细胞免疫荧光实验步骤
细胞免疫荧光实验步骤
细胞免疫荧光实验步骤
1. 细胞一定要贴在玻片上(最好可以放入24孔板),为后面照像打基础。
细胞密度适中,大约60-75%满片即
可,否则容易脱片。
2. 取出细胞后用4%多聚甲醛固定15分钟,现用现配。
(以下各步骤切毋使玻片干燥)
3. PBS冲洗
4. 0.1%Triton作用20分钟
5. PBS冲洗
6. 10%正常血清封闭10分钟
7. 加入一抗,4度孵育过夜(找个小瓶盖将小玻片支起来,抗体就不容易溢出),还要记住“砸片”,就是抗
体从较高处落到片子上,以分布均匀。
抗体稀释度1:60,较常用!
8. PBS冲洗4次,各5分钟
9加入荧光二抗,室温30分钟。
抗体稀释度1:400,较常用!
10. 同8。
11. 90%甘油封片。
也很关键阿,多封几次才有体会。
12. 避光保存,或到显微镜下观察。
0.1%Triton和山羊血清。
细胞免疫荧光步骤
细胞免疫荧光1、吸干十二孔板中每孔中的培养基,用PBS洗三次,5min/次,注意摇床要缓慢。
2、吸干PBS,每孔加200~300μl固定液,室温固定20分钟。
3、若暂时不做荧光,吸干固定液,不洗,放-30℃保存。
4、需要做时,将十二孔板取出,稍微解冻之后,加适量的PBS,用钩针抠出要PBS洗三次,5min/次。
5、吸干PBS后,每孔加1ml的5‰Triton破膜液,室温下破膜15~20分钟。
6、吸干破膜液,室温下PBS洗3次,5min/次。
7、加BSA封闭液,30~50μl/爬片,室温下封闭30min。
8、吸干BSA封闭液,不洗,加一抗(一抗用PBS稀释比例为:1:50~1:100,浓度视具体情况而定,30~50μl/爬片)4℃过夜。
注意十二孔板保持平整,以免一抗流到爬片外。
9、第二天从4℃冰箱中取出十二孔板,PBST洗3次,3min/次,然后每孔加1:50稀释的FITC,室温下避光孵育1h。
10、PBST洗3次后,DAPI染核6分钟,30μl/爬片。
染核后PBST洗3次,5min/次。
11、载玻片上滴一滴GL YCEROL封片液,即可镜下观察。
说明:①5‰Triton破膜液:例如配20μl的Triton原液用4000μlPBS稀释。
②FTIC现配现用,用PBS稀释,比例为1:50~1:75,具体浓度依据荧光亮度来调整。
耗材:1、十二孔板2块,一块要求无菌(种细胞),另一块洁净(外用漂洗爬片)。
2、外用PBS3、固定液4、细胞爬片5、避光盒6、钩针7、5‰Triton破膜液8、BSA封闭液9、一抗10、PBST11、FITC12、DAPI13、GL YCEROL封片液。
细胞免疫荧光步骤[1](干货分享)
细胞免疫荧光步骤方法一:1.首先需要把细胞养在玻璃片上(悬浮细胞需要用多聚赖氨酸包被过的玻璃片)2.然后在4%PFA里面室温下固定30分钟,PBS洗两次,0.1%TX—100室温下作用1-2分钟使细胞膜通透。
3.接下来进行荧光标记,需要在一个大的容器(面积大,扁平状的,比如大的培养皿)里面,放一张用水打湿的滤纸,以保持湿度。
4.剪一片合适大小的parafilm,在上面滴上稀释在1%BSA/TBS中的一抗(稀释倍数依具体抗体而定),每个玻璃片30ul 足够,把玻璃片盖在上面(细胞面朝下),室温下孵育30分钟,然后在PBS里洗三次。
5.接下来二抗孵育步骤同上。
6.最后,在载玻片加上mounting medium(大约每个玻璃片加10ul),把玻璃片放上去(细胞面朝下),37度30分钟,然后就可以在荧光显微镜下观察了。
7.抗体很重要,不能有非特异性结合。
你可以先做WB检测一下你的抗体,看看有没有杂带。
8.双标的话,可以把两个一抗一起加或者分别标记两次(可以都试一下看看那种方法合适)。
如果一个抗体需要二抗,一个是直接荧光标记的,可以把荧光标记的那个和另外一个的二抗一起加。
方法二:1.选取一抗时要来源于两种不同的动物,我用的是来源于rabbit和rat的抗体,二抗则是不同荧光信号标记的,我用的是donkey anti—rabbit-FITC(绿)和donkey anti-rat-Tex-Red(红)。
2.我的做法是两种一抗同时孵育,然后两种二抗同时孵育.抗体浓度、孵育时间要仔细摸索,我感觉一抗4度孵育过夜比较好,背景比较清晰。
3.我的阳性对照用的是阳性组织切片,阴性对照则分别是家兔和大鼠的IgG,荧光标记物对照是PBS+荧光标记物。
4.封闭血清与二抗来源动物一致,我用的是10%的正常donkey血清.5.其余步骤同一般免疫荧光单标操作.方法三:1.片子的制作:可以做细胞爬片,细胞甩片,还有直接在24well/12well/96well中直接染色2.细胞爬片的制作:直接购买公司的已经处理过的细胞爬片,要是自己制作的话,就用无菌的盖玻片用多聚赖氨酸处理后让细胞自己爬片3.细胞甩片:需要甩片机将细胞悬液均匀甩到玻片上。
细胞免疫荧光的方法
细胞免疫荧光I、步骤:一、固定:PBS 5min×3次振荡洗涤制作好的细胞爬片。
固定液覆盖细胞,RT 静置15min。
PBS 5min×3次振荡洗涤。
二、通透化:通透液覆盖细胞,RT 静置30min。
PBS 5min×3次振荡洗涤。
三、封闭:封闭液覆盖标本表面37℃孵育1h。
四、一抗孵育:一抗以合适浓度稀释PBS,覆盖标本表面。
4℃孵育过夜,第二天37℃复温1h。
PBS 5min×3次振荡洗涤。
五、二抗孵育:FITC标记二抗以合适浓度稀释于PBS,覆盖标本表面。
37℃避光孵育<60min。
PBS 5min×3次避光振荡洗涤。
六、染核:新鲜稀释Hoechst覆盖细胞表面,RT避光静置<10min。
PBS 5min×3次避光振荡洗涤。
七、封片:在干净的载玻片上滴一滴封片剂,将爬片的细胞面扣在封片剂上。
八、镜检,4℃避光保存。
II、注:1、细胞密度要合适,状态较好。
2、从孵育二抗开始要避光(关闭室内日光灯即可)。
3、完成后最好及时镜检,照相;分别用不同波长激发荧光,在Photoshop软件下合成一张图。
III、试剂配制:1、固定液:4%多聚甲醛/PBS:4g多聚甲醛,50~80mlPBS,加热至60℃,持续搅拌至完全溶解,(通常需滴加少许1n NaOH才能使溶液清亮),定容100ml,RT保存。
2、通透液:0.5 %(v/v)TritonX-100/PBS3、封闭液:正常山羊血清稀释于PBS;或商品化封闭液成品。
4、Hoechst:Hoechst33258即可。
5、封片剂:50%(v/v)甘油/PBS。
细胞免疫荧光实验步骤
细胞免疫荧光实验步骤第一步:样本准备1.根据实验需要,选择并培养适当的细胞系或组织样本。
2.将细胞或组织培养在适当的载玻片、孔板或离心管中。
3.使细胞或组织粘附在载玻片等表面上。
第二步:固定和渗透化处理1.使用适当的缓冲液(如甲醛)或有机溶剂(如甲醇)将细胞/组织进行固定处理。
2.在室温或低温下,将缓冲液中的固定液置于载玻片或孔板中,进行固定处理。
3.固定后,用洗涤缓冲液(如PBS)洗涤细胞/组织,去除多余的固定液。
4.在细胞内透明化的同时,保持细胞结构完整。
第三步:抗体染色1.准备合适的一抗和二抗。
一抗是特异性与待检测蛋白结合的抗体,二抗是带有荧光染料的抗体。
2.将一抗稀释到适当的浓度,并加入到载玻片或孔板中,与细胞孵育。
3.将载玻片或孔板中的一抗与细胞孵育30-60分钟,使抗体与待检测的蛋白相结合。
4.在恰当的洗涤缓冲液中洗涤载玻片或孔板,去除多余的一抗。
5.同样的方法,添加二抗到载玻片或孔板中,并孵育30-60分钟,使二抗与一抗结合。
6.再次使用洗涤缓冲液洗涤载玻片或孔板,去除多余的二抗。
第四步:显微镜观察1.利用适当的显微镜镜头,观察载玻片或孔板上的细胞,并选取合适的区域进行观察。
2.使用适当的荧光滤波片,观察细胞中的荧光信号。
3.根据实验设计的需要,进行图像记录和分析。
细胞免疫荧光实验是一种常见的实验技术,可以用于研究细胞中的蛋白质表达和定位,提供有关蛋白质在细胞内的空间分布和功能的信息。
不同的实验目的和需求可能会有一些细微的差异,因此可以根据具体的实验目的进行相应的调整或优化步骤。
细胞免疫荧光步骤
细胞免疫荧光步骤细胞免疫荧光技术是一种能够检测活细胞内特定蛋白质分布的技术,常用于免疫组化分析中。
该技术重点在于使用特定抗体与荧光染料结合,达到明显的荧光信号来检测活细胞内某些蛋白质标识。
以下是细胞免疫荧光技术的主要步骤:1、培养或固定活细胞首先需要对活体细胞培养或固定。
一般选择在培养皿或载玻片上将密集的细胞生长于培养液基质中,可以在日后的荧光显微镜下更加清晰的观察细胞结构及变化。
2、组织切片或钝化在一些研究工作中,如动物实验或组织切片中,可能需要先进行组织切片或尸解固定。
组织切片需要先进行固定处理,如使用琼脂糖进行完整的埋嵌固化,然后进行蜡加热染色处理,裁切成薄片。
或者可以做成冰冻切片,操作上更为简单。
另外,钝化细胞可以使用不优化溶液,其中的表面抗原质已经被消除。
这不仅可以减少非特异性信号,而且可以提高特异性状态的细胞荧光信号。
3、细胞膜的处理在进行免疫染色之前,还需要对细胞膜进行处理。
例如,可以使用牛血清蛋白或非离子界面活性剂来堵塞非特异性的结合位点。
这可以减少非特异性抗体与未知结合物的竞争,提高特异性免疫染色的精度。
4、初级抗体与荧光染料的结合细胞内需要检测的蛋白质必须有一个感兴趣的特定蛋白质抗体。
该抗体允许特定的蛋白质标记。
将特定抗体与荧光染料结合后,允许可见光下的荧光染色信号。
此类荧光染料通常具有比较好的耐用性和较高的量子产率,如荧光色素FITC和荧光色素PE等。
5、清洗和固定将免疫荧光的样品进行严格的洗涤,以去除非特异性的结合物。
洗涤过程可以在紫外光下观察到荧光信号的信噪比。
最终用4%多面固聚醛溶液对洗涤后的样品进行固定处理,以确保样品的可保存性,并且可以长时间保存参考质量以后的荧光染色结果。
6、镜下观察荧光染色的样品在显微镜下观察,可以更加清楚的去判断每个活体细胞的染色情况。
结果分为阳性(显示为荧光亮点或分布)、阴性(显示为黑色或无明显荧光)和疑似阳性(显示为劣质荧光或其他滞留现象)。
细胞免疫荧光步骤
细胞免疫荧光
1. 细胞在冰浴中冷却,然后用台式离心机于4℃以800 g 离心5 min,吸去培养液并以4℃PBS重悬细胞。
2. 离心吸去PBS,以1~2 ml 2%PFA固定液,或2%PFA固定液/0.1% Triton X-100重悬细胞,置冰上固定30 min。
3. 离心、吸去固定液,用15 ml 4℃PBS重悬细胞,放5 min 后,用PBS 再次洗涤细胞。
4. 稀释的第一抗体于4℃用微量离心机以13 500 g 离心2 min,250 μl 抗体足够用于5×106细胞。
5. 离心细胞,吸去PBS,重悬细胞于第一抗体中,置4℃温育1 h。
6. 用4℃PBS稀释细胞和抗体至15 ml。
7. 离心,吸去PBS,以4℃PBS重悬细胞,重复1次。
8. 第二抗体4℃用微量离心机以13 500 g 离心2 min,5×106细胞用250 μl 抗体足够。
9. 吸去PBS,以第二抗体重悬细胞,4℃温育1 h,重复步骤6及步骤7。
10. 除非立即观察细胞,否则在进行细胞浓缩的下一步操作之前应以铝萡包裹离心管并冷藏。
11. 离心细胞并以少量PBS重悬(勿用水),将细胞悬液滴于多聚-L-赖氨酸覆层的载玻片上,加上盖玻片,尽可能马上观察结果。
细胞免疫荧光步骤
要领一:之阳早格格创做1.最先需要把细胞养正在玻璃片上(悬浮细胞需要用多散好氨酸包被过的玻璃片)2.而后正在4%PFA内里室温下牢固30分钟,PBS洗二次,0.1% TX-100室温下效率1-2分钟使细胞膜通透.3.接下去举止荧光标记表记标帜,需要正在一个大的容器(里积大,扁仄状的,比圆大的培植皿)内里,搁一弛用火挨干的滤纸,以脆持干度.4.剪一片符合大小的parafilm,正在上头滴上稀释正在1%BSA/TBS中的一抗(稀释倍数依简曲抗体而定),每个玻璃片30ul脚够,把玻璃片盖正在上头(细胞里往下),室温下孵育30分钟,而后正在PBS里洗三次.5.接下去二抗孵育步调共上.6.末尾,正在载玻片加上mounting medium(约莫每个玻璃片加10ul),把玻璃片搁上去(细胞里往下),37度30分钟,而后便不妨正在荧光隐微镜下瞅察了.7.抗体很要害,不克不迭有非特同性分离.您不妨先搞WB检测一下您的抗体,瞅瞅有不纯戴.8.单目标话,不妨把二个一抗所有加大概者分别标记表记标帜二次(不妨皆试一下瞅瞅那种要领符合).如果一个抗体需要二抗,一个是间接荧光标记表记标帜的,不妨把荧光标记表记标帜的那个战其余一个的二抗所有加.要领二:1.采用一抗时要根源于二种分歧的动物,尔用的是根源于rabbit战rat的抗体,二抗则是分歧荧光旗号标记表记标帜的,尔用的是donkey anti-rabbit-FITC(绿)战donkey anti-rat-Tex-Red(黑).2.尔的搞法是二种一抗共时孵育,而后二种二抗共时孵育.抗体浓度、孵育时间要留神摸索,尔感觉一抗4度孵育过夜比较佳,背景比较浑晰.3.尔的阳性对付照用的是阳性构造切片,阳性对付照则分别是家兔战大鼠的IgG,荧光标记表记标帜物对付照是PBS+荧光标记表记标帜物.4.启关血浑与二抗根源动物普遍,尔用的是10%的仄常donkey血浑.5.其余步调共普遍免疫荧光单标支配.要领三:1.片子的创造:不妨搞细胞爬片,细胞甩片,另有间接正在24well/12well/96well中间接染色2.细胞爬片的创造:间接买买公司的已经处理过的细胞爬片,假如自己创造的话,便用无菌的盖玻片用多散好氨酸处理后让细胞自己爬片3.细胞甩片:需要甩片机将细胞悬液匀称甩到玻片上.4.本去小的well的话,不妨间接拿去染色,出问题的.5.牢固:用PBS洗去培植液,用牢固液(如甲醇战丙酮;4%多散甲醛;酒粗...)牢固细胞.6.内源性过氧化物酶处理,3%过氧化氢处理细胞(选做,二抗连HRP得必搞,其余的如搞免疫荧光染色不必搞).7.通透(胞浆蛋黑战细胞核蛋黑需要搞;细胞膜蛋黑不需要搞),普遍采用Triton-X100去搞细胞通透,浓度战时间需要摸索,普遍是0.1-5%,处理时间为1-30分钟,级各别需要到1-2小时.8.启关:洗去通透液,用二抗共源的血浑约10%的浓度inPBS中启关半小时,也不妨采用5-10%脱脂奶粉.启关中断后千万不要洗,间接上一抗.9.一抗:简曲您念搞什么样的蛋黑,接洽抗体公司如santacruze,Abcam,sigma.....采用简曲的抗体,然而是一抗的稀释浓度也是要摸索,抗体稀释液不妨买买抗体公司现成的,对付于新脚仍旧挺佳的.时间普遍是4度过夜大概者37度1小时.一抗最佳仍旧采用中国抗体公司的抗体.10.洗去一抗.11.上二抗,二抗普遍抗体公司会给您推荐的,您正在其中选上一个便止了,自己选国产的也止,便是选正在哪个动物体内搞的一抗,二抗便选抗那个动物的便止了.二抗的浓度也是需要摸索的,抗体稀释液战一抗相共便止了.二抗的时间普遍是37度半小时.12.底物隐色(选做,二抗连得是酶的必搞,按试剂盒的证明书籍增加便止了,隐色时间大概需要摸索,免得隐色过分引起假阳性;二抗连得是荧光报告的不必搞)13.洗去二抗,染核14.DAPI大概者Hoechst染核15.洗去染核液,加PBS,上镜瞅察.要领四:(1)细胞准备.对付单层死少细胞,正在传代培植时,将细胞接种到预先搁置有处理过的盖玻片的培植皿中,待细胞靠近少成单层后与出盖玻片,PBS洗二次;对付悬浮死少细胞,与对付数死少细胞,用PBS离心洗涤(1000rpm,5min)2次,用细胞离心甩片体造备细胞片大概间接造备细胞涂片.(2)牢固.根据需要采用适合的牢固剂牢固细胞.牢固完成后的细胞可置于含叠氮纳的PBS中4℃保存3个月.PBS洗涤3×5 min.(3)通透.使用接联剂(如多散甲醛)牢固后的细胞,普遍需要正在加进抗体孵育前,对付细胞举止通透处理,以包管抗体不妨到达抗本部位.采用通透剂应充分思量抗本蛋黑的本量.通透的时间普遍正在5-15min.通透后用PBS洗涤3×5 min.(4)启关.使用启关液对付细胞举止启关,时间普遍为30min.(5)一抗分离.室温孵育1h大概者4℃过夜.PBST漂洗3次,屡屡浑洗5min.(6)二抗分离.间接免疫荧光需要使用二抗.室温躲光孵育1h.PBST漂洗3次,屡屡浑洗5min后,再用蒸馏火漂洗一次.(7)启片及检测.滴加启片剂一滴,启片,荧光隐微镜查看.要领五:1.漂洗血浑蛋黑P,37度 PBS 2小时.2.-20度甲醇牢固20分钟后,自然、搞燥 10分钟3.PBS洗洁:3min*34.1%Triton:25min-30min.配成50ultriton+5mlpBS5.PBS洗洁:2*5min6.羊血浑启关:37度,20分钟7.一抗,4度过夜,普遍要大于18小时大概者37度1-2小时8.4度PBS洗洁,3min*5次9.二抗37度小于一小时10.37度PBS洗洁,3*3min11.凉搞启片(启关液)细胞免疫荧光步调:1.细胞爬片;最先是玻片的处理,一般的盖玻片用砂轮划成自己要的大小的小圆块,先用洗衣粉洗搞洁,用火冲静烤搞,而后泡酸过夜,捞酸后流火洗洁,烤搞,置于器皿中下压灭菌,而后再烤箱中约莫8小时烤搞备用.爬片不妨正在培植皿六孔板大概24孔板中皆可,尔采用正在培植皿中爬.一为俭朴经费(培植皿不妨沉复利用)二去感触培植皿心大,支配比较便当.培植皿消毒共上,消毒时记得消二把镊子简曲支配是:用胰酶消化佳细胞,充分吹挨,使之成单细胞悬液(注意:那一面很要害,关系到将去爬出去片子的品量)与出消毒的培植皿,不妨先加少量培植基(以使玻片与培植皿稀切交战),将玻片留神搁进晃搁其中,而后将单细胞悬液一滴一滴的滴到玻片上.末尾盖上培植皿置于37度5%CO2的温箱中培植,根据细胞死少情景,24小时大概更万古间适时与出爬片.爬片置于37度PBS中洗三次,屡屡3到5秒钟,而后正在4%多散甲醛中牢固15分钟,而后再用37度去离子火将甲醛冲搞洁,注意脚法沉柔,要可则掉片很锋利.共时支配历程中注意玻片的正反里,要可则果然是前功尽弃.将搞佳的爬片置于滤纸上晾搞,而后用中性树胶粘正在载玻片上.注意一定要等中性树胶真足搞了之后才搞搞后绝真验,要可则玻片会掉下去的,便又是前功尽弃了搞佳的细胞爬片不妨搁正在-20保存备用,简曲能保存多万古间不太领会,天然尽管早用.2.4%多散甲醛牢固10min(牢固细胞器用预热的70%甲醇+30%丙酮);3.PBS漂洗5min;4.0.5% Triton 脱孔15min(丙酮牢固法不必透化处理);5.PBS漂洗2次,屡屡5min;6.1%BSA启关30min;7.加进1%BSA稀释的一抗,于37℃纯接2h;8.PBS漂洗2次,屡屡5min;9.加进1%BSA稀释的二抗,于37℃纯接1h;10.PBS漂洗2次,屡屡5min;11.5ug/ml DAPI染色2min;12.抗淬灭启片剂启片.抗淬灭启片剂:2.5% DABCO (w/v) 50mM Tris(pH8.0) 90%苦油细胞免疫荧光细胞爬片4%多散甲醛牢固10min(牢固细胞器用预热的70%甲醇+30%丙酮)PBS漂洗5min0.5% Triton 脱孔15min(丙酮牢固法不必透化处理)PBS漂洗2次,屡屡5min1%BSA启关30min加进1%BSA稀释的一抗,于37℃纯接2hPBS漂洗2次,屡屡5min加进1%BSA稀释的二抗,于37℃纯接1hPBS漂洗2次,屡屡5min5ug/ml DAPI染色2min抗淬灭启片剂启片2.5% DABCO (w/v)抗淬灭启片剂 50mM Tris(pH8.0)90%苦油0.25g DABCO9ml苦油0.5ml 1M Tris(Ph8.0) 70℃溶解,-20℃保存0.5ml ddH2O。
细胞免疫荧光 详细步骤
细胞免疫荧光步骤:1、细胞在盖片上生长融合到95%-100%时,从孵箱中取出。
2、用预温的1×PBS洗3次,每次10分钟3、4%的甲醛室温固定20-30分钟4、1×PBS洗3次,每次10分钟5、0.2%Triton X-100透化2-5分钟6、1×PBS洗3次,每次10分钟7、5%BSA室温封闭30分钟8、加一抗(用1%BSA稀释)放在湿盒里,4度过夜9、1×PBS洗3次,每次10分钟10、加二抗(用1%BSA稀释)30分钟,闭光!!!11、1×PBS洗3次,每次10分钟12、95%甘油封片注:4%甲醛,0.2%Triton,5%BSA均用1×PBS稀释zo-1的免疫荧光,步骤如下:1、细胞在盖片上生长融合到95%-100%时,从孵箱中取出。
2、用预温的1×PBS洗3次,每次10分钟3、4%的甲醛室温固定20-30分钟4、1×PBS洗3次,每次10分钟5、0.2%Triton X-100透化2-5分钟6、1×PBS洗3次,每次10分钟7、5%BSA室温封闭30分钟8、加一抗(用1%BSA稀释)放在湿盒里,4度过夜9、1×PBS洗3次,每次10分钟10、加二抗(用1%BSA稀释)30分钟,闭光!!!11、1×PBS洗3次,每次10分钟12、95%甘油封片注:4%甲醛,0.2%Triton,5%BSA均用1×PBS稀释从大鼠分离的T细胞能否直接做细胞免疫荧光细胞爬片的免疫荧光步骤基本一致:1.取出细胞爬片放到35mm或60mm用过的细胞培养皿里,PBS洗三遍。
注意:有的时候作的细胞爬片可能比较小,因此夹取的时候要小心,注意反正面,放在皿里洗比较方便,避免了来回夹取,另外洗的时候加PBS不要太冲,不要细胞冲下来。
洗的时候我都是多加PBS,稍晃一下就倒掉,没有等5分钟或10分钟。
2. 4%冷的多聚甲醛固定20分钟,PBS洗三遍。
细胞免疫荧光实验步骤
细胞免疫荧光实验步骤细胞免疫荧光实验步骤简单实验步骤如下:1.漂洗血清蛋白H7.2-7.4 37度 PBS 2小时.2.-20度甲醇固定20分钟后,自然、干燥 10分钟3.PBS洗净:3min*34.1%Triton: 30min. 配成50ultriton+5mlpBS5.PBS洗净:2*5min6.羊血清封闭:37度,20分钟7.一抗,his1;400 4度过夜,一般要大于18小时或者37度1-2小时8.4度PBS洗净,3min*5次9.二抗37度小于一小时加入5ug/ml的FITC-鬼笔环肽(100ug/ml储存液)室温染色30-60分钟10.37度PBS洗净,3*5minDAPI 1:200凉干封片(封闭液PH8.5)我的实验检测X射线照射鼻炎癌细胞后γH2AX的数量变化预实验步骤:1)辐照结束后,弃去旧培养液,4%多聚甲醛4℃固定15分钟。
2)PBS洗涤,5分钟×3次。
3)体积分数为0.2%Triton-X 100 4℃破膜15分钟。
4)PBS洗涤,5分钟×3次。
5)羊血清工作液室温封闭2小时。
6)PBS洗涤,5分钟×3次。
7)0.21µg/ml一抗(梯度1:500 1:750 1:1000)37℃孵育细胞2小时。
8)PBS洗涤,5分钟×3次。
9)2.1µg/ml 二抗(1:200)37℃避光孵育细胞1小时。
10)PBS洗涤,5分钟×3次。
11)1µg/ml DAPI染色15分钟,使用时避光。
12)PBS 洗涤,5分钟×3次。
13)以及分数90%甘油封片,盖玻片细胞面朝下。
14)荧光显微镜下观察。
活细胞免疫荧光技术-流式细胞仪标本的制备(一)制备活性高的细胞悬液(培养细胞系、外周血单个核细胞、胸腺细胞、脾细胞等均可用于本法)↓用10%FCS RPMI1640调整细胞浓度为5×106~1×107/ml↓取40μl细胞悬液加入预先有特异性McAb(5~50μl)的小玻璃管或塑料离心管,再加50μl 1∶20(用DPBS稀释)灭活正常兔血清↓4℃ 30min用洗涤液洗涤2次,每次加洗涤液2ml左右1000rpm×5min↓弃上清,加入50μl工作浓度的羊抗鼠(或兔抗鼠)荧光标记物,充分振摇↓4℃ 30min用洗涤液洗涤2次,每次加液2ml左右1000rpm×5min↓加适量固定液(如为FCM制备标本,一般加入1ml固定液,如制片后在荧光显微镜下观察,视细胞浓度加入100~500μl固定液)↓FCM检测或制片后荧光显微镜下观察(标本在试管中可保存5~7天)(二)试剂和器材1. 各种特异性单克隆抗体。
免疫荧光染色实验步骤
免疫荧光染色实验步骤1.细胞处理:将需要进行染色的细胞培养于培养皿中,通常使用生理盐水或PBS(磷酸盐缓冲液)洗涤细胞,以去除培养基或其它细胞残留物。
2.固定:使用适当的固定剂,如甲醛或乙醛,固定住细胞。
通常在室温下固定细胞10-30分钟,然后用PBS洗涤。
3.渗透化处理:为了增强抗原与抗体的结合,需要使用渗透化剂如BSA(牛血清白蛋白)或胎牛血清等,封闭其它非特异结合位点。
浓度通常为1-5%的BSA,可以根据实验需要调整。
4.预处理:通过预处理,可以增强抗原的可见性。
预处理方法包括煮沸、酶解或蛋白酶处理等。
具体方法应根据需要选择。
5.抗原特异性溶液:将具有特异性的抗体溶液加入到含有细胞的培养皿中,使其与抗原结合。
抗体通常与标记物如荧光染料共价结合,使得标记的抗原能够被荧光显微镜观察。
6.清洗:将细胞用PBS洗涤,以去除未与抗体结合的游离抗体。
7.荧光显微镜观察:使用荧光显微镜观察染色后细胞中的抗原。
荧光显微镜具有特殊的光学透镜和滤光片,可以选择和激发不同荧光染料的发光。
根据需要,可以选择合适的滤光片来检测多个染色的细胞。
8.影像分析:通过图像处理软件对荧光显微镜下观察到的细胞图像进行分析和量化。
常见的分析内容包括抗原的位置、表达强度和相对数量等。
9.结果解读:根据荧光染色的结果来解读细胞中其中一抗原的表达情况。
可以通过比较实验组和对照组的亮度或表达分子的定量来确定差异。
补充说明:2.正、阴对照:在进行抗原染色前,应设置正、阴对照实验。
正对照是指使用已知表达目标抗原的样本,而阴对照是指使用未表达目标抗原的样本。
通过对照实验可以判断染色结果是否可靠。
3.染色条件优化:染色条件如温度、时间、抗体的浓度等都可能影响染色效果。
因此,需要对染色条件进行优化,以确保得到准确的结果。
4.扩展检测:除了直接染色,还可以使用间接染色方法来增强信号。
通过使用辅助抗体,可以将多个标记物同时进行检测,提供更多的信息。
总结起来,免疫荧光染色实验步骤是:细胞处理→固定→渗透化处理→预处理→抗原特异性溶液→清洗→荧光显微镜观察→影像分析→结果解读。
细胞免疫荧光步骤(仅供参照)
细胞免疫荧光步骤(仅供参照)方法一:1.首先需要把细胞养在玻璃片上(悬浮细胞需要用多聚赖氨酸包被过的玻璃片)2.然后在4%PFA里面室温下固定30分钟,PBS洗两次,0.1% TX-100室温下作用1-2分钟使细胞膜通透。
3.接下来进行荧光标记,需要在一个大的容器(面积大,扁平状的,比如大的培养皿)里面,放一张用水打湿的滤纸,以保持湿度。
4.剪一片合适大小的parafilm,在上面滴上稀释在1%BSA/TBS 中的一抗(稀释倍数依具体抗体而定),每个玻璃片30ul足够,把玻璃片盖在上面(细胞面朝下),室温下孵育30分钟,然后在PBS里洗三次。
5.接下来二抗孵育步骤同上。
6.最后,在载玻片加上mounting medium(大约每个玻璃片加10ul),把玻璃片放上去(细胞面朝下),37度30分钟,然后就可以在荧光显微镜下观察了。
7.抗体很重要,不能有非特异性结合。
你可以先做WB检测一下你的抗体,看看有没有杂带。
8.双标的话,可以把两个一抗一起加或者分别标记两次(可以都试一下看看那种方法合适)。
如果一个抗体需要二抗,一个是直接荧光标记的,可以把荧光标记的那个和另外一个的二抗一起加。
方法二:1.选取一抗时要来源于两种不同的动物,我用的是来源于rabbit 和rat的抗体,二抗则是不同荧光信号标记的,我用的是donkey anti-rabbit-FITC(绿)和donkey anti-rat-Tex-Red(红)。
2.我的做法是两种一抗同时孵育,然后两种二抗同时孵育。
抗体浓度、孵育时间要仔细摸索,我感觉一抗4度孵育过夜比较好,背景比较清晰。
3.我的阳性对照用的是阳性组织切片,阴性对照则分别是家兔和大鼠的IgG,荧光标记物对照是PBS+荧光标记物。
4.封闭血清与二抗来源动物一致,我用的是10%的正常donkey 血清。
5.其余步骤同一般免疫荧光单标操作。
方法三:1.片子的制作:可以做细胞爬片,细胞甩片,还有直接在24well/12well/96well中直接染色2.细胞爬片的制作:直接购买公司的已经处理过的细胞爬片,要是自己制作的话,就用无菌的盖玻片用多聚赖氨酸处理后让细胞自己爬片3.细胞甩片:需要甩片机将细胞悬液均匀甩到玻片上。
细胞免疫荧光染色操作步骤
细胞免疫荧光染色操作步骤免疫荧光染色的主要原理是利用抗原抗体之间的特异性结合来显示目的蛋白,主要包括蛋白和一抗结合,其次是带有荧光基团的二抗识别并结合一抗,荧光显微镜下即可观察到荧光。
实验步骤如下:1.已转染72h的细胞种于共聚焦专用培养皿里,冰PBS洗三遍,每次5分钟。
2. 细胞半干时,覆盖以4%冷的多聚甲醛固定15分钟,避光。
3.吸去多聚甲醛后,用冰PBS洗三遍,每次5分钟。
4. 0.5%Triton X-100覆盖细胞10分钟,冰PBS洗三遍,每次5分钟。
5. 与二抗相同宿主的血清?进口胎牛血清室温封闭30分钟。
6. 配制一抗(SAB2104246-50UG, Sigma, USA):SAB+FBS=1:200。
7.加入一抗覆盖细胞,锡纸包裹4度避光过夜。
次日:8.取出细胞复温至室温约1h。
9.冰1‰Tween洗两次,每次5分钟,于摇床。
冰PBS洗一次,5分钟,于摇床。
10.配制荧光标记二抗:Ab50598 Goat anti-rabbit IgG(H&L) TRITC,用PBS或FBS配制。
浓度1:20011.加入二抗,室温孵育1小时(避光)。
12. 冰1‰Tween洗两次,每次5分钟,于摇床。
冰PBS洗一次,5分钟,于摇床。
13.DAPI染核,每皿1滴,完全覆盖住细胞即可。
14. 冰1‰Tween洗两次,每次5分钟,于摇床。
冰PBS洗一次,5分钟,于摇床。
15.加入防荧光淬灭封片剂,避光。
16.上机confocol建议:1.还是染完之后没有封片前直接照一些,因为有的时候可能封片会出现问题,再想照反而没有了,另外不要拖太长时间,荧光会淬灭的。
2.荧光的片子一定要避光保存,保存的好的话,过一段时间仍然能照出很好的片子。
3.二抗用之前一定离心,不然有的时候有那种沉淀,在片子上就是一个很大的非特异性荧光光点,非常难看。
4.不管采用何种方法,在使用PBS缓冲液漂洗时,如果结果背景较高可以延长漂洗的次数和时间。
免疫荧光实验步骤+经验总结
免疫荧光实验步骤+经验总结
免疫荧光实验是一种用于检测特定蛋白质在细胞或组织中的位置和表达水平的常用技术。
下面我将从步骤和经验总结两个方面来回答你的问题。
免疫荧光实验步骤:
1. 样本制备,首先,收集细胞或组织样本,然后进行固定和切片处理,以确保样本的完整性和稳定性。
2. 抗原修饰,样本经过透化处理后,使用适当的抗原修饰方法,如热处理或酶解,以增强抗体的结合效率。
3. 抗体孵育,将样本与特异性的一抗(一般为多克隆抗体)孵育,使其与目标蛋白结合。
4. 荧光二抗孵育,将荧光标记的二抗孵育,使其与一抗结合形成复合物。
5. 染色与显微镜观察,样本经过洗涤后,使用荧光显微镜观
察,检测目标蛋白在细胞或组织中的分布和表达水平。
免疫荧光实验经验总结:
1. 选择适当的抗体,选择具有高亲和力和特异性的抗体至关重要,可以通过文献综述或试验验证来确定抗体的适用性。
2. 优化实验条件,包括抗原修饰、抗体浓度、孵育时间等实验条件的优化,以确保信号强度和特异性。
3. 合理的阳性和阴性对照,使用已知表达目标蛋白的阳性对照和不表达目标蛋白的阴性对照,以确保实验结果的准确性和可靠性。
4. 注意样本处理,样本处理的温和和一致性对实验结果至关重要,避免因处理不当导致假阳性或假阴性结果。
5. 数据分析和图像获取,在实验结束后,对荧光图像进行合理的获取和分析,避免图像处理过度或不足,确保结果的客观和准确。
以上是免疫荧光实验的步骤和经验总结,希望能够对你有所帮助。
如果还有其他问题,欢迎继续提问。
细胞免疫荧光详细步骤
细胞免疫荧光步骤:1.细胞爬片;首先是玻片的处理,普通的盖玻片用砂轮划成自己要的大小的小方块,先用洗衣粉洗干净,用水冲静烤干,然后泡酸过夜,捞酸后流水洗净,烤干,置于器皿中高压灭菌,然后再烤箱中大约8小时烤干备用。
爬片可以在培养皿六孔板或24孔板中都可,我选择在培养皿中爬。
一为节约经费(培养皿可以重复利用)二来觉得培养皿口大,操作比较方便。
培养皿消毒同上,消毒时记得消两把镊子具体操作是:用胰酶消化好细胞,充分吹打,使之成单细胞悬液(注意:这一点很重要,关系到将来爬出来片子的质量)取出消毒的培养皿,可以先加少量培养基(以使玻片与培养皿紧密接触),将玻片小心放入摆放其中,然后将单细胞悬液一滴一滴的滴到玻片上。
最后盖上培养皿置于37度5%CO2的暖箱中培养,根据细胞生长状况,24小时或更长时间适时取出爬片。
爬片置于37度PBS中洗三次,每次3到5秒钟,然后在4%多聚甲醛中固定15分钟,然后再用37度去离子水将甲醛冲干净,注意手法轻柔,要不然掉片很厉害。
同时操作过程中注意玻片的正反面,要不然真的是前功尽弃。
将做好的爬片置于滤纸上晾干,然后用中性树胶粘在载玻片上。
注意一定要等中性树胶彻底干了之后才能做后续实验,要不然玻片会掉下来的,就又是前功尽弃了做好的细胞爬片可以放在-20保存备用,具体能保存多长时间不太清楚,当然尽量早用。
2.4%多聚甲醛固定10min(固定细胞器用预冷的70%甲醇+30%丙酮);3.PBS漂洗5min;4.0.5% Triton 穿孔15min(丙酮固定法不用透化处理);5.PBS漂洗2次,每次5min;6.1%BSA封闭30min;7.加入1%BSA稀释的一抗,于37℃杂交2h;8.PBS漂洗2次,每次5min;9.加入1%BSA稀释的二抗,于37℃杂交1h;10.PBS漂洗2次,每次5min;11.5ug/ml DAPI染色2min;12.抗淬灭封片剂封片。
抗淬灭封片剂:2.5% DABCO (w/v)50mM Tris(pH8.0)90%甘油细胞免疫荧光细胞爬片4%多聚甲醛固定10min(固定细胞器用预冷的70%甲醇+30%丙酮)PBS漂洗5min0.5% Triton 穿孔15min(丙酮固定法不用透化处理)PBS漂洗2次,每次5min1%BSA封闭30min加入1%BSA稀释的一抗,于37℃杂交2hPBS漂洗2次,每次5min加入1%BSA稀释的二抗,于37℃杂交1hPBS漂洗2次,每次5min5ug/ml DAPI染色2min抗淬灭封片剂封片2.5% DABCO (w/v)抗淬灭封片剂50mM Tris(pH8.0)90%甘油0.25g DABCO9ml甘油0.5ml 1M Tris(Ph8.0) 70℃溶解,-20℃保存0.5ml ddH2O。
细胞免疫荧光实验步骤
细胞爬片免疫荧光实验步骤第一天:1.在培养板中将已爬好细胞的玻片用PBS 浸洗 3 次,每次 3min ;2.用 4% 勺多聚甲醛固定爬片 15min , PBS 浸洗玻片 3 次,每次 3min ;3.0.5%Triton X-100 ( PBS 配制)室温通透 20min (细胞膜上表达的抗原省略此步骤);4.PBS 浸洗玻片 3 次,每次 3 min ,吸水纸吸干 PBS 在玻片上滴加正常山羊血清,室温封闭 30min ;5.吸水纸吸掉封闭液,不洗,每张玻片滴加足够量的稀释好的一抗并放入湿盒,4 C孵育过夜;第二天:6. 加荧光二抗: PBST 浸洗爬片 3 次,每次 3min , 吸水纸吸干爬片上多余液体后滴加稀释好的荧光二抗,湿盒中 20-37 C孵育 1h,PBST 浸洗切片 3 次,每次 3mi n;注意:从加荧光二抗起,后面所有操作步骤都尽量在较暗处进行。
7.复染核:滴加 DAPI 避光孵育 5min , 对标本进行染核, PBST 5min X 4 次洗去多余的 DAPI;8. 用吸水纸吸干爬片上的液体,用含抗荧光淬灭剂的封片液封片,然后在荧光显微镜下观察采集图像。
细胞免疫荧光步骤1.在 24 孔板里加 500 微升培养基,放爬片,接种细胞(做实验以30-50% 汇合度较好。
10000-30000 左右 2.给药处理 24h 。
3.PBS 洗三遍。
4.4 %冷的多聚甲醛固定 15 分钟, PBS 洗三遍,每次 5min ,摇床。
(避光)5.0.5 % Triton X — 100 (PBS 配)破膜15min ,PBS 洗三遍,每次5min ,摇床。
6.5%BSA(牛血清白蛋白, PBS 配)封闭 60 分钟,不用洗。
7.加一抗孵育( 5%BSA 配),4 C摇床过夜。
8.收集一抗, PBS 洗三遍,每次 5min ,摇床。
孵育二抗 Alexa Fluor 488(1:1000 ), 室温 60min (避光)9.回收二抗, PBS 洗三遍,摇床,每次 5min 。
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细胞免疫荧光实验步骤细胞免疫荧光实验步骤简单实验步骤如下:1.漂洗血清蛋白H7.2-7.4 37度 PBS 2小时.2.-20度甲醇固定20分钟后,自然、干燥 10分钟3.PBS洗净:3min*34.1%Triton:25min-30min.配成50ultriton+5mlpBS5.PBS洗净:2*5min6.羊血清封闭:37度,20分钟7.一抗,4度过夜,一般要大于18小时或者37度1-2小时8.4度PBS洗净,3min*5次9.二抗37度小于一小时10.37度PBS洗净,3*5min凉干封片(封闭液PH8.5)活细胞免疫荧光技术-流式细胞仪标本的制备(一)制备活性高的细胞悬液(培养细胞系、外周血单个核细胞、胸腺细胞、脾细胞等均可用于本法)↓用10%FCS RPMI1640调整细胞浓度为5×106~1×107/ml↓取40μl细胞悬液加入预先有特异性McAb(5~50μl)的小玻璃管或塑料离心管,再加50μl 1∶20(用DPBS稀释)灭活正常兔血清↓4℃ 30min用洗涤液洗涤2次,每次加洗涤液2ml左右1000rpm×5min↓弃上清,加入50μl工作浓度的羊抗鼠(或兔抗鼠)荧光标记物,充分振摇↓4℃ 30min用洗涤液洗涤2次,每次加液2ml左右1000rpm×5min↓加适量固定液(如为FCM制备标本,一般加入1ml固定液,如制片后在荧光显微镜下观察,视细胞浓度加入100~500μl固定液)↓FCM检测或制片后荧光显微镜下观察(标本在试管中可保存5~7天)(二)试剂和器材1. 各种特异性单克隆抗体。
2. 荧光标记的羊抗鼠或兔抗鼠第二抗体,灭活正常兔血清。
3. 10% FCS RPMI1640, DPBS、洗涤液、固定液(见附录)。
4. 玻璃管、塑料管、离心机、荧光显微镜等。
(三)注意事项1. 整个操作在4℃下进行,洗涤液中加有比常规防腐剂量高10倍的NaN 3,上述实验条件是防止一抗结合细胞膜抗原后发生交联、脱落。
2. 洗涤要充分,以避免游离抗体封闭二抗与细胞膜上一抗相结合,出现假阴性。
3. 加适量正常兔血清可封闭某些细胞表面免疫球蛋白Fc受体,降低和防止非特异性染色。
4. 细胞活性要好,否则易发生非特异性荧光染色。
附:1. DPBS (×10, 贮存液)NaCl 80gKCl 2g 蒸馏水加至1000mlNa2HPO4 11.5g 临用时用蒸馏水1∶10稀释KH2PO4 2g2. 洗涤液DPBS 900mlFCS 50ml (终浓度5%)4%NaN350ml (终浓度0.2%)3. 固定液DPBS 1000ml葡萄糖20g (终浓度2%)甲醛10mlNaN30.2g (终浓度0.02%)4. 玻璃管、塑料管、离心机、荧光显微镜等。
(三)注意事项1. 整个操作在4℃下进行,洗涤液中加有比常规防腐剂量高10倍的NaN 3,上述实验条件是防止一抗结合细胞膜抗原后发生交联、脱落。
2. 洗涤要充分,以避免游离抗体封闭二抗与细胞膜上一抗相结合,出现假阴性。
3. 加适量正常兔血清可封闭某些细胞表面免疫球蛋白Fc受体,降低和防止非特异性染色。
4. 细胞活性要好,否则易发生非特异性荧光染色。
附:1. D PBS (×10, 贮存液)NaCl 80gKCl 2g 蒸馏水加至1000mlNa2HPO4 11.5g 临用时用蒸馏水1∶10稀释KH2PO4 2g2. 洗涤液DPBS 900mlFCS 50ml (终浓度5%)4%NaN350ml (终浓度0.2%)3. 固定液DPBS 1000ml葡萄糖20g (终浓度2%)甲醛10mlNaN30.2g (终浓度0.02%)严重同意楼上的讲解。
我是做流式细胞分析的间接荧光,图简单加一抗后只洗涤一次,二抗后没有洗涤,就直接加另外一个抗体,结果做了好多次就是呈阴性反应!排除了好久才多洗涤了两次,结果很是令人满意。
我想请问楼上:NaN3哪里有卖?谢谢!我找过,发现它是一种化学工业产品,成桶成桶的卖,而且有剧毒啊!是不是不是同一种东东?我做的是zo-1的免疫荧光,步骤如下:1、细胞在盖片上生长融合到95%-100%时,从孵箱中取出。
2、用预温的1×PBS洗3次,每次10分钟3、4%的甲醛室温固定20-30分钟4、1×PBS洗3次,每次10分钟5、0.2%Triton X-100透化2-5分钟6、1×PBS洗3次,每次10分钟7、5%BSA室温封闭30分钟8、加一抗(用1%BSA稀释)放在湿盒里,4度过夜9、1×PBS洗3次,每次10分钟10、加二抗(用1%BSA稀释)30分钟,闭光11、1×PBS洗3次,每次10分钟12、95%甘油封片注:4%甲醛,0.2%Triton,5%BSA均用1×PBS稀释从大鼠分离的T细胞能否直接做细胞免疫荧光我做的大部分细胞爬片的免疫荧光步骤基本一致:1.取出细胞爬片放到35mm或60mm用过的细胞培养皿里,PBS洗三遍。
注意:有的时候作的细胞爬片可能比较小,因此夹取的时候要小心,注意反正面,放在皿里洗比较方便,避免了来回夹取,另外洗的时候加PBS不要太冲,不要细胞冲下来。
洗的时候我都是多加PBS,稍晃一下就倒掉,没有等5分钟或10分钟。
2. 4%冷的多聚甲醛固定20分钟,PBS洗三遍。
3. 0.2%Triton X-100通透10分钟,PBS洗三遍。
4. 与二抗相同宿主的血清封闭30分钟,PBS洗三遍。
5. 一抗4度湿盒内过夜,也可37度2小时,感觉前者效果好,PBS洗三遍。
6.二抗室温2小时(避光),或者37度1半小时,PBS洗三遍。
7.最好用DAPI染核,然后直接照荧光片。
8.蒸馏水洗掉PBS,甘油封片,指甲油封片子的四周,因为甘油不象树脂那样会干,所以不用指甲油封的话会弄的一塌糊涂。
建议:1.还是染完之后没有封片前直接照一些,因为有的时候可能封片会出现问题,再想照反而没有了,另外不要拖太长时间,荧光会崔灭的。
2.荧光的片子一定要避光保存,保存的好的话,过一段时间仍然能照出很好的片子。
3.二抗用之前一定离心,不然有的时候有那种沉淀,在片子上就是一个很大的非特异性荧光光点,非常难看。
我要做的是occludin,可是效果不是很好,可以用甲醇固定吗,和甲醛比那个合适各位同仁:我现在急于做人乳腺癌细胞MCF-7的免疫荧光实验,目的是测凋亡时,基因bax、bcl-2的蛋白表达变化。
不知道怎么选一抗和二抗试剂盒。
请高手指教。
万分感谢!能发一个邮件更好,再一次感谢!我的E-mail:********************.cn抗淬灭剂可拿来直接封片,20微升即可.之后片子可保留更长时间bu不是原创我是做悬浮细胞THP-1的,是人单核细胞系,主要问题是悬浮细胞在洗涤以及孵育次数多了会越洗越少,请问各位怎么洗法细胞不会变少。
(离心转速比较重要,还有有人说离心后上清不用移液器吸,直接倒比较好,我也试过,可还是越来越少)顶一下我也遇到了同样的问题,不知那位高人能够指点迷津?另悬浮培养的细胞是不是也需要先固定在做后面的处理?我听说悬浮细胞是最后一步才固定,我的实验步骤中太多道听途说啊,没办法,找不到完全相同的文献,很多protocol都是针对贴壁细胞。
不是悬浮细胞,是检测的蛋白在细胞膜上的是最后一步固定MTT分析法以活细胞代谢物还原剂3-(4,5)-dimethylthiahiazo (-z-y1)-3,5-di- phenytetrazoliumromide,MTT噻唑蓝为基础。
MTT为黄色化合物,是一种接受氢离子的染料,可作用于活细胞线粒体中的呼吸链,在琥珀酸脱氢酶和细胞色素C的作用下tetrazolium环开裂,生成蓝色的formazan结晶,formazan结晶的生成量仅与活细胞数目成正比(死细胞中琥珀酸脱氢酶消失,不能将MTT还原)。
还原生成的formazan结晶可在含50%的N,N-二甲基甲酰胺和20%的十二甲基磺酸钠(pH 4.7)的MTT溶解液中溶解,利用酶标仪测定490 nm处的光密度OD值,以反映出活细胞数目。
也可以用DMSO来溶解。
MTT粉末和溶液保存时都需要避光,用铝箔纸包好就可以。
实验的时候我一般关闭超净台上的日光灯来避光,觉得这样比较好。
一、步骤1、接种细胞用含10%胎小牛血清得培养液配成单个细胞悬液,以每孔1000-10000个细胞接种到96孔板,每孔体积200ul。
2、培养细胞同一般培养条件,培养3-5天(可根据试验目的和要求决定培养时间)。
3、呈色培养3-5天后,每孔加MTT溶液(5mg/ml用PBS 配)20ul.继续孵育4小时,终止培养,小心吸弃孔内培养上清液,对于悬浮细胞需要离心后再吸弃孔内培养上清液。
每孔加150ul DMSO,振荡10分钟,使结晶物充分融解。
4、比色选择490nm波长,在酶联免疫监测仪上测定各孔光吸收值,记录结果,以时间为横坐标,吸光值为纵坐标绘制细胞生长曲线。
二、注意事项1、选择适当得细胞接种浓度。
2、避免血清干扰:一般选小于10%的胎牛血清的培养液进行试验。
在呈色后尽量吸尽孔内残余培养液。
3、设空白对照:与试验平行不加细胞只加培养液的空白对照。
其他试验步骤保持一致,最后比色以空白调零。
MTT实验吸光度最后要在0-0.7之间,超出这个范围就不是直线关系,IC50是半抑制率,意思是抑制率50%的时候药物的浓度。
把药品稀释成不同的浓度,然后计算各自的抑制率,以药品的浓度为横坐标,抑制率为纵坐标作图,然后得到50%抑制率时候的药品浓度,就是IC50。
要点:药品2倍稀释,多做梯度,做点线图即可!三、举例各组浓度0.1、0.01、0.001、0.0001、0.00001、0.000001,稀释倍数为10,最大浓度为0.1,抑制率为0.95、0.80、0.65、0.43、0.21,0.06。
代入计算公式:Pm=0.95Pn=0.06P=0.95+0.80+0.65+0.43+0.21+0.06=3.1Xm=lg0.1=-1lgI=lg0.1/0.01=1lgIC50=-1-1*(3.1-(3-0.95-0.06)/4)=-3.6025IC50=0.00025有一个公式可供参考;lgIC50=Xm-I(P-(3-Pm-Pn)/4)Xm:lg 最大剂量I:lg(最大剂量/相临剂量)P:阳性反应率之和Pm:最大阳性反应率Pn:最小阳性反应率抑制率=1-加药组OD值/对照组OD值公式中的最大最小阳性反应率就是最大最小抑制率例:用96孔板培养SMMC-7721肝癌做MTT测细胞活力,应该加多少1640培养基,多少MTT和DMSO合适?根据书上说的加200ul1640,20ulMTT,150ulDMSO 加DMSO之前要尽量去掉培养液,便于DMSO溶解甲臜颗粒进行比色测定一般每孔4000个细胞为宜,既细胞浓度在20000个/ml,MTT加20ul,作用四小时后洗掉上清液,注意不要将甲瓉洗掉,然后每孔加150ul DMSO,在脱色摇床上振荡10分钟,然后测吸光值。