电导法测定果蔬细胞膜渗透率
细胞膜渗透率的测定
三、材料与仪器设备 1.材料 低温处理过的黄瓜、番茄。 去离子水。 2.仪器设备 DDS——11A型电导仪；751——型紫外分光 光度计；真空泵；真空干燥器；三用水浴； 打孔器；剪刀；洗瓶；试管；移液管；玻 棒；滤纸。
四、方法与步骤 1.清洗器具：由于电导仪变化非常灵敏，稍有杂质即产生很大误差。因 此所用玻璃器具均需先用热肥皂水洗，再用洗液洗涤，然后用自来水、 无离子水各冲四到五遍（最好是容器口朝下用水冲）。向洗净的试管 中加入去离子水，用电导仪测定电导值，检查试管是否确实冼净。 2.取样及处理：自购样品，设计不同贮藏条件，作为处理。用打孔器及 切片器将样品制成厚薄均匀，大小一致的组织圆片，精确称取2g（或 10个圆片），放入试管内，用去离子水冲洗三次，然后加入20mL去离 子水。对照和处理均设3～4个重复。 将试管放入真空干燥器内，开动真空泵抽气10min，压力控制在 0.04-0.06MPa，以抽出细胞间隙空气。缓慢放入空气，水即渗入细胞 间隙，组织圆片变成透明状，细胞内溶质易于渗出，取出试管，间隔 几分钟振荡一次，在室温下保持30min。 3.测定：将DDS——11A型电导仪电极插入试管，测定外渗液的电导值。 测定之后，将试管放入水浴锅沸水中5min 以杀死组织。待冷至室温后， 再次测定外渗液的电导值。
细胞膜相对透性（%） =
L1 L2
100
五.计算： 以细胞膜相对透性大小表示细胞受害的程度。通常 按下式计算： 式中：L1—组织杀死前外渗液的电导值；L2—组织 杀死后外渗液的电导值。 细胞膜相对透性（%）= L1/ L2
附电导仪使用方法： （1）将电极引线接到仪器相应接线柱上。 （2）接上稳压器，接通电源，打开电源开关。 （3）将开关拨向“校正”位置，调整调节器，使指针达到 满偏。 （4）将开关拨向“测定”位置。指针应回到0点。 （5）拨动选择测定范围旋钮，使其处于测定范围之内，如 不知测量范围，应先放在最大量程位置上，由大到小逐级 调整。 （6）将电极用量蒸馏水冲洗干净，并用滤纸吸去附着的水 分。放在需测组织提取液中，待指针稳定后，读出指针所 指数值，此数值即该提取液的电导度。 （7）按上述方法测定组织圆片杀死后提取液电导度。 （8）将电极用蒸馏水冲洗干净，放在水中，如长期不用， 则应将电极洗净晾干包装收藏。
水果各指标测定方法
失重率%100贮藏前的重量贮藏后的重量贮藏前的重量⨯-=失重率果实硬度果实硬度采用手持硬度计（四平兴科仪器仪表厂）法测定，每处理测定10个果实，每果实以对应面去皮测两次，硬度计探针以进入果肉0.5cm 为准，测得果实硬度为相对硬度。
最后以10个果实测得硬度值求平均值作为该处理的硬度。
好果率以计数法测定，好果率=完好脆果数/检查总果数*100%转红率转红率=全红果/检查总果数*100%冰点：基本原理冰点(freezing point)是果蔬的重要物理性状之一。
果蔬组织冰点受果蔬种类、品种、发育程度、栽培条件等的影响。
测定果蔬的冰点有助于确定果蔬适宜的贮运温度及冻结温度。
但是，果蔬活组织的冰点测定过程比较复杂。
由于果蔬榨汁后汁液的冰点要比果蔬活组织的冰点略高，因此，通过测定果蔬汁液的冰点，在一定程度上可以反映果蔬活组织的冰点状况。
将溶液置于低温下，其温度会随着降温时间的延长而下降。
当溶液温度降至其冰点时，由于液体结冰放热的物理效应，使得溶液温度不再随着降温时间的延长而下降，而是保持一段时间。
此后，随着降温的继续进行，溶液(实际上已经为冻结的固体)的温度又开始下降。
根据溶液结冰过程的这种特点，通过测定溶液温度降低过程与降温时间的关系，可以确定该溶液的冰点，即降温曲线中温度不随时间下降的一段。
同样道理，果蔬汁液的冰点即为降温冻结过程中温度不随时间下降的一段曲线所对应的温度。
材料及仪器(一)材料苹果、梨、枣、菠菜等。
(二)仪器及用具标准温度计(精确度±0.01℃)、烧杯(1000mL,l00mL)、研钵、纱布。
(三)试剂﹣6℃以下冰盐水：质量分数大于11%氯化钠或氯化钾溶液，预先冷却至出现冰盐结晶体。
实验步骤(一)测定取果蔬样品研碎，用双层纱布过滤。
取50mL 滤液置于100mL 小烧杯中，将小烧杯置于冰盐水中，插人温度计，温度计的水银球必须浸在样品汁液中，并且不断轻轻搅拌汁液。
从汁液温度降至2℃时开始记录温度读数，每隔20s 记录1次，直到果蔬出现完全结冰为止。
电导法测定果蔬细胞膜渗透率1
Le实际表示在一定时间内，细胞电解质渗出量占总 电解质量的百分比。
因为：L1＝KC1 L0＝KC0 所以：
Le＝KC1/(KC0)×100%＝C1/C0×100%
⑶
由⑶式可见，不必计算电导率，而用电导仪直接测定电
导度（C），即可计算出细胞膜的渗透率（Le）。
指向“1”刻度，温度钮指向“25”，调节校 准钮，使仪器显示100uS/cm, 完成校准。 ⑷将开关拨向“测定位置”，指针应回其处于测定范围之内， 如不知测量范围，应先放在最大程位置上，由大到小， 逐级调整。
⑹将电极用重蒸馏水冲洗干净，并用滤纸吸取附着的 水分，放在需测组织提取液中，等指针稳定后，读指 针所指的数值，此数值即是该提取液的电导度。
果蔬组织提取液的电导率可用下式表示：
L＝KC （1）
C——电导度，表示提取液的导电能力，可用电导仪 直接测得。另外，电导度（C）是电阻R的倒数， 即：
C＝1/R
K——电极 常数 ，它是测定电导时两极片 间的距 离 （单位为㎝）与极片的截面A（单位为㎝2）之比， 其单位为(㎝)-1，因此，电导率L的单位则为Ω-1·㎝-1， mΩ-1·㎝-1和μΩ-1·㎝-1，测定植物细胞膜的电导率多 以μΩ-1·㎝-1为单位。（欧姆）
实验五 电导法测定果蔬细胞膜渗透率
一、实验目的 果蔬在冷藏及冷藏运输中，经常发生冷害或
冻害而影响产品质量。如何及时正确地鉴别冷 害及冻害的发生，是果蔬贮运中需要解决的问 题。
二、实验原理
植物体遭受冷害时，细胞膜的透性发生变化， 细胞中电解质（主要是钾离子）向外渗透速度加 快，细胞膜渗透速度称为渗透率。它可以通过测 定果蔬组织提取液电导率的方法来确定。
三、材料及用具
电驱动膜萃取法在蔬菜水果硒元素检测中的应用
基金项目 湖南省食品药品监督管理局食品药品安全科技项目!编号"湘食药科T )#"()"$作者简介 李勇#男#湖南省郴州市食品药品检验检测中心高级工程师'通信作者 张周洋!"&'$3$#男#湖南省郴州市食品药品检验检测中心工程师'4/5678"@6L D :#!()!"(!?B D 5收稿日期 )#"(&""&))第!!卷第"期)#"$年"月!!"#$%&'()*+,C D 8?!!#1D?"E 6:?)#"$0110电驱动膜萃取法在蔬菜水果硒元素检测中的应用D $$2(,%'("."0*2*,'&(,/&()*.#*#4&%.**B '&%,'(".#*'-"/(.'-*/*'*,'("."0+*2*.(1#(.)*8*'%42*+%./0&1('+李!勇M 6-A '(!张周洋.*"#$.,A 20@3'(!田!芳E 6"#%3'(!唐娇艳E "#$5/3A 0@3'!邓!勇X +#$-A '(!湖南省郴州市食品药品检验检测中心#湖南郴州!.)!###$!),&'7,A 2)&'?&H B A H%A A C3'CX H 2()A '?H A F #),&'7,A 2#*2'3'.)!####),/'3$摘要 提出一种新方法"将样品通过混合酸消化后应用电驱动膜萃取技术富集其中的硒元素"然后测定其含量#结果表明"该方法缩短了检测时间"减少了试剂消耗"实际样品检出限可达到#?##%5=+R ="平均回收率为&)?.I #通过国家标准物质验证"试验结果符合其不确定度要求#该方法适宜蔬菜水果中硒的检验#关键词 蔬菜%水果%硒%样品检出限%电驱动%膜%萃取23-45674$*:@95@L ;D AK D M L ;@A @L @M 57:6L 7D :D K N @8@:7<5&0@'7:S @=@L 6Q 8@N 6:A K M <7L N96NA @S @8D P @A<N 7:=@8@B L M 7B5@5Q M 6:@@W L M 6B /L 7D :?J ;@@K K @B L ND K N @S @M 68K 6B L D M N9@M @7:S @N L 7=6L @A "N <B ;6NJ 75@N P @:L "+D :N <5P L 7D :D K M @6=@:L N6:AZ @L @B L 7D :8757LD K N 65P 8@?J ;@M @N 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N样品样品质量(=底值(:=加标量(:=实测值(:=加标回收率(I平均回收率(I")?#'#()&?$%)%%"?$(''?#.))?#.''.!?(.%#''?!)'&?!(!)?#).(""'?%("##)"#?).&"?('.)?#'((")(?''"%#)(%?((&)?%)%)?"#..)'"?&&)##.$%?.%&(?$!()?#!$')&!?..%##$$!?(%&(?#.&)?!&)?)!方法的精密度取黄瓜样品(次平行测定结果#计算其相对标准偏差#结果见表!'由表!可知#(次平均结果为#?""$5=(R=#相对标准偏差>]#?'I'说明本方法重现性良好')?!!样品检出限对应蔬菜+水果类别#取硒含量低的本地胡萝卜+莴笋+小白菜+花椰菜+茄子+苹果+香蕉+奇异果作为本底#分别加入硒表!!平行测定结果[J6Q8@!!H6M688@8A@L@M57:6L7D:M@N<8L N5= R=平行"平行)平行!平行.平行%平行(平均结果#?""'#?")!#?"#&#?")$#?"#$#?""'#?""$![!相对标准偏差#?'I'标准使用液#?####?)###?.###?(###?'##"?##5^!当定容体积为"#5^时#相当于测定液"5^含#?###)?###.?###(?###'?### "#?##:=硒$#按照"?!?)方法消化和测定其荧光值'根据其荧光值做标准曲线#得到线性方程6B]:)Y N'当荧光值大于零时#试验有意义#可得到其检出限)':(N#并根据定容体积与样品量得到样品检出限#结果见表.'由表.可知#'种蔬菜水果的样品检出限范围为#?##.'"#?##%.5=(R=#相对标准偏差>]#?#)'按国标第一法和国标第二法方法分别做样品检出限#可得到国标第一法的样品检出限为#?#)%5=(R=%国标第二法的样品检出范围为#?#)""?##5=(R=')?.!国家标准物质验证结果对国家标准物质豆角+芹菜+大葱中硒含量进行了测定#进一步验证方法的准确度'结果见表%'由表%可知#实测结果符合其不确定度要求'说明本方法结果准确')?%!与第三方实验室比对验证结果本方法分别与湖南省食品质量监督检验研究院+020通标标准技术服务有限公司!上海$谱尼测试集团上海有限公司作三方试验比对'结果见表('结果表明#本方法结果与第三方结果相吻合#准确有效')?(!与国家标准方法的使用效果对比将本方法与国家标准两种方法中一些关键点进行了比对和评价#结果见表$'由表$可知#本方法相对于国标两种表.!样品检出限[J6Q8@.!J;@N65P8@A@L@B L7D:8757L类别品种线性方程方法检出限(!:=/5^3"$样品检出限(!5=/R=3"$根菜类胡萝卜6B]"%&?!(()3"%(?!!'#?&'"#?##.&茎菜类莴笋!6B]"'.?!%&)3"&.?!"."?#%.#?##%!叶莱类小白菜6B]"('?"$$)3"($?"('#?&&.#?##%#花菜类花椰菜6B]".(?!())3"%'?!(."?#')#?##%.果菜类茄子!6B]"&#?.)%)3"')?.)$#?&%'#?##.'常绿果树核果类苹果!6B]"$%?!'%)3"'"?!.'"?#!.#?##%)香蕉类香蕉!6B]".$?!.()3"%.?)$""?#.$#?##%)常绿果树浆果类奇异果6B]"$$?')")3"$!?%%!#?&$(#?##.& [!定容体积"#5^#样品质量)?##=#相对标准偏差#?#)I'表%!与国家标准物质比对结果J6Q8@%!J;@B D5P6M7N D:S@M7K7B6L7D:M@N<8L N97L;B;7:6 B@M L7K7@A M@K@M@:B@56L@M68N5= R=标准物质标准值及不确定度本方法实测结果豆角#?#.!#`#?#"%##?#.)#芹菜#?#""'`#?#"$##?#""!大葱#?#(&#`#?##&##?#(%#表(!与第三方检验机构比对验证结果J6Q8@(!J;@B D5P6M7N D:S@M7K7B6L7D:M@N<8L N97L;L;7M A L@N L7:N L7L<L7D:5= R=样品名本方法结果湖南省食品质量监督检验研究院结果谱尼测试集团上海公司结果020通标标准技术服务有限公司!上海$结果大米#?$&##?$$##?$(!#?$!#大葱#?#(%#?#$(#?#')#?#%#豆角#?#.)#?#.(#?#&(#?#!#!%第!!卷第"期李!勇等"电驱动膜萃取法在蔬菜水果硒元素检测中的应用!表$!与国家标准方法效果比对J6Q8@$!4K K@B L B D5P6M7N D:97L;L;@:6L7D:68N L6:A6M A5@L;D A方法样品消化与预还原过程试剂样品检出限(!5=/R=3"$处理方式本法!!直接消化)"!;#加入%Ib+8溶液至沸腾#不超过%57:#电动萃取"#57:%硒元素态化"无%I硫脲Y%I抗坏血酸!毒性微弱$#?##%萃取中通过离子交换膜选择性滤过氢化物原子荧光光谱法!!预消化");#消化)"!;#加入(5D8(^b+8溶液#硒的预还原时间未明确说明%硒元素态化"超过%57:#有损失铁氰化钾!毒性较小$#?#)%未做说明荧光法!烘干(").;#消化)"!;#加入"#Ib+8溶液#硒的预还原时间未明确说明%硒元素态化"超过%57:#有损失Z*1试剂!毒性较大#需要暗室操作$#?#)#""?###当某些蔬菜+水果出现沉淀#以加热出现滚滚白烟为终点方法#在保证试验结果准确的前提下#具有耗时少+试剂毒性小+预还原过程准确稳定+样品检出限低和能消除复杂基体影响的优势'!!结论本研究将电驱动膜萃取技术应用于蔬菜+水果的硒元素检测中#设计了一种电驱动膜萃取装置#提出了新的检测方法#回收率达到''?#I"&(?$I#实际样品检出限达到#?##%5=(R=#精密度高'同时做标准物质比对并与第三方检验机构进行能力验证#结果准确+符合要求'将本方法与国家标准方法关键步骤进行了比较#结果表明#本法具有更低的样品检出限和更高的工作效率#更适用于蔬菜+水果中硒含量的检测#将对中国富硒产业的发展起到积极促进作用'试验中#因样品消化液含酸#转移入样品池中会导致其溶液电导率值不断变大'若样品池中溶液电导率值接近接收瓶中溶液电导率值#装置的富集效率和重复性会受到影响'研究符合试验要求的最低电导率差值和如何降低样品消化液对样品池溶液电导率值影响的方法#有待进一步研究'参考文献)"*中华人民共和国卫生部?2,%##&?&!&)#"#!食品安全国家标准!食品中硒的测定)0*?北京"中国标准出版社#)#"#""/!? ))*中华人民共和国卫生部?2,%##&?&!&)#"#!食品安全国家标准!食品中硒的测定)0*?北京"中国标准出版社#)#"#"!/(? 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PVDC包膜处理对黄瓜低温贮藏冷害的影响
PVDC包膜处理对黄瓜低温贮藏冷害的影响裴倩如【摘要】[目的]探求在冷害温度下PVDC包膜处理对黄瓜冷害的影响.[方法]以“青绿一号”品种黄瓜为试材,以黄瓜发生的冷害温度4和7℃作为试验的贮藏温度,每种温度下采用PVDC包膜处理,着重考察了贮藏过程中与冷害相关的各指标(冷害指数、冷害发生率、丙二醛含量、膜渗透率、CAT活性、POD活性)的变化情况.[结果]试验表明,包膜处理对黄瓜冷害的影响与对照相比有显著性差异.在黄瓜冷害温度下,PVDC包膜处理黄瓜的冷害指数与冷害发病率保持较低;延缓黄瓜细胞膜渗透率及丙二醛含量随时间的升高;延缓黄瓜CAT、POD活性随时间的降低.[结论]黄瓜在处于冷害温度范围内运输时,可通过PVDC包膜处理的方法减轻冷害的影响.【期刊名称】《安徽农业科学》【年(卷),期】2013(000)018【总页数】4页(P7936-7938,7974)【关键词】黄瓜;冷害;包膜处理【作者】裴倩如【作者单位】中国农业大学食品营养与工程学院,北京100083【正文语种】中文【中图分类】S642.2低温贮藏是延缓园艺作物采后成熟、抑制病原菌生长和保持品质的最普遍手段。
然而，一些生长在热带、亚热带的果蔬对低温相当敏感。
黄瓜是一种典型的亚热带冷敏型果蔬，因其清脆可口、营养价值较高倍受消费者喜爱。
低温贮藏是目前黄瓜采后主要的贮藏手段[1]，但冷敏型黄瓜低于12℃贮藏时易遭受冷害，造成很大损失[2]。
冷害会加重果肉组织的离子透性，在果实表面形成腐烂斑、水渍斑，改变抗氧化酶活性[3]。
一些研究探讨了多种措施处理后黄瓜采后冷害及生理生化的变化[4－5]。
聚二氯乙烯(PVDC)是一种优质的食品包装材料，特别是耐高温蒸煮和对氧气、水蒸气、各种气味具有很好的阻隔性，这是其他塑料所不可比拟的性质[6]，但PVDC包膜处理对黄瓜贮藏过程中冷害的影响鲜有报道。
笔者旨在探求黄瓜冷害温度下PVDC包膜处理对冷害的影响，为黄瓜采后贮运条件提供理论指导。
电导法测定杏叶片细胞质膜相对透性的研究
2008 年
图 3 叶片直接沸水浴和静置后沸水浴与煮后电导率的关系 F ig13 The rela tion sh ip between the leaf stand ing or not before bo iling wa ter and the electr ic conductiv ity after leaf bo iled
的电导率均 有 随 着 处 理 后 静 置 时 间 的 延 长 而 升 高 的 趋 势 ; 处理后静置 1 ～27 h, 叶片的电导率呈迅速升高的 趋势 , 而处理后静置 28～30 h, 电导率值基本稳定 ; 各 处理之间差异不显著 。
图 2 沸水浴时间与煮后电导率的关系 F ig12 The rela tion sh ip between the bo iling wa ter tim e
用直径 5 mm 的打孔器取样 , 避开主脉 , 混合均匀
收稿日期 : 2007210218 作者简介 : 刘铁铮 ( 1977 - ) , 男 , 河北唐山人 , 助理研究员 , 主要
从事杏树栽培和育种研究 。
后称取一定量的叶片放入标记好的 100 mL 三角瓶中 , 加重蒸水 40 mL。3次重复 。 11211 叶片取样量和浸泡时间对煮前电导率的影响 试验设叶片取样量 011、013、015、017、1和 2 g共 6个 处理 。放 入 标 记 好 的 100 mL 三 角 瓶 中 , 加 重 蒸 水 40 mL。每隔 1 h测 1次电导率 。 11212 水浴时间对叶片煮后电导率的影响 称取样品 015 g, 放入事先已标记好的 100 mL 三角瓶中 , 加重蒸 水 40 mL。试 验 设 在 沸 水 浴 中 持 续 15 m in、 20 m in 和 25 m in 3个处理 。沸水浴后 , 用流动自来水迅速冷却 , 然后立即测量各处理的煮后电导率 , 之后每隔 1 h测定 1次电导率 。 11213 叶片煮前充 分 浸 泡和 直 接 沸 水 浴 对 叶 片 煮 后 电 导率的影响 试验设叶片浸泡 30 h 后再沸水浴 15 m in 和称取 015 g叶片放入重蒸水后立即沸水浴 15 m in 2 个 处理 。自然冷却条件下每隔 2 h测 1次电导率 。 11214 温度对叶片电导率的影响 称取叶片 015 g, 浸 泡 30 h, 再沸水浴 15 m in, 然后在室温下静置 4 h, 待介 质电导率基本稳定后 , 放入控温冰箱中 。从 5 ℃开始测 电导率 , 温度每升高 5 ℃测 1次电导率 , 直到室温 。然 后放入水浴锅 (室温 ) 中加热 , 温度每上升 5 ℃测 1次 电导率 。
电导率测量是水体盐度和纯度的基本方法
电导率测量是水体盐度和纯度的基本方法电导率测量是测量溶液中电流通过的能力，用以了解水体中的盐度和纯度。
盐度和纯度是衡量水体中溶解物质含量和纯净程度的重要指标，对水质监测和水处理过程都有着重要意义。
本文将介绍电导率测量的原理、仪器以及其在水质监测中的应用。
首先，我们来探讨一下电导率测量的原理。
电导率是指在给定电场作用下，单位长度、单位截面积内溶液中的电流通过的能力，通常用电导率（σ）表示。
电导率与溶液中的离子浓度和离子导度有关。
当溶液中存在可离解的电解质时，它们会被水分子溶解成正负电离子，这些离子在电场的作用下会发生运动，形成电流。
电导率测量通过测量电流强度和施加电压的关系，来计算出溶液的电导率，从而了解溶液中的离子浓度和离子导度。
接下来，我们来介绍一些电导率测量的仪器。
电导率仪是用于测量溶液电导率的仪器，其中最常见的就是电导率计。
电导率计主要由电极和电导率计本体两部分构成。
电极是测量电流通过的部分，通常分为两种类型：用于测量导电性强的溶液的导电性电极和用于测量导电性较弱的溶液的极化电极。
电导率计本体通过测量电流和电压关系来计算电导率。
电导率计可以根据需要选择不同的测量范围和精度，以适应不同的实际应用。
电导率测量在水质监测中具有广泛应用。
首先，电导率可以用来快速评估水体中的盐度。
盐度是指溶液中溶解物质的质量所占溶液总质量的百分比。
水体中的盐度对水质有着重要影响，过高或过低的盐度都会对生态环境和生物体造成不良影响。
通过测量水体的电导率，可以推算出水体中的盐度，从而判断水体是否存在盐度超标问题。
其次，电导率测量还可以评估水体的纯度。
水的纯度是指水中杂质的含量和纯净程度。
纯水的电导率非常低，而水中的杂质会导致电导率的增加。
通过测量水体的电导率，可以了解水体中杂质的含量和纯净程度，并可以据此进行水质净化和处理。
特别是在工业生产和实验室应用中，准确测量水体的纯度对保证产品质量和实验结果具有重要意义。
此外，电导率测量还广泛应用于水处理过程中。
1 实验一 植物细胞膜透性的测定-电导仪法-柯20140402上课-中加园艺-农资-茶加工
三、原理：
《植物生理生化实验B》
逆境(高温或低温)伤害原生质体结构
质膜透性增加 同程度外渗
细胞内含物(无机盐)不 使外液电导度增大(伤害
愈重,外渗愈多,电导度的增加也愈大。)---
故可用电导仪测定外液的电导度增加值 而得知膜的伤害程度。
福建农林大学生命科学学院2011级生物基地班/柯玉琴
福建农林大学生命科学学院2011级生物基地班/柯玉琴
电解质的外渗量有多种方法表示。较常用的是相 对电导率和伤害率。相对电导率 的大小表示细胞膜 受伤害的程度。而伤害率是显示处理过的材料与未 处理过的材料（对照）之间的伤害程度。
福建农林大学生命科学学院2011级生物基地班/柯玉琴
八、注意事项：
1、所用的各处理叶片叶龄要一致。
《植物生理生化实验B》
2、整个过程中，叶片接触的用具必须绝对洁净, 也不要用手接触叶片，以免污染。 3、抽气要使叶片下沉才能与水分进行充分交换。 4、CO2在水中的溶解度较高，测定电导时要防止 高CO2气源和口中呼出CO2进入试管，以免影 响结果的准确性。 5、温度对溶液的电导影响很大，测定必须在相 同温度下测定。
福建农林大学生命科学学院2011级生物基地班/柯玉琴
九、思考题：
《植物生理生化实验B》
1、测定电解质外渗量时，为何要对 材料进行真空渗入？测定过程中为何要进 行振荡？ 2、比较正常和高温(或低温)处理叶 片相对电导度的差异以及高温(或低温)对 桂花叶片的伤害率，并解释其原因。
福建农林大学生命科学学院2011级生物基地班/柯玉琴
电导率仪
、滤纸等。
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Le实际表示在一定时间内，细胞电解质渗出量占总
电解质量的百分比。 因为：L1＝KC1 所以： Le＝KC1/(KC0)×100%＝C1/C0×100% ⑶ L0＝KC0
由⑶式可见，不必计算电导率，而用电导仪直接测定电 导度（C），即可计算出细胞膜的渗透率（Le）。
缓慢放入空气，水即渗入细胞间隙，组织圆片变成透
明，细胞内溶质易于渗出，重复3-5次，取出试管振荡 半小时。
测定：
用DJS—1C型电导仪插入试管，测定外渗液
的电导度。测定后再将试管放入水浴锅沸水 中5min，加热杀死组织，待冷却室温后再测 定提取液的电导度，按⑶式即可计算出细胞 膜的渗透率。
电导仪的使用
果蔬组织提取液的电导率可用下式表示： L＝KC （1） C——电导度，表示提取液的导电能力，可用电导仪 直接测得。另外，电导度（C）是电阻R的倒数， 即： C＝1/R K——电极 常数，它 是测定电导 时两极片 间的距 离 （单位为㎝）与极片的截面A（单位为㎝2）之比， 其单位为(㎝)-1，因此，电导率L的单位则为Ω-1· -1， ㎝ mΩ-1· -1和μΩ-1· -1 ，测定植物细胞膜的电导率多 ㎝ ㎝ 以μΩ-1· -1为单位。（欧姆） ㎝
⑴将电极引线接到仪器相应接线柱上。
⑵接上稳压器，接通电源，打开电源开关。 ⑶将开关拨向“校正”位置，调整调节器， 使指针指到倒立三角处。 ⑷将开关拨向“测定位置”，指针应回到零
点。
⑸拨动选择测量范围的旋钮，使其处于测定范围之内， 如不知测量范围，应先放在最大程位置上，由大到小， 逐级调整。
实验五 电导法测定果蔬细胞膜渗透率
一、实验目的 果蔬在冷藏及冷藏运输中，经常发生冷害或 冻害而影响产品质量。如何及时正确地鉴别冷 害及冻害的发生，是果蔬贮运中需要解决的问 题。
二、实验原理
植物体遭受冷害时，细胞膜的透性发生变化，
细胞中电解质（主要是钾离子）向外渗透速度加 快，细胞膜渗透速度称为渗透率。它可以通过测 定果蔬组织提取液电导率的方法来确定。
⑹将电极用重蒸馏水冲洗干净，并用滤纸吸取附着的
水分，放在需测组织提取液中，等指针稳定后，读指
针所指的数值，此数值即是该提取液的电导度。
⑺按上述方法，测定组织圆片杀死后提取液的电 导度。 ⑻将电极用蒸馏水洗干净，放在水中，如长期不
用，则应将电极冼净晾干，包装放置。
五、记录与计算
处理 电导度（C） 渗透率（Le）
正常
正常 组
煮死
冷害 处理 组 煮死
六 注意事项
整个电导测定需要在恒温条件下进行，因为温度 不仅影响细胞内离子内外渗透速度，而且影响提 取液的电导率。一般温度每增加1 ℃ ，电导率约
增加2%，通常都以25 ℃为标准温度。如果不在
25 ℃下测定，则要求把电导率换算成标准温度 25 ℃的电导率。
电极常数（K），因电极而异。每个电极的电极常
数均应个别测定，测定电极常数（K）值的方法是 利用已知电导率L的标准KCl溶液。用需测定的电 极测定此标准溶液的电导度（C），从⑴式中可求 出它的K值。
果蔬细胞膜渗透率（Le），是测试材料活组织
提取液的电导率）之百分比。
三、材料及用具
黄瓜、青椒（部分进行低温处理） DJS—1C型电导仪、抽气机、切片器、振荡器、 打孔器、滤纸、大试管、烧杯、电炉。
四、操作方法
材料处理：选取果品一份放入室温下贮藏，为正常
组；另一份放入过低温度下使其受冷害，为处理组。 用打孔器及切片器将样品制成厚薄均匀，大小一致的 组织圆片，称取2克（或十个圆片），放入盛有20mL 去离子水的试管中，在真空干燥器中抽气浸泡10min后，