水生产水质微生物检验操作规程
水厂生产用水的卫生操作规范
水厂生产用水的卫生操作规范
2.1水源：使用公共饮用水或自备地下水，符合国家规定的生活饮用水卫生标准GB5749-1985。
2.2供水设施管理：供水设施要完好，一旦损坏，能立即维修好。
技术质量部保存一份各车间的供水网络图，以便对生产供水取样检测。
生产现场的各供水口按顺序编号，避免与新生产用水的交叉污染。
生产车间的所用水笼头经常进行维护，保持良好使用状态。
2.3纠正措施：水处理系统损坏、储水池损坏或受污染的情况下，立即停止生产，判定是何时损坏的，将本时间内生产的产品进行安全评估，以保证食品的。
微生物限度检查操作规程
1 目的规范微生物限度检查操作。
2 适用范围适用于微生物限度的检查。
3 职责质量检定部人员严格按本SOP操作。
4 工作程序4.1 仪器4.1.1 超净工作台4.1.2 微生物检测系统4.2 试剂所用培养基及缓冲液均按《中华人民共和国药典》2005版三部要求进行配制。
玫瑰红钠培养基、营养琼脂培养基4.3 试验方法采用薄膜过滤法4.4试验前准备试验过程中所有用的器材都应进行灭菌后方可使用；超净工作台使用前需进行紫外灭菌30min。
4.5 试验步骤4.5.1 将样品加入薄膜过滤器的滤杯中4.3.1.3 供试品检查时，如果使用了表面活性剂、中和剂或灭活剂，应证明其有效性及对微生物的生长和存活无影响4.3.1.4 除另有规定外，本检查法中细菌培养温度为30～35℃；霉菌、酵母菌培养温度为23～28℃；控制菌培养温度为35～37℃。
4.3.1.5 检验结果以1g、1ml、10g、10ml或10cm2为单位报告。
4.3.2 检验量4.3.2.1 检验量即一次试验所用的供试品量（g、ml或cm2）。
4.3.2.2 除另有规定外，一般供试品的检查量为10g或10ml；化学膜剂为100cm2；贵重药品、微量包装药品的检验量可以酌减。
4.3.3 供试液的制备供试液制备若需用水浴加温时，温度不应超过45℃。
供试液从制备至加入检验用培养基，不得超过1小时。
4.3.3.1液体供试品取供试品10ml，加pH7.0无菌氯化钠－蛋白胨缓冲液至100ml，混匀，作为1：10的供试液。
油剂可加入适量的无菌聚山梨脂80使供试品分散均匀。
水溶性液体制剂也可用混合的供试品原液作为供试液。
4.3.4 细菌、霉菌及酵母菌计数4.3.4.1 检查法薄膜过滤法采用薄膜过滤法，滤膜孔径应不大于0.45um，直径约为50mm。
选择滤膜材质时应保证供试品及其溶剂不影响微生物的充分被截留。
滤器及滤膜使用前应采用适宜的方法灭菌。
使用时，应保证滤膜再过滤前后的完整性。
微生物限度检查操作规程
更改历史微生物限度检查操作规程1.0 目的建立微生物限度检查标准操作规程，规范检验操作，确保检验结果准确2.0 范围适用于本公司采用微生物限度检查法测定的供试品。
3.0 职责质量部负责按本规程的要求执行微生物限度检查操作。
4.0 工作程序4.1 洁净区间的确认微生物计数检查应在环境洁净度10000级下的局部洁净度100级的单向流空气区域内或隔离系统中进行，其全部过程必须严格遵守无菌操作，防止微生物污染，防止污染的措施不得影响供试品（即待检样品、产品）中微生物的检出。
4.2 培养基4.2.1 应使用按中国药典处方及规定的方法制备的培养基。
4.2.2 所用培养基可按中国药典规定的处方及制备方法自行配制，也可使用按中国药典规定的处方生产的脱水培养基进行配制；或购买商品化的预制培养基。
4.2.3 配制后应采用验证合格的灭菌程序灭菌。
制备好的培养基若不即时使用，应置于无菌密闭容器中，在2~25℃、避光的环境下保存。
4.2.4 胰酪大豆胨琼脂培养基或胰酪大豆胨液体培养基用于测定需氧菌总数；沙氏葡萄糖琼脂培养基用于测定霉菌和酵母菌总数。
4.2.5 供试品微生物计数、控制菌检查中所使用的培养基应进行适用性检查。
4.2.6 供试品的微生物计数方法、控制菌检查方法应进行方法适用性试验，以确认所采用的方法适合于该产品的微生物计数或控制菌检查。
4.3 菌种及菌液制备检查所用的菌种及菌液制备见附件 1 微生物计数培养基的适用性检查和附件3 控制菌检查培养基的适用性检查。
稀释剂、冲洗液及其制备的要求见附件1 微生物计数培养基的适用性检查。
4.4 培养基的适用性检查供试品微生物计数、控制菌检查中所使用的培养基应进行适用性检查。
微生物限度检查所用的培养基每批均应进行适用性检查，检查可在供试品检查前或与供试品检查同时进行。
具体要求见附件1 微生物计数培养基的适用性检查和附件3 控制菌检查培养基的适用性检查。
4.5 方法适用性试验供试品的微生物计数方法应进行方法适用性试验，以确认所采用的方法适合于该产品的微生物计数。
微生物限度检验操作规程
2021版微生物限度检验操作规程目的建立微生物限度检查操作规程，标准操作，保证结果的准确性。
范围成品、辅料、内包装袋及纯化水的检验。
内容概述：本检验操作规程依据中国药典2021年版四部?通那么1105 非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法?和?通那么1106 非无菌产品微生物限度检查：控制菌检查法?进行检查。
微生物计数法一、计数方法1．微生物计数法系用于能在有氧条件下生长的嗜温细菌和真菌的计数。
2、计数方法本法包括平皿法、薄膜过滤法。
3、计数培养基适用性检查和供试品计数方法适用性检查供试品微生物计数中所使用的培养基应进行适用性检查。
供试品的微生物计数方法应进行方法适用性试验，以确定采用的方法适合于该产品的微生物计数。
4、菌种及菌液的制备4.1试验用菌株的传代次数不得超过5代〔从菌种保藏中心获得的枯燥菌种为第0袋〕，并采用适宜的菌种保藏技术进行保藏。
计数培养基适用性检查和计数方法适用性试验见表1。
4.2菌液制备按表1规定培养各试验菌株。
取金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、枯草芽孢杆菌、白色念珠菌的新鲜培养物，用PH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液制成适宜浓度的菌悬液；取黑曲霉的新鲜培养物参加3-5ml含0.05%〔ml/ml〕聚山梨酯80的PH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液，将孢子洗脱。
采用适宜的方法吸出孢子悬液至无菌试管中，用含0.05%〔ml/ml〕聚山梨酯80的PH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液制成适宜浓度的黑曲霉孢子悬液。
菌液制备后假设在室温下放置，应在2小时内使用；假设保存在2-8℃，可在24小时内使用。
黑曲霉孢子悬液可保存在2-8℃，在验证过的贮存期内使用。
表1 试验菌液的制备和使用4.3阴性对照为确认试验条件是否符合要求，应进行对照试验，阴性对照试验应无菌生长。
4.4培养基适用性检查按照表1规定，接种不大于100cfu的菌液至胰酪大豆胨液体培养基或胰酪大豆胨琼脂培养基平板或沙氏葡萄糖琼脂培养基平板，置规定的条件下培养。
水质化验操作规程范本
水质化验操作规程范本一、实验室准备工作1. 实验室环境的准备：a. 确保实验室内干燥、温度适宜，并保持良好的通风；b. 确保实验室内无杂物，工作台面清洁整齐；c. 检查实验室设备、仪器的正常运行，并确保其准确性和可靠性。
2. 实验材料和试剂的准备：a. 检查所需的试剂和材料是否充足，并检查其质量和保质期限；b. 准备所需的实验器材，如试管、烧杯、磁力搅拌器等，并确保其清洁干净；c. 检查并准备好所需的标准溶液和控制样品。
二、样品采集和处理1. 样品采集：a. 根据采样点的位置和要求，选择合适的采样容器，并确保其干净无污染；b. 在采样前，清洗双手并戴上手套，以避免样品污染；c. 对于液体样品，用适当的容器进行采集，并尽量避免气泡的产生；d. 对于固体样品，采集时要注意避免杂质的混入，并使用干净的工具进行采集。
2. 样品处理：a. 对于液体样品，搅拌均匀后，取出适量的样品（根据需要的实验量）；b. 对于固体样品，需要进行样品制备和处理，以获得合适的试样；c. 对于大气样品，如气体和颗粒物，需要采用适当的方法对其进行处理和收集。
三、实验操作流程1. 外标法浓度测定法：a. 准备所需的标准溶液和样品溶液；b. 依次将标准溶液和样品溶液分别加入样品容器中；c. 在相同条件下进行测定，如光强、温度等；d. 记录测得的吸光度值，并计算出样品中所含物质的浓度。
2. 比色法浓度测定法：a. 准备所需的标准溶液和样品溶液；b. 将标准溶液和样品溶液分别倒入比色皿中；c. 使用比色计对比色皿中的溶液进行测量；d. 根据测得的吸光度值和标准曲线，计算出样品中所含物质的浓度。
3. 其他测定法（如电位滴定法、电导率测定法等）的操作流程与上述类似，根据具体实验要求进行调整。
四、实验数据记录和分析1. 实验数据记录：a. 在实验操作过程中，随时记录所得数据，并标明所测量的物质和条件；b. 确保记录的数据准确、清晰，并按照规定的格式进行整理。
水质检测操作规程
水质检测操作规程一、引言水质检测是为了评估水的质量，并确定是否符合特定标准的过程。
水质检测的目的是确保水源的安全和卫生，以及保护公众健康。
本操作规程旨在提供水质检测的标准化指导，以确保测试结果的准确性和可靠性。
二、设备准备1.确保所有实验设备、仪器和器材都经过正确的校准和验证。
2.所有设备都需按照说明书正确安装，保持干净并具备正常运行状态。
3.所有试剂都需保存在适当的条件下，并确保在使用前检查其有效期限。
三、采样方法1.根据标准操作程序选择合适的采样点和采样器具。
2.使用适当的容器和方法收集水样，避免污染。
四、样品保存和运输1.样品应尽快送到实验室进行分析，以避免样品中的化学和微生物变质。
2.样品在运输过程中应避免受到极端温度变化和阳光直射。
3.样品在运输过程中应保持封闭，以防止交叉污染。
五、分析方法1.根据所需测试项目选择合适的分析方法，并严格按照标准操作程序进行分析。
2.准确记录所有实验数据、仪器读数和计算结果。
3.如果有需要，可使用对照样进行校准和验证。
六、质量控制1.每个批次的样品需进行质量控制测试，以确保测试的准确性和可靠性。
2.适当的质量控制标准和对照样品应随着每个测试批次一同进行。
3.根据需要，定期验证实验室的仪器和设备。
七、结果解释和报告1.通过比较测试结果与适用法规、标准和指南，对结果进行解释并判断水质是否符合标准。
2.所有测试结果需及时、准确地报告，并进行适当的文档记录和存档。
3.如果测试结果显示水质不合格，应立即采取适当的措施，包括重新采样和再次测试。
八、安全操作1.引用并遵守实验室的安全操作规程，包括个人防护装备和危险化学品的正确使用和储存。
2.在进行任何实验前，确保对可能的危险性和安全风险进行了正确的评估。
九、文件管理1.所有记录和文件都需要按照标准文件管理程序进行存档和维护。
十、设备维护和校准1.定期对实验室设备进行维护，包括清洁、校准和验证。
2.记录每次维护和校准的日期、方法和结果，并按照标准文件管理程序进行存档。
微生物检验流程及操作标准
微生物检验流程及操作标准全文共四篇示例，供读者参考第一篇示例：微生物检验是一种重要的实验室技术，用于检测食品、水质、环境等样品中的微生物存在情况。
微生物检验需要严格遵守一系列操作标准和流程，以确保检验结果的准确性和可靠性。
下面我们将介绍一下微生物检验的流程及操作标准。
一、样品采集1. 样品的采集需要采用无菌工具，并保持样品在采集过程中不受到外界环境的污染。
2. 样品的采集过程应尽量避免接触到任何可能引入外源微生物的物质，比如皮肤、空气等。
3. 采集的样品应标明正确的标识信息，包括样品名称、采集地点、采集日期等。
二、样品处理1. 样品收到实验室后，需要尽快进行处理，避免样品内的微生物增殖或死亡。
2. 样品处理过程需要保持在无菌条件下进行，使用无菌工具进行操作。
3. 样品处理过程中需要按照检验要求进行适当的稀释，以确保实验得出准确的结果。
三、培养基准备1. 培养基的制备需要按照标准的配方和步骤进行，以确保培养基的质量符合要求。
2. 制备培养基时需要严格遵守无菌操作规范，避免细菌、真菌等外源微生物的污染。
3. 制备好的培养基需要在适当的条件下保存，确保培养基的稳定性和有效性。
四、接种操作1. 在进行微生物检验之前，需要准备好无菌的接种环、移液器等工具。
2. 采取适当的方法将处理好的样品接种到培养基上，避免接种时引入外源微生物。
3. 接种操作需要在无菌条件下进行，避免培养物受到任何污染。
五、培养与观察1. 接种后的培养基需要置于适当的温度和湿度条件下进行培养，促使样品中的微生物生长。
2. 定期观察培养基上的生长情况，记录生长的数量和形态，用于后续的分析和鉴定。
3. 在观察过程中需要注意反复进行无菌操作，避免细菌、真菌等外源微生物的污染。
六、鉴定与结果解读1. 当样品中的微生物生长到一定程度时，需要进行鉴定和分析，确定其种属和数量。
2. 鉴定过程需要参考相关的鉴定手册和标准，进行适当的试验和测试。
3. 根据鉴定结果进行结果解读，判断样品中微生物的种类和数量是否符合标准要求。
微生物检验操作规程
微生物检验操作规程为规范检验程序，提高检验结果的准确性，要求微生物检验员严格按照本操作规程检验。
样品准备：准确称取10g±1g样品，剪碎后加入到200ml已灭菌的生理盐水中，充分混匀，静置10分钟，待生理盐水样液自然沉降后取上清液作菌落计数，液体样品可用原液直接做样液。
如果被检样品含有大量吸水树脂材料而导致不能吸出足够样液时，稀释量可按每次50ml递增，直至能吸出足够测试用样液。
在计算细菌菌落总数与真菌菌落总数时相应调整稀释度。
1.细菌菌落总数检测方法1）仪器：培养箱35℃±2℃、天平（精确至0.1g）、医用剪刀、吸球、移液管1ml、250ml锥形瓶、平皿、酒精灯。
2）试液：0.9%生理盐水、营养琼脂。
3）步骤：用已灭菌的1ml移液管移取1ml样液，均匀地洒在平皿上，共接种5个平皿。
然后用冷却至45℃左右熔化的营养琼脂培养基15～20ml倒入每个平皿内混合均匀。
待琼脂凝固后翻转平皿做好记号并置35℃±2℃培养48h后，计算平板上的菌落数。
结果计算：X1=A*K/5式中：X1→细菌菌落总数，cfu/g或cfu/mlA→5块营养琼脂培养基平板上的细菌菌落总数K→稀释度4）如果样品菌落总数超过标准的规定，应进行复检。
将留存的复检样品依前法复测2次，2次结果平均值都达到标准规定，则判定被检样品合格，其中有任何1次结果平均值超过标准规定，则判定被检样品不合格。
2.真菌菌落总数检测方法1）仪器：培养箱25℃±2℃、天平（精确至0.1g）、医用剪刀、吸球、移液管1ml、250ml锥形瓶、平皿、酒精灯。
2）试液：0.9%生理盐水、玫瑰红钠琼脂。
3）步骤：用已灭菌的1ml移液管移取1ml样液，均匀地洒在平皿上，共接种5个平皿。
然后用冷却至45℃左右熔化的玫瑰红钠琼脂培养基15～20ml 倒入每个平皿内混合均匀。
待琼脂凝固后翻转平皿做好记号并置25℃±2℃培养7天，分别于3、5、7天观察,计算平板上的菌落数，如果发现菌落蔓延，以前一次的菌落计数为准。
污水处理工程水质检验流程及技术规范
污水处理工程水质检验流程及技术规范污水处理工程是将废水经过一系列物理、化学和生物处理工艺，将其中的污染物去除或转化为无害物质，达到国家和地方排放标准，并回收利用水资源的工程。
为了确保污水处理工程的运行效果和水质达标，需要进行水质检验，本文将详细介绍污水处理工程水质检验流程及技术规范。
一、水质检验流程1.样品采集：按照国家相关规定和工程设计要求，选择代表性的采样点位，确保采样点覆盖全面。
样品一般采用间断采样或连续自动采样器采集，采取封闭容器进行保存。
2.样品处理：采样后，需要对样品进行处理，如过滤除去杂质、盐酸处理除去氨氮等。
3.水质分析：样品处理后，进行一系列水质分析，对有害物质、营养物质、重金属等进行定量或定性分析。
4.结果评估：根据国家和地方相关排放标准，将测试结果与限值进行对比评估，判断是否达标。
5.结果处理：根据测试结果，适时调整污水处理工程运行参数，进行后续处理工艺的改进优化。
二、技术规范1.采样与保存：采样选取不同时间段和流量的样品进行分析；样品保存要求避免氧化、生物降解和温度变化。
2.理化参数：测定化学需氧量（COD）、生化需氧量（BOD）、总氮（TN）、总磷（TP）等水质指标；测定pH值、水温等理化参数。
3.微生物指标：测定大肠菌群、致病菌等微生物指标；常规采用表面培养法、PCR检测等方法。
4.重金属检测：测定重金属元素、汞、铅、铬、镉、铜等；采用化学分析法或仪器分析法。
5.有机物检测：测定挥发性有机物（VOCs）、多环芳烃（PAHs）、有机氯农药、有机磷农药等；常用气相色谱、液相色谱等分析方法。
6.特殊指标：针对污水处理工程的特殊情况，如水中表面活性剂、油脂等的含量，进行特殊指标的检测分析。
7.仪器设备：使用先进的仪器设备，如质谱仪、气相色谱仪、液相色谱仪等，确保分析结果准确可靠。
8.数据处理：对检测结果进行统计分析和图表展示，以便于对水质变化趋势和异常情况进行监控和分析。
污水处理工程的水质检验流程及技术规范是确保污水处理工程运行效果和水质达标的关键环节。
微生物限度检验操作规程
1目的规范微生物限度检验操作，确保检验结果准确、可靠。
2依据《中国药典》2015版。
3范围本标准适用于微生物限度检验。
4责任中心化验室负责人：对本规程的实施负责。
中心化验室检验人员：严格按照本规程执行检验操作。
5程序5.1执行标准：《中国药典》2015版。
5.2抽样：照《取样标准操作规程》进行。
6内容6.1需氧菌总数、霉菌和酵母菌总数计数计数方法包括平皿法、薄膜过滤法和最可能数法（MPN法）。
检查时，按已验证的计数方法进行供试品的需氧菌总数、霉菌和酵母菌总数的测定。
6.1.1设备、仪器及用具6.1.1.1设备微生物限度检测室、净化工作台、生化培养箱（30〜35£）、生化培养箱（20〜25£）、电热恒温水浴锅、烘箱、脉动真空灭菌柜、紫外灯等。
6.1.1.2仪器及器皿显微镜、托盘天平、锥形瓶、研钵、培养皿、量筒、试管及塞、移液枪及吸头、薄膜过滤器等。
6.1.1.3用具大、小橡皮乳头，洁净工作服、口罩、医用手套、接种环、酒精灯、酒精棉球、灭菌剪刀、灭菌镊子、不锈钢药匙、试管架、火柴、记号笔、薄膜过滤膜等。
6.1.2试液6.1.2.1消毒液A.0.1%新洁尔灭溶液B.75%乙醇溶液6.1.2.2稀释液、试剂及配制A. pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液：取磷酸二氢钾3.56g、无水磷酸氢二钠5.77g、氯化钠4.3g、蛋白胨1.0g,加纯化水1000ml，微温溶解，滤清，分装，1210C灭菌15分钟。
B.聚山梨酯80C.无菌十四烷酸异丙酯D. pH6.8无菌磷酸盐缓冲液6.1.3培养基胰酪大豆胨琼脂培养基、胰酪大豆胨液体培养基、沙氏葡萄糖琼脂培养基6.1.4操作方法6.1.4.1试验前准备6.1.4.1.1将供试品及所有已灭菌的平皿、锥形瓶、试管、移液枪吸头（1ml、10ml）、量筒、稀释液、培养基等移至传递窗内。
每次试验所用物品必须事先计划，准备足够用量，避免操作中出入操作间。
6.1.4.1.2开启微生物检测室紫外灯和空调净化系统，并使其工作不低于30min。
微生物检测操作相关要求
问题
二、 滤膜法
• 总大肠菌群滤膜法 是指用孔径为0.45μm的
微孔滤膜过滤水样，将滤膜贴在品红亚硫酸钠 培养基上37℃培养24h，能形成特征性菌落的 需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性菌以检测水中总 大肠菌群的方法。 • 滤膜法适用于饮用水、水源水，特别是低浊度 水样中总大肠菌群的测定。本法适用于较大量 水样测定，如原水量少可加无菌水稀释。本方 法简单快速，较为精密。
• 产酸判断：紫色培养液变成黄色 • 产气判断：发酵导管内有小气泡，如轻 轻打动试管有气泡沿管壁上浮，应考虑 可能有气体产生，需进一步试验。 • 挑选菌落特征：黑紫色、有光泽或无光 泽菌落；红色、粉红色菌落。 • 抑制剂：胆盐、煌绿、十二烷基硫酸钠。
思考
1、单倍乳糖蛋白胨培养液和双倍、三倍乳糖蛋 白胨培养液有什么不同？如何配制？在什么情 况下加单倍乳糖蛋白胨培养液，什么情况下加 三倍乳糖蛋白胨培养液？ 2、生活饮用水、地表水如何稀释？ 3、如何确定接种量？ 4、初步发酵后如何判断阳性管？阴性管？ 5、今天做什么 ？怎么做？
3. 证实试验
• 经上述染色镜检为革兰氏阴性无芽胞杆 菌，同时接种乳糖蛋白胨培养液，与 36℃±1℃培养24h±2h,有产酸产气者， 即证实有总大肠菌群存在。 结果报告 • 经镜检、生化反应证实为大肠杆菌阳性 的管数，查MPN检索表，报告每100ml 水样中的大肠菌群最可能数（MPN）值。
总大肠菌群测定的关键步骤
水源水
• 以无菌操作方法吸取1ml充分混匀的 水样，注入盛有9ml灭菌生理盐水的 试管中，混匀成1：10稀释液。 • 吸取1：10的稀释液1ml注入盛有9ml 灭菌生理盐水的试管中，混匀成1： 100稀释液。按同法制成不同浓度稀 释液。 • 用灭菌吸管吸取未稀释的水样和2个 ～3个适宜稀释度的水样1ml，分别 注入灭菌平皿内。以下操作同生活 饮用水的检验步骤。
水质检验操作规程
水质检验操作规程1 目的有效控制生产、实验室用水制定本规范。
2 范围质量部3 内容本规程依据《中华人民共和国药典》2010版、GB5750-2006《生活饮用水标准检验法》、GB5749—2006《生活饮用水卫生标准》制定,适用于纯化水的检验。
纯化水的检验参照〈中华人民共和国药典〉2010版中的纯化水检验法。
纯化水应为用蒸馏法、离子交换法、反渗透法或其他适宜的方法制得的水，不含任何附加剂。
1、标准控制指标检验项目标准要求1、性状无色透明、无臭、无味2、酸碱度加指示剂应不显红或蓝3、氯化物不得发生浑浊4、硫酸盐不得发生浑浊5、钙盐不得发生浑浊6、硝酸盐≤0。
000006％7、亚硝酸盐≤0。
000002%8、氨≤0。
00003%9、二氧化碳一小时内不得发生浑浊10、易氧化物应不褪色11、不挥发物≤1mg/100ml12、重金属≤0.00005％2、检验2。
1性状将水置入干净透明的玻璃瓶中，静置后仔细观察，应为无色澄明液体,无臭、无味。
2。
2酸碱度取待测水样10ml于比色管中，加0。
05％甲基红指示剂2滴，不得显红色；另取10ml 待测水样于比色管中，加0.05%溴麝香草酚蓝指示剂5滴，不得显蓝色。
2。
3氯化物、硫酸盐、钙盐取本样品分装于三支100ml比色管中，每支比色管各加50ml。
第一管中用滴管和1ml 吸管分别加浓硝酸5滴与0.1mol/l硝酸银试液1ml，第二管中用2ml吸管加5%氯化钡试液2ml,第三管中用2ml吸管加入3。
5%草酸铵试液2 ml ，均不得发生浑浊。
2.4硝酸盐2.4。
1标准硝酸盐溶液的制备：在万分之一天平上称取分析纯硝酸钾0.163克，加水溶解并稀释至100ml，摇匀，用1ml吸管精密量取1ml，加水稀释至1000ml，此标准溶液每ml相当于1μg的NO3。
用1ml吸管精密量取0.3 ml该标准液于100 ml比色管中，加无硝酸盐的水4.7ml，于冰浴中冷却,用1ml吸管加10%氯化钾0.4ml和0。
水质检测操作规程
水质检测操作规程
1.目的：
明确化验室检验员的水质检测工作内容与工作方法，提高检验员的工作效率与质量。
2.范围：
本指导书适用于化验室检验员水质检测。
3.职责：
化验室检验员：负责生产用水检验。
4.作业内容：
4.1.取样准备
4.1.1容器洗涤
将容器用洗涤剂洗涤，并用自来水彻底冲洗干净，再用纯水冲洗2次。
4.1.2容器灭菌
灭菌后的容器及其工具在洁净环境进行保存；如当天不立即使用，灭菌后的容器应于下次使用前再次灭菌。
4.1.3取样过程中，应避免容器及水样受到再次污染。
取样时，必须带口罩，带手套，取样后，应立即密封盛样容器，以免污染水样。
4.1.4取样
4.1.4.1将出水口轮流作为受测点。
将出水口外围消毒，并让水流5分钟。
4.1.4.2分别用500ml的透明玻璃烧杯取样约500ml作外观、气味、pH值的检测，用已消毒好的三角瓶到样约200ml作细菌总数检测。
4.2 微生物检测
检查供检水样及容器，应严格保持原有的密闭包装状态。
容器不应有破裂，在检验前不得启开，以防止再污染。
4.3外观及理化检测
4.3.1气味
取100mL水样，置于250mL锥形瓶中，振摇后从瓶口嗅水的气味，用适当的文字描述。
4.3.2 色泽
取200mL水样，置于250mL洁净透明的锥形瓶中，目视观察水样的颜色、透明度及浑浊度，目视观察水样是否有沉淀物。
4.3.3 pH值
采用精密酸度计直接测出水样的PH值。
1。
水中微生物测定——水样的采集及保存
实验十六水中微生物测定——水样的采集及保存一、实训目的：掌握水样的采集方法和保存方法二、实验原理：饮用水是否合乎标准，通常通过水中细菌总数和大肠菌群数来确定。
在水质卫生学检验中，细菌菌落总数(CFU)是指1mL水样在营养琼脂培养基上、有氧条件下37°C培养48h后，所得1mL水样所含菌落的总数(GB/T5750.12--2006)。
我国现行生活饮用水卫生标准(GB/T5749-2006)规定:1mL自来水中细菌菌落总数不得超过100个。
三、实验步骤（一）水样的采集方法1.采样容器：玻璃材质和聚乙烯塑料瓶，容器及塞子、盖子应经灭菌温度并且在此温度下不释放或产生出任何能抑制生物活性、灭活或促进生物生长的化学物质。
2.采样容器的洗涤和灭菌：（1）容器洗涤：将容器用自来水和洗涤剂洗涤，并且用自来水彻底冲洗后用质量分数为10％的盐酸溶液浸泡过夜，然后依次用自来水，蒸馏水洗净。
（2）容器灭菌：热力灭菌。
干热灭菌要求160℃，2h；高压蒸汽灭菌121℃，15min。
高压蒸汽灭菌后的容器如不立即使用，应于60℃将瓶内冷凝水烘干，灭菌后的容器应在2周内使用。
3.取水样：（1）同一水源，同一时间采集几类检测指标的水样时，应先采集供微生物学指标检测的水样，采样时应直接采集，不得用水样涮洗已灭菌的采样瓶，并避免手指和其他物品对瓶口的污染。
（2）取自来水样：先用酒精灯将水龙头烧灼3min灭菌，然后把水龙头完全打开，放水5-10min后用无菌瓶取样，速送实验室检测。
（3）取含有余氯的水样：应在水样瓶未消毒前按每125ml水样加入0.1mg硫代硫酸钠除去残余余氯。
（4）取河水、湖水等水样：用特制的采样瓶和采样器，一般在距水面10-15cm的水层打开瓶塞取样，盖上盖子后再从水中取出，速送实验室检测。
（二）水样保存各种水质的水样，从采集到分析这段时间里，由于物理的、化学的、生物的作用会发生不同程度的变化，这些变化使得进行分析时的样品已不再是采样时的样品，为了使这种变化降低到最小的程度，必须在采样时对样品加以保护。
纯化水微生物限度检查标准操作规程
纯化水微生物限度检查标准操作规程1目的规定纯化水微生物限度检查操作。
2适用范围本文件适用于纯化水微生物限度检查操作。
3职责微生物限度检查操作人员。
4微生物限度检查方法纯化水采用薄膜过滤法进行检查。
滤膜孔径应不大于0.45μm，直径一般为50mm。
5内容5.1设备洁净工作台、恒温培养箱（30~35℃）、恒温水浴锅、电热干燥箱（250~300℃）、高压蒸汽灭菌器（使用时要进行灭菌效果检查并应定期请有关部门检定）。
5.2仪器及器皿5.2.1薄膜过滤器、放大镜、显微镜。
5.2.2玻璃器皿：蓝盖试剂瓶（250ml）、培养皿（90mm）、吸管（l0ml分度0.l）、载玻片、盖玻片。
玻璃器皿用前应洗涤干净无残留抗菌物质。
吸管口上端距0.5cm处塞入约2cm的适宜疏松棉花，置吸管桶内或用牛皮纸包好。
玻璃器皿，均于高压蒸汽121℃灭菌30min，烘干备用。
5.3用具5.3.1大、小橡皮胶头（放于干净带盖的容器中，并应定期用75%乙醇溶液浸泡）。
纯化水微生物限度检查标准操作规程5.3.2无菌衣、帽、口罩、手套（洗净后配套，用牛皮纸包严）灭菌，备用。
也可用一次性无菌衣、帽、口罩、手套。
5.3.3酒精灯、酒精棉球、灭菌剪刀、灭菌镊子、试管架、无菌滤杯、无菌滤膜、打火机、记号笔、接种环、灭菌抹布等。
5.4消毒液5.4.10.1%苯扎溴铵溶液（供洗手、擦拭操作台面用）。
5.4.275%乙醇溶液5.4.33~5%来苏尔溶液5.5培养基R2A琼脂培养基5.5.1灭菌前后应对培养基的pH值进行校验。
5.5.2配制的培养基不应有沉淀，如有沉淀，应于溶化后趁热过滤灭菌后使用。
5.5.3培养基的分装量不得超过容器的2/3，以免灭菌时溢出。
包装时，塞子必须塞紧以免松动或脱落造成染菌。
5.5.4培养基配制后应在2h内灭菌，避免细菌繁殖。
5.5.5灭菌后的培养基在2~8℃处保存备用，放置时间不能过长，以免水分散失及染菌。
已熔化的培养基应一次用完，开启后不宜再用。
实验室生活饮用水微生物检测SOP(一)2024
实验室生活饮用水微生物检测SOP（一）引言概述：实验室生活饮用水微生物检测SOP是为了确保实验室饮用水的安全与卫生，检测水中的微生物污染情况，并采取相应的措施进行处理。
本文将详细介绍实验室生活饮用水微生物检测的步骤和要点。
正文：一、实验室生活饮用水微生物检测前的准备工作1. 准备所需的检测设备和试剂，包括培养基、平板计数器、显微镜等。
2. 清洗和消毒检测设备，确保设备的洁净和无菌。
3. 确保实验室供水管道的安全和干净，避免水源污染。
二、水样采集和处理1. 选择合适的水样采集器具，如钢质水样容器或无菌采样瓶。
2. 在采集水样前进行必要的洗手和佩戴消毒手套，以避免污染水样。
3. 选取水源合适的位置采集水样，尽量避免水源受到外界污染。
4. 采集水样后立即送至实验室进行处理，避免样品在运输过程中受到污染。
三、水样预处理1. 对水样进行过滤，以去除大颗粒物质和悬浮物。
2. 进行稀释处理，确保微生物数量在检测范围内。
3. 根据需要进行pH调节或添加抑菌剂，以保证后续检测的准确性和可靠性。
四、微生物检测方法1. 采用培养法进行微生物定量分析，包括总菌落计数和特定菌群检测。
2. 根据需求选择合适的培养基和培养条件，如温度、pH值等。
3. 加入样品到培养基中，进行平板计数或液体培养，并进行恰当的菌落计数。
4. 进行特定菌群的检测，如大肠杆菌、沙门氏菌等，采用相应的培养基和检测方法。
5. 采用显微镜观察法进行微生物形态和特征的检测，确保检测结果的准确性。
五、结果分析和处理1. 根据检测结果进行微生物数量统计和分析，比较检测结果与相关标准的符合情况。
2. 如发现微生物污染超过标准限值，及时采取措施进行处理和消毒。
3. 记录检测结果，并保留相关文件和数据，以备日后参考和审查。
总结：实验室生活饮用水微生物检测SOP的实施可以确保实验室饮用水的卫生安全。
通过准备工作、水样采集和处理、微生物检测方法的选择和结果分析处理，可有效地监测和控制实验室饮用水中的微生物污染，保障实验室工作人员的身体健康和实验室环境的卫生安全。
001.纯化水微生物限度检查法操作规程
SOP/QC(09)001－01纯化水微生物限度检查法操作规程文件类别：标准操作规程审批表江西中兴汉方药业有限公司1.目的规范纯化水微生物检查的操作方法，确保药品检验的准确性。
2.适用范围适用于纯化水的微生物检查。
3.责任人QC：负责按此规程执行。
4.程序4.1 概述本规程是以营养琼脂培养基作为细菌培养基，采用平板表面涂布法测定纯化水菌落总数。
其操作环境和全部过程应严格遵守无菌操作，防止微生物污染。
4.2 仪器与用具电热恒温培养箱（30～35℃）霉菌培养箱（23～28℃）超净工作台无菌双碟移液管0.45μm微孔滤膜过滤器抽滤泵4.3 试药与试剂营养琼脂培养基玫瑰红钠培养基pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液4.4 纯化水的取样4.4.1取样时，须先开启取样阀门，用工艺用水本身冲冼取样口，约冲水1升以上，而后以无菌具塞10ml试管取水，取水量约为试管高度的1/2～2/3。
4.4.2检测周期：见“工艺用水监测规程（SMP-ZL-016-）”规定。
4.4.3取样后的水样应立即检验。
4.5 检查方法量取9ml纯化水置盛有90ml pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液的锥形瓶中混匀，作为供试液；量取供试液10 ml供试液置安装好的无菌抽滤装置，进行过滤。
用pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液冲洗滤膜，冲洗后取出滤膜，菌面朝上贴于营养琼脂培养基平板及玫瑰红钠培养基平板上，盖好，倒置培养皿，分别将营养琼脂培养基平板及玫瑰红钠培养基平板置电热恒温培养箱（30～35℃）及霉菌培养箱（23～28℃）中培养。
细菌培养3天后进行菌落计数，霉菌培养5天后进行菌落计数。
计数结果即为每ml水中含细菌及霉菌的菌落数。
4.6 结果判定每1ml纯化水中的细菌数及霉菌数之和应不得过100个。
5 相关记录6变更履历表。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
水生产水质微生物检验操作规程
制定人：
审核人：
批准人：
水生产水质微生物检验操作规程
1目的
1.1为验证杀菌设施的杀菌效果
1.2保证生产水未污染
1.3适用于本公司水产品生产过程的质量管理
2职责
质检中心负责生产过程的微生物检验工作；
3 操作过程
3.1取样点：
灭菌后,正常生产用的储水罐
3.2无菌取样：
用已高温灭菌的取样瓶，在储水罐的取样口进行无菌取样，以确保水质未受取样过程污染。
3.3检测频次：
水生产时为持续过滤过程，水体循环快，规定做定期的取样检测，成品每批次做微生物检测。
正常生产时，微生物检测频次为1次/周。
3.4检验方法
3.4.1.菌落总数：
以无菌操作方法，用灭菌吸管吸取1ml（水样分为1:10与1:100两种稀释度）充分混匀的水样，注入灭菌培养皿中，倾注约15ml已融化冰冷却到45℃左右的营养琼脂培养基，并立即旋摇平皿，使水样与培养基充分混匀，每次试验时应做一平行试验，同时做空白对照。
待冷却凝固后，翻转平皿，使底面朝上，置于36℃±1℃的培养箱内培养48h，进行菌落计数，计算1ml水样中的菌落总数CFU/ml。
3.4.2.大肠菌群：
液体样品：以无菌吸管吸取25ml样品。
置盛有225ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶（瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠）中，充分混匀，制成1:10的样品均液。
样品均液PH应在6.5-7.5之间，必要时分别用1mol/l氢氧化钠或1mol/l 盐酸调节。
用1ml无菌吸管或微量移液器吸取1:10样品均液1ml，沿管壁缓慢注入9ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管或换用1支1ml无菌吸管反复吹打，使其混合均匀，制成1:100的样品均液。
根据对样品污染状况的估计，按上述操作，依次制成10倍递增系列样品均液。
每递增稀释1次，换用1支1ml无菌吸管或吸头。
从制备样品均液至样品接种完毕，全过程不得超过15min。
初发酵实验：每个样品，选择3个适宜的连续稀释度的样品均液（液体样品可以选择原液），每个稀释接种3管月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤，每管接种1ml（如接种量超过1ml，则用双料LST肉汤），36℃±1℃培养24h±2h，
观察倒管内是否有气泡产生，如未产生则继续培养至48h±2h。
记录24h和48h 内产气的LST肉汤管数。
未产气者为大肠菌群阴性，产气者则进行复发酵实验。
复发酵实验：用接种环从48h±2h内发酵产气的LST肉汤管中分别取培养物1环，移种于黄绿乳糖胆盐（BGLB）肉汤管中，36℃±1℃培养48±2h，观察产气情况。
产气者，记为大肠菌群阳性管。
根据大肠菌群阳性管数，检索MPN表，报告每毫升样品中大肠菌群的MPN值。
记录大肠菌群的MPN值、
4.参数标准（按本企业标准Q/SYJ0002S执行）
菌落总数（CFU∕mL）≤50
大肠菌群（ MPN/100mL）≤3。