T细胞体外扩增培养
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人T细胞分离与体外培养实验方案
一.实验目的
从人外周血中分离PBMCs,利用CD3和CD3/CD28免疫磁珠分离并扩增T细胞,用于慢病毒载体的感染。
二.实验过程
1.人外周血单个核细胞的分离(每mL外周血大约可获得1×106个单个核细胞)
⑴采血,稀释(外周血:稀释液=1:1);
⑵在离心管中加入人淋巴细胞分离液,沿倾斜的管壁缓缓加入稀释的外周血(Ficoll:稀释
血=1:2);
⑶20℃,440g,离心20-30min;
⑷离心后轻轻吸取中间白膜层,移入另一试管中;
⑸加入足量的稀释液充分洗涤,400g,离心5min,弃上清;
⑹细胞沉淀加1640培养液重悬,即可用于T细胞的磁珠分选。
2.CD3+T细胞分选
⑴适量的MACS缓冲液洗涤PBMCs(107/mL),300g,离心10min,去上清;
⑵MACS缓冲液重悬PBMCs(80μL/107PBMCs),加入CD3免疫磁珠(20μL/107PBMCs),混匀,
4℃孵育15min;
⑶MACS缓冲液(1-2mL/107 cells)洗涤细胞1次,300g,离心10min,弃去上清;
⑷500μL MACS缓冲液重悬细胞;
⑸将MS分离柱放置于磁力架上,加入500μL MACS buffer预清洗分离柱;
⑹将⑷步得到的细胞悬液加入预先洗涤过的MS分离柱,先流出的细胞为未标记的CD3-T细胞。
MACS缓冲液洗涤分离柱3次;
⑺将分离柱从磁力架上取下,放入合适的管子内,加入1mL MACS缓冲液至分离柱内,洗脱液
即为CD3+T细胞,细胞计数后,用含10%胎牛血清的RPMI1640培养基重悬。
3.CD3+T细胞的激活和扩增
⑴CD3/CD28免疫磁珠预先洗涤
①涡旋30s以上重悬CD3/CD28免疫磁珠;
②取需要量的CD3/CD28免疫磁珠加至一个新的管中;
③加入与磁珠体积相等的缓冲液(至少1mL),混匀(涡旋5min或者颠倒混匀5min);
④将管子置于磁力架上1min,弃去上清液;
⑤将管子从磁力架上取下,加入与第②步取出的磁珠体积相等的培养液重悬CD3/CD28免
疫磁珠。
⑵CD3+T细胞激活和扩大培养
①将CD3+T细胞调整密度至1×106/mL于24孔细胞培养板中培养;
②加入25μL预先洗涤并用培养液重悬的CD3/CD28免疫磁珠,使得磁珠和细胞的比例为
1:1;
③37℃,5%CO
培养箱中培养3天。
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④继续培养7-10天,培养基为含10%胎牛血清的RPMI1640,内加rIL-2(工作浓度
30IU/mL),每2-3天更换1次培养液,细胞数达到()×106/mL或者培养液发黄时进行
传代,细胞密度控制为()×106/mL。
⑤如果用于流式分析,在染色前需将磁珠去除,将管子置于磁力架上1-2min,将含有细
胞的上层液体转移至新的管子以分离磁珠。
4.CD 3+T细胞的鉴定
⑴细胞活性鉴定:4g/L台盼蓝与细胞悬液(1:9)染色3min后,置于显微镜下观察细胞存活
率。细胞存活率=染色阴性细胞数/细胞总数×100%。计算200个细胞中活细胞的百分比,
流式细胞术检测:FITC标记的抗人CD3抗体和PE标记的抗人CD8抗体,按1:1抗体/105细胞的比例,4℃避光孵育染色30min,预冷的PBS 洗涤后,重悬细胞待流式细胞术检测。同型对照抗体为小鼠IgG-FITC,小鼠IgG-PE。
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