基因表达检测RTPCRppt课件
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技术 ppt课件
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
• 乙醇:主要目的是:沉淀+除盐;洗涤异丙醇,也可以溶解一部分
蛋白,痕量的乙醇很容易挥发掉。
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
RNA浓度和纯度的测定
DNA/RNA在260nm处有最大的吸收峰, 蛋白质在280nm处有最大的吸收峰,因为酪氨酸和色氨酸的最大吸收峰在 280nm附近,而大多数蛋白含有酪氨酸和色氨酸残基,且含量相对恒定。 盐和小分子则集中在230nm处, 320nm或340nm为检测溶液样品的浊度,该值应该接近0。
“Measure”
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
RNA提取常见问题及分析
得率
A.样品裂解或匀浆处理不彻底 B.最后得到的RNA沉淀未完全溶解
A260/A280<1.65
A.检测吸光度时,RNA样品不是溶于TE,而是溶于水。 B.样品匀浆时加的试剂量太少。 C.匀浆后样品未在室温放置5分钟。 D.水相中混有有机相。 E.最后得到的RNA沉淀未完全溶解。
RNA的琼脂糖凝胶电泳
• 28S的亮度是18S的2倍左右 • rRNA占总RNA80%以上。
5lRNA+1ul loading buffer,100V电泳10分钟
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
RTPCR(共47张PPT)
实时荧光定量PCR 原理 -------Ct值
Ct值的定义:
PCR扩增过程中,扩增产物的荧光信号达到设定的阈值时所经 过的扩增循环次数
C(t) value
纵轴:荧光信号量
实时荧光定量PCR 原理 -------Ct值的重现性
横轴:PCR反映循环数
Ct值的特点:
EXON 1 EXON 1
INTRON 2 EXON 2
EXON 2
DNA RNA
PRIMER PREMIER 5.0
上机操作
点击
运行程序
保存
结果分析
难以查找原因。
• Buffer and dNTPs Ex:扩增效率
实时荧光定量PCR定义
• Template
cDNA
Real-time PCR
Real-time PCR
引物设计
• 总原则与普通PCR相同 –避免引物二聚体,避免二级结构 • 尽量小些 (70 - 300bp) • 目标区段位置:考虑目标剪接体 • 推荐做跨intron设计
实时荧光定量PCR法
染料法举例
SYBR Green法研究CDK6 在
肺癌组织标本中的表达差异
实验步骤
流程示意图
TaqMan法举例
材料准备
从正常肺组织中提取的总 RNA 从肺癌组织中提取的 总RNA
-Trizol 最常用 -裂解液 (氰酸胍,异硫氰酸呱, SDS) -液氮
-RNA保存液
小心DNA污染! -使用DEPC处理相关器材
TaqMan法
优缺点
25
实时荧光定量PCR原理 相对定量
以各自样本中内参(housekeeping)基因为标杆,
RTPCR实验报告课件
逆转录pcrrt-pcr)和及时为反转录rcr ( reverse transcription pcrpcr ( real time pcr)共同的缩写。
逆转录pcr ,或许称反转录pcr(reversetranscription-pcr, rt-pcr) ,是聚合酶链式反响 (pcr) 中,一条 rna 链被逆转录成为互补 dna ,再以此为模板经过的一种宽泛应用的变形。
在pcr 进行dna 扩增。
rt-pcr由一条rna 单链转录为互补dna(cdna) 称作“逆转录” ,由依靠rna 的dna 聚合酶(逆转录酶)来达成。
随后,dna 的另一条链经过脱氧核苷酸引物和依靠rna 的dna 聚合酶达成,随每个循环倍增,即往常的pcr 。
原来的rt-pcr的指数扩增是一种很敏捷的技术,于遗传病的诊疗,并且能够用于定量监测某种rna 模板被rna 酶 h 降解,留下互补dna 。
能够检测很低拷贝数的rna 。
rt-pcr宽泛应用rna的含量。
(检测基因表达的方法,拜见northern blot 法。
)rt-pcr 作“ 定量有时也会指代及时pcr ” (quantitative pcr)pcr(real-time pcr)。
为了与逆转录或许rtq-pcr(real-time quantitative pcr)pcr 相差别,往常被写。
及时pcr及时为基础进行pcr(real-time pcr)dna 的定量剖析。
,属于定量pcrreal time pcr( q-pcr)的一种,以一准时间内dna 的增幅量的定量使用萤光色素,当前有二种方法。
一种是在ds dna 中插入特异的萤光色素;另一种使用一种能与增幅dna 序列中特定寡核酸序列相联合的一种萤光探针(probe )。
real time pcr 与reverse transcription pcr 相联合,能用微量的rna 来找出特准时间、细胞、组织内的特别表达的遗传基因。
rtqPCR实验操作 ppt课件
内参基因(Endogenous Control) 用于校准实验过程中样品本身对定量结果的
影响 原因:核酸提取时通常以重量,体积或细胞数 为单位取
样,提取过程中存在得率差异和操作误 差,造成
等量样品不一定获得等量提取物 目的:将定量结果校准rtqPCR为实验操以作 基因组(或单个细
2、降低随机误差: 重复实验
rtqPCR实验操作
• 在相同的条件下,进行复制扩增,每扩增 一个循环,通过检验荧光来检测每个孔里 目标基因片段的含量,记录每个反应管内 的荧光信号达到设定的域值时所经历的循 环数(样本的域值循环数Ct),次数越多就 说明目标基因在原本的样品里越少,即初 始模板的量越少。
rtqPCR实验操作
logX= n (1+E)+logX0
4、按照排板的顺序往板内加样本混合物,每 孔18.4微升,加完后rt按qPCR实排验操作板顺序加相应的前
即实验组基因表达相较于对 照组上调或下调的倍数。
rtqPCR实验操作
荧光定量PCR如何减小误差 1、校准生物学误差:内参(管家基因) 2、降低随机误差
rtqPCR实验操作
1、校准生物学误差内参(管家基因)
rtqPCR实验操作荧光实时定量PCFra bibliotek rt-qPCR
定义
实时荧光定量PCR(rt-qPCR): • 在PCR反应体系中加入荧光基团,利用荧 光信号的变化对PCR过程进行 实时监控,以 此实现对初始模板的定量分析。
基因表达的检测PPT课件
3) 选择性表达:多基因的基因家族中的各成员在特定的细 胞中,在一定的发育阶段和在一定的生理条件下选择性 的表达。
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3. RNA编辑的调控: RNA编辑(editing):是指转录后的mRNA前体在编码区发生 核苷酸改变的现象,从而产生出氨基酸序列不同的蛋白质。包括:
▪ 转录起始的调控:
基因表达的转录水平调控主要通过反式作用因子、顺式作用元件和RNA聚合酶 的相互作用来完成。调控机制涉及反式作用因子的激活及反式作用因子的作用 等。
– 反式作用因子的活性调节: • 表达调节:迅速合成、迅速降解
• 共价修饰:磷酸化-去磷酸化、糖基化
• 配体结合:激素-激素受体(是核内的反式作用因子)
➢ 亮氨酸拉链(leucine zipper)
➢ 螺旋-转角-螺旋(helix-loop-helix)
4) RNA聚合酶对基因表达的影响: A. 转录起始是通过RNA聚合酶与启动子的结合来实现的,转录起始的调控 是基因表达调控中最重要、最基础的调控点之一。 B. 不同启动子的序列不同,因而影响它们与RNA聚合酶结合的亲和力, 亲和力的不同继而直接影响转录起始的频率。 C. RNA聚合酶和启动子的结合也会受到调节蛋白的影响,阻遏蛋白、激活蛋
5. 基因重排:
基因重排是指某些基因片段改变原来的存在顺序,通过调整有关基 因片段的衔接顺序,重新组成为一个完整的转录单位。一种熟知的 以基因重排来调节不同基因表达的例子是哺乳动物免疫球蛋白各编 码区的连接: – 一个免疫球蛋白分子包括两条相同的轻链和重链。
实时荧光定量PCR(qPCR,RT-PCR)的原理及应用ppt课件
4
实时荧光定量PCR的定义
PCR技术和荧光检测技术的结合
通过荧光染料或荧光标记的特异性探针,对PCR产物进行 标记跟踪,实时在线监控反应过程,通过仪器和相应的软 件分析结果,对待测样品的初始模板进行定量或定性分析。
5
RT-PCR技术的原理及试验流程
6
RT-PCR技术的原理及试验流程
7
RT-PCR技术的原理及试验流程
RT-PCR反应体系
模板
4.5μl
Tag mixture
5.0μl
F(F’)
0.25μl
R(R’)
0.25μl
PCR详细讲解 ppt课件
2
PCR的基本原理
① DNA半保留复制的机理;
② 体外DNA分子于不同温度下可变 性和复性的性质。
2021/3/26
PCR详细讲解 ppt课件
3
PCR扩增体系
➢模板(Template):基因组、质粒DNA、cDNA,也可
以是细菌、组织样品等。
➢引物(Primer):确定扩增目的序列的特异性;确定
1、避免重复碱基,尤其是G。
2、引物退火温度在58-60℃之间。
3、G+C为30-80%。
4、3’端最后5个碱基内不能有多于2个
的G或C。
5、引物的产物大小一般在80-250bp之
间;80-150 bp最为合适(可以延长至
300 bp)。 2021/3/26
PCR详细讲解 ppt课件
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Real-Time PCR引物设计原则
2021/3/26
PCR详细讲解 ppt课件
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引物设计的基本原则
9、引物的3’端不可以A结尾。
引物3’端错配时,不同碱基引发效率存 在着很大的差异,当末位的碱基为A时,即 使在错配的情况下,也能有引发链的合成, 而当末位链为T时,错配的引发效率大大降 低,G、C错配的引发效率介于A、T之间,所 以3’端最好选择T。
引物设计的最重要的原则:最大限度 地提高扩增效率和特异性;同时尽可 能减少非特异性扩增。
2021/3/26
PCR详细讲解 ppt课件
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引物设计的基本原则
1、引物应具有足够的特异性。
如果需要从基因组等较复杂的模板中扩 增特定的DNA序列,则需要考虑目的DNA序列 的保守性,尽量避免所选引物设计区域序列 的非特异性。
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引物设计的基本原则
rtpcr详细图文解析讲课讲稿
RT-PCR详细图文解析一、实时荧光定量PCR原理(一)定义:在PCR反应体系中加入荧光基团,利用荧光信号累积实时监测整个PCR进程,最后通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法。
(二)实时原理1、常规PCR技术:对PCR扩增反应的终点产物进行定量和定性分析无法对起始模板准确定量,无法对扩增反应实时检测。
2、实时定量PCR技术:利用荧光信号的变化实时检测PCR扩增反应中每一个循环扩增产物量的变化,通过Ct值和标准曲线的分析对起始模板进行定量分析3、如何对起始模板定量?通过Ct值和标准曲线对起始模板进行定量分析.4、几个概念:(1)扩增曲线:(2)荧光阈值:(3)Ct值:CT值的重现性:5、定量原理:理想的PCR反应: X=X0*2n非理想的PCR反应: X=X0 (1+Ex)n n:扩增反应的循环次数X:第n次循环后的产物量X0:初始模板量Ex:扩增效率5、标准曲线6、绝对定量1)确定未知样品的 C(t)值2)通过标准曲线由未知样品的C(t)值推算出其初始量7、DNA的荧光标记:二、实时荧光定量PCR的几种方法介绍方法一:SYBR Green法(一)工作原理1、SYBR Green 能结合到双链DNA的小沟部位2、SYBR Green 只有和双链DNA结合后才发荧光3、变性时,DNA双链分开,无荧光4、复性和延伸时,形成双链DNA, SYBR Green 发荧光,在此阶段采集荧光信号。
PCR反应体系的建立及优化:1、SYBR Green 使用浓度:太高抑制Taq酶活性,太低,荧光信号太弱,不易检测2、Primer:引物的特异性高,否则扩增有杂带,定量不准3、MgCl2的浓度:可以降低到 1.5mM,以减少非特异性产物4、反应Buffer 体系的优化5、反应温度和时间参数:由酶和引物决定6、其他与常规PCR相同(二)应用范围1、起始模板的测定;2、基因型的分析;3、融解曲线分析:可以优化PCR反应的条件,对常规PCR有指导意义,如对primer的评价;可以区分单一引物、引物二聚体、变异产物、多种产物。
《RTPCR技术原理》课件
RTPCR是一种常用的遗传学分析技术,通过在实验室中模拟自然界的PCR过 程,扩增DNA片段,从而实现对基因的分析和研究。
RTPCR技术原理
什么是RTPCR技术
RTPCR技术是一种基于PCR扩增原理开发而来的遗传学分析方法,可以高效地复制和研究 DNA序列。
RTPCR技术的优点
RTPCR技术具有高灵敏度、高特异性、高通量和快速等优点,成为现代分子生物学研究中 不可或缺的工具。
RTPCR技术利用PCR反应中的循环式 扩增机制,快速复制目标DNA序列, 从而使其在检测中能够得到可靠的结 果。
RTPCR技术原理
RTPCR技术的应用领 域
RTPCR技术在医学领域被 广泛应用于疾病诊断、遗 传性疾病筛查、药物研发 等方面。
RTPCR在食品安全领 域的应用
RTPCR技术可以用于检测 食品中的致病菌、转基因 成分、有害物质等,保障 食品安全。
RTPCR技术原理
1
RTPCR反应体系组成
2
RTPCR反应体系包括RNA、逆转录酶、
引物、酶、核酸酶和缓冲液等多种组
分,以保证反应的高效、特异性和稳
3
Байду номын сангаас
定性。
RTPCR流程介绍
RTPCR技术包括反转录和PCR两个基 本步骤,通过这两个步骤可以将RNA 转录为cDNA并扩增目标DNA序列。
RTPCR放大机制
2 RTPCR技术的发展趋势
RTPCR技术将更加智能化、快速化、低成本化,实现更高效的基因分析和诊断。
3 RTPCR技术的未来应用简述
RTPCR技术有望在个性化医疗、精准农业和环境污染治理等领域得到更广泛的应用。
RTPCR技术原理
《RTPCR技术原理》课件
缺点
对操作人员要求较高
RTPCR技术的操作较为复杂,需要经过专 业培训的操作人员才能保证结果的准确性
。
成本较高
RTPCR技术需要昂贵的仪器和试剂 ,导致检测成本较高,可能限制其
在资源有限地区的普及。
A
B
C
D
可能出现交叉污染
在操作过程中,如果样品或试剂受到污染 ,可能会导致交叉污染,影响检测结果的 准确性。
《rtpcr技术原理》ppt课 件
目录 CONTENT
• RTPCR技术概述 • RTPCR技术原理 • RTPCR实验操作流程 • RTPCR技术的优缺点 • RTPCR技术的应用实例
01
RTPCR技术概述
RTPCR技术定义
实时荧光定量PCR(Real-Time PCR)是一种在PCR反应过程中,通过荧光信号 检测DNA片段的扩增情况,并实时监测其变化的技术。
2000年
ABI公司推出高分辨率熔解曲线分析 技术,提高了SNP分型和突变检测的 准确性。
2004年
基于焦磷酸测序原理的实时荧光定量 PCR技术问世,提高了检测通量和灵 敏度。
RTPCR技术的应用领域
基因表达分析
突变检测
通过比较不同组织或不同处理条件下基因 的表达水平,研究基因的表达调控机制。
用于检测DNA序列中的点突变、插入和缺 失等变异,用于遗传病、肿瘤等疾病的诊 断和监测。
基因突变检测
总结词
RTPCR技术能够高效地检测基因突变,为遗传性疾病的诊断和治疗提供依据。
详细描述
基因突变是许多遗传性疾病的诱因,RTPCR技术通过对特定基因的扩增和荧光 检测,能够快速、准确地检测出基因突变位点及类型。这有助于遗传性疾病的 早期诊断和针对性治疗,为患者提供更好的医疗方案。
定量RT-PCR原理49页PPT
56、极端的法规,就是极端的不公。 ——西 塞罗 57、法律一旦成为人们的需要,人们 就不再 配享受 自由了 。—— 毕达哥 拉斯 58、法律规定的惩罚不是为了私人的 利益, 而是为 了公共 的利益 ;一部 分靠有 害的强 制,一 部分靠 榜样的 效力。 ——格 老秀斯 59、假如没有法律他们会更快乐的话 ,那么 法律作 为一件 无用之 物自己 就会消 灭。— —洛克
60、人民的幸福是至高无个的法。— —西塞 罗
William P. Halford:
是否只有竞争性RT-PCR才能精确定量?
非竞争性RT-PCR
目前主要采用荧光实时RT-PCR,放 射性标记核苷酸的方法已基本淘汰。
实时RT-PCR
实时RT-PCR就是在PCR扩增的每一个循 环后分别检测其PCR产量,借助计算机数据 处理,可以描绘出PCR扩增循环过程中PCR产 物变化曲线。
根据PCR 变化曲线计算出目标靶基因 分子数。
传统RT-PCR与实时RT-PCR的流程比较
荧光定量RT-PCR基本流程
荧光测定的光学原理图
反射镜
光源 滤光镜
夫累舍尔透镜 96孔透镜组
双色镜
多元镜
96孔板
滤镜轮
CCD 相机
Molecular Beacon Method
Dye Incorporation Method
amplifications (FAM™) in replicates of 5
18S ribosomal RNA endogenous control amplifications (VIC™) showing all 20 sample wells
Detection of mRNA splice variants
PCR-技术及应用PPT课件
dNTP的质量与浓度:dNTP的质量与浓度和PCR 扩增效率有密切关系,一般将其PH调节到7.0~7.5, 小量分装, -20℃冰冻保存。多次冻融会使dNTP 降解。在PCR反应中,dNTP应为50~200umol/L, 尤其是注意4种dNTP的浓度要相等( 等摩尔配制), 如其中任何一种浓度不同于其它几种时(偏高或偏 低),就会引起错配。浓度过低又会降低PCR产物 的产量。dNTP能与Mg2+结合,使游离的Mg2+浓 度降低。
PCR反应的特点
②灵敏度高:过去酶联免疫吸附试验(ELISA)和放射 免疫分析(RIA)其灵敏度分别为ng和pg级,而PCR检 测灵敏度可达fg级,理论上可检出一个细菌或一个真 核细胞的单拷贝基因的存在;
PCR反应的特点
③简便快速:操作试剂盒时只需将样品简单处理和加 样后即可进行扩增,许多PCR检查项目在两小时左右即 可出报告;④对样品要求低:几乎所有的临床标本都 可用于PCR扩增。
PCR条件的选择
引物:PCR反应成功扩增的一个关键条件在于正确设计寡核苷酸引物,所 选择的引物序列决定了PCR产物的大小、位置、扩增区域的Tm值等。
引物设计的长度一般为15-30个碱基,引物长点,反应的特异性相对好, 引物太长,扩增退火时被引发的模板数相对越少,影响反应效率。引 物短点,它退火结合到靶DNA上形成供DNA聚合酶结合的稳定双链模板 的速率越大,引物太短,则反应的特异性受到影响。
PCR技术的用途
科研使用 临床医学 法医学 农业 考古学 人类学 环境保护
个体识别与亲子鉴定 GMO
PCR应用类型
一、不对称PCR(asymmetric PCR)
不 对 称 PCR 的 目 的 是 扩 增 产 生 特 异 长 度 的 单 链 DNA。PCR反应中采用二种不同浓度的引物,PCR结 果产生大量单链DNA。因PCR反应中使用的二种引物 浓度不同一步法,因此称不对称PCR,此法产生的单 链DNA可用作杂交探针或DNA测序的模板。
RT-PCR及其产物电泳分析ppt课件
④ 循环次数 PCR循环次数取决于模板DNA的浓度,一般为25-35次,PCR产物可达最大值 。
20
;.
PCR体系的优化
➢ PCR反应成分浓度的优化 ① Taq DNA聚合酶:1~2.5U/100μL反应液。 ② dNTP浓度:20~200μmol/L,且四种底物浓度相等,以减少错误掺入的机
3
;.
RT反应试剂 (1)引物: Oligo(dT)16,寡聚胸甘酸16个,要求mRNA有poly(A)尾巴(mRNA 1-4%) (2)逆转录酶 : 鼠白血病病毒莫洛尼株 (MMLV)、鸟类成髓细胞瘤病毒(AMV ) (3)RT反应缓冲液:常用5×浓度。 (4)底物:即四种dNTP的混合物溶液,常用10×浓度(2 mmol/L或2.5 mmol/L)。 (5)模板 (6)RNasin
2
;.
实验原理
RT反应:在逆转录酶作用下,以mRNA为模板合成cDNA(complementary DNA)分子 的过程。 PCR反应:PCR扩增是模拟天然DNA复制过程,利用DNA聚合酶在体外扩增一对引物 之间特异性DNA片段的方法。其主要热循环过程可分为三个步骤:(1)变性;(2)退 火;(3)延伸 。 RT-PCR: 以RT反应产物cDNA分子为模板进行特异性PCR扩增的过程,是检测基因表 达最常用的方法。
15
;.
结果分析
M
1 23
观察结果: ① 是否有扩增产物。 ②如有拖尾或有几条区带,说明有非特异性扩增 。 ③分子量标准电泳后区带是否分开。 ④与分子量标准比较,PCR产物的长度是否正确 。 ⑤PCR产物的产量。 ⑥引物二聚体。
基因表达教学课件ppt
翻译的场所
翻译主要在细胞质的核糖体上进行,核糖体是由RNA和蛋白质组成的复合体 。
翻译的起始
起始密码子
翻译的起始信号是mRNA上的起始密码子,它与核糖体上的起始因子结合,起始 翻译过程。
起始因子的作用
起始因子与起始密码子结合后,可以促进核糖体与mRNA的结合,并启动翻译过 程。
02
基因表达研究在农业领域也得到了广泛应用,通过对植物和动物基因表达的研 究,可以更好地了解生长发育和适应环境的机制,提高生产效率。
03
基因表达研究在环境科学领域也扮演着重要的角色,通过对不同生物在相同环 境下的基因表达比较,可以更好地了解生物对环境的适应性,为环境保护提供 科学依据。
基因表达研究的发展趋势
02
基因表达的转录
转录的概述
01
02
03
定义
转录是指将DNA序列转 化为RNA序列的过程。
转录的酶
转录需要RNA聚合酶的 参与。
转录的场所
转录主要发生在细胞核内 。
转录的启动
启动子
转录的启动子是RNA聚合酶识别和结合DNA序列的位点。
转录起始复合物
启动子与RNA聚合酶结合形成转录起始复合物。
转录起始复合物的形成过程
基因表达谱
通过基因表达谱可以了解疾病状态下哪些基因在发生变化,从而 为疾病的诊断提供依据。
生物标志物
一些基因表达产物可以作为疾病的生物标志物,例如:前列腺癌 中的PSA基因。
疾病分型
基因表达数据可以用于疾病的分型,例如:肺癌可以分为鳞状细 胞癌、腺癌和小细胞肺癌。
基因表达异常与疾病的治疗
靶向治疗
RTPCR常见问题分析ppt课件
精选版课件ppt
26
问题五:信号高于预期,在低 于预期的循环中即可检出产物?
1、 反应中加的样品太多:降低模板的浓度。 2、 模板或PCR残余污染:隔离污染来源,更换试
剂,使用专用的精致移液器。在无DNA区域准备 反应,使用抗气溶胶的吸头。
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问题六:电泳后出现意外的条带 RNA?
精选版课件ppt
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1.引物和模版 的非特异性 退火
对策
1.避免引物3’端含有2 个到3个dG或dC’
2.在第一链合成中使用 基因特异性引物,而 不是随即引物或 oligo(dT)。
3.在开始几个循环使用 较高的退火温度,然 后使用较低的退火温 度。
4.使用热启动Taq DNA 酶进行PCR,提高反 应的特异性。
火的GSP;对于>1kb的RT-
PCR产物,保持反应温 度≤65℃。不要在高于 37℃时使用M-MLV;如 果不需要全长cDNA, 在第一链反应中使用
随机引物;
精选版课件ppt
13
7.引物或模板 对残余的RNA 模板敏感
8.靶序列在分 析的组织中不 表达
9.PCR没有起 作用
在PCR前用RNaseH处理。
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问题九: 扩增产物滞留在加样 孔中
有可能是由于模板量过高而导致PCR结果产生了 高分子量的DNA胶状物。建议将第一链结果至少 稀释100倍再进行二次扩增。
另外,在二次PCR时使用的退火温度如果比引物 的Tm值低5℃,可以将退火温度适当增高或进行 热启动以提高特异性
精选版课件ppt
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Thank You!
精选版课件ppt
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精选版课件ppt
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[课件]实验13 cDNA的合成及RT-PCR法研究基因的表达PPT
2.建议用本试剂盒提供的RNA溶解液(预先37℃,10-20min,摇 匀),来溶解总RNA样品.
3.除特别说明外,操作在室温下进行.
二)操作前准备工作 1.使用前,须预处理mRNA吸附剂,去除NaN3. A.充分悬浮mRNA吸附剂,用吸头取出50 ul到1.5ml eppendorf tube 中,12000 rpm,1min,吸去上清; B. 加入200 ul平衡缓冲液,悬浮混匀,12000rpm,1min, 去上清,加入80ul平衡缓冲液,悬浮混匀. 2.RNA溶解液,吸附缓冲液,平衡缓冲液,洗涤缓冲 液,使用前在37℃水浴预热20 - 30min,摇动,放室温备用.
RT-PCR常见问题分析及其解决方案
二、实验目的
1、学习基因特异性引物的设计。
2、学习和掌握RT-PCR的原理和方法。
3、学习和掌握用半定量RT-PCR对基因表达水平进行相对 定量的原理和方法。
三、实验程序
1. 提取 RNA ,通过 OD 值测定对 RNA 样品进行 定量。 2. RNA的纯化及RNA中DNA的去除 3. 根据基因序列设计扩增目的基因以及看家基因 的引物。 4. RT-PCR 扩增目的基因及看家基因。 5. 产物进行琼脂糖凝胶电泳,分析结果。
三. 分离纯化方法
一) 说明 1.总RNA样品质量直接影响到mRNA的分离效果和回收率,因此 在分离操作前需先进行变性agarose electrophoresis以确定 RNA的质量,如果质量合格(28S 和18S rRNA条带清晰,且亮度比 为1.5:1-2.5-:1)则可用于mRNA分离,否则建议不用.
40ul
10 ul
4.取上清到一新eppendorf tubቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ中,加2.5倍体积的无水乙 醇,12400rpm,15min. 5.70%乙醇洗涤一次,加50ul DEPC处理水溶解,-20℃保存.
基因表达检测RTPCR
可编辑ppt
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操作步骤(一)
• 液氮磨样,每管分装0.1克样品; • 每管加1毫升Trizol 试剂(样品体积不超过Trizol 试剂体积
的10%),迅速混匀(若样品较多可先将混好的样品置于 冰上);室温下净置5-10分钟以利于核酸蛋白质复合体 的解离; 1. 加200 µl的氯仿,用手剧烈摇荡15秒,室温下静置5分钟 左右;
可编辑ppt
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What does good or bad total RNA look like when separated in gel?
Contaminant
Good
Degradation
Callus 可编辑ppt Leaf
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RNA产量低的原因
1. 样品研磨不彻底,没有混匀,裂解 不彻底
目前PCR技术只能扩增DNA模板,对RNA模板不能 直接扩增。mRNA 反转录生成的cDNA可作为PCR的模板 进行扩增,这种在mRNA反转录后进行的PCR扩增称为 RT-PCR。RT-PCR比Northern杂交更灵敏,对RNA的质量 要求较低,操作简便,它是在转录水平上检测基因时 空表达的常用方法。
2. RNA没有完全溶解
可编辑ppt
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RNA降解的主要原因
取样后没有立即抽提RNA; 抽提过程中超作不当,样品量超过了许可的范围; 样品运输、保藏不当,或RNA保藏不当,应放入-70 ℃ ,而不是-20 ℃ ) 使用的溶液或器皿有RNase污染 琼脂糖变性胶(甲醛)电泳时pH值低于3.5
可编辑ppt
A: IRBB10 叶片接种 白叶枯(PXO86)
EI22F22
B: IRBB13 叶片接 种 白叶枯(PXO99)
EI1K8 EI35I3 ß-actin
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RNA抽提前应准备的其它试剂及物品:
1. 75%乙醇(in DEPC-treated water) 2. 氯仿 3. 异丙醇(RNA专用) 4. RNase-free water:Draw water to RNase-free glass
bottles. Add diethylpyrocarbonate (DEPC)to 0.1% . Let stand overnight and autoclave. 5. 防止外源RNase的污染: 应戴口罩和手套,环境洁净;玻璃器皿180ºC烘烤3hrs 以上;塑料制品DEPC水清洗,蛋白质变性剂处理;一 次性用品如tube, tip等使用新的,无RNA酶的产品。
PCR
基因表达水平
•Awarded Nobel Prize for Chemistry in 1993.
(梁大成等,2006)
表达增强克隆的RT-PCR和Northern杂交分析
ladder
EI12I1
AB
C
D
E
c13 57 c 13 57 c 13 57 c 13 57c 13 57
A: IRBB10 叶片接种 白叶枯(PXO86)
操作步骤(一)
• 液氮磨样,每管分装0.1克样品; • 每管加1毫升Trizol 试剂(样品体积不超过Trizol 试剂体
积的10%),迅速混匀(若样品较多可先将混好的样品置 于冰上);室温下净置5-10分钟以利于核酸蛋白质复合 体的解离; 1. 加200 µl的氯仿,用手剧烈摇荡15秒,室温下静置5分钟 左右;
3. 检测 0.5×TBE
电泳
In 1× MOPS 80 —150V 40 min —1h30min
有溴化乙锭存在时,电泳后28S rRNA和18S rRNA 在紫外灯下应当很清楚的看得到,还应当有一条由 tRNA,5.8S rRNA和5S rRNA组成的较模糊的迁移较 快的带。如果RNA没有降解, 28S rRNA的亮度应当是 18S rRNA的2倍,且这两条带都没有弥散现象。
RNA操作中应注意的问题: 防止RNase污染
外源RNase的主要来源: 被污染的试剂,缓冲液 移液器 使用的器皿及tip等 操作者的手,头发等
防止内源RNA酶降解RNA
材料要新鲜; 裂解过程要同RNase活性抑制同步
RNA酶抑制剂
RNA酶是一种很顽固的酶,在RNA 分离和鉴定的各个阶段严重威胁RNA的 完整性。用来使RNA酶不发挥作用的 RNA酶抑制剂主要有:
操作步骤(二)
4. 2-8 ℃ ,12000×g 离心10-15分钟;
将水相(上清)转入一新离心管,加0.5ml 异丙醇室 温下沉淀10分钟;
5. 2-8 ℃ ,12000×g 离心15分钟;
6. 弃上清,加1ml 75%乙醇清洗RNA,振荡片刻后(务 必使沉淀悬浮起来,以确保洗涤干净),7500×g 离 心5分钟,小心弃上清;
实验目的:学习RNA的简易制备过程,通过RNA电泳
带评价RNA质量
实验材料:水稻幼嫩叶片
提取方法:
苯酚/氯仿反复抽提 ,价廉但质不优, 尤其是对多酚等含量高的材料不适
蛋白酶/SDS配合酚、氯仿抽提的方法 强变性剂法。硫氰酸胍,盐酸胍等,可
配合氯化铯离心或有机溶剂提取。
Trizol Reagent
利用Trizol 试剂 抽提植物总RNA
Trizol 试剂是由苯酚和硫氰酸胍配制而成的单相 的快速抽提总RNA的试剂,在匀浆和裂解过程中, 能在破碎细胞、降解细胞其它成分的同时保持RNA 的完整性。在氯仿抽提、离心分离后,RNA处于水 相中,将水相转管后用异丙醇沉淀RNA。
用这种方法得到的总RNA中蛋白质和DNA污染很少, 可以用来做Northern,RT-PCR,分离mRNA,体外翻译 和分子克隆等。
可与RNase形成非共价的复合物,从而使RNA酶失活。 不能在变性剂如SDS、胍等存在的情况下使用。
RNA EXTRACTION (mini prep)
RNA的制备与分析对于了解基因在转录水平上的 调节和cDNA的合成都是必须的,RNA的纯度和完整性 对于NortheA分离的方法很多,最关 键的因素是尽量减少RNA酶的污染。
第三部分: 基因表达检测
RT-PCR (Reverse transcription PCR)
基因表达分析
Northern Blotting
Reverse Transcription PCR
RNA抽提
反转录
基因特异性引导 Oligo(dT)引导 随机六核苷酸引物引导
cDNA
Northern Blotting
7. 室温静置5-15分,使RNA沉淀恰好干燥,加入20 µl DEPC水溶解,保存于-70 ℃ 。
8. 取2 µl 琼脂糖电泳检测RNA质量。
RNA的琼脂糖凝胶电泳
1. 用乙二醛/甲酰胺对RNA进行预变性,然后进 行琼脂糖凝胶电泳
2. 用甲醛和二甲基亚砜对RNA进行预处理,在 含6%或2.2mol/L甲醛的凝胶中电泳
1. DEPC 2. 氧钒核糖核苷复合物 3. RNA酶的蛋白质抑制剂
DEPC:
是高度活性的烷基化试剂,通过组胺基团乙氧 基甲酸化形式破坏RNase的活性
氧钒核糖核苷复合物:
O
C-CH2-CH3 O
C-CH2-CH3 O
能与多种RNA酶活性位点结合并几乎百分之百 地抑制RNA酶的活性
RNA酶蛋白质抑制剂 Ribonuclea good or bad total RNA look like when separated in gel?
EI22F22
B: IRBB13 叶片接 种 白叶枯(PXO99)
EI1K8
C: C101A51 叶接种 稻瘟病(V86013)
EI35I3 ß-actin
D: MH63 叶片接种 稻瘟病(V86013)
E: MH63 叶片接种 稻瘟病(1366)
(周斌,2001,硕士论文)
实验原理
mRNA 反转录生成的cDNA可作为PCR的模板 进行扩增称为RT-PCR,RT-PCR比Northern杂交 更灵敏,对RNA的质量要求较低,操作简便, 它是在转录水平上检测基因时空表达的常用方 法。