免疫荧光操作步骤及注意事项
免疫荧光操作步骤及注意事项
免疫荧光技术是在免疫学、生物化学和显微镜技术的基础上建立起来的一项技术。
它是根据抗原抗体反应的原理,先将已知的抗原或抗体标记上荧光基团,再用这种荧光抗体(或抗原)作为探针检查细胞或组织内的相应抗原(或抗体)。
利用荧光显微镜可以看见荧光所在的细胞或组织,从而确定抗原或抗体的性质和定位,以及利用定量技术(比如流式细胞仪)测定含量。
紫外光激发荧光物质放射荧光示意图免疫荧光实验的主要步骤包括细胞片制备、固定及通透(或称为透化)、封闭、抗体孵育及荧光检测等。
细胞片制备(通俗的说法是细胞爬片)是免疫荧光实验的第一步,细胞片的质量对实验的成败至关重要,原因很简单,如果发生细胞掉片,一切都无从谈起。
这一步关键的是玻片(Slides or Coverslips)的处理以及细胞的活力,有人根据成功经验总结出许多有益的细节或小窍门,非常值得借鉴。
固定和通透步骤最重要的是根据所研究抗原的性质选择适当的固定方法,合适的固定剂和固定程序对于获得好的实验结果是非常重要的。
免疫荧光中的封闭和抗体孵育与其它方法(如ELISA或Western Blot)中的相同步骤是类似的,最重要的区别在于免疫荧光实验中要用到荧光抗体,因此必须谨记避光操作,此外抗体浓度的选择可能更加关键。
最后需要注意的是,标记好荧光的细胞片应尽早观察,或者用封片剂封片后在4℃或-20℃避光保存,以免因标记蛋白解离或荧光减弱而影响实验结果。
由于操作步骤比较多,同时在分析结果时无法像WB那样可以根据分子量的大小区分非特异性识别,所以要得到一个完美的免疫荧光实验结果,除了需要高质量的抗体,以及对实验条件进行反复优化外,还必须设立严谨的实验对照。
总之,免疫荧光实验从细胞样品处理、固定、封闭、抗体孵育到最后的封片及观察拍照,每步都非常关键,需要严格控制实验流程中每个步骤的质量,才能最终达到你的实验目的。
基本实验步骤:(1)细胞准备。
对单层生长细胞,在传代培养时,将细胞接种到预先放置有处理过的盖玻片的培养皿中,待细胞接近长成单层后取出盖玻片,PBS洗两次;对悬浮生长细胞,取对数生长细胞,用PBS离心洗涤(1000rpm,5min)2次,用细胞离心甩片机制备细胞片或直接制备细胞涂片。
免疫荧光双标操作方法及注意事项
免疫荧光双标操作方法及注意事项以下是免疫荧光双标操作方法及注意事项的详细介绍:方法:1.样品制备:a.细胞:将培养皿中的细胞用磷酸盐缓冲液洗涤,并以适当浓度悬浮于PBS(磷酸盐缓冲液)中。
b.组织:从动物体内取出组织样本,用PBS洗涤并切成适当大小的块。
2.固定:a.细胞:用适当浓度的乙醛在室温下固定细胞。
b.组织:用适当浓度的乙醛固定组织样本,然后在PBS中冲洗。
3.渗透:a.细胞和组织:将样本浸泡在PBS-T(含0.2%的肌凝蛋白酶)中,进行渗透处理,以增强抗体的渗透性。
4.阻断:a.使用几何草酸或明胶作为非特异性蛋白质的抗原来阻止非特异抗体的结合。
5.主抗体孵育:a.加入适当稀释倍数的一抗(特异抗体),孵育样本,可以在室温或4°C条件下进行。
6.洗涤:a. 用PBS-T或TBST(含0.1%的Tween 20)进行多次洗涤,以去除未结合的一抗。
7.次抗体孵育:a.加入适当稀释倍数的二抗(荧光标记的抗体),与一抗结合后,通过固定区域与目标蛋白进行特异结合。
8.洗涤:a.用PBS-T或TBST进行多次洗涤,以去除未结合的二抗。
9.核染色/细胞膜染色:a.加入DNA染色剂(如DAPI)或细胞膜标记(如细胞膜标记染料),用于定位目标蛋白。
10.显微镜观察:a.将样本放置在玻片上,用荧光显微镜观察并拍照或记录图像。
注意事项:1.温度控制:孵育和洗涤过程中,适当控制温度可以提高抗体结合的特异性和效率。
2.抗体稀释倍数:需要根据实验要求和试剂手册推荐的稀释倍数来使用抗体。
3.阻断剂的选择:根据实验要求选择适当的非特异性蛋白质抗原来阻断非特异抗体的结合。
4.试剂保存:将抗体和荧光标记物保存在适当的低温条件下,避免暴露在光和高温下。
5.孵育时间:一抗和二抗的孵育时间需要根据试剂手册推荐的时间来进行。
6.具体细胞/组织类型的处理:不同的细胞或组织在样品制备和处理过程可能需要略微不同的方法,可以参考试剂手册或已发表的方法。
免疫荧光操作步骤及注意事项
免疫荧光操作步骤及注意事项免疫荧光技术是一种常用的免疫学研究方法,可以用于检测和定位抗原或抗体在细胞或组织中的表达和定位。
免疫荧光操作步骤及注意事项如下:步骤1:样品制备1.收集需要检测的细胞或组织样品。
2.如有需要,固定细胞或组织样品以保持其形态和抗原性。
3.如有需要,对组织样品进行切片以便于检测。
步骤2:抗体选择和标记1.根据需要选择合适的一抗和二抗,一抗用于识别目标抗原,二抗用于与一抗结合并携带荧光标记。
2. 选择合适的荧光染料或荧光标记,常用的有荧光素色素(FITC)、罗丹明(Rhodamine)等。
3.根据供应商指南或经典实验文献中的方法,进行抗体标记。
步骤3:荧光标记试剂的制备1.根据推荐的配方或说明书,在标记试剂的缓冲液中加入合适的荧光染料或荧光标记,并进行充分混匀。
2.如有需要,可以在标记试剂中加入其他辅助试剂以增强染色强度或减少非特异性结合。
步骤4:样品孵育1.将样品均匀分布在载玻片或孵育板上,并使其附着。
2.加入一抗和二抗的混合物,并在暗处孵育一段时间,通常在室温下孵育1-2小时或在4°C下孵育过夜。
3.如果需要,可以在抗体孵育结束后进行染色或共孵育其他标记试剂。
步骤5:洗涤1.在孵育结束后,用洗涤缓冲液洗涤样品,以去除未结合的抗体和其他杂质。
2.洗涤次数根据需要,通常进行3-5次洗涤,每次洗涤时间约5分钟。
步骤6:显微镜观察和成像1.将标本置于显微镜上,并使用荧光显微镜或倒置显微镜观察荧光信号。
2.使用合适的荧光滤光片或滤片盒,选择适当的波长来显现荧光染色。
3.根据需要,使用数字相机或图像分析软件进行图像采集和分析。
注意事项:1.仪器和试剂的准备与操作一定要在无菌和干净的条件下进行,以避免外源性污染或感染的发生。
2.使用抗体和试剂前请仔细阅读供应商提供的说明书,遵守推荐的使用和储存条件。
3.一抗和二抗的选取要慎重,确保其与目标抗原或抗体具有高度特异性。
4.荧光标记试剂的制备要注意在无菌和干净的条件下进行,避免污染或降低荧光标记效果。
[教材]免疫荧光操作步骤及注意事项
免疫荧光操作步骤及注意事项一. 直接免疫荧光法测抗原基本原理将荧光素标记在相应的抗体上,直接与相应抗原反应。
其优点是方法简便、特异性高,非特异性荧光染色少,相对使用标记抗体用量偏大。
试剂与仪器磷酸盐缓冲盐水(PBS):0.01mol/L,pH7.4荧光标记的抗体溶液:以 0.01mol/L,pH7.4 的 PBS 进行稀释缓冲甘油:分析纯无荧光的甘油 9 份+ pH9.2 0.2M 碳酸盐缓冲液 1 份配制搪瓷桶三只(内有 0.01mol/L,pH7.4 的 PBS 1500ml)有盖搪瓷盒一只(内铺一层浸湿的纱布垫)荧光显微镜玻片架滤纸37℃温箱等。
实验步骤1. 滴加 0.01mol/L,pH7.4 的PBS于待检标本片上,10min后弃去,使标本保持一定湿度。
2. 滴加适当稀释的荧光标记的抗体溶液,使其完全覆盖标本,置于有盖搪瓷盒内,保温一30min定时间(参考:30min)。
3. 取出玻片,置玻片架上,先用 0.01mol/L,pH7.4 的 PBS 冲洗后,再按顺序过 0.01mol/L,pH7.4 的 PBS 三缸浸泡,每缸 3-5 min,不时振荡。
4. 取出玻片,用滤纸吸去多余水分,但不使标本干燥,加一滴缓冲甘油,以盖玻片覆盖。
5. 立即用荧光显微镜观察。
观察标本的特异性荧光强度,一般可用“+”表示:(-)无荧光;(±)极弱的可疑荧光;(+)荧光较弱,但清楚可见;(++)荧光明亮;(+++--++++)荧光闪亮。
待检标本特异性荧光染色强度达“++”以上,而各种对照显示为(±)或(-),即可判定为阳性。
注意事项1. 对荧光标记的抗体的稀释,要保证抗体的蛋白有一定的浓度,一般稀释在 1:20-100 之间,要自行摸索最佳梯度,建立最好的稀释比例,抗体浓度过低,会导致产生的荧光过弱,影响结果的观察。
2. 染色的温度和时间需要根据各种不同的标本及抗原而变化,染色时间可以从 10 min 到数小时,一般 30 min 已足够。
细胞免疫荧光标记实验步骤
细胞免疫荧光标记实验步骤细胞免疫荧光标记实验是用来观察和分析细胞中的特定分子或结构的一种常用方法。
下面是一些常见的细胞免疫荧光标记实验步骤:1. 细胞培养准备:- 在无菌条件下准备所需培养基和培养器具。
- 将待标记细胞接种在培养皿中,以适当的细胞密度使其在培养基中生长。
2. 固定细胞:- 将细胞培养皿中的培养基倒掉。
- 用生理盐水或磷酸缓冲液轻轻洗涤细胞,以去除未附着的细胞和培养基残留。
- 加入适当的固定液,例如4%的乙醛,固定细胞并封存其内部结构。
3. 渗透化处理:- 使用适当的渗透剂,如0.1%的Triton X-100,以打破细胞膜,使抗体能够渗透到细胞内部。
- 进行渗透化处理的时间应根据实验要求而定。
4. 抗体标记:- 制备适当的抗体和荧光染料稀释液。
- 将抗体稀释液加入到细胞上,使其与目标分子结合。
- 按照实验要求,在适当的温度和时长下孵育细胞,促使抗体与目标分子充分结合。
5. 洗涤和染色:- 用洗涤缓冲液充分洗涤细胞,以去除未结合的抗体和荧光染料。
- 使用适当的荧光染料对细胞进行染色。
如需防褪色,可以添加适当的抑制剂。
6. 显微镜观察和图像捕获:- 用适当的显微镜观察细胞,并捕获荧光图像。
- 根据需要,使用图像处理软件对图像进行分析和量化。
注意事项:- 实验前确保实验室和设备都是清洁的,并遵守实验安全操作规范。
- 涉及有害物质时,戴好个人防护用品,如实验手套和护目镜。
- 每个实验步骤的时间和条件可能因实验要求而异,需根据具体实验方案进行调整。
这些步骤提供了一般的细胞免疫荧光标记实验的大致流程,但具体实验方法还需根据实验目的和材料的特性进行优化和调整。
参考资料:[1] Smith, C. et al. ___. Cold Spring Harb. Protoc. 7, 1052–1055 (2013).[2] Manders, E. M. M. et al. FISH: ___. Cold Spring Harb. Protoc. 2006, db.rot4111 (2006).。
免疫荧光拍照注意事项
免疫荧光拍照注意事项免疫荧光拍照是一种常用的生物学技术,用于检测细胞或组织中特定蛋白质的表达情况。
在进行免疫荧光拍照时,我们需要注意以下几个方面。
选择合适的抗体非常重要。
抗体的选择应根据实验的目的和研究对象来确定。
在选择抗体时,要确保其具有高度的特异性和亲和力,以确保拍照结果的准确性。
此外,抗体的荧光标记也需要选择适当的颜色和强度,以便在拍照时能够清晰地观察到信号。
样品的处理也是十分关键的。
在进行免疫荧光拍照前,需要对样品进行固定、渗透和标记等处理。
固定样品可以保持细胞或组织的形态结构,并防止后续步骤中的蛋白质降解。
渗透处理可以使抗体更好地进入样品内部,提高染色效果。
标记过程中需要注意避免光照和温度的影响,以避免对荧光信号产生干扰。
拍照时,我们需要使用适当的显微镜和相机设备。
显微镜的选择应根据实验需求来确定,确保其具有足够的分辨率和放大倍数。
相机的设置也需要根据实验条件进行调整,包括曝光时间、ISO感光度和荧光滤光片的选择等。
在拍照时,要保持相机的稳定,避免晃动和震动对图像质量产生影响。
为了获得高质量的免疫荧光拍照结果,我们还需要注意以下几点。
首先,要保持光线的均匀性,避免出现亮度不均的情况。
其次,要避免使用过高的荧光强度,以免造成信号饱和。
同时,也要注意避免光线过弱,以免信号弱到难以观察。
最后,要保持显微镜和样品的清洁,避免灰尘和污染对图像质量产生影响。
免疫荧光拍照是一项重要的生物学技术,在进行实验时需要注意抗体的选择、样品的处理和拍照条件的调整。
只有在严格控制这些注意事项的情况下,我们才能获得准确、清晰的免疫荧光图像,为后续的研究工作提供可靠的数据支持。
免疫荧光共沉淀实验的操作步骤及注意事项
免疫荧光共沉淀实验的操作步骤及注意事项The steps of immunofluorescence co-precipitation are as follows:1. Sample preparation: Collect the biological sample of interest and fix it appropriately to preserve the antigenic epitopes.2. Blocking: Treat the sample with a blocking agent, such as BSA or serum, to prevent non-specific binding of antibodies.3. Primary antibody incubation: Incubate the sample with a primary antibody specific to the target antigen. This antibody will bind to the antigen of interest.4. Washing: Wash the sample to remove any unbound primary antibody.5. Secondary antibody incubation: Incubate the sample with a secondary antibody conjugated to a fluorescent dye. This secondary antibody will bind to the primary antibody, allowing for detection and visualization of the target antigen.6. Washing: Wash the sample to remove any unbound secondary antibody.7. Mounting and imaging: Mount the sample on a microscope slide and cover it with a mounting medium. Then, visualize the fluorescence using a fluorescence microscope or other imaging system.中文回答:免疫荧光共沉淀的步骤如下:1. 样本制备:收集所需的生物样本,并适当固定以保留抗原表位。
免疫荧光染色注意事项
免疫荧光染色注意事项
1. 嘿,可别小看了样本的准备呀!这就好比建房子得有牢固的地基,要是样本没处理好,那后面的免疫荧光染色能好吗?比如你准备染个细胞样本,那得把它清洗干净,可别让杂质干扰了染色过程啊!
2. 染色试剂的选择也很关键呐!这就像选衣服,得合适才行。
不同的抗体对应不同的目标,千万别选错啦!要是用错了试剂,不就像穿着睡衣去参加舞会一样别扭吗?
3. 操作过程中要细心再细心哟!你想想,要是粗手粗脚的,把样本碰坏了或者染色不均匀,那多糟糕呀!就像画画一样,得一笔一笔认真来。
4. 注意环境也很重要哇!温度、湿度都可能影响染色效果呢。
这就好像花儿需要适宜的环境才能绽放美丽,要是环境不合适,免疫荧光染色也难搞哦!比如在湿度太大的地方操作,说不定会让试剂出问题呢。
5. 染色后的观察也要用心呀!别马马虎虎就过去了。
你要仔细看看染色的效果好不好,有没有达到你的预期。
不然就像没好好欣赏自己努力完成的作品一样可惜呢!
6. 还有哦,实验记录一定要做好!这可是你的宝藏笔记呀。
以后要是再遇到类似问题,一翻记录就清楚啦!这不就像一个可靠的备忘录,随时能给你提醒嘛。
总之,免疫荧光染色要处处留意,才能有好的结果呀!
我的观点结论:免疫荧光染色的每一个环节都很重要,都需要我们认真对待和仔细操作,这样才能确保获得准确而有价值的结果。
免疫荧光实验报告
免疫荧光实验报告免疫荧光实验报告免疫荧光实验是一种常用的生物学实验方法,用于检测和定位细胞或组织中的特定抗原。
本次实验旨在研究细胞膜上的蛋白质表达情况,并通过荧光显微镜观察和分析实验结果。
实验材料和方法本实验使用的材料包括细胞培养物、PBS缓冲液、甲醛、牛血清白蛋白(BSA)、荧光标记的抗体(一抗和二抗)、荧光显微镜等。
实验方法如下:1. 细胞培养:将细胞培养物均匀地分散在培养皿中,添加适量的培养基,并将其放入恒温培养箱中培养。
2. 固定细胞:在培养皿中加入PBS缓冲液,用甲醛进行固定处理,使细胞膜上的蛋白质保持原有的结构。
3. 蛋白质封闭:将BSA溶液滴加在固定后的细胞上,使其与细胞膜结合,防止非特异性结合。
4. 一抗处理:将荧光标记的一抗滴加在细胞上,使其与目标抗原结合。
一抗可以识别特定的蛋白质或抗原。
5. 二抗处理:将荧光标记的二抗滴加在细胞上,使其与一抗结合。
二抗通常与荧光染料结合,用于增强荧光信号。
6. 荧光显微镜观察:将处理后的细胞放置在荧光显微镜下观察,通过荧光显微镜的特定波长激发荧光标记的抗体,并观察荧光信号的分布和强度。
实验结果和分析在荧光显微镜下观察,我们可以清晰地看到细胞膜上的荧光信号。
这些信号代表了目标蛋白质的表达情况和分布。
通过对不同细胞或组织的荧光信号进行定量和比较分析,我们可以得出以下结论:1. 蛋白质的表达量:荧光信号的强度反映了蛋白质在细胞膜上的表达量。
强荧光信号表示高表达,而弱荧光信号则表示低表达。
通过与对照组进行比较,我们可以判断目标蛋白质的表达水平。
2. 蛋白质的分布:荧光信号的分布情况可以告诉我们蛋白质在细胞膜上的位置。
如果荧光信号集中在细胞膜的特定区域,说明该蛋白质在该区域有高表达。
而分散的荧光信号则表示蛋白质在整个细胞膜上均匀分布。
3. 蛋白质的定位:通过与其他标记物的共定位实验,我们可以确定蛋白质在细胞膜上的具体位置。
例如,我们可以使用荧光标记的抗体与细胞核染色剂共同处理,观察荧光信号与细胞核的重叠情况,从而确定蛋白质是否定位在细胞核。
免疫荧光实验的实验操作步骤及注意事项
免疫荧光1.免疫荧光所用玻片的处理(1) 玻片的规格:圆形18mm×18mm可放入12孔盘;(2) 处理方法:将玻片一片一片的放入1M的盐酸中,65度浸泡过夜,每一遍均要一片一片的清洗,第一遍用流动的自来水冲洗,,其余在盆里清洗,要洗5次以上,再用蒸馏水洗,同样的方法洗5次以上,再用超声,低功率,一小时。
完后再用蒸馏水洗5遍,洗完以后放入95%的乙醇中长期保存。
临用时,在酒精灯上过一下,使玻片上残余的乙醇燃烧,干燥后放入12孔板。
2. 铺板子如细胞难以贴壁(如293T)或需观察细胞骨架的相关指标,需用多聚赖氨酸处理玻片。
多聚赖氨酸1ml,置于37度孵箱30-60min,吸干液体,用DDW洗三遍,吸干液体,紫外照射5-10min,晾干。
实验前一天将含2-3×10^4细胞的单细胞悬液铺种在放有盖玻片的十二孔盘中一个孔中(要保证有单个细胞)。
每个条件做两个复孔,待细胞贴壁12~24h后,用于实验分析;3. 固定用PBS洗涤细胞3 次(注意免疫荧光所用的PBS,均为常温的),吸干,4%的PFA 1ml/ 孔于室温固定10min ;4. 防淬灭吸出PFA ,注意不能使细胞干燥,用PBS 洗3 次,加入1ml 的50mM 氯化铵于室温孵育10min,吸出氯化铵,PBS 洗3 遍,2-3min/次;(此步可省略)5. 通透加入1ml 的0.1%Triton X-100,10min,吸出Triton,用PBS 洗3 次,2-3min/次;6. 封闭加入1ml 3%的BSA(PBS配)封闭,室温1h,可在摇床上晃动,吸出BSA ,用PBS 洗10min;7. 一抗一般稀释比例为1:200-1:500,将抗体(BSA配;双染各加20μl ,单染加40μl )加到封口膜上,将盖玻片从十二孔盘中取出,吸干多余的水分,有细胞的一面接触抗体,室温>1h 或4°C 过夜(效果好),将玻片重新放回到十二孔板中,有细胞的一面朝上,用PBS 洗4 次,10min/次;8.二抗稀释比例一般为1:400(BSA配),操作同一抗,避光室温反应1h, 将玻片重新放回到用锡纸包裹的十二孔盘中,有细胞的一面朝上,PBS 洗3 次,10min/ 次;9. DAPI染细胞核一般浓度为1μg/ml,每个盖玻片需20ul ,操作同一抗,避光于室温反应10min,将玻片重新放回到用锡纸包裹的十二孔盘中,有细胞的一面朝上,PBS 洗3 次,10min/ 次;10.封片把封片剂(mowoil)滴在载玻片上,每片15μl,将有细胞的面朝下,勿有气泡。
活细胞免疫荧光染色实验步骤
活细胞免疫荧光染色实验步骤
活细胞免疫荧光染色实验步骤如下:
1.细胞培养:在无菌条件下,将细胞种植在适宜的培养基中,进行细胞培
养。
2.固定:在适宜的时机,弃去培养基,用冷的PBS清洗两次,然后使用适当
的固定剂(如4%多聚甲醛)进行固定。
3.透膜处理:在固定后的细胞中加入0.1% Triton X-100的PBS进行透膜处
理,以使荧光染料能够进入细胞。
4.抗体孵育:根据实验需求,选择适当的特异性抗体,加入细胞中,室温孵
育一定时间,使抗体与细胞内的目标蛋白结合。
5.洗涤:在抗体孵育后,用PBS洗涤细胞,以去除未结合的抗体和其他杂
质。
6.荧光标记:选择适当的荧光染料标记二抗,加入细胞中,室温孵育一定时
间,使二抗与结合的特异性抗体结合。
7.洗涤:再次用PBS洗涤细胞,以去除未结合的荧光染料和其他杂质。
8.观察:在荧光显微镜下观察染色后的细胞,观察目标蛋白的分布和定位情
况。
请注意,具体的实验步骤可能因不同的实验需求和条件而有所差异。
在进行实验前,建议仔细阅读相关文献和实验指南,以确保实验的准确性和可行性。
免疫荧光技术
免疫荧光双标技术中操作要点和注意事项一、免疫荧光技术中标本制作的基本程序近似于酶免疫组化,不同点如下:1、免疫荧光不需要使用双氧水处理,封闭和一抗孵育与其相同。
2、免疫荧光的二抗使用不同荧光标记的二抗孵育,孵育时间根据抗体的工作浓度确定。
3、二抗孵育之后充分洗片后即可贴片、封片和观察。
4、免疫荧光在封片时常使用专用封片剂或甘油:0.01M PBS (1:1)。
条件许可,建议购买抗淬灭的封片液,使标本可以保存更久。
5、荧光抗体的孵育以及后续处理需要避光。
6、荧光抗体染色假阳性可能会多,需要分别设定阳性和阴性对照。
二、注意事项1、荧光染色后一般在1h内完成观察,或于4℃保存4h,时间过长,可能会使荧光提前衰退。
2、每次试验均需设置以下三种对照:(1)阳性对照:阳性血清+荧光标记物;(2)阴性对照:阴性血清+荧光标记物;(3)荧光标记物对照:PBS+荧光标记物。
三、免疫荧光双标的经验之谈1、选取一抗时,要求来源于两种不同的动物,我用的是来源于家兔和大鼠的抗体,二抗则是不同荧光信号标记的,我用的是donkey anti-rabbit-FITC(绿)和donkey anti-rat-Tex-Red (红)。
2、我的做法是两种一抗同时孵育,然后两种二抗同时孵育。
抗体浓度、孵育时间要自我摸索,我感觉一抗4℃孵育过夜比较好,背景比较清晰。
3、我的阳性对照采用的是阳性组织切片,阴性对照则分别是家兔和大鼠的IgG,荧光标记物对照是PBS+荧光标记物。
4、封闭血清是二抗来源动物的正常血清,我用的是10%正常donkey血清。
5、其余事项同免疫荧光单标操作。
免疫荧光的标本制作的基本程序同DAB显色的免疫组化:不同的是1 免疫荧光不需要使用双氧水处理,封闭和一抗孵育与其它相同2 免疫荧光的二抗使用不同荧光标记的二抗孵育,孵育时间根据抗体的工作浓度确定3 二抗孵育之后充分洗片后即可贴片、封片和观察4、免疫荧光在封片使用专用封片剂或甘油:0.01MPBS (1:1)5 条件许可可以购买防淬灭的试剂加入封片剂中,标本可以保存更久6荧光抗体的孵育以及后续处理需要闭光87荧光抗体染色假阳性可能会多,需要设定阳性和阴性对照注意事项1. 荧光染色后一般在1h内完成观察,或于4℃保存4h,时间过长,会使荧光减弱。
免疫荧光拍照注意事项
免疫荧光拍照注意事项免疫荧光拍照是一种常用的细胞学技术,它可以用来检测细胞内蛋白质的分布和定位。
在进行免疫荧光拍照时,需要注意以下几点:1. 样品制备样品制备是免疫荧光拍照的关键步骤。
在制备样品时,需要注意细胞的生长状态和密度,以及荧光染料的浓度和选择。
如果细胞密度过高,会导致细胞聚集在一起,影响荧光信号的检测。
如果荧光染料浓度过高,会导致荧光信号饱和,影响图像的质量。
因此,在制备样品时需要仔细控制这些因素。
2. 荧光显微镜设置荧光显微镜的设置对于免疫荧光拍照的结果有着至关重要的影响。
在设置荧光显微镜时,需要注意荧光染料的激发波长和发射波长,以及荧光信号的强度和分辨率。
如果荧光染料的激发波长和发射波长不匹配,会导致荧光信号的检测不准确。
如果荧光信号的强度过低,会导致信号噪音比较大,影响图像的质量。
因此,在设置荧光显微镜时需要仔细调整这些参数。
3. 图像处理图像处理是免疫荧光拍照的最后一步,也是非常重要的一步。
在图像处理时,需要注意图像的对比度和亮度,以及图像的分辨率和清晰度。
如果图像的对比度和亮度不合适,会导致图像的细节不清晰,影响结果的判断。
如果图像的分辨率和清晰度不够高,会导致图像的细节不够清晰,影响结果的判断。
因此,在图像处理时需要仔细调整这些参数。
总之,免疫荧光拍照是一种非常重要的细胞学技术,它可以用来检测细胞内蛋白质的分布和定位。
在进行免疫荧光拍照时,需要注意样品制备、荧光显微镜设置和图像处理等方面的问题,以保证结果的准确性和可靠性。
冰冻切片漂片
免疫荧光操作步骤(漂片,冰冻切片)免疫组化步骤:1.将脑片放到,6孔板(或12孔板),按照二抗说明书,加3%双氧水封闭10min(如果是从切片保护液取出,则要用PBS洗一遍);(二抗不同,操作步骤有差别),本实验室使用的二抗试剂盒为中杉金桥超敏二步法试剂盒;2.吸去双氧水,PBS洗两遍,将脑片周围的水用吸水纸或卫生纸擦净,注意不要碰到脑片;3.然后按照一抗说明书,将一抗按比例稀释,加入稀释后的一抗,一般,大鼠脑片一张需50微升一抗稀释液,小鼠脑片为30微升;注意不要让液体流到边上;如果流到边上,要重新加或者加大量,使脑片完全浸入液体;4.然后,4℃,过夜(18h或者24h),不建议使用37℃;5.然后,PBS洗净两遍;剩下步骤见二抗试剂盒说明书。
6.DAB配方为:10mgDAB固体加到20ml0.01MPBS,临用时加100-200微升30%双氧水,注意避光。
7.显色10min,看片子染色深浅情况适当调整显色时间。
一般3分钟显色就比较明显,如果20分钟仍未显色,则看下面的参考。
8.然后PBS洗两遍,转移到载玻片,自然晾干。
干燥天气2-3h,潮湿天气3-4h。
9.脱水:70%酒精3min,95%酒精3min,100%酒精3min,100%酒精2min,二甲苯2min,二甲苯3-5min。
如果片子上盐分较多,在70%酒精前在双蒸水1min。
免疫荧光步骤及注意事项:1,将脑片放到6空板的山羊血清封闭液中,封闭20-40min;(如果是从切片保护液取出,则要用PBS洗一遍)2,吸去山羊血清,PBS洗两遍,将脑片周围的水用吸水纸或卫生纸擦净,注意不要碰到脑片;3,然后按照一抗说明书,将一抗按比例稀释,加入PBS稀释后的一抗,一般,大鼠脑片一张需50微升一抗稀释液,小鼠脑片为30微升;注意不要让液体流到边上;如果流到边上,要重新加或者加大量,使脑片完全浸入液体;4,4℃,过夜(18h或者24h),不建议使用37℃,如果荧光亮度不强,可以延长孵育时间到48或72小时;5,然后,PBS洗净两——三遍,按照二抗说明书稀释的荧光二抗,室温孵育2小时。
免疫荧光间接法注意事项
免疫荧光间接法注意事项1. 引言1.1 什么是免疫荧光间接法免疫荧光间接法是一种常用的免疫学实验技术,在细胞生物学和分子生物学研究中具有重要的应用。
通过利用特异性的抗体与待检测的抗原结合,然后使用荧光标记的二抗来识别和定位目标蛋白或细胞结构,从而实现对目标分子的定量或定位分析。
这种方法具有灵敏度高、特异性好、操作简便等优点,因此被广泛应用于科研领域。
免疫荧光间接法的原理是基于免疫学的理论,利用抗体与抗原特异性结合的原理来实现对待检测分子的检测和定位,其灵敏度和特异性取决于抗体的选择和标记的二抗的性能。
在实验中,需要注意一些关键因素,如样本处理、试剂及仪器选择、实验操作、数据分析和安全措施等。
通过严格遵循这些注意事项,可以确保免疫荧光间接法实验的顺利进行,并保证结果的准确性和可靠性。
【2000字】1.2 为什么需要注意事项在进行免疫荧光间接法实验时,需要特别注意一些事项,这是因为这种方法在生物学研究中扮演着非常重要的角色。
免疫荧光间接法是一种通过标记一种特定抗体来检测样品中特定蛋白质的方法,其原理是通过特异性抗体与特定抗原结合后,再通过荧光标记的二抗来实现信号的放大与检测。
这种方法通常用于检测蛋白质的表达水平、确定细胞的定位以及研究细胞间的相互作用等方面。
在实验过程中,如果没有按照正确的操作步骤进行,就会导致实验结果的不准确或是出现误差。
需要严格遵守一些注意事项,以保证实验的准确性和可靠性。
这些注意事项涉及到样本处理、试剂及仪器、实验操作、数据分析以及安全等方面,每一个环节都至关重要。
免疫荧光间接法的注意事项不仅仅是为了确保实验过程的顺利进行,更重要的是为了保证实验结果的准确性。
只有在遵守各项注意事项的前提下,我们才能得到可靠的实验结果,为科研工作提供有效的支持。
所以,我们必须认真对待免疫荧光间接法中的注意事项,以确保实验的顺利进行和结果的可靠性。
2. 正文2.1 样本处理注意事项在进行免疫荧光间接法实验时,样本处理是非常关键的一步,直接影响到实验结果的准确性和可靠性。
免疫荧光层析注意事项
免疫荧光层析注意事项免疫荧光层析(immunofluorescence assay, IF)是一种常用的实验技术,用于检测、鉴定和定量抗体、抗原或其他生物分子的存在和相互作用。
它结合了抗体特异性、荧光标记和层析技术的优势,可用于检测广泛的生物分子,例如蛋白质、多肽、糖类和核酸等。
然而,这种检测技术涉及到多个步骤,需要仔细执行和控制各种实验条件,以确保准确、可靠的结果,下面我们将介绍免疫荧光层析实验的注意事项。
1. 样品质量和处理在开始免疫荧光层析实验前,需要确保待测样品的质量和纯度。
样品的来源可以是生物样本、细胞培养物或纯化的蛋白质等,需要根据实验需要选择合适的样品,并进行相应的处理和纯化。
例如,可以通过离心、柱层析、凝胶电泳等技术来去除杂质、分离目标分子。
此外,为保持样品稳定性和活性,通常需要加入一些添加剂,例如保护剂、酶抑制剂、牛血清蛋白等。
但是,添加剂也可能影响实验结果,应根据不同实验需求进行优化和控制。
2. 抗体和荧光探针选择在免疫荧光层析实验中,选择合适的抗体和荧光探针是十分关键的。
抗体应具有高亲和力、特异性和稳定性,以免在实验过程中出现误差。
重要的是要记住,多个抗体的特异叉反应可能会导致实验结果的偏差。
荧光探针应有强荧光信号、稳定性和光稳定性,以提高检测灵敏度和精度。
常见的荧光探针包括荧光素、二甲基吡啶等可以挑选出荧光性质相适应的探针。
3. 样品处理和层析步骤在样品处理和层析步骤中,需要注意反应体系的选择和控制。
一般来说,反应体系应包括样品、抗体和荧光探针,并在合适的条件下进行反应。
避免反应体系中存在的污染物和杂质会导致实验结果的偏差。
此外,酸碱度、离子强度和温度等条件也对实验结果产生显著的影响。
因此,必须在样品处理和层析步骤中保持稳定的实验条件,以确保结果的准确性和可靠性。
4. 数据分析和质量控制在免疫荧光层析实验完成后,需要进行数据分析和质量控制。
数据分析可以通过光谱仪或荧光显微镜等工具进行。
免疫荧光拍照注意事项
免疫荧光拍照注意事项一、准备工作1.选择适当的显微镜•显微镜的放大倍数应能满足实验需求。
•最好选择荧光显微镜,因为其可以提供更好的成像效果。
### 2.准备标本•标本应使用相应的免疫荧光染色技术制备。
•标本应完全固定以保持形态结构,并应保持细胞膜完整性。
### 3.选择合适的荧光染料•荧光染料应与待观察的抗原充分亲和,以确保高质量的荧光信号。
•可选用FITC、Rhodamine、Alexa Fluor等常用的荧光染料。
### 4.准备实验材料•需要准备显微镜载片、荧光显微镜滤光片、荧光显微镜台、显微镜镜头清洁剂等实验材料。
### 5.设置实验条件•实验室应保持干净、无尘,以避免灰尘干扰观察结果。
•实验环境应保持恒温、恒湿,以确保实验结果的稳定性。
二、实验操作1.样本处理1.将标本取出并进行适当的清洗,去除表面的杂质。
2.轻轻擦干标本表面,避免对细胞结构造成损伤。
3.用荧光染料与标本进行充分的反应,确保荧光信号充足。
2.样本固定1.使用适当的固定剂固定标本,保持细胞形态和结构的完整性。
2.固定时间应根据实验需求和标本类型而定,一般为10-30分钟。
3.荧光染色1.将标本与荧光染料进行充分的孵育,确保染料与抗原的结合。
2.避免过度染色,以免荧光信号过强而导致图像模糊。
4.洗脱步骤1.使用洗涤缓冲液充分清洗标本,去除未结合的荧光染料。
2.洗脱时间和次数应根据染色剂的特性而定,一般为3-5次。
5.脱水与封片1.用适当浓度的乙醇进行脱水处理,以使细胞内水分逐渐蒸发。
2.在显微镜载片上滴加适量的封片液,并将标本覆盖在封片液上。
3.等待封片液干燥后,用透明胶带封住载片四周,以防止灰尘进入。
三、免疫荧光拍照注意事项1.调整显微镜参数1.首先调整显微镜的放大倍数,以满足观察需求。
2.根据不同荧光染料的激发波长,选择相应的滤光片进行切换。
3.根据样本的亮度和对比度,调整光源的亮度和显微镜的对比度。
2.合理选择观察区域1.在显微镜下选择合适的观察区域,确保标本的荧光信号分布均匀。
免疫荧光总结步骤
免疫荧光总结步骤免疫荧光是一种广泛应用于生物学,医学和免疫学研究中的技术。
它利用免疫学原理和荧光色素来检测和定量分析对特定抗原具有特异反应的抗体。
以下是免疫荧光实验的基本步骤的总结,包括标本处理,抗体染色,显微镜观察和数据分析等。
1.标本处理:免疫荧光实验的第一步是准备样本。
这可能涉及到对细胞、组织、流体或血液样品进行处理,以获得要检测的目标抗原。
处理方法根据实验的目的和样本的性质而不同。
例如,对于细胞和组织样品,可以使用固定剂或冰冻剂来固定或保存目标抗原。
2.抗体染色:染色是免疫荧光实验中的关键步骤。
要进行染色,请使用已知与目标抗原结合的抗体。
这些抗体可以通过购买商业化的荧光标记抗体或自己标记的可溶性抗体。
抗体可以选择单克隆抗体或多克隆抗体,具体取决于实验的需要。
3.抗体交联:为了增强信号的强度和稳定性,必须进行抗体交联。
这意味着将荧光染料链接到抗体上,使其能够与目标抗原结合并发光。
通过选择适当的荧光标记剂和进行适当的染色条件,可以实现高灵敏度和特异性的检测。
4.样品处理:在进行显微镜观察之前,必须对样品进行适当的处理。
这可能包括去除非特异性背景信号,如细胞的内部自动荧光,以及对细胞进行固定或渗透处理,以使抗体能够进入细胞内部。
5.显微镜观察:准备好的样品被放置在显微镜载玻片上,并使用荧光显微镜观察。
荧光显微镜能够通过特定的荧光滤光片选择性地激发荧光标记染料,并观察其发射。
通过调整显微镜的焦距和放大倍数,可以获得目标抗原的高质量图像。
6.图像采集和分析:观察到的图像应该被摄取下来,并使用图像分析软件进行定量分析。
可以测量目标抗原的信号强度、定位和数量,并与对照组进行比较。
一些常用的图像分析软件还具有进一步处理和建模的功能,以获得更详细和精确的数据。
7.数据解释:最后,通过分析和解释数据来得出结论。
抗原的定量结果可以与其他实验结果进行比较,并根据研究的目的得出相关结论。
如果需要,可以使用统计学方法对数据进行进一步分析。
免疫荧光技术操作步骤
免疫荧光技术操作步骤 Company Document number:WUUT-WUUY-WBBGB-BWYTT-1982GT免疫荧光技术操作步骤一. 直接免疫荧光法测抗原基本原理将荧光素标记在相应的抗体上,直接与相应抗原反应。
其优点是方法简便、特异性高,非特异性荧光染色少,相对使用标记抗体用量偏大。
试剂与仪器磷酸盐缓冲盐水(PBS):L,荧光标记的抗体溶液:以 L,的 PBS 进行稀释缓冲甘油:分析纯无荧光的甘油 9 份+ 碳酸盐缓冲液 1 份配制搪瓷桶三只(内有 L,的 PBS 1500ml)有盖搪瓷盒一只(内铺一层浸湿的纱布垫)荧光显微镜玻片架滤纸37℃温箱等。
实验步骤1. 滴加 L,的PBS于待检标本片上,10min后弃去,使标本保持一定湿度。
2. 滴加适当稀释的荧光标记的抗体溶液,使其完全覆盖标本,置于有盖搪瓷盒内,保温一30min定时间(参考:30min)。
3. 取出玻片,置玻片架上,先用 L,的 PBS 冲洗后,再按顺序过 L,的 PBS 三缸浸泡,每缸 3-5 min,不时振荡。
4. 取出玻片,用滤纸吸去多余水分,但不使标本干燥,加一滴缓冲甘油,以盖玻片覆盖。
5. 立即用荧光显微镜观察。
观察标本的特异性荧光强度,一般可用“+”表示:(-)无荧光;(±)极弱的可疑荧光;(+)荧光较弱,但清楚可见;(++)荧光明亮;(+++--++++)荧光闪亮。
待检标本特异性荧光染色强度达“++”以上,而各种对照显示为(±)或(-),即可判定为阳性。
注意事项1. 对荧光标记的抗体的稀释,要保证抗体的蛋白有一定的浓度,一般稀释在 1:20-100 之间,要自行摸索最佳梯度,建立最好的稀释比例,抗体浓度过低,会导致产生的荧光过弱,影响结果的观察。
2. 染色的温度和时间需要根据各种不同的标本及抗原而变化,染色时间可以从 10 min 到数小时,一般 30 min 已足够。
染色温度多采用室温(25℃左右),高于 37℃可加强染色效果,但对不耐热的抗原(如流行性乙型脑炎病毒)可采用 0-2℃的低温,延长染色时间。
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免疫荧光操作步骤及注意事项
免疫荧光技术是在免疫学、生物化学和显微镜技术的基础上建立起来的一项技术。
它是根据抗原抗体反应的原理,先将已知的抗原或抗体标记上荧光基团,再用这种荧光抗体(或抗原)作为探针检查细胞或组织内的相应抗原(或抗体)。
利用荧光显微镜可以看见荧光所在的细胞或组织,从而确定抗原或抗体的性质和定位,以及利用定量技术(比如流式细胞仪)测定含量。
紫外光激发荧光物质放射荧光示意图
免疫荧光实验的主要步骤包括细胞片制备、固定及通透(或称为透化)、封闭、抗体孵育及荧光检测等。
细胞片制备(通俗的说法是细胞爬片)是免疫荧光实验的第一步,细胞片的质量对实验的成败至关重要,原因很简单,如果发生细胞掉片,一切都无从谈起。
这一步关键的是玻片(Slides or Coverslips)的处理以及细胞的活力,有人根据成功经验总结出许多有益的细节或小窍门,非常值得借鉴。
固定和通透步骤最重要的是根据所研究抗原的性质选择适当的固定方法,合适的固定剂和固定程序对于获得好的实验结果是非常重要的。
免疫荧光中的封闭和抗体孵育与其它方法(如ELISA或Western Blot)中的相同步骤是类似的,最重要的区别在于免疫荧光实验中要用到荧光抗体,因此必须谨记避光操作,此外抗体浓度的选择可能更加关键。
最后需要注意的是,标记好荧光的细胞片应尽早观察,或者用封片剂封片后在4?或-20?避光保存,以免因标记蛋白解离或荧光减弱而影响实验结果。
由于操作步骤比较多,同时在分析结果时无法像WB那样可以根据分子量的大小区分非特异性识别,所以要得到一个完美的免疫荧光实验结果,除了需要高质量的抗体,以及对实验条件进行反复优化外,还必须设立严谨的实验对照。
总之,免疫荧光实验从细胞样品处理、固定、封闭、抗体孵育到最后的封片及观察拍照,每步都非常关键,需要严格控制实验流程中每个步骤的质量,才能最终达到你的实验目的。
基本实验步骤:
(1) 细胞准备。
对单层生长细胞,在传代培养时,将细胞接种到预先放置有处理过的盖玻片的培养皿中,待细胞接近长成单层后取出盖玻片,PBS洗两次;对悬浮生长细胞,取对数生长细胞,用PBS离心洗涤(1000rpm,5min)2次,用细胞离心甩片机制备细胞片或直接制备细胞涂片。
(2) 固定。
根据需要选择适当的固定剂固定细胞。
固定完毕后的细胞可置于含叠氮纳的PBS中4?保存3个月。
PBS洗涤3×5 min.
(3) 通透。
使用交联剂(如多聚甲醛)固定后的细胞,一般需要在加入抗体孵育前,对细胞进行通透处理,以保证抗体能够到达抗原部位。
选择通透剂应充分考虑抗原蛋白的性质。
通透的时间一般在5-15min.通透后用PBS洗涤3×5 min.
(4) 封闭。
使用封闭液对细胞进行封闭,时间一般为30min.
(5) 一抗结合。
室温孵育1h或者4?过夜。
PBST漂洗3次,每次冲洗5min.
(6) 二抗结合。
间接免疫荧光需要使用二抗。
室温避光孵育1h.PBST漂洗3次,每次冲洗5min后,再用蒸馏水漂洗一次。
(7) 封片及检测。
滴加封片剂一滴,封片,荧光显微镜检查。
(一)细胞准备
用于免疫荧光实验的细胞可以是直接生长在盖玻片上的贴壁细胞,也可以是经过离心后涂片的悬浮细胞或者是将取自体内的组织细胞悬液离心后涂片。
贴壁良好
的细胞一般在培养时直接放入coverslips让细胞生长在其上即可,尽量避免使用贴壁性能不好的细胞进行免疫荧光实验,以免后续的漂洗操作引起细胞脱落。
少数实验需要使用这类细胞或者悬浮细胞进行免疫荧光观察,建议使用细胞离心甩片机制备细胞片或直接制备细胞涂片。
(二)固定和通透
除研究细胞表面抗原或不稳定抗原可不固定外,一般均应固定。
固定的目的有三:
防止细胞从玻片上脱落; ?除去防碍抗原-抗体结合的类脂; ?使标本易于保存。
标本的固定原则是:
不能损伤细胞内的抗原; ?不能凝集蛋白质; ?应保持细胞和亚细胞结构;
固定后应保持通透性,以保证抗体自由进入所有细胞与亚细胞组分与抗原结合。
常用的固定剂有多种,应根据所研究抗原的性质和所使用的抗体特性选择适当的固定剂。
通常固定方法可以分为两类:有机溶剂和交联剂。
有机溶剂如甲醇和丙酮等可去除类脂并使细胞脱水,同时将细胞结构蛋白沉淀。
交联剂如多聚甲醛通常通过自由氨基酸基团形成分子间桥连,从而产生一种抗原相互连接的网络结构。
交联剂比有机溶剂更易于保持细胞的结构,但因为交联阻碍抗体结合,可能会降低一些细胞组分的抗原性,因此需要增加一个通透步骤以使抗体能够进入标本。
两种固定方法都可能使蛋白抗原变性,因此使用变性蛋白作为抗原生产的抗体在免疫荧光中可能更为有效。
最常用的固定剂有多聚甲醛和甲醇,少数情况也使用乙醇,丙酮及戊二醛等进行固定。
通常,细胞结构抗原、病毒及一些酶类抗原使用丙酮、乙醇及高浓度的甲醛固定可获得较好的结果,而细胞膜相关组分抗原一般以多聚甲醛固定。
细胞器和
细胞颗粒内的抗原一般也用多聚甲醛固定,并需要进行通透以使抗体能达到抗原表位。
通透步骤只在检测细胞内抗原表位的时候才需要,因为抗体需要进入细胞内部去检测蛋白。
但是,如果待检测的是跨膜蛋白,且其抗原表位处于胞质内区域,则同样需要对细胞进行通透。
相反,如果所检测的抗原表位位于膜蛋白的胞外段,则不需要进行通透。
丙酮本身具有通透作用,因此用丙酮作为固定剂时是不需要通透的。
甲醇同样具有通透作用,但有些场合并不适合用甲醇,因为一些表位对甲醇非常敏感。
常用的通透剂是去垢剂,如Triton ,NP-40,以及Tween 20, Saponin, Digitonin 和 Leucoperm等。
Triton和NP-40属于烈性去垢剂,可部分溶解细胞核膜,因此非常适合核抗原检测。
但应该注意的是,如果在高浓度下使用或者作用时间过长,它们将破坏蛋白,从而影响实验结果。
Triton X-100是最常用的通透剂,但是它将破坏细胞膜,因此不适用于细胞膜相关抗原。
后面一组去垢剂要温和得多,它们可以在细胞质膜上形成足够大的孔隙以允许抗体通过,但是不会溶解细胞质膜。
适于胞质抗原或者质膜上靠近胞质一面的抗原,也适于可溶性的核抗原。
一般的操作程序是先固定后通透,但针对有些水不溶性的目的抗原的检测宜先通透再固定,这样做的原因主要是可以通过通透去除许多水溶性的蛋白,从而大大减少了免疫荧光的背景和非特异性信号。
固定后以冷PBS液漂洗,最后以蒸馏水冲洗,防止自发性荧光。
(三)封闭
封闭的目的是为了减少抗体的非特异性结合,最常用的封闭剂为1% BSA, PBS pH 7.5,其他可选择的封闭剂还有 1% gelatin, 1%bovine 或与二抗种属相同的血清(3-10%)等。
(四)抗体孵育
直接免疫荧光法中的一抗和间接免疫荧光法中的二抗都是荧光抗体,因此在这些抗体孵育的时候必须注意避光。
此外,为保证结合质量和防止干燥,抗体孵育应尽量在湿盒中进行。
(五)封片及荧光观察
标记好荧光的细胞片原则上可以直接进行观察,特别是有时候封片不当反而使得前功尽弃。
但在绝大多数情况下,为了保存结果,以便进一步观察、照像、统计分析等,需作封片处理。
常规的方法是采用甘油或中性树脂封片,为了增强封片的效果,往往需要在封片时添加特殊的抗荧光淬灭剂。
(六)标本保存
由于荧光色素和蛋白质分子的稳定性都是相对的,因此随着保存时间的延长,在各种条件影响下,标记蛋白可能变性解离,失去其应有的亮度和特异性。
因此给标本的保存带来一定的困难,所以在标本进行荧光染色之后应立即观察。
由于性能良好的抗荧光淬灭剂的出现,荧光标记的标本可以在低温(4?或-20?)下保存相当长的时间。
在某些情形下,考虑到实验的成本及实验条件,也可以采取权宜的办法,比如固定标本片后低温保存,在需要时再进行荧光标记,即随用随染。