ46(3):347-354.[22]NAZOAPꎬVIDMARJJꎬTRANBARGERTJꎬetal.RegulationofthenitratetransportergeneAtNRT2.1inArabidopsisthaliana:responsestonitrateꎬaminoacidsanddevelopmentalstage[J].PlantMolecularBiologyꎬ2003ꎬ52:689-703.[23]TODDCDꎬZENGPꎬHUETEAMPꎬetal.TranscriptsofMYB ̄likegenesrespondtophosphorousandnitrogendeprivationinArabidopsis[J].Plantaꎬ2004ꎬ219:1003-1009.[24]冯素花ꎬ王丽鸳ꎬ陈常颂ꎬ等.茶树硝酸根转运蛋白基因NRT2.5的克隆及表达分析[J].茶业科学ꎬ2014ꎬ34(4):364-370.[25]王新亮.果树根系硝态氮信号响应关键基因的克隆与功能分析[D].泰安:山东农业大学ꎬ2012.[26]CAICꎬZHAOXQꎬZHUYGꎬetal.Regulationofthehigh ̄affinitynitratetransportsysteminwheatrootsbyexogenousab ̄scisicacidandglutamine[J].JournalofIntegrativePlantBiologyꎬ2007(49):1719-1725.[27]ARAKIRꎬHASEGAWAH.Expressionofrice(OryzasativaL.)genesinvolvedinhigh ̄affinitynitratetransportduringtheperiodofnitrateinduction[J].BreedingScienceꎬ2006ꎬ56:295-302.[28]缪其松.水稻硝转运蛋白基因OsNRT1.1a和OsNRT1.1b的功能研究[D].南京:南京农业大学ꎬ2011.[29]胡春吉ꎬ邹良平ꎬ彭明.木薯MeNRT2.1基因的克隆及表达分析[J].热带作物学报ꎬ2016ꎬ37(1):117-124.[30]金玲.小白菜水培营养液配方筛选[J].河南农业科学ꎬ2007(9):82-85.[31]MOCꎬWANSꎬXIAXꎬetal.Expressionpatternsandidentifiedprotein ̄proteininteractionssuggestthatcassavaCBL ̄CIPKsignalnetworksfunctioninresponsetoabioticstresses[J].FrontiersinPlantScienceꎬ2018ꎬ9:269.[32]KIVAKKJꎬSCHMITTGENTD.Analysisofrelativegeneexpressiondatausingreal ̄timequantitativePCRandthe2-ΔΔCTmethod[J].Methodsꎬ2001ꎬ25(4):402-408.[33]LINALꎬTAKATOSHIKꎬANA ̄BELENFBꎬetal.TheArabidopsisnitratetransporterNRT2.5playsaroleinnitrateacquisi ̄tionandremobilizationinnitrogen ̄starvedplants[J].ThePlantJournalꎬ2014ꎬ80:230-241.[34]LITTLEDYꎬRAOHꎬOLIVASꎬetal.Theputativehigh ̄affinitynitratetransporterNRT2.1represseslateralrootinitiationinresponsetonutritionalcues[J].ProceedingsoftheNationalAcademyofScienceofUnitedStatesofAmericaꎬ2005ꎬ102:13693-13698.[35]孔敏ꎬ杨学东ꎬ侯喜林ꎬ等.白菜NRT2基因的克隆及表达模式分析[J].园艺学报ꎬ2011ꎬ38(12):2309-2316.[36]ORSELMꎬKRAPPAꎬDANIELV.F.AnalysisoftheNRT2nitratetransporterfamilyinArabidopsis:Structureandgeneex ̄711㊀第2期㊀㊀㊀㊀任㊀宁等:木薯MeNRT2.5基因的克隆及表达分析811热带生物学报㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀2019年㊀pression[J].PlantPhysiologyꎬ2002ꎬ129(2):886-896.[37]MAYAKꎬGUILHEMDꎬWAFAARꎬetal.TheNRT2.5andNRT2.6genesareinvolvedingrowthpromotionofArabidopsisbytheplantgrowth ̄promotingrhizobacterium(PGPR)strainPhyllobacteriumbrassicacearumSTM196[J].NewPhytologistꎬ2013ꎬ198:514-524.[38]ZHOUJJꎬFERNÁNDEZEꎬGALVÁNAꎬetal.AhighaffinitynitratetransportsystemfromChlamydomonasrequirestwogeneproducts[J].FEBSLetterꎬ2000ꎬ466(2/3):225-227.[39]TONGYPꎬZHOUJJꎬLIZSꎬetal.Atwo ̄componenthigh ̄affinitynitrateuptakesysteminbarley[J].ThePlantJournalꎬ2005ꎬ41(3):442-450.[40]KOTURZꎬGLASSADM.A150kDaplasmamembranecomplexofAtNRT2.5andAtNAR2.1isthemajorcontributortocon ̄stitutivehigh ̄affinitynitrateinfluxinArabidopsisthaliana[J].PlantꎬCellandEnvironmentꎬ2015ꎬ38:1490-1502.CloningandExpressionAnalysisofMeNRT2.5GeneinCassavaRENNingꎬCHENXiuzhenꎬXIAYouquanꎬBAIXueyangꎬJIANGXingyuꎬZHOUYang(InstituteofTropicalAgricultureandForestryꎬHainanUniversity/HainanKeyLaboratoryforSustainableUtilizationofTropicalBioresourcesꎬHaikouꎬHainan570228ꎬChina)Abstract:Cassava(ManihotesculentaCrantz)ischaracteristicofhighyieldꎬdroughttoleranceandpoorsoiltolerance.Toprobeintothemolecularbasisfortoleranceofpoorsoilsandenhancetheutilizationrateofnitrogenincassavaꎬtwoyearsoldmatureplantsand1month ̄oldtissueculturedplantsofcassavacultivar Huanan8 werecollectedandculturedfor30daysinamediumastheexperimentalmaterialꎬfromwhichahigh ̄affinityni ̄tratetransportergeneNRT2wasisolatedbyusinghomologouscloningtechnique.SequenceanalysisrevealedthattheopenreadingframeofthisgenecalledMeNRT2.5is1479bpandencodes492aminoacids.BioinformaticsanalysesshowedthattheMeNRT2.5proteinhad10transmembraneregionsꎬandhadaahighhomologywiththeNRT2.5proteinofHeveabrasiliensisꎬJatrophacurcasandꎬTheobromacacaoꎬwithitsaminoacidsequencesbe ̄ing94%ꎬ89.84%and87.4%insimilarityꎬrespectively.Semi ̄Quantitativereal ̄timePCRanalysisshowedthattheMeNRT2.5genewasexpressedinrootꎬstemꎬleafꎬflowerandotherorgansꎬwithitsexpressionbeinghigherintherootsofmaturecassavaplantsandintheleavesoftissueculturedplants.Quantitativereal ̄timePCRanalysisshowedthattranscriptoftheMeNRT2.5inroothadapeakexpressionat6hunderthetreatmentwithlowconcentrationNO3-(0.3mmol L-1)butitsexpressiondidnotchangesignificantlyintherootꎬstemandleafafterthetreatmentwithhighconcentrationofNO3-(3mmol L-1)ꎬindicatingthetranscriptoftheMeNRT2.5geneisinhibitedbyhighconcentrationsofNO3-.AlltheseresultsprovideatheoreticalfoundationforfurtheranalysisofthefunctionalverificationoftheMeNRT2.5geneincassava.Keywords:Cassavaꎻhighaffinitynitratetransporterꎻgenecloningꎻexpressionanalysis(责任编辑:叶㊀静)。

木薯MePP2CAa基因克隆、表达及蛋白互作分析

木薯MePP2CAa基因克隆、表达及蛋白互作分析

第43卷 第1期2024年 1月Vol.43 No.1Jan. 2024,141~148华中农业大学学报Journal of Huazhong Agricultural University木薯MePP2CAa 基因克隆、表达及蛋白互作分析曾坚1,李丽珍1,沈梓欣1,林墁1,刘博婷1,吴春来2,3,李冰4,胡伟3,曾力旺2,31.韶关学院广东省粤北食药资源利用与保护重点实验室/英东生物与农业学院,韶关 512005;2.中国热带农业科学院科技信息研究所,海口 571101;3.中国热带农业科学院热带作物生物育种全国重点实验室/热带生物技术研究所,海口 571101; 4.平江县第一中学,岳阳 414500摘要 为探究2C 型蛋白磷酸酶(protein phosphatase 2C , PP2C )在木薯响应非生物胁迫过程中的作用,利用木薯Arg7叶片cDNA 扩增MePP2CAa 基因,分析该基因序列、启动子活性、不同逆境和激素处理下的表达模式以及与ABA 受体PYLs 之间的互作关系。

序列分析结果显示,MePP2CAa 基因全长1 311 bp ,编码436个氨基酸,具有PP2C 家族的结构域特征,与橡胶树和麻风树的PP2C 序列同源性最高,分别为78.95%和74.09%,在C 端保守;qRT -PCR 分析结果显示,MePP2CAa 基因在木薯储藏根中的表达显著高于茎、叶中的表达量;不同逆境和激素处理结果显示,甘露醇、NaCl 、ABA 、MeJA 、低温和SA 处理可以显著诱导MePP2CAa 基因的表达;MePP2CAa 基因启动子序列分析显示,启动子包含ABA 应答元件(abscisic acid responsive element ,ABRE )、MeJA 响应元件、干旱诱导元件等;酵母双杂交结果显示MePP2CAa 能够与MePYL1互作。

以上结果表明,MePP2CAa 基因可能响应木薯的非生物胁迫。

木薯MeSAP13基因的克隆及其抗细菌性枯萎病功能鉴定

木薯MeSAP13基因的克隆及其抗细菌性枯萎病功能鉴定

木薯MeSAP13基因的克隆及其抗细菌性枯萎病功能鉴定张子奇;李可;陈银华;张银东;张肖飞;耿梦婷【期刊名称】《热带作物学报》【年(卷),期】2022(43)10【摘要】胁迫相关蛋白(stress-associated proteins, SAPs)在植物对胁迫应答和胁迫调控中起重要作用。

木薯是我国重要的粮食作物和经济作物,细菌性枯萎病(cassava bacterial blight, CBB)已严重危害我国木薯产业的健康发展。

为了探讨木薯MeSAP基因在抗细菌性枯萎病中的作用,本研究克隆了我国主栽木薯品种‘华南8号’(SC8)的MeSAP13基因,分析该基因在细菌性枯萎病病原菌侵染时的表达模式及其编码蛋白的基本特性。

利用基于木薯花叶病毒介导的基因沉默(virus induced gene silencing, VIGS)技术抑制了MeSAP13基因在木薯SC8叶片中的表达,通过接种细菌性枯萎病病原菌Xpm HN11对MeSAP13的抗病功能进行抗性鉴定。

结果发现:在病原菌Xpm HN11侵染叶片3 d后MeSAP13基因表达量显著上调,说明木薯MeSAP13基因能够响应病原菌的侵染;在VIGS载体转化木薯叶片40 d后发现,与转化pCsCMV-A载体的对照叶片相比,MeSAP13在转化pCsCMV-MeSAP13叶片中的表达量显著下调了40%~60%,表明通过VIGS技术成功抑制了MeSAP13在木薯叶片中的表达。

将病原菌Xpm HN11接种至MeSAP13基因沉默叶片和对照植株叶片,发现MeSAP13基因沉默植株接种叶片的水渍状病斑面积显著大于对照植株接种叶片。

分析侵染后0、3、6 d病原菌Xpm HN11的繁殖情况发现,在侵染后3 d和6 d的MeSAP13基因沉默植株接种叶片中,其病原菌数量显著高于对照植株接种叶片。

以上研究结果表明,抑制MeSAP13基因的表达,降低了木薯对细菌性枯萎病的抗性。

木薯淀粉合成相关酶基因的克隆及表达分析

木薯淀粉合成相关酶基因的克隆及表达分析

木薯淀粉合成相关酶基因的克隆及表达分析许娟;罗兴录;赵德征【期刊名称】《生物技术通报》【年(卷),期】2012(000)011【摘要】根据核苷酸同源性设计简并引物,克隆了一段大小为665 bp的木薯腺苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶小亚基基因(sAGP)片段,并根据已知序列设计特异引物,克隆分离得到GBSS基因和SBE基因的cDNA片段.半定量RT-PCR分析结果表明,在木薯不同生长时期,3种淀粉合成相关酶基因的时空表达规律不同,GBSS基因表达有时期特异性和组织特异性,只在块根形成期和块根成熟期表达,在组织部位茎中表达最多,并且在这3种基因中表达水平相对较低.而sAGP基因在这3种基因中表达水平最高,在木薯决根成熟期竟达超量表达水平,并且在华南124和辐选0l中有品种差异,差异明显,在辐选01中的表达要优于华南124的表达.SBE基因表达较平稳,在各个时期表达水平都处于中间水平,在4个时期中,块根成熟期时的表达水平相对较高,块根形成期和苗期其次,收获期最低,也具有品种间差异,在辐选01中的表达要优于华南124的表达.【总页数】9页(P101-109)【作者】许娟;罗兴录;赵德征【作者单位】广西大学农学院,南宁530004;广西大学农学院,南宁530004;广西大学农学院,南宁530004;广西作物遗传改良与生物技术重点实验室,南宁530007【正文语种】中文【相关文献】1.木薯蔗糖磷酸合成酶基因克隆及组织表达分析 [J], 黄堂伟;罗兴录;单忠英;朱艳梅2.木薯海藻糖合成酶基因MeTPS6克隆及其在非生物胁迫下的表达分析 [J], 丁泽红;铁韦韦;付莉莉;颜彦;胡伟;;;;;3.木薯海藻糖合成酶基因MeTPS6克隆及其在非生物胁迫下的表达分析 [J], 丁泽红;铁韦韦;付莉莉;颜彦;胡伟4.木薯淀粉合成关键酶AGPase小亚基基因全长克隆 [J], 郭雅静;罗兴录;陈会鲜5.百合鳞茎发育过程中淀粉合成相关酶基因的克隆及表达分析 [J], 张进忠;孙嘉曼;李朝生;韦莉萍;范燕萍因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

木薯MeHsfB3a基因的克隆及其抗细菌性枯萎病功能鉴定

木薯MeHsfB3a基因的克隆及其抗细菌性枯萎病功能鉴定

木薯MeHsfB3a基因的克隆及其抗细菌性枯萎病功能鉴定李琳琳;王超群;李春霞;骆凯;王红刚;陈银华;张肖飞;耿梦婷【期刊名称】《热带作物学报》【年(卷),期】2023(44)1【摘要】木薯是热带地区重要的粮食作物,菜豆黄单胞菌属木薯细菌性枯萎病致病种(Xanthomonas phoseoli pv.manihotis,Xpm)侵染引起的细菌性枯萎病是木薯的重要病害。

挖掘、鉴定木薯抗Xpm病原菌侵染的基因,并解析其抗病机制有利于开发木薯抗病种质。

植物热激转录因子(heat shock transcription factors,Hsfs)在植物抵御生物胁迫和非生物胁迫的过程中发挥重要作用。

本研究利用RT-PCR 技术从‘华南8号’(‘SC8’)木薯品种克隆热激蛋白转录因子基因MeHsfB3a的全长。

生物信息学分析发现MeHsfB3a含有2个外显子和1个内含子,全长729 bp,编码242个氨基酸,蛋白理论相对分子质量27.9 kDa,理论等电点pI为7.59,理论不稳定系数为56.86,属于不稳定蛋白质,亲水性平均指数-0.880,表明该蛋白水溶性较好,脂溶指数为65.98。

亚细胞定位预测该蛋白可定位于细胞核。

利用qRT-PCR技术分析发现MeHsfB3a在嫩叶、成熟叶、顶芽、叶柄、块根、须根均有表达,在成熟叶中的表达量最高,在其他器官中的表达量较少。

采用Xpm HN11病原菌侵染木薯‘SC8’叶片0、3、6 h和1、3、6 d后分析MeHsfB3a表达,发现1 d以后该基因的表达显著提高。

说明MeHsfB3a参与‘SC8’木薯对Xpm HN11病原菌的响应过程。

采用VIGS技术沉默木薯‘SC8’的MeHsfB3a基因,该基因沉默效率降低了68.26%~82.44%。

接种Xpm HN11病原菌至沉默植株叶片,于接菌0、3、6 d进行发病情况分析,发现沉默植株的病斑面积显著高于对照。

本研究鉴定了热击蛋白转录因子基因MeHsfB3a参与木薯抗Xpm HN11病原菌侵染的过程,有助于进一步解析木薯对细菌性枯萎病的抗病机理。

木薯MeP5CS和MeP5CR基因克隆及其干旱胁迫下的表达分析

木薯MeP5CS和MeP5CR基因克隆及其干旱胁迫下的表达分析

木薯MeP5CS和MeP5CR基因克隆及其干旱胁迫下的表达分析作者:付莉莉韩冰莹谭德冠孙雪飘张家明来源:《湖北农业科学》2016年第15期摘要:在不同浓度(0、20%、30%、40%、50%)PEG处理下考察木薯(Manihot esculenta Crantz)叶片中脯氨酸含量的动态变化。

从木薯中分别克隆了MeP5CS和MeP5CR基因,对其序列进行生物信息学分析,并分析了MeP5CS和MeP5CR基因在20% PEG胁迫处理下各组织中的表达。

结果表明,脯氨酸含量受渗透胁迫快速诱导,在一定范围内随PEG浓度升高而明显升高,表现出较好的相关性。

序列分析表明,MeP5CS基因cDNA全长2 217 bp,编码738个氨基酸,含有P5CS保守结构域;MeP5CR基因cDNA全长828 bp,编码275个氨基酸,含有P5CR保守结构域,它们分别与麻风树和蓖麻中的P5CS、P5CR亲缘关系较近。

MeP5CS和MeP5CR基因在转录水平受到渗透胁迫的调控。

关键词:木薯(Manihot esculenta Crantz);MeP5CS;MeP5CR;基因克隆;干旱;表达分析中图分类号:Q78 文献标识码:A 文章编号:0439-8114(2016)15-4024-05DOI:10.14088/ki.issn0439-8114.2016.15.057Abstract: Dynamic changes of proline content were investigated in cassava(Manihot esculenta Crantz) leaves in response to different concentration of PEG(polyethylene glycol) treatments (0,20%,30%,40% and 50%). MeP5CS and MeP5CR were cloned in cassava and their sequences were analysed by bioinformatics method. The expression of MeP5CS and MeP5CR genes in different organs was analysed under 20% PEG treatment. The results showed that proline content were rapidly induced by osmotic stress,and at a certain extent,the increase of proline content was linearly correlated with PEG concentrations. Sequence analysis revealed that full length cDNA sequence of MeP5CS was 2 217 bp,which encoded 738 amino acids and contained P5CS conserved domain. The full length cDNA sequence of MeP5CR was 828 bp,which encoded 275 amino acids and contained P5CR conserved domain. They both had close genetic relationship with P5CS andP5CR,respectively,in Jatropha curcas and Ricinus communis. qRT-PCR results showed that the expression of both MeP5CS and MeP5CR were regulated by osmotic stress. Key words: cassava (Manihot esculenta Crantz); MeP5CS; MeP5CR; gene clone; drought; expression analysis在干旱、盐渍等胁迫条件下,植物体内脯氨酸含量显著增加[1]。

木薯MeHSF18基因克隆及表达分析

木薯MeHSF18基因克隆及表达分析

24052020年33卷11期Vol. 33 No. 11西侖农业学报Southwest China Journal of Agricultural Sciences 文章编号:1001 -4829(2020)11 -2405 - 07DOI : 10.16213/j. cnki. scjas. 2020.11.001木薯MeHSF18基因克隆及表达分析曾 坚1,黄芷颐1,章玉香打吴春来S 胡 伟(1•韶关学院英东生物与农业学院,广东韶关512005 ;2.中国热带农业科学院热带生物技术研究所,海南海口 571101)摘 要:【目的】热激转录因子(Heat Shock Transcription Factor, HSF)在植物非生物胁迫响应过程中起重要调控作用°【方法】本研究利用PCR 技术从木薯中克隆得到一个羽F 家族基因,命名为MeHSFIS,对其理化性质、蛋白结构域和进化关系、基因表达水平进行了分析。

【结果】该基因的开放阅读框全长为867 bp,编码289个氨基酸,其蛋白质分子量为31.67 kDa,等电点为5.90。

对 其进行序列比对分析表明MeHSF18基因的氨基酸序列与橡胶树和麻疯树中的氨基酸序列同源性最高。

木薯11个组织的表达数据表明MeHSF18基因在根相关组织中都有高表达。

另外t MeHSF18基因的表达能被干旱和ABA 处理显著诱导。

在木薯块根的采 后生理性变质过程中MeHSF18基因的表达也被显著诱导。

【结论】MeHSF18基因可能在转录水平参与ABA 介导的木薯干旱胁迫响应和木薯块根的采后生理性变质,可作为候选基因进一步研究其在木薯抗逆和采后储存中的功能。

关键词:热激转录因子;M e HSF18;非生物胁迫;采后生理性变质;表达分析中图分类号:S533 文猷标识码:AClone and Expression Analysis of MeHSF18 in CassavaZENG Jian 1, HUANG Zhi-yi 1, ZHANG Yu-xiang 1, WU Chun-lai 2 , HU Wei 2*(1. Henry Fok College of Biology and Agriculture , Shaoguan University, Guangdong Shaoguan 512005 , China ;2. Institute of Tropical Bio ­science and Biotechnology , Chinese Academy of Tropical Agricultural Science , Hainan Haikou 571101, China)Abstract : [ Objective] Heat Shock Transcription Factor is a key regulatory factor in defense from abiotic stresses in plants. [ Method] In this research , a HSF gene designated MeHSF18 was isolated from cassava leaves through RT-PCR method. The physicochemical properties , pro ­tein domain , phylogenetic tree, and expression profiles of MeHSF18 were analyzed. [Result] The full-length cDNA of MeHSF18 was 867 bp, encoded a polypeptide of 289 amino acid residues with a predicted relative molecular mass of 31. 67 kDa and an isoelectric point of 5. 90. Multiple alignment showed that MeHSF18 shared a significant degree of sequence identify with other HSF proteins in Hevea brasiliensisand Jatropha curcas. The expression profile of 11 cassava tissues showed that the high expression of MeHSF18 was in root. The transcriptomedata results indicated that MeHSF18 was upregulated by drought stress and ABA treatment. The expression of MeHSF18 was also induced in cassava PPD process. [ Conclusion] These results suggested that MeHSF18 might be involved in ABA mediated drought stress response andparticipated in PPD process.Key words :Heat shock transcription factor ; MeHSF18; Abiotic stress ; PPD ; Expression analysis【研究意义】植物在生长过程中会经历不同逆 境,包括生物逆境和非生物逆境。

木薯MeEIN3.1基因克隆及其在采后生理性变质中的信号转导

木薯MeEIN3.1基因克隆及其在采后生理性变质中的信号转导

木薯MeEIN3.1基因克隆及其在采后生理性变质中的信号转导赖锦涛;杨静琳;罗佳科;陈志晟;叶晓雪;颜彦;曾坚;胡伟【期刊名称】《福建农林大学学报(自然科学版)》【年(卷),期】2024(53)1【摘要】【目的】ethylene insensitive 3/ethylene insensitive-like1(EIN3/EIL1)是乙烯信号通路的重要成员,克隆并分析其在木薯块根采后生理性变质(post-harvest physiological deterioration,PPD)过程中的表达情况,可以为深入研究乙烯信号在木薯块根PPD过程中的功能提供参考。

【方法】通过RT-PCR 技术从木薯栽培品种SC8中克隆得到了木薯MeEIN3.1基因,然后对MeEIN3.1基因的遗传进化关系、结构域、蛋白质结构、理化性质等进行分析。

对MeEIN3.1蛋白进行亚细胞定位,并通过荧光定量PCR和酵母双杂交技术对MeEIN3.1基因在木薯块根PPD过程中的表达水平以及下游互作转录因子进行分析。

【结果】MeEIN3.1基因的长度为1452 bp,编码483个氨基酸残基,等电点和分子质量分别为5.08和55.12 ku,氨基酸序列包含7个EIN3/EIL1结构域,和橡胶HbEIN3-like 基因的亲缘关系最近,序列一致性为69.35%。

MeEIN3.1蛋白的亚细胞定位结果显示该基因位于细胞核。

荧光定量PCR结果显示,在木薯块根的PPD过程中MeEIN3.1基因的表达量和对照0 h相比,表现为显著上升趋势,即MeEIN3.1基因的表达受到PPD过程的诱导。

另外,酵母双杂交结果显示MeEIN3.1能够与MeERF1.2和MeERF1.3产生互作。

【结论】MeEIN3.1基因的表达在采后过程中受到诱导,推测其通过下游转录因子MeERF1.2和MeERF1.3进行乙烯信号转导来参与木薯块根的PPD过程。

【总页数】8页(P7-14)【作者】赖锦涛;杨静琳;罗佳科;陈志晟;叶晓雪;颜彦;曾坚;胡伟【作者单位】韶关学院广东省粤北食药资源利用与保护重点实验室;韶关学院生物与农业学院;中国热带农业科学院热带生物技术研究所【正文语种】中文【中图分类】S533【相关文献】1.木薯采后生理性变质对酒精发酵的影响2.木薯采后生理性变质的研究进展3.几种抑制木薯采后生理性变质发生方法的比较①4.木薯采后生理性变质与淀粉特性研究5.木薯MePYL12基因克隆及采后生理性变质过程的表达分析因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

木薯SCARECROW-LIKE(SCL)基因克隆、生物信息学及非生物胁迫下表达分析

木薯SCARECROW-LIKE(SCL)基因克隆、生物信息学及非生物胁迫下表达分析

木薯SCARECROW-LIKE(SCL)基因克隆、生物信息学及非生物胁迫下表达分析作者:樊铸硼罗兴录单忠英黄堂伟程隆祥吴美艳来源:《南方农业学报》2020年第08期摘要:【目的】克隆木薯SCARECROW-LIKE(MeSCL)基因,对其进行生物信息学分析,并检测其在非生物胁迫下的表达情况,为深入研究木薯MeSCL基因响应非生物胁迫的调控机制提供理论参考。

【方法】以木薯品种D346为材料,采用RT-PCR克隆MeSCL基因编码区(CDS)序列,并利用生物信息学分析软件进行序列特征分析,采用实时荧光定量PCR 检测其在干旱、盐、氧化和低温胁迫下木薯叶片中的表达情况。

【结果】克隆获得的MeSCL 基因编码区(CDS)序列全长1655 bp,与参考序列(GenBank登录号LOC110627921)仅存在2个碱基的差异,开放閱读框(ORF)的长度为1560 bp,编码519个氨基酸,编码蛋白分子量为57.84 kD,等电点(pI)为6.08,脂肪系数为80.46%,总平均亲水性指数为-0.195,为亲水性蛋白,含有1个信号肽、6个从内部到外部的跨膜螺旋区和5个从外部到内部的跨膜螺旋区,定位于细胞核和内质网中,属于GRAS蛋白家族成员,具有该家族的保守结构域。

MeSCL蛋白三级结构模型显示,该蛋白含有14个典型的α螺旋、10个β-折叠和36个β-转角。

MeSCL蛋白与橡树HbSCL蛋白的相似性最高,为90.80%,与蓖麻RcSCR、胡杨PeSCL、毛果杨PtSCR、可可树TcSCR和哥伦比亚锦葵HuSCL蛋白的相似性在80.00%左右。

MeSCL基因受干旱、盐、氧化和低温胁迫诱导表达量整体呈升高趋势,但在不同处理时间的表达量存在明显差异,其中,干旱和氧化胁迫下,MeSCL基因均在处理24 h时表达量最高,分别是对照的6.05和11.17倍,而盐和低温胁迫下,MeSCL基因均在处理6 h时表达量最高,分别是对照的11.76和3.80倍。

木薯MeTPP1基因克隆、结构变异及其表达分析

木薯MeTPP1基因克隆、结构变异及其表达分析

木薯MeTPP1基因克隆、结构变异及其表达分析丁泽红;铁韦韦;付莉莉;胡伟【摘要】旨在研究木薯MeTPP1基因在干旱、低温等非生物胁迫响应中的作用.用同源基因克隆的方法从木薯叶片中克隆MeTPP1基因,用MEGA软件构建Neighbor-joining系统进化树,用DnaSP软件分析基因结构变异,用实时荧光定量PCR技术分析MeTPP1基因在不同胁迫处理下的表达特性.结果表明,MeTPP1基因含有一个1131 bp的开放阅读框,编码376个氨基酸,含有TPP家族保守结构域.系统进化树分析表明,MeTPP1与杨树和杞柳中同源基因的亲缘关系较近,序列相似性分别为77.8%和74.5%.基因结构变异发现,MeTPP1在木薯野生种和栽培种之间共有9个错义突变,它们可能与MeTPP1的表达有关.实时荧光定量PCR分析表明,MeTPP1表达量受到干旱、低温和ABA处理的响应.上述结果表明,MeTPP1在转录水平参与ABA介导的木薯干旱和低温胁迫,可作为候选基因进一步研究其在木薯抗逆中的功能.%This work is to reveal the roles of MeTPP1 gene in abiotic stresses such as drought and cold in cassava. Homology-based cloning method was used to clone MeTPP1 gene from cassava leaves,MEGA software to construct its neighbor-joining phylogenetic tree, DnaSP software to analyze its structural variations,and quantitative RT-PCR(qRT-PCR)to explore its expression characteristics under different abiotic treatments. The results showed that gene,MeTPP1 had a 1131 bp open reading frame encoding 376 amino acids,and contained a conserved domain of TPP gene family. Phylogenetic analysis revealed that MeTPP1 had close genetic relationship to its homologues from Populus trichocarpa and Salix purpurea,and the sequence similarity was 77.8% and74.5%,respectively. Genetic structural variation showed that a total of nine mis-sense mutations,which might be related to the expression of MeTPP1,were identified between cassava wild and cultivated species. qRT-PCR analysis demonstrated that the expression of MeTPP1 significantly changed in response to drought,cold, and ABA treatments. Together,these results indicate that MeTPP1 is involved in ABA-mediated drought and cold stresses of cassava at the transcriptional level,and can be served as a candidate to further study its functions in resistance of abiotic stress in cassava.【期刊名称】《生物技术通报》【年(卷),期】2018(034)001【总页数】7页(P97-103)【关键词】海藻糖-6-磷酸酯酶;MeTPP1;干旱;低温;表达分析【作者】丁泽红;铁韦韦;付莉莉;胡伟【作者单位】中国热带农业科学院热带生物技术研究所,海口 571101;中国热带农业科学院热带生物技术研究所,海口 571101;中国热带农业科学院热带生物技术研究所,海口 571101;中国热带农业科学院热带生物技术研究所,海口 571101【正文语种】中文海藻糖是由两个葡萄糖分子通过半缩醛羟基缩合而成的非还原性双糖[1],在真菌、细菌、藻类、动物和植物中广泛存在,是天然双糖中最稳定的糖质。

木薯_MeHsfB3b_转录因子与MeFKBP20_蛋白互作关系验证

木薯_MeHsfB3b_转录因子与MeFKBP20_蛋白互作关系验证

热带作物学报2024, 45(3): 450 458Chinese Journal of Tropical Crops木薯MeHsfB3b转录因子与MeFKBP20蛋白互作关系验证王超群1,李琳琳1,陈银华1,张肖飞3,姚远2*,耿梦婷1*1. 海南大学热带作物学院,海南海口 570228;2. 中国热带农业科学院热带生物技术研究所/海南热带农业资源研究院,海南海口 571101;3. 国际热带农业中心,哥伦比亚卡利 AA6713摘要:热激转录因子MeHsfB3b是调控木薯抗细菌性枯萎病的重要节点,前期通过酵母双杂交技术获得MeHsfB3b 的候选互作蛋白MeFKBP20,该蛋白属于FKBP型肽脯氨酰顺反异构酶基因家族。

本研究克隆获得MeFKBP20基因全长为561 bp,编码186个氨基酸,蛋白质分子质量为19.99 kDa,具有FKPB_C结构域。

表达模式分析发现:MeFKBP20基因在木薯成熟叶片及根部高表达,在幼叶和叶柄的表达量较低;并能够迅速响应病原菌Xpm CHN11诱导,持续保持较高的表达丰度,推测其参与了木薯响应病原菌侵染的过程。

利用酵母双杂交点对点、双分子荧光互补实验证明MeHsfB3b蛋白通过在201~241 aa区域与MeFKBP20蛋白作用。

本研究结果有助于进一步解析MeHsfB3b基因调控木薯对细菌性枯萎病的抗病机理。

关键词:热激转录因子;FKBP型肽脯氨酰顺反异构酶;酵母双杂交;双分子荧光互补中图分类号:S533 文献标识码:AVerification of the Interaction Between Cassava MeHsfB3b Tran-scription Factor and MeFKBP20 ProteinWANG Chaoqun1, LI Linlin1, CHEN Yinhua1, ZHANG Xiaofei3, YAO Yuan2*, GENG Mengting1*1. College of Tropical Crops, Hainan University, Haikou, Hainan 570228, China;2. Institute of Tropical Bioscience and Biotechnol-ogy, Chinese Academy of Tropical Agricultural Sciences / Hainan Institute for Tropical Agricultural, Haikou, Hainan 571101, China;3. International Center for Tropical Agriculture, Cali AA6713, ColombiaAbstract: The heat shock transcription factor MeHsfB3b is important in regulating the resistance to cassava bacterial blight. In the previous study, the candidate interaction protein MeFKBP20 of MeHsfB3b was obtained by the yeast two-hybrid technology, which belongs to the FKBP-type peptide prolyl cis-trans isomerase gene family. In this study, the full-length MeFKBP20 gene was cloned to be 561 bp, encoding 186 amino acids, with a molecular weight of 19.99 kDa and a FKPB_C domain. The expression pattern analysis showed that MeFKBP20 was highly expressed in mature leaves and roots of cassava, and the expression level of young leaves and petioles was low. It could quickly respond to the in-duction of pathogen Xpm CHN11 and maintain a high expression abundance, suggesting that it is involved in response to pathogen infection. The interaction between MeHsfB3b protein and MeFKBP20 protein through 201-241 aa region was proved by the yeast two-hybrid point-to-point and bimolecular fluorescence complementation experiments. The results of this study are helpful to further analyze the mechanism of MeHsfB3b gene regulating cassava resistance to cassava bacterial blight.Keywords: heat shock transcription factor; FKBP-type peptide prolyl cis-trans isomerase; yeast two-hybrid; bimolecular fluorescence complementationDOI: 10.3969/j.issn.1000-2561.2024.03.002收稿日期 2023-02-09;修回日期 2023-03-14基金项目 海南省自然科学基金项目(No. 320RC492);海南省研究生创新科研课题(No. Qhys2021-178)。

木薯MeTPS1基因克隆、表达及生物信息学分析

木薯MeTPS1基因克隆、表达及生物信息学分析

櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄櫄[18]孙 勇,王 丹,仝 征,等.香蕉幼苗叶片响应低温胁迫的比较蛋白质组学研究[J].中国农学通报,2015,31(34):216-228.[19]韩平安,禄晓萍,米福贵,等.基于蛋白质组学的高丹草苗期杂种优势分析[J].作物学报,2016,42(5):696-705.[20]杨 超,胡红涛,吴 平,等.高等植物铁氧还蛋白-NADP+氧化还原酶研究进展[J].植物生理学报,2014,50(9):1353-1366. [21]安飞飞,凡 杰,李庚虎,等.华南8号木薯及其四倍体诱导株系叶片蛋白质组及叶绿素荧光差异分析[J].中国农业科学,2013,46(19):3978-3987.[22]梁潘霞,李杨瑞.甘蔗细胞色素b6-f复合体铁硫亚基(SoCYT)基因的克隆和表达分析[J].西南农业学报,2016,29(5):1032-1037. [23]卢 倩,弭晓菊,崔继哲.植物甘油醛-3-磷酸脱氢酶作用机制的研究进展[J].生物技术通报,2013(8):1-6.[24]夏民旋,王 维,袁 瑞,等.超氧化物歧化酶与植物抗逆性[J].分子植物育种,2015,13(11):2633-2646.[25]徐 平,凌建群,李德葆.一种新的与渗调蛋白基因启动子结合的蛋白基因的分离[J].中国科学(C辑),1999,29(1):68-74.[26]李国龙,吴海霞,孙亚卿,等.甜菜叶片应答干旱胁迫的差异蛋白质组学分析[J].作物杂志,2015(5):63-68.[27]付晨熙,肖自华,高 飞,等.干旱胁迫下蒙古沙冬青叶片蛋白质组学研究[J].生物技术通报,2017,33(6):69-80.[28]肖 振,赵 琪,张川芳,等.蛋白质组学研究揭示的甘蓝型油菜非生物胁迫应答机制[J].植物科学学报,2016,34(6):949-961. [29]孙利军,李大勇,张慧娟,等.NAC转录因子在植物抗病和抗非生物胁迫反应中的作用[J].遗传,2012,34(8):993-1002.丁泽红,付莉莉,吴春来,等.木薯MeTPS1基因克隆、表达及生物信息学分析[J].江苏农业科学,2018,46(9):28-33.doi:10.15889/j.issn.1002-1302.2018.09.006木薯MeTPS1基因克隆、表达及生物信息学分析丁泽红,付莉莉,吴春来,胡 伟(中国热带农业科学院热带生物技术研究所,海南海口571101) 摘要:海藻糖-6-磷酸合成酶(trehalose-6-phosphatesynthase,简称TPS)是海藻糖生物合成途径中的关键酶,提高TPS基因的表达量可以增强植物在干旱、低温等非生物胁迫条件下的抗逆性。

木薯MeLHCB4基因的克隆及表达分析

木薯MeLHCB4基因的克隆及表达分析

热带作物学报2021, 42(10): 2813 2818 Chinese Journal of Tropical Crops收稿日期 2021-01-13;修回日期 2021-03-01基金项目 海南省重点研发计划项目(No. ZDYF2019063);海南省研究生创新科研课题(No. Hys2019-133)。

作者简介 丁凯旋(1996—),男,硕士研究生,研究方向:作物分子育种。

*通信作者(Corresponding author ):耿梦婷(GENGMengting ),E-mail :************************。

木薯MeLHCB4基因的克隆及表达分析丁凯旋1,2,郑婉茹1,2,李琳琳1,2,潘月云1,2,张银东1,2,耿梦婷1,2*,陈银华1,21. 海南大学热带作物学院,海南海口 570228;2. 海南省热带生物资源可持续利用国家重点实验室培育基地,海南海口 570228摘 要:本研究采用RT-PCR 技术克隆了木薯叶绿素a/b 结合蛋白基因MeLHCB4编码区序列。

通过生物信息学对其基因结构、基因编码蛋白的理化性质等进行分析,并对不同物种的LHCB4氨基酸序列进行比对和构建进化树。

结果表明,木薯MeLHCB4基因的CDs 序列全长858 bp ,编码285个氨基酸,蛋白理论相对分子质量约为30.9 kDa ,理论等电点为5.47,该蛋白属于稳定的亲水性蛋白,预测该蛋白可能定位于细胞核或细胞质中。

实时荧光定量PCR 检测该基因的表达模式发现,MeLHCB4基因主要在木薯叶片和茎中表达,受到茉莉酸甲酯(JA )、水杨酸(SA )和乙烯前体(ACC )等激素的诱导表达,推测其可能参与了JA 、SA 、ACC 信号途径。

细菌性枯萎病病原菌侵染木薯叶片12 h 后,MeLHCB4的表达量显著提高,表明MeLHCB4参与了木薯对病原菌的响应过程。

关键词:木薯;叶绿素结合蛋白;MeLHCB4;基因克隆;基因表达 中图分类号:S533 文献标识码:ACloning and Expression Analysis of MeLHCB4 from CassavaDING Kaixuan 1,2, ZHENG Wanru 1,2, LI Linlin 1,2, PAN Yueyun 1,2, ZHANG Yindong 1,2, GENG Mengting 1,2*, CHEN Yinhua 1,21. College of Tropical Crops, Hainan University, Haikou, Hainan 570228, China;2. Hainan Key Laboratory for Sustainable Utiliza-tion of Tropical Bioresources, Haikou, Hainan 570228, ChinaAbstract: In this study, the MeLHCB4 coding region of cassava chlorophyll a-binding b binding protein gene was cloned by the RT-PCR technique. The structure of the gene and the physical and chemical properties of the protein encoded by the gene were analyzed by bioinformatics, and the LHCB4 amino acid sequences of different species were compared and the evolutionary tree was constructed. The results showed that the CDs sequence of cassava MeLHCB4 was 858 BP, encoding 285 amino acids, the theoretical molecular weight of the protein was about 30.9 kDa, and the theoretical isoelectric point was 5.47. The protein was a stable hydrophilic protein, and it was predicted that the protein might be located in the nucleus and cytoplasm. The expression pattern of MeLHCB4 was detected by real-time fluorescence quantitative PCR. It was found that MeLHCB4 was mainly expressed in the leaves and stems of cassava, and was in-duced by hormones such as JA, SA and ACC, which was speculated to be involved in JA, SA, ACC signal pathway. Af-ter 12 hours of Xanthomonas axonopodis pv. manihotis infecting cassava leaves, the expression of MeLHCB4 increased significantly, indicating that MeLHCB4 was involved in the response process of cassava to pathogens. Keywords: Manihot esculenta ; chlorophyll binding protein; MeLHCB4; gene cloning; gene expression DOI: 10.3969/j.issn.1000-2561.2021.10.009捕光色素蛋白复合体主要由色素分子和其结合的叶绿素a/b 结合蛋白组成[1-2]。

木薯锌指转录因子MeDi19-1基因克隆及表达分析

木薯锌指转录因子MeDi19-1基因克隆及表达分析

木薯锌指转录因子MeDi19-1基因克隆及表达分析作者:戴晶颜彦杨海胡伟来源:《南方农业学报》2022年第01期摘要:【目的】克隆木薯锌指转录因子基因MeDi19-1,分析其编码蛋白特征、亚细胞定位、转录激活活性及在木薯不同组织中的表达水平,为探究MeDi19-1基因在木薯中的作用机制提供理论参考。

【方法】从木薯KU50扩增MeDi19-1基因编码区(CDS)序列,利用生物信息学软件对其进行预测分析,并构建pNC-Green-SubC-MeDi19-1融合表达载体,通过农杆菌介导转染烟草表皮细胞,观察荧光信号以确定蛋白的亚细胞定位情况。

利用酵母系统确定其转录激活活性,并基于木薯不同组织转录组数据分析其组织表达特性。

【结果】MeDi19-1基因CDS序列(OL620080)长度为618 bp,共编码205个氨基酸残基,蛋白分子量为22416.79 Da,理论等电点(pI)为6.10,属于不稳定疏水蛋白,含有Di19蛋白家族典型的锌指结构域zf-Di19。

MeDi19-1蛋白的二级结构中含有无规则卷曲(53.66%)、α-螺旋(40.49%)、延伸链(4.39%)和β-转角(1.46%)。

MeDi19-1蛋白氨基酸序列与橡胶树(Hevea brasiliensis)Di19蛋白氨基酸序列(XP_021655585.1)相似性最高,为83.50%。

MeDi19-1基因启动子元件含有脱落酸(ABA)、赤霉素和茉莉酸等激素响应元件及胁迫响应元件和光响应元件。

MeDi19-1蛋白亚细胞定位于细胞膜和细胞核中,具有转录激活活性,且活性区域在C端。

MeDi19-1基因在叶、叶中脉和储藏根中相对表达量较高。

【结论】MeDi19-1基因属于Di19基因家族成员,具有组织表达特异性,主要在叶、叶中脉和储藏根中发挥调控作用,其编码蛋白在木薯组织中作为转录因子参与调节多项生理活动。

关键词:木薯;锌指转录因子;基因克隆;转录激活;表达分析中图分类号: S533.035.3 文献标志码: A 文章编号:2095-1191(2022)01-0115-10Cloning and expression analysis of zinc-finger transcription factor MeDi19-1 gene in cassavaDAI Jing1,2, YAN Yan1, YANG Hai2*, HU Wei1*(1Institute of Tropical Bioscience and Biotechnology, Chinese Academy of Tropical Agricultural Science, Haikou 571101, China; 2College of Life Science and Technology,Huazhong University of Science and Technology,Wuhan 430074, China)Abstract:【Objective】 In this study,a zinc finger transcription factor MeDi19-1 was cloned from cassava. Its coding protein characteristics,subcellular localization,transcriptional activation activity and expression levels in different tissues of cassava were analyzed. This research laid a foundation for further exploration of the function and mechanism of MeDi19-1 in cassava. 【Method】The coding region sequence (CDS) of MeDi19-1 gene was amplified from cDNA of cassava KU50.The bioinformatics analysis predicted the physicochemical properties.The pNC-Green-SubC-MeDi19-1 fusion expression vector was also constructed. By Agrobacterium-mediated transfection of tobacco epidermal cells, and the fluorescence signal was observed to determine the protein subcellular localization.The yeast system was used to determine its transcriptional activation activity, and its tissue expression properties were analyzed based on transcriptomic data from different tissues in cassava. 【Result】The CDS of MeDi19-1 gene(OL620080) was 618 bp in length and encoded 205 amino acids with molecular weight of 22416.79 Da and theoretical isoelectric point (pI) of 6.10. MeDi19-1 protein belonged to an unstable hydrophobin and contained the zinc finger domainzf-Di19 which was typical in Di19 protein family. The se-condary structure of the MeDi19-1 protein contained irregularly coils(53.66%),α-helix(40.49%), extended chain (4.39%)and β-turn(1.46%). The amino acid sequence of MeDi19-1 protein had the highest similarity(83.50%) to the amino acid sequence of Hevea brasiliensis Di19-6 protein(XP_021655585.1). The promoter of MeDi19-1 contained the cis-acting element involved in the response to abscisic acid (ABA),gibberellin,jasmonic acid,stress response element and light response element. MeDi19-1 protein was located in nucleus and cytomembrane. MeDi19-1 protein had transcriptional activation activity,and its active region was at the C-terminus. MeDi19-1 showed high expression levels in leaf,mid-veins and storage root. 【Conclusion】The MeDi19-1 gene is amember of the Di19 gene family, has tissue expression specificity and may play a regulatory role in leaves, mid-veins and storage roots, and its encoded protein is involved in the regulation of multiple physiological activities as transcription factors in cassava tissues.Key words: cassava; zinc-finger transcription factor; gene cloning; transcriptional activation; expression analysisFoundation items:National Natural Science Foundation of China(31771859);Research Project of Sanya Yazhou Bay Science and Technology City (SKJC-2020-2-002)0 引言【研究意義】木薯(Manihot esculenta Crantz)是大戟科块根作物,是全球热带地区一种重要的粮食作物,具有高产、高淀粉、耐旱、耐贫瘠等特征,目前在饲料、食品及工业领域均具有良好的产业发展潜力(Cock,1982;张鹏,2015;颜彦等,2019)。

木薯MeEF_基因的原位PCR物理定位

木薯MeEF_基因的原位PCR物理定位

收稿日期:2011-04-29基金项目:国家973计划项目(2010CB126606);海南大学科研专项项目(NVSTC08-03)和海南大学211工程项目“热带作物遗传育种与生态保育”经费资助作者简介:冯耀文(1986-)男,四川阆中人,海南大学农学院作物遗传育种专业2008级硕士研究生.通信作者:庄南生(1962-)男,海南大学农学院教授,博士,博士生导师.E-mail :zhuangns@163.com 第2卷第2期热带生物学报Vol.2No.22011年6月JOURNAL OF TROPICAL ORGANISMS Jun.2011文章编号:1674-7054(2011)02-0129-04木薯MeEF Ⅰ基因的原位PCR 物理定位冯耀文1,2,王英1,高和琼1,庄南生1(1.海南大学农学院,海南海口570228;2.中国热带农业科学院热带作物品种资源研究所,海南儋州571737)摘要:用原位PCR 技术将木薯延长因子基因(MeEF Ⅰ)定位到木薯染色体上,根据MeEF Ⅰ基因的全长cDNA 序列设计该基因的特异引物,以华南6号木薯根尖为材料制备染色体标本,结果表明:通过原位PCR检测发现,在木薯细胞不同时期的分裂相上均能发现1 2个荧光信号位点;通过核型分析,初步将木薯MeEF Ⅰ基因定位于华南6号木薯的第10号染色体的短臂上,基因位点到着丝粒的百分距离是35.11。

关键词:木薯;延长因子;原位PCR ;物理定位中图分类号:S 533文献标志码:A蛋白质合成延伸因子(elongation factor 1-alpha ,EF-1α)在真核生物蛋白质的合成中起重要作用,它可以通过在核糖体上催化氨基酸链的延伸来推动、控制蛋白质的合成。

研究表明,EF-1α与氨酰-tRNA 和GTP 相互作用,使伸长过程中的氨酰-tRNA 结合到核糖体上,以方便蛋白质的合成[1],同时,它也和植物微管的组合和降解有关[2]。

木薯Linamarase基因的克隆、表达及酶学特性分析

木薯Linamarase基因的克隆、表达及酶学特性分析

木薯Linamarase基因的克隆、表达及酶学特性分析沈培峰;付莉莉;孙雪飘;张家明【期刊名称】《中国农学通报》【年(卷),期】2012(28)12【摘要】亚麻仁苷酶(Linamarase)是存在于木薯、巴豆等作物中的降解生氰葡萄糖苷Linamarin(亚麻仁苷)的酶,在结构上与芥子酶有很大的相似性,对它的研究有利于揭示生氰葡萄糖苷酶和芥子酶之间的关系以及芥子酶的起源问题。

通过真核表达的方法,克隆了木薯Linamarase基因,构建酵母表达载体,转化毕赤酵母GS115,经诱导表达和亲和纯化,获得纯化的Linamarase重组蛋白。

SDS-PAGE分析表明,重组蛋白分子量集中在71 kD左右。

该酶最适反应温度在37℃左右,最适pH约为5。

以pNPG为底物时,Km为1.70 mmol/L,最大反应速率Vmax为8.36μmol/(min.mg)。

【总页数】5页(P164-168)【关键词】木薯;亚麻仁苷酶;生氰葡萄糖苷;重组蛋白;SDS-PAGE【作者】沈培峰;付莉莉;孙雪飘;张家明【作者单位】海南大学农学院;中国热带农业科学院热带生物技术研究所;农业部热带作物生物学与遗传资源利用重点实验室【正文语种】中文【中图分类】Q946【相关文献】1.苦瓜几丁质酶基因的克隆、表达及酶学特性分析 [J], 许君;樊剑鸣;朱海华2.嗜热细菌Clostridium thermocellum阿魏酸酯酶基因的克隆、异源表达及酶学特性分析 [J], 刘奕彤;孙建中;蒋建雄3.海马齿甜菜碱醛脱氢酶基因克隆、高效表达及酶学特性分析 [J], 喻时周;杨成龙;郭建春;段瑞军4.黑曲霉中单宁酶基因的克隆表达及酶学特性分析 [J], 李海花;张蕾;陈龙宾;朱琪;乔家运;王文杰5.海栖热袍菌耐热葡聚糖内切酶EG12B基因的克隆表达及酶学特性分析 [J], 王珊珊;任艳艳;张涛;路宏朝;王令因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

木薯低温诱导基因MeLTI6A的启动子的克隆与序列分析

木薯低温诱导基因MeLTI6A的启动子的克隆与序列分析

Ab s t r a c t Me L T I 6 A( Ma n i h o t e s c u l e n t a l O W t e m p e r a t u r e i n d u c i b l e 6 A 1 i S a l o w t e mp e r a t u r e i n d u c i b l e a n d d r o u g h t
I n s t i t u t e o f T r o p i c o l B i o s c i e n c e a n d B i o t e c h n o l o g y ,C h i n e s e Ac a d e my f o T r o p i c a l A g r i c u l t u r 1 o S c i e n c e s / K e y L a b o r a t o r y f o B i o l o g y a n d G e n e t i c Re s o u r c e s f o T r o p i c a l C r o p s ,Mi n i s t y r f o Ag r i c u h u r e ,Ho l k o u , Ho ln n a 5 7 1 1 0 1 ,C h i n a
r e s i s t a n c e g e n e o f C a s s a v a .I n t h i s s t u d y ,t h e p r o mo t e r o f Me LT I 6 A,1 3 0 4 b p ,w a s c l o n e d b y d e s i g n i n g p i r me s r f o r P CR a mp l i f i c a t i o n f r o m e l e c t r o n i c c l o n i n g b a s e d o n t h e s e q u e n c e o f Me L T I 6 A.B i o i n f o r ma t i e s a n a l y s i s f o u n d t h a t t h e
  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
·研究报告·
生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN
2015, 31(10):125-130
木薯 MeASR 基因克隆及表达分析
胡伟 颜彦 韦运谢 王文泉 夏志强 卢诚 侯晓婉 彭明
(中国热带农业科学院热带生物技术研究所,海口 571101)
摘 要 : 脱落酸 - 胁迫 - 成熟诱导蛋白(Abscisic acid-stress-ripening,ASR)在植物对非生物逆境胁迫的应答过程中发挥着 重要作用。利用 PCR 技术从木薯中克隆了第一个 ASR 基因 MeASR,序列分析表明该基因开放阅读框(ORF)330 bp,编码 109 个 氨基酸。多序列比对和进化树分析表明该基因所编码的蛋白具有 ASR 家族蛋白的保守结构域,与番茄 ASR 家族蛋白 SlASR4 具有 较近的亲缘关系。亚细胞定位分析表明 MeASR 定位在细胞核,实时荧光定量 PCR 分析表明该基因的表达显著受渗透胁迫和 ABA 诱导。结果表明,MeASR 可能作为转录因子参与木薯对干旱逆境胁迫应答及 ABA 信号调节。
的基本特征。ASR 基因的功能主要是参与调控植物 生长发育、衰老、果实成熟、激素信号转导以及对 逆境胁迫的应答[2,3]。
多个物种的 ASR 基因都被报道受水分胁迫(干 旱、渗透、脱水胁迫)以及 ABA 诱 导[2,3],ASR 基 因也因此而得名。2005 年 Yang 等[4]研究表明,百 合的 ASR 基因(LLA23)受 ABA、脱水胁迫和高盐 胁迫诱导。随后,在拟南芥中过量表达百合 ASR 基 因(LLA23)发现,LLA23 过表达株系提高了对干旱 胁迫的耐受性。生理学分析表明,在干旱处理条件 下,转基因株系具有较低的水散失率 ;在甘露醇渗
木薯(Manihot esculenta Crantz)是三大薯类作 物之一,全球第六大粮食作物,被誉为“淀粉之王”, 是世界近 8 亿人口赖以生存的粮食。在我国,木薯 作为新型能源、工业原料和潜在的粮食作物,具有 良好的发展潜力,是热带和亚热带地区最重要的经 济作物之一。木薯具有耐旱的生物学特性,一般情 况下,木薯能够忍耐 4-6 个月的干旱胁迫,是一种 典型的耐旱作物[11]。木薯特殊的耐旱能力表现在 通过丰富的根系从土壤深层吸收水分(地下 2 m), 通过快速的气孔关闭减少水分散失,通过老叶片脱 落 减 少 水 分 消 耗, 最 终 提 高 木 薯 对 水 分 的 利 用 效 率,从而使木薯具有耐旱的特性。而且,在干旱胁 迫后恢复浇水,木薯能够快速地再生新叶片,维持 正 常 的 新 陈 代 谢, 并 补 偿 生 物 量[12]。 木 薯 在 干 旱 胁迫下对水分的吸收、气孔运动、叶片脱落等生物 学过程都是受 ABA 控制的关键生物学过程。因此, Okogbenin 等[12]提出 ABA 生物合成及信号转导可 能是调控木薯特殊耐旱性的关键途径之一。最近的 研究表明,木薯在适应干旱胁迫的过程中可能通过 减缓生长,从而延长对干旱胁迫的耐受时间 ;或者 通过老叶片的脱落维持一定的生长,从而抵抗干旱 胁迫[13]。虽然,近年来的研究取得了一定的研究进 展,但是对木薯耐旱机理的研究还不深入。本研究 从木薯克隆第一个 ASR 基因(MeASR),分析 MeASR 的细胞定位,并研究该基因在干旱和 ABA 处理的表 达水平,旨在研究木薯中的干旱胁迫应答基因,为 进一步解析木薯的耐旱机理提供参考。
Key words: cassava ;MeASR gene ;gene clone ;expression analysis ;subcellular location
1993 年,ASR(Abscisic acid-stress-ripening) 基 因首次在番茄中被发现[1],随后多个物种的 ASR 基 因被分离到。有趣的是,ASR 基因在拟南芥基因组 中不存在[2,3]。ASR 基因编码的蛋白具有转录因子 和 LEA(Late embryogenesis abundant protein)ology Bulletin
2015,Vol.31,No.10
透胁迫处理条件下,转基因株系的发芽率高于野生 型。此外,LLA23 的过量表达能够改变转基因植株 中 ABA 和胁迫相关基因的表达水平。这一结果首次 从遗传学上证明了 ASR 基因参与调控 ABA 信号转 导,并能增强植物对干旱胁迫的耐受性。随后,来 自于番茄、香蕉、玉米、水稻、小麦的 ASR 基因都 被报道在提高植物抗旱性上发挥着重要作用[5-10]。 这些研究结果证明了 ASR 基因通过减少水分散失、 促进渗透平衡、减少细胞损伤、降低活性氧积累、 诱导抗氧化系统等生物学过程增强植物对干旱和渗 透胁迫的耐受性[5-10]。所以可以肯定,ASR 基因参 与 ABA 信号转导,并能提高植物对干旱胁迫的耐受 性,但是其作用机制仍然有待于进一步研究。
收稿日期 :2015-02-02 基金项目 :中央级公益性科研院所基本科研业务费(1630052014003,ITBB140204),海南省自然科学基金项目(314122),海南省重大科技
专项(ZDZX2013023-1) 作者简介 :胡伟,男,助理研究员,研究方向 :植物分子生物学 ;E-mail :huwei2010916@ 通讯作者 :彭明,男,博士生导师,研究方向 :植物分子遗传和作物遗传育种 ;E-mail :mmpeng_2000@
GATGCTTCT-3'。从正常生长两个月的木薯幼苗叶片 cDNA 中扩增 MeASR 基因的开放阅读框,将扩增产 物回收后连接到克隆载体 pMD18-T 上,获得重组质 粒,阳性克隆测序正确后,用 Nco I /Spe I进行双 酶切并回收目的片段。同时,利用 Nco I /Spe I双 酶切 pCAMBIA1304 载体,并回收载体片段。利用 T4 连接酶将目的片段和载体片段进行连接,将连接 产物转化大肠杆菌 DH5α 后,挑取单克隆扩大培养, 经 PCR 和质粒双酶切验证后,进行测序分析,构建 成植物表达载体 pCAMBIA1304-MeASR-GFP。将测 序正确的阳性克隆的质粒转入农杆菌 LBA4404 中。 利 用 农 杆 菌 介 导 的 瞬 时 转 化 法 将 pCAMBIA1304MeASR-GFP 导入洋葱表皮细胞中,随后将洋葱表皮 放在铺有滤纸的 MS 培养基上,25℃暗培养 16-24 h, 然后制作装片,通过 FluoViewTM FV1000 激光扫描共 聚焦显微镜观察荧光信号。 1.2.6 基因的表达分析 根据 TaKaRa 实时荧光定 量标准说明书设计 qRT-PCR 引物(MeASR :P5 5'TCACAAGGAAGGCGAAGA-3' ;P6 :5'-GCAAAGGCAAATCCAATA-3' ;MeEF1 引 物 :P7 :5'-TGAACCACCCTGGTCAGATTGGAA-3',P8 :5'-AACTTGGGCTCCTTCTCAAGCTCT-3'),引物均由上海生工生物 工程有限公司合成。为了保证引物的特异性,引物 设计在非保守区域,PCR 产物的长度维持在 300 bp 以内,并进行了测序分析。以 1.2.2 中得到的 cDNA 为模板,以木薯 MeEF1 基因为内参进行 qRT-PCR 分析。实时荧光定量 PCR 采用 SYBR Green Ⅰ试剂 盒(TaKaRa 公司),按照操作说明在 Mx 3005P 荧光 定量 PCR 仪(吉泰生物科技有限公司)上进行。荧 光定量 PCR 的反应程序 :95℃预变性 3 min ;95℃ 变性 7 s,55℃退火 10 s,72℃延伸 15 s,循环 40 次。 荧光定量 PCR 的反应体系 :SYBR Green Ⅰ 10 μL, ROX 0.4 μL,引物 0.5 μL,cDNA 模板 1 μL,ddH2O 7.6
2015,31(10)
胡伟等 :木薯 MeASR 基因克隆及表达分析
127
/gorf/gorf.html) 及 GENSCAN (http :///GENSCAN.html)进行基因开放 阅读框预测 ;利用 MEGA 5.0 软件构建进化树。 1.2.5 亚细胞定位分析 根据 MeASR 基因的 ORF 序列设计带有酶切位点 Nco I /Spe I且不含终止子 的引物 :P3 :5'-CATGCCATGGCGATGGCAGAAGAG AATAAGCA-3' ;P4 :5'-GGACTAGTAAAGAGATGGT
1 材料与方法
1.1 材料 实验所用木薯品种为 KU50,由中国热带农业
科学院热带生物技术研究所提供。 1.2 方法 1.2.1 材料处理 将木薯茎秆用刀切成约 10 cm 长 的小节,每一小节含数个芽眼。将茎秆插入含有营 养 土 和 蛭 石 的 盆 中, 待 其 发 芽、 生 根。 将 生 长 两 个 月、 且 长 势 一 致 的 木 薯 幼 苗 作 为 供 试 材 料, 以 不 处 理 的 木 薯 幼 苗 作 为 对 照, 设 置 两 个 处 理 组 : (1)甘露醇处理组共 24 颗木薯幼苗,每个样品 3 颗,用 300 mmol/L 甘露醇对木薯幼苗进行 0 h、2 h、 6 h、3 d、14 d、18 d、24 d 和 36 d 灌 根 处 理 ;(2) ABA 处理组共 21 颗木薯幼苗,每个样品 3 颗,用 100 μmol/L ABA 对木薯幼苗进行 0、2、6、10、24、 48 和 72 h(甘露醇、脱落酸等生化试剂购自上海生 工生物工程有限公司)喷施。取每个处理的木薯幼 苗叶片用液氮冷冻,并放入 -80℃超低温冰箱保存。 1.2.2 RNA 的提取及 cDNA 的合成 分别取 1.2.1 不 同处理后的幼苗叶片,按照 RNA 提取试剂盒(天根 生化科技有限公司)的使用方法提取木薯总 RNA。 同时,利用 RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit (Fermentas 公司)将提取的总 RNA 反转录成 cDNA, 并于 -20℃保存备用。 1.2.3 基因克隆 以获得的 cDNA 第一链为模板,设 计正向引物 P1 :5'-ATGGCAGAAGAGAATAAGCA-3' 和 反 向 引 物 P2 :5'-TTAAAAGAGATGGTGATGCTTCT-3' 进 行 PCR 扩 增。 反 应 体 系 为 :Taq DNA 聚 合 酶( 康 为 世 纪 生 物 公 司 )0.5 μL,dNTP 0.5 μL, 10× Buffer 2 μL,上下游引物各 0.5 μL,cDNA 模板 1 μL,ddH2O 15.5 μL ;反应程序为 :94℃预变性 5 min ;94℃变性 20 s,48℃退火 20 s,72℃延伸 30 s, 35 个循环 ;72℃延伸 10 min。PCR 扩增产物经回收、 连接、转化后,挑取单克隆在 LB 液体培养基中培养, 并进行 PCR 鉴定。然后将已鉴定的阳性克隆送华大 基因生物科技公司测序。 1.2.4 生 物 信 息 学 分 析 利 用 DNAMAN 软 件 和 BLAST(http :///Blast.cgi) 进 行 序列比对和保守结构预测 ;利用 ORF Finder(http ://
相关文档
最新文档