海带单倍体无性繁殖系育苗技术的研究-海洋学报
第三章 海洋生物的繁殖与发育

第三章海洋生物的繁殖与发育第一节海藻的繁殖与发育海带:褐藻门,褐藻纲,海带目,海带科,海带属昆布、海白菜㈠海带形态特征:成体——>孢子体藻体褐色,叶片似宽带,一般长2—4米,宽20--30。
叶边缘薄软,呈波浪褶,叶基部为短粒状叶柄与固着器(假根)相连。
孢子体幼龄期叶面平滑,小海带期叶片出现凹凸现象,大海带叶面平直宽厚。
孢子体柄、叶(表层、皮层、髓部)㈡海带的繁殖世代交替:单倍染色体的配子和双倍体染色体的孢子世代。
{配子:20天有性繁殖孢子:2年无性繁殖游孢子(单细胞)}无性繁殖:P3—1孢子囊---成熟→游孢子(单细胞、呈梨形、具两根鞭毛)---附着→胚孢子-→4小时后开始萌芽,6小时后萌发管(延长)有性生殖:游孢子---附着24小时→雌、雄配子体—>雌配子体:单细胞、呈球或梨形,颜色较深 --→雄配子体:多细胞,丝状体,5~8um,颜色较浅------42h-----→更明显----7天---→雌:11~22um卵束--------10天--→卵子雄:精子束精子---→合子-----单向横裂----→小孢子体---→小海带期---→成体㈢海带的发育:幼龄期:合子→10cm左右孢子体。
生长部细胞体积小,壁薄,核大,细胞内含有丰富的原生质,分生能力强,叶薄而平滑。
凹凸期:10cm孢子体,叶片两边形成纵向排列的两行凹凸,受光照和营养盐的影响。
强光,营养不足加剧。
脆嫩期:1m。
叶基生长细胞分裂旺盛,叶片加厚,平直,凹凸部和纵向从根部推向叶片基部。
5~6cm/天。
厚成期:叶片:宽大肥厚,基部扁圆,呈深褐色,叶片内Pr、多糖,干物质累积,需强光。
成熟和无性繁殖期:成熟孢子体:叶面形成孢子束群---成熟→游孢子(无性繁殖)--萌发--→配子体(有性繁殖)--受精--→合子第二节海洋贝类的繁殖与发育贝类:软体动物门瓣鳃纲:蛤、珍珠贝、扇贝、泥?头足纲:乌贼、章鱼腹足纲:鲍鱼贝类繁育的共同点:有性生殖、体外受精、雌雄异体,少数同体生殖细胞{ 雌:卵母细胞----→两次分裂产生一个成熟卵子雄:精母细胞----→四个……精子受精卵、螺旋形卵裂动物极:数量多,小分裂球,产生极体(全裂和不等分裂){ 植物极:数量少,大分裂球,产生原口④{ 动物极:小分裂球下包---→形成外胚层植物极:大细胞内卷----→形成内胚层、中胚层牡蛎繁殖:1.生殖特点:5~8月成熟生殖腺体侧左右各1个。
海带

食用禁忌
1、吃海带后不要马上喝茶(茶含鞣酸),也不要立刻吃酸涩的水果(酸涩水果含植物酸)。因为海带中含有 丰富的铁,以上两种食物都会阻碍体内铁的吸收。
2、患有甲亢的病人不要吃海带,因海带中碘的含量较丰富,会加重病情。
3、孕妇和乳母不要多吃海带。这是因为海带中的碘可随血液循环进入胎儿和婴儿体内,引起甲状腺功能障 碍。
(3)点状自烂病:这是一种常见病、突发病,很快的蔓延速度,能在3至5天内使海带严重腐烂,危害性极 大大。防治方法:使放养密度降低,疏散至水深流大的外区,及时切尖,提早分苗。控制养育水层,适时倒 置。
(4)泡烂病:叶片上出现大量的水泡,水泡破裂后,叶片上出现变绿的沉淀浮泥,最终叶片腐烂成大量空洞。 防治方法:在大雨来临之前的雨季,可将苗绳水层下降,防止淡水浸害。
海带
一种可食用藻
01 形态特征
03 地理分布 05 养殖技术
目录
02 生境 04 育苗技术 06 营养成分
07 功效作用
09 食用禁忌
目录
08 主要价值 010 推荐菜品
海带(Laminaria japonica),是多年生大型食用藻类。孢子体大型,褐色,扁平带状。分叶片、柄部和 固着器,固着器呈假根状。叶片为表皮、皮层和髓部组织所组成,叶片下部有孢子囊。具有黏液腔,可分泌滑性 物质。固着器树状分支,用以附着海底岩石,生长于水温较低的海中。
(5)卷曲病:在生长部周围发病,表现为两种病状:一是光面的叶缘部分卷曲扭转至中带部,另外一种病症 是生长点音移位出现“卡腰”。防治方法:避免强光照射,改善受光条件。
(6)柄粗叶卷病:基部租肿是其典型症状,根系分枝少。根部萎缩,形似鸡爪,呈现多种类型的叶面卷曲, 病变到一定程度形似花絮状,就是我们常说的灯笼海带。
海带孢子体不同阶段生长生理的对策

青岛农业大学硕士学位论文海带孢子体不同阶段生长生理的研究海带孢子体不同阶段生长生理的研究摘要海带是一种冷水性藻类,它是我国水产养殖业的重要养殖品种之一,也是我国水产养殖业最早实现人工育苗人工养殖的经济型藻类。
北到辽宁,南到福建,在整个东南沿海均有养殖。
海带养殖业在我国海带工作者的努力下取得了很大的成就,尤其是浮筏式养殖技术的建立和全人工育苗系统的完成,但是在育苗.养成过程中还存在一些瑕疵,如海带幼苗的病害预防工作、在连续阴雨天缺少自然光的条件下,人工光的选择等理论还不完善;在养成过程中,解决海带养殖户海带选种的盲目性及选择范围小的现状,也是迫切需要解决的问题。
本文主要围绕着海带养殖过程中室内育苗和海上养殖存在的一些问题展开研究的,用pH法测定海带生长速度,进而为海带育苗过程中的病害预防工作提供建议;不同光照、光强对海带幼孢子体及柄部生长的影响,可为人工光照育苗提供理论基础;找出夹苗位置与海带个体生产力的关系,可以扩大选种范围。
研究取得以下结果:海带幼孢子体周围的水体的pH的变化与换水时间符合一个对数函数的关系:y=0.61inx+7.815(R=0.958,P<0.01),其中Y为pH;X为换水后的小时数,两者呈显性相关,证明pH变化的主要因素是由于孢子体生长代谢引起的。
进而通过样方法得到:海带生物量的增加与pH的关系式为:y=1.376x+0.072(R=0.898,P<0.01),其中Y为水环境的pH变化,x为换水周期内样方叶片总面积的变化。
生物量的增加与pH的变化相关性为o.898,证明了pH法判断海带增长的可行性。
以海带孢子体苗为研究对象,分别用蓝:绿分别为3:1、2:2、1:3和白光为光源,在400Lx、600Lx、800Lx、1000Lx、1500Lx的光强条件下对孢子体及海带柄部的生长速度作研究,结果显示:对孢子体的生长,蓝光为主要光源的组合光生长的最快,海带孢子体长度是绿光为主要光源的组合光的2倍。
“三海”海带的繁育与养成技术要点

2019.1“三海”海带是以福建养殖海带群体(母本)与“荣福”海带(父本)杂交产生的子代为基础群,以藻体宽度和鲜重为选育指标,经多代群体选育而成的新品种(GS-01-003-2012),具有藻体宽、根系发达、中带部明显、体厚特性。
在福建霞浦、连江、莆田主要海带养殖区推广养殖,产量增产10%以上,2017年,“三海”海带新品种列入福建省种业创新与产业化工程项目主要推广品种。
现将“三海”海带新品种繁育与养成技术总结如下。
一、种海带1.种海带养殖环境种海带养殖区要求水流通畅、水深20~30米的外海区,水流速度不小于0.2米/秒,透明度变化小于3米。
2.种海带挑选每年5月底或6月初进行初次选种。
选择藻体叶片肥厚、柔韧、平展、中带部宽、色浓、有光泽、柄粗壮且没有形成孢子囊的海带个体。
清洗种海带表面附生的污泥及杂藻,暂养在养殖区。
6月中下旬或7月上旬,进行二次挑选,要求藻体生长良好、无病烂、附着物少、没有形成孢子囊的海带。
剪去藻体边缘波褶部和梢部以及丛生的假根团,洗去叶片的附着物,处理后的种海带移入育苗池内。
3.种海带室内培育在种海带培育室房顶外用竹帘,室内用布帘遮盖育苗池,保持光照强度1000~4000勒克斯。
每天定时用搅拌机搅动池水,保持流水16小时以上,保持培育水温8~10℃,日换水量1/4~1/3。
每天定期观察种海带的发育情况,如发现有腐烂或者病变的个体,应及时清理。
同时,要侧重观察种海带表面是否形成孢子囊,可根据孢子囊形成的速度和面积,及时调整光照和水温,进一步促进孢子囊的发育。
二、繁育1.种海带的处理将清洗后的种海带挂于阴凉通风处3~4小时,保持温度在12~18℃。
如种海带表面形成的孢子囊面积较大,可不采用阴干刺激的方式进行处理。
2.游孢子的采集将消毒后的育苗池放入低温海水,将种海带放到放散槽中(平均每个育苗帘大约需0.01株种海带)。
用捞网捞出水中的黏液,并不断用搅耙搅动。
水温保持在6~9℃,光强不超过2000勒克斯。
海带无性繁殖系育苗技术海带,育苗技术,实用技术

海带无性繁殖系育苗技术海带,育苗技术,实用技术我国目前普遍采用夏苗培育法进行海带苗培育,其具有两大缺点:①育苗时间长、成本高、风险大。
②由于育苗时混采、混育,易造成品种优良性状退化。
目前一些海带育苗场开始采用无性繁殖系育苗技术,即利用海带配子体克隆进行海带苗培育,育苗50~60天幼苗即可出库下海,不仅节约近一半育苗成本,并且可保持海带良种性状不退化,产量高。
现将育苗方法总结如下:一、无性繁殖系培养1.种海带准备挑选种海带的方法和程序同传统采苗方法基本相同,选择个体宽长、颜色深褐、富有光泽、健康的藻体,并且藻体上孢子囊无附着物、成熟度好。
用剪刀剪下约5厘米×5厘米的孢子囊,用消毒棉花蘸煮沸后冷却海水,将附着在上面的污物拭净,然后用消毒海水冲洗数次,阴干后,放入10℃低温消毒海水中,使其放散游孢子。
2.孢子附着游孢子数目达到2~5个/160×*时将海带取出,用纱布过滤孢子水去除黏液后,将玻片放入。
当孢子在玻片附着密度达到10个左右/160×时,取出玻片放入低温消毒海水中培养。
培养条件:水温10~15℃;光照强度1500~2500米烛;光照时间每日24小时光照。
培养液:煮沸冷却消毒海水,硝酸钠一氮:百万分之五,磷酸二氢钾一磷:百万分之一。
培养液需定时更换,一般每周换水一次。
3.无性繁殖系初培养当配子体生长至可以区分雌雄时,用毛细管将雌、雄细胞单独取出,分别放入试管内进行培养,培养方法同上。
随着雌雄配子体的快速生长,很快成为球形的丝状藻球。
由于藻球内部细胞不能接受光照,因此影响了生长速度,当藻球生长至直径1~2毫米,可用消毒玻片将其压碎,转移至250毫升三角烧瓶内,不久后每个丝状细胞段又可重新长成藻球,可再次压碎使其快速生长。
4.无性繁殖系扩大培养(1)培养容器:随着无性繁殖系重量增大,可将其转移至大的容器内培养。
由于玻璃器皿易碎且普遍价格较高,可用矿泉水桶替代,轻便、耐用、实惠且培养*********。
海带遗传育种及育苗生物技术历史及现状

海 带 遗 传 育 种 及 育 苗 生 物 技 术 历 史 及 现状
李 大鹏 芦 永 红 吴超 元
( 1中 国科 学 院 海 洋 研 究 所 山东 青 岛 2 67 ) 6 0 1 ( 2青 岛海 洋 大 学 山 东 青 岛 2 6 7 ) 6 0 1
肿 大 病 。我 国 是 一 个 拥 有 十 几 亿 人 口 的 大 国 . 当前 约 4
纺 织 、 染 、 药 和 食 品 等 工 业 用 途 很 广 。它 的 衍 生 物 印 医 也 是 重 要 的工 业 原 料 。 露 醇 的 用 途 也 很 广 泛 , 国 生 甘 我
产 的甘 露 醇 大 量 出 口 。 l 海 带 的遗 传 育 种
日本 是 海 藻 养 殖 的 强 国 , 对 海 带 养 殖 品 种 改 良 的 研 但
黑 石 礁 和 老 虎 滩 一 带 沿 海 进 行 海 底 繁 殖 试 验 , 1 4 到 93 年 , 收 获 3 0t 海 带 ( 6 共 7 鲜 约 O余 t 品 ) 同 年 , 干 。 日本
人 大 规 洋 四 郎 从 大 连 移 殖 海 带 到 烟 台 进 行 试 养 , 首 并
亿 多 人 口严 重 缺 碘 , 因此 , 带 养 殖 是 关 系 到 国 计 民 生 海
的 大事 。海 带 还 是 1 优 良的 蔬 菜 , 国 生 产 的 海 带 大 种 我 约 有 7 是 作 为 食 品 的 。我 国有 着 食 用 海 带 的 悠 久 历 5 史 , 在 10 早 5 0年 前 , 有 食 用 海 带 的 记 载 。 但 是 , 带 就 海 却 不 是 我 国 固 有 的产 物 , 是 日本 、 鲜 和 前 苏 联 远 东 它 朝
地 区 沿 海 的 原 产 植 物 , 源 于 白 令 海 及 鄂 霍 茨 克 海 的 发 寒 流 流域 。 1 2 年 海 带 被 首 次 引 进 到 我 国 大 连 的寺 儿 97
我国北方海带育苗现状及发展趋势

水、自然光培育的一种育苗方式,这种育苗方法较传统 的育 苗方法具有 以下特点 :一是配 子体 克隆栽培 时间
短,效率高且育苗工艺简单 ;二是时 0 0
的海带育苗主要是靠投石养殖、 自然采苗的方式进行 , 这样 的生产方式和方法远远满足不 了生产 的需求和人们
左 右 。采 用这 种 方法 育 苗具 有如 下 两个 优 点 :一是 相 比
3分钟;将清洗后的布帘晒干;在布帘两端穿入长约4 0 8
厘 米 的不 锈 钢 钢 筋各 1 并 固 定 ,混 纺 维尼 纶 附着 器 即 根
制作完成。正式采苗之前,将处理好的苗帘在育苗用海
水 中 浸泡 2 时 即 可 ,将 苗 帘 单层 平 面 式 固定 于 育 苗池 小
譬墨匦 量l
旦塑 塞垒
海带 自12年 被 引入 我 国 以来 , 已经逐 渐 适应 了我 97
种,制冷量大,用 电成本高,再者 由于是人工选种 ,劳 动强度大、成本也高 。
国的海况条件。据不完全统计 ,我国人工养殖的海带年
产 量 可 以达 N s 余 万 吨 ,年 出 口量 占世 界 总 量 的 5% o 0,
最 晚 可 持续 到 8 底 ,和 孢 子 体 育苗 相 比育 苗 时 问缩 短 月
烦而且育苗不稳定。随着生产的发展 以及我国科研工作 者的努力 ,夏苗培育法开始 出现并逐步应用到生产上 , 夏苗培育法的建立和推广大大推动 了我 国海带栽培业 的
发展 。
将近2 天,可 以大大地节省人力、物力、财力,具有劳 O 动强度小、成本低等优点;四是配子体克隆可以随时随 地育苗 ,不受季节 限制,不仅能够延长优 良品种的使用 寿命 ,还可 以使杂种优势得到直接利用 。
人工育苗在海水养殖海带中的应用研究

人工育苗在海水养殖海带中的应用研究引言海带是一种重要的海洋生物资源,其具有丰富的营养价值和经济价值。
然而,传统的海带养殖方式存在一些问题,如生产周期长、成本高以及受到自然环境的限制等。
为了解决这些问题,人工育苗技术在海水养殖海带中得到了广泛应用。
本文将探讨人工育苗技术在海水养殖海带中的应用研究,并讨论其对海带养殖业的发展所带来的影响。
一、人工育苗技术在海水养殖海带中的原理人工育苗技术是一种通过人工方法将海带的孢子或胚乳与特定的培养基相结合,促进孢子的萌发和胚乳的生长的技术。
该技术主要包括以下几个步骤:1. 孢子收集:人工收集海带的孢子,避免受到海水中的微生物和其他环境因素的影响。
2. 孢子后处理:通过对孢子进行酶解、过滤、洗涤等处理,去除不利于孢子发芽的物质。
3. 孢子培养:将经过后处理的孢子与适宜的培养基相结合,提供营养物质和适宜的生长环境,促进孢子的发芽和胚乳的生长。
4. 胚乳生长:在适宜的生长条件下,胚乳逐渐发育成为幼苗,并最终形成完整的海带。
二、人工育苗技术的优势人工育苗技术在海水养殖海带中具有许多优势,如下所述:1. 缩短生产周期:相比传统的海带养殖方法,人工育苗技术可以缩短生产周期,提高海带的产量。
采用该技术,从孢子到成熟的海带仅需数周,而传统方式可能需要数月甚至数年。
2. 增加产量:通过人工育苗技术,可以大量培育海带幼苗,提高种植密度和种植面积,从而增加海带的产量。
3. 提高品质:人工育苗技术可以控制培养基中的营养物质及生长环境,促进海带的健康生长,并提高其品质。
4. 降低成本:人工育苗技术的应用可以降低种苗采集和保存的成本,并且由于生产周期的缩短和产量的提高,可以降低养殖和经营成本。
三、人工育苗技术在海水养殖海带中的研究进展近年来,为了进一步提高人工育苗技术在海水养殖海带中的应用效果,研究人员进行了大量的研究工作。
1. 培养基优化:不同的海带品种和生长阶段对营养物质和生长环境的需求差异较大。
海水养殖海带苗的繁殖技术及方法研究

海水养殖海带苗的繁殖技术及方法研究随着人们对健康食品的需求不断增加,海带作为一种富含营养的海洋蔬菜备受关注。
然而,由于野生海带资源日益枯竭,人工养殖海带成为了满足市场需求的重要途径。
海水养殖海带的成功与否,很大程度上依赖于海带苗的繁殖技术和方法。
本文将重点探讨海水养殖海带苗的繁殖技术及方法。
1. 海带苗种选取海水养殖海带的第一步是选择适合的海带苗种。
常见的海带苗种包括裙带菜、长寿海带等。
选择苗种时应根据自身的地理环境、水质状况以及市场需求等因素进行综合考虑。
同时,还应重视苗种的抗逆性和抗病虫害性能,以增加养殖成功率和产量。
2. 海带苗的繁殖方法海带苗的繁殖方法主要包括自然孢子采集法、切割繁殖法和组织培养法等。
自然孢子采集法是采集天然海带植物的孢子,然后在适宜的环境条件下进行培养,使其成长为海带苗。
这种方法成本较低,但孢子的采集和培养过程相对复杂,需要一定的技术和经验支持。
切割繁殖法是将成熟的海带植株通过切割、剪枝等方式繁殖出多个新苗。
这种方法操作简便,适用于规模较小的养殖场。
然而,切割后的苗体容易受到病菌感染,因此在切割前应进行消毒处理。
组织培养法是将海带的细胞或组织放入含有适宜培养基和激素的培养器皿中,使其生长繁殖。
这种方法可以大大提高繁殖效率和苗木质量,但操作技术要求较高,成本也相对较高。
3. 海带苗的养殖技术海水养殖海带苗的关键在于提供适宜的生长环境和水质条件,以及良好的管理措施。
(1)生长环境和水质条件海带苗对水温、日照时间、盐度和pH值等环境因素有一定的要求。
一般来说,海带苗的适宜生长温度为10℃-20℃,日照时间应为8-10小时,盐度为30-35‰,pH值为7-8。
此外,水质应保持清洁,避免有害物质的积累。
(2)养殖管理措施海带苗的养殖需要定期进行修剪、换水和杂草清除等管理措施。
修剪可以促进海带茎叶的生长和分枝,保持植株的形态美观;换水有助于保持水质清洁,避免有害物质的积聚;清除杂草可以减少养殖场的竞争压力和病虫害的发生。
利用生物技术改良海水养殖海带苗的研究与应用

利用生物技术改良海水养殖海带苗的研究与应用海带是一种常见食用海藻,具有丰富的营养价值和药用功能。
海带养殖是海洋养殖业中的重要分支,但目前面临着苗种质量不稳定、抗逆性能差等问题。
为了提高海带养殖业的产量和质量,生物技术在改良海水养殖海带苗方面发挥着重要作用。
生物技术是利用生物学原理和生物工程技术,通过对生物体的基因工程、细胞工程、组织工程等手段进行改良和优化,以实现对生物体性状的改变。
在海带养殖中,利用生物技术改良海水养殖海带苗可以在提高苗种质量的同时,降低生产成本,减少环境污染,促进可持续发展。
一方面,利用生物技术可以改良海带苗的营养成分和品质。
海带富含多种维生素、矿物质和纤维素等营养物质,具有降低血脂、抗肿瘤、调节肠道功能等多种保健功效。
通过基因工程技术,可以调控海带中营养物质的合成和积累,提高其营养价值和品质。
例如,可以通过基因转导技术增加海带中的维生素C含量,提高其抗氧化性能;利用基因编辑技术降低海带中的碘含量,减少人类摄入碘过多而导致的健康问题。
另一方面,生物技术可以提高海带苗的抗逆性和生长速度。
海带的生长受到环境因素的严重影响,例如水温、盐度、光照等。
通过基因工程技术,可以调控海带的生长发育调控基因的表达,提高其抗逆性能,适应不同的环境条件。
同时,利用细胞工程和组织工程技术,可以制备高产、高效的海带苗种,并利用生物制剂和其他生物技术手段进行增殖和稳定。
除了改良海带苗的质量和性状,生物技术还可以解决海带养殖中的其他问题。
例如,生物技术可以开发新的海带品种,增加海带的种质资源,提高遗传多样性和产量。
生物技术还可以应用于海带养殖过程中的污染控制和病虫害防治。
通过利用生物制剂和基因工程技术,可以提高养殖系统的稳定性和环境友好性,减少对海洋生态系统的影响。
在实际应用中,利用生物技术改良海水养殖海带苗需要与养殖业界、科研机构和政府部门密切合作。
首先,需要收集和整理海带苗种的遗传资源,进行品种筛选和评价,为后续基因工程改良提供基础。
海带育苗和人工养殖技术

海带育苗和人工养殖技术嘿,朋友们!今天咱来聊聊海带育苗和人工养殖技术这档子事儿。
你说海带这玩意儿,那可真是大海的宝贝呀!想象一下,那一大片在海水中摇曳的海带,就像是绿色的丝带在跳舞。
要想得到这些舞动的“绿丝带”,育苗可是关键的第一步。
育苗就好比是孕育小生命,得精心呵护。
先得找个合适的地方,就像给小宝贝准备一个温暖舒适的家。
然后把海带的“种子”,也就是孢子,小心翼翼地放在里面。
这时候呀,就得时刻关注着它们,温度啦、光照啦、营养啦,都得恰到好处,不然这些小孢子可就不乐意生长啦。
等小孢子们慢慢长大,变成了小海带苗,就可以准备把它们送到大海的怀抱啦。
但这可不是随便一扔就行的哦,这就像是送孩子去上学,得选个好学校,找个好环境。
在人工养殖的时候,那可得给它们找个舒服的地方,海水要干净,水流也要合适。
然后呢,就像照顾小朋友一样照顾这些海带苗。
要定期看看它们长得好不好,有没有被什么欺负啦,有没有饿着啦。
要是发现有什么问题,得赶紧想办法解决呀。
海带们在海里慢慢长大,它们吸收着海水里的营养,享受着阳光的照耀。
就好像我们人一样,在合适的环境里才能茁壮成长。
养殖海带也不是一件容易的事儿呀!有时候会遇到一些调皮的小风浪来捣乱,有时候会有些小生物来抢它们的食物。
这时候就需要我们养殖的人发挥聪明才智啦,想办法保护好这些海带。
想想看,我们吃的那些美味的海带汤、凉拌海带,可都是从这些小小的海带苗一点点长大来的。
这中间凝聚了多少养殖人的心血和汗水呀!而且海带的好处可多啦,它富含各种营养,对我们的身体那是相当有好处。
所以说呀,好好养殖海带,那也是为了我们大家的健康着想呢。
总之呢,海带育苗和人工养殖技术可不简单,那是一门大学问。
需要我们有耐心、细心和爱心,才能让这些海带在大海里快乐地生长,为我们带来美味和健康。
大家说是不是呀?所以呀,我们可得好好珍惜每一口海带,因为那里面有着养殖人的辛勤付出呢!。
海水养殖海带苗的遗传改良与品种选育研究

海水养殖海带苗的遗传改良与品种选育研究近年来,随着人们对健康饮食的需求不断增长,海洋养殖业也得到了迅猛的发展。
海带作为一种营养丰富的海产品,在养殖业中扮演着重要的角色。
然而,为了满足不断增长的市场需求,并解决海带养殖过程中的问题,需要进行海水养殖海带苗的遗传改良与品种选育研究。
遗传改良是通过选择和培养具有优良遗传性状的个体,并进行合理的杂交与选育,以提高物种的种质优势和产量。
海水养殖海带苗的遗传改良是一项复杂的工作,需要从多个方面进行研究。
首先,我们需要对不同海带品种的遗传特性进行深入研究。
海带是一种复杂的多细胞藻类,具有很高的多样性和遗传变异。
通过对不同品种的海带进行DNA分析和比较,我们可以了解不同品种之间的遗传关系和变异程度。
这有助于选育出更适应养殖环境和更具经济价值的品种。
其次,我们需要关注海带的生长性状和抗逆性。
在海水养殖过程中,海带需要面对各种环境压力和病虫害威胁。
因此,我们需要选育出具有良好生长性状和较强抗逆性的海带品种。
通过对具有这些特性的个体进行杂交和培育,我们可以获得更具优势的后代。
除了遗传特性,海带的生长环境也是影响其生长和产量的重要因素。
养殖环境的温度、光照、水质等因素都会对海带的生长和养殖效果产生影响。
因此,通过对环境条件的研究和优化,可以提高海带的生长速度和产量。
同时,我们也需要研究不同品种在不同环境条件下的适应性,以选择最适合特定养殖区域的品种。
品种选育是海水养殖海带苗的关键环节之一。
通过对选育策略的制定和实施,可以提高海带的品质和产量。
首先,我们需要选取合适的亲本个体进行杂交。
亲本的选择应基于遗传特性、生长性状以及抗逆性等方面的考虑。
其次,通过人工授粉或自然繁殖,获得大量的杂交后代。
然后,对杂交后代进行筛选,选取具有优良特性的个体进行进一步培育和繁殖。
最终,通过多代选择和提高法则,逐步提高品种的优良性状,实现品种选育的目标。
综上所述,海水养殖海带苗的遗传改良与品种选育研究是提高海带养殖效益和质量的关键。
海带配子体采苗及育苗技术规程

海带配子体采苗及育苗技术规程海带是我国重要的海洋经济作物之一,其种植和养殖已经成为一项重要的产业。
而海带的繁育过程中,采苗和育苗技术起着至关重要的作用。
本文将详细介绍海带配子体采苗及育苗技术规程,以帮助读者更好地了解并应用于实践。
一、海带配子体采苗技术规程配子体采苗是海带育苗的第一步,其目的是选择优质的杂交种和控制育苗的基因型。
以下是配子体采苗的技术规程:1. 选种在配子体采苗过程中,首先需要选取具有良好性状的亲本进行杂交。
这些亲本应具有较高的产量、抗病性和适应性,并且能够适应当地的种植环境。
还需要根据杂交目的选择适合的亲本进行配对。
2. 配对在选好亲本之后,需要进行适当的配对使其杂交,并保证配对的效果。
配对时,可以利用垂直采样法或压胶痕法,将配子体从母体中分离出来,并与雄性配子结合,完成杂交。
要注意的是,配对时需要注意消毒和清洗工作,以防止杂交中的病菌感染。
3. 筛选杂交完成后,需要对配子进行筛选,选择出具有良好性状和适应力的杂交种。
这一步骤可以通过观察和记录杂交苗的生长情况,以及进行化学分析和遗传检测等方法来进行。
二、海带育苗技术规程海带育苗是海带种植的关键环节,其目的是提高海带的产量和质量。
以下是海带育苗的技术规程:1. 接种培养基的准备在海带育苗中,需要准备合适的培养基,以提供养分和水分供海带幼苗生长。
常用的培养基包括海藻培养基、液体培养基和固体培养基等。
这些培养基需要经过消毒,以保证育苗的质量和健康。
2. 海带的洗涤和消毒在进行海带育苗前,需要将海带进行洗涤和消毒处理,以去除附着在海带表面的杂质和细菌等。
洗涤和消毒的方法可以通过浸泡法和温水处理法等进行,具体方法可以根据实际情况选择。
3. 海带的培养和管理在海带的育苗过程中,需要注意培养和管理的技术要点。
这包括控制培养基的温度和光照条件,定期更换培养基,观察并记录海带幼苗的生长情况,及时进行适当的调整和处理等。
4. 海带的移栽和定植在海带幼苗生长到一定程度后,可以进行移栽和定植。
海水养殖海带的生物技术与基因改良研究

海水养殖海带的生物技术与基因改良研究海带(Laminaria)是一种常见的大型褐藻,被广泛用于海洋养殖业。
海带富含蛋白质、矿物质和多种生物活性物质,具有美容、减肥和抗癌等保健功效。
为了提高海带的产量和品质,科学家们进行了海带的生物技术和基因改良研究,以促进海洋养殖业的发展。
海带的繁殖方式通常包括孢子繁殖和无性繁殖。
传统养殖方式主要依靠自然繁殖,但其效率低且无法控制繁殖过程。
为了解决这个问题,科学家们开展了生物技术研究,探索利用组织培养和胚胎培养等技术实现大规模的无性繁殖。
组织培养技术是一种将海带的组织切割成小片并在营养培养基中培养的方法。
在适宜条件下,这些组织片可以生长为完整的海带植株。
这种方法可以大大提高海带的繁殖效率,并且可根据需求进行扩大规模。
另外,胚胎培养技术也被广泛应用于海带研究中。
通过将未成熟的海带配子放置在适宜培养基中,科学家们可以刺激其发育成完整的海带植株。
这种技术使得无性繁殖变得更加可控和高效。
除了无性繁殖,基因改良也是提高海带品质的重要途径之一。
通过引入特定基因或通过基因突变,科学家们可以改变海带的生长速度、抵抗力和生理特性。
例如,育种通过选择具有良好性状的个体进行交配,进而获得具有高产量和抗病性的新品种。
此外,基因工程技术也被应用于海带的基因改良。
科学家们可以将具有特定功能的基因导入海带细胞中,从而增加其抗虫、抗病等特性。
然而,需要注意的是,基因改良的海带在推广应用之前需要严格评估其对环境和人体的安全性和风险。
在海带的生物技术和基因改良研究中,一项重要的工作是研究海带生长的调控机制。
海带的生长受到许多因素的影响,包括光照、温度、盐度和营养物质等。
科学家们对这些因素进行了深入研究,以了解其对海带生长的影响,并提供相应的管理措施。
例如,通过调整光照和温度条件,可以促进海带的生长和发育。
此外,科学家们还研究了海带的养分需求,并通过优化养殖环境来提高海带的产量和品质。
尽管海带的生物技术和基因改良研究取得了一定的成功,但仍然存在许多挑战和问题。
海带“单倍体十号”cDNA文库构建及EST序列分析的开题报告

海带“单倍体十号”cDNA文库构建及EST序列分析的开题报告题目:海带“单倍体十号”cDNA文库构建及EST序列分析研究背景:海带是一种重要的海洋资源,广泛分布于全球各大洋洲、亚洲、非洲等海域。
它具有营养丰富、生长迅速、繁殖能力强、抗性能好等特点,是人类重要的食品来源和工业原料。
近年来,随着生物技术的发展和深入研究,越来越多的基因与代谢途径的研究被应用于海带的育种和栽培,如抗逆性状等重要性状。
然而,由于海带是一种水生植物,其遗传育种及基因表达等方面的研究往往受到限制。
因此,构建cDNA文库是进行基因功能研究的重要步骤之一,而EST (Expressed Sequence Tag)序列分析则是近年来研究生物体的基因功能和表达的一个重要手段。
研究目的:本文旨在通过构建海带“单倍体十号”cDNA文库,获得大量的EST序列,并对其进行分析,从而探索海带的基因表达及功能特性,为海带的遗传育种和基因工程研究提供数据支持。
研究方法:1. 海带材料的筛选与处理:采用“单倍体十号”海带为材料,进行材料处理、细胞壁消化和总RNA提取等步骤,获得高质量的RNA样品。
2. cDNA文库构建:采用SMART(Switching Mechanism at 5' end of RNA Transcript)技术,获得高质量的cDNA文库。
通过对cDNA文库进行PCR扩增、热变性中和和转化等技术,建立高质量的cDNA文库。
3. EST测序和分析:采用高通量测序方法,对建立的cDNA文库进行EST测序,得到大量的EST序列。
结合生物信息学分析软件,对所获得的EST序列进行注释和分析,包括基因功能、表达水平和调控途径等方面的研究。
研究意义:本文研究将对深入了解海带基因功能和表达水平,探索调节途径和代谢途径等方面有所帮助,同时也为海带遗传育种及基因工程研究提供数据支持。
此外,本研究也将为其他相关领域的研究提供借鉴和参考资料。
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第25卷第5期海洋学报Vol.25,N o.5 2003年9月ACTA OCEANOLOGICA SINICA September,2003海带单倍体无性繁殖系育苗技术的研究李大鹏1,吴超元1,刘晚昌2,戚克太2,夏俊壮2 (11中国科学院海洋研究所,山东青岛266071;21威海水产开发公司,山东威海264201)关键词:海带;单克隆无性繁殖系;育苗中图分类号:Q945.51文献标识码:A文章编号:0253-4193(2003)05-0141-061引言海带(Laminar ia j aponica)是一种经济褐藻,它的用途很广,在医药、食品、化工等方面都有广泛的应用.它是海洋生物中含碘量最高的一种,食用海带可以补碘,治疗甲状腺肿大病.我国是一个拥有十几亿人口的大国,当前约4亿多人口严重缺碘,因此海带养殖是关系到国计民生的大事.多年来在国内外人工养殖的藻类中,海带的产量一直居于首位.我国海带的年产量现已达30万t多干品[1],是海水养殖的支柱产业之一.养殖业的发展必须有充足、优质的苗源做保障,因此先进稳定的人工育苗技术至关重要.我国现在普遍采用的海带人工育苗技术创建于20世纪50年代,即/夏苗培育法0.这种方法是在6,7月间采孢子,室内低温(5~ 10e)度夏,到10月下旬左右,待自然海水水温降到适宜时(低于20e)幼苗出库进行海上养殖[2].该方法创立以来,为我国的海带养殖事业作出了巨大的贡献,但随着时代的发展,这种方法存在的不足显得尤为突出.主要体现在两个方面,(1)培育时间长,成本高,风险大.从采孢子到幼苗出库,幼苗需在室内低温培养3个半月左右,期间降低培育海水的温度(从28e左右降到10e以下)消耗大量的电力,成本较高[3].由于室内培育时间长,常常发生病害,造成减产,甚至绝产.(2)难以实现稳定和高度一致的良种化养殖.该方法是混合采孢子,成千上万棵种菜集中放散孢子,游孢子作为减数分裂的产物,广泛杂交的结果必然使后代孢子体变异很大,因此难于保持优良品系的纯度.因此,急需一种良好的育苗技术来改善当前的现状.分离培养的海带雌(a)、雄(`)配子体(单倍体),在适宜的条件下只进行营养生长,不发育,形成无性繁殖系,也称克隆(clone).海带单克隆无性繁殖系的主要生物学特点是:(1)起源于一个细胞(配子体),其遗传性是一致的,而且主要遗传基础都是单倍体;(2)在适宜于成收稿日期:2000-08-02;修订日期:2002-11-29.基金项目:中国科学院知识创新资助项目(ZKCXZ-211).作者简介:李大鹏(1968)),男,黑龙江省通河县人,研究员,博士,从事海藻生理与生物技术研究.E-mai l:dpli@ms. 142海洋学报25卷熟的条件下能发育,长成孢子体[4].为了克服上述传统育苗方法的不足,我们根据海带单克隆无性系的生物学特点,设计了利用海带单克隆无性繁殖系育苗的新方法.在实验室的多次实验的基础上[5],于1998年7月30日至10月12日,在威海水产开发公司育苗基地进行了生产性育种和育苗实验.现把实验结果做简要的介绍.2材料和方法211海带单克隆无性繁殖系的建立和培养选择体长、叶宽的健康藻体作为种菜,用过滤、煮沸消毒过的海水清洗干净,在(18?1)e 房间阴干,使其在PES[6]培养液释放游孢子,稀释游孢子溶液,使在显微镜下有3~4个游孢子每视野,以利于下一步的分离.将含有游孢子的PES培养液倒入有载玻片的染色缸中.为了抑制和消除硅藻,前4d的培养液中加入GeO2,每升PES培养液中加1cm3GeO2饱和溶液[7],第4天更换培养液,以后每周更换一次培养液.以日光灯为光源,染色缸放在(18?1)e、光强15L mol/(m2#s)、光周期12B12的条件下, 4d后在显微镜下用消毒过的玻璃毛细管将单个的雌、雄配子体分离出来,置于多孔培养板中培养,每两星期换一次培养液.1个月后光强改为40L mol/(m2#s),日照为16h,使其进行快速的营养生长而不发育[8].每星期更换一次培养液,并通入过滤空气进行培养.更换培养液时,把复杂的分枝体撕开或用组织捣碎机打碎,分成许多小的分枝进行培养.212克隆附苗前的处理计算附苗所需的克隆的量.根据我们的前期实验,每个生产苗帘需克隆量约315g,雌B雄为1B115时孢子体的转化率最高.培育9个生产苗帘(1m@015m)共需克隆量为3115g,即雌克隆1216g,雄克隆量为1819g.将雌、雄混合的克隆用组织捣碎机打碎,用400号筛绢滤洗后,通气悬浮培养备用[9].213附苗1998年7月30日进行附苗.将混合均匀的克隆悬浮液均匀地喷洒在附苗器上,将附苗器慢慢地放入水温为6~10e的海带育苗池中静养8d.每天进行镜检.214幼苗的培育从第9天开始,流水培养,每天轻摆洗苗帘,以清除杂藻,减轻杂藻对幼苗生长的危害.生产培育条件如下:水温为6~10e;光强为20~100L mol/(m2#s)(自然光);海水中含NO-340 L mol/dm3,PO3-44L mol/dm3.培育过程中,我们以大生产常规方法培育的海带幼苗(7月26日采苗)为对照,进行了比较.215成熟孢子体经济性状的遗传性分析10月26日将培育幼苗移到威海内湾进行海上养殖,以同一海区的养殖品系为对照,尽量保证养殖条件的一致性.1999年4月20日对其中的一个组合和对照组的成熟孢子体的经济x2|/x1-性状(叶长、叶宽)进行了测量,每一组合取30棵,并根据公式:t=|s1/n1+s2/n2,变异系数等于标准差除以平均数,其中t为显著度.对配子体克隆培育的种苗和对照海带的成熟孢子体的叶长及叶宽的遗传性进行了统计分析.3 结果和讨论311 海带单克隆无性繁殖系的建立和培养游孢子附着后,3d 即形成配子体,在显微镜下根据细胞的大小能分辨出雌、雄配子体.雌配子体细胞较大,颜色较深;雄配子体细胞较小,颜色较浅.GeO 2能够有效地抑制硅藻的数量,确保成功地分离无硅藻污染的单细胞配子体.1个月后,配子体形成肉眼可见的小球,即形成单克隆无性繁殖系(见图版Ñ).分离培养的海带雌、雄配子体在一定条件下,能够比较长时间地进行营养生长而不发育,在某些物理化学条件,如维生素C 的处理,低温、连续光照和较高温度(18~22e )等可促进营养生长[4].根据反复实验,我们采用PES 培养液、较高温度(18e )、长日照(16h)和中等光强[60L mol/(m 2#s)]的培养条件,使克隆无性系较快地营养生长,以获得进行生产性育苗所需的生物量.在每次更换培养液时将复杂分枝体撕开,分成小的分枝,能够使细胞获得充足的营养和光照,加速其生长.312 幼苗的培育附苗10d 后即发现幼孢子体(见图版Ò),培养的光强和生产一样逐渐增强,以满足幼孢子体的生长.30d 后幼苗的长度为015~110cm(图版Ó).1998年10月12日,利用海带配子体克隆培育的9个生产苗帘通过了专家组的验收,得出了以下结论:(1)应用单克隆无性繁殖系培育海带幼苗是可行的;在合适的条件下幼苗只需40~50d 即可快速生长到长度为115~210cm,达到出库标准,可使育苗时间减少至常规育苗的50%;(2)应用不同的单克隆无性繁殖系进行品系间交配是可能的,交配后所产生的子代幼孢子体在生长速度上已表现出不同,这将是筛选优良个体的基础,应用无性繁殖系育种,只需2a 时间即可筛选出优良个体,在时间上远比经典育种法所需的5a 时间短.在生产条件下幼苗培育的结果如表1,从表1中可以看到,利用海带配子体克隆育苗是可行的,这项技术可以缩短幼苗的培育时间,幼苗只需要45d 即可长到长度为210~215cm,达到出库标准,而利用常规的采孢子的方法幼苗达到出库标准则需要80~120d.表1 海带配子体克隆育苗和常规方法育苗比较培育时间/d常规方法育苗单克隆育苗8配子体配子体及1~2个细胞的孢子体10配子体2~30个细胞的孢子体152~8个细胞孢子体50~100个细胞的孢子体培育时间/d 常规方法育苗单克隆育苗25015~110m m 的幼孢子体110~210mm 的幼孢子体45015~018cm 的幼孢子体210~215cm 的幼孢子体我国目前海带夏苗培育方法的主要特点是低温、自然光和流水培育.降低培育海水的温度,是夏苗生产的最大一项开支,以8亿生产量的海带育苗场来说,每天的制冷费用是7000元左右,一个生产季节制冷费用高达70~80万元(个人交流).如果像南方一些育苗场采用大水量、大流量法育苗,降温费更高[3].因此,如何缩短室内低温培育时间或适当提高培育水温,一直是改进海带夏苗生产工艺的一个重要课题.海带夏苗的培育时间是处于采孢子和幼苗出库(下海)之间的室内培育时间,可以说这段时间决定于自然海水的温度.因为人工筏养的海带1435期 李大鹏等:海带单倍体无性繁殖系育苗技术的研究从4~7月都有可能成熟,在这期间要得到足够的种海带并不困难.为了缩短室内低温育苗时间,生产上尽量推迟采孢子,但当海水温度上升到21e左右时,必须采孢子了,在北方大约在7月中下旬,否则当自然海水温度上升至23e时[2],不仅游孢子的活力减弱,而且放散量显著减少,孢子的附着量达不到生产要求,严重影响育苗效果.室内培育的幼苗必须待到秋季,在北方大约是10月中下旬,自然海水温度降到20e以下才能出库.高于20e下海,幼苗脱落严重,死亡率高.因此,海带夏苗的培育时间北方一般在3个月左右,在南方时间更长.海带夏苗的室内培育是一种集约式的生物培养方式,其生产的关键是低温条件.低温加上较弱的光照,可以抑制杂藻的繁生,防止某些病害的发生,并控制海带幼体的生长,以待自然水温的下降,所以在育苗生产中给予幼体的低温光照并不是其生长发育所需要的最适温度和光照.因为需要控制幼体的生长,实际生产所给予的温度和光照比海带幼体生长发育所需要的最适温度和光照要低得多.如果生产上能给予幼苗最适培养条件,那么从采孢子到幼苗长到1cm需要约40d左右.如果在7月中下旬采苗后,就可给予最适培养条件,那么到8月底至9月中,幼苗就能长到出库标准[3].但是这时正是自然水温的高温期自然水温要下降到20 e以下幼苗才能出库.在北方的海区要到10月中旬,在南方的海区则要到11月下旬至12月上旬.不能出库下海养殖的幼苗,只能用低温和低光照来控制幼体的生长.室内培育条件满足不了幼苗生长的需要,长时间的培养使得一些微生物(如褐藻酸降解菌等)大量繁生,就可能发生病害.目前海带幼苗培育中危害最大的脱苗、烂苗病多发生在育苗后期,这可能就是这种原因造成的.我们在实验中培育幼苗的光强一直比对照高,因而促进了幼苗的生长,这是培育时间缩短的真正原因.利用配子体克隆育苗时前期克隆在实验室集约培养,附苗时间不受限制,可以在9月初附苗,给予幼苗适合的培养条件(温度和光强),到10月底即可达到出库标准.培育时间可缩减到原来的50%,培育温度也可以提高到幼孢子体生长的合适温度10e左右,这样可以大幅度地降低成本.以北方8亿生产量的育苗场为例,采用配子体克隆育苗,制冷费用可由原来的70 ~80万元降到40万元左右.培育时间的缩短又能在一定程度上防止病害的发生.因此,这项技术的成功无疑对海带种苗生产工艺的改革具有重要的意义.313单克隆培育的孢子体的遗传性分析从理论上说,单克隆无性繁殖系来自一个细胞,具有一致的遗传性,用其培育的孢子体应具有性状分离度低的优点[5],从表2中的数据可以看出,利用单克隆培育出的孢子体叶长和叶宽的分布更加集中,其变异系数远小于对照组,其子代孢子体形态非常均一、相似(见图版Ô).因此,将育苗技术与育种结合起来,能够确保遗传相对稳定,加速良种的推广进程.利用不同的品系进行交配育种,海上养殖后测量成熟孢子体各项生长指标证实了这种育种技术也是行之有效的,此项结果将在另外的报告中阐述.表2配子体克隆培育品系和对照品系叶长和叶宽的遗传性品系棵数平均叶长正或负标准差/cmt变异系数(%)平均叶宽正或负标准差/cmt变异系数(%)W h860(a@`)30352?2341271137?31121515814W h860a@Lid`30397?26301571341?31363018812对照组(荣海)30345?44141334?41881414 144海洋学报25卷参考文献:[1] WU Chao -yuan.The seaw eed resources of China[A].ALAN T Critchley,M ASAO Ohno.Seaw eed Resources of the 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