细胞培养标准操作程序(SOP)

细胞培养标准操作程序（SOP）

1．目的：

为了保证培养细胞的正常生长，实验技术人员必须明确并正确执行细胞培养的基本操作步骤，特制订实验室细胞培养操作流程。

2．适用围：

适用于来我院细胞室进行细胞培养工作的人员。

3．操作规程：

3.1 培养液、PBS、胰蛋白酶的配制

3.1.1 1000ml培养液的配制

1、准备用品：培养粉、1000ml烧杯、玻棒、量筒、电子分析天平、PH仪、2～3天的新鲜三蒸水（或新鲜反渗水）、NaHCO3粉、1000ml无菌玻璃瓶（100ml×10个玻璃瓶）、青霉素、链霉素、2～3个过滤器、注射器。紫外线照台30min。

2、将培养粉用900ml新鲜三蒸水（或新鲜反渗水）溶解，并冲洗袋残留粉末。

3、充分搅拌，按说明添加成分（如Invitrogen公司的RPMI-1640配制1000ml需加NaHCO3粉2.0g，Invitrogen 公司的DMEM需加NaHCO3粉3.7g等），再充分搅拌。无需加谷氨酰胺，因该培养基里已含有。

4、用1M（1mol/L）HCl 调PH至7.0左右（细胞适宜在PH7.2～7.4生长，配制好后PH值会升高0.2～0.3，故配时调PH至7.0左右）。

5、用新鲜三蒸水（或新鲜反渗水）定容到1000ml。

6、配青霉素 80万/瓶 + 4ml 蒸馏水溶解

配链霉素100万/瓶 + 4ml 蒸馏水溶解

取0.5ml青霉素和0.4ml链霉素加入到1000ml培养液中，使其终浓度均为100U/ml，充分搅拌混匀。

7、在无菌操作台里用0.22um的除菌滤膜过滤配制好的培养液，并分装到到100ml玻璃瓶中，玻璃瓶口用薄膜封口，盖上橡皮塞，放-20℃保存备用。

注意：

（1）配制培养液及调节培养液PH值所使用的HCl和（或）NaOH均需新鲜三蒸水（或新鲜反渗水）配制。

一般于配制当天制备，以保证水的纯度和质量。

（2）准备的100ml×10个玻璃瓶必须事先高压灭菌！烧杯、量筒、玻棒、盛新鲜三蒸水（或新鲜反渗水）的容器均不需高压灭菌，干净即可。

3.1.2 PBS（平衡盐溶液）的配制

NaCl 8g

KCl 0.2g ＋新鲜三蒸水（或新鲜反渗水）至1000ml

Na2HPO4*H2O 1.56g

KH2PO4 0.2g

（1）无需调PH值，其成分溶解后PH为7.4，不需除菌滤膜过滤除菌，放于4℃保存，用前直接高压灭菌（高压时，装PBS的瓶子的瓶盖要插针头!）

（2） Na2HPO4*H2O 1.56g 则Na2HPO4*12 H2O需3.4888g

（3）如欲配制500ml，以上成分减半即可

3.1.3 0.25%胰蛋白酶的配制

胰蛋白酶粉 2.5g

EDTA（乙二胺四乙酸二钠） 0.3g

NaCl 8.0g

KCl 0.4g ` +新鲜三蒸水（或新鲜反渗水）至1000ML

NaHCO3 0.5g

Glucose(葡萄糖) 1.0g

酚红 0.06g

（1）配出来的PH值为7.6，在PH值7.6～7.8围，故不需调PH值。

（2）用0.22um的除菌滤膜过滤分装，瓶口用薄膜封口，放-20℃保存备用。4℃可连续使用1月左右。（3）用于分装的玻璃瓶必须事先高压灭菌！而烧杯、量筒、玻棒、盛新鲜三蒸水（或新鲜反渗水）的容器均不需高压灭菌，干净即可。

（4）如欲配制500ml，以上成分减半即可

3.2 细胞复

1、准备：紫外线照台30min，准备好装有高压灭菌好的吸管、试管的饭盒、废液缸；培养基临用前放水浴箱里温育20分钟。在操作台上摆放好物品，左边为饭盒、培养液等，中间为酒精灯、试管架等，右边放滴管架、镊子，右上角放废液缸。

2、灼烧培养瓶口及瓶盖，用滴管取培养基5ml加入试管中（一滴约为50ul）。

3、戴手套，从-196℃液氮罐中取出冻存管，立即放入37℃水浴箱中快速解冻，同时不断轻轻摇动冻存管，保证冻存管细胞1min融化。以70%酒精擦拭保存管外部，移入无菌操作台。（慢冻快融）

4、用吸细胞液的滴管从冻存管中完全吸出细胞悬液，加入到已装有培养基的试管中，塞子塞试管，800rpm离心2min（用培养基且离心的目的:去除细胞冷冻保护剂DMSO，因常温下其对细胞毒性大），弃上清，试管底部的白色物质为细胞，轻弹混匀。往试管中加培养基、FBS（胎牛血清）各80滴和20滴（使FBS浓度为20％）。用吸细胞液的滴管轻轻吹打，使细胞混匀，以免在培养瓶里成团，影响细胞生长。

5、将试管中的细胞悬液用吸细胞液的滴管全部吸出，加到培养瓶中，标记日期、细胞名称，再把培养瓶放入CO2培养箱。（注意：加入到培养瓶后，培养瓶轻轻平放，用手拿培养瓶侧壁，左右上下轻轻摇晃几次，使细胞均匀贴壁在培养瓶底。）

6、收拾所用物品、用75%酒精喷洒操作台，擦台，保持台面整洁。

注意：

（1）入细胞室前观察CO2%压力，5-7.5mPa左右，减压器表压力不低于0.1mPa！

（2）刚复的细胞需要的营养成分更多些，让FBS浓度达到20％。

（3）离心时间为1～2min，速度为800转，不要离心太久，避免对细胞伤害较大。

（4）滴管使用注意事项：

a.吸细胞液专用一个滴管，各株细胞的滴管一定要严格分开，不能混用，防止细胞间污染。

b.培养基和FBS（胎牛血清）可以用一个滴管，但分开用更好！

c. FBS（胎牛血清）不能和胰酶用一根滴管,因为血清对胰酶活性有抑制作用。

d．胰酶和PBS（平衡盐溶液）可以用一根滴管，不过最好分开

（5）不是所有的细胞复后都能活。死亡原因：冻存时间太长（如2年以上），技术不过关（如吹打太激烈）、细胞传代数太多等。

（6）关于PBS（平衡盐溶液）:

a. PBS溶液配好后要高压灭菌后才能用；PBS高压时其瓶塞一定要插针头。

b. PBS和培养基都可以冲洗培养瓶里细胞中的杂质，但需用温过的PBS冲洗细胞中的杂质。PBS 虽然冲洗杂质效果较好，但它有使细胞易脱壁的倾向，故不可经常冲洗细胞。

c．不温的PBS用来做难消化细胞消化前冲洗一遍的准备，使细胞加入胰酶后易消化。