家兔失血性休克及抢救
家兔的失血性休克及其抢救
机能学实验报告家兔的失血性休克及其抢救摘要：【目的】：复制家兔失血性休克的动物模型；了解失血性休克的抢救，并探讨失血性休克的发病机制及急救治疗的效果。
【方法】：采用人为地从动脉抽取血液的方法来复制家兔失血性休克的模型，将抽出的血液从静脉输回家兔的方法进行急救。
【结果】：短时间内的少量的失血是可以恢复；大量失血是不可恢复的；自身回输血液可使家兔的失血性休克恢复。
【结论】：短时间少量失血机体是处于代偿期的，较长时间的大量失血机体已处于失代偿期，而该种休克通过输血、输液是可以恢复的。
关键词：失血性休克；代偿期；失代偿期引言：休克是多种原因引起的急性循环障碍，使全身组织血液灌流量严重不足，导致细胞损伤，各重要生命器官发生严重障碍的全身性病理过程。
失血导致血容量减少是休克常见的原因。
1、实验材料1.1实验动物：家兔；1.2实验试剂：氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水；1.3实验仪器：铁架台，婴儿秤，RM6240生物信号采集系统，手术剪1把，眼科剪1把，止血钳，镊子，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血压换能器，输液装置，照明灯，棉线若干，纱布；2、实验步骤2.1.系统连接和参数设定将血压换能器接生物信号采集系统2通道。
启动RM6240系统，关闭其他通道，2通道模式为血压，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度100ml/s；采样频率800Hz。
2.2. 麻醉手术家兔称重，以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入200g/L氨基甲酸乙酯麻醉。
将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头，行气管插管手术，左侧颈总动脉，右侧颈外静脉，股动脉。
输液瓶充满一定量的生理盐水，静脉插管接输液装置，调节输液量至5～10滴/min。
股动脉插管的导管连接已肝素化的50ml注射器。
2.3. 颈部手术2.3.1. 备皮：左手绷紧颈部皮肤，用粗剪刀紧贴皮肤，将手术部位及其周围的被毛剪去（不可用手提被毛，以免剪破皮肤）2.3.2. 切开皮肤：术前先用左手拇指和另外四指将颈部皮肤绷紧固定，右手持手术刀，沿颈部正中线切开皮肤，上起甲状软骨，下达胸骨上缘，长度约5-7cm。
家兔失血性休克及其抢救
家兔失血性休克及其抢救【实验目的】复试家兔失血性休克。
观察家兔在失血性休克时的表现及微循环变化，探讨失血性休克的发生机制。
了解失血性休克的抢救。
【摘要】目的：学习失血性休克动物模型的复制方法、观察休克各期的主要临床变化、了解其机制及通过药物及输液治疗，了解各种治疗的不同效果。
方法：家兔麻醉后，分离并进行左、右两侧颈总动脉、右侧颈外静脉插管，正确连接管道并用肝素冲洗，进入电脑程序，描记正常血压，快速放血，使血压维持60mmHg，血压稳定后，夹闭右颈总动脉，记录并观察血压变化。
待血压稳定后，再放血，使血压降至40mmHg并维持，在维持期间的20min内记录并观察血压变化。
结果：放血后，家兔血压下降，大量放血后血压明显下降，输血后血压急剧上升，并最终达到正常水平。
结论：家兔少量放血后，家兔血压下降，但通过代偿反应可以在短时间内使血压回复到正常时或稍低。
家兔大量放血后，家兔血压明显下降。
输血、输液后血压急剧上升，并最终达到正常水平。
【关键词】失血性休克、抢救、输液治疗。
【实验对象】健康家兔一只【实验器材和药品】1、仪器：家兔手术台、常用手术器械一套、止血钳、眼科剪、支架、动脉插管、动脉夹、血压换能器、RM6240生物信号采集处理系统、照明灯、纱布、丝线、注射器。
2、试剂：生理盐水、氨基甲酸乙酯、肝素。
【实验步骤】1、家兔称重，用5ml/kg氨基甲酸乙酯麻醉家兔，固定家兔，剪去颈部被毛，切开颈部皮肤5~7cm，钝性分离颈部肌肉、暴露颈部气管和血管神经鞘。
用玻璃分针分离2~3cm长两侧颈总动脉，各穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。
用玻璃分针分离2~3cm长右侧颈外静脉，穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。
2、右侧颈总动脉进行动脉插管：将分离出的右侧颈总动脉远心端用线结扎，近心端用动脉夹将动脉夹住。
在远心端结扎线下方用眼科剪在动脉上作一小“V”形切口，将动脉插管朝心脏方向插入动脉，确认插入动脉后用备用线将血管与插管结扎固定，再将结扎线固定于插管上，防止插管从血管中滑脱。
家兔失血性休克与救治
整理课件
实验目的
1.了解复制休克的常用方法，掌握失血性休克 的复制方法。
2.通过对家兔失血性休克不同时期血压、微循 环及体表等变化的观察，掌握休克各期微循环 与血压的变化，进一步理解休克的发病机理。
3.设计抢救方案，加深对休克治疗原则及所用 药物作用的理解。
整理课件
实验原理
②所用药物： ⑴5%的葡萄糖生理盐水
⑵去甲肾上腺素
⑶山莨菪碱
⑷中分子右旋糖酐
⑸0.01%的异丙肾上腺素
⑹全血
③观察各项指标
整理课件
实验结果：
表1 失血性休克发生过程中血压及微循环的变化
股动脉放血量 （ml）
少量放血 （约占全血量的1/10）
大量放血 （约占全血量的1/4，待 血压稳定维持在 30~40mmHg后）
分离右侧颈外静脉（输液用） 股部手术：分离股动脉（放血用）
各穿2根线备用 3.插管： （1）颈外静脉插管：分叉处结扎，分叉以下向心方向插管，结扎固定，保
持低流速通路。 （2）全身肝素化，颈外静脉注射肝素1ml/kg, 之后1ml/h维持。 （3）颈总动脉插管：远心端结扎，近心端夹动脉夹，向心方向插管，结扎
放血时间 （min）
0 5 10 15 0 5 10
动脉血压（mmHg） 平均动脉压 收缩压 舒张压
脉压
微循环变化
整理课件
实验结果：
表2 失血性休克的抢救
处理 平均动脉压
抢救前 抢救后 （写出具体方法）
动脉血压（mmHg）
收缩压
舒张压
脉压
微循环变化
整理课件
实验中的问题及注意事项：
实验中均需保持动脉、静脉插管与血管平行。 保护耳缘静脉。 本实验手术操作多、应尽量避免手术性出血。 插管前必须充满肝素溶液，排除气泡。 牵拉肠袢要轻，以免引起创伤性休克。 注意分工合作。
家兔失血性休克及其抢救实验报告
家兔失血性休克及其抢救实验报告
实验一：家兔失血性休克模型的建立
实验目的：本实验旨在建立家兔失血性休克模型，以便探究该病情的发生机制及抢救
措施。
实验材料和方法：本次实验材料均来自成年雄性家兔，共有15只，体质量均为2.5
kg左右，每只家兔体内取得150 ml鲜血，并以此构建失血休克模型，放置于恒温器中保
持恒温，监测家兔体温、血氧饱和度、心率等生理指标。
实验结果：按照实验设定，放血完毕后，家兔的体表温比刚开始实验时期降低了 1.2℃以上，血氧饱和度下降到80-90%以下，而心率却急剧上升到160-170次/分钟之外，家兔
还出现了瘙痒、抽搐、呕吐等典型症状，明显发现其已经进入失血性休克状态。
结论：本实验成功建立了家兔失血性休克模型，可供今后失血性休克研究及抢救策略
研究使用。
实验目的：本实验旨在考察用于家兔失血性休克的抢救策略的有效性，并找出最佳的
抢救方案。
实验材料和方法：经过安置好各个参数后，按照实验设计，将15只家兔随机分成3组，每组5只：对照组、抗血清组、血液制品组，分别给予相应的抢救治疗，比较形成失
血性休克的家兔休克恢复情况。
实验结果：经过1个小时的抢救，家兔失血性休克模型的生理指标有显著改善。
其中，血液制品组的体表温降幅最低，血氧饱和度下降最小，心率最低，可见血液制品组的抢救
措施最为有效。
结论：本次实验证实，在家兔失血性休克抢救中，最佳抢救方案应该采用血液制品抢救，并取得良好治疗效果。
家兔失血性休克实验报告范文家兔失血性休克及抢救
家兔失血性休克实验报告范文家兔失血性休克及抢救实验报告实验题目：家兔失血性休克模型的制作及治疗实验目的：制作家兔失血性休克模型，观察家兔血压、心率、呼吸和微循环的变化，进一步理解休克发生的病理生理机制，并了解失血性休克的治疗措施实验对象：家兔，体重1.92kg实验器材与药品：1、器材：兔用手术器械一套、兔手术台、静脉输液装置、动脉和静脉插管各一、三通管、注射器（20,5,1ml）、显微镜、手术线、纱布2、药品：20%乌拉坦、1%肝素、去甲肾上腺素、生理盐水实验步骤：1、抓取家兔并称重，取20%乌拉坦9.6ml经耳缘静脉缓慢推注2、待家兔四肢张力降低，无抵抗，角膜反射消失后，在兔手术台进行牢靠固定并备皮，备皮部位：颈部与腹部3、做颈部正中切口5cm，分层剪开，分离右侧颈外静脉和左侧颈总动脉，小心游离血管3-4cm，在血管的两端穿线备用4、经耳缘静脉注入1%肝素2ml抗凝5、颈外静脉插管：先夹闭近心端，再结扎远心端，用眼科剪向近心端作V形切口，向近心端插管3-4cm,NS维持，5-10滴/min6、颈总动脉插管：先结扎远心端，再夹闭近心端，用眼科剪向近心端作V形切口，向近心端插管3-4cm7、腹部正中切口6-8cm，拉出一段肠系膜（不取盲肠肠系膜），固定于显微镜下观察微循环8稳定5min,记录此状态下BP、HR、R、微循环；然后静脉推注NEO.Iml，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录9、颈总动脉放血10%（约13ml）,稳定约5min,观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录；继续放血至25%（约35ml），稳定约5min，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录；然后静脉推注NEO.Iml，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录10、NE0.25ml，用NS稀释至20ml，静脉滴注，并全血回输，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录实验结果:状态r、参数BP（mmHg）HR（次/min）R（次/min）微循环变化正常状态106190血流量及流速正常推注NE0.1ml11723254血管收缩，血流加速放血10%9222056血流量及流速变化不明显放血25%4617046血管收缩，血流量减少推注NE0.1ml56176血管进一步收缩，流速加快，流量减少全血回输6015844血管舒张，开始充盈分析讨论:正常状态下，推注NEO.Iml后，与心脏的（31受体结合，使心肌收缩力增强，心率加快，血压升高；与肠系膜血管a受体结合，使肠系膜血管收缩，血流速度加快。
失血性休克及其抢救
失血性休克及其抢救家兔的失血性休克及其抢救【摘要】目的：①学会复制家兔失血性休克的动物模型；②了解失血性休克的抢救，并探讨失血性休克的发病机制及急救治疗的效果。
方法：采用人为地从动脉抽取血液的方法来复制家兔失血性休克的模型，将抽出的血液从静脉输回家兔的方法进行急救。
结果：短时间内的少量的失血是可恢复的，较长时间内的大量失血是不可恢复的，自身回输血液可使家兔的失血性休克恢复。
结论：短时间少量失血机体是处于代偿期的，较长时间的大量失血机体已处于失代偿期，而该种休克通过输血、输液是可以恢复的。
【关键词】失血性休克抢救1实验材料1.1对象：家兔；1.2实验试剂：氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水；1.3实验仪器：铁架台，婴儿秤，RM6240生物信号采集系统，手术剪1把，眼科剪1把，止血钳，镊子，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血压换能器，输液装置，照明灯，棉线若干，纱布；2实验方法2.1实验装置与连接：①将压力换能器固定于铁支架上，使换能器的位置尽量与实验动物的心脏在同一水平面上。
然后将换能器输入至RM6240生物信号采集系统一通道。
②压力换能器的另一端与三通管相连。
三通管的一个接头将与动脉插管相连。
在将动脉插管插入左颈总动脉前，先用盛有肝素的注射器与三通管另一接头相连，旋动三通管上的开关，使动脉插管与注射器相通，推动注射器，排空动脉插管中的气体，使动脉插管内充满肝素溶液，然后关闭三通管。
2.2仪器调试：在菜单中选择“血压”。
双击一通道，调节增益、采样参数，使基线归零，令图形位于屏幕中央，便于观察。
2.3麻醉固定：家兔称重后，将氨基甲酸乙酯以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入，注意观察家兔的反应。
待麻醉后，将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头。
2.4 手术：剪去家兔颈部的被毛，切开颈部皮肤5～7cm,钝性分离颈部肌肉，暴露颈部气管和血管，用玻璃分针分离两侧颈总动脉和右侧颈外静脉，各穿两线备用。
家兔失血性休克及其抢救(浙中大)
家兔失血性休克及其抢救姓名：学号：班级：一．实验目的1.复制家兔失血性休克模型，观察少量失血和大量失血对家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的影响。
探讨其发生机制。
2.用颈外静脉输血和输液的方法抢救失血性休克，观察抢救过程中家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的变化。
二．实验材料器械手术剪、镊子、注射器、电子称、血压换能器，生物信号采集处理系统，止血钳、玻璃分针,丝线，注射器，兔台，动脉夹药物名称生理盐水、20%氨基甲酸乙酯、肝素仪器调试打开电脑，选择MedLab生物信号处理系统；从第1、2、3通道中选择1个通道，记录动脉血压(记录平均动脉血压、收缩压、舒张压和脉压)。
将血压换能器连接线与相应的通道相连，检查换能器是否正常,加肝素溶液排除空泡，先清零，血压mmHg。
实验动物家兔三．实验步骤一、家兔称重、麻醉和固定取家兔一只，称重：3.0Kg ; 20%氨基甲酸乙酯, 5ml /Kg体重, 耳缘静脉缓慢注射, 共注射15ml, 至呼吸深而慢、反射迟钝（角膜反射、夹肢反射）为止。
背位固定。
二、麻醉起效后手术1. 颈部手术——左颈总动脉、右颈外静脉插管、（右颈总动脉）1）颈部备皮，作颈部正中3～5cm切口，左右颈总动脉分离，穿线标记，备用。
2）左颈总动脉插管术---测血压动脉插管及换能器肝素化，左颈总动脉远心端结扎，近心端动脉夹夹闭，动脉前壁倒“V”切口动脉插管插入，结扎固定。
放开动脉夹记录正常动脉血压(平均血压、脉压差、心率)。
3）右颈外静脉插管术—输血输液排掉输液管中的空气。
右颈静脉远心端结扎，静脉前壁倒“V”切口，输液管插入，固定。
缓慢输液，保持通畅。
2. 右颈总动脉手术——右颈总动脉插管---失血造模（右颈总动脉）用肝素抗凝剂排掉50ml注射器（其中保留少许肝素液）和动脉插管中空气，进行右劲总动脉插管三、复制失血性休克模型：右颈动脉插管放血入50ml注射器1．少量放血，使动脉血压降至60mmHg左右，维持5min。
生理科学——家兔失血性休克及其抢救
1
实验目的
相关知识
实验步骤 实验后处理
注意事项
1
1.掌握家兔失血性休克病理模型的制 备方法、失血性休克的各项观察指标 及急救原则。 2.熟悉失血性休克的发病机理和抢救 药物的作用原理。 3.了解生物信号处理系统的使用要求 和实验中的注意事项。
1
休克的定义 休克的临床表现
1
第二次放血，使平均动脉压再次 下降到5.33kPa，立即观察并记录上 述指标，并在该水平上维持20min后， 再观察和记录上述指标的变化。
1
停止放血，先从耳缘静脉注入与 放血量相等的右旋糖苷-40，然后从右 颈外静脉处输入生理盐水30~40滴/分， 同时依次从耳缘静脉注入5%NaHCO3 溶液10ml、1%山莨菪碱1mg/kg抢救， 观察20min，看上述各指标是否可恢复 正常。
1
耻骨联合上方备皮，局麻后作下腹部 正中切口，找出膀胱，拉出后将膀胱顶端 向下，在背面膀胱三角区找出双侧输尿管 入口，沿此向上钝性分离出双侧输尿管， 分别置双线，结扎远心端。在靠近结扎线 处用眼科剪沿45度向前剪一小口，插入输 尿管插管并结扎固定（两侧相同）。每次 用试管收集10min尿量。
1
作右侧颈外静脉插管，插入5cm长的 静脉导管，结扎固定。导管的外端用三通 管连接输液装置和压力换能器，用来输液 和测定中心静脉压。在测压前，关闭压力 换能器侧管，使导管与输液装置相通，缓 缓输入生理盐水5~10滴/分，以保持静脉 通畅。测压时，关闭输液侧管。
1
作左颈总动脉插管，插入预先充满 0.2%肝素生理盐水的动脉导管，导管外侧 连接三通管，一侧连接压力换能器，用来 记录动脉血压，另一侧连接30ml注射器， 并暂时关闭，以备放血用。
12.家兔失血性休克及其抢救
缺血缺氧期 淤血缺氧期 休克难治期
去除病因 液因子拮抗剂
实验步骤
设置实验参数（ 设置实验参数（表7-6） 家兔的称重、 家兔的称重、麻醉和固定 手术准备：颈部手术、 手术准备：颈部手术、腹部手术 全身肝素化 第一次放血：记录实验结果（血压、心率、CVP、 第一次放血：记录实验结果（血压、心率、CVP、
家兔失血性休克及其抢救
休克的定义 导致休克的主要原因 休克分期和主要临床表现 休克抢救原则
休克：在致病因素的作用下, 休克：在致病因素的作用下, 机体的有效循环血量减少,组 机体的有效循环血量减少, 织器官血液灌流不足, 织器官血液灌流不足, 组织器 官功能障碍等的一系列病理过 程。
休克分期: 休克分期
尿量、皮肤黏膜颜色） 尿量、皮肤黏膜颜色）
第二次放血：记录实验结果（同前） 第二次放血：记录实验结果（同前） 抢救 停止放血
实验结果
处理因素 平均动脉压 放血前 第一次放 血后 20分钟后 20分钟后 第二次放 血后 20分钟后 20分钟后 抢救后 中心静脉压 尿量 心率 皮肤颜色
注意事项
不要随意进行零点设置 不要随意进行零点设置 手术操作应轻柔，减少手术出血， 手术操作应轻柔，减少手术出血，手术 全部做完后再全身肝素化 静脉输液速度不能过快 不能过快， 静脉输液速度不能过快，防止心衰 右颈外静脉插管深度要适中 深度要适中， 右颈外静脉插管深度要适中，在电脑上 能看到中心静脉压即可 本实验操作观察指标多， 本实验操作观察指标多，要分工协作好
家兔失血性休克和抢救专家讲座
三低: CVP, CO, BP↓ 一高: TPR ↑
家兔失血性休克和抢救专家讲座
第5页
休克发展过程和发病机制
以失血性休克为例，按照休克发展过程分为三期： Ⅰ期： 休克代偿期 Ⅱ期： 休克进展期 Ⅲ期： 休克难治期
家兔失血性休克和抢救专家讲座
第6页
一、休克代偿期
微循环改变
家兔失血性休克和抢救专家讲座
家兔失血性休克和抢救专家讲座
第17页
松开股动脉上动脉夹，快速放血，在15min 内使平均动脉血压（MAP）降至 40mmHg，经过调整放血量，维持MAP 于40 mmHg 15~20min 。用500ml烧 杯盛所放血液，烧杯中预先加入肝素 2mg/kg。统计失血期间动物各项观察指 标改变 将所放出血液用50ml注射器从静脉缓缓回 输，输血完成后15min ，统计各项指标改 变。
家兔失血性休克和抢救专家讲座
第18页
【试验结果】
观察指标
正常
普通情况
血压
呼吸
尿量
肠系膜微循环 （管径、流速、数目） 家兔失血性休克和抢救专家讲座
放血后
输血后
第19页
【结果分析】
呼吸
血压 （mmH
g）
尿量
放血前 （参考 35----60
值）
90---130
正常
•早
期
加
深
加
放血后
紧，
•降
晚 35---45
家兔失血性休克和抢救专家讲座
第3页
休克病因和分类
一、休克病因
失血与失液 hemorrhagic shock
创伤 traumatic shock 过敏 anaphylactic shock
家兔失血性休克及其抢救
家兔失血性休克及其抢救张丽丹（浙江中医药大学2010级口腔医学二班1组，20101160202）摘要【目的】：学会复制家兔失血性休克的动物模型；了解失血性休克的抢救，并探讨失血性休克的发病机制及急救治疗的效果。
【方法】采用人为地从动脉抽取血液的方法来复制家兔失血性休克的模型，将抽出的血液从静脉输回家兔的方法进行急救。
【结果】短时间内的少量的失血是可恢复的，大量失血是不可恢复的，自身回输血液可使家兔的失血性休克恢复。
【结论】短时间少量失血机体是处于代偿期的，较长时间的大量失血机体已处于失代偿期，而该种休克通过输血、输液是可以恢复的。
关键词失血性休克；静脉输血；代偿期；失代偿期引言休克是多种原因引起的急性循环障碍，使全身组织血液灌流量严重不足，导致细胞损伤，各重要生命器官发生严重障碍的全身性病理过程。
[1]失血性休克后大量输液与自身血液的输血，可以改善微循环，使血压快速恢复正常值。
1．材料和方法1.1实验材料1.1.1 实验动物：家兔1.1.2实验仪器：家兔手术台、常用手术器械一套、止血钳、眼科剪、支架、动脉插管、动脉夹、血压换能器、RM6240生物信号采集处理系统、照明灯、纱布、丝线、注射器1.1.3实验药品：生理盐水、氨基甲酸乙酯、肝素。
1.2实验方法1.2.1麻醉手术家兔称重，用5ml/kg氨基甲酸乙酯麻醉家兔，固定家兔，剪去颈部被毛，切开颈部皮肤5~7cm，钝性分离颈部肌肉、暴露颈部气管和血管神经鞘。
用玻璃分针分离2~3cm长两侧颈总动脉，各穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。
用玻璃分针分离2~3cm长右侧颈外静脉，穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。
1.2.2切开皮肤左手绷紧颈部皮肤，用粗剪刀紧贴皮肤，将手术部位及其周围的被毛剪去（不可用手提被毛，以免剪破皮肤）。
术前先用左手拇指和另外四指将颈部皮肤绷紧固定，右手持手术刀，沿颈部正中线切开皮肤，上起甲状软骨，下达胸骨上缘，长度约5-7cm。
实验 家兔失血性休克及其抢救 gyx
实验家兔失血性休克及其抢救【实验目的】1. 复制失血性休克的动物模型。
2. 观察失血性休克时机体的一般状态及呼吸、血压、心率、中心静脉压的变化及微循环改变，了解失血性休克的病理生理过程。
3.了解失血性休克的抢救原则和抢救方法。
【实验原理】休克是多种原因引起的，以机体急性微循环障碍为主要特征，并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。
失血性休克是临床上常见的急症，由于血容量减少，机体有效循环血量降低，从而使机体重要脏器血液灌流减少，而微血管的持续收缩与痉挛又加重了器官的缺血，使器官功能进一步障碍。
休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减（如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血）超过总血量的20%以上时，极易导致急性循环障碍，组织有效血液灌流量不足，即休克的发生。
根据休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（微循环缺血期或缺血性缺氧期）；休克期（微循环淤血期或淤血性缺氧期）；休克晚期（微循环衰竭期或DIC期）。
但依失血程度及快慢的不同，各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。
本实验采用颈总动脉放血方法，造成机体有效循环血量减少，复制失血性休克。
通过实验进一步了解失血性休克时心、肺、肾等器官的功能障碍，加深对失血性休克的认识。
由于微循环障碍是失血性休克的基础，治疗的主要措施就是改善微循环灌流，因此，实验中采用回输血液及输入生理盐水方法来改善微循环灌流状态，对失血性休克进行抢救。
【实验对象】家兔【实验学时】4学时【器械与药品】常规手术器械，气管插管，动脉套管，动脉夹，婴儿秤，兔固定台，5ml、20ml、50ml 注射器，输液装置，水检压计，二道生理记录仪，滤纸，烧杯，丝线，粗棉线。
20%乌拉坦，1%肝素，3.8%枸橼酸钠，生理盐水。
【步骤与方法】1. 麻醉和固定家兔称重后，自耳缘静脉注射20%乌拉坦（5ml/kg.bw）进行全身麻醉，动物仰卧固定，剪去手术部位被毛。
家兔的失血性休克与抢救
家兔失血性休克及抢救实验目的：1.学习哺乳类动物动脉血压的直接描述方法，观察神经和某些体液因素对微循环机能的影响。
2.复制几种类型休克的动物模型，并通过电视录像，观察休克发生发展过程中血压和微循环血流等的变化，加深对于”休克发病的关键不在于血压，而在于血流“的理论认识。
3.设计抢救方案，加深对休克防治原则及所用药物药理作用的理解，培养独立分析问题，解决问题的能力。
实验原理：1. 动脉血压是动脉血管内的血液对于单位面积血管管壁产生的压力。
影响动脉血压的因素有心脏每搏输出量、心率、外周阻力、主动脉与大动脉的顺应性以及循环血量和血管系统的比例。
2. 动脉血压是心血管系统活动的的反映，影响心血管系统的神经与体液因素有交感神经、迷走神经、交感缩血管神经、肾上腺素与去甲肾上腺素。
减压反射是神经调节主要方式，减压反射的构成为感受器：颈动脉窦与主动脉弓传入神经：减压神经与迷走神经神经中枢：延髓传出神经：交感神经与迷走神经效应器：心肌细胞膜上的受体。
而血管舒缩功能及神经体液调节异常将导致循环系统功能紊乱，引起血压改变，甚至导致休克的发生。
4.休克：各种强烈的致病因子作用于机体引起的急性循环衰竭，其特点是微循环障碍、重要器官灌流不足和细胞功能代谢障碍，由此引起的全身危重的病理过程。
5.休克的分期：一期:缺血性缺氧期二期:淤血性缺氧期三期:微循环衰竭期6.休克的防治原则：快速输血并且大量补液，快速扩充血容量。
在快速扩充血容量的基础上，选择性的运用血管活性药物。
实验对象：家兔（1.15kg）实验步骤：1.动物称重，麻醉，仰卧固定。
2.颈部手术操作：切开皮肤→分离组织与肌肉→分离一侧颈总动脉→全身肝素化→动脉插管→描记动脉血压3.分离颈外静脉，向颈外静脉输入生理盐水。
4.分离股动脉向心方向插管。
5.少量放血开放股动脉上动脉夹，自股动脉少量放血，当放血量达全身血量10%时夹闭股动脉，观察各指标15分钟。
6.大量放血放血量约为全身血量的25%，观察各指标15分钟。
家兔失血性休克及抢救
烦躁 不安
实验内容
一、术前准备 称重，麻醉，固定 手术野备皮：颈部，腹部，左侧腹股沟，剑突处 二、颈部手术 颈部正中切口，钝性分离皮下组织，分离气管（可以不插） 左侧颈总动脉插管记录血压，右侧颈外静脉插管建立输液通道 剑突处连张力换能器记录呼吸曲线 三、股部手术：股动脉插管 四、腹部手术：膀胱插管
休克分期
1. 休克早期：缺血性缺氧期 2. 休克进展期：淤血性缺氧期 3. 休克晚期：休克难治期
机制 交感-肾上腺髓质系统兴奋
儿茶酚胺↑
心率↑
腹腔内脏、皮 汗腺
心肌收缩力↑ 肤小血管收缩 分泌↑
外周阻力↑ 肾缺血 皮肤缺血
中枢神 经系统
兴奋
BP (–) 脉搏细速 脉压差↓
少尿 面色苍白 出冷汗 四肢冰冷
新实验操作1：
记录尿滴：膀胱插管
新实验操作2：
颈外静脉插管：建立输液通道
[观察指标] 实验结果
平均动脉压
（mmHg）
心率 呼吸 尿量 耳朵口唇 体温
(次/分) (次/分) （滴/分） 颜色
实验前 少量失血 大量失血 输血 输血后5分钟 输血后15分钟
少量失血(少于10%, 约10ml) 快速大量失血(20%-30%, BP30-40mmHg)，维持20分钟
பைடு நூலகம்
[实验注意]：
1. 动静脉插管是必须掌握的基本技术，是本 次实验的关键。插管不要堵塞，不能滑脱！ 固定要结实！
2. 耳缘静脉要保护好，多次注射
[思考]：
1. 休克模型是否复制成功？根据是什么？ 2.少量失血家兔是否发生休克？ 3.判断本实验组家兔处于哪一个期。为什么？
家兔失血性休克及抢救
[实验目的]：
1.复制家兔失血性休克的动物模型 2. 观察分析休克发生发展过程中家兔主要体 征和血压的变化
失血性休克及其抢救
失血性休克及其抢救失血性休克及其抢救【摘要】目的：复制兔失血性休克模型。
观察兔在失血性休克时的表现及循环变化，探讨失血性休克的发生机制及救治方法。
了解失血性休克抢救。
方法：第二章微机生物信号采集处理系统，第四章动物实验技术。
结果：少量放血时，家兔血压及呼吸下降，但是在短时间内回升；大量放血时（45ml），血压、呼吸下降较快且自我恢复能力降低；进行输血输液等治疗措施。
结论：少量失血，机体的自身代偿作用可以使血压恢复正常；失血过多，机体会发生失代偿作用；经输血输液等治疗后，血压可恢复基本正常。
因为（1）输液的速度太快。
（2）在输血或输液时进入了空气。
（3）可能是抢救太迟了，错过了抢救的最佳时间，我组抢救失败。
【关键词】休克；失血性休克；微循环; 抢救【实验材料和方法】：1材料:1.1对象：家兔；1.2实验试剂：氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水；1.3实验仪器：铁架台，婴儿秤，RM6240生物信号采集系统，手术剪1把，眼科剪1把，止血钳，镊子，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血压换能器，输液装置，照明灯，棉线若干，纱布；2方法：2.1 系统连接和参数设定血压换能器、呼吸换能器分别接生物信号采集处理系统1、2通道。
启动RM6240系统，在“实验”菜单中选择“影响尿液生成的因素”，1通道模式为血压，时间常数为直流。
滤波频率100Hz，灵敏度90mmHg。
2.2 麻醉手术家兔称重，按5ml/kg体重剂量于耳缘静脉缓慢注入200g/L氨基甲酸乙酯麻醉。
将麻醉的兔仰卧位固定在兔台上。
颈前部剪除被毛，切开颈部皮肤5~7cm，钝性分离肌肉组织。
用玻璃分针分离左侧颈总动脉，穿线备用。
在左颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住，并在动脉下面预先穿一细线备用。
用眼科剪在靠近动脉壁上剪一“V”字形切口，将动脉插管向心方向插入颈总动脉内，扎紧固定，打开动脉夹。
记录血压曲线。
再用玻璃分针分离右侧颈外静脉，行静脉插管术，静脉插管接树叶装置，输液瓶充灌一定量的生理盐水，调节输液量至5~10滴/min.然后将股动脉插管的导管连接已肝素化的50ml注射器，之后用玻璃分针在腹股沟韧带处分离股动脉，穿线备用。
家兔失血性休克及抢救
家兔失血性休克及抢救
安徽医科大学 病理生理学教研室
一.实验目的
•复制失血性休克的动物模， 分析休克发生机制。
烦躁
皮肤苍白 或花纹
少尿或 无尿
神态淡漠 或昏迷
脉压↓ 血压↓
四肢 湿冷
• 4.失血性休克的抢救 血液回输
三.实验材料
• 实验动物：家兔 • 实验材料：20%乌拉坦，肝素（500μ/ ml），
生理盐水，哺乳动物手术器材一套，BL-420 生物机能实验系统，输血输液装置，动、静脉 套管，1 m1、10 ml及50 ml注射器各1只，去 甲肾上腺素，654-2。
• 6. 休克模型复制： 打开连接颈动脉的三通开关，一次快速放血 于50 ml注射器内，边放血边观察血压的变 化，待血压降到40mmHg水平，并维持15-30 分钟，停止放血（记录失血量）。
• 7. 休克的抢救：
•对照组： 将放出的血自颈静脉全部快速输回，观察各指标变化。
•去甲肾上腺素组： (1)自颈静脉缓慢滴入去甲肾上腺素生理盐水25.0 ml
（含去甲肾上腺素1.0mg），20分钟内滴完， (2)将放出的血快速自颈静脉输回，观察各项指标。
•654-2组： (1)自颈静脉缓慢滴入654-2生理盐水25.0 ml
（含654-2 2.0mg），30分钟内滴完， (2) 将放出的血自颈静脉快速输回,观察各项指标。
五.实验结果
表1 放血及输血前后各项指标的变化
二.实验原理及相关知识
1.失血性休克(hemorrhagic shock) 由于大量失血失液所引起.见于外伤、溃
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
家兔失血性休克及抢救
（一）实验目的
1.观察休克发展过程中机体的变化。
2.掌握急性失血性休克模型复制方法。
3.分析讨论急性失血性休克发病机制。
（二）实验原理
抗休克治疗的原则：纠酸、扩容、应用血管活性药物防治细胞损伤。
实验中所采用的药物主要的作用是：
●山莨菪碱大剂量时可解除小血管痉挛增加组织血流灌注量，改善微循环。
●异丙肾上腺素主要作用有：①心输出量增强②血管舒张，外周阻力下降。
③使收缩
压升高，舒张压降低，从而使脉压差升高，但大剂量时会使血压下降明显。
在治疗休克的过程中，在补足血容量的基础上，异丙肾上腺素对中心静脉压高和心输出量低的休克有一定疗效。
●去甲肾上腺素属于α受体激动药，①主要作用有激动血管α1受体，收缩血管，使
小动脉、小静脉收缩。
②小剂量时兴奋心脏，使收缩压显著上升，舒张压上升，脉压差增大产生抗休克作用。
大剂量时，会产生缩血管作用，使收缩压、舒张压均升高，但脉压差会下降，引起组织灌流量减少。
●此外，生理盐水、中分子右旋糖酐、全血均用于扩充血容量。
可以逐一试加看动脉
升高情况比较扩容升压效果。
（三）实验材料
1.实验对象：家兔。
2.实验器材及药品
静脉输液装置一套，三通开关，50 ml、20 ml、10 ml注射器各一个，肝素（500μ/ ml），1％普鲁卡因，生理盐水，动物手术器械一套，呼吸血压描记装置，低分子右旋糖苷，20％乌拉坦溶液、台氏液、去甲肾上腺素、山莨菪碱（654-2）。
（四）实验方法
1.家兔称重后，以25％乌拉坦4ml/kg，经耳缘静脉注射。
麻醉后，将家兔仰卧背位固定于手术台上。
2.颈部手术：颈部剪毛，正中切口5～6cm，分离气管、左侧颈总动脉及右侧颈外静脉（表浅、色深，较粗，刺激时可见血管收缩变细）。
穿两线，备用。
3.股部手术：一侧股三角区剪毛，触及股动脉搏动，辨明股动脉走向，沿动脉走向做长约3～5cm切口，在股三角区即可见股动脉、股静脉和股神经，分离股动脉。
穿两线备用。
4.肠系膜微循环标本的制备（示教）：腹正中切口，沿左腹直肌旁作约6cm长的纵行切口，钝性分离。
在腹腔内可见淡粉红色、肠壁较饱满的盲肠，紧贴前腹壁在左下腹侧，用卵圆钳钳出盲肠游离端阑尾后，将阑尾末端上8～12cm处的回肠袢轻轻拉出腹外。
用止血钳夹住腹部切口，以防肠管外溢。
用温生理盐水纱布保护平铺固定。
将肠系膜放置在恒温微循环灌流盒内以38℃台氏液恒温灌流，并将兔系膜灌流盒固定于显微镜镜台上，在显微镜下观察肠系膜微循环。
（1）辨认微动脉（细，色浅）、微静脉（粗，色深）
（2）观察肠系膜血流速度、血流量及血管内径。
5.左侧颈总动脉向心端方向插管，电传感器相连，插管前将电传感器用注射器注满肝素，注意不要留有气泡。
描记血压。
6.右侧颈外静脉向心端方向插管，使导管与输液瓶相通，插管前注意将输液系统管内冲满液
体并排气，缓慢滴注生理盐水(5～10滴/分)，保持静脉通畅。
7.经股动脉向心端方向插入导管，备取血用。
8.全身血液肝素化，耳缘静脉注射肝素1ml/kg，每隔一小时注1ml维持给药。
9.描记正常指标
连接实验装置，记录上述正常指标。
（1）一般指标：皮肤粘膜颜色，一般状况。
（2）正好血压描记。
（3）肠系膜微循环指标观察。
10.复制失血性休克动物模型
（1）少量放血开放股动脉插管，用肝素化的烧杯收集流出血液，并使放血量达到全血量1/10（全血量按体重的8％或70ml/kg计算）后，夹闭动脉，观察记录同（二）。
（2）大量放血少量放血10分钟使血压稳定在低水平后，再开放股动脉上动脉夹，放血量约为1/5～1/4，放血时间为3～5min（切勿过快）使血压（平均动脉压）稳定在30～40mmHg （4.0～5.33kPa）（如果停止放血，血压回升，可在放血，如血压过低，则立即将放出血加压回输若干）即失血性休克状态。
观察记录同（二）。
（3）比较两次放血后，实验动物血压、微循环血流变化，观察时间30～40min。
11.自行设计抢救方案。
原则：纠酸、扩容、应用血管活性药物防治细胞损伤。
药物：1.5％葡萄糖生理盐水、去甲肾上腺素、山莨菪碱、中分子右旋糖酐、0.01％异丙肾上腺素1ml、全血（放出的血液经抗凝后全部回输）
表1 失血性休克发生过程中血压级微循化变化
（六）注意事项
1.颈总动脉位于气管食道沟内，结扎时应避开伴行的迷走神经。
2.暂时性阻断血流应使用动脉夹，忌用血管钳夹持血管。
3.血压换能器应处于家兔心脏同一水平。
4.各管道系统内应避免气泡存在。
5.生物信号处理仪上的各种旋钮、开关，切忌随意扳动；微机上显示的各种参数，亦忌随意切换更改。