药理学实验的基本知识
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第一章药理学实验的基础知识一、药理学实验课的目的和要求药理学实验课的目的在于通过实验，使学生掌握进行药理学实验的基本方法，了解获得药理学知识的科学途径，验证药理学中的重要基本理论，更牢固地掌握药理学的基本概念。
在实验课中还应培养学生科学工作的严肃的态度、严格的要求、严密的工作方法和实事求是的作风，并初步具备客观地对事物进行观察、比较、分析、综合和解决实际问题的能力。
为了达到上述目的，要求做到下列事项：实验前（1）仔细阅读实验指导，了解实验目的、要求、方法和操作步骤，领会其设计原理；（2）结合实验内容，复习有关药理学和生理学、生化学等方面理论知识达到充分理解；（3）估计实验中可能出现的情况和发生的问题。
实验中（1）将实验器材妥善安排，正确装置；（2）严格按照实验指导书上的步骤进行操作，准确计算给药量，防止出现差错意外；（3）认真、细致地观察实验过程中出现的现象，随时记录药物反应的出时间、表现以及最后转归，联系课堂讲授内容进行思考；（4）注意节约实验材料。
实验后（1）整理实验结果，经过分析思考，写出实验报告，按时交给指导教师；（2）整理实验器材，洗净擦干，妥为安放。
将存活和死亡动物分别送至指定处所。
做好实验室的清洁卫生工作。
二、实验动物的捉持和给药法实验1.1 蛙和蟾蜍的捉持和给药法[目的] 学习蛙和蟾蜍的捉持和淋巴囊给药法。
[材料] 蛙或蟾蜍；注射器、针头、生理盐水。
[方法] 1.捉持法通常以左手握持，用食指和中指夹住左前肢，用拇指压住右前肢，将下肢拉直，用无名指及小指夹住。
2.淋巴囊内注射法蛙及蟾蜍皮下有多个淋巴囊，注入药物后易于吸收。
通常将药物注射于胸、腹或股淋巴囊。
蛙及蟾蜍的皮肤很薄，缺乏弹性，注射后药物易自针眼漏出，故作胸部淋巴囊注射时应将针头插入口腔，由口腔底部穿过下颌肌层而达胸部皮下；作股淋巴囊注射时，应由小腿皮肤剌入，通过膝关节而达大腿部皮下。
这样才可避免药液外漏。
注入药液量一般为0.25ml∽0.50ml试以生理盐水作胸淋巴囊和股淋巴囊注射练习。
药理学实验的基础知识
药理学实验的基础知识药理学是研究药物对生物体产生作用的科学，而药理学实验是用来研究、验证药物的药效、毒性和代谢等特性的重要手段。
在进行药理学实验之前，研究人员需要掌握一些基础知识，以确保实验的可靠性和科学性。
药理学实验的分类药理学实验通常可以分为体外实验和体内实验两大类。
体外实验体外实验是在体外环境（如离体器官、细胞培养皿等）中进行的实验，用于研究药物对细胞、基因等的作用机制和生物效应。
体内实验体内实验是在动物模型或人体中进行的实验，用于评价药物的生物活性、毒性和药代动力学特性等。
药理学实验的设计原则进行药理学实验时，必须遵守一些设计原则，以确保实验结果的准确性和可靠性。
1.随机分组：实验对象在实验前应随机分配到不同的实验组，以减少实验结果的偶然性。
2.双盲对照：在动物实验中，研究人员应当实现实验组和对照组的盲法实验，以减少实验结果的主观影响。
3.样本量控制：实验设计时需要合理确定实验组和对照组的样本量，以保证实验结果的统计学意义。
4.质量控制：在进行实验的过程中，需要确保实验操作的标准化和一致性，以减少操作误差。
药理学实验的常用技术在药理学实验中，有许多常用技术可以帮助研究人员获取所需数据和信息，例如：•ELISA检测技术：用于测定细胞因子、蛋白质等分子在样本中的浓度。
•Western blot：检测蛋白质表达水平和结构特征的技术。
•细胞色素释放试验：用于评价药物对细胞毒性的影响。
•动物行为学实验：评估药物对动物运动、认知等行为的影响。
药理学实验的伦理和安全注意事项在进行药理学实验时，研究人员需要遵守相关的伦理规范和安全措施，以保障实验对象的权益和研究人员的安全。
1.动物实验伦理：研究人员应当遵守动物实验的伦理规范，尽量减少动物的痛苦和不必要的死亡。
2.实验室安全：在实验室操作时应当穿戴个人防护装备，确保实验操作的安全。
3.数据保密：研究人员需要确保实验数据的保密性，防止实验数据泄露。
结语药理学实验作为药物研发的重要环节，需要研究人员具备扎实的基础知识和实验技术，以确保实验结果的科学性和可靠性。
《药理学实验》课件
实验结果
分析药物对炎症反应的抑制作用，探 究药物作用机制，为临床用药提供依 据。
04
药理学实验的最新进展
高通量药物筛选技术
高通量药物筛选技术是一种高效、自动化的药物筛选方法，通过同时测试大量化合 物来发现具有潜在治疗作用的候选药物。
该技术利用高灵敏度检测系统和自动化设备，在短时间内对大量化合物进行筛选， 大大提高了药物发现的效率。
实验结果
分析药物对中枢神经系统的抑 制作用，探究药物作用机制，
为临床用药提供依据。
利尿药的实验研究
总结词
通过观察利尿药对动物排尿量和电解质 平衡的影响，评估药物的利尿效果和安
全性。
实验方法
给动物不同剂量的药物，收集尿液并 检测尿量、尿电解质等指标，评估利
尿效果。
实验动物
常用大鼠作为实验对象，观察药物对 动物排尿量、尿电解质成分及肾功能 的影响。
实验操作的安全规范
01
实验前的安全评估
对实验过程进行安全评估，识别 潜在的安全风险和隐患，并采取 相应的预防措施。
02
03
个人防护措施
危险品管理
实验人员应穿戴适当的防护服、 护目镜、手套等个人防护用品， 以降低意外伤害的风险。
对危险品进行严格管理，确保储 存、使用和处理过程的安全可控 。
实验废弃物的处理与环保要求
给பைடு நூலகம்方法
根据实验要求和药品性质，选择适当的给药途径和方法，如灌胃、注射、口服等 ，确保药物能够有效地进入动物体内。
实验数据的记录与处理
数据记录
在实验过程中，及时、准确记录各项实验数据，包括动物体 重、给药剂量、反应情况等，确保数据的完整性和准确性。
数据处理
对实验数据进行整理、统计和分析，运用适当的统计学方法 ，得出科学、可靠的结论，为进一步的药理学研究提供依据 。
药理学实验设计及基本知识PPT
随机化分组设计可以减少系统误差和偶然误差，提高实验的准确性和可靠 性。
对照实验设计
01
对照实验设计是通过设置对照组来比较实验组和对 照组之间的差异，以评估实验处理的效果。
02
对照组可以接受空白处理、已知有效处理或安慰剂 等，以排除非实验处理因素的影响。
给药方法与剂量选择
给药方法
根据药物性质和实验要求，选择 适当的给药途径，如口服、注射 、吸入等。
剂量选择
根据动物模型和实验目的，选择 适当的药物剂量，并确定给药时 间和频率。
对照实验
设置对照组，给予相应的安慰剂 或空白对照，以评估实验药物的 疗效和安全性。
实验操作与观察指标
实验操作
按照实验要求，对动物进行适当的操作，如 手术、采样等。
3
临床试验
在人类志愿者中进行实验，评估药物疗效和安全 性。
02
药理学实验基本知识
Chapter
药理学实验的目的
验证药效
通过实验验证药物对特定疾病或 症状的治疗效果。
01
02
药物安全性评估
03
评估药物在不同剂量下的安全性 ，了解其不良反应和毒性。
04
探究药物作用机制
研究药物在体内的作用机制，了 解其如何发挥作用。
药物比较研究
比较不同药物之间的疗效、安全 性和作用机制。
实验动物的选择与准备
选择合适的动物模型
01
根据研究目的选择适合的动物种类和品系，确保实验结果具有
代表性。
动物饲养管理
02
提供适宜的生活环境，确保动物健康状况良好，以便获得准确
药理学实验
药理学基础实验实验一药理学实验的基本知识和技术 6课时一、动物实验的基本知识和技术（一）实验动物的要求和选择药理学实验要求根据不同的实验目的选用相应合格的医学实验动物。
实验动物按微生物控制分为四级：一级为普通动物，要求不带有人兽共患病的病原体以及体外寄生虫；二级为清洁动物，在一级要求基础上还必须不带有动物传染病的病原体；三级为无特定病原体的动物；四级为无菌动物。
药理教学实验可选用一级普通动物，科研实验必须用二级以上的实验动物。
1．青蛙和蟾蜍其心脏能在离体情况下保持较持久地节律性搏动，可用来观察药物对心脏的作用；其坐骨神经腓肠肌标本可用来观察药物对周围神经、横纹肌或神经肌肉接头的作用，用于局麻药和肌松药实验。
2．小鼠最为常用，易大量繁殖，适用于需要大量动物的实验，如半数致死量测定和药物的初筛实验。
3．大鼠用途与小鼠基本相同。
主要用于一些用小鼠不便进行的实验，如血压实验等。
大鼠对炎症反应较为灵敏，其踝关节炎模型常用于观察药物的抗炎作用。
4．豚鼠对组胺特别敏感，是筛选平喘药和抗组胺药最理想的动物。
5．家兔性情温顺，易饲养，亦是药理实验中最常用的动物之一，用于观察药物对心脏、血压、呼吸的影响。
6．狗易于通过驯养与人合作，因而很适合于慢性实验，如用手术造成胃瘘、肠瘘以观察药物对胃肠蠕动及分泌功能的影响；高血压的实验治疗；新药临床前毒性试验等。
（二）实验动物的捉持方法2．小鼠右手提起鼠尾，放在鼠笼（或其他粗糙面）上，向后轻拉其尾，迅速用左手拇指和食指捏住小鼠头颈部皮肤，并以左手小指、无名指压其尾部于手掌尺侧。
另一方法是只用左手，先用食指和拇指抓住小鼠尾巴后用手掌尺侧和小指夹住尾根部，然后用左手拇指和食指捏住头颈部皮肤。
（三）实验动物的给药方法1．灌胃小鼠：左手捉持小鼠，使头部朝上，颈部拉直，腹部朝向操作者，右手持灌胃管，自口角插入口腔，使灌胃管与食管成一直线，再从舌面紧沿上腭缓慢进入食管2cm～3cm，将药液缓慢注入。
药理学实验
动情况，比较两只小鼠有何不同？
[记录]
组别 正 常 损坏 肾功 鼠号 1 2 3 4 体重(g) 药量（ml) 注射时间 产生作用时间 表 现 备 注
实验结束后可将小鼠处死，比较二组动物肾脏的差别。氯化高汞中毒小鼠的 肾脏常明显肿大。如用小刀纵切，可见到皮质部较为苍白，髓质部有充血现象。 ［讨论题］ 为什么两组小白鼠的表现不同？有何意义？
攻击肝细胞膜上的磷脂分子， 使脂质过氧化
三氯甲基自由基 (· Cl3 ) 与微粒体Pr发生共价结合，损伤细胞 膜的结构功能，使可溶性酶活性↑
四氯化碳
功能氧化酶系统
(活性代谢产物）
直接溶解 肝细胞膜
抑制钙泵，使Ca 2+↑, 使肝细胞内Ca堆积
↓
死亡
戊巴比妥钠属巴比妥类药物，具有镇静催眠抗惊厥的 作用。随用量的增加而出现镇静、催眠、麻醉的作用。主要 在肝脏代谢失活。
2、组距、组数的确定
在预备实验所获得的0%和100%的致死量范围内确定组距、组数。 组距：指相邻两组剂量对数之差。用“ⅰ”表示。 ⅰ＝ＤK-ＤL／G-1 ＤK、ＤL分别为最大剂量、最小剂量的对数值；Ｇ为预计组数。 一般组距在0.08－0.1之间（ⅰ值过小则分组过多，各组间死亡率重叠；ⅰ值过 大则分组过少，使标准误增大）。 ⅰ的大小取决于实验动物对被试因素的敏感性。敏感性大，组距可小，敏感性小 则组距大。
小叶比正常肝脏更清楚。 ［讨论题］
为什么损坏肝组织的小白鼠在注射戊巴比妥钠后作用时间长？有何意义？
实验方法
• 2、肾功能对药物作用的影响 取正常小白鼠和肾功能已被破坏的小白鼠（实验前 24小时腹腔注射０.1%氯化高氯化汞 )各2只，称其体重， 分别腹腔注射3%的硫酸链霉素 0.15ml/10g，观察小鼠的 活动情况，比较两只小鼠有何不同？
药理学实验的基本知识和基本技术
药理学实验的基本知识和基本技术一、实验动物的种类选择药理学实验常用的动物有小白鼠、大白鼠、豚鼠、家兔、猫、犬、蛙、蟾蜍等。
常根据实验目的和要求选用不同的实验动物。
由于不同的动物具有不同的特点，故所选用的动物应能较好地反映试验药物的选择性作用，并符合节约的原则。
小白鼠：系实验室最常用的一种动物。
易于大量繁殖，且价廉，适用需要大量动物的实验，如药物筛选、半数致死量测定、药物效价比较、抗感染、抗肿瘤药物及避孕药物的研究等。
大白鼠：与小白鼠相似。
一些在小白鼠身上不便进行的实验可选用大白鼠，如药物抗炎作用的实验常选用大白鼠踝关节制备关节炎的模型。
此外也可用大白鼠直接记录血压、作胆管插管，或用大白鼠观察药物的亚急性或慢性毒性。
大白鼠的血压和人相近，且稳定，现常用于抗高血压药物实验。
豚鼠：是实验室常用动物之一。
对组织胺很敏感，容易致敏，常用于平喘药和抗组胺药的实验。
对结核菌亦敏感，故也用于抗结核药的研究。
此外还用于离体心脏及平滑肌实验，其乳头肌和心房常用于电生理特性及心肌细胞动作电位实验，研究抗心律失常药物的机理。
家兔：温顺、易饲养，常用于观察药物对心脏、呼吸的影响及农药中毒和解救的实验。
亦用于研究药物对中枢神经系统的作用、体温实验、热原检查及避孕药实验。
猫：与家兔比较，猫对外科手术的耐受性强，血压较稳定，故常用于血压实验。
但价格较贵。
此外，猫也常用于心血管药物及中枢神经系统药物的研究。
犬：药理实验需大动物时常用犬。
常用于观察药物对心脏泵功能和血流动力学的影响，心肌细胞电生理研究，降压药及抗休克药的研究等。
犬还可以通过训练，用于慢性实验研究，如条件反射、高血压的实验治疗、胃肠蠕动和分泌实验、慢性毒性实验。
蛙和蟾蜍离体心脏能较持久地有节律地搏动，常用于观察药物对心脏的作用；坐骨神经和腓肠肌标本可用来观察药物对周围神经、神经肌肉或横纹肌的作用；蛙的腹直肌还可以用于鉴定胆碱能药物的作用。
须注意：由于动物对外界刺激的反应存在个体差异，在选择实验动物时，还应注意动物的年龄、体重、性别、生理状态、健康状况及其品系、等级等因素对实验的影响。
药理学实验基础知识点总结
药理学实验基础知识点总结药理学实验是药物发现、研究和开发的重要环节，通过实验对药物的药理学特性进行评估，包括药理学作用、药动学、毒性等。
药理学实验要求严谨的实验设计和操作，同时也需要具备丰富的药理学知识和实验技能。
本文将针对药理学实验的基础知识点进行总结，包括实验设计、药理学作用评价、药动学评价、毒性评价等方面的内容。
一、药理学实验的基础知识点1. 实验设计实验设计是药理学实验的重要环节，合理的实验设计可以保证实验结果的可靠性和准确性。
常见的实验设计包括随机对照实验、对照组设计、交叉设计等。
在实验设计中需要考虑到实验对象的选择、样本数量、实验组织、数据分析等方面的内容。
2. 药理学作用评价药理学作用评价是对药物在生物体内产生的药理效应进行评估。
常见的药理学作用评价方法包括体外实验、体内实验、生物化学实验等。
通过这些实验可以评价药物对生物体的生理功能、生化代谢等方面的影响。
3. 药动学评价药动学评价是对药物在生物体内的吸收、分布、代谢和排泄等动力学过程进行评估。
常见的药动学评价方法包括药物浓度-时间曲线、体内动力学参数的测定等。
通过这些实验可以评价药物在生物体内的药代动力学特性。
4. 毒性评价毒性评价是对药物在生物体内产生的毒性反应进行评估。
常见的毒性评价方法包括急性毒性实验、慢性毒性实验、致畸毒性实验等。
通过这些实验可以评价药物对生物体产生的毒性效应和毒性机制。
二、药理学实验的常用技术和方法1. 细胞培养技术细胞培养技术是现代药理学实验中常用的技术之一，通过对细胞系和细胞器官进行培养，可以评价药物对细胞的毒性和药理学作用。
常用的细胞培养技术包括细胞传代培养、凋亡检测、免疫细胞化学染色等。
2. 动物实验技术动物实验技术是药理学实验中常用的技术之一，通过对动物进行给药和实验观察，可以评价药物的药理学作用、药代动力学特性和毒性效应。
常用的动物实验技术包括造模实验、行为学实验、代谢实验等。
3. 分子生物学技术分子生物学技术是药理学实验中常用的技术之一，通过对药物靶标和信号通路进行研究，可以揭示药物的作用机制和药效基础。
药理学实验基本知识
抗凝剂和麻醉剂
麻醉剂
抗凝剂
抗菌药物
用于抑制或杀灭细菌，治疗感染性疾病。
抗炎药物
用于减轻炎症反应，缓解疼痛和肿胀等症状。
抗菌药物和抗炎药物
镇痛药
用于缓解疼痛，提高疼痛耐受性。
镇静药
用于缓解焦虑和紧张情绪，使实验动物保持安静状态。
镇痛药和镇静药
05
CHAPTER
分析药物对生物体的作用方式、作用位点以及作用效果，揭示药物作用的本质。
药物代谢动力学研究
了解药物在体内的吸收、分布、代谢和排泄过程，探究药物在体内的变化规律。
受体机制研究
探讨药物与靶点受体之间的相互作用机制，揭示药物作用的分子基础。
信号转导研究
探究药物对细胞内信号转导通路的影响，阐明药物作用的分子机制。
02
实验动物应具有代表性
选择的动物应能代表人类或其它哺乳动物的生理和药理特性，以便更好地模拟药物作用。
实验动物的选择
实验动物的饲养管理
提供适宜的生活环境
为实验动物提供适宜的生活环境，包括温度、湿度、光照、通风等，以保证动物的健康和实验结果的准确性。
保证充足的营养
为实验动物提供充足的食物和水，以保证其营养需求得到满足，从而保证实验结果的可靠性。
定期观察和记录
对实验动物进行定期观察和记录，包括体重、行为、生理指标等，以便及时发现问题并进行处理。
控制麻醉深度
在麻醉过程中，应控制麻醉深度，避免过深或过浅的麻醉状态对实验结果造成影响。
给予适当的止痛措施
在实验过程中，应给予适当的止痛措施，以减轻动物的疼痛感，提高其生存质量。
选择适当的麻醉剂
根据实验需要选择适当的麻醉剂，以确保动物在实验过程中处于无痛状态。
药理基本实验报告
一、实验目的1. 了解药物的基本作用，包括兴奋和抑制作用。
2. 掌握药物剂量与药效的关系。
3. 学习观察和记录实验结果的方法。
4. 熟悉实验操作的规范和注意事项。
二、实验原理药物是用于预防、治疗和诊断疾病的化学物质。
药物的基本作用包括兴奋和抑制作用。
兴奋作用是指药物能增强组织或器官的功能活动，如提高心肌收缩力、增强神经传导等。
抑制作用是指药物能减弱组织或器官的功能活动，如降低血压、抑制神经传导等。
药物剂量与药效的关系是药理学研究的重要内容。
在一定范围内，药物剂量与药效成正比关系，即剂量越大，药效越强。
但当剂量超过一定范围时，药效不再随剂量增加而增强，甚至会出现毒副作用。
三、实验材料1. 实验动物：小白鼠2. 药物：肾上腺素、心得安、咖啡因、戊巴比妥钠3. 仪器：电子天平、滴定管、量筒、秒表、观察室、记事本四、实验步骤1. 将小白鼠分为两组，分别命名为A组和B组。
2. A组给予肾上腺素，B组给予心得安。
3. 观察并记录两组小白鼠的兴奋或抑制作用，如活动度、呼吸频率、心率等。
4. 分别给予两组小白鼠咖啡因和戊巴比妥钠。
5. 观察并记录两组小白鼠的兴奋或抑制作用。
6. 对实验数据进行统计分析。
五、实验结果及分析1. A组给予肾上腺素后，小白鼠表现出兴奋症状，如活动度增加、呼吸加快、心率增加等。
2. B组给予心得安后，小白鼠表现出抑制作用，如活动度降低、呼吸减慢、心率降低等。
3. A组给予咖啡因后，小白鼠表现出兴奋症状，与肾上腺素作用类似。
4. B组给予戊巴比妥钠后，小白鼠表现出抑制作用，与心得安作用类似。
5. 对实验数据进行统计分析，结果显示肾上腺素、咖啡因对A组小白鼠具有兴奋作用，心得安、戊巴比妥钠对B组小白鼠具有抑制作用。
六、结论1. 药物的基本作用包括兴奋和抑制作用。
2. 药物剂量与药效的关系是药理学研究的重要内容。
3. 药物作用具有选择性，不同药物对不同器官或组织具有不同的作用。
七、讨论1. 药物作用的机制：药物作用的机制复杂多样，包括受体学说、离子通道学说、酶学说等。
药理学实验基本知识教学讲义
知情同意
实验前应向实验对象提供充分的信息，并获得 其知情同意。
避免重复实验
应尽可能避免重复进行相同的药理学实验，以减少对实验对象的伤害。
实验废弃物的处理
分类处理
实验废弃物应根据其性质进行分类处理，如化学废液、生物废弃 物等。
合理处置
对于有害的实验废弃物，应采取适当的方法进行灭活、降解等处 理，确保不会对环境和人类健康造成危害。
01
对实验数据进行整理、统计和分析，确保数据准确无误，并按
照要求绘制图表和撰写报告。
实验结果记录
02
详细记录实验过程、数据和结果，包括实验动物的基本信息、
实验条件、操作步骤、数据记录等。
实验后处理
03
按照实验室规定，妥善处理实验废弃物，确保实验室安全和环
境卫生。
04 药理学实验安全与伦理
实验安全注意事项
给药方式的选择
给药方式的选择对于药物的吸收和分布有重要影响。常见 的给药方式包括口服给药、注射给药、喷雾给药等。选择 合适的给药方式需要考虑药物的性质、作用时间、患者的 状况等因素。
给药方案的制定
在制定给药方案时，需要考虑药物的剂量、给药频率、给 药时间等因素。同时，还需要根据实验目的和实验动物的 状况进行调整，以确保实验结果的准确性和可靠性。
记录与报告
实验废弃物的处理过程应做好记录，并及时向上级主管部门报告。
05 药理学实验案例分析
案例一：药物对心血管系统的影响
总结词
通过观察药物对心血管系统的影响，了解药物的作用机制和 效果。
详细描述
实验通过给药前后测量动物的血压、心率等生理指标，观察 药物对心血管系统的作用，如升压、降压、心率增快或减慢 等。同时，还可以通过心电图的记录分析药物对心脏电生理 特性的影响。
药理学实验设计与基本知识
➢细胞、组织体外培养。更可严格控制条件， 进行深入研究。
➢局限性：人是有神经体液调节的由细胞组 成器官，进而系统，进而形成一个有机的 整体。
人类疾病动物模型分类：
（1）自发性：
如自发性高血压大鼠，LDL受体缺 陷高胆固醇血症家兔。价值高，价 格高。
（2）诱发性：
可以任意复制（时间、数量），实 验条件易控制,，如食饵性动脉粥样 硬化动物模型。结扎冠状动脉复制 急性心梗模型
2、 大白鼠
比较适用于抗炎药物实验，血压测定、利 胆、利尿药实验，也可用于进行亚急性和 慢性毒性实验。
3、豚鼠
因其对组胺敏感，并易于致敏，故常被选 用于抗过敏药、平喘药和抗组胺药的实验。 也常用于离体心脏、心房、肠管实验。又 因它对结核敏感，常用于抗结核病药的实 验。
4、家兔
常用于观察研究脑电生理作用，药物对小 肠的作用。由于家兔体温变化敏感，也常 用于体温实验，用于热原检查。
随机数字表法
(1)编号：将n个受试对象编号，动物可按体重大小， 患者可按就诊顺序。
(2)取随机数：可从随机数字表或计算器或计算机获 得。每个受试对象获得的随机数可是一位数，也 可是两位数或三位数，一般要求及n的位数相同。
(3)确定组别：根据受试对象获得的随机数决定受试 对象在哪一组。分两组可按随机数的奇偶；分k组 可按随机数除以k后的余数进行分组。
1、小白鼠
① 灌胃法(i.g.)：以左手固定小鼠后，使其腹部朝上，颈部伸直。 右手持配有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，再从舌面沿 上腭进入食道。小鼠灌胃容量一般为0.1～0.3m1／10g。
② 腹腔注射(i.p.)：以左手固定小鼠，方法同灌胃，右手持注射 器，取30度角将针头从下腹部向头端刺入腹腔。进针部位不宜 过高，刺入不宜太深，以免伤及内脏。小鼠腹腔注射量一般为 0.1～0.3ml／l0g。
药理学实验基本知识实验报告
药理学实验基本知识实验报告药理学实验基本知识实验报告实验目的掌握药理学实验基本知识，了解药物对生理功能的影响及其机制。
实验材料•药物：咖啡因、阿司匹林、普萘洛尔•器材：药品量筒、显微镜、小鼠实验步骤1.选取十只小鼠，将其随机分为三组，每组均匀分别注射药物。
2.在注射药物后，观察小鼠的行为变化，并记录下来。
3.对注射药物的小鼠进行活体组织切片，使用显微镜观察组织结构变化。
4.将实验结果进行数据统计及分析。
实验结果药物作用效果咖啡因中枢神经兴奋，心跳加速，呼吸加深小鼠兴奋，心跳加速，呼吸加深阿司匹林抗炎，镇痛，退热小鼠行为平静，体温略有下降，观察组织结构无明显变化普萘洛尔延缓心跳，降低心排出量小鼠行为迟缓，心跳减慢，观察组织结构心肌及血管变化不明显实验结论药物对生理功能的影响及其机制各不相同。
药物的使用需要根据具体情况来选择，切勿滥用药物。
实验反思1.实验过程中，由于对药物的剂量掌握不准确，可能会影响实验结果的准确性。
2.针对组织切片的处理过程需要更加细致和精细，否则可能会产生误差。
3.实验前需要对小鼠的行为、体温、心跳等生理指标进行充分了解，以保证实验结果的准确性。
实验意义通过药理学实验的方式，可以更加深入地了解药物对生理功能的影响及其机制，为药物的正确使用提供科学依据。
参考文献1.王莉. 简明药理学[M]. 北京: 人民卫生出版社, 2015.2.Zhou X, Ma Y, Feng X, et al. Caffeine effect onphysiological changes in mice[J]. Journal of Toxicology,2017, 25(6): 805-812.3.Zhu Y, Liu Z, Chen Y, et al. Effects of aspirin andpropylthiouracil on renal injury in mice[J]. Journal ofRenal Injury Prevention, 2017, 6(4): 227-234.注：本实验报告仅供参考，如需真正进行药理学实验，请在专业人员的指导下进行。
护理药理学实验报告药物基础知识
护理药理学实验报告药物基础知识药物是指具有治疗、预防、诊断和改善生理功能等作用的化学物质，可分为药物原料、药物制剂和生物制品三类。
药物原料是指从天然或人工合成的化学物质中提取的纯净活性成分，如阿司匹林。
药物制剂是根据一定的药学原理和技术制成的剂型，以便于使用和控制剂量，如口服药片、注射液等。
生物制品则是指使用微生物、细胞及其产物等生物学原理制备的药物，如疫苗、血清等。
药理学是研究药物对生物体的作用、吸收、分布、代谢、排泄及药效学等问题的学科。
药理学分为药效学和药物动力学两部分。
药效学研究药物在体内的作用机理、药效和毒副作用等问题；药物动力学则研究药物在体内的吸收、分布、代谢和排泄等过程。
药效学可以通过以下实验方式进行研究：1. 组织培养实验：将分离的组织或细胞培养在含有药物的培养基中，观察药物对其生长和代谢的影响。
2. 动物实验：将药物按一定剂量方式给予实验动物，观察其对动物生理和行为的影响。
3. 体外测定实验：通过对体外药效学测试，定量测定药物的作用效能和毒副作用。
药物动力学可以通过以下实验方式进行研究：1. 经口药物吸收实验：将药物按口服方式给予实验动物，取其消化道的灌流液或血液样品，测定药物在消化道内的吸收动力学参数。
2. 物质分布实验：给予动物或人类药物，取出组织样品，测定药物在不同组织和器官内的分布情况。
3. 药物代谢实验：通过检测实验动物或人类体内的代谢产物，测定药物的代谢速率、代谢途径及代谢酶种类等。
4. 药物排泄实验：给予药物，收集实验动物或人类的尿液、大便和汗液等，分析药物经尿液、大便等途径的排泄过程。
综上所述，药理学实验的基本内容是药效学和药物动力学。
不同的实验方法能够有效地研究药物在体内的吸收、分布、代谢和排泄等过程，为药物研发和临床应用提供基础理论支持。
药理学实验优选全文
作风，并训练大家观察、分析和解决问题的 能力
实验前 认真预习
实验时 认真操作 仔细观察并详细记录
实验后 认真书写实验报告,按时上交 整理实验器材(清洗、消毒、摆放整齐并物归 原处)、动物处理 实验室的清洁卫生
实验记录
实验记录是将实验内容如实地记录下来，长期保存 备用。其基本原则是真实、及时、准确、完整，实 验过程中应认真做好实验记录。内容一般应包括：
药理实验的基本操作技术
1. 实验动物的编号 2. 实验动物性别的辨别 3. 实验动物的处死法 4. 实验动物的捉持与常用给药方法 5. 实验动物给药量的计算
1. 动物的编号
可用3~5％苦味酸溶 液（黄色）涂于大鼠、 小鼠和兔皮毛不同部 位以标号
4
1
7
25 8
3 69
2. 动物性别的辨别
小鼠（左为雄性，右为雌性）
1. 时间、温度； 2. 实验标本：动物的种类、体重、标记和标号及如何
分组等。 3. 实验药物：药物的来源、批号、剂型、浓度、剂量
及给药途径。 4. 实验进程、步骤和方法的详细记录。 5. 观测指标的变化和原始的描记图纸。
二、实验结果的整理和报告撰写
[实验目的] 简要 [实验材料] 包括仪器、药品和动物 [实验方法] 写清楚关键环节或简要步骤 [实验结果] 将实验获得的数据进行整理、归纳、分析
和对比，尽量总结出图表或曲线，进行正确的统计学 处理 [结论] 是从实验结果归纳出来的概括性判断 [讨论]包括对实验结果的分析、实验中出现异常现象 的分析、认识、体会和建议等 及思考题的探讨
三、基本操作技术训练
常用实验动物
实验动物是药理学研究最重要的和不可替代 的实验材料
实验一药理实验基础知识
第一章实验一药理实验基础知识第一节药理学实验的目的和要求药理学实验的目的在于通过循序渐进的常规实验，使学生验证和巩固所学的差不多理论；通过综合实验了解较为先进的科研方法和技能，同时培养学生联想及综合分析问题的能力；通过设计性实验，培养学生独立摸索、科学思维及创新的能力，建立实事求是、严谨的科学态度，提高解决实际问题的能力，为后续知识的学习和毕业后的科研工作奠定良好的基础。
为了达到上述目的，要求学生做到以下几点。
【实验前】1.认真阅读实验指导，了解实验目的、原理、要求、方法和操作步骤。
2. 结合实验内容，复习有关药理学、生理学、生物化学及免疫学等方面的理论知识，做到充分明白得。
3. 推测实验中可能显现的情形和发生的问题。
【实验时】1．实验器材的放置力求稳当、整齐、有条不紊。
2．严格按照实验指导上的步骤进行操作，准确运算给药量，节约器材和药品。
要注意爱护实验动物和标本，幸免与实验内容无关的刺激。
3．认真、耐心地观看实验过程中显现的各种现象，实事求是地记录药物显现反应的时刻、表现以及最后的转归，联系课堂讲授的内容进行摸索。
4．在实验过程中遇到疑难之处，先要自己设法解决，如一时解决不了，应向指导教师说明情形，要求教师协助解决。
关于贵重仪器，在未熟悉其性能之前，不可轻易调试。
5．实验室内保持安静、整洁。
用药后须用原瓶塞塞好，公用药品和器材不可随意移动。
【实验后】1．将实验用器材清洗擦干，清点整理后放到指定位置。
如有损坏、缺少，应及时报告老师。
将存活和死亡动物分别送至指定处所。
2．认真整理实验记录，通过分析摸索，撰写实验报告，按时交给指导老师。
3．做好实验室的清洁卫生工作。
第二节药理学实验设计的差不多原则在进行药理学实验时，为保证实验结果的客观性和可信性必须遵循以下差不多原则：一．对比原则：进行实验时必须设对比组。
设置对比组是为了使观看指标通过对比而发觉其在处理因素（如药物等）的作用下而表现出的某种特异性变化，排除各种无关因素的阻碍。
药理学实验基本知识与技能实验报告
药理学实验基本知识与技能实验报告1.了解药理学实验的基本知识、技能及主要实验方法；2.培养对药物作用的判断能力和评价能力；3.掌握实验中的操作技能和实验数据的处理方法。
实验内容：本次药理学实验主要包含以下内容：1.药物实验的基本知识：药物性质、用药途径、药物剂量和使用方法、药物评价方法等；2.药物作用的评价方法：包括药效学、副作用和毒性、药代动力学等；3.药物实验的操作方法：包括药物制剂的制备和制剂的性质分析、动物实验等操作。
实验步骤：1.药物制剂的制备和性质分析a、选取需要制备的药物制剂并准备所需要的药物原料；b、根据药品说明书，确立合适的配伍方案并计算药物配比；c、将药物原料按照配方比例称量，配合制剂的制备；d、对制剂进行性状分析，例如外观、气味、颜色、味道等。
2.动物实验的操作a、准备实验所需动物（小鼠、大鼠、猪等），按照正常条件下饲养一段时间，保持体内环境平稳；b、按照计划的剂量模式，将药物给予动物口服、注射、吸入等途径，然后观察动物的生理状况变化；c、记录药物作用的时间和程度，并观察药物的治疗效果和不良反应；d、分析动物实验结果，得出药物的作用目标、剂量规律等信息。
实验结果分析：经过对本次实验数据的统计分析，我们得出以下结果和结论：1.药物制剂的制备和性质分析这一步主要在于制备药品初步探讨药品相对的性质，包括物理性质和化学性质等。
药品初制后，需要分析其外观特点、颜色、气味、味道、纯度和含量等参数，以评价药品质量。
2.动物实验的操作本实验选择了小鼠模型，并按照剂量递增的模式给予药物，观察小鼠的生理变化，并记录药物的作用时间和不良反应。
实验结果表明，在本剂量下，药物的作用效果比较显著，但也存在一些不良反应，需要进一步的研究和评估。
结论：通过对本次实验的操作和数据分析，我们得出以下结论：1、药物的制备和性质分析是一项必不可少的工作，对于药品的质量保证有重要作用；2、动物实验是一种可靠的实验方法，但也有一些限制和缺陷，需要加以改进和完善；3、本实验显示出了药物的作用效果比较显著，但也存在一些不良反应，需要进一步的评估和改进。
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• 大鼠皮下注射
• 注射部位可在背部或后肢外侧皮下，操作时轻轻提起注射部位皮肤，将注射针头刺入 皮下后推注药液。
• 一次注射量不超过1ml/100g体重。
Байду номын сангаас
2．腹腔注射法
• （1）小鼠腹腔注射 • 左手固定动物，使腹部向上，头呈低位。右手持注射器，在小鼠下腹部腹白线稍向左
动物的抓取
大鼠的抓取固定方法
大鼠的抓取斯基本同小鼠，只不过大鼠比小鼠牙尖 性猛，不易用袭击方式抓取，否则会被咬伤手指， 抓取时为避免咬伤，可带上帆布手套。
实验动物的给药方法
•
经消化道给药
1．小鼠灌胃法灌胃法
12~16号注射针头，尖端部磨钝，针头长4~5cm进针2~3cm后。
灌药量一般为0.1~0.3ml/10g体重
• 大鼠灌胃法 • 长约6～8cm，直径约为1.2mm ， • 一次灌胃量一般在1ml/100g体重。
二、注射给药法
• 小鼠皮下注射 • 通常在背部皮下注射。注射时以左手拇指和中指将小鼠颈背部皮肤轻轻提起，食指轻
按其皮肤，使其形成一个三角形小窝，右手持注射器从三角窝下部刺入皮下，轻轻摆 动针头，如易摆动时则表明针尖在皮下，此时可将药液注入，针头拔出后，以左手在 针刺部位轻轻捏住皮肤片刻，以防药液流出。 • 药量一般为0.1ml—0.3ml/10g体重。
• 6．猫：猫的血压比较稳定，较大鼠、家兔等小动 物更接近于人体，且与人相似，故可用于循环药 理研究。
• 7．狗：是医学实验中最常用的大动物。血液、循 环、消化和神经系统均很发达、与人类较接近。 适用于药理学、毒理学和药物代谢、营养学和药 理学研究。
• 8、小型猪：毛发、皮肤厚薄，形态学和增殖动力 学与人非常相似。理想的烧伤模型
• 小心、规范地操作注意保护动物或标本于最佳活性状态。
三、药理学实验课的要求
• 实验前 • 仔细阅读本课程和有关课程的讲义，了解实验的目的、要求、步骤和操作程序。 • 结合实验内容复习有关理论。
• （二）实验时
• 保持实验室的整齐、清洁，保持实验室安静，不 要高声谈笑，不得进行与实验无关的活动。
• 在每组实验动物不超过10只的情况下适用。
• 双色涂染法是采用两种颜色同时进行染色标记的 方法。双色法色法可标记100位以内的号码。
• 例如用苦味酸（黄色）染色标记作为个位数，用 品红（红色）染色标记作为十位数。个位数的染 色标记方法同单色涂染法；十位数的染色标记方 法参照单色涂染法，
• 即左前肢为10号、左侧腹部20号、左后肢30号、 头部4 0号、背部50号、尾根部60号、右前肢70号、 右侧腹部80号、右后肢90号，第100号不作染色标 记。
• A、兔、猫、狗等动物的标记方法：用毛笔蘸取不同颜色 的染料溶液直接在动物背部涂写号码。若用硝酸银溶液涂 写，则需在日光下暴露1分钟。
• B、大鼠、小鼠的标记：通常在动物不同部位涂上有色斑 点来表示不同的号码。常规的涂染顺序是从左到右、从上 到下。左前肢为1号、左侧腹部2号、左后肢3号、头部4号、 背部5号、尾根部6号、右前肢为7、右侧腹部8号、右后肢 9号、不作染色标记为10号。
• 动物尸体、标本、纸片和废品应放到指定地点。 • 搞好实验室的清洁卫生工作，离开实验室前应关灯，关窗，关水龙头。 • 认真整理实验结果并撰写实验报告。
实验报告的书写
• 每次实验，均要求写出实验报告。实验报告应注意文字简练，通顺，书写清楚，整洁， 正确使用标点符号。
动物实验的基本操作技术
• 实验动物是指人工饲养，对其携带的微生物实行控制，遗传背景明确或者来源清楚的 动物。
• 9、猴：最相似的生物学和行为学特征
实验动物的编号、捉拿与固定
• 1．染料标记法 • 常用染料： • 红色染料：5％中性红或品红液； • 黄色染料：3%～5％苦味酸溶液； • 咖啡色染料：2％硝酸银溶液； • 黑色染料：煤焦油的酒精溶液。
• （2）标记规则：根据实验动物被毛颜色的不同选择不同 化学药品涂染动物。
• 这些个体具有较好的遗传均一性、对外来刺激的敏感性和较好的重复性。
• 1．青蛙与蟾蜍
• 2．小白鼠
• 3．大白鼠
• 4．豚鼠：性情温顺，胆小怕惊吓，对组胺敏感。 常用于免疫学研究和过敏性疾病模型
• 5．家兔：耳大，血管清晰，便于静脉注射和取血。 眼大易观察，常用于眼科研究。因其体温变化较 敏感，也常用于体温实验及热原检查。
动物的抓取
• 小鼠抓取固定方法 小鼠温顺，一般不会咬人，抓取时先用右手抓取鼠 尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行 时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤 ，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按 住鼠尾，小指按住后腿即可。有经验者直接用左手 小指钩起鼠尾，迅速以拇指和食指、中指捏住其耳 后颈背部皮肤亦可。这种在手中固定方式，能进行 实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他 实验操作。
• 比如标记第12号实验动物，在其左前肢涂染品红 （红色），在其左侧腹部涂上苦味酸（黄色）即 可。
• 2．穿耳打孔法：用专门的打孔器在动物耳朵的不同部位打孔或缺口来表示一定号码。 此法是小鼠常用的标记方法之一。
• 3．挂牌编号法：常用于狗、猴、猫等大动物的编号。实验前将之固定于动物的颈圈或 耳上
• 4．人工针刺号码法：先将动物被毛去除，用针在动物皮肤上刺出号码，再用酒精墨汁 涂染即可
药理学实验概述
一、药理学实验课的目的
• 在实验过程中使学生初步掌握药理学实验的基本操作技术 • 验证和巩固药理学的基本理论。 • 通过实验培养学生具有科学的思维方法和科学的工作态度。
药理学实验的特点
• 药理学实验一般以活体为对象，包括其正常功能、整体的动物和离体的器官或组织均 在具有活性的前提下用于实验。
• 爱护公共财物,各组仪器和器材由各组使用
• 按照实验步骤，认真操作，注意保护实验动物和 标本，节省实验器材和药品。
• 仔细、耐心地观察实验过程中出现的现象，真实 客观地记录实验结果，并加上必要的文字注释， 有时还需要绘制图形或曲线进行分析。
• （三）实验后
• 将实验用具整理就绪，所用器械冲洗干净后，交还借用的器械。如果器械有损坏或短 少，应立即报告负责教师。