动物生理学实验 (2)
动物生理学实验设计
动物生理学实验设计引言：动物生理学实验是研究动物生理功能和机制的重要手段。
通过设计合理的实验方案，可以揭示动物身体各个系统的运作规律，深入理解生命的奥秘。
本文将从呼吸、循环和消化三个方面，设计一系列动物生理学实验，以探究动物的生理过程。
一、呼吸系统实验1. 实验目的：观察不同动物在不同环境条件下的呼吸变化，并探究呼吸与环境的关系。
2. 实验方法：选取鱼类、昆虫和哺乳动物为实验对象，将它们分别置于水中、低氧环境和正常环境下，测量它们的呼吸频率和呼吸深度。
3. 实验结果与讨论：不同动物在不同环境下的呼吸变化存在差异，鱼类在水中呼吸更为频繁，昆虫在低氧环境下呼吸更加困难。
这些结果表明动物的呼吸与其生活环境密切相关。
二、循环系统实验1. 实验目的：研究动物的心脏功能和血液循环过程，并探究身体活动对循环系统的影响。
2. 实验方法：选取青蛙和大鼠为实验对象，使用心电图和血压测量仪观察它们的心脏运动和血液压力变化，在运动前后进行对比分析。
3. 实验结果与讨论：实验结果显示，运动会导致心率和血压的升高，心脏的收缩力增强。
这说明运动对循环系统有促进作用，有利于保持心血管系统的健康。
三、消化系统实验1. 实验目的：研究动物的消化过程和消化酶的活性，探究食物对消化系统的影响。
2. 实验方法：选取小鼠为实验对象，分别给予其不同种类和含量的食物，观察其摄食量和消化器官的反应，并在不同时间段采集样本进行消化酶活性测定。
3. 实验结果与讨论：实验结果显示，不同食物对小鼠的摄食量和消化酶活性有不同的影响。
高蛋白饮食可以促进消化酶的分泌，高脂饮食会导致摄食量增加。
这些结果揭示了食物对消化系统的重要影响。
结论：通过以上实验设计，我们可以更深入地了解动物的呼吸、循环和消化等生理过程。
这些实验不仅可以为人类生理学研究提供参考，还有助于揭示动物适应环境的生存机制。
动物生理学实验的设计和探究将为人类提供更多关于生命奥秘的启示，推动科学的进步。
动物生理学实验思考题
实验二：坐骨神经标本的制作1、毁坏脑颅----单毁随。
保持静止，麻醉蟾蜍，减少痛苦。
2、脑颅+脊髓----双毁随。
排除中枢神经对腓肠肌的m影响。
3、完整的标本：坐骨神经脊柱骨+坐骨神经+腓肠肌+股骨头或胫腓骨头4、任氏液的作用：它包括钾离子，钙离子、钠离子，氯离子，碳酸氢根和磷酸二氢根等等。
维持其正常生理机能，维持细胞渗透压稳定，保持内环境稳态，相当于机体中的组织液。
5、注意事项：用锌铜弓刺激时神经干要悬空，切勿接触其他物体。
如果神经干结扎不好，通电断电时会引起腓肠肌收缩，需要重新结扎。
剥过皮的保本不可和皮肤，赃物接触6、如何保持机能正常：1、金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌2、保持湿润，常加任氏液，最好先泡一会.实验三四：骨骼肌单收缩和收缩特性1定义：阈强度或阈刺激，即产生动作电位所需的最小刺激强度，作为衡量组织兴奋性高低的指标。
强度小于阈值的刺激，称为阈下刺激；阈下刺激不能引起兴奋或动作电位，但并非对组织细胞不产生任何影响。
最适刺激强度有了阈刺激也就是刺激导致的电位变化已经达到了阈电位,这样就会有动作电位的产生,从而形成局部电位因为骨骼肌收缩是许多神经纤维共同作用的结果，当刺激在一定范围内增大时，兴奋的神经纤维增多，多支配的骨骼肌肌纤维也会随之增多，收缩增强活的神经肌肉组织具有兴奋性，能接受刺激发生兴奋反应。
标志单一细胞兴奋性大小的刺激指标一般常用阈值即强度阈值表示，阈值是指在刺激作用时间和强度－时间变化率固定不变的条件下，能引起组织细胞兴奋所需的最小刺激强度，达到这种强度的刺激称为阈刺激。
单一细胞的兴奋性是恒定的，但是不同细胞的兴奋性并不相同。
因此，对于多细胞的组织来说，在一定范围内，刺激与反应之间表现并非“全或无”的关系。
坐骨神经和腓肠肌是多细胞组织，当单个方波电刺激作用于坐骨神经或腓肠肌时，如果刺激强度太小，则不能引起肌肉收缩，只有当刺激强度达到阈值时，才能引起肌肉发生最微弱的收缩，这时引起的肌肉收缩称阈收缩（只有兴奋性高的肌纤维收缩）。
动物生理学实验报告
动物生理学实验报告动物生理学实验报告一、引言动物生理学是研究动物体内生理功能的科学，通过实验方法可以深入了解动物的生理特征和机制。
本实验旨在探究动物在不同环境条件下的生理反应，以及这些反应对其生存和适应能力的影响。
二、实验设计本实验采用小鼠作为实验对象，将其分为两组，分别置于不同环境条件下进行观察和记录。
第一组小鼠置于低温环境中，第二组小鼠置于高温环境中。
通过观察小鼠的体温变化、行为活动和食欲等指标，以及采集其血液样本进行生化指标分析，来研究不同环境条件对小鼠生理功能的影响。
三、实验结果与讨论1. 体温变化在低温环境中，第一组小鼠的体温明显下降，表现出寒冷的生理反应。
而在高温环境中，第二组小鼠的体温明显上升，表现出热应激的生理反应。
这说明小鼠能够通过调节体温来适应不同的环境条件。
2. 行为活动在低温环境中，第一组小鼠的活动减少，呈现出较为迟缓的行动。
而在高温环境中，第二组小鼠的活动增加，表现出较为活跃的行为。
这说明小鼠的行为活动受到环境温度的影响，其活动水平会随环境条件的改变而发生变化。
3. 食欲在低温环境中，第一组小鼠的食欲减退，摄食量明显下降。
而在高温环境中，第二组小鼠的食欲增加，摄食量明显增加。
这说明小鼠的食欲受到环境温度的影响，其摄食行为会随环境条件的改变而发生变化。
4. 生化指标分析通过对小鼠血液样本的生化指标分析，发现在低温环境中，第一组小鼠的代谢率明显下降，体内的能量消耗减少。
而在高温环境中，第二组小鼠的代谢率明显增加，体内的能量消耗增加。
这说明小鼠的代谢活性受到环境温度的影响，其代谢过程会随环境条件的改变而发生变化。
四、结论通过本实验的观察和分析，我们可以得出以下结论：1. 动物能够通过调节体温来适应不同的环境条件。
2. 动物的行为活动水平会随环境温度的改变而发生变化。
3. 动物的食欲会受到环境温度的影响，其摄食行为会随环境条件的改变而发生变化。
4. 动物的代谢活性会受到环境温度的影响，其代谢过程会随环境条件的改变而发生变化。
动物生理学实验报告
动物生理学实验报告专业班级：学号：姓名：同组人：试验日期：年代日室温：大气压：试验序号：一试验名称：动物生理学试验基础学问介绍一、试验目的把握生理学试验的基本办法和技术，了解是生理学试验设计的基本原则，培养科学的思维办法、实事求是的科学态度和严谨的学风，通过书写试验报告，提高分析、归纳问题及文字表达能力。
二、试验原理生理学是建立在试验和观看基础上的学科，生理学试验是生理学理论学问的依据与来源。
生理学试验办法普通可分为离体试验法和在体试验法两类。
在体试验法又可分为急性试验和慢性试验两种。
生理学试验仪器普通由刺激系统、探测系统、信号调整系统和记录系统四大部分组成。
三、主要仪器、试剂、材料及装置图1、手术器械：手术刀、手术剪、手术镊、眼科剪、眼科镊、毁髓针、止血钳、玻璃分针等2、生理仪器：生物信息采集系统、刺激器、示波器、传感器、肌槽、蛙心夹等3、试剂：任氏液、台氏液、乙酰胆碱、肾上腺素等四、试验步骤、现象及记录1、老师提诞生理学试验的要求2、讲解生理学的常规试验办法3、展示生理学仪器和器械，并容易讲解用途五、试验结果及数据处理六、试验研究及思量题解答1、生理学试验的重要性在于何地生理学试验有什么详细的要求和规章答：生理学试验的重要性在于学习生理学的试验办法及科学的思维办法，有助于提高同学的试验能力、分析能力、创新能力和科学素质。
生理学试验要求：试验前仔细预习试验指导，复习相关理论学问；试验中，仔细听讲，按要求举行各项试验操作，认真仔细求实的记录试验数据；试验后，收拾试验台面，处理试验废弃物和试验动物，检查试验设备及器械，仔细分析试验数据，撰写试验报告。
2、生理学试验报告的普通格式、内容和要求是什么答：格式与内容参照楚雄师院化生系化学与生命科学试验室试验报告的标准格式内容。
填写试验报告要求数据真切，不允许编造数据，仔细分析总坚固验中的问题。
3、举例5种常用手术器械的名称、持握办法和用途。
4、举例3种生理学试验常用仪器设备的性能和主要用途。
生理学实验报告-《坐骨神经-腓肠肌标本的制备》
实验二-坐骨神经标本—腓肠肌标本的制备一、实验目的：1.学习蛙类动物单毁髓与双毁髓的方法。
2.学习并掌握坐骨神经-腓肠肌标本及腓肠肌的制备方法。
3.了解电刺激的极性法则。
二、实验原理：1、牛蛙作为实验动物的优势：离体实验是动物生理学主要的实验方法之一。
两栖动物是冷血动物，其基本生理机能与温血动物近似，而其离体组织器官维持活性所需要的条件比较简单，因此它常被选为生理学实验提供离体组织或器官的实验动物。
蟾蜍或青蛙坐骨神经—腓肠肌在任氏液中可维持生理活性数小时，在其基础上还可进一步制作神经干标本、腓肠肌标本，可用于研究肌肉收缩的特性，神经和肌肉的兴奋性、传导性，刺激与反应的关系，神经肌肉接头活动等生理活动及相关机制，甚至还可以用于药物筛选如抗疲劳药物的模型。
其中牛蛙人工养殖成本低产出率高，相对蟾蜍要更安全。
因此，本次实验选择牛蛙作为实验对象。
2、锌铜弓刺激检测标本活性的原理：锌铜弓在溶液中沾湿以后，锌的表面电离出正离子，里面形成负离子；而铜的表面电离出负离子,里面形成正离子。
当用锌铜弓接触活组织时，电流便沿着锌一活组织→铜的方向流动而产生刺激效应。
所以锌相当于正极,面铜相当于负极发挥刺激作用；当断开时，则发生相反的效应。
锌的金属电势比铜低，形成一定的电势差（就相当于有电压），锌铜弓是把一根锌棒和一根铜棒一端焊在一起，另一段分开，则接触样本（例如神经干）时，会引起样本局部去极化，引发动作电位。
三、实验器材：牛蛙，常用手术器械（手术剪、手术镊、手术刀、金冠剪、眼科剪、眼科镊、毁髓针、玻璃分针)，蜡盘，蛙板（木质或硬泡沫塑料），玻璃板，固定针，锌铜弓，培养皿或不锈钢盘，污物缸，滴管，纱布，粗棉线，任氏液。
四、实验流程和步骤：1.牛蛙的双毁髓一手握住牛蛙，背部向上。
用拇指压住牛蛙的背部，食指按压其头部前端，使头端向下低垂；另一手持毁髓针，由两眼之间沿中线向后触划，当触及两耳中间的凹陷处（此处与两眼的连线成等边三角形）时，持针手即感觉针尖下陷，此处即是枕骨大孔的位置。
蟾蜍心脏实验2
蟾蜍心脏实验二1.蟾蜍心搏过程2.心室期外收缩与代偿间歇3.蟾蜍心脏的神经支配4.离体蟾蜍心脏灌流3.蟾蜍心脏的神经支配4.离体蟾蜍心脏灌流3蟾蜍心脏的神经支配1.了解蛙类心脏的神经支配。
2.观察迷走神经干对心脏活动的影响。
蛙和蟾蜍的心脏受迷走神经和心交感神经的双重支配。
它们的迷走神经和颈交感神经混合成一个神经干，称迷走交感神经干。
在正常情况下，迷走神经兴奋时，心脏搏动减弱减慢；交感神经兴奋时，心脏搏动增强加快。
由于迷走神经的兴奋性较高，因而低频低强度电刺激迷走交感干时，多产生迷走效应；高频高强度刺激时，易产生交感效应；中等频率和强度的刺激，往往表现为先迷走后交感的双重效应。
若在心脏处滴加阿托品，可封闭迷走神经对心脏的影响，而表现为单纯的交感效应。
材料实验动物：中华蟾蜍手术器材：解剖针、手术剪、眼科剪、圆头手术镊、蛙板、刺激输出线、刺激电极、张力换能器、蛙心夹、棉花、棉线、任氏液、滴管、1%阿托品。
实验仪器：BL420F/E+，张力换能器；铁架台观察项目1.开动仪器描记一段正常心搏曲线。
然后用低频低强度电刺激迷走交感神经干观察和记录心搏活动的变化。
之后用中等频率和强度的电刺激，观察和记录心搏活动的变化。
最后用高频高强度电刺激，观察和记录心搏活动的变化。
刺激方式为连续刺激、波宽10 ms。
2.在静脉窦和心房部位加阿托品溶液2-3 滴，5分钟后，再用原刺激强度刺激神经干。
观察并记录心搏活动的变化。
这时由于阿托品封闭迷走神经对心脏的作用，迷走效应不会出现，而表现单纯的交感效应。
注意事项刺激参数设置要合理神经周围的组织液需用棉球吸干，以防短路每次刺激的时间不宜过长，每次刺激要间隔3-5分钟，以防损伤神经 须常用任氏液湿润神经和心脏，以防组织干燥而失去生理机能交感神经和迷走神经的效应往往随季节、气温和动物个体而变化，在实验过程中灵活掌握结果对实验结果进行正确简明的表述1.2.离体蟾蜍心脏灌流4了解离体心脏灌流的方法观察钠、钾、钙离子浓度、肾上腺素、乙酰胆碱对离体蟾蜍心脏活动的影响并探讨各作用机制。
动物生理学总结(二)2024
动物生理学总结（二）引言概述：动物生理学是研究动物有机体如何通过各种生理过程维持生命和适应环境的学科。
本文将从五个大点进行阐述，包括呼吸系统、循环系统、消化系统、泌尿系统和神经系统。
通过深入了解这些生理学的方面，我们可以更好地理解动物的生理机制和适应能力。
正文：一、呼吸系统（Respiratory System）1. 呼吸器官的结构：如鼻腔、喉咙、气管和肺部等。
2. 气体交换过程：通过肺泡与毛细血管的气体交换。
3. 呼吸的调控：由呼吸中枢和化学感受器调节。
4. 不同动物的呼吸适应：如水生动物的鳃和肺、空气呼吸动物的气囊等。
5. 呼吸系统的疾病与保健：如哮喘、肺炎等疾病的治疗与预防。
二、循环系统（Circulatory System）1. 心血管器官的结构：包括心脏、血管和血液等。
2. 血液的组成与功能：血红蛋白、白细胞、血小板等。
3. 循环系统的运输作用：输送氧气、营养物质和代谢产物。
4. 血压调节与维持：通过自主神经系统调节。
5. 循环系统的疾病与保健：如心脏病、高血压等的预防和治疗。
三、消化系统（Digestive System）1. 消化器官的结构：包括口腔、食道、胃、小肠和大肠等。
2. 消化过程：包括机械消化和化学消化。
3. 营养物质的吸收和利用：通过肠壁上的微绒毛进行吸收。
4. 消化系统的调节：通过神经和激素的调节实现。
5. 消化系统的疾病与保健：如消化不良、胃溃疡等的治疗和饮食调理。
四、泌尿系统（Urinary System）1. 泌尿器官的结构：包括肾脏、输尿管、膀胱和尿道等。
2. 尿液的形成过程：包括肾小球滤过、肾小管重吸收和分泌等。
3. 水盐平衡的调节：通过肾脏调节体液中的水分和电解质。
4. 毒物排泄：通过尿液排除体内代谢产物和有毒物质。
5. 泌尿系统的疾病与保健：如肾炎、尿路感染等的预防和治疗。
五、神经系统（Nervous System）1. 神经元的结构与功能：包括突触传递和神经递质等。
《动物生理学》实验课件：实验二 红细胞比容、血红蛋白及渗透脆性测定
方法与步骤
沙里氏血红蛋白计测定 • 沙里氏比色法是用HCl使血红蛋白酸化形成棕色的高铁
血红蛋白，然后和标准比色板进行比色。 • 沙里血红蛋白计 主要由标准褐色玻璃比色箱和1只方形
刻度测定管组成。比色管两侧通常有两行刻度；一侧为 血红蛋白量的绝对值，以g·dl-1(每100 ml血液中所含血 红蛋白的克数)表示，从2～22 g；另一侧为血红蛋白相 对值，以%（即相当于正常平均值的百分数）来表示， 从10%～160%。为避免所使用的平均值不一致，因此 一般采用绝对值来表示。
血管，使血液精确到10 cm刻度处。 • 离心：将分血管以3000 r/min离心30 min，
取出分血管，读取红细胞柱的高度，该读 数的10倍即为红细胞比容（容积百分比）。
[注意事项] • 注血时应避免动作剧烈引起红细胞破裂。 • 温氏分血管内壁要充分干燥。血液进入毛
细管内的刻度读数要精确，血柱中不得有 气泡。
• 配制不同浓度的NaCl溶液时应力求准确、 无误。
三、血红蛋白含量的测定
• 目的 掌握用比色法测定动物的血红蛋白的含量。
• 原理 血红蛋白的颜色常与氧的结合量有关。当 用一定的氧化剂将其氧化时，可使其转变为稳定、 棕色的高铁血红蛋白，而且颜色与血红蛋白（或 高铁血红蛋白）的浓度成正比。可与标准色进行 对比，求出血红蛋白的浓度，即每升血液中含血 红蛋白克数（g·L-1）。
• 开始出现溶血现象的低渗溶液浓度，为该 血液红细胞的最小抵抗力；出现完全溶血 时的低渗溶液浓度，则为该血液红细胞的 最大抵抗力。
方法与步骤
1、溶液配制：取10个小试管，配制出10种不同浓 度的氯化钠低渗溶液（0.25%，0.3%，0.35%， 0.4%，0.45%，0.5%，0.55%，0.6%，0.65%， 0.9%）。
动物生理学实验_2
动物生理学实验1.1 反射弧分析 (1)1.2 去一侧小脑动物观察 (2)1.3 红细胞渗透脆性的测定 (4)2.1 蛙坐骨神经-腓肠肌标本制备 (6)2.2 刺激强度对肌肉收缩的影响 (12)2.3 神经干动作电位的测定 (17)3.1 呼吸运动的调节 (20)3.2 胸内压测定 (22)3.3 血压计的使用 (23)4.1 胃肠运动的观察 (25)4.2 小肠吸收与渗透压的关系 (27)4.3 心电图描记 (29)5 动物血压的测定 (31)1.1 反射弧分析a实验目标学会用蛙作反射弧分析实验；认真观察实验结果；根据实验结果分析脊蛙屈腿反射的反射弧组成以及反射弧的完整性与反射活动的关系；书写实验报告。
实验原理在中枢神经系统参与下，机体对刺激所产生的规律性反应称为反射。
反射活动的结构基础是反射弧，由感受器、传入神经、反射中枢、传出神经和效应器五个部分组成，其中任何一个环节受到破坏，反射活动均不能实现。
实验用品蛙或蟾蜍、蛙类解剖器材一套、铁支架和双凹夹、肌夹、小烧杯、培养皿、滤纸片、药用棉球、0.5%和1.0%H2SO4溶液等。
实验步骤和观察项目1.制备脊蛙用粗剪刀横向伸入口腔，在鼓膜后缘剪去颅脑部，用棉球压迫创面止血。
用肌夹将蛙下颌夹住，挂在铁支架上（实验图-1）。
2.检查右侧屈腿反射待蛙四肢松软后，用盛在培养皿中的0.5%H2SO4溶液刺激蛙右后肢足趾皮肤，观察有无屈腿反射，然后用小烧杯盛清水洗去足趾上的硫酸溶液。
3.剥去右后肢足趾皮肤在右后肢踝关节上方，将皮肤剪一环形切口，剥去切口以下的皮肤，重复步骤2，观察有无屈腿反射。
4.检查左侧屈腿反射用0.5%H2SO4溶液刺激左后肢足趾皮肤，观察有无屈腿反射。
5.剪断左腿坐骨神经在左后腿背面作一纵形皮肤切刀，用玻钩分开股二头肌和半膜肌，钩出坐骨神经并剪断，再用0.5%H2SO4溶液刺激该腿足趾皮肤，观察有无屈腿反射。
6.检查搔扒反射用1%H2SO4溶液浸泡的滤纸片贴在蛙胸腹部皮肤上，观察有无搔扒反射出现。
动物生理学实验报告
动物生理学实验报告动物生理学是研究动物体内各个系统的功能和相互关系的学科，通过一系列的实验和观察，我们可以更深入地了解动物的生理机制。
本报告将详细介绍一项关于哺乳动物呼吸系统的实验，以期能够增进对这一重要生理过程的认识。
实验目的：本次实验旨在探究哺乳动物的呼吸系统对不同环境条件的适应能力，进一步了解呼吸系统的结构与功能之间的关系。
实验设计与方法：我们选择了小鼠作为研究对象，通过对其呼吸频率、肺活量及氧气摄取量进行测量，来评估其对不同环境条件的适应能力。
实验分为两组：一组置于正常室温环境下，另一组则置于高温环境中。
实验结果与数据分析：实验结果显示，处于高温环境中的小鼠呼吸频率明显高于正常室温环境下的小鼠。
经过统计分析后发现，高温环境下小鼠的呼吸频率平均值为每分钟150次，而在正常室温下为每分钟100次。
此外，在高温环境下，小鼠的肺活量和氧气摄取量均有所增加。
经过对比分析，我们得出结论：高温环境会刺激小鼠的呼吸系统工作更加频繁，以增加肺活量和氧气摄取量，从而促进体内代谢的正常进行。
讨论与启示：通过这次实验，我们发现动物的呼吸系统具备一定的适应能力，能够对不同的环境条件做出相应调整。
当动物处于高温环境中，呼吸系统会加速呼吸频率，以增加氧气的供给量，进而满足增加的能量需求。
这一适应机制在动物保持正常生理功能上起着至关重要的作用。
然而，我们也要注意到，过高的温度会对动物的健康产生不利影响。
长时间处于高温环境中，动物会出现呼吸急促、体温升高甚至死亡的情况。
因此，在实际应用中，我们需要避免过度暴露于高温环境下，保持适宜的温度和湿度，以维持动物的生理平衡。
总结：本次实验通过对小鼠呼吸系统的观察与测量，探究了动物呼吸系统的适应能力。
结果表明，动物的呼吸系统可以根据环境条件的变化做出相应调整，以维持正常的生理功能。
然而，我们也需要注意环境因素对动物健康的影响，避免过度高温暴露对动物的不良影响。
通过这次实验，我们对于动物的呼吸系统有了更深入的了解，也间接了解到了生物体内部机制的复杂性。
动物生理学实验报告
动物生理学实验报告实验目的：本实验旨在通过对动物进行生理学实验，了解和研究动物的生理功能，探索动物机体活动、代谢和调节等方面的规律。
实验原理：1. 动物呼吸实验：通过观察动物的呼吸现象、测量呼吸频率和呼吸深度，研究动物的呼吸机制和呼吸功能。
2. 动物循环系统实验：通过观察动物的心跳、测量心率和血压，研究动物的循环系统结构和功能，并探索动物心脏和血管的调节机制。
3. 动物消化实验：通过观察动物的食物摄入、消化过程和排泄物形成，研究动物的消化系统和营养吸收机制。
实验步骤：1. 动物呼吸实验：选择小白鼠作为实验动物，将小白鼠放置在密闭的呼吸箱中，观察其呼吸现象，使用呼吸频率计和呼吸深度计测量呼吸频率和呼吸深度，并记录数据。
2. 动物循环系统实验：选择青蛙作为实验动物，将青蛙固定在实验台上，观察它的心跳，使用心率计测量心率，并使用血压计测量血压，并记录数据。
3. 动物消化实验：选择小鸡作为实验动物，观察小鸡的食物摄入过程，收集它们的排泄物，观察排泄物的形态和性状，并记录数据。
实验结果与分析：1. 动物呼吸实验结果显示，小白鼠的呼吸频率平均为30次/分钟，呼吸深度平均为1.5 cm。
这表明小白鼠的呼吸功能正常，呼吸频率和呼吸深度处于正常范围。
2. 动物循环系统实验结果显示，青蛙的心率平均为50次/分钟，血压平均为80/50 mmHg。
这表明青蛙的循环系统功能正常，心率和血压处于正常范围。
3. 动物消化实验结果显示，小鸡的食物摄入量为20克/天，排泄物为稀状，颜色为黄色，无异常气味。
这表明小鸡的消化系统功能正常，能够有效消化吸收食物，并排泄代谢产物。
结论：通过实验观察和测量，得出了小白鼠、青蛙和小鸡的呼吸功能、循环系统功能和消化功能正常的结论。
这些实验结果为动物的生理功能研究提供了重要的参考和依据，对于进一步深入了解和探索动物生理规律具有重要意义。
动物生理学实验课件(二) 蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备
附3 :蛙坐骨神经——腓肠肌标本的制备图解附4：蛙骨神经——腓肠肌标本的制备图解
五.实验应注意事项
1.本制备过程中尽可能避免损伤神经，不可用力牵拉或用金属器械钳 夹神经。
2.随时滴加任氏液保持神经湿润，并将暂时不用的标本置于任氏液中 备用。
实验二 蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备步骤图解
实验二 制备完成的蛙坐骨神经-腓肠肌标本
实验二 蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备
六.作业与思考
1.为什么制备过程中要避免用金属器械接触神经？ 2.兴奋是如何从神经传递到肌肉的？ 3.肌肉收缩是钙离子有什么作用？ 4.神经兴奋与肌肉收缩如何保证是一对一的关系？
注明：本课件的完成引用了各院校的资料和图片，谨此一 并致谢！
附1：实验二 蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备过程
附2：蛙坐骨神经——腓肠肌标本的制备图解
（4）检查标本的兴奋性：用经任氏液湿润的铜锌弓迅速接触坐骨神 经，如腓肠肌发生明显的收缩，表明标本的兴奋性良好，即可将标本 置于盛有干净任氏液的培养皿中待用。
（二）坐骨神经干标本制备
实验二 蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备
分离坐骨神经的方法及步骤与上述1-5项的(1)项同.当坐骨神经游 离至膝关节处后再向下继续剥离,在腓肠肌两侧肌沟内找到肌神经和 腓神经,分别分离二支神经直至足趾,用线分别结扎(棉线留10厘米长, 以便提拿标本),在结扎的远端剪断.注意胫腓二支在绕过膝关节时,其 上覆有肌腱和筋膜,分别时慎勿剪断或损伤神经.标本置任氏液中浸泡 10分钟备用.
4.分离两腿: 沿正中线用剪刀将脊柱分为两半(勿损伤坐骨神经),并从 耻骨联合中央剪开两侧大腿.分离后两腿浸于盛有任氏液的烧杯内.
5.制作坐骨神经腓肠肌标本: 取一腿放置蛙板中央的玻璃板上,腹侧向 上用蛙钉固定之.
生理实验报告2(蛙心离体灌泳)
广州大学动物生理学实验报告开课学院及实验室：生科院生化楼6032019年3月18日学院生命科学学院年级、专业、班生技171姓名GDZ学号实验课程名称动物生理学实验成绩实验项目名称实验2：1.缺乏钙、钾等离子对青蛙离体心脏活动的影响2.离子对青蛙离体心脏活动的影响3.递质对青蛙离体心脏活动的影响指导老师[实验目的]1.学习制备离体蛙心脏及离体心脏灌流的方法2.观察Na+、K+、Ca2+种离子，肾上腺素、乙酰胆碱、阿托品对心脏活动的影响3.理解内环境理化因素相对恒定对维持心脏正常活动的重要性，对递质、受体、受体兴奋剂与阻断剂的概念有感性的认识[实验原理]1.两栖类正常起搏点是静脉窦。
正常节律性活动需要一个适宜的理化环境。
如果将离体蛙心用接近其血浆理化特性的任氏液灌流，保持心脏适宜的理化环境，在一定时间内心脏仍能产生节律性兴奋和收缩活动。
2.当改变灌流液的组成成分，这种节律性舒缩活动也随之发生改变，说明内环境理化因素的相对稳定是维持心脏正常节律性活动的必要条件。
因此，可以通过改变心脏灌流液的理化成分，观察心肌的生理特性。
3.心脏受自主神经的双重支配，交感神经兴奋时，其末梢释放去甲肾上腺素（结合β受体），使心肌收缩力加强，传导速度增快，心率加快；而迷走神经兴奋时，其末梢释放乙酰胆碱（结合M 受体），使心肌收缩力减弱，传导速度减慢，心率减慢。
4.阿托品是一种抗胆碱药，为M-受体阻断剂。
肾上腺素与去甲肾上腺素作用效果一致。
[实验对象]蛙任氏液、0.4%肝素-任氏液，0.65%NaCl、5%NaCl、2%CaCl、1%KCl、1：5000肾上腺素（NA）、21：30000乙酰胆碱（ACh）、阿托品[仪器与器械]器材：毁髓针、手术镊、直尖剪、金冠剪、眼科剪、玻璃分针、铁支架、蛙心夹、双凹夹、试管夹、滑轮仪器：生物信号采集系统（含电脑）、张力换能器（10g）其他：细线、蛙板、烧杯（大中小3个）、滴管、蛙心插管[实验方法与步骤]1离体蛙心标本制备1.1取蛙，破坏脑和脊髓，暴露心脏1.2穿线结扎1.3斯氏蛙心插管，剪除多余，离体心脏2连接实验装置3进行实验项目3.0记录心脏在仅有任氏液时的收缩曲线，观察心率及收缩幅度，作为正常对照。
最新生理学实验报告2蛙腓肠肌与刺激频率、强度的关系.
生理学实验报告2蛙腓肠肌与刺激频率、强度的关系.生理学实验报告实验内容：一、蛙的坐骨神经-腓肠肌标本的制备二、骨骼肌收缩的实验课程名称：动物生理学实验指导老师：实验人：院系专业：学号：2010年10月20日实验内容一蛙的坐骨神经-腓肠肌标本的制备（4-1）【实验目的】1、学习蛙类动物单毁髓与双毁髓的方法。
2、学习并掌握蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。
【实验原理】蛙类的一些基本生命活动和生理功能与恒温动物相似，而其离体组织所需的生活条件比较简单，易于控制和掌握。
因此在实验中常用蟾蜍或青蛙的坐骨神经-腓肠肌标本来观察兴奋与兴奋性、刺激与肌肉收缩等基本生理现象和过程。
制备坐骨神经-腓肠肌标本室生理学实验中必须掌握的一项基本技能。
【实验器材】常用手术器械（包括粗剪刀、手术剪、手术镊、眼科剪、眼科镊、金属探针、玻璃分针）、固定针、锌铜弓、蜡盘、培养皿、废物缸、棉线、纱布、滴管、任氏液。
【实验对象】蛙【实验步骤】1、毁脑和脊髓取青蛙一只，用纱布包裹青蛙的四肢和躯干，露出头部。
左手握住青蛙，并用食指按压头部前端，拇指按压背部使头部前俯；右手找到青蛙枕骨大孔所在位置。
将探针由凹陷处垂直刺入，刺破皮肤即进入枕骨大孔，这时将探针由枕骨大孔转向头方，向前探入颅腔内，然后向各个方向搅动探针，以捣毁脑组织。
如探针确实在颅腔内，可感觉出针在四面皆壁的腔内。
脑组织捣毁后，将探针退出，在由枕骨大孔刺入并转向尾方，与脊髓平行刺捻入椎管，以破坏脊髓。
椎管较细，故若已刺入椎管针则不能摆动。
脊髓被破坏时蛙腿后瞪挺直。
要确定脑和脊髓是否完全被破坏可检查蛙四肢肌肉紧张性是否完全消失。
2、剥制后肢标本自青蛙两侧腋部以下完全剥离皮肤（注意：可事先剪去尾椎末端及泄殖腔附近的皮肤，使剥离更容易）。
而后倒提蛙腿，使其头部向下，用手术间横向剪开腹部肌肉，看清脊神经后，用粗剪刀剪断脊柱（注意勿损伤坐骨神经）。
把标本浸泡于盛有任氏液的培养皿中。
将手及用过的剪刀、镊子等全部手术器械洗净。
动物生理学实验第二版教学设计
动物生理学实验第二版教学设计一、实验目的本实验的目的是让学生了解动物的生理结构和功能，掌握基本实验技能，培养科学实验精神和科学思维方式。
二、实验材料和仪器设备1. 实验材料•离体兔心脏、牛眼球、淋巴结等•生理盐水•氢氧化钠溶液•碘化钾溶液•碳酸氢钠溶液•无水乙醇•醋酸乙酯•营养液2. 仪器设备•显微镜•断面切割机•实验室旋转器•实验操作手套•注射器三、实验操作步骤1. 清洗及处理动物组织1.1 离体兔心脏：将走兔切除后放入冰盐水中清洗3次，然后去除心包，以生理盐水清洗心脏表层的杂质，最后将心脏横切成薄片。
1.2 牛眼球：新鲜取下眼球后，将结膜和脂肪组织去除，随后在生理盐水中清洗，然后切成均匀的薄片。
1.3 淋巴结：取自新鲜的肉类中，先用生理盐水清洗并去除其外层的组织，然后小心地将淋巴结切成小块。
2. 实验操作2.1 心脏刺激实验：取洗净的离体心脏，插入电极，加入心室起搏器内液体，分别记录心跳次数、心电图和心输出量的变化，分析其规律。
2.2 视力测定实验：取洗净的牛眼组织，将其置入显微镜下，通过调整拉杆和光源的位置，让学生观察不同光线强度下的牛眼球的看清度和色彩深浅，分析人眼感知光的规律。
2.3 淋巴结膀胱注射实验：在实验室旋转器上旋转动物组织，将清洗的淋巴组织注射到小动物的膀胱中，记录小动物发生的反应和淋巴组织位置，分析相关生理现象。
3. 实验结果及数据分析3.1 心脏刺激实验结果：根据心室内的压力记录，得到心输出量和心跳频率的变化曲线，学生通过分析曲线得出心脏受刺激的规律。
3.2 视力测定实验结果：通过观察和记录不同光线强度下眼球的明暗变化和色彩深浅，学生分析人眼对光强度和光色的感知规律。
3.3 淋巴结注射实验结果：根据小动物反应和淋巴组织注射位置的记录，学生分析了淋巴结在淋巴组织中的分布、淋巴组织对免疫的作用等生理现象。
4. 实验总结和思考本实验通过对离体兔心脏、牛眼球和淋巴结的处理和实验操作得到了丰富的生理数据，学生综合分析结果并进行讨论和总结，加深了对动物生理学的理解和掌握，同时也培养了学生的科学实验精神和科学思维方式。
二骨骼肌单收缩的分析
中国海洋大学实验报告2011 年9 月26 日姓名：张明月专业年级：09生科学号：0148课程：动物生理学实验题目：骨骼肌单收缩的分析一【目的要求】1 学习的实验方法。
2 学习并掌握坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。
3 学习肌肉实验的电刺激方法及肌肉收缩的记录方法。
4 观察刺激强度与肌肉收缩反应的关系。
二【实验原理】腓肠肌由许多肌纤维组成，刺激腓肠肌时，不同的刺激强度会引起肌肉的不同反应。
当刺激强度过小时，不引起肌肉发生收缩发应，此时的刺激为阈下刺激。
当全部肌纤维同时收缩时，则出现最大收缩发应。
这时，即使再增大刺激强度，肌肉收缩的力量也不再随之加大。
可以引起肌肉发生最大收缩发应的最小刺激强度为最适刺激强度。
三【实验材料】实验动物：蟾蜍实验器材及试剂：常用蛙类手术器械、蛙板、玻璃板、固定针、锌铜弓、培养皿、滴管、纱布、粗棉线、任氏液、计算机采集系统、张力传感器（30g）、刺激电极、支架、双凹夹、肌槽、瓷盘、橡皮泥、棉线。
四【实验步骤】1、损毁脑和脊髓：注意握蟾蜍方法，进针部位和损毁方法。
2、去除躯干上部及内脏。
3、剥皮。
4、分离两后肢：操作要小心，切勿剪断坐骨神经。
取一只后肢继续剥制标本，另一只放入任氏液中备用。
中国海洋大学实验报告2011 年9 月26 日姓名：张明月专业年级：09生科学号：0148课程：动物生理学实验题目：骨骼肌单收缩的分析5、制备坐骨神经-腓肠肌标本；游离坐骨神经；完成坐骨神经-小腿标本。
6、制备完整的坐骨神经-腓肠肌标本。
7、检验标本的兴奋性。
8、开启刺激，观察肌肉收缩反应。
如果肌肉无收缩反应，则适当增加刺激强度，其他刺激参数保持不变。
间隔少许时间，同法进行第二次刺激，直到出现最小收缩。
测量收缩幅度并记下刺激强度，此时的刺激强度为阈强度。
9、同法逐渐增强刺激强度，观察刺激强度与肌肉收缩反应的关系。
10、当刺激强度达到某一数值后，肌肉收缩幅度不再随刺激强度的增加而升高，记录3～4次同等高度的收缩曲线和刺激强度。
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3 实验对象：动物种类不限 4 方法与步骤：使用沙里氏血红蛋白计测定。 比色法是用HCl使血红蛋白酸化形成粽色的高铁 血红蛋白，然后和标准比色板进行比色。 （1）血红蛋白计由标准比色箱和测定管组成。测定管 两侧有刻度，一侧为血红蛋白量的绝对值，以每100 mL血液中所含血红蛋白的克数表示；另一侧为相对 值，以％（即相当于正常平均值的百分数）来表示。
3 使用方法
3.1 设置：标准配置，恢复出厂时的配置。
3.2 新建：选择实验项目，填写实验信息，进入实验窗口， 开始实验。
3.3 采样：记录实验数据。
3.4 控制面板参数调节： 通道功能调节；
刺激参数调节。
3.5 存储：文件保存位置：F：/，文件名：07动医3-呼吸 （左2）。 3.6 编辑： 打开原文件→选择→复制→打开“工具”下的“画 图”→处理文件→复制图片→存盘到F：/。
麻醉注意事项
（1）正确选用药品、用药剂量及给药途径。
（2）静脉麻醉时，先将总量的1/3快速注入，使动物迅速渡过
兴奋期，余下2/3 缓慢注射，并观察动物状态及反应，
以准确判断麻醉深度。 （3）需补充麻醉药时，一次补量不超过总量的1/5 。 （4）麻醉中应随时保持呼吸道通畅，注意保温。 （5）在手术操作复杂、创伤大、实验时间较长或麻醉深度不
实验三 影响血液凝固的因素 红细胞脆性的测定 血红蛋白的测定
影响血液凝固的因素
1 实验目的
以凝血时间为指标，了解影响凝血的因素，加深
对生理止血过程的理解。
2 实验原理
血液凝固是一个酶解激活过程，有多种凝血因子 参与。根据凝血过程起动时凝血因子来源不同，可将 凝血分为内源性激活途径和外源性激活途径。
掌握生理实验基本技能；
分析实验结果、写出规范的实验报告。
3 动物生理学实验的要求 实验前：做好实验准备工作。 实验中：学生领取器材，教师简要讲解实验 原理、关键步骤、实验要求等。 实验后：归还实验用品，动物尸体按指定位 置放置，轮流打扫清洁卫生；转
录、整理实验结果，及时上交实验
报告。
4 常用生理仪器的使用
（2）测定方法 ①血红蛋白吸管清洁：自来水→蒸馏水→无水乙醇。
②将0.1N盐酸加入测定管中至刻度“2”处。
③用血红蛋白吸管吸取20μ L血液，将血液吹入盐酸 中，并利用上层盐酸将吸管反复洗涤多次（避免起 泡）。 ④酸化10min后，逐滴加入蒸馏水，边加边混匀并与 标准比色板比较，至二者颜色相同为止。 ⑤读数即为每100mL血液中血红蛋白的克数。
3 实验结果 3.1 家兔Hb含量及RBC脆性测定：见表1。 表1
分组
家兔Hb含量及RBC脆性测定
RBC脆性测定（NaCl%） 最小抵抗 最大抵抗
Hb测定 含量（g/L）
实验组
对照组
123
0.60～0.55
0.40～0.35
3.2 不同因素对血液凝固时间的影响
表2
试管号
血液凝固及其影响因素
实验处理 凝血时间（秒）
渗透张力对维持细胞正常形态与功能的重要性。 2 实验原理 正常红细胞悬浮于等渗的血浆中，著置于高渗溶 液内，则红细胞会因失水而皱缩；反之，置于低渗溶
液内，则水进入红细胞，使红细胞膨胀。如环境渗透
压继续下降，红细胞会因继续膨胀而破裂，释放血红 蛋白，称之为溶血。红细胞膜对低渗溶液有一定的抵 抗力，这一特征称为红细胞的渗透脆性。
动脉导管、气管插管、蛙肌槽、刺激电极。
5.2 实验动物选择：选择健康动物。
5.3 动物的麻醉 麻醉前准备：P34。 （1）药物选择：熟悉药品特点，根据实验内容合 理选用麻醉药。 33%乙醇生理溶液：5～7 mL/kg，耳缘静脉注射。 （2）麻醉前核对药名，检查药品有无变质。 （3）狗、猫等呕吐中枢发达的动物在手术前应禁食 12 h，以减轻呕吐反应。 （4）需在全麻下进行手术的动物，可适当给予麻醉 辅 助药，如皮下注射吗啡镇静止痛，注射阿托品 减
②不完全溶血试管：液体下层有红细胞下沉，上层出
现透明淡红色，表明部分红细胞已经破裂，称为不 完全溶血。 ②完全溶血试管：液体完全变成透明红色，管底无红 细胞下沉。
5 实验结果 表2 家兔Hb含量及RBC脆性测定
Hb测定 （g/L） RBC脆性测定（NaCl%） 最小抵抗力 最大抵抗力Fra bibliotek分组实验组
对照组
【实验对象】蛙或蟾蜍
【实验药品】任氏液
【实验方法与步骤】
1.实验准备
（1）在体蛙心制备：取蛙一只，破坏脑、脊髓，仰卧 固定于蛙板上。左手持镊子提起胸骨后端的皮肤剪 一小口，然后向左、右两侧锁骨外侧剪开皮肤、肌 肉，剪断左右锁骨，使创口呈一倒三角形，充分暴 露心脏部位，并用眼科剪剪开心包膜，彻底暴露心 脏。
理想等情况下，可配合局部浸润麻醉或基础麻醉。
（6）实验中注意体液平衡，防止酸中毒及肺水肿的发生。
6 器械打结 7.1 活结：用于家兔保定。 7.2 死结：用于血管、神经结扎。 要领：钳压线，线压钳。
实验二
计算机生物信号采集处理系统
1 系统组成与工作原理
PCLAB-UE由硬件和软件两部分构成，硬件主要
低、或基本一致），最大抵抗„„，从操作过程方面说明 原因：„„。 4.3 家兔凝血时间测定结果表明，××处理能加快（抑制或不 凝）血液凝固，为什么？××管加CaCl2后凝固，为什么？ （从凝血机制分析） 5 参考文献
[1] 杨秀平. 动物生理学实验[M]. 北京：高等教育出版社，2004. 85-99. [2] 邹永新，郭予强. 我国鸭病毒性疾病的发生和流行概况[J].中国兽医杂 志，2002（6）：38-40.
实验四
心肌收缩的特点
【实验目的】 学习蟾蜍心脏活动描记的方法，观察心肌收缩的 特点。 【实验原理】 心肌的有效不应期特别长，几乎占据了整个收缩 期和舒张早期。在此期内任何刺激均不能引起心肌收 缩。因此心肌不会产生强直收缩，心脏总是有节律的 舒缩。在心脏舒张早期之后，给心肌一次有效刺激， 会引起心脏一次期前收缩，紧接着出现一次较长的间 歇——代偿间隙。
6.5
7.0
7.5
NaCl浓度 （%）
0.90 0.65 0.60 0.55 0.50 0.45 0.40 0.35 0.30 0.25
4.2 制备抗凝血：柠檬酸钠作抗凝剂。
4.3 加抗凝血：每只试管加1滴。
4.4 观察结果
①未溶血试管：液体下层有大量红细胞下沉，上层为
无色透明，表明无红细胞破裂。
录仪等，一个通道可记录一个信号。
计算机生物信号采集处理系统：PCLAB-UE计算
机生物信号采集处理系统。
5 动物生理实验基本操作技术
5.1 手术器械
刀：姿势有指压式、执笔式及反挑式等。
剪：外科剪、眼科剪、毛剪、骨剪、普通剪。
镊：用于剥离、剪断和缝合，眼科镊、外科镊。
钳：止血钳、持针钳。
其他：探针、玻璃分针、蛙板、锌铜弓、蛙心夹、
（2）观察心脏的结构
识别蛙心脏。自心脏腹面可观察到心室、
4.1 刺激系统
刺激器
刺激电极：普通电极、保护电极、锌铜弓
4.2 引导、换能系统
血压换能器：主要用于血压和其他通过液体传导信
号的换能。
张力换能器：主要用于肌肉收缩和其他位移信号的
换能。
4.3 放大系统（信号调节）
放大器：可将生物电信号放大1000倍以上。 4.4 显示、记录系统
生理记录仪：常用有二道、四道及八道生理记
3 实验对象：家兔 4 方法与步骤 4.1 家兔的麻醉、保定与手术 33%乙醇溶液，6mL/kg，耳缘静脉注射。
4.2 颈动脉采血
4.3 试管准备
4.4 记录凝血时间
5 实验结果
表1
试管号
血液凝固及其影响因素
实验处理 凝血时间（秒）
1
2 3 4 5 6 7
空白
液体石蜡4滴 棉花少许 冰水环境 肝素4滴 草酸钾4滴 肺组织浸液4滴 5号管加CaCl24滴
家兔Hb、RBC脆性测定及影响血凝的因素观察 1 实验相关信息及目的 2 材料 2.1 动物 2.2 主要药品： 2.3 主要仪器： 3 实验方法：简述或按《动物生理学实验》方法进行[1]。 4 结果 4.1 家兔Hb、RBC脆性测定：见表1。 4.2 家兔血凝时间的测定：见表2。 表1 家兔Hb含量及RBC脆性测定 Hb RBC脆性（NaCL%） （g/1000mL） 最小抵抗 最大抵抗 表2 不同因素对家兔血凝时间的影响 实验 血凝时间 处理因素 管号 （S）
3 实验对象：动物种类不限 4 方法与步骤 4.1 溶液配置 表2 不同浓度NaCl溶液配制
管 号 1 9.0 2 6.5 3 6.0 4 5.5 5 5.0 6 4.5 7 4.0 8 3.5 9 3.0 10 2.5
1%NaCl （mL） 蒸馏水 (mL)
1.0
3.5
4.0
4.5
5.0
5.5
6.0
完成对各种生物电信号（如心电、肌电、脑电）与
非电生物信号（如血压、张力、呼吸）进行调理、
放大，并对信号进行模/数（A/D）转换，使之进入 计算机。软件主要对已经数字化了的生物信号进行 显示、记录、存储、处理及打印输出，同时对系统 各部分进行控制，与操作者进行人机对话。
2 主界面 从上到下依次分为：标题栏、菜单栏、工具栏、 状态提示栏及采样窗、控制面板和数据窗等其他多个 相应的子窗口组成。
棉花 肝素 石蜡 冰水 柠 肺组织 柠+Ca++ 肝素+Ca++ 对照
分组
实验组 对照组
8-15
0.6～ 0.55
0.4～ 0.35
5 讨论 5.1 家兔Hb测定结果与对照比较，其值偏高，原因： 5.2 家兔RBC脆性测定结果与对照比较，其值，原因： 5.3 家兔血凝时间测定结果表明，时间长短，原因： 参考文献 [1] 陈杰，家畜生理学[M]，第四版，北京：中国家业出版社，23-34.