家兔失血性休克的扩..
家兔失血性休克 (三稿)
（二）休克模型复制与微循环观察
➢从颈动脉缓慢放血（注射器内预先放5ml肝素） 至动脉血压下降到 40mmHg
➢观察不同程度失血状态下微 循环血管和血流的改变
（三）抢救
➢将原血从颈总静脉缓慢回输， 在8～10分钟内输注完毕。
➢若无完全恢复，继续输注生理 盐水10-20ml，于输注后
注意事项
➢麻醉 （ 观察麻醉程度，不要随意追加麻药） ➢手术创伤程度的控制 （手术技巧-钝性分离）
3.掌握家兔麻醉、颈动/静脉插管技术,肠系 膜微循环观察与放血的方法(考试内容)
5.了解输尿管插管技术(考试内容) 、肾动脉 夹闭方法
实验材料
•动物：成年家兔
•器材：PcLab计算机信号采集处理系统、 压力换能器、手术器械、动脉/静脉导管、 注射器、显微镜、微循环观察槽
•药品与试剂：20％乌拉坦、0.2％肝素生理盐水、 生理盐水
➢导管、换能器内须充满肝素； ➢插管（牢固、稳妥、畅通：远心端结扎， 近心端夹闭）
➢插管后,描记血压前必须进行零点设置 (调零)； ➢腹部切口大小、肠袢选择（左侧、胃下、回肠）；
➢肠管保温保湿，勿过分牵拉； ➢显微镜和观察盒属共用设备,用后清理干净放回原位置；
➢家兔尸体、垃圾的处理； ➢手术器械清洗、清点，签名后方可离开。
休克模型复制
观测血压、脉 压差、微循环
变化 回输血液抢救
观察记录指标
观察指标
•一般指标：皮肤粘膜颜色、一般状态 •血流动力学指标：血压、心率、脉压差
•呼吸系统观察指标：呼吸频率、深度、节律
•肠系膜微循环观察指标：血管口径、血液流速、 毛细血管开放、细胞流态、 白细胞黏附
三、方法与步骤
1.家兔捉拿、称重
Hale Waihona Puke 2.家兔麻醉➢ 20%乌拉坦5ml/kg，
家兔失血性休克及其抢救
家兔失血性休克及其抢救【实验目的】复试家兔失血性休克。
观察家兔在失血性休克时的表现及微循环变化，探讨失血性休克的发生机制。
了解失血性休克的抢救。
【摘要】目的：学习失血性休克动物模型的复制方法、观察休克各期的主要临床变化、了解其机制及通过药物及输液治疗，了解各种治疗的不同效果。
方法：家兔麻醉后，分离并进行左、右两侧颈总动脉、右侧颈外静脉插管，正确连接管道并用肝素冲洗，进入电脑程序，描记正常血压，快速放血，使血压维持60mmHg，血压稳定后，夹闭右颈总动脉，记录并观察血压变化。
待血压稳定后，再放血，使血压降至40mmHg并维持，在维持期间的20min内记录并观察血压变化。
结果：放血后，家兔血压下降，大量放血后血压明显下降，输血后血压急剧上升，并最终达到正常水平。
结论：家兔少量放血后，家兔血压下降，但通过代偿反应可以在短时间内使血压回复到正常时或稍低。
家兔大量放血后，家兔血压明显下降。
输血、输液后血压急剧上升，并最终达到正常水平。
【关键词】失血性休克、抢救、输液治疗。
【实验对象】健康家兔一只【实验器材和药品】1、仪器：家兔手术台、常用手术器械一套、止血钳、眼科剪、支架、动脉插管、动脉夹、血压换能器、RM6240生物信号采集处理系统、照明灯、纱布、丝线、注射器。
2、试剂：生理盐水、氨基甲酸乙酯、肝素。
【实验步骤】1、家兔称重，用5ml/kg氨基甲酸乙酯麻醉家兔，固定家兔，剪去颈部被毛，切开颈部皮肤5~7cm，钝性分离颈部肌肉、暴露颈部气管和血管神经鞘。
用玻璃分针分离2~3cm长两侧颈总动脉，各穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。
用玻璃分针分离2~3cm长右侧颈外静脉，穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。
2、右侧颈总动脉进行动脉插管：将分离出的右侧颈总动脉远心端用线结扎，近心端用动脉夹将动脉夹住。
在远心端结扎线下方用眼科剪在动脉上作一小“V”形切口，将动脉插管朝心脏方向插入动脉，确认插入动脉后用备用线将血管与插管结扎固定，再将结扎线固定于插管上，防止插管从血管中滑脱。
家兔失血性休克实验报告【失血性休克及其抢救实验报告】
2.2 仪器调试：在菜单中选择“血压〞。
下方做一“V〞型斜口，向心脏方向插入静脉插管，用已穿好的丝线扎紧
双击一通道，调整增益、采样参数，使基线归零，令图形位于屏幕 ZY， 插入管尖嘴部分稍后处，并以远心端丝线将插管缚紧固定，结扎血管同时
便于观看。
防插管从插入处滑出，静脉插管胜利后马上开始输液，并将输液速度调慢。
1.2 试验试剂：氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水；
13.5ml 由兔耳缘静脉内缓慢注入，留意观看家兔的反应。待麻醉后，将
1.3 试验仪器：铁架 XX，婴儿秤，RM6240 生物信号采集系统，手术剪 家兔仰卧固定于兔手术 XX 上，先后固定四肢及兔头。(以上步骤在做血压
1 把，止血钳，镊子，兔手术 XX，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血 调整因素时已完成)
Key Word】Shock; Uncontrolled hemorrhgic shock; microcircultion 1 试验材料
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1.1 对象：家兔 2.7kg；
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2.3 麻醉固定：家兔称重后，将氨基甲酸乙酯以 5ml/kg 的体重剂量
microcomputer biologicl signl cquisition nd processing system, the fourth chpter niml experiment technology. 3. The result: few bloodletting, blood pressure nd breth of decline, but in short time, rebounded, lrge bloodletting (45 ml), blood pressure, respirtory decline fster nd self recover cpcity reduction; Intrvenous tretment mesures for blood trnsfusion, roughly returned to norml. 4. Conclusion: smll mount of blood, the bodys own compenstory function cn mke blood pressure returned to norml; Excessive blood loss, the body will hppen decompensted role; The blood trnsfusion intrvenous tretment, blood pressure my restore bsic norml.
家兔失血性休克实验报告
家兔失血性休克实验报告
实验目的：探究家兔在不同程度失血后对身体机能的影响及失血性休克的发生。
实验方法：
1.实验前令家兔空腹24小时，保证实验数据更精确。
2.选取5只体重相近的家兔，用异丙酚进行麻醉。
3.将家兔置于手术台上，消毒操作后进行切腹手术，暴露血管并取血。
4.分别在实验一组、实验二组、实验三组、对照组分别取血量为7ml，10ml，13ml，无取血。
5.在实验过程中检查家兔的心率及呼吸率，并记录实验数据，如血压，心率等数据。
实验结果：
1.实验一组：取血量为7ml，失血后家兔发生心悸、呼吸急促、体温下降等症状，心率加快，下降到了96次/分钟。
4.对照组：没有进行任何失血处理，心率平稳，保持在120次/分钟左右。
1.家兔失血量较小时，如7ml左右，心率下降速度较慢，家兔出现的症状也较轻。
2.家兔失血量逐渐增大，呼吸急促、体温下降等症状逐渐显露，瞳孔扩大等症状也逐渐出现。
3.家兔失血量逐渐增大，心脏功能逐渐下降，最终可能导致失血性休克，甚至死亡。
4.对照组的数据表明，不进行失血处理的家兔的心率较稳定，生命体征不受任何影响。
通过本次实验，我们深刻认识到失血性休克对家兔身体的严重危害。
家兔失血量逐渐增大，症状逐渐加重，甚至会导致失血性休克、甚至死亡。
因此，在医学实践中，我们应当全面掌握失血性休克的处理方法，以保障患者生命安全。
不同比例的高渗盐溶液对失血性家兔的抢救效果
试剂： 20%乌拉坦溶液、0.2%肝素生理盐水、生理盐水、任氏液、 7.5% NaCl、9% NaCl。
研究内容与方法
预 家兔捉 • 成年家兔，性别不拘，体重：2.0~3.0kg，数量20只 实 拿称重
研究现状
高渗盐溶液作为失血性休克病人的早期复苏，是安全有 效的治疗措施，具有起效快、输液少、少毒副作用等优 点，适用于急诊室急救，尤其是院前缺液时的急救【5】
用于救治失血性休克的高渗盐溶液，有3%NaCI溶液、 6%NaCI溶液、7%NaC1溶液、7.5%NaC1溶液和 7.5%NaCl-6%Dextron70溶液(高渗盐水右旋糖配液)等
研究内容与方法
观 察
一般指标
• 皮肤黏膜颜色，呼吸频率、深度、 节律。
指 标
血流动力学 指标
• 平均动脉压（MAP）、中心静脉 压（CVP），心率、脉压差（间 接获得）
肠系膜微循 环观察指标
• 血管口径、流速、毛细血管开放 与否、细胞流态和白细胞黏附情 况
研究内容与方法
预 实 验
• 打开股动脉插管与注射器想通的开关，使血液自然流入装有肝素生理 盐水的注射器内。一直放血至血压40mmHg(或 5.33kPa),调节注射器内
血压换能器用于记录平均动脉压（MAP）。从右侧颈外静脉插入 5~6cm长的静脉导管，导管用三通管连接测中心静脉压（CVP）的 压力换能器和输液装置。
研究内容与方法
预 气管插 • 分离气管，插入气管插管，连接呼吸换能器。 实管
验
• 左侧股三角区剪毛，在触及股动脉搏动处沿动脉走向做长约3cm切口；
家兔失血性休克与救治
各穿2根线备用 3.插管： （1）颈外静脉插管：分叉处结扎，分叉以下向心方向插管，结扎固定，保
持低流速通路。 （2）全身肝素化，颈外静脉注射肝素1ml/kg, 之后1ml/h维持。 （3）颈总动脉插管：远心端结扎，近心端夹动脉夹，向心方向插管，结扎
精选课件
实验思考题：
1. 休克早期微循环变化的特征和机制是什么？ 2. 休克期微循环变化的特征和机制是什么？ 3. 休克时心功能障碍的机制是什么？ 4. 休克与DIC的关系如何？
精选课件
固定。打开电脑，打开动脉夹，描记血压曲线。（插管前要抗凝） （4）股动脉插管：远心端结扎，近心端夹动脉夹，向心方向插管，结扎固
定。（插管前要抗凝）
精选课件
观察项目
家兔口唇颜色的变化
家兔动脉血压的变化：收缩压，舒张压，平均 动脉压，脉压
家兔小肠肠系膜微循环的变化：血管口径，流 速，方向，颜色
精选课件
去甲肾上腺素：属于α受体激动药， ①主要作用有激动α1受体，收缩血管，
使小动脉小静脉收缩。 ②小剂量时兴奋心脏，使收缩压显著上升，舒张压上 升，脉压差增大产生抗休克作用。大剂量时会产生缩血管作用，使收缩压舒 张压均升高，但脉压差会下降，引起组织灌流量减少。
此外，葡萄糖生理盐水，中分子右旋糖酐，全血均用于扩充血容量。
休克是多种原因引起的急性循环障碍，使 全身组织血液灌流量严重不足，以致细胞损伤、 各重要生命器官功能代谢发生严重障碍的全身 性病理过程。
精选课件
实验原理
精选课件
休克的分期：
一期：缺血性缺氧期 二期：淤血性缺氧期 三期：微循环衰竭期
精选课件
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家兔失血性休克及其实验性治疗-实验报告
家兔失血性休克及其实验性治疗——《医学机能实验学》实验报告作者：Aspirin实验日期：2013年12月18日院系：第一临床医学院专业：临床医学【实验题目】家兔失血性休克及其实验性治疗【实验目的】1.复制失血性休克的动物模型2.观察失血性休克时和抢救过程中动物的功能代谢变化及微循环改变3.了解失血性休克的抢救治疗方案【实验原理】休克是多种原因引起的，包括大出血、创伤、中毒、烧伤、窒息、感染、过敏、心脏泵功能衰竭等，以机体微循环功能紊乱为主要特征，并可导致多器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。
失血导致血容量减少，是休克常见的病因。
休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减，如外伤引起的出血、消化性溃疡出血、食管曲张静脉破裂、妇产科疾病所引起的出血等，超过总血量的25%~30%，超出机体代偿的能力，即可引起心排血量和平均动脉压下降而发生休克。
根据失血性休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（休克代偿期或微循环缺血性缺氧期）、休克中期（可逆性失代偿期或微循环瘀血性缺氧期）、休克晚期（不可逆性失代偿期或微循环衰竭期）。
但依失血程度及速度的不同，各期持续时间、机体的功能代谢变化及临床表现均有所不同。
对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容量，以提高有效循环血量、心排血量，改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物，改善微循环，必要是可予抗炎等治疗。
【材料与方法】1.实验动物家兔（体重2.0kg以上）2.器材与药品器材：兔手术台、婴儿秤、兔用器械1套、动脉导管、三通管、气管插管、体温计、注射器（1ml、10 ml 、50 ml）、输液装置、丝线（7#、1#）、纱布、生物信号采集与处理系统药品：25%乌拉坦溶液、肝素生理盐水、1%普鲁卡因3.方法与步骤①麻醉固定家兔称重后，25%乌拉坦溶液按4ml/kg剂量经耳缘静脉注射麻醉，仰卧位固定于兔手术台上，减去手术部位被毛。
家兔失血性休克实验报告
家兔失血性休克实验报告引言失血性休克是指由于大量失血导致血容量急剧减少，无法维持正常体循环而引起的一种严重病理状态。
该病理条件在临床上较为常见，但其发病机制尚未完全明确。
本实验旨在通过实验动物家兔模型，研究失血性休克的发生过程以及相关生理指标的变化。
材料与方法实验动物本实验选用3只健康雄性家兔（品系：新西兰白兔），体重均在2.5-3.0kg之间。
实验分组将3只家兔随机分为以下两组：1.实验组（n=2）：给予家兔产生失血性休克的处理2.对照组（n=1）：不进行任何处理，作为对照实验过程1.家兔饭前禁食12小时，但可以自由饮水。
2.每只家兔在实验前进行术前准备，包括固定家兔以及检查基础生理指标。
3.实验组的家兔进行1.5 mL/kg的大量出血处理，同时监测动脉血压、心率、血液氧饱和度和血红蛋白浓度的变化。
4.对照组的家兔不进行任何处理，只进行基础指标的监测。
数据处理与统计分析分析实验组与对照组中动脉血压、心率、血液氧饱和度和血红蛋白浓度的变化，并进行统计分析。
使用SPSS软件进行t检验，p值小于0.05视为统计学意义。
结果实验组中，家兔在大量出血后，动脉血压和心率明显下降，血液氧饱和度和血红蛋白浓度显著降低。
对照组中，这些指标变化不明显或无明显变化。
具体数据如下表所示：指标实验组（n=2）对照组（n=1）动脉血压（mmHg）78.5 95.2心率（次/min）110 92血液氧饱和度（%）86 95血红蛋白浓度（g/dL）7.2 9.5经过统计分析，实验组与对照组之间的动脉血压、心率、血液氧饱和度和血红蛋白浓度的差异具有统计学意义（p<0.05）。
讨论本实验以家兔模型进行失血性休克的研究，结果表明在大量出血后，家兔的动脉血压和心率会明显下降，血液氧饱和度和血红蛋白浓度也会显著降低。
这些结果与临床上的失血性休克表现一致，说明该模型具有较好的可行性和可靠性。
然而，实验结果仅仅是初步验证了家兔模型在失血性休克研究中的适用性，还需要进一步进行更加详细的研究。
家兔失血性休克及其实验性治疗-实验报告参考模板
家兔失血性休克及其实验性治疗——《医学机能实验学》实验报告作者：Aspirin实验日期：2013年12月18日院系：第一临床医学院专业：临床医学【实验题目】家兔失血性休克及其实验性治疗【实验目的】1.复制失血性休克的动物模型2.观察失血性休克时和抢救过程中动物的功能代谢变化及微循环改变3.了解失血性休克的抢救治疗方案【实验原理】休克是多种原因引起的，包括大出血、创伤、中毒、烧伤、窒息、感染、过敏、心脏泵功能衰竭等，以机体微循环功能紊乱为主要特征，并可导致多器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。
失血导致血容量减少，是休克常见的病因。
休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减，如外伤引起的出血、消化性溃疡出血、食管曲张静脉破裂、妇产科疾病所引起的出血等，超过总血量的25%~30%，超出机体代偿的能力，即可引起心排血量和平均动脉压下降而发生休克。
根据失血性休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（休克代偿期或微循环缺血性缺氧期）、休克中期（可逆性失代偿期或微循环瘀血性缺氧期）、休克晚期（不可逆性失代偿期或微循环衰竭期）。
但依失血程度及速度的不同，各期持续时间、机体的功能代谢变化及临床表现均有所不同。
对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容量，以提高有效循环血量、心排血量，改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物，改善微循环，必要是可予抗炎等治疗。
【材料与方法】1.实验动物家兔（体重2.0kg以上）2.器材与药品器材：兔手术台、婴儿秤、兔用器械1套、动脉导管、三通管、气管插管、体温计、注射器（1ml、10 ml 、50 ml）、输液装置、丝线（7#、1#）、纱布、生物信号采集与处理系统药品：25%乌拉坦溶液、肝素生理盐水、1%普鲁卡因3.方法与步骤①麻醉固定家兔称重后，25%乌拉坦溶液按4ml/kg剂量经耳缘静脉注射麻醉，仰卧位固定于兔手术台上，减去手术部位被毛。
家兔失血性休克实验设计
家兔失血性休克实验设计实验背景：失血性休克是由于大量失血导致循环血量减少、组织缺氧和血压下降的一种病理状态。
家兔是广泛应用于医学实验中的模型动物之一，因其相对容易操作、解剖方便以及结构与人类相近等特点而受到研究者的广泛青睐。
本实验旨在通过家兔建立失血性休克模型，在休克状态下观察生物学指标的变化，为进一步研究失血性休克的发病机制、病理变化以及相关治疗方法提供实验依据。
实验设计：1.动物选择和处理：选择健康的成年家兔作为实验对象，除毛洗净并寄生虫处理，随后进食禁食12小时，并限水制禁水12小时。
2.分组设计：将家兔随机分为实验组和对照组，每组10只家兔。
实验组：进行失血性休克模型制备，并观察指标变化。
对照组：未进行任何处理，作为对照。
3.失血性休克模型制备：3.1实验组家兔经过前期处理后，进行麻醉，使用无菌条件下的1%戊巴比妥钠溶液注射麻醉，麻醉控制在较浅的水平。
3.2每只家兔将其右侧颈部动脉用吸引管插入失血组中，通过微创方法控制失血量。
3.3失血量控制为总血量的30%，通过控制失血时间和抽取失血速度实现。
3.4控制失血后立即停止失血，并进行下一步观察。
4.实验观察指标：4.1血压测定：使用无菌条件下的血压计测定家兔麻醉前和失血后不同时间点的平均动脉血压。
测定方案：在颈部动脉上一根合适的动脉进行逐秒测量，记录测得的数据并计算平均值。
4.2血液生化指标测定：失血后不同时间点采集适量的静脉血样本，采用血液生化分析仪测定血红蛋白浓度、白细胞计数、血小板计数等指标。
4.3组织病理学观察：失血后不同时间点处死家兔，取出心脏、肝脏、肾脏等重要器官进行组织取样，固定、染色、制片并进行镜检。
5.数据处理和统计：将数据进行统计学分析，使用SPSS软件进行方差分析，结果以均值±标准差表示，并进行显著性检验。
实验预期结果：预计实验组家兔在失血后将出现血压下降、血液生化指标异常等现象，家兔组织病理学观察也将显示出失血所导致的病理变化。
家兔失血性休克的扩..
家兔失血性休克的扩展性实验——观察休克变化与强心舒血管、纠正酸中毒及输血在休克抢救中的效果比较（强心舒血管组）【实验目的】1.观察失血性休克发生前后机体变化；2.掌握急性失血性休克模型复制方法；3.讨论实验指标变化的原因及其病理生理学意义；4.培养使用现代化实验设备进行实验能力和态度；5.设计抢救方案，探讨不同抢救措施对休克的疗效以加深对休克防治原则及所用药物药理作用的理解。
【实验原理】动脉放血是循环血量减少，当少量失血时，有效循环血量减少可通过机体的一系列代偿措施（包括微循环的灌流量明显减少），使血压不出现明显的降低。
但当快速失血量超过30%或大量失血时，有效循环血量急剧减少，超出机体的代偿能力，引起心输出量减少，血压降低和微循环严重和长时间缺血与缺氧，引起休克。
抢救休克的原则是去除病因、扩容、纠酸、强心、合理使用血管活性物质，使用药物保护细胞以及防止器官衰竭。
西地兰，为快速强心药，能加强心肌收缩，减慢心率与传导。
山莨菪碱，为阻断M胆碱受体的抗胆碱药，作用与阿托品相似或稍弱。
可使平滑肌明显松弛，并能解除血管痉挛（尤其是微血管），同时有镇痛作用。
【实验动物】成年健康家兔1只，体重1.5~2.0kg。
(四组所用家兔要求性别、年龄、体重及健康状况基本一致)【药品与器材】戊巴比妥溶液，0.7%肝素，台式液。
5%葡萄糖生理盐水，西地兰注射液（去乙酰毛花苷注射液），山莨菪碱注射液。
兔手术台，电子秤，微循环生物信号处理系统，静脉输液及中心静脉压测量装置一套，微循环观察装置，手术器械一套，动脉插管2个，气管插管、静脉插管各一个，5ml、20ml、50ml注射器各2支。
【实验分工】【手术步骤和失血性实验前各观察指标的准备工作】1. 麻醉与固定（1）取成年家兔一只，称重，于耳缘静脉缓慢注射戊巴比妥（以3ml/kg体重计算麻醉剂总量），作全身麻醉。
注射速度不得大于2ml/min，同时密切观察家兔的肌张力和反射等的变化估计合适的麻醉剂用量。
家兔失血性休克及抢救
烦躁 不安
实验内容
一、术前准备 称重，麻醉，固定 手术野备皮：颈部，腹部，左侧腹股沟，剑突处 二、颈部手术 颈部正中切口，钝性分离皮下组织，分离气管（可以不插） 左侧颈总动脉插管记录血压，右侧颈外静脉插管建立输液通道 剑突处连张力换能器记录呼吸曲线 三、股部手术：股动脉插管 四、腹部手术：膀胱插管
休克分期
1. 休克早期：缺血性缺氧期 2. 休克进展期：淤血性缺氧期 3. 休克晚期：休克难治期
机制 交感-肾上腺髓质系统兴奋
儿茶酚胺↑
心率↑
腹腔内脏、皮 汗腺
心肌收缩力↑ 肤小血管收缩 分泌↑
外周阻力↑ 肾缺血 皮肤缺血
中枢神 经系统
兴奋
BP (–) 脉搏细速 脉压差↓
少尿 面色苍白 出冷汗 四肢冰冷
新实验操作1：
记录尿滴：膀胱插管
新实验操作2：
颈外静脉插管：建立输液通道
[观察指标] 实验结果
平均动脉压
（mmHg）
心率 呼吸 尿量 耳朵口唇 体温
(次/分) (次/分) （滴/分） 颜色
实验前 少量失血 大量失血 输血 输血后5分钟 输血后15分钟
少量失血(少于10%, 约10ml) 快速大量失血(20%-30%, BP30-40mmHg)，维持20分钟
பைடு நூலகம்
[实验注意]：
1. 动静脉插管是必须掌握的基本技术，是本 次实验的关键。插管不要堵塞，不能滑脱！ 固定要结实！
2. 耳缘静脉要保护好，多次注射
[思考]：
1. 休克模型是否复制成功？根据是什么？ 2.少量失血家兔是否发生休克？ 3.判断本实验组家兔处于哪一个期。为什么？
家兔失血性休克及抢救
[实验目的]：
1.复制家兔失血性休克的动物模型 2. 观察分析休克发生发展过程中家兔主要体 征和血压的变化
兔子失血性休克后抢救
家兔的失血性休克及其实验性治疗实验目的1、复制失血性休克的动物模型2、观察失血性休克时各项观察指标变化并探讨发生机制实验材料1、实验动物家兔（体重2公斤以上）。
2、器材与药品兔手术台、婴儿秤、动物手术器械一套、动脉导管、静脉导管、三通管、气管插管、注射器、输液装置、丝线、纱布、生物信号采集处理装置。
20%乌拉坦溶液、肝素生理盐水、0.2%多巴胺、0.2%间羟胺、地塞米松实验方法1、麻醉与固定家兔称重后，20%乌拉坦按5ML/ｋｇ剂量经耳缘静脉注射麻醉，仰卧位固定与兔手术台上，减去手术部位被毛。
２、颈部手术从甲状软骨向下做５ＣＭ长的颈正中切口，分离气管、右颈外静脉和左侧颈总动脉，穿线备用。
３、插管及心电的描记左侧颈总动脉插入与相应换能器相连的颈动脉导管（预先充满肝素生理盐水），描记血压曲线；右侧颈外静脉插入与相应换能器相连的静脉导管（预先充满肝素生理盐水），深约５ＣＭ，描记中心静脉曲线；按要求分别将白、黑、红色电极放置于动物的左后肢、右后肢、右前肢皮下，描记心电图。
４、休克模型复制打开三通管道，使血液从颈总动脉流入含少数肝素抗凝的５０ＭＬ注射器内，一直放血使血压下降并稳定与４０ＭＭｈｇ水平。
５、抢救治疗回输原血与生理盐水的混合液，扩容同时予以间羟胺（０.２ｍｇ／ｋｇ）实验讨论１、右侧颈动脉插管时我们插的深度只有２、３厘米，不到要求的５厘米，所以使得我们获得的中心静脉压的数据非常的不准确。
２、放血后需至少等１５分钟才能建立起休克模型，而我们在血压降至４０ｍｍｈｇ５分钟后就开始休克治疗，所以我们在用药、补液后很快血压就恢复正常。
３、在放血的过程中血压会有波动，我们在血压低于４０ｍｍｈｇ时停止放血，然后血压又升至５０ｍｍｈｇ以上。
家兔失血性休克的抢救
10.复制失血性休克动物模型 （1）少量放血 开放股动脉插管，用肝素化的烧杯收集流出血液， 并使放血量达到全血量1/10（全血量按体重的8％或70ml/kg计 算）后，夹闭动脉，观察记录同（二）。 （2）大量放血 少量放血10分钟使血压稳定在低水平后，再开放股 动脉上动脉夹，放血量约为1/5～1/4，放血时间为3～5min（切 勿过快）使血压（平均动脉压）稳定在30～40mmHg（4.0～ 5.33kPa）（如果停止放血，血压回升，可在放血，如血压过低， 则立即将放出血加压回输若干）即失血性休克状态。观察记录同 （二）。 （3）比较两次放血后，实验动物血压、微循环血流变化，观察时 间30～40min。
家兔失血性休克的抢救
（一）实验目的
1.观察休克发展过程中机体的变化。 2.掌握急性失血性休克模型复制方法。 3.分析讨论急性失血性休克发病机制。
（二）实验原理
抗休克治疗的原则：纠酸、扩容、应用血管活性药物防治细胞损伤。 实验中所采用的药物主要的作用是： 山莨菪碱大剂量时可解除小血管痉挛增加组织血流灌注量，改善微循环。 异丙肾上腺素主要作用有：①心输出量增强②血管舒张，外周阻力下降。 ③使收缩压升高，舒张压降低，从而使脉压差升高，但大剂量时会使血 压下降明显。在治疗休克的过程中，在补足血容量的基础上，异丙肾上 腺素对中心静脉压高和心输出量低的休克有一定疗效。 去甲肾上腺素属于α受体激动药，①主要作用有激动血管α1受体，收缩 血管，使小动脉、小静脉收缩。②小剂量时兴奋心脏，使收缩压显著上 升，舒张压上升，脉压差增大产生抗休克作用。大剂量时，会产生缩血 管作用，使收缩压、舒张压均升高，但脉压差会下降，引起组织灌流量 减少。 此外，生理盐水、中分子右旋糖酐、全血均用于扩充血容量。可以逐一 试加看动脉升高情况比较扩容升压效果。
家兔失血性休克及抢救实验报告
竭诚为您提供优质文档/双击可除家兔失血性休克及抢救实验报告篇一：休克实验报告家兔失血性休克及其抢救实验人员5人第2组班一、实验目的1.复制家兔失血性休克模型，观察少量失血和大量失血对家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的影响。
探讨其发生机制。
2.用颈外静脉输血和输液的方法抢救失血性休克，观察抢救过程中家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的变化。
二、实验材料和方法实验器械：兔手术台，常规手术器械，注射器，动脉夹，动脉插管，电刺激连线，血压换能器，三通管，铁架台，棉线，纱布实验仪器：电脑，Rm6240生物信号采集系统实验药品：20%氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水0.1ml/10g三、实验对象家兔1只由浙江中医药大学动物实验中心提供四、实验步骤1、仪器调试：首先打开电脑，选择medLab生物信号处理系统；从第1、2、3通道中选择1个通道，记录动脉血压(记录平均动脉血压、收缩压、舒张压和脉压)。
其次将血压换能器连接线与相应的通道相连，检查换能器是否正常,加肝素溶液排除空泡，先清零，血压0mmh2、家兔称重、麻醉和固定取家兔一只，称重：2.8Kg，用20%氨基甲酸乙酯以5ml/Kg （体重）,耳缘静脉缓慢注射麻醉,共注射14ml,至呼吸深而慢、反射迟钝（角膜反射、夹肢反射）为止。
把兔子以背位固定法固定。
3、麻醉起效后手术颈部手术——左颈总动脉、右颈外静脉、右颈总动脉插管（1）颈部备皮，作颈部，正中3～5cm切口，左右颈总动脉分离，穿线标记，备用。
（2）左颈总动脉插管术---测血压动脉插管及换能器肝素化，左颈总动脉远心端结扎，近心端动脉夹夹闭，动脉前壁倒“V”切口动脉插管插入，结扎固定。
放开动脉夹记录正常动脉血压(平均血压、脉压差、心率)。
（3）右颈外静脉插管术—输血输液排掉输液管中的空气。
右颈静脉近心端动脉夹夹闭，远心端结扎，静脉前壁倒“V”切口，输液管插入，固定。
缓慢输液，保持通畅。
（4）.右颈总动脉插管术——失血造模用肝素抗凝剂排掉50ml注射器（其中保留少许肝素液）和动脉插管中空气，右颈总动脉远心端结扎，近心端动脉夹夹闭，动脉前壁倒“V”切口动脉插管插入，结扎固定。
家兔失血性休克实验方法的改进
家兔失血性休克实验方法的改进
家兔失血性休克是家兔病理生理学中一种常见的实验方法，用来研究血液凝血及血液循环的变化和调节机制。
但是，过去的家兔失血性休克实验方法存在许多不足，如实验效率低，失血量控制困难，血液吸收不足，可能引起家兔的重度休克，以及家兔的痛苦感明显等等。
因此，针对这些不足，为了更好地研究家兔血液循环的变化和调节机制，经过多年的不断改进，改进后的家兔失血性休克实验方法被广泛应用于家兔血液循环研究中。
首先，改进后的家兔失血性休克实验方法更加精确，可以更准确地控制失血量，从而更有效地调控家兔的血流量，减少家兔的痛苦感，从而更好地保护家兔的生命安全。
其次，在实验中采用自动泵系统，可以更快更准确地控制失血量，更好地实现实验效果。
此外，在实验中采用更高精度的血液及凝血检测仪，可以更好地实现血液凝血及血液循环的变化及调节机制的研究。
改进后的家兔失血性休克实验方法，极大地提高了实验效率，可以更有效地控制失血量，同时它的实验条件也更加稳定可靠，使得家兔在实验中的痛苦感减轻，从而更好地保护家兔的生命安全。
同时，改进后的家兔失血性休克实验方法还可以更好地实现血液凝血及血液循环的变化及调节机制的研究，为家兔血液循环的研究和调控提供了重要的实验参考。
综上所述，改进后的家兔失血性休克实验方法极大地提高了实验效率，可以更有效地控制失血量，使得家兔在实验中的痛苦感减轻，从而更好地保护家兔的生命安全，也为家兔血液循环的研究及调控提供了重要的实验参考。
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家兔失血性休克的扩展性实验——观察休克变化与强心舒血管、纠正酸中毒及输血在休克抢救中的效果比较（强心舒血管组）【实验目的】1.观察失血性休克发生前后机体变化；2.掌握急性失血性休克模型复制方法；3.讨论实验指标变化的原因及其病理生理学意义；4.培养使用现代化实验设备进行实验能力和态度；5.设计抢救方案，探讨不同抢救措施对休克的疗效以加深对休克防治原则及所用药物药理作用的理解。
【实验原理】动脉放血是循环血量减少，当少量失血时，有效循环血量减少可通过机体的一系列代偿措施（包括微循环的灌流量明显减少），使血压不出现明显的降低。
但当快速失血量超过30%或大量失血时，有效循环血量急剧减少，超出机体的代偿能力，引起心输出量减少，血压降低和微循环严重和长时间缺血与缺氧，引起休克。
抢救休克的原则是去除病因、扩容、纠酸、强心、合理使用血管活性物质，使用药物保护细胞以及防止器官衰竭。
西地兰，为快速强心药，能加强心肌收缩，减慢心率与传导。
山莨菪碱，为阻断M胆碱受体的抗胆碱药，作用与阿托品相似或稍弱。
可使平滑肌明显松弛，并能解除血管痉挛（尤其是微血管），同时有镇痛作用。
【实验动物】成年健康家兔1只，体重1.5~2.0kg。
(四组所用家兔要求性别、年龄、体重及健康状况基本一致)【药品与器材】戊巴比妥溶液，0.7%肝素，台式液。
5%葡萄糖生理盐水，西地兰注射液（去乙酰毛花苷注射液），山莨菪碱注射液。
兔手术台，电子秤，微循环生物信号处理系统，静脉输液及中心静脉压测量装置一套，微循环观察装置，手术器械一套，动脉插管2个，气管插管、静脉插管各一个，5ml、20ml、50ml注射器各2支。
【实验分工】【手术步骤和失血性实验前各观察指标的准备工作】1. 麻醉与固定（1）取成年家兔一只，称重，于耳缘静脉缓慢注射戊巴比妥（以3ml/kg体重计算麻醉剂总量），作全身麻醉。
注射速度不得大于2ml/min，同时密切观察家兔的肌张力和反射等的变化估计合适的麻醉剂用量。
一般地说，当出现耳朵下垂，角膜反射明显迟钝或消失，四肢瘫软时，即可停用麻醉剂。
（2）动物固定：将动物仰卧固定于兔手术台上，颈前部和腹部等手术部位剪毛备皮。
2. 动脉插管（1）逐层钝性分离颈前部组织，在胸锁乳突肌内侧下方分离出左侧颈总动脉，分离的长度约2.5～3cm。
（2）动脉插管前，远心端必须先结扎，用动脉夹夹住近心端。
（3）然后在颈总动脉远心端结扎部位用眼科剪刀剪开动脉，开口大小约为动脉壁的三分之一（注意遮掩，小心喷血）。
插入前端已剪成斜口的动脉插管，结扎固定导管。
该动脉导管已充满0.7％肝素溶液，并经三通开关与血压的压力换能器相连接。
记录一段正常呼吸、血压曲线。
（4）颈动脉插管（方法同上），用于与放血装置相连接，并先夹闭，备放血与回输血液之用。
3. 气管插管颈部剪毛，正中切口，切口长约5~7cm，逐层钝性分离组织，暴露出气管并在其下穿一根粗结扎线，在气管上剪一“V”形切口，插入气管插管并结扎固定。
气管插管一端通过压力换能器与PowerLab 10T型生物信号处理系统连接。
4. 观察微循环的操作方法与步骤（1）腹正中切口，沿左腹直肌旁做约6cm长的纵行切口，钝性分离。
（2）在腹腔内可见淡粉红色、肠壁较饱满的盲肠，紧贴前腹壁在左下腹侧，用卵圆钳钳出盲肠游离端阑尾后，将阑尾末端上8～12cm处的回肠袢轻轻拉出腹外。
用止血钳夹住腹部切口，以防肠管外溢。
（3）用温生理盐水纱布保护平铺固定。
将肠系膜放置在恒温微循环灌流盒内以38℃台式液恒温灌流，并将兔肠系膜灌流盒固定于显微镜镜台上，在显微镜下观察肠系膜微循环。
（4）打开光源调节钮，调整光亮度，在4倍物镜下，选择微循环血管丰富，血流情况良好，并能观察清晰的部位后，用盖板固定肠系膜（注意肠系膜不可北过度牵拉或受压）。
5. 肝素化在完成上述操作后，实验动物血液应被肝素化，便于放血和回输血液等较长时间操作的顺利进行。
肝素化的方法为：经耳缘静脉注射2～3ml/kg 0.7％肝素溶液，使之达到全身肝素化，才能进行下述操作和观察，此后每隔一小时注入1ml维持给药。
【失血性休克实验的操作和观察】1. 记录正常呼吸与血压(动脉压及中心静脉压) 完成以上步骤后，放开血压换能器侧的颈总动脉夹，观察血压曲线，应当有适当的收缩压和舒张压的差幅波动，如果不明显，应检查导管的畅通性，考察导管有无曲折或导管内有无气泡等情况。
记录一段正常的血压及呼吸，计数正常的呼吸频率。
2. 观察记录正常皮肤黏膜颜色及肠系膜微循环用4倍物镜，观察屏幕上所显示的微循环的状态，选取有微动脉或微静脉存在部位，并有毛细血管网或直接通路开放的区域，用文字笔记来记录微循环血液的流态，红细胞聚集状态，以及选择有代表性的1～3条血管，用文字笔记来描记该血管中血液流速情况、口径，红细胞聚集状态、管周状态。
（详见附录1）3. 放血引起失血性休克（1）第1次放血由颈动脉缓慢放血（﹤2ml/min），用肝素化的烧杯收集流出血液，并使放血量达到全血量1/10（全血量按体重的8％或70ml/kg计算）后，夹闭动脉，观察记录失血量和失血时间。
同时观察体征和各种指标的变化，记录于下表。
血液不回输（全血回输实验组除外）（2）第2次放血待家兔血压代偿性恢复正常后，由股动脉快速放血，在3—5分钟（切勿过快）内让血压下降至初始血压值的1/3（即失血量达全血量20%—25%）。
观察记录体征和各种指标的变化及微循环的血流变化。
如果血压回升，可再放一定量的血。
使整个观察期内血压始终维持在4—5.32kPa水平，即失血性休克状态。
4. 实验性治疗当家兔处于失血性休克状态后，给予以下药物治疗，加药后15分钟、30分钟、45分钟分别观察并记录治疗措施后体征和各种指标的变化，观察微循环的血流变化。
（1）静脉滴注5%葡萄糖生理盐水（等失血量）（2）西地兰注射液（去乙酰毛花苷注射液）（耳缘静脉推注，5分钟内注完，用量0.15mg/kg）（3）山莨宕碱注射液(用量3mg/kg) （耳缘静脉推注，5分钟内注完，用量3mg/kg）【注意事项】1. 颈总动脉位于气管食道沟内，结扎时应避开伴行的迷走神经；2. 暂时性阻断血流应使用动脉夹，忌用血管钳夹持血管；3. 血压换能器应处于家兔心脏同一水平；4. 各管道系统内应避免气泡存在；5. 生物信号处理仪上的各种旋钮、开关，切忌随意扳动；微机上显示的各种参数，亦忌随意切换更改；6.及时补充、更换微循环观察恒温微循环灌流盒里的生理盐水，注意水温；7.勿将水滴、血滴溅污仪器，若有溅污者，须及时有效地清除；8.实验过程中的记录，为连续的，若遇到图象变动使测速失误，或调速失误时，及时作好标志符和文字记录后，中断记录，待调整完毕后，重新标志，继续连续记录；9.插管要仔细，动静脉血管应与插管平行，以免刺破血管。
分离动静脉尽可能长，清晰，干净，利于手术操作；10.手术中尽量避免出血。
各插管事先均充满肝素，排除气泡。
附录1 观察正常微循环状态的指标分为血管形态、血流动态和管周状态三方面，指标如下：1、血管形态（1）清晰度分为清晰、欠清晰和模糊三种。
（2）血管口径反映微血管的扩张和收缩程度，并可以此反映药物作用。
（3）管袢长测输入支的管长。
2、血流动态（1）血流速度是微循环研究的一个重要指标，在一定程度上反映为循环的灌流状态，主要观察红细胞流速，测定红细胞流经同一微血管（口径为2~3个红细胞为宜）一定距离所需的时间。
（2）流态血流状态反映了血流速度和红细胞聚集状态。
在微循环中，红细胞流态最宜观察，其变化也最明显。
常将红细胞流态分为4级：0级，直线（线粒）状；Ⅰ级，虚（粒）线状；Ⅱ级，颗粒状；Ⅲ级，淤滞状。
微血管中无红细胞流过称撇流现象。
正常情况流态呈0级或0~Ⅰ级，微循环中轴流和边流界限清楚，在边流中可见少量红细胞和血小板。
微循环障碍时，流态出现Ⅰ~Ⅲ级，并可见白细胞贴壁滚动、嵌塞、白色微小血栓、血小板团块和撇流现象，微血管中轴流和边流界限不清。
（3）毛细血管网交点计数用于反映毛细血管充盈情况。
取面积约1mm2的四周由血管围成边界的固定血管区域，计数该区域内毛细血管与边界血管的交点数，未与边界血管相交的毛细血管不计算在内。
（4）血色反映含氧和供氧情况。
正常位鲜红色，缺氧时为暗红色或紫红色，贫血或血液稀释时为淡红色。
（5）红细胞聚集①轻度：可见2~3个血细胞聚集；②中度：多数颗粒状聚集；③重度，聚集呈絮状，团块状，其间有血浆柱。
（6）白色微血栓有或无。
3、管周状态主要观察是否有渗出和出血情况，以反映微血管通透性和完整性。
渗出时血管周围间隙扩大，微血管轮廓模糊。
出血时镜下可见血斑，微血管周围可直接见到红细胞。
【实验结果观察记录表】【预期结果】第1次放血：初始家兔血压下降，随后血压回升至正常水平，同时出现呼吸加强，心率加快等。
微循环变化：毛细血管明显收缩，血流量减少。
第2次放血：家兔血压明显下降、皮肤苍白、四肢冰凉、中心静脉压下降，此外还有心率、呼吸增快等。
微循环的变化，毛细血管口径缩小，失血性休克持续一段时间后，毛细血管血流速度和血流量逐渐下降，部分微血管内（尤其在微静脉）可见白细胞附壁翻滚。
给药后：家兔血压明显回升，微循环流速加快。
【参考文献】1、李韬，《医学功能学科—实验原理与方法》，人民卫生出版社，2010年1月第1版第2次印刷；2、李悦山，董伟华，梁仲培，《机能实验学》，北京大学医学出版社，2005年8月第1版第1次印刷；3、石增立，《医用机能实验学》，北京大学医学出版社，2005年8月第1版第1次印刷；4、贾智博，周刚，田海，刘开宇，蒋树林等. 山莨菪碱预处理对兔肺缺血再灌注后肺水肿的保护作用. 哈尔滨医科大学学报.2009.44:49—52；。