环境工程微生物学大实验实验报告
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
环境工程微生物学大实验实验报告
实验十二环境中四环素抗性细菌的分离鉴定
组员:吴富华,张真,,金炯震
环5205
一、实验目的
1、自行设计实验方案从环境中分离四环素抗性菌的实验方法。
2、分离获得四环素抗行菌。
3、检测并分析获得的菌株的四环素抗性强弱。
4、学会通过16SrDNA鉴定实验获得的菌株的种属。
二、实验要求
1、自行设计实验证明富集培养是否成功。
2、观察并记录实验现象,作适当的分析或解释。
3、获得至少一株四环素抗性菌(不要多于三株),并进行短期保存。
4、根据实验视频指导和说明,完成菌株基因组DNA纯化,16SrDNA的PCR扩增。
5、比较各组筛选出的抗性菌抗性强弱。
6、各组间交流实验过程和实验结果,分析抗性菌抗性的影响因素。
7、养成良好的实验习惯和团队合作的作风,并给出评价。
三、实验器材
1、培养基(营养琼脂,琼脂粉,酵母膏,胰蛋白胨,氯化钠),提供四环素,琼脂糖,灭菌条件。
2、室温和37℃恒温培养箱和摇床。
3、离心机,漩涡震荡仪,PCR仪,电泳仪,紫外成像分析仪。
四、实验步骤(略)
1、配置富集培养基和四环素梯度培养基
2、四环素抗性菌富集培养
3、单菌株筛选
4、四环素抗性强弱比较
5、单菌株基因组DNA的提取
6、16SrDNA的PCR扩增
7、PCR产物电泳
实验内容、具体操作
单菌株基因组DNA提取(5.17进行步骤1-4;5.18进行步骤5-10;5.20进行步骤11)(1)选择5.8号挑选的菌株进行DNA提取实验;
(2)取200μL菌液转移到1.5mL灭过菌的EP管中,10000rpm常温离心1min,去掉上清(得到菌细胞)。
菌细胞可在-20℃冻存。
(3)如果是革兰氏阳性菌,取100μL,1mg/mL的溶菌酶/TE加到菌液中,漩涡震荡混匀,37℃温浴1h(溶菌步骤)。
(4)用取液器(移液枪)缓慢吸加500μL(革兰氏阳性)或600μL(革兰氏阴性)裂解缓冲液和20μL,20mg/mL蛋白酶K(proteinase K),充分混匀,50℃过夜(完全裂解细菌并降解所有蛋白质)。
(5)第二天,使用1mL一次注射器对溶液进行快速反复吹吸,一般操作十次以上(打断基因组DNA)。
(6)用取液器(移液枪)缓慢吸取600μL中性酚氯仿(pH6~8),振荡混匀,13000rpm离心5min(变性剩余蛋白质,并沉淀)。
(7)用取液器(移液枪)缓慢吸取400μL上层清液加入新管中,用取液器缓慢吸加异丙醇500μL,充分混匀,离心13000rpm,5min,弃上清(沉淀DNA)。
(8)用取液器(移液枪)缓慢吸加600μL,70%乙醇,颠倒混匀两次,离心13000rpm,0.5min,弃上清(先沉淀)。
(9)离心13000rpm,0.5min,用微量取液器吸走剩余上清(加速沉淀干燥)。
(10)开盖在室温下放置5~10分钟,使沉淀干燥。
假如50μL无菌去离子水(干燥溶解DNA)。
DNA可以保存在-20℃冰箱。
(11)使用NanoDrop仪器测定DNA浓度。
3、16SrDNA的PCR扩增(5.22完成)
(1)配置PCR反应母液:10×反应缓冲液5μL,2.5mM dNTPs 4μL,10μM上游引物1μL,10μM下游引物1μL,无菌去离子水33.5μL,Taq酶0.5μL(使用取液器,枪头触碰液面吸取)。
混匀。
(2)取100~500ng基因组DNA,无菌去离子水稀释至5μL,加入反应母液并混匀。
(3)PCR扩增,反应程序如下设置:①95℃2min,②98℃10s,③55℃30s,④72℃1.5min,⑤回到②,35个循环,⑥52℃,5min,⑦4℃维持。
PCR产物电泳(5.22完成)
(1)0.8%琼脂糖凝胶的配制:在500mL锥形瓶中加入1×TAE工作液100mL(从50×TAE 即50倍浓缩的TAE储液来稀释获得),加入0.8克琼脂糖,微波炉加热至沸腾,立即取出(注意防烫伤),混匀观察是否完全溶解。
一般反复三次即可全部溶解。
加入10μL Gel-Red,轻轻摇匀后倒入事先插好小孔梳子制胶版中。
置于通风橱中凝固30分钟。
(2)取出PCR产物,每50μL体积加入6μL的10×上样缓冲液(10×loading buffer),混匀。
将制好的胶轻轻拔去梳子,放在电泳槽中,有空的一边朝向负极。
加入1×TAE使得缓冲液正好没过凝胶,胶孔中无气泡。
在每个胶孔中加10μL样品,最后在边上孔加10μLDNA 分子量标准(DNA marker)和阳性对照(助教预实验获得)。
设定电压为120V,等蓝色电泳带跑至一半胶长度后(一般20~30min),停止电泳。
(3)将电泳后的胶放在紫外成像仪上,拍照,确定目标DNA条带。
六、实验结果记录与讨论
1、抗性比较平板划线结果图:(结果展示顺序为四环素浓度从16mg/L~256mg/L,我组1024mg/L、512mg/L平板未长出菌落,方位为每个图片上部标有w5部分)
①②
③④
⑤
分析:如图可看到,菌落生长情况为,随着浓度不断升高,菌落逐渐稀疏,可能因为四环素浓度越高对细菌的生长抑制效果越明显,16mg/L~256mg/L的培养皿上都长出了菌落,说明抗性菌分离成功。
2、DNA浓度测定结果(上)以及抗性菌镜检结果(下)(提取的DNA以及镜检对象为抗性为256mg/L的抗性菌(阳性))
①②
③
分析:如②图所示,我组所得DNA浓度为121.2ng/μL,浓度偏低,但结合其他组所测数据,存在有些组跟我们所测的数据相差无几,说明并不是偶然,在操作上没有什么疏漏。
3、PCR电泳结果图:
分析:上图为DNA凝胶电泳结果,DNA marker 在最左边,从上到下依次为6000bp, 4000bp, 3000bp,2500bp, 2000bp, 1500bp, 可见获得的目标片段在4000bp到3000bp之间并且成像较宽较亮,则此片段的DNA含量较高,分子量较为分散,在1500bp处有较弱成像,可能为分子量较小的引物。
所用的引物为8F, 1492R。
由配制的培养皿至长菌的过程图:
七、思考题
(1)如果筛选到的菌株为革兰氏阴性菌,用革兰氏阳性菌的方法提基因组DNA,能成功吗?为什么?
答:可以,因为提取革兰氏阴性菌DNA 的方法只比阳性菌少了一个溶菌的步骤。
其中加入的100μL 1mg/ml 溶菌酶/TE 可以破坏细胞壁中的N-乙酰胞壁酸和N-乙酰氨基葡萄糖之间的β-1,4 糖苷键,并使细胞壁破裂。
阴性菌细胞壁,比阳性菌的细胞壁更易破裂,增加溶菌步骤应该更好成功。
(2)提基因组DNA步骤(5)中变性剩余蛋白,这些蛋白主要是什么蛋白?
答:主要是步骤(3)所加的蛋白酶K。
(3)比较其他组和自己组实验方案和实验结果的异同,从实验方案角度解释本组筛选到的菌株抗性强或者弱的原因。
答:我组筛选出来的细菌菌四环素抗性比其他的组的要低一些,主要原因可能是活性污泥中不同抗性的抗性菌分布存在差异,在取活性污泥样品时没有取到抗性较大的菌。
也可能因为培养时间较短,抗性较高的细菌浓度较小,细菌没有在较高浓度浓度下明显生长成可观测到的程度。
因此未筛选到。
八、组内分工情况
1、4.24—4.28的菌株培养与筛选:张真主要负责平板划线,吴富华负责梯度浓度培养基的配制,和金炯震负责镜检;
2、5.8抗性强弱比较,吴富华、和金炯震镜检,张真平板划线;
3、DNA提取、PCR扩增以及PCR产物电泳由全组人员共同合作完成。
九、实验总结
实验结果是我们组获得了最高有256mg/L四环素抗性菌,如果但从组内的平行实验组及浓度梯度组的结果作比,是没有大问题的,实验中的步骤也都很好的完成,但是在组间对比中,我们组的菌的抗性要弱于他们的。
造成这个结果的可能有很多,比如前面说到的菌源中本就没有更高的抗性菌落,或者抗性菌生长缓慢,短期培养未见可见菌落等,再来就是如筛选培养基出现差错,四环素不足等原因,致使组内实验结果不错,但是组间比对较差。
虽然实验的结果并不如我们预计的那么好,但是实验操作本身没有错误,并且在实验过程中,引发了很多我们关于如何实验,如何筛选等的深入思考,可以说是即学习到了知识,又增长了见识,建议以后的课程也多设置些大实验的项目。