小鼠腹腔巨噬细胞的分离培养与鉴定

小鼠腹腔巨噬细胞的分离培养与鉴定

【摘要】目的建立一种小鼠腹腔巨噬细胞分离培养的简便方法。方法以无血清的dmem培养液灌洗小鼠腹腔，分离获取小鼠腹腔巨噬细胞，在含有10%成牛血清的dmem培养液中培养。采用倒置显微镜观察细胞形态，台盼蓝染色计算存活率，瑞氏染色计算纯度。结果获得高纯度的巨噬细胞，具备巨噬细胞的形态特征。结论该方法是一种简单可行的分离巨噬细胞的方法。

【关键词】小鼠；巨噬细胞；分离；培养；鉴定

0.引言

巨噬细胞是动物机体内重要的免疫细胞，具有抗肿瘤和免疫调节等重要作用[1， 2] ，被广泛应用于体外免疫增强药物的非特异性免疫功能评价[3] 。有很多文献报到已能从多种组织和器官中分离纯化巨噬细胞，但这些方法大多都是繁琐、复杂，所需时间长且耗资较大。本实验以小鼠腹腔巨噬细胞为研究对象，探索建立一种巨噬细胞体外分离培养与鉴定简便的方法。

1.材料与方法

1.1实验对象

清洁级巴贝斯小鼠，体重在（30-32g），由兰州大学实验动物中心提供。

1.2实验方法

1.2.1小鼠腹腔单核巨噬细胞的分离培养

随机选取巴贝斯小鼠，腹腔注射不含小牛血清的rpmi-1640培养

液5ml。轻柔小鼠腹部2-3min，静置5-7min后将小鼠颈椎脱臼处死，至于解剖板上，无菌条件下打开腹腔，用注射器抽取腹腔液，离心5min （1000r/min），弃上清，用pbs洗涤2遍。再用含10%成牛血清的rpmi-1640培养液（0.1%双抗溶液）调节至2×106ml-1，接种于培养瓶及6孔板，置37℃，5%co2培养箱培养2h，弃上清。用不含小牛血清的rpmi-1640培养液洗涤2遍，然后加含有10%小牛血清的rpmi-1640培养液在37℃co2培养箱中继续培养[4]。倒置显微镜观察细胞形态。

1.2.2巨噬细胞的观察与鉴定

（1）台盼蓝染色计算存活率。

4%台盼蓝母液：称取4g台盼蓝，加少量蒸馏水研磨，加双蒸水至100ml，用滤纸过滤，4度保存。使用时。用pbs稀释至0.4%。（也可买gibco的成品）；胰酶消化贴壁细胞，制备单细胞悬液，并作适当稀释。染色：细胞悬液与0.4%台盼蓝溶液以9：1混合混匀。（终浓度0.04%）；计数：在三分钟内，分别计数活细胞和死细胞。镜下观察，死细胞被染成明显的蓝色，而活细胞拒染呈无色透明状。

（2）瑞氏染色计算细胞纯度。

细胞涂片自然干燥后，用蜡笔在两端画线，以防染色时染液外溢。随后将玻片平置于染色架上，滴加染液3-5滴，使其盖满涂片，大约1分钟后，滴加等量或稍多的ii液，用吸耳球轻轻混匀。冲洗：染色5-10分钟用流水染液，待干。结果观察，将干燥后的血涂片

置显微镜下观察。先用低倍镜观察涂片，再用油镜。

2.结果

2.1小鼠巨噬细胞的分离培养

（1）巨噬细胞的观察与鉴定.

巨噬细胞体外培养24h观察结果。如图1

（2）台盼蓝染色结果。

从腹腔分离出来的巨噬细胞进行台盼蓝染色结果显示巨噬细胞的成活率>95%，如图2

（3）瑞氏染色结果。

从腹腔分离出来的巨噬细胞进行瑞氏染色结果显示巨噬细胞的纯度>98%，如图3

图1巨噬细胞体外培养24h观察图2台盼蓝染色结果

图3 瑞氏染色结果

3.讨论及结论

巨噬细胞广泛分布于体内，它不仅参与非特异性免疫，而且是特异性免疫中一类关键的细胞，参与集体众多的生理和病理反应过程，如巨噬细胞的吞噬和消除病原微生物[5]，通过加工处理提成抗原，启动特异性免疫应答[6]，以及巨噬细胞通过细胞凋亡清除吞噬的致病病原体等。由于腹腔巨噬细胞多游离存在于腹腔的腹水中，易于获得，因此许多实验室在进行基础或配合临床研究巨噬细胞功能及其与疾病的关系、或筛选免疫增强药物和探讨其作用机制时，往往选用小鼠腹腔巨噬细胞为研究对象。

虽然腹腔巨噬细胞的提取方法都是灌胃洗腹腔后，吸出含有巨噬细胞的灌洗液了，但具体操作略有差异[7]。预先注入的巨噬细胞刺激剂有淀粉溶液、肉汤、糖原等，以产生大量的巨噬细胞计入腹腔。虽然这些刺激剂能分离收集到大量的巨噬细胞，但注入的大分子抗原物质对巨噬细胞吞噬功能有一定的影响，获得的巨噬细胞已不再是原体内巨噬细胞的基础功能。本实验提取巨噬细胞的方法是对文献中方法的改进，关键在于活体腹腔注射不含血清的培养液，轻揉腹部后静置几分钟，然后颈椎脱臼致死小鼠，无菌打开腹腔吸取腹腔液[4]。此方法相对处死小数后进行系列操作而言，洗出的灌洗液中混杂的白细胞少，提取局势细胞的纯度高，是一种简便的小鼠腹腔巨噬细胞的分离方法，为巨噬细胞的相关研究奠定了基础。

【参考文献】

[1]徐远义，黄允宁，常越，等.多抗甲素诱导小鼠腹腔巨噬细胞对癌细胞杀伤增强机制的研究[j].免疫学杂志，2006，22（4）：396-398.

[2]黄琼，李志，杨杏芬，等.流式细胞术检测小鼠腹腔巨噬细胞吞噬功能[j].中国药理学与毒理学杂志，2007，21（2）：140-146.

[3]张华，钟英英，方廖琼，等.羊胎盘免疫调节因子对小鼠腹腔巨噬细胞免疫功能的影响[j].中国生化药物杂志，2005，26（2）：70-72.

[4]李海涛，肖丹，等.小鼠腹腔巨噬细胞的分离与培养[j].现代

生物医学进展杂志，2008，8（4）：638-639.

[5]so，ih，t-sh，etal.rearrangement of action cytoskeletion during infection with escherichia coli o157 in macrophage[j].cell struct funct，1999，24（5）：237-246. [6]fulton sa，reba sm，pai pk，etal.inhibition of major histocompatibility complex ⅱ expression and antigen processing in murine alveolar macrophage by mycobacterium bovis bcg and the 19-kilodalton mycobacterial

lipoprotein[j].infect immun，2004，72（4）：2010-2110. [7]尹美珍，李世普，等.大鼠腹腔巨噬细胞的分离培养与鉴定[j].武汉理工大学学报，2009，31（9）：40-42.