家兔失血性休克及其实验性治疗

合集下载

家兔失血性休克及其抢救

家兔失血性休克及其抢救【实验目的】复试家兔失血性休克。

观察家兔在失血性休克时的表现及微循环变化，探讨失血性休克的发生机制。

了解失血性休克的抢救。

【摘要】目的：学习失血性休克动物模型的复制方法、观察休克各期的主要临床变化、了解其机制及通过药物及输液治疗，了解各种治疗的不同效果。

方法：家兔麻醉后，分离并进行左、右两侧颈总动脉、右侧颈外静脉插管，正确连接管道并用肝素冲洗，进入电脑程序，描记正常血压，快速放血，使血压维持60mmHg，血压稳定后，夹闭右颈总动脉，记录并观察血压变化。

待血压稳定后，再放血，使血压降至40mmHg并维持，在维持期间的20min内记录并观察血压变化。

结果：放血后，家兔血压下降，大量放血后血压明显下降，输血后血压急剧上升，并最终达到正常水平。

结论：家兔少量放血后，家兔血压下降，但通过代偿反应可以在短时间内使血压回复到正常时或稍低。

家兔大量放血后，家兔血压明显下降。

输血、输液后血压急剧上升，并最终达到正常水平。

【关键词】失血性休克、抢救、输液治疗。

【实验对象】健康家兔一只【实验器材和药品】1、仪器：家兔手术台、常用手术器械一套、止血钳、眼科剪、支架、动脉插管、动脉夹、血压换能器、RM6240生物信号采集处理系统、照明灯、纱布、丝线、注射器。

2、试剂：生理盐水、氨基甲酸乙酯、肝素。

【实验步骤】1、家兔称重，用5ml/kg氨基甲酸乙酯麻醉家兔，固定家兔，剪去颈部被毛，切开颈部皮肤5~7cm，钝性分离颈部肌肉、暴露颈部气管和血管神经鞘。

用玻璃分针分离2~3cm长两侧颈总动脉，各穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。

用玻璃分针分离2~3cm长右侧颈外静脉，穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。

2、右侧颈总动脉进行动脉插管：将分离出的右侧颈总动脉远心端用线结扎，近心端用动脉夹将动脉夹住。

在远心端结扎线下方用眼科剪在动脉上作一小“V”形切口，将动脉插管朝心脏方向插入动脉，确认插入动脉后用备用线将血管与插管结扎固定，再将结扎线固定于插管上，防止插管从血管中滑脱。

兔失血性休克实验报告

一、实验目的1. 熟悉家兔失血性休克的病理生理过程。

2. 掌握家兔失血性休克的实验操作方法。

3. 观察家兔失血性休克的治疗效果，分析不同治疗方法的优缺点。

二、实验原理休克是指机体在有效循环血量锐减的情况下，由于组织器官灌注不足而引起的一系列病理生理变化。

失血性休克是指由于失血导致血容量急剧减少，引起组织器官灌注不足，进而发生的一系列病理生理变化。

三、实验材料1. 实验动物：新西兰纯种白兔（体重2.0-2.5kg）3只。

2. 实验仪器：手术器械、注射器、动脉夹、血压计、生理盐水、肾上腺素、去甲肾上腺素、氯化钙、葡萄糖、乳酸林格氏液等。

3. 实验药品：20%乌拉坦、利多卡因注射液、0.9％氯化钠注射液、125U/ml肝素溶液、1％普鲁卡因，7.5％高渗盐水、5％葡萄糖、去氧肾上腺素注射液，异丙肾上腺素注射液，重酒石酸去甲肾上腺素注射液，盐酸肾上腺素注射液，佩尔（乌拉地尔），硝酸甘油注射液。

四、实验方法1. 实验分组：将3只家兔随机分为3组，每组1只。

2. 实验步骤：（1）麻醉：采用20%乌拉坦（5ml/kg体重）进行全身麻醉。

（2）手术：将家兔仰卧固定，常规消毒后，在颈部暴露颈动脉，用动脉夹阻断血流，然后切开皮肤，分离颈动脉，插入动脉导管，连接血压计。

（3）失血性休克诱导：采用快速失血法，即在2分钟内使家兔失血量达到总血量的30%。

（4）观察指标：观察家兔失血性休克发生后的临床表现，如心率、血压、呼吸、精神状态等。

（5）治疗：分别给予3组家兔不同的治疗方法：A组：给予生理盐水（5ml/kg体重）静脉滴注，作为对照组。

B组：给予肾上腺素（0.01mg/kg体重）静脉注射，作为治疗组。

C组：给予去甲肾上腺素（0.1mg/kg体重）静脉注射，作为治疗组。

（6）观察治疗效果：观察治疗前后家兔的临床表现，如心率、血压、呼吸、精神状态等。

五、实验结果1. 家兔失血性休克发生后的临床表现：家兔失血性休克发生时，表现为心率加快、血压下降、呼吸急促、精神萎靡等。

家兔失血性休克及其抢救实验报告

家兔失血性休克及其抢救实验报告
实验一：家兔失血性休克模型的建立
实验目的：本实验旨在建立家兔失血性休克模型，以便探究该病情的发生机制及抢救
措施。

实验材料和方法：本次实验材料均来自成年雄性家兔，共有15只，体质量均为2.5
kg左右，每只家兔体内取得150 ml鲜血，并以此构建失血休克模型，放置于恒温器中保
持恒温，监测家兔体温、血氧饱和度、心率等生理指标。

实验结果：按照实验设定，放血完毕后，家兔的体表温比刚开始实验时期降低了 1.2℃以上，血氧饱和度下降到80-90%以下，而心率却急剧上升到160-170次/分钟之外，家兔
还出现了瘙痒、抽搐、呕吐等典型症状，明显发现其已经进入失血性休克状态。

结论：本实验成功建立了家兔失血性休克模型，可供今后失血性休克研究及抢救策略
研究使用。

实验目的：本实验旨在考察用于家兔失血性休克的抢救策略的有效性，并找出最佳的
抢救方案。

实验材料和方法：经过安置好各个参数后，按照实验设计，将15只家兔随机分成3组，每组5只：对照组、抗血清组、血液制品组，分别给予相应的抢救治疗，比较形成失
血性休克的家兔休克恢复情况。

实验结果：经过1个小时的抢救，家兔失血性休克模型的生理指标有显著改善。

其中，血液制品组的体表温降幅最低，血氧饱和度下降最小，心率最低，可见血液制品组的抢救
措施最为有效。

结论：本次实验证实，在家兔失血性休克抢救中，最佳抢救方案应该采用血液制品抢救，并取得良好治疗效果。

家兔失血性休克及抢救实验报告

竭诚为您提供优质文档/双击可除家兔失血性休克及抢救实验报告篇一：休克实验报告家兔失血性休克及其抢救实验人员5人第2组班一、实验目的1.复制家兔失血性休克模型，观察少量失血和大量失血对家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的影响。

探讨其发生机制。

2.用颈外静脉输血和输液的方法抢救失血性休克，观察抢救过程中家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的变化。

二、实验材料和方法实验器械：兔手术台，常规手术器械，注射器，动脉夹，动脉插管，电刺激连线，血压换能器，三通管，铁架台，棉线，纱布实验仪器：电脑，Rm6240生物信号采集系统实验药品：20%氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水0.1ml/10g三、实验对象家兔1只由浙江中医药大学动物实验中心提供四、实验步骤1、仪器调试：首先打开电脑，选择medLab生物信号处理系统；从第1、2、3通道中选择1个通道，记录动脉血压(记录平均动脉血压、收缩压、舒张压和脉压)。

其次将血压换能器连接线与相应的通道相连，检查换能器是否正常,加肝素溶液排除空泡，先清零，血压0mmh2、家兔称重、麻醉和固定取家兔一只，称重：2.8Kg，用20%氨基甲酸乙酯以5ml/Kg （体重）,耳缘静脉缓慢注射麻醉,共注射14ml,至呼吸深而慢、反射迟钝（角膜反射、夹肢反射）为止。

把兔子以背位固定法固定。

3、麻醉起效后手术颈部手术——左颈总动脉、右颈外静脉、右颈总动脉插管（1）颈部备皮，作颈部，正中3～5cm切口，左右颈总动脉分离，穿线标记，备用。

（2）左颈总动脉插管术---测血压动脉插管及换能器肝素化，左颈总动脉远心端结扎，近心端动脉夹夹闭，动脉前壁倒“V”切口动脉插管插入，结扎固定。

放开动脉夹记录正常动脉血压(平均血压、脉压差、心率)。

（3）右颈外静脉插管术—输血输液排掉输液管中的空气。

右颈静脉近心端动脉夹夹闭，远心端结扎，静脉前壁倒“V”切口，输液管插入，固定。

缓慢输液，保持通畅。

（4）.右颈总动脉插管术——失血造模用肝素抗凝剂排掉50ml注射器（其中保留少许肝素液）和动脉插管中空气，右颈总动脉远心端结扎，近心端动脉夹夹闭，动脉前壁倒“V”切口动脉插管插入，结扎固定。

家兔失血性休克实验报告范文家兔失血性休克及抢救

家兔失血性休克实验报告范文家兔失血性休克及抢救实验报告实验题目：家兔失血性休克模型的制作及治疗实验目的：制作家兔失血性休克模型，观察家兔血压、心率、呼吸和微循环的变化，进一步理解休克发生的病理生理机制，并了解失血性休克的治疗措施实验对象：家兔，体重1.92kg实验器材与药品：1、器材：兔用手术器械一套、兔手术台、静脉输液装置、动脉和静脉插管各一、三通管、注射器（20,5,1ml）、显微镜、手术线、纱布2、药品：20%乌拉坦、1%肝素、去甲肾上腺素、生理盐水实验步骤：1、抓取家兔并称重，取20%乌拉坦9.6ml经耳缘静脉缓慢推注2、待家兔四肢张力降低，无抵抗，角膜反射消失后，在兔手术台进行牢靠固定并备皮，备皮部位：颈部与腹部3、做颈部正中切口5cm，分层剪开，分离右侧颈外静脉和左侧颈总动脉，小心游离血管3-4cm，在血管的两端穿线备用4、经耳缘静脉注入1%肝素2ml抗凝5、颈外静脉插管：先夹闭近心端，再结扎远心端，用眼科剪向近心端作V形切口，向近心端插管3-4cm,NS维持，5-10滴/min6、颈总动脉插管：先结扎远心端，再夹闭近心端，用眼科剪向近心端作V形切口，向近心端插管3-4cm7、腹部正中切口6-8cm，拉出一段肠系膜（不取盲肠肠系膜），固定于显微镜下观察微循环8稳定5min,记录此状态下BP、HR、R、微循环；然后静脉推注NEO.Iml，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录9、颈总动脉放血10%（约13ml）,稳定约5min,观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录；继续放血至25%（约35ml），稳定约5min，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录；然后静脉推注NEO.Iml，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录10、NE0.25ml，用NS稀释至20ml，静脉滴注，并全血回输，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录实验结果:状态r、参数BP（mmHg）HR（次/min）R（次/min）微循环变化正常状态106190血流量及流速正常推注NE0.1ml11723254血管收缩，血流加速放血10%9222056血流量及流速变化不明显放血25%4617046血管收缩，血流量减少推注NE0.1ml56176血管进一步收缩，流速加快，流量减少全血回输6015844血管舒张，开始充盈分析讨论:正常状态下，推注NEO.Iml后，与心脏的（31受体结合，使心肌收缩力增强，心率加快，血压升高；与肠系膜血管a受体结合，使肠系膜血管收缩，血流速度加快。

家兔失血性休克及抢救

家兔失血性休克及抢救（一）实验目的1.观察休克发展过程中机体的变化。

2.掌握急性失血性休克模型复制方法。

3.分析讨论急性失血性休克发病机制。

（二）实验原理抗休克治疗的原则：纠酸、扩容、应用血管活性药物防治细胞损伤。

实验中所采用的药物主要的作用是：●山莨菪碱大剂量时可解除小血管痉挛增加组织血流灌注量，改善微循环。

●异丙肾上腺素主要作用有：①心输出量增强②血管舒张，外周阻力下降。

③使收缩压升高，舒张压降低，从而使脉压差升高，但大剂量时会使血压下降明显。

在治疗休克的过程中，在补足血容量的基础上，异丙肾上腺素对中心静脉压高和心输出量低的休克有一定疗效。

●去甲肾上腺素属于α受体激动药，①主要作用有激动血管α1受体，收缩血管，使小动脉、小静脉收缩。

②小剂量时兴奋心脏，使收缩压显著上升，舒张压上升，脉压差增大产生抗休克作用。

大剂量时，会产生缩血管作用，使收缩压、舒张压均升高，但脉压差会下降，引起组织灌流量减少。

●此外，生理盐水、中分子右旋糖酐、全血均用于扩充血容量。

可以逐一试加看动脉升高情况比较扩容升压效果。

（三）实验材料1.实验对象：家兔。

2.实验器材及药品静脉输液装置一套，三通开关，50 ml、20 ml、10 ml注射器各一个，肝素（500μ/ ml），1％普鲁卡因，生理盐水，动物手术器械一套，呼吸血压描记装置，低分子右旋糖苷，20％乌拉坦溶液、台氏液、去甲肾上腺素、山莨菪碱（654-2）。

（四）实验方法1.家兔称重后，以25％乌拉坦4ml/kg，经耳缘静脉注射。

麻醉后，将家兔仰卧背位固定于手术台上。

2.颈部手术：颈部剪毛，正中切口5～6cm，分离气管、左侧颈总动脉及右侧颈外静脉（表浅、色深，较粗，刺激时可见血管收缩变细）。

穿两线，备用。

3.股部手术：一侧股三角区剪毛，触及股动脉搏动，辨明股动脉走向，沿动脉走向做长约3～5cm切口，在股三角区即可见股动脉、股静脉和股神经，分离股动脉。

穿两线备用。

4.肠系膜微循环标本的制备（示教）：腹正中切口，沿左腹直肌旁作约6cm长的纵行切口，钝性分离。

家兔失血性休克实验报告

家兔失血性休克实验报告病理生理实验报告一一家兔失血性休克——20__302280083 潘晴【实验目的】1、了解失血性休克动物模型的复制方法并复制失血性休克的动物模型；2、观察失血性休克时和抢救休克时动物的功能代谢变化及微循环改变；3、了解失血性休克的治疗,探讨失血性休克的发病机理及救治措施。

【实验原理】休克是多种原因引起的，以机体急性微循环障碍为主要特征，并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。

失血导致血容虽减少，是休克常见的病因。

休克的发生与否取决于失血虽和失血速度，当血H锐减超过总血虽的20加上时，极易导致急性循环障碍，组织有效血液灌流虽不足，即休克的发生。

根据休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期；休克期；休克晚期。

但依失血程度及快慢的不同，各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。

对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容以提高有效循环血虽、心排血虽，改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物，改善微循环状态。

【实验对象】家兔【实验器材】BL-420生物机能实验系统手术器械、输液装置、尿虽测定装置、虽筒、注射器、针头、 20蜓拉坦、1肝素、 1NA生理盐水。

【观察指标】动脉血压mmHg中心静脉压cmH2O呼吸频率、幅度尿虽 ml/10min【实验步骤】1、称重麻醉:;2、固定备皮：仰卧固定，颈部和腹部剪毛备皮；3、血管分离：颈部正中切口，分离右侧颈外 V和左侧颈总A，穿双线备用；4、荷包缝合：切口部位：下腹部耻骨联合上方3-5cm内，正中切口；5、肝素抗凝：排净空气，尽虽靠近远心端，回抽有血；了6、血管插管：结扎远心端，夹闭近心端，仅先后顺序不同；7、呼吸装置：胸腹部正中皮肤呼吸最明显处，穿单线固定，并连于张力传感器；8、第一次记录9、复制休克第二次记录10、注射NA 第三次记录11、静脉补液第四次记录【注意事项】1、麻醉深浅要适度，麻醉过浅，动物疼痛，可致神经性休克；过深则抑制呼吸。

家兔失血性休克及其实验性治疗-实验报告

家兔失血性休克及其实验性治疗——《医学机能实验学》实验报告作者：Aspirin实验日期：2013年12月18日院系：第一临床医学院专业：临床医学【实验题目】家兔失血性休克及其实验性治疗【实验目的】1.复制失血性休克的动物模型2.观察失血性休克时和抢救过程中动物的功能代谢变化及微循环改变3.了解失血性休克的抢救治疗方案【实验原理】休克是多种原因引起的，包括大出血、创伤、中毒、烧伤、窒息、感染、过敏、心脏泵功能衰竭等，以机体微循环功能紊乱为主要特征，并可导致多器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。

失血导致血容量减少，是休克常见的病因。

休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减，如外伤引起的出血、消化性溃疡出血、食管曲张静脉破裂、妇产科疾病所引起的出血等，超过总血量的25%~30%，超出机体代偿的能力，即可引起心排血量和平均动脉压下降而发生休克。

根据失血性休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（休克代偿期或微循环缺血性缺氧期）、休克中期（可逆性失代偿期或微循环瘀血性缺氧期）、休克晚期（不可逆性失代偿期或微循环衰竭期）。

但依失血程度及速度的不同，各期持续时间、机体的功能代谢变化及临床表现均有所不同。

对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容量，以提高有效循环血量、心排血量，改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物，改善微循环，必要是可予抗炎等治疗。

【材料与方法】1.实验动物家兔（体重2.0kg以上）2.器材与药品器材：兔手术台、婴儿秤、兔用器械1套、动脉导管、三通管、气管插管、体温计、注射器（1ml、10 ml 、50 ml）、输液装置、丝线（7#、1#）、纱布、生物信号采集与处理系统药品：25%乌拉坦溶液、肝素生理盐水、1%普鲁卡因3.方法与步骤①麻醉固定家兔称重后，25%乌拉坦溶液按4ml/kg剂量经耳缘静脉注射麻醉，仰卧位固定于兔手术台上，减去手术部位被毛。

实验五、失血性休克的观察与治疗

实验五失血性休克的观察与治疗
【实验目的】通过经总动脉放血复制失血性休克模型，观察肠系膜微循
环的变化情况，Βιβλιοθήκη 讨变化的机制及代偿的机理。【实验对象】家兔
【器材药品】BI-2000A微循环观察系统、手术器械、25%乌拉坦、
3.8%枸橼酸钠、生理盐水。
【实验方法】
1、实验准备
1）家兔称重，用25%乌拉坦经耳缘静脉注射麻醉，取仰卧位交叉固定，颈部、下腹部腹直肌旁剪毛。
【实验结果】
表1 放血前、后及补液后动脉血压及肠系膜微循环变化的比较
时间放血前放血后补液后
动脉血压线流
肠系膜微循环线流—粒线流—粒流粒流—粒线流—线流
【实验讨论与分析】
1、失血性休克家兔放血前、后及补液后血压及微循环变化的原因。 2、休克早期微循环变化及机制？ 3、休克早期机体的代偿意义及机制？ 4、失血性休克实验中有哪些注意事项？
2）做颈正中切口，钝性分离一侧颈总动脉及对侧颈外静脉，穿双线备用。
3）做腹直肌旁切口，长约4cm（靠近微循环灌流盒一侧），钝性分离肌层，用
止血钳暂时夹闭。
4）插管：行颈总动脉插管术，用于放血; 静脉插管用生理盐水排气，行颈外静脉插管术用于补液，5滴/分维持输液。
2、观察肠系膜微循环：打开腹腔，找出一段游离度较大的小肠肠襻置微循环灌流盒观察台上，显微镜下观察正常肠系膜微循环。 3、失血性休克模型的复制：颈总动脉放血，按照20ml/kg放血，观察放血后微循环的变化情况。 4、抢救：观察10min后，静脉输血或生理盐水，输液速度约100滴/分，观察微循环改变。 5、记录放血至输液后整个过程，肠系膜微循环的变化趋势。
珍惜每一天，从现在开始！

家兔失血性休克及其实验性治疗-实验报告

失血导致血容量减少，是休克常见的病因。

但依失血程度及速度的不同，各期持续时间、机体的功能代谢变化及临床表现均有所不同。

家兔失血性休克及救治实验设计 - 副本

家兔失血性休克及救治实验设计【实验目的】1、了解失血性休克动物模型的复制方法并复制失血性休克的动物模型；2、观察失血性休克发生前后家兔的血压、心率、呼吸频率等生理指标的变化；3、观察和了解休克发生、发展过程中，实验动物肠系膜微循环血液灌流的变化特点；4、讨论实验指标变化的原因及其病理生理学意义；5、了解失血性休克的治疗，探讨失血性休克的发病机理，根据该发病机理设计救治措施并实施，根据观察抢救后动物功能代谢变化、微循环改变及血气指标变化验证救治措施是否有效。

【实验原理】休克是多种原因引起的，以机体急性微循环障碍为主要特征，并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。

失血导致血容量减少，是休克常见的病因。

休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减（如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血）超过总血量的20%以上时，极易导致急性循环障碍，组织有效血液灌流量不足，即休克的发生。

根据休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（微循环缺血期或缺血性缺氧期）；休克期（微循环淤血期或淤血性缺氧期）；休克晚期（微循环衰竭期或弥散性血管内凝血期）。

但依失血程度及快慢的不同，各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。

对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容量，以提高有效循环血量、心排血量，改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物，改善微循环状态。

具体至本实验所用盐酸多巴胺而言，其主要激动α受体、β受体和多巴胺受体，中等剂量能增加心肌收缩力及心搏出量，收缩压升高而不易诱发心律失常。

值得注意的是，由于组织灌注减少，促使发生无氧代谢，导致血液中乳酸含量增高引发代谢性酸中毒，故本实验需要静脉注射NaHCO3以纠正代谢性酸中毒【实验对象】家兔，体重2.0～2.5kg。

【实验器材】PowerLab 10T 主机，曲臂显微镜，微循环生物信号处理系统，i-STAT血气分析仪，兔台，电子天平，酒精灯，石棉网，手术器械一套，动脉插管2个，钢针3枚，动脉夹2个，血气分析片3片，气管插管，静脉插管各一个，150ml烧杯2只，5ml、20ml、50ml注射器各3支。

家兔的失血性休克及其抢救

机能学实验报告家兔的失血性休克及其抢救摘要：【目的】：复制家兔失血性休克的动物模型；了解失血性休克的抢救，并探讨失血性休克的发病机制及急救治疗的效果。

【方法】：采用人为地从动脉抽取血液的方法来复制家兔失血性休克的模型，将抽出的血液从静脉输回家兔的方法进行急救。

【结果】：短时间内的少量的失血是可以恢复；大量失血是不可恢复的；自身回输血液可使家兔的失血性休克恢复。

【结论】：短时间少量失血机体是处于代偿期的，较长时间的大量失血机体已处于失代偿期，而该种休克通过输血、输液是可以恢复的。

关键词：失血性休克；代偿期；失代偿期引言：休克是多种原因引起的急性循环障碍，使全身组织血液灌流量严重不足，导致细胞损伤，各重要生命器官发生严重障碍的全身性病理过程。

失血导致血容量减少是休克常见的原因。

1、实验材料1.1实验动物：家兔；1.2实验试剂：氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水；1.3实验仪器：铁架台，婴儿秤，RM6240生物信号采集系统，手术剪1把，眼科剪1把，止血钳，镊子，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血压换能器，输液装置，照明灯，棉线若干，纱布；2、实验步骤2.1.系统连接和参数设定将血压换能器接生物信号采集系统2通道。

启动RM6240系统，关闭其他通道，2通道模式为血压，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度100ml/s；采样频率800Hz。

2.2. 麻醉手术家兔称重，以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入200g/L氨基甲酸乙酯麻醉。

将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头，行气管插管手术，左侧颈总动脉，右侧颈外静脉，股动脉。

输液瓶充满一定量的生理盐水，静脉插管接输液装置，调节输液量至5～10滴/min。

股动脉插管的导管连接已肝素化的50ml注射器。

2.3. 颈部手术2.3.1. 备皮：左手绷紧颈部皮肤，用粗剪刀紧贴皮肤，将手术部位及其周围的被毛剪去（不可用手提被毛，以免剪破皮肤）2.3.2. 切开皮肤：术前先用左手拇指和另外四指将颈部皮肤绷紧固定，右手持手术刀，沿颈部正中线切开皮肤，上起甲状软骨，下达胸骨上缘，长度约5-7cm。

讲稿-家兔失血性休克

家兔失血性休克一、实验目的：1、复制失血性休克的动物模型2、观察失血性休克时的动物表现3、探讨失血性休克的机理及救治方法。

二、实验对象：家兔三、实验方法：1、实验动物准备(1) 麻醉与固定取1只兔，称重，经耳缘静脉注射20％乌拉坦(5nll／kg)进行麻醉，将动物以仰卧位交叉固定于兔手术台上。

分别剪去颈部、下腹部正中及股部的被毛。

(2) 手术①颈部手术：做颈部正中切口，剪开筋膜，钝性分离肌肉、气管并穿线，在甲状软骨2～3个软骨环处作“上”形切口，插入气管插管并固定。

钝性分离左侧颈总动脉和右侧颈外静脉，分别置双线备用。

②下腹部手术：在耻骨联合上方作5 cm左右的纵行切口。

沿腹白线剪开，找出膀胱，将膀胱顶端向下翻，找出膀胱三角区(即输尿管进入膀胱的入口处)，沿此处向上钝性分离出双侧输尿管，分别置双线，结扎远心端，接近结扎线处用眼科剪以45。

角剪一小口，插入输尿管插管并结扎固定，左右侧操作相同。

③股部手术：于右侧股三角触到股动脉明显搏动处，作一垂直腹股沟韧带的纵行切口，在股神经和股静脉之间分离出股动脉(注意勿损伤周围的分枝)，并置双线备用。

(3) 肝素化经耳缘静脉注射1％肝素溶液(1 ml／kg)。

(4) 血管插管①右侧颈外静脉：提起近心端的线，于血管充盈后结扎远心端，靠近结扎线处剪一小口，将已排完空气并与测中心静脉压和输液的装置相连的静脉插管插入右侧颈外静脉内5～7 cm(可见液面随呼吸上下移动)，并结扎、固定，以5-10滴／分的速度维持输液，以利于测中心静脉压和进行输液。

②左侧颈总动脉：结扎远心端，近心端用动脉夹夹闭，在接近结扎线处向心端剪一小口，插入已排完空气并与微机相连的动脉插管，结扎、固定，以备测血压时使用。

③右侧股动脉：提起近心端的线，结扎远心端，在接近结扎线处的向心端剪一小口，将已充满肝素溶液并用动脉夹夹闭的股动脉插管插入股动脉内，结扎、固定，以备放血时使用。

2、仪器操作开机后启动计算机生物信号采集处理系统，在MedLab ql，依次选择“实验／常用生理学实验”“动脉血压记录”。

兔失血性休克及实验性治疗

【实验方法与步骤】
3.分离一侧股动脉，插入导管，以备放血之用。
4. 打开计算机，启动 BL-420F生物机能实验系统, 记录正常血压、呼吸、中心静脉压。
5. 复制休克模型：股动脉放血，血压下降到 40mmHg 时，停止放血，如血压代偿升高时，再次放血, 使血压稳定40 mmHg左右, 持续在10--20 min，然后记录上述各项指标。
通过扩血管和缩血管药物治疗休克后出现的不同效果，可以反过来证明，休克早期的主要发病机制微血管的痉挛和微循环的灌流不足，休克的改善主要不在于血压、而在于组织灌流。
【注意事项】
1. 注射麻醉剂时速度不可过快，以免引起窒息。麻醉深度要适宜。
2.手术过程中尽量减少出血。
【讨论】
大量放血使有效循环血量急剧减少，使心输出量减少，动脉血压降低，反射性的引起交感-肾上腺髓质系统强烈兴奋，儿茶酚胺大量释放，引起外周血管强烈收缩，特别是毛细血管前阻力明显增加，使组织器官微循环的灌流量急剧减少，导致休克发生。
P:181
兔失血性休克
【实验目的】
1. 学习复制兔失血性休克动物模型 2. 观察休克时血流动力学的变化 3. 观察扩血管药物和缩血管药物对休克的
影响，加深对休克发病机制的认识。
【实验原理】
颈总动脉放血使循环血量减少，当快速失血量超过总血量25%～30%时，有效循环血量急剧减少，使心输出量减少，动脉血压降低，反射性的引起交感-肾上腺髓质系统强烈兴奋，儿茶酚胺大量释放，引起外周血管强烈收缩，使组织器官微循环灌流量急剧减少，导致休克发生。
【实验方法与步骤】
1. 取成年家兔一只，称重， 20%乌拉坦 5ml/kg 耳缘静脉注射全身麻醉。将动物仰卧位固定。剪去颈部的被毛，擦净。