急性毒性及其评价方法
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1、查阅文献 首先了解分析受试化学物的化学结构和
其理化性质,依此查阅文献, 找出与受试 化学物化学结构与理化性质近似的化学物 的毒性资料,并以文献资料中相同的动物 种系和相同接触途径所测得的LD50(LC50)值 作为受试化学物的预期毒性中值。
.
2、预试验
➢ 以此预期毒性中值为待测化学物的中间剂量组, 再上下各推1~2个剂量组做预试验(每个剂量组 间的组距可以大些,有利于找出受试化学物的致 死剂量范围)
.
3. 为亚慢性及慢性毒性试验研究以及其他 毒理试验提供接触剂量和观察指标选择的 依据 4. 为毒作用机理研究提供线索,了解中毒 效应的特征(包括症状,生理、生化与组 织病理损伤) 5. 研究化学物急性中毒诊断、预防和急救 治疗措施
.
三、急性毒性试验方法的要点
(一) 实验动物选择 选择实验动物的原则:
➢ 经口和注射接触,“一次”是指在瞬间将 受试化学物输入实验动物体内
➢ 经呼吸道吸入与经皮肤接触,“一次” 是 指在一个特定的期间内实验动物持续地接 触受试化学物的过程
.
二 、急性毒性试验的目的
1. 测试和求出受试化学物的致死剂量 (通常 以LD 50 为主要参数),并对该外源化学物进 行急性毒性分级 2. 通过观察动物中毒作用表现、毒作用强 度和死亡情况,初步评价毒物对机体的毒效 应特征、靶器官、剂量-反应关系和对人体 产生损害的危险性
➢ 静式吸入 ➢ 动式吸入
.
3. 经皮肤染毒
➢ 研究外源化学物经皮肤吸收应当尽量选 择皮肤解剖、生理与人类较近似的动物为 对象,目前多选用家兔和豚鼠 ➢ 但由于研究化学物经皮肤吸收的毒性 (求经皮LD 50 )所需的实验动物较多,使用 家兔、豚鼠不够经济,也常用大鼠代替
.
.
4. 经注射染毒
.
(四) 试验程序
.
(5)病理检查和其它指标观察
凡中毒死亡动物应及时解剖做病理学检查, 检查器官有无充血、出血、水肿或其它改变, 并对有变化的脏器作病理组织学检查
对存活动物于观察期结束后应做病理学检查 根据试验需要可进行某些生化指标测定等
.
经典急性毒性试验的局限性
消耗的动物量大 获得的信息有限 测得的LD50是一个统计近似值 在安全性评价中仅评价动物死亡和简单
➢ 尽量选择急性毒性反应与人近似的动物 ➢ 易于饲养,试验动物操作方便 ➢ 繁殖生育力较强,数量较大能够保障供应 ➢ 价格较低,易于获得动物 常用实验动物为大白鼠和小白鼠
.
.
性别
➢ 急性毒性试验所用的动物应当是雌、雄各 半
➢ 如果在研究中发现待测化学物对雌、雄动 物的毒性大小有明显差异时,应分别求出 雌性与雄性动物各自的LD 50 值
1
2
3
4
5
6
LgLD0 LgLD0+i LgLD0+2i LgLD0+3i LgLD0+4i •••
.
4. 症状观察
(1) 观察时间和周期
测实定验外 动源 物化 接学 触物化的学物LD之50后(L两C周50
),一般要 求计算 (14天)内的总死
亡数
对计于算2一4些小速时死的性死化亡学率物(求有其些L速D杀50性(L化C学50物) 也的可24仅小
的症状观察是不够的,更需要的是生理 学、血液学及其它化验检查所提供的深 入细致的毒性信息。
.
急性毒性替代试验
固定剂量法 上-下移动法
.
四、急性毒性分级和评价
.
.
.
.
灌胃器具制作
取l2号普通注射针头,首先将针头尖部去 掉,然后用细锉刀把去掉部分锉平、锉光, 再用沙纸磨光滑,有条件时可在针尖处点 焊成球型。加工成有20度弧度的灌胃针, 连接1ml或5ml的注射器,即成为大小鼠的 灌胃器。
.
灌胃操作方法
先固定动物,即用右手将小鼠尾巴提起,置于鼠笼 或粗糙的平面上,当小鼠向前挣扎时,用左手的 拇指和食指捏住小鼠两耳后颈背皮肤,翻转小鼠 置于掌心,拉直后肢,以小指压住小鼠尾巴即可。 在固定小鼠过程中,不要用力过大,勿握其颈部, 以免窒息死亡。
随机性:每只动物分散到各组去的机会是均 等的,以避免成见或系统误差
.
实验动物的预处理
适应性饲养一周,选择生理健康的动物 凡经口染毒时,要求试验前要对动物禁食,
以保证胃内无食物,减少食物对化学物毒性 的干扰
大鼠、小鼠——隔夜进食;染毒后禁食4h 大动物——每日上午喂食前染毒 染毒后继续禁食2~4h,但在禁食时要保障饮水
时LD 50 与两周 LD 50 值往往没有差别 )
应注明是多少时间的LD 比较时有共同的基础
50
值,以便于在进行毒性
.
(2) 中毒体症和发生过程观察
很多化学物在实验动物接触的初期往往 先出现兴奋现象,有的化学物在动物接触 的初期首先表现为抑制现象
.
wk.baidu.com
.
(3)死亡情况和时间分布:计算LD 50
重点观察和记录每只动物死亡的时间,特别 是最早出现死亡的时间以及各个剂量组动物的 死亡数。分析中毒死亡时间的规律具有一定意 义,可为深人研究化学物的毒作用机制提供参 考。
➢ 根据确定的剂量组进行染毒 ➢ 根据预试验的死亡资料确定组距
可根据以下公式计算出剂量分组:
i=(lgLD90-lgLD10)/(n-1) 或:i=(lgLD100-lgLD0)/(n-1)
式中i为组距(相邻的两个剂量组对数剂量之差); n为设计的剂量组数。
.
3、正式试验
一般来说,根据试验设计所选用的LD50计算方 法来确定组数。例如改良寇氏法一般设5~7个剂量 组;霍恩法固定设4个剂量组。求得i后,以最低剂 量组(LD0或LD10)的对数剂量加上一个i值,即是第 二个剂量组的对数剂量,依此类推直至最高剂量组, 查各自的反对数即得出各组剂量的真实值。
急性毒性及其评价方法
Acute Toxicity Testing
.
一、急性毒性的概念
急性毒性:是指机体(人或实验动物)一次 或24小时内多次接触外源化学物后在短期 内所产生的毒性效应。
包括外观改变、大体形态变化、行为方式 及死亡效应,最主要观察指标是LD50
.
❖实验动物接触化学物的方式或途径不同, “一次”的含义也有所不同
以灌胃器轻轻压其头部,使口腔与食道成一条直 线,再将灌胃针沿上腭壁轻轻进入食道,当灌胃 针进入约3cm左右时即达胃内。
.
2. 经呼吸道接触
在常温、常压下为气态,或在生产过程中 和生活过程中以蒸气、气溶胶、烟、粉尘 状态污染生产与生活环境空气,此时就有 可能经呼吸道吸入。 吸入接触分为两种方式 :
.
(二) 受试物及处理
受试物的接受、分样、保管、称重、配制 以及在此过程中严格的质量保证影响急性 毒性试验
受试物剂型:水溶液、混悬液、油溶液
.
(三) 染毒方法
1. 经口(胃肠道)染毒: (1)灌胃:
➢ 空腹 ➢ 灌胃后2-3 h复食 ➢ 灌胃的体积不超过体重的1-2%: 小鼠为 0.2-1.0ml/只或0.1-0.5ml/10g较合适 大鼠为5ml/只(通常用0.5-1.0ml/100g) 家兔为10ml/2kg体重,狗不超过50ml/10kg
.
(4)体重:
体重可以反映动物中毒后的整体变化。体重改 变的原因很多,若化学毒物刺激或损伤消化道可 出现试验动物饮食减少甚至拒食,表现为体重减 轻;若化学毒物引起腹泻,将影响食物吸收和利 用,体重也会减轻。如果化学毒物影响水的摄取 或肾功能急性损伤,也可能在体重上反映出来。 所以,对存活动物尤其是对低于LD50剂量组的存 活动物,应在观察期14天内称量其体重的变化, 以便了解受试物引起毒效应的持续时间。
只以上
❑对于不同的化学物测定应根据其相应的试 验规程确定实验动物数量
.
动物分组的原则:均衡性和随机性
均衡性:要求各组动物的平均体重及体重的 离散度尽可能一致。具体来说是:
(1)实验动物的体重不应超过全体实验动物 平均体重的10%---控制离散度
(2)每组之间的平均体重相差不应超过 5% ---控制均衡性
➢ 如果试验是为致畸试验作剂量准备,也可 仅做雌性动物的LD 50 试验
.
实验动物分组和数量
❑在利用不同的方法测定化学物LD 验设计中对动物数的要求不同
50
时,实
➢ 霍恩氏法测 LD 每组4或 5只动物
50
时要求有
4个剂量组,
➢ 改进寇氏法、概率单位法、Bliss法测定 则要求5-7个 剂量组,每组10只动物或10
其理化性质,依此查阅文献, 找出与受试 化学物化学结构与理化性质近似的化学物 的毒性资料,并以文献资料中相同的动物 种系和相同接触途径所测得的LD50(LC50)值 作为受试化学物的预期毒性中值。
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2、预试验
➢ 以此预期毒性中值为待测化学物的中间剂量组, 再上下各推1~2个剂量组做预试验(每个剂量组 间的组距可以大些,有利于找出受试化学物的致 死剂量范围)
.
3. 为亚慢性及慢性毒性试验研究以及其他 毒理试验提供接触剂量和观察指标选择的 依据 4. 为毒作用机理研究提供线索,了解中毒 效应的特征(包括症状,生理、生化与组 织病理损伤) 5. 研究化学物急性中毒诊断、预防和急救 治疗措施
.
三、急性毒性试验方法的要点
(一) 实验动物选择 选择实验动物的原则:
➢ 经口和注射接触,“一次”是指在瞬间将 受试化学物输入实验动物体内
➢ 经呼吸道吸入与经皮肤接触,“一次” 是 指在一个特定的期间内实验动物持续地接 触受试化学物的过程
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二 、急性毒性试验的目的
1. 测试和求出受试化学物的致死剂量 (通常 以LD 50 为主要参数),并对该外源化学物进 行急性毒性分级 2. 通过观察动物中毒作用表现、毒作用强 度和死亡情况,初步评价毒物对机体的毒效 应特征、靶器官、剂量-反应关系和对人体 产生损害的危险性
➢ 静式吸入 ➢ 动式吸入
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3. 经皮肤染毒
➢ 研究外源化学物经皮肤吸收应当尽量选 择皮肤解剖、生理与人类较近似的动物为 对象,目前多选用家兔和豚鼠 ➢ 但由于研究化学物经皮肤吸收的毒性 (求经皮LD 50 )所需的实验动物较多,使用 家兔、豚鼠不够经济,也常用大鼠代替
.
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4. 经注射染毒
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(四) 试验程序
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(5)病理检查和其它指标观察
凡中毒死亡动物应及时解剖做病理学检查, 检查器官有无充血、出血、水肿或其它改变, 并对有变化的脏器作病理组织学检查
对存活动物于观察期结束后应做病理学检查 根据试验需要可进行某些生化指标测定等
.
经典急性毒性试验的局限性
消耗的动物量大 获得的信息有限 测得的LD50是一个统计近似值 在安全性评价中仅评价动物死亡和简单
➢ 尽量选择急性毒性反应与人近似的动物 ➢ 易于饲养,试验动物操作方便 ➢ 繁殖生育力较强,数量较大能够保障供应 ➢ 价格较低,易于获得动物 常用实验动物为大白鼠和小白鼠
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性别
➢ 急性毒性试验所用的动物应当是雌、雄各 半
➢ 如果在研究中发现待测化学物对雌、雄动 物的毒性大小有明显差异时,应分别求出 雌性与雄性动物各自的LD 50 值
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LgLD0 LgLD0+i LgLD0+2i LgLD0+3i LgLD0+4i •••
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4. 症状观察
(1) 观察时间和周期
测实定验外 动源 物化 接学 触物化的学物LD之50后(L两C周50
),一般要 求计算 (14天)内的总死
亡数
对计于算2一4些小速时死的性死化亡学率物(求有其些L速D杀50性(L化C学50物) 也的可24仅小
的症状观察是不够的,更需要的是生理 学、血液学及其它化验检查所提供的深 入细致的毒性信息。
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急性毒性替代试验
固定剂量法 上-下移动法
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四、急性毒性分级和评价
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灌胃器具制作
取l2号普通注射针头,首先将针头尖部去 掉,然后用细锉刀把去掉部分锉平、锉光, 再用沙纸磨光滑,有条件时可在针尖处点 焊成球型。加工成有20度弧度的灌胃针, 连接1ml或5ml的注射器,即成为大小鼠的 灌胃器。
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灌胃操作方法
先固定动物,即用右手将小鼠尾巴提起,置于鼠笼 或粗糙的平面上,当小鼠向前挣扎时,用左手的 拇指和食指捏住小鼠两耳后颈背皮肤,翻转小鼠 置于掌心,拉直后肢,以小指压住小鼠尾巴即可。 在固定小鼠过程中,不要用力过大,勿握其颈部, 以免窒息死亡。
随机性:每只动物分散到各组去的机会是均 等的,以避免成见或系统误差
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实验动物的预处理
适应性饲养一周,选择生理健康的动物 凡经口染毒时,要求试验前要对动物禁食,
以保证胃内无食物,减少食物对化学物毒性 的干扰
大鼠、小鼠——隔夜进食;染毒后禁食4h 大动物——每日上午喂食前染毒 染毒后继续禁食2~4h,但在禁食时要保障饮水
时LD 50 与两周 LD 50 值往往没有差别 )
应注明是多少时间的LD 比较时有共同的基础
50
值,以便于在进行毒性
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(2) 中毒体症和发生过程观察
很多化学物在实验动物接触的初期往往 先出现兴奋现象,有的化学物在动物接触 的初期首先表现为抑制现象
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wk.baidu.com
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(3)死亡情况和时间分布:计算LD 50
重点观察和记录每只动物死亡的时间,特别 是最早出现死亡的时间以及各个剂量组动物的 死亡数。分析中毒死亡时间的规律具有一定意 义,可为深人研究化学物的毒作用机制提供参 考。
➢ 根据确定的剂量组进行染毒 ➢ 根据预试验的死亡资料确定组距
可根据以下公式计算出剂量分组:
i=(lgLD90-lgLD10)/(n-1) 或:i=(lgLD100-lgLD0)/(n-1)
式中i为组距(相邻的两个剂量组对数剂量之差); n为设计的剂量组数。
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3、正式试验
一般来说,根据试验设计所选用的LD50计算方 法来确定组数。例如改良寇氏法一般设5~7个剂量 组;霍恩法固定设4个剂量组。求得i后,以最低剂 量组(LD0或LD10)的对数剂量加上一个i值,即是第 二个剂量组的对数剂量,依此类推直至最高剂量组, 查各自的反对数即得出各组剂量的真实值。
急性毒性及其评价方法
Acute Toxicity Testing
.
一、急性毒性的概念
急性毒性:是指机体(人或实验动物)一次 或24小时内多次接触外源化学物后在短期 内所产生的毒性效应。
包括外观改变、大体形态变化、行为方式 及死亡效应,最主要观察指标是LD50
.
❖实验动物接触化学物的方式或途径不同, “一次”的含义也有所不同
以灌胃器轻轻压其头部,使口腔与食道成一条直 线,再将灌胃针沿上腭壁轻轻进入食道,当灌胃 针进入约3cm左右时即达胃内。
.
2. 经呼吸道接触
在常温、常压下为气态,或在生产过程中 和生活过程中以蒸气、气溶胶、烟、粉尘 状态污染生产与生活环境空气,此时就有 可能经呼吸道吸入。 吸入接触分为两种方式 :
.
(二) 受试物及处理
受试物的接受、分样、保管、称重、配制 以及在此过程中严格的质量保证影响急性 毒性试验
受试物剂型:水溶液、混悬液、油溶液
.
(三) 染毒方法
1. 经口(胃肠道)染毒: (1)灌胃:
➢ 空腹 ➢ 灌胃后2-3 h复食 ➢ 灌胃的体积不超过体重的1-2%: 小鼠为 0.2-1.0ml/只或0.1-0.5ml/10g较合适 大鼠为5ml/只(通常用0.5-1.0ml/100g) 家兔为10ml/2kg体重,狗不超过50ml/10kg
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(4)体重:
体重可以反映动物中毒后的整体变化。体重改 变的原因很多,若化学毒物刺激或损伤消化道可 出现试验动物饮食减少甚至拒食,表现为体重减 轻;若化学毒物引起腹泻,将影响食物吸收和利 用,体重也会减轻。如果化学毒物影响水的摄取 或肾功能急性损伤,也可能在体重上反映出来。 所以,对存活动物尤其是对低于LD50剂量组的存 活动物,应在观察期14天内称量其体重的变化, 以便了解受试物引起毒效应的持续时间。
只以上
❑对于不同的化学物测定应根据其相应的试 验规程确定实验动物数量
.
动物分组的原则:均衡性和随机性
均衡性:要求各组动物的平均体重及体重的 离散度尽可能一致。具体来说是:
(1)实验动物的体重不应超过全体实验动物 平均体重的10%---控制离散度
(2)每组之间的平均体重相差不应超过 5% ---控制均衡性
➢ 如果试验是为致畸试验作剂量准备,也可 仅做雌性动物的LD 50 试验
.
实验动物分组和数量
❑在利用不同的方法测定化学物LD 验设计中对动物数的要求不同
50
时,实
➢ 霍恩氏法测 LD 每组4或 5只动物
50
时要求有
4个剂量组,
➢ 改进寇氏法、概率单位法、Bliss法测定 则要求5-7个 剂量组,每组10只动物或10