腺相关病毒生产流程
2023届吉林省吉林市高三第三次调研测试理综生物试题(原卷版)
（3）mRNA疫苗就是将病毒靶标蛋白合成所需的一小段mRNA混入载体（如脂质体）中，注入人体后可产生靶标蛋白，激发免疫反应。人没有感染风险的原因是____________。DNA疫苗制备需要扩增新冠病毒的某种基因，扩增时需加入引物，如扩增n次，则需要引物_____________个。
C.反式脂肪酸的长链中存在碳碳双键，需要时可以分解供能
D.生活采购时，应看配料表，尽量选择不含有反式脂肪酸的食品
2.木糖（C5H10O5）是一种不能被细胞吸收的单糖，现将某植物的根细胞放入质量百分比浓度为a的木糖溶液中进行实验。下列叙述不合理的是（）
A.木糖不能被根毛细胞吸收与原生质层的选择透过性有关
A.男性患者的致病基因可能来自其祖父或祖母
B.该疾病患者的细胞免疫会出现功能缺陷
C.该疾病的发病率在男性和女性中分别是k，k2
D.统计该病 发病率需要在患者家系中调查
7.为拓展海带在食品、工业、环保等方面的应用，科研人员进行了相关研究。
（1）现在海洋存在各种污染，而海带具有可大量地吸收氮、磷等元素的特点，这说明海带可用于治理____________。
11.新型冠状病毒在世界范围内广泛传播，各国都在努力加快疫苗研发进度；到目前为止，已有部分疫苗进入临床使用阶段。结合所学回答有关问题。
（1）灭活疫苗方案具有技术方案简单、成熟度高、研发快速的优点，在体外利用_____________（“固体培养基”或“人呼吸道上皮活细胞”）培养新冠病毒，经过灭活减毒处理后，注入人体，刺激其产生____________。
病毒包装相关资料docsiRNA化学合成
(1)转染范围广，可以感染各种细胞类型，如淋巴细胞或肝细胞、肌细胞等;
(2)转入的外源基因可完全整合;
(3)对细胞感染率高，到达100%;
(4)感染细胞不发生病变，可树立细胞系临时继续表达外源基因。
逆转录病毒载体的缺乏之处，如:
(1)只能整合至分裂期细胞;
(2)可拔出外源基因片断小〔<10kb〕，难以满足较大基因的拔出;
1）重组后的慢病毒载体质粒以及测序图谱。
2）产品无菌检测结果。
3）慢病毒储液及相应的病毒滴度。
我们保证：1)制备的病毒颗粒携带片段的正确性2)病毒颗粒的总数和病毒滴度：如无特殊要求我们提供1mL滴度为1×107-1×108/mL的病毒储液。
3.3其他类型病毒载体包装
病毒包装的siRNA基因能否对目的靶基因停止有效基因缄默，依赖于外源基因在受体中高效、动摇的表达，而这在很大水平上取决所采用的载体系统。
与其他载体病毒相比，腺相关病毒的特点：
(1)AAV无致病性，并且在受染体上不会引发免疫反响;
(2)宿主范围广，并可感染非分裂细胞;
(3)AAV载体可将外源基因定点整合到人类19号染色体长臂，基因表达动摇;
(4)AAV是一种无包膜病毒，对各种理化处置动摇，易于分别纯化。
腺相关病毒也有一些缺陷，如病毒滴度低，感染效率低，外源基因容量小及病毒对细胞毒性。
3.1.2原理：
腺病毒(Adenovirus，Ad)是一种无包膜的线状双链DNA病毒，其复制不依赖于宿主细胞的分裂。有近50个血清型，大少数Ad载体都是基于血清型2和5，经过转基因的方式取代E1和E3基因，降低病毒的复制才干。这些重组病毒仅在高水平表达E1和E3基因的细胞中复制，因此是一种适用于治疗的高效控制系统。
AAV操作流程
腺相关病毒（Adeno-Associated Viral Vector，AAV）属于微小病毒科( parvovirus)，为无包膜的单链线状D NA 病毒。
AA V 的基因组约4700bp，包括上下游两个开放读码框架(ORF)，位于分别由145 个核苷酸组成的2个反向末端重复序列(ITR)之间。
由于腺相关病毒具有宿主范围广、安全性高、免疫原性低、表达稳定和物理性质稳定等优点，已被广泛地应用于基础研究和临床试验中，并且腺相关病毒载体已成为世界上最常用的基因治疗载体之一。
AAV病毒特点1. 安全性高：迄今从未发现野生型A A V 对人体致病，重组A A V 基因组序列上去除了大部分的野生型A A V 基因组元件，进一步保证了安全性；2. 免疫原性低：AA V2 的基因组仅 4681 个核苷酸，便于用常规的重组 DNA 技术进行操作，而且进行动物实验时造成的免疫反应小；3. 宿主范围广：能感染分裂细胞和非分裂细胞；4. 表达稳定：能介导基因的长期稳定表达；5. 物理性质稳定：在60℃不能被灭活，能抗氯仿；AAV生物学特性表1 不同病毒的生物学特性比较慢病毒逆转录病毒腺相关病毒腺病毒包膜有有无无颗粒直径90-100 nm90-100 nm20-30 nm60-90nm 基因组dsRNA dsRNA ssDNA dsDNA表达起始时间48-72h48-72h72-96h24-48h表达持续时间> 2 months> 2 months> 6 months~1 month宿主基因组整合方式随机高频整合随机高频整合定向低频整合或非整合非整合AAV载体不同血清型研究发现AAV 具有多种血清型，各种不同血清型的AAV 载体的主要区别是衣壳蛋白不同，因此对不同的组织和细胞的转染效率存在差异。
目前汉恒生物在包装腺相关病毒时有12种不同的AAV 血清型可供客户选择，建议客户针对不同组织器官选择相应血清型的AAV 病毒，见表2。
腺病毒包装操作手册
汉恒重组腺病毒操作手册目录腺病毒安全使用和注意事项腺病毒储存与稀释的注意事项一、整体实验流程二、实验材料三、腺病毒包装和浓缩四、重组腺病毒滴度(PFU的测定五、重组腺病毒感染目的细胞六、重组腺病毒用于动物实验附1:汉恒生物腺病毒载体附2:腺病毒感染细胞最佳MOI的摸索(表达荧光的病毒附3:汉恒生物常见三种病毒感染目的细胞比较腺病毒安全使用和注意事项➢腺病毒安全使用注意事项(*非常重要!!!*1腺病毒相关实验请在生物安全柜(BL-2级别内操作。
2操作病毒时请穿实验服,佩戴口罩和手套,尽量不要裸露双手及手臂的皮肤。
3操作病毒时需要特别小心病毒溅出。
如果操作时超净工作台有病毒污染,请立即用70%乙醇加1%的SDS溶液擦拭干净。
4接触过病毒的枪头、离心管、培养板及培养瓶请用84消毒液浸泡后统一处理。
5如实验过程中需要离心,应使用密封性好的离心管,必要时请用封口膜封口后离心。
6病毒相关的废弃物需要特殊收集,统一经高温灭菌后处理。
7实验完毕后请用香皂清洗双手。
➢腺病毒储存与稀释的注意事项1腺病毒的储存收到病毒液后若在短期内使用,可将病毒放置于4℃保存(一周内使用完最佳;如需长期保存请分装后放置于-80 ℃。
注:a.反复冻融会降低病毒滴度(每次冻融会使病毒滴度降低10%~50%,因此在病毒使用过程中尽量避免反复冻融。
汉恒生物对病毒已进行分装(200 μl/tube,收到后请直接放置-80℃冰箱保存即可。
b.若病毒储存时间超过6个月,汉恒生物建议在使用前重新测定病毒滴度(参见附表2-慢病毒滴度测定方法。
2腺病毒的稀释需要稀释病毒时,请将病毒取出置于冰浴融解后,使用PBS或培养目的细胞用的无血清培养基(含血清或含双抗不影响病毒感染混匀分装后置于4℃保存(一周内使用完最佳。
重组腺病毒是一种复制缺陷的腺病毒载体系统,在基因治疗、基础生命科学研究等领域被广泛应用。
重组腺病毒具有以下几个显著优点:感染范围广,几乎可以感染所有的细胞系、原代细胞和部分组织;感染效率高达100%,可全面超越其他病毒载体工具和脂质体转染;对外源基因容载能力大(可以高达8Kb;不整合基因组;滴度高,操作方便。
腺相关病毒包装手册
腺相关病毒（AAV）构建及包装操作手册目录一、AAV安全注意事项二、AAV储存和稀释注意事项三、AAV介绍四、汉恒生物AAV产品服务及载体信息与现货列表五、AAV整体实验流程六、实验材料七、AAV载体构建八、AAV包装九、AAV收集和纯化十、AAV滴度测定十一、AAV感染细胞测试十二、AAV用于动物实验（重磅干货，五星推荐）十三、案例分享附件1附件2一、AAV安全使用注意事项（*非常重要！！！*）1)AAV相关实验请在生物安全柜（BL-2级别）内操作。
2)操作病毒时请穿实验服，佩戴口罩和手套，尽量不要裸露双手及手臂的皮肤。
3)操作病毒时特别小心病毒溅出。
如果操作时超净工作台有病毒污染，请立即用70%乙醇加1%的SDS溶液擦拭干净。
接触过病毒的枪头、离心管、培养板、培养液请用84消毒液浸泡后统一处理。
4)如需要离心，应使用密封性好的离心管，如有必要请用封口膜封口后离心。
5)动物注射操作请在生物安全柜内（BL-2级别）完成。
6)病毒相关的废弃物需要特殊收集，统一经高温灭菌处理。
7)实验完毕用洗手液清洗双手。
二、AAV储存和稀释注意事项1.AAV的储存收到病毒液后若在短期内使用，可将病毒放置于4℃保存（一周内使用完最佳）；如需长期保存请分装后放置于-80℃。
注：a．反复冻融会降低病毒滴度（每次冻融病毒滴度会降低10%-50%），因此在病毒使用过程中应尽量避免反复冻融。
汉恒生物已对病毒进行了分装（200 l/tube），收到后请直接放置-80℃保存即可。
b．若病毒储存时间超过6个月，汉恒生物建议在使用前重新测定病毒滴度。
2.AAV的稀释需要稀释病毒时，请将病毒取出冰浴融解，再使用无菌PBS或生理盐水混匀分装后置于4℃保存(一周内使用完最佳)。
三、AAV介绍腺相关病毒（AAV）属微小病毒科( parvovirus)，为无包膜的单链线状DNA 病毒。
只有在腺病毒或者疱疹病毒等辅助病毒协助下，宿主才能产生具有感染性的AAV，所以AAV被称作腺相关病毒。
人基因治疗研究和制剂质量控制技术指导原则
一、引言 (1)二、研究内容和制品质量控制 (2)1治疗用的目的基因 (2)2．载体 (2)3．DNA 重组体 (2)4．基因导入系统构建包括病毒载体与非病毒载体基因导入系统。
(3)(二)细胞库及工程菌库的建立和检定 (3)1.细胞库 (3)2．工程菌库 (3)(三)基因治疗制品制备和生产工艺 (4)1.普通要求 (4)2．以重组病毒作为基因治疗制品者，要求必须建立种子病毒库和工作病毒库。
(4)3．非病毒型重组质粒 DNA 复(混)合物作为最终制品者，要求需详述。
(4)4．以基因工程化的细胞为最终制品者，包括 exvivo 及其它形式的基因治疗。
(4)(四)制品的质量控制 (5)1. 重组病毒作为基因治疗制品的质量控制 (5)2．非病毒型重组 DNA 基因治疗制品 (7)(五)基因治疗的有效性试验 (7)1. 体外试验 (7)2．体内试验 (8)(六)基因治疗的安全试验 (8)2．份子遗传学的评估 (8)3．毒性反应的评估 (8)4．免疫学的评估 (9)5．致癌试验：见本指导原则相关部份。
(9)(七)基因治疗临床试验方案 (9)(八)伦理学考虑 (10)基因治疗是指改变细胞遗传物质为基础的医学治疗。
目前仅限于体细胞。
基因治疗的技术和方式日益多样性。
按基因导入的形式，分为体外基因导入(exvivo)及体内基因导入(invivo)两种形式。
前者是在体外将基因导入人细胞，然后将该细胞注入人体。
其制品形式是外源基因转化的细胞，适合在具有专门技术人材和 GMP 条件的医疗单位进行。
后者则是将基因通过适当的导入系统直接导入人体，包括病毒的与非病毒的方法。
其制品形式是基因工程技术改造的病毒或者是重组 DNA、或者是 DNA 复(混)合物。
基因治疗制剂种类较多，因此，本指导原则不可能用一个模式来概括，只能提出一个共同的原则，具体的方案应根据这些原则，确定研究技术路线。
其基本原则：一是必须确保安全与有效，要充分估计可能遇到的风险，并提出相应的质控要求；二是要促进基因治疗的研究，并加强创新。
sunbio AAV产品手册 最终版
上海生博AAV产品手册（2017版）一、AAV背景知识1.1AAV概况腺相关病毒(Adeno-associated virus，AAV)，是一类无包膜的细小病毒，属于微小病毒科(Parvoviridae)的依赖病毒属(Dependoparvovirus)，透射电镜(transmission electron microscope，TEM)下，AAV病毒本身呈二十面体结构。
AAV 基因组为约4.7kb的线性单链DNA(single strand DNA，ssDNA)，只含两个基因，Rep(Replication)基因和Cap(Capsid)基因。
AAV为目前发现的基因组最简单的复制缺陷型病毒，也因此，AAV被作为病毒载体广泛应用。
FIG1 AAV的3D构象图FIG2 AAV病毒颗粒的组分构成FIG1和FIG2文献出处：Mingozzi, F. and K.A. High.Blood, 2013. 122(1): p. 23-36.FIG3 AAV TEM图Zinn, E., et al.. Cell Rep, 2015. 12(6): p. 1056-68.1.2AAV的ITR区AAV基因组的5’和3 ’端各有一个长度为145bp的倒转重复序列(inverted terminal repeat，ITR)，是AAV复制和包装所必需的最少的自身序列。
ITR区富含GC(>80%)，可折叠为一个自我互补的T型发卡结构，其中的Rep蛋白结合位点(Rep binding elements，RBE)、RBE’和末端解链位点(terminal resolution site，TRS)是AAV 基因组的复制起始的关键。
另外ITR区还含有包装信号，是AAV整合、复制和包装所必须的顺式作用元件，并具有转录启动子活性。
FIG4 AAV基因组结构图Nance, M.E. and D. Duan. Hum Gene Ther, 2015. 26(12): p. 786-800.FIG5 AAV ITR区的二级结构图(以AAV2序列为例)Daya, S. and K.I. Berns. Clin Microbiol Rev, 2008. 21(4): p. 583-93.1.3AAV的ORFAAV含有两个开放阅读框(Open Reading Frame，ORF)，Rep基因和Cap基因。
(整理)腺病毒载体操作手册1407-R2
腺病毒载体操作手册一、实验流程制备腺病毒穿梭质粒，分别高纯度无内毒素抽提腺病毒穿梭质粒和骨架质粒，共转染293A细胞，转染后6h更换为完全培养基，培养十几天，在中间四五天左右更换一次新鲜培养基，然后收集细胞和1ml培液置于15ml离心管后，液氮/37度冻融三次（冻-融要彻底），2000rpm离心5分钟，取上清即为病毒液初代原液。
连续三代反复扩增收集病毒后，行病毒的大量扩增，然后通过CsCl密度梯度离心-透析联用法纯化病毒。
二、实验材料（一）腺病毒载体、包装细胞和菌株该病毒包装系统为两质粒系统，组成为穿梭质粒（包括pHBAd-CMV-IRES-GFP,pHBAd-CMV-IRES-RFP,pHBAd-U6-GFP, pHBAd-U6-RFP）和骨架质粒pBHGlox（delta）E1,3Cre。
其中穿梭质粒pHBAd-CMV-IRES-GFP和pHBAd-U6-GFP能表达绿色荧光蛋白（GFP）。
pHBAd-CMV-IRES-RFP和pHBAd-U6-RFP能表达红色荧光蛋白（RFP）。
1、载体信息1) 腺病毒克隆载体图谱如下：各载体用途如下表：2）骨架质粒信息如下：2、细胞株293A，腺病毒的包装细胞，为贴壁依赖型成上皮样细胞，经培养生长增殖形成单层细胞,生长培养基为DMEM(含10% FBS)。
3、菌株大肠杆菌菌株DH5α。
用于扩增腺病毒载体和腺病毒骨架载体质粒。
三、包装细胞293A细胞的培养（一）293A细胞的冻存293A细胞来源于一个用作空斑测定的亚克隆，具有易使用和易转染的特性。
该细胞株对于高细胞密度很敏感，当细胞超过70%汇合时，一些细胞可能会丢失它们的表型。
若细胞密度持续在70%以下，QBI-293A细胞则能连续培养3~4个月维持原有细胞特性。
若以购买得到的293A作为第一代，则30代内能得到最佳结果。
随着传代的次数增加，293A细胞会出现生长状态下降、突变等。
为了防止此类现象的出现，我们需要在开始就对细胞进行大量冻存，以保证实验的稳定性和持续性。
重组腺相关病毒（AAV）载体构建技术原理
重组腺相关病毒（AAV）载体构建技术原理腺相关病毒（adeno-associated virus, AAV）是微⼩病毒科（parvoviridae）家族的成员之⼀，是⼀类⽆法⾃主复制、⽆被膜的⼆⼗⾯体微⼩病毒，其直径约20-26nm，含有4.7kb左右的线状单链DNA作为基因组。
研究中采⽤的重组腺相关病毒载体（recombination adeno-associated virus, rAAV）是在⾮致病的野⽣型AAV基础上改造⽽成的基因载体，由于其种类多样、免疫原性极低、安全性⾼、宿主细胞范围⼴（对分裂细胞和⾮分裂细胞均具有感染能⼒）、扩散能⼒强、体内表达基因时间长等，rAAV被视为最有前途的基因研究和基因治疗载体之⼀。
AAV基因组结构悬浮框：包装纯化及滴度检测--侵染细胞过程-- rAAV载体优势—rAAV⾎清型选择—应⽤案例rAAV包装纯化及滴度检测AAV包装过程中，包装质粒负责编码⽬的基因以及两个末端反向重复序列（ITR，对于病毒的复制和包装具有决定性作⽤），辅助质粒包含AAV包装所需的cap（编码病毒⾐壳蛋⽩）和rep（参与病毒的复制）基因，以及腺病毒Helper质粒。
三种质粒共同转染293T细胞后，AAV病毒开始复制和包装。
和元⽣物腺相关病毒的⽣产和质控采取了国际学术界公认的标准流程，采⽤三质粒系统在293T细胞中进⾏包装。
所获得的病毒颗粒经过超速离⼼纯化，并通过qPCR对病毒基因拷贝进⾏滴定。
另外，我们也可以根据使⽤者要求，提供蛋⽩染⾊检测⾐壳蛋⽩的完整性以及内毒素含量等。
⼀般情况下rAAV的滴度在1012~1013VG/ml，完全可以满⾜各类整体实验的使⽤要求。
AAV包装流程图滴度检测⽅法：定量PCR检测病毒基因组中外源DNA拷贝数。
滴度检测原理：腺相关病毒的基因组为单链DNA，外源DNA拷贝数代表病毒基因组拷贝数。
高效包装腺相关病毒的原理及流程
高效转染病毒
源井生物可以提供不同质量标准的慢病毒，腺病毒，腺相关病毒。
在基因编辑方面，源井生物可以提供体外细胞感染用的浓缩病毒，也可以提供动物体内使用的超纯化病毒，满足客户的不同科研需求。
三种病毒的比对:
腺相关病毒包装原理
腺相关病毒( adeno-associated virus，AAV) 是一类细小病毒，基因组为单链DNA，对分裂细胞和非分裂细胞均具有感染能力。
通常需要腺病毒或疱疹病毒帮助其在体内复制扩增。
重组腺相关病毒（recombinant AAV, rAAV）是利用
AAV2 型基因组与不同血清型的衣壳蛋白基因组结合产生的混合体病毒载体，可将目的基因的CDS 区序列或者RNAi 干扰序列插入rAAV 表达质粒中，包装病毒后感染细胞完成对目的基因的操作。
腺相关病毒具有感染温和，免疫原性小，长效稳定表达的特点，主要应用于动物体内注射。
源井生物提供的腺相关病毒颗粒经过超速离心纯化，并通过qPCR对病毒基因拷贝进行滴定。
腺相关病毒的滴度在10^12~10^13GC/ml，可以满足各类整体实验的使用要求。
不同血清型的AAV组织感染嗜亲性各不相同，表现出一定的器官靶向特异性。
下表列举了不同的AAV血清型及对应的组织亲和性:
产品规格：
服务流程及质量控制：
基因敲除腺相关病毒
源井生物构建基因敲除腺相关病毒载体并包装为腺相关病毒，经过超速离心纯化后，可用于动物定位注射和整体注射实验。
细胞感染腺相关病毒后，可稳定表达gRNA和Cas9蛋白，达到敲除靶基因的目的。
基因敲除腺相关病毒载体选择：
注明| 文章是源井生物原创，转载请注明。
(完整)病毒转染原理及步骤
病毒转染原理及步骤在细胞相关的实验操作中，对于一些按常规方法难以转染甚至无法转染的细胞，通过病毒介导的实验能够大大提高基因的转导效率，以达到目的基因的高效瞬时表达。
病毒转染包括以下步骤：1构建载体 2包装提纯病毒 3感染靶细胞。
以慢病毒为例。
慢病毒（Lentivirus）载体是以HIV-1（人类免疫缺陷I型病毒）为基础发展起来的基因治疗载体.区别一般的逆转录病毒载体，它对分裂细胞和非分裂细胞均具有感染能力。
慢病毒载体的研究发展得很快,研究的也非常深入.该载体可以将外源基因有效地整合到宿主染色体上,从而达到持久性表达。
在感染能力方面可有效地感染神经元细胞、肝细胞、心肌细胞、肿瘤细胞、内皮细胞、干细胞等多种类型的细胞，从而达到良好的的基因治疗效果,在美国已经开展了临床研究，效果非常理想，因此具有广阔的应用前景。
一、慢病毒载体构建原理：慢病毒载体的包装系统一般由两部分组成,即包装成分和载体成分。
包装成分由HIV-1基因组去除了包装、逆转录和整合所需的顺式作用序列而构建，能够反式提供产生病毒颗粒所必需的蛋白；载体成分则与包装成分互补,即含有包装、逆转录和整合所需的顺式作用序列,同时具有异源启动子控制下的多克隆位点及在此位点插入的目的基因.将包装成分与载体成分的多个质粒共转染包装细胞，即可在细胞上清中收获携带目的基因的复制缺陷型慢病毒载体颗粒。
慢病毒表达载体包含了包装、转染、稳定整合所需要的遗传信息。
慢病毒包装质粒可提供所有的转录并包装RNA 到重组的假病毒载体所需要的所有辅助蛋白。
为产生高滴度的病毒颗粒，需要利用表达载体和包装质粒同时共转染细胞,在细胞中进行病毒的包装,包装好的假病毒颗粒分泌到细胞外的培养基中，离心取得上清液后,可以直接用于宿主细胞的感染，目的基因进入到宿主细胞之后，经过反转录，整合到基因组,从而高水平的表达效应分子.对于一些较难转染的细胞，如原代细胞、干细胞、不分化的细胞等,能大大提高目的基因转导效率,而且目的基因整合到宿主细胞基因组的几率大大增加，这就为RNAi，cDNA 克隆以及报告基因的研究提供了一个有利的途径。
腺病毒疫苗工艺流程
腺病毒疫苗工艺流程下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成，希望大家下载以后，能够帮助大家解决实际的问题。
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病毒包装实验整体流程及原理
病毒感染细胞实验整体流程及原理目的基因不能直接整合到大多数真核细胞，常用的手段是将目的基因包装成病毒来感染细胞，从而得到表达满足实验需求。
1、病毒的种类病毒有很多种，常见的有慢病毒和腺病毒1.1慢病毒1.1.1原理慢病毒（Lentivirus）是逆转录病毒的一种。
构建的siRNA / miRNA慢病毒载体，与化学合成的siRNA 和基于瞬时表达载体构建的普通siRNA 载体相比，一方面可以扩增替代瞬时表达载体使用，另一方面，Lentivirus-siRNA 克隆经过慢病毒包装系统包装后，可用于感染依靠传统转染试剂难于转染的细胞系如原代细胞、悬浮细胞和处于非分裂状态的细胞，并且在感染后可以整合到受感染细胞的基因组，进行长时间的稳定表达。
1.1.2特点1）直接包装成为假病毒颗粒，对分裂和非分裂细胞均有感染作用，适合RNAi 研究和体内实验中难以转染的细胞(比如神经元细胞、干细胞或其它原代细胞)。
2）可以通过简单方式，在短时间内获得稳定表达特定基因的多种细胞株。
3）可用于基因敲除、基因治疗和转基因动物研究。
4）无需任何转染试剂，操作简便。
5）可以根据客户需要制备多种标记。
1.1.3慢病毒包装简要流程：1）含有目的基因的慢病毒RNAi 干扰载体的构建和质粒纯化提取。
2）慢病毒载体，包装系统共转染病毒包装细胞293T等。
3）培养48hrs - 72hrs 左右，收集含有病毒的上清培养液。
4）病毒的纯化和浓缩。
5）分装、- 80 ℃保存。
6）滴度测定目的基因检定，并出具检测报告。
1.2、腺病毒1.2.1原理腺病毒(Adenovirus，Ad)是一种无包膜的线状双链DNA病毒，其复制不依赖于宿主细胞的分裂。
有近50个血清型，大多数Ad载体都是基于血清型2和5，通过转基因的方式取代E1和E3基因，降低病毒的复制能力。
这些重组病毒仅在高水平表达E1和E3基因的细胞中复制，因此是一种适用于治疗的高效控制系统。
1.2.2特点1）几乎可以感染所有类型的细胞2）可以获得复制缺陷型(E1 和E3 缺失) 的腺病毒3）病毒滴度高，产生病毒经过浓缩后可以达到1012 PFU/mL，能有效的进行增殖。
基因工程基本流程
基因工程基本流程一、引言基因工程是通过人为干预生物的遗传信息，改变其基因组结构和功能，以达到特定目的的技术。
基因工程技术在医学、农业、环境保护等领域具有广泛应用，成为现代科学技术发展中不可或缺的一部分。
本文将详细介绍基因工程的基本流程。
二、基因工程的流程1. 基因克隆基因克隆是指将目标DNA片段插入载体DNA中，并转化到宿主细胞中进行扩增和表达。
具体步骤如下：（1）选择合适的载体：常用的载体包括质粒、噬菌体和人工染色体等。
（2）选择限制性内切酶：利用限制性内切酶对目标DNA和载体进行切割，生成互补的黏性末端。
（3）连接目标DNA和载体：将目标DNA片段与载体连接起来，形成重组DNA。
（4）转化宿主细胞：将重组DNA转化到宿主细胞中，并筛选出含有目标重组DNA的克隆。
2. 基因编辑基因编辑是指通过特定酶类似于剪刀般对DNA进行剪切、插入、删除等操作，以改变目标基因的序列和表达。
常用的基因编辑技术包括CRISPR/Cas9、TALEN和ZFN等。
具体步骤如下：（1）设计合适的引物：根据目标基因序列设计引物，用于制备特定的酶。
（2）合成酶：利用化学合成或重组DNA技术制备特定酶。
（3）转染细胞：将制备好的酶转染到目标细胞中。
（4）筛选突变体：通过PCR等方法筛选出突变体，并进行验证。
3. 基因表达基因表达是指将目标基因转录为RNA，再翻译为蛋白质。
常用的基因表达系统包括原核表达系统和真核表达系统。
具体步骤如下：（1）选择合适的表达载体：根据需要选择合适的表达载体，如质粒、噬菌体或真核细胞中的人工染色体等。
（2）构建重组载体：将目标基因插入到载体中，并加上启动子、终止子等必要元件。
（3）转染宿主细胞：将重组载体转染到宿主细胞中。
（4）筛选表达克隆：通过Western blotting等方法筛选出表达目标蛋白的克隆。
4. 基因测序基因测序是指对DNA序列进行测定，以了解其结构和功能。
常用的基因测序技术包括Sanger测序和新一代测序技术。
病毒感染细胞实验整体流程及原理
成都百美科生物QQ7742053病毒感染细胞实验整体流程及原理目的基因不能直接整合到大多数真核细胞，常用的手段是将目的基因包装成病毒来感染细胞，从而得到表达满足实验需求。
1、病毒的种类病毒有很多种，常见的有慢病毒和腺病毒1.1慢病毒1.1.1原理慢病毒（Lentivirus）是逆转录病毒的一种。
构建的siRNA / miRNA慢病毒载体，与化学合成的siRNA 和基于瞬时表达载体构建的普通siRNA 载体相比，一方面可以扩增替代瞬时表达载体使用，另一方面，Lentivirus-siRNA 克隆经过慢病毒包装系统包装后，可用于感染依靠传统转染试剂难于转染的细胞系如原代细胞、悬浮细胞和处于非分裂状态的细胞，并且在感染后可以整合到受感染细胞的基因组，进行长时间的稳定表达。
1.1.2特点1）直接包装成为假病毒颗粒，对分裂和非分裂细胞均有感染作用，适合RNAi 研究和体内实验中难于转染的细胞(比如神经元细胞、干细胞或其它原代细胞)。
2）可以通过简单方式，在短时间内获得稳定表达特定基因的多种细胞株。
3）可用于基因敲除、基因治疗和转基因动物研究。
4）无需任何转染试剂，操作简便。
5）可以根据客户需要制备多种标记。
1.1.3慢病毒包装简要流程：1）含有目的基因的慢病毒RNAi 干扰载体的构建和质粒纯化提取。
2）慢病毒载体，包装系统共转染病毒包装细胞293T等。
3）培养48hrs - 72hrs 左右，收集含有病毒的上清培养液。
4）病毒的纯化和浓缩。
5）分装、- 80 ℃保存。
6）滴度测定目的基因检定，并出具检测报告。
1.2、腺病毒成都百美科生物QQ77420531.2.1原理腺病毒(Adenovirus，Ad)是一种无包膜的线状双链DNA病毒，其复制不依赖于宿主细胞的分裂。
有近50个血清型，大多数Ad载体都是基于血清型2和5，通过转基因的方式取代E1和E3基因，降低病毒的复制能力。
这些重组病毒仅在高水平表达E1和E3基因的细胞中复制，因此是一种适用于治疗的高效控制系统。
aav制备流程
aav制备流程AAV制备流程AAV（Adeno-Associated Virus），中文名为腺相关病毒，是一种常用的基因传递工具，广泛应用于基因治疗和基因表达研究领域。
下面将介绍一种常用的AAV制备流程。
一、构建质粒AAV制备的第一步是构建质粒，质粒是AAV病毒颗粒的基础。
质粒通常包括：载体质粒、帮助质粒和包装质粒。
载体质粒是用于携带目标基因的质粒，帮助质粒用于提供AAV病毒所需的辅助基因，包装质粒则包含有AAV病毒的复制和包装所需的基因。
二、细胞培养和扩增接下来需要选择一种适合AAV病毒生产的细胞系进行培养和扩增。
目前常用的细胞系有HEK293、HEK293T等。
细胞培养通常在无菌条件下进行，培养基中添加适当的抗生素以防止细菌污染。
培养细胞至合适的数量后，可以进入下一步操作。
三、转染和感染将构建好的质粒转染至细胞中，通常可以选择钙磷共沉淀法、聚乙烯醇（PEI）法等方法进行转染。
转染后，细胞需要一定时间以便质粒能够进入细胞并表达目标基因。
转染完成后，可以通过荧光染料或其他方法观察细胞是否成功感染。
四、病毒提取和纯化感染完成后，需要将病毒从细胞中提取出来。
首先，用适当的缓冲液洗涤细胞，然后用细胞裂解液破坏细胞膜，释放出内部的病毒颗粒。
接下来，通过离心等方法分离病毒颗粒和细胞碎片。
为了得到纯净的AAV病毒颗粒，还需要通过超速离心和梯度离心等步骤进行纯化。
五、病毒滴度测定病毒滴度测定是评估AAV病毒制备质量的重要指标。
常用的测定方法包括：限制稀释法、荧光定量PCR法、ELISA法等。
通过测定病毒滴度，可以了解病毒颗粒的浓度和纯度是否符合要求。
六、病毒质粒存储AAV制备完成后，通常将制备好的AAV病毒质粒存储在低温下，以便长期保存。
常用的存储方法包括：-80℃低温冷冻保存、液氮冷冻保存等。
AAV制备流程包括构建质粒、细胞培养和扩增、转染和感染、病毒提取和纯化、病毒滴度测定以及病毒质粒存储等步骤。
每个步骤都需要严格控制条件和操作要求，以确保制备出高质量的AAV病毒颗粒。
病毒包装实验整体流程及原理(慢病毒、腺病毒)
广州英思特生物科技有限公司为您提供高效快速的病毒包装实验外包服务，公司网址：有需要请联系丘先生病毒感染细胞实验整体流程及原理目的基因不能直接整合到大多数真核细胞，常用的手段是将目的基因包装成病毒来感染细胞，从而得到表达满足实验需求。
1、病毒的种类病毒有很多种，常见的有慢病毒和腺病毒1.1 慢病毒1.1.1 原理慢病毒( Lentivirus )是逆转录病毒的一种。
构建的siRNA / miRNA 慢病毒载体，与化学合成的siRNA 和基于瞬时表达载体构建的普通siRNA 载体相比，一方面可以扩增替代瞬时表达载体使用，另一方面，Lentivirus-siRNA 克隆经过慢病毒包装系统包装后，可用于感染依靠传统转染试剂难于转染的细胞系如原代细胞、悬浮细胞和处于非分裂状态的细胞，并且在感染后可以整合到受感染细胞的基因组，进行长时间的稳定表达。
1.1.2 特点1) 直接包装成为假病毒颗粒，对分裂和非分裂细胞均有感染作用，适合RNAi 研究和体内实验中难于转染的细胞(比如神经元细胞、干细胞或其它原代细胞)。
2) 可以通过简单方式，在短时间内获得稳定表达特定基因的多种细胞株。
3) 可用于基因敲除、基因治疗和转基因动物研究。
4) 无需任何转染试剂，操作简便。
5) 可以根据客户需要制备多种标记。
1.1.3 慢病毒包装简要流程：1) 含有目的基因的慢病毒RNAi 干扰载体的构建和质粒纯化提取。
1) 2) 3) 4) 5)2) 慢病毒载体，包装系统共转染病毒包装细胞 293T 等。
3) 培养48hrs - 72hrs 左右，收集含有病毒的上清培养液。
4) 病毒的纯化和浓缩。
5) 分装、-80 C 保存。
6)滴度测定目的基因检定，并出具检测报告。
1.2、 腺病毒 1.2.1原理腺病毒(Adenovirus , Ad)是一种无包膜的线状双链DNA 病毒，其复制不依赖于宿主细胞的分裂。
有近50个血清型，大多数Ad 载体都是基于血清型 2和5,通过转基因的方式取 代E1和E3基因，降低病毒的复制能力。
腺病毒中文操作手册
腺病毒载体操作手册中文版腺病毒重组系统AdEasyTM操作手册目录第一章简介 1第二章应用重组腺病毒的优点 2第三章AdEasyTM 技术 33.1 技术概况33.2 AdEasyTM系统中产生重组腺病毒的时程3第四章主要流程 44.1 将基因克隆入AdEasyTM转移载体44.1.1 克隆的一般原则44.1.2 构建重组AdEasyTM转移载体54.2 细菌内AdEasyTM重组子的产生54.2.1 共转化的一般原则54.2.2 共转化方法54.2.3 预期结果54.3 AdEasyTM重组质粒的筛选和扩增64.4 AdEasyTM重组子转染QBI-293A细胞64.4.1 细胞铺板64.4.2 磷酸钙转化技术7第五章常用技术85.1 QBI-293A细胞培养85.1.1 QBI-293A细胞的初始培养85.1.2 QBI-293A细胞的维持培养和增殖85.1.3 QBI-293A细胞的冻存85.2 QBI-293A细胞的转染和病毒空斑的产生9 5.2.1 感染QBI-293A细胞95.2.2 病毒空斑形成95.2.3 琼脂糖覆盖被感染细胞95.3 MOI测定105.4 腺病毒感染力测定105.4.1 X-Gal染色115.5 重组腺病毒的筛选和纯化115.5.1 挑选最佳重组腺病毒：表达和基因输送115.5.2 病毒空斑挑选和小量扩增125.5.3 Western杂交135.5.4 Southern杂交和点杂交135.5.5 病毒裂解产物PCR 145.5.6 免疫测定145.5.7 功能测定145.6 病毒颗粒在QBI-293A细胞中的大量扩增15 5.7 两次氯化铯密度梯度离心纯化重组腺病毒16 5.7.1 不连续密度梯度离心175.7.2 连续密度梯度离心175.7.3 病毒溶液去盐和浓集175.8 病毒滴度测定185.8.1 O.D.260 nm (VP/ml) 195.8.2 空斑测定法205.8.3 50%组织培养感染剂量法20第六章疑难解答226.1 QBI-293A细胞培养226.2 感染力测定226.3 转移载体克隆236.4 在BJ5183细胞中共转化和重组246.5 转染QBI-293A细胞256.6 筛选和测定256.7 在QBI-293A细胞中表达266.8 重组腺病毒的扩增266.9 纯化266.10 病毒滴度测定27缩写英文全称中文全称Ad Adenovirus 腺病毒Ad5 Adenovirus serotype 5 血清5型腺病毒AdV Adenoviral Vector 腺病毒载体Amp Ampicillin 氨苄青霉素β-Gal β-Galactosidase β-半乳糖苷酶bp Base Pair 碱基对BSA Bovine Serum Albumin 小牛血清白蛋白cDNA Complementary DNA 互补DNAcccDNA Closed Circular Coiled DNA 闭环螺旋DNA CPE Cytopathic Effect 细胞病理效应CsCl Cesium Chloride 氯化铯DMEM Dulbecco’s Modified Eagle Medium DMEM培养基DMSO Dimethyl Sulfoxide 二甲基亚砜DTT Dithiothreitol 二硫苏糖醇EDTA Ethylene Diamine Tetraacetic Acid 乙二胺四乙酸EtBr Ethidium Bromide 溴化乙锭FBS Fetal Bovine Serum 胎牛血清Hr Hour 小时ITR Inverted Terminal Repeat 反向末端重复Kan Kanamycin 卡那霉素kb Kilobases 千碱基对KDa KiloDaltons 千道尔顿LB Luria-Bertani ( broth ) LB培养基MCS Multiple Cloning Site 多克隆位点Min Minute 分钟MOI Multiplicity of Infection (Virus/Cell ) 感染复数mRNA Messenger RNA 信使RNAMWCO MOIecular Weight Cut-off PAGE PolyAcrylamide Gel Electrophoresis 聚丙烯凝胶电泳PBS Phosphate Buffered Saline 磷酸盐缓冲液PFU Plaque Forming Unit 空斑形成单位pi Post Infection 感染后RCA Replication Competent Adenovirus 增殖性腺病毒RITR Right Inverted Terminal Repeat 右侧反向末端重复SDS Sodium Dodecyl Sulfate 十二烷基硫酸钠TBE Tris Borate/EDTA 三羟甲基氨基甲烷硼酸盐/乙二胺四乙酸TCID50 Tissue Culture Infectious Dose 50 50%组织培养感染剂量TCP Total Cellular Protein 细胞总蛋白TE Tris/EDTA TE溶液wt Wild Type 野生型X-Gal 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-D-Galactopyranoside 5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷第一章简介当今基因输送技术的发展日趋复杂，一些治疗药物（生长激素、干扰素、抗病毒和抗癌复合物）和诊断性蛋白（单克隆抗体）的设计、发展与合成需要更高效的基因输送工具。
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腺相关病毒生产流程
腺相关病毒生产流程大致可分为基因克隆、细胞转染、收毒、病毒纯化、滴度检测等步骤，具体步骤我们下文分解？怎么可能，下面就是腺相关病毒生产流程。
1）根据订单不同选择不同的载体，在此以人源基因克隆为例。
2）Vigenebio 公司的AAV 载体与我们的人源ORF （注：维真生物拥有18000人源cDNA ORF克隆，可以最快的时间克隆到载体）库中的穿梭质粒的多克隆位点相兼容，通过酶切，连接，转化的方式将基因亚克隆进入pAV-FH AAV 载体，得到阳性克隆之后进行酶切跑胶验证及测序以确认插曲片段的正确性。
腺相关病毒载体图谱（维真生物）
细胞冻存流程
1) 按照培养细胞流程，将细胞吹下来加入50ml 离心管中，800g 离心5min。
2) 配制冻存液，90% 血清，10% DMSO，混匀。
3) 离心后去上清，将配制的冻存液加入，将细胞吹匀
4) 取上述溶液1ml 分至1.5ml 细胞冻存管中，做好标记和日期。
5) 放入装有异丙醇的冻存盒中，放入-80度冰箱过夜。
（冻存盒要提前一天从冰箱中拿至室温，使异丙醇的温度达到室温，每次冻存前确保异丙醇的加入量在刻度线上）。
6) 第二天将冻存盒放入液氮或-150℃冰箱中。
1) 10cm 培养盘中加10cm 新鲜DMEM 培养基，放培养箱预热至37℃。
2) 从液氮中取出冷冻管，迅速投入37 ℃～38℃水浴中，使其融化（1-2 分钟左
右）。
3) 待细胞冻存管中溶液尚未完全融化时加入预热的培养盘中。
4) 摇晃均匀，放培养箱培养。
5) 4h后待细胞完全贴壁后更换新鲜培养基（除去冻存液中DMSO 对细胞的毒害作用。
也可在第3步中800g 离心5min，除去培养基后再悬浮细胞添加至新鲜预热的DMEM 细胞培养皿中）。
1) 生物安全柜紫外灭菌半小时。
2) 灭菌期间，DMEM 培养基(含10%FBS，1%青链霉素混合液)、PBS 以及
0.25%胰酶在37℃水浴锅中预热。
3) 取汇合度接近100%活性好的的HEK293T 细胞，吸弃培养盘中培养基，加约
5ml，1×PBS，摇晃几下，吸弃PBS。
（加PBS目的主要除去残留在皿中的培养基中的FBS，以提高胰酶的消化效率）
4) 加1ml 0.25% 胰酶在生物安全柜内消化约1min，室温低时可放置于培养箱中消化。
消化时间不宜过长，否则影响细胞再次贴壁效率和活性。
5) 加入约5ml 的预热的培养基。
6) 用移液管吹打均匀，按照1:3 比例传代。
各洗2ml 培养基至新的10cm 皿中，再加入8ml 预热的DMEM 培养基。
（吹打过程中不可用力过大，否则会吹破细胞）。
注意：传代盘数较多时，要先将预热的DMEM 培养基加入到10cm 皿中，再加入含细胞的培养基，以避免细胞分布不均。
放置于培养箱前轻轻混匀皿中的培养基，使细胞均匀分散于培养基中。
细胞培养条件为5%-7%CO2 浓度，37℃，培养箱内无菌水盘内水份提供一定的湿度。
细胞传盘以及分6 孔板，24 孔板，96 孔板分细胞都经过上述流程，只是细胞数与分的比例不同，具体情况具体操作。
以10cm 细胞培养皿为例
第一天: 聚合度90%以上的HEK293T 细胞按1：3 比例传盘（每盘大约2.5 x 10E6），培养基Hyclone 高糖DMEM 培养基（含10%FBS）。
第二天: 转质粒前1-2h 左右，换成无血清培养基（所有血清型AAV），用转染试剂将目的基因质粒和辅助质粒（需用酚氯仿提取的质粒）转入HEK293T 中。
第三天：质粒转化24h 后，换新的无血清培养基（所有血清型AAV）
第五天：转染72h 收毒。
带着培养基，吹下细胞，离心；然后分别收获培养基上清与细胞沉淀。
用PEG8000 沉淀培养基上清中的病毒，沉淀过夜后收集病毒沉淀。
病毒纯化浓缩
将病毒的混合液用碘克沙醇密度梯度离心进行纯化，然后用超滤管进行浓缩。
病毒滴度检验
1)腺性相关病毒处理破除AAV 病毒外壳，37 ℃孵育30 min，然后加热95 ℃5
min 使酶失活，体系如下：
组成成分体积
病毒液 5ul
蛋白酶K（5ug/ul） 1ul
超纯水4ul
2)离心12000rpm,2min.取上清。
3)标准品的拷贝数，7 个梯度稀释浓度分别：
7.2E+8V.G./UL,7.2E+7V.G./UL,7.2E+6V.G./UL,7.2E+5V.G./UL,7.2E+4V.G./UL,7.2E +3V.G./UL,7.2E+2V.G./UL.并将超纯水作为阴性对照。
4)配制PCR 反应体系，每个样品20 ul 体系，体系如下：
组成成分体积
2X SYBRGreen 缓冲液10ul
F、R 引物混合物0.8ul
超纯水7.2ul
病毒样品或标准品2ul
5)PCR 反应体系
组成成分体积
95℃
5min；
95℃15sec
60℃15sec
72℃15sec
40 个cycles
6)病毒颗粒数公式：病毒颗粒数（个/ml）= 与标准品相对值× 1000。