MTT法检测纳米金粒子体外细胞毒性的研究
细胞毒理学实验技术-MTT
DMSO需要避光加入,加入前将孔内液体吸除干 净,注意不要把结晶吸除
铺细胞一定要均匀,减小实验误差
③ MTT实验应用
大规模抗肿瘤 药物及其适宜 浓度的筛选
体外肿瘤细胞 的临床药物敏 感性实验
检测细胞活 性、细胞增殖 力和细胞毒性
生物活性因子 的活性检测、 肿瘤放射敏感 性测定等
因死细胞中琥珀酸脱氢酶消失,不能将MTT还原,故成为验材料
MTT溶液 (PBS溶解,5mg/ml。小剂量分装,4℃避光保存,两周内有效。或-20 摄氏度冻存,避免反复冻融)、DMSO
需测定的细胞、中 高 低浓度药物 酶标仪、超净台、显微镜 培养皿、离心管、96孔板、细胞计数板、移液枪等
② 实验方法
接种细胞
培养细胞
呈色
比色
消化细胞,用细胞计数板计数, 调整细胞浓度至104个/ml,接种 至96孔板100μl/孔
A
培养24h后,吸除孔内原培养液, 加入培养液配置的不同浓度药物, 每孔100μl(空白组不做处理)
B
药物反应完成后,配制MTT(培养 液:MTT=5:1)并加入,反应4h
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细胞毒理学实验技术
MTT法检测细胞活性
报告人:
CONTENTS
1 实验原理 2 实验材料与方法 3 实验结果与分析 4 实验应用
① 实验原理
• MTT是一种黄色粉末状化学试剂 • 商品名为:噻唑蓝 • 全称为:3-(4,5)-dimethylthiahiazo (-z-y1)-3,5-di-phenytetrazoliumromide
MTT是一种接受氢离子的染料,可作用于活细胞线粒体中的呼吸链,在琥 珀酸脱氢酶和细胞色素C的作用下被还原,生成蓝色的甲瓒(formazan)结晶,结 晶的生成量仅与活细胞数目成正比。还原生成的结晶可在二甲基亚砜(DMSO) 中溶解,利用酶标仪测定490 nm处的光密度OD值,以反映出活细胞数目。 OD值越大细胞活性越强(或药物毒性越小)。
纳米颗粒体外毒性评估技术研究
纳米颗粒体外毒性评估技术研究随着纳米科技的迅速发展,纳米材料的应用领域也不断扩大。
然而,纳米材料对人类健康和环境的影响也逐渐受到关注。
为了确保纳米材料的安全性,需要开发出有效的纳米颗粒体外毒性评估技术。
纳米材料具有与普通材料不同的特性,如比表面积大、高比表面反应性、大小等特点。
这些特性使得纳米材料的生物相容性、毒性等表现出明显的不同于传统材料的特性。
因此,纳米颗粒的毒性评估需要采用特殊的方法。
一种常用的纳米颗粒体外毒性评估方法是细胞实验。
细胞实验通常使用体外培养的人类或动物细胞系进行,评估纳米颗粒对细胞的毒性。
这种方法的优点是操作简单,结果能够快速得到,但它仅能评估纳米颗粒对单个细胞的影响,难以反映细胞间的相互作用和整个生物系统的反应。
另外,纳米颗粒的口服毒性评价也是纳米颗粒体外毒性评估的重要一环。
但实验的难点在于如何分离、检测和精确定量纳米颗粒吸收到生物体内的数量。
而且,在口服毒性实验中,纳米颗粒的生物转化特性非常重要,因为纳米颗粒进入生物体后,容易携带生物内的物质进入细胞内部,从而造成不利影响。
目前,以文献为基础的评估方法是当下常用的纳米颗粒口服毒性评估方法。
根据这一方法,通过对携带有纳米颗粒的溶液进行生化学分析,可以快速获得纳米颗粒对生物的作用。
这种评估方法的优点是具有很高的剂量准确性,但是缺点是难以在实验室条件下准确模拟纳米颗粒进入生物体内的过程。
除细胞实验和口服毒性实验,一种新的纳米颗粒体外毒性评估方法是组织培养模型。
利用不同的细胞类型和体外生长方法,体外培养模型可以复现不同的组织类型和生长条件。
通过模拟人体内纳米颗粒进入组织细胞所需要的条件,可以像在真实的病变组织中一样评估有毒纳米颗粒的生物学效应。
这种评估方法的优点在于能够更准确地模拟纳米颗粒与生物体之间的相互作用,并且能够更好地反映不同组织类型对纳米颗粒的反应。
总之,纳米颗粒体外毒性评估技术的研究旨在确保纳米材料的生物相容性并促进纳米科技向更好、更安全的方向发展。
MTT法评价4种医用材料的细胞毒性
MTT法评价4种医用材料的细胞毒性郑旭;王莉芳;陈芳;孙发展;罗晶【摘要】目的研究4种医用材料的细胞毒性.方法按照GB/T16886.5-2003/ISO10993-5:1999的体外细胞毒性评价方法要求,用MTT比色法评价4种医用材料的细胞毒性.结果 4种医用材料均表现出较高的细胞相对增殖率,其细胞毒性为1级.结论 4种医用材料对细胞形态、生长和增殖不构成损害,无明显细胞毒性,具有良好的细胞相容性.%Objective To evaluate cytotoxicity of four medical materials. Methods According to the method of GB/T16886. 5-2003/ISO10993-5:1999, MTT method was used to analyze the cytotoxicity of the four medical materials. Results The four medical materials displayed a high relative proliferation ratio and their cytotoxicity was grade 1. Conclusion The four medical materials have no obvious cytotoxicity.【期刊名称】《西北药学杂志》【年(卷),期】2011(026)005【总页数】2页(P363-364)【关键词】细胞毒性实验;MTT比色法;浸提液【作者】郑旭;王莉芳;陈芳;孙发展;罗晶【作者单位】陕西省食品药品检验所,陕西西安710061;陕西省食品药品检验所,陕西西安710061;陕西省食品药品检验所,陕西西安710061;陕西省旬邑县土桥中心卫生院,陕西旬邑711304;陕西省食品药品检验所,陕西西安710061【正文语种】中文【中图分类】R965细胞毒性实验对检测医疗用品的毒性是一种比较灵敏的方法,由于许多医疗用品经异常毒性实验、刺激实验、植入实验为阴性,而经细胞毒性实验为弱阳性。
MTT实验操作步骤
MTT的操作方法一、MTT是什么MTT是一种粉末状化学试剂,全称为3-(4,5)-dimethy lthiah iazo (-z-y1)-3,5-di- phenyte trazoliumrom ide,汉语化学名为3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴盐,商品名:噻唑蓝。
是一种黄颜色的染料。
二、MTT法用来做什么简单地说:是一种检测细胞存活和生长的方法。
MTT主要有两个用途1.药物(也包括其他处理方式如放射线照射)对体外培养的细胞毒性的测定;2.细胞增殖及细胞活性测定。
三、为何MTT可以用来做上述工作检测原理为活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性M TT还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒(Formaza n)并沉积在细胞中,而死细胞无此功能。
二甲基亚砜(DMSO)能溶解细胞中的甲瓒,用酶标仪在490nm波长处测定其光吸收值,在一定细胞数范围内,MTT结晶形成的量与细胞数成正比。
根据测得的吸光度值(OD值),来判断活细胞数量,OD值越大,细胞活性越强(如果是测药物毒性,则表示药物毒性越小)。
四、实验所需材料1.MTT 溶液的配制通常MTT 配成的终浓度为5mg/ml,须用PBS或生理盐水做溶剂。
市面上一般MT T的包装为100mg,250mg或1g1.1对于100m g这样的小包装,厂家都是将MT T放入小管中的,个人建议不要再用天平称量分装,而应该一次性将其全配制成溶液,如100mg用20mlPB S来溶解。
具休做法:预先在50ml离心管(没有的话,可用培养瓶替代)加入20mlPBS,从中先吸取500-1000u lPBS装入含M TT的小管中,吹打若干次后将其移入50m l离心管,然后再混匀。
可以重复几次,以使小管中的M TT不残留于管内。
细胞毒性试验MTT比色法及改进方法
purple color
主要步骤
制备细胞悬液,接种、培养细胞 MTT染色:培养一段时间后,向细胞中加入 MTT溶液,继续在37℃孵育4 h。然后除去培 养液,加二甲基亚砜(DMSO)或盐酸-异丙醇溶 解细胞中的紫色结晶物。 比色:酶联免疫监测仪在490或570nm处测 定溶液的吸光值OD(optical density)。
开始 预实验
细胞接种浓 度
药物浓度
时间控制
污染产生蓝 黑色
离心操作
浓度梯度
5%CO2, 37℃
血清干扰
调零孔与对 照孔
灭菌操作
细胞代数 <30
优质培养板
药品刺激性 大小
悬液均匀度
枪头注细胞 速度
上清液含结 晶物
影响评价结 果
。。。。。。
。。。。。。
翻板
贴壁牢固程 度
MTT改进
XTT
MTS
CCK-8/ WST-8
96孔板
酶标仪
优点
▪灵敏度较传统计数法高 ▪经济
缺点
▪甲臜产物不溶于水,需溶解检测 ▪MTT反应需至少3小时,不适用急性反应
选择适当的细胞接种浓度、药物浓度 设调零孔和对照孔
注事 意项
MTT对菌敏感,应尽量无菌操作 避免血清干扰 现配现用,低温避光,以免分解
需要进一步查阅的操作细节 ---多看文献
优点
缺点
1、使用方便,省去了洗 涤细胞,不需要放射性同 位素和有机溶剂; 2、检测快速; 3、灵敏度高,甚至可以 测定较低细胞密度; 4、重复性优于MTT; 5、对细胞毒性小; 6、为1瓶溶液,毋需预制, 即开即用。
1、价格比较贵。 2、CCK-8试剂的颜色为 淡红色,与含酚红的培养 基颜色接近,不注意的话 容易产生漏加或多加。
MTT方法用于快速测试药物对悬浮肿瘤细胞的细胞毒性的研究
MTT方法用于快速测试药物对悬浮肿瘤细胞的细胞毒性的研
究
李登华;田志刚
【期刊名称】《癌症》
【年(卷),期】1991(010)003
【摘要】本文用MTT试验方法观察了4种体外传代培养的肿瘤细胞株(YAC—1、EL_4、MLA_(144)和BCMG细胞)对4种化疗药物(丝裂霉素-C、5-氟尿嘧啶、阿霉素和盐酸阿糖胞苷)的敏感性。
结果表明:MTT代谢产物甲膨与细胞数量呈线性关系,此方法不仅可以反映不同化疗药物对同一肿瘤细胞的抑制特性不同,而且亦可测出不同的肿瘤细胞对同一化疗药物的敏感性存有差异。
鉴于MTT法经济、直观、快速和简便,从而为进一步应用于临床非实体瘤的药敏检测奠定了方法学基础。
【总页数】3页(P226-228)
【作者】李登华;田志刚
【作者单位】不详;不详
【正文语种】中文
【中图分类】R965.3
【相关文献】
1.微流控芯片装置中应用量子点探针分析悬浮性肿瘤细胞凋亡用于药物筛选的研究[J], 赵亮;程鹏;李建新;张玥;谷苗苗;刘珺;张剑荣;朱俊杰
2.微流控芯片装置中应用量子点探针分析悬浮性肿瘤细胞凋亡用于药物筛选的研究
[J], 赵亮;程鹏;李建新;张玥;谷苗苗;刘珺;张剑荣;朱俊杰
3.MTT比色法用于肿瘤细胞体外药物敏感性试验的检测 [J], 马金霞;潘世扬;张卫;童明庆
4.MTT法、CPE观察法用于药物细胞毒性实验的比较与分析 [J], 阎祖炜;朱欣;李闻文
5.用MTT法测定rh-TNF与联合化疗药物对人卵巢癌细胞毒性的研究 [J], 赵敏;严宗哲;钱和年;冯捷
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MTT比色法原理
MTT比色法原理1.1 MTT:MTT全称为3-(4,5-dimethyl-2-thiazolyl)-2,5-diphenyl-2-H-tetrazolium bromide,化学名称为3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴盐,商品名:噻唑蓝,是一种黄颜色的染料。
1.2 MTT比色法检测原理:MTT比色法是一种检测细胞存活图 1 MTT结构式和生长的方法。
MTT实验原理为活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性MTT还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒(Formazan)并沉积在细胞中,而死细胞无此功能。
二甲基亚砜(DMSO)能溶解细胞中的甲瓒,用酶联免疫检测仪在490nm波长处测定其光吸收值,可间接反映活细胞数量。
在一定细胞数范围内,MTT结晶形成的量与细胞数成正比。
根据测得的吸光度值(OD值),来判断活细胞数量,OD值越大,细胞活性越强(如果是测药物毒性,则表示药物毒性越小)。
该方法已广泛用于一些生物活性因子的活性检测、大规模的抗肿瘤药物筛选、细胞毒性试验以及肿瘤放射敏感性测定等。
它的特点是灵敏度高、经济。
1.3应用:MTT通常用于细胞增殖、细胞活性测定和药物(也包括其他处理方式如放射线照射)对体外培养细胞毒性的测定。
1.4 MTT比色法优缺点缺点:由于MTT经还原所产生的甲瓒产物不溶于水,需要被溶解后才能检测。
使工作量增加,也会对实验结果的准确性产生影响,而且溶解甲瓒的有机溶剂对实验人员的身体健康也有损害。
优点:具有简便、快速、经济、不使用同位素等优点。
1.5注意事项注意事项:1、在配制和保存的过程中,容器最好用铝箔纸包;2、制备好的MTT需要无菌,MTT对细菌很敏感;3、MTT一般最好现用现配,过滤后4℃避光保存两周内有效,或配制成5mg/ml保存在-20℃长期保存,避免反复冻融,最好小剂量分装,用避光袋或是黑纸、锡箔纸包住避光以免分解。
当MTT变为灰绿色时就绝对不能再用;4、MTT有致癌性,小心使用,有条件最好带透明的薄膜手套。
MTT法检测纳米金粒子体外细胞毒性的研究
组细胞相对增殖率 ( G 分别 为 12 63 1123 ,954 ,2 19 4 .0 %, 入 1 .0 gL 3 .0 g R R) 1 .5 %,1 .9 % 8 .2 % 7 . %,6 83 加 0 5 00m ・ ~、 0 00n ・ a L1 -纳米金溶胶组 , R R与空 白对照组有显著差异 , .7 a・ 一、 .5 a・ 组毒性 评级 为 0级 ,.0 a・ 。 其 G 185n L 3 70n L g g 7 50n L。、 g
H m n bol t I ) e u ue i e i n o t n d i r t o hr a gl n n -a il ( . 5n ・ _ 、 .5 u a r a s - w r cl rd t m du n i f e s o s e cl o a op rc s1 8 a L 。3 7 0 i f bs ( I F e t wh lc a e d e n d e f p i d t e 7 g
8 .2 9 5 4% , 2. 0 % , . 0 % r s e t e n df r n o eo g l a o p r ce ru s t et eRG i 1 . 0 7 19 6 4 8 3 e p c i l i ee t s f od n n - at ls o p , h v yi d i g h R n 5 0 0mg L~ ,0. 0 3 00
物相容性 ,0 00m ・ -纳米金粒子有 中度细胞毒性 。 3 .0 gL 1
关键词 : 纳米金 ; 人成纤维细胞 ; 细胞毒性 ; T 法 MF
中图 分 类 号 : 2 Q 文献标识码 : A
Hu n, t 1 a ea. I v sia in o od n n - a t e y o o ii y M r t o i o s ⅣG We -h , I Wa - o g, n e t to fg l a o p rl s ̄ t t xct b g d y r meh d i vt 0 n z i YN nz n n r h
MTT法检测纳米金粒子体外细胞毒性的研究
培养液中加入不同浓度纳米金溶胶(1 .875 m g·L - 1 、3 .750 m g·L - 1 、7 .500 m g·L - 1 、15 .000 m g·L - 1 、30 .000 m g·L - 1 )各
组细胞相对增殖率(RG R )分别为 112 .653% ,111 .293% ,89 .524% ,72 .109% ,46 .803% ,加入 15 .000 m g·L - 1 、30 .000 m g·
phology and w ellgrow th underinverted m icroscope observation in low dose ofgold nano-particles groupsw hile obvious vacuolardegen -
eration in 30 .000 m g·L - 1 gold nano-particles group .C onclusion The cytotoxicity of the gold nano-particles had does-effect re-
H um an fibroblasts(H F) w ere cultured w ith m edium contained differentdose ofsphericalgold nano-particles(1 .875 m g·L - 1 、3 .750
m g·L - 1 、7 .500 m g·L - 1 、15 .000 m g·L - 1 、30 .000 m g·L - 1 ) for24 hours ,the cytotoxicity effectw as tested by M TT m ethod ,m orphol-
L - 1纳米金溶胶组 ,其 RG R 与空白对照组有ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ著差异 ,1 .875 m g·L - 1 、3 .750 m g·L - 1 组毒性评级为 0 级 ,7 .500 m g·L - 1 、
评价纳米颗粒细胞毒性的方法
评价纳米颗粒细胞毒性的方法李晓东;徐红【摘要】@@ 自20世纪80年代末以来,纳米科技迅猛发展,纳米材料在医学成像、疾病诊断、药物传输、癌症治疗、基因治疗等领域的应用越来越广泛[1].但是,人们对于纳米材料对环境安全和人体健康所潜在的影响却知之甚少[2].为此,纳米毒理学应运而生[3].【期刊名称】《中国实验诊断学》【年(卷),期】2011(015)001【总页数】3页(P185-187)【作者】李晓东;徐红【作者单位】吉林大学第一医院,胃肠内科,吉林,长春,130021;吉林大学第一医院,胃肠内科,吉林,长春,130021【正文语种】中文自20世纪80年代末以来,纳米科技迅猛发展,纳米材料在医学成像、疾病诊断、药物传输、癌症治疗、基因治疗等领域的应用越来越广泛[1]。
但是,人们对于纳米材料对环境安全和人体健康所潜在的影响却知之甚少[2]。
为此,纳米毒理学应运而生[3]。
纳米毒理学是专门研究纳米颗粒或材料毒性的学科,运用一系列方法来分析纳米材料在体内和体外所产生的影响[4]。
一般利用体外细胞毒性实验来进行纳米材料的细胞毒性评价,它是一类在离体状态下模拟生物体生长环境,检测医疗器械和生物材料在接触机体组织后所产生的生物学反应的体外实验[5]。
纳米颗粒与细胞的相互作用研究刚刚开始[6]。
细胞成活力评价包括增殖、坏死、凋亡等方面。
本文就纳米毒理学中常用的细胞毒性检测方法作一简要综述,以供大家对纳米材料的细胞毒性进行评价时作为参考。
1 增殖检测1.1 MTT法MTT法即四甲基偶氮唑盐微量酶反应比色法。
MTT比色分析法由Mosmann在1983年首创,其基本原理是活细胞内的线粒体脱氢酶能将染料MTT转变为不溶于水的蓝紫色结晶体甲瓒(formazan)颗粒,后者的生成量与活细胞数目和/或细胞活性呈正相关[7]。
用二甲亚砜溶解所生成的甲瓒,然后通过酶标仪可以测定570 nm波长附近的吸光度。
细胞增殖越多越快,则吸光度越高;细胞毒性越大,则吸光度越低。
mtt法检测细胞毒性原理
mtt法检测细胞毒性原理
MTT法是一种常用的细胞毒性检测方法。
其原理基于细胞代
谢活性与细胞数量之间的关系。
该方法利用一种叫做MTT的
化学物质,它能够被细胞内的还原酶所代谢并转化为紫色的结晶物。
这种发色反应与细胞的代谢活性相关,正常细胞代谢活性高,转化的MTT结晶物也就越多,溶液颜色越深。
而有细
胞毒性的物质会影响细胞的代谢活性,导致MTT转化的结晶
物减少,溶液颜色较浅。
MTT法的操作步骤包括:首先将待测物质添加到包含细胞的
培养基中,培养一定时间使细胞与物质相互作用;然后加入MTT试剂,培养一段时间使其被细胞代谢转化成紫色的结晶物;接下来,将培养基移除,加入溶解剂使MTT结晶物溶解;最后,通过分光光度计测量吸光度来评估细胞的代谢活性,进而判断物质对细胞的毒性。
MTT法具有操作简便、结果可靠的特点,被广泛应用于评估
药物、化学物质和各类材料对细胞毒性的影响。
它可用于筛选有潜在毒性的化合物,评估细胞对新药物的敏感性,并对材料的生物相容性进行评估。
检测纳米材料毒性的若干实验方法
i O 囊角质层和毛乳头处发现了防晒霜中的纳米 T 2 颗粒 的沉积, 但是这个研究结果并不能说明 T i O 2 颗粒能穿
1 2 ] e n n a t 等[ 将水状和油状的 T i O 透活皮肤组织。 B 2用
于评价其皮肤渗透性, 发现油状的 T i O i O 2 较水状的 T 2 对皮肤的渗透现象更明显。 1 . 2 体外毒理学
收稿日期: 2 0 0 8 1 2 2 4 修回日期: 2 0 0 8 0 0 2 0 0 6 ) 、 国家自然科学基金 教育 部 新 世 纪 优 秀 人 才 计 划 ( ( 3 0 5 7 0 4 0 1 ) 资助项目 并列第一作者 电子信箱: z h a n g z z b i o x @g m a i l . c o m 通讯作者,
1 . 1 活体染毒实验 1 . 1 . 1 亚慢性吸入毒性实验( S u b c h r o n i cI n h a l a t i o n
[ 3 ] T o x i c i t y S t u d y ) O b eபைடு நூலகம்r d o r s t e r 等用粒径 2 0 n m和 2 0 0 n m
1 3 ] 1 . 2 . 1 M T T法 刘 颖 等 [ 用脱氧核糖核酸钠盐
实验, 动物染毒 7天后, 所有滴注单壁碳纳米管的小鼠 肺部都出现了与剂量相关的上皮肉芽肿, 部分还出现 了间隙炎症, 肺支气管周围炎症和坏死, 并向肺泡间隔 延伸。9 0天后, 这些损伤加剧, 此外有些小鼠还出现了 外周气管炎和坏疽的症状。对经单壁碳纳米管染毒的 小鼠支气管肺泡灌洗液分析发现, 纳米颗粒物比其他 颗粒物更能引起白细胞的聚集, 同时还发现肺部灌洗 谷氨酰胺转移酶含 液中组胺、 总蛋白、 乳酸脱氢酶和 γ ? 量的增加, 说明肺部炎症及肺泡上皮和内皮细胞损伤 的存在。很多研究表明肺泡巨噬细胞可能对肺部炎症 起了很重要的作用。肺泡巨噬细胞是对抗沉积颗粒的 细胞, 其对颗粒的吞噬能力与颗粒直接相关。研究还 发现, 纳米颗粒物能使肺泡巨噬细胞的趋化能力提高 但吞噬能力降低, 这就使得肺泡中的纳米颗粒物不能 被巨噬细胞清除, 而在肺泡中长期存在, 从而产生了慢 性炎症的反应 E d i r t o 等
MTT法和LDH法评价纳米银抗菌凝胶的体外细胞毒性
MTT法和LDH法评价纳米银抗菌凝胶的体外细胞毒性
袁博;张娜;景明
【期刊名称】《中国医疗器械信息》
【年(卷),期】2022(28)23
【摘要】目的:对纳米银抗菌凝胶进行体外细胞毒性评价。
方法:试验选用L929小鼠成纤维细胞,通过MTT试验和LDH试验,对被测物进行研究。
结果:MTT试验的LC50为0.047g/mL,LDH试验的LC50为0.048g/mL。
结论:纳米银离子会破坏细胞线粒体和细胞膜完整性。
【总页数】4页(P24-26)
【作者】袁博;张娜;景明
【作者单位】天津市医疗器械质量监督检验中心
【正文语种】中文
【中图分类】R994.1
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1.MTT法检测几种多糖和寡糖的体外细胞毒性
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K-8法和MTT法评价医用抗菌不锈钢细胞毒性的比较研究
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3Y-TZP全瓷材料体外细胞毒性试验(MTT法)
3Y-TZP全瓷材料体外细胞毒性试验(MTT法)作者:李国华龚振宇于淑湘陈吉华来源:《中国美容医学》2008年第03期[摘要]目的:初步评价牙科全瓷材料3Y-TZP生物相容性。
方法:根据ISO标准采用体外细胞毒实验(MTT法)测试不同浓度和浸提时间的材料浸提液L-929小鼠结缔组织成纤维细胞的影响从而对全瓷材料3Y-TZP的生物相容性进行初筛。
结果:各浓度组OD值均与阴性对照无显著性差异(P>0.05),与阳性组差异显著 (P[关键词]3Y-TZP;生物相容性;体外细胞毒实验[中图分类号]R783[文献标识码]A [文章编号]1008-6455(2008)03-03Preliminary evaluation on biocompatibility ofall-ceramic dental material:3Y-TZPLI Guo-hua1,GONG Zhen-yu1,YU Shu-xiang2,CHEN Ji-hua3(1.Department of Stomatology, Fuzhou General Hospital of Nanjing Military Command, Fuzhou 350025,Fujian,China)Abstract: Objective To preliminarily evaluate the biocompatibility of 3Y-TZP which were used as a new dental all-ceramic materials. Methods According to ISO standards, in vitro cytotoxicity-test (MTT method) on L-929 cell were carried on. Results The OD-value of each test group were similar to the negative control and significantly different from positive control which indicated that the materials tested were safe to L-929 cells. Conclusion It is preliminarily estimated that 3Y-TZP is a safe material for dental clinical application.Key words:3Y-TZP;biocompatibility;vitro cytotoxicity-test(MTT method)随着人们对审美要求的不断提高,越来越多的修复专业人士及患者乐于接受色泽逼真,无龈缘灰线的全瓷修复体。
mtt细胞毒性的原理
mtt细胞毒性的原理
MTT细胞毒性实验(MTT assay)是一种常用的评估细胞毒性
的方法。
其原理基于细胞还原MTT(3-(4,5-二甲基硬氮基)-2-
5-二苯基五唑溴化物)至紫色的甲醛溴分解物的能力。
在MTT细胞毒性实验中,细胞首先被培养在含有待测物的培
养基中。
待测物可以是化合物、药物、细菌等。
细胞培养一定时间后,将MTT溶液加入培养基中。
MTT溶液会被细胞摄取
进入细胞内。
在细胞内,MTT被还原成紫色的甲醛溴分解物,由于该物质与细胞的代谢能力有关,可以用来评估细胞的存活情况。
为了分析细胞毒性,甲醛溴分解物需要从细胞中释放出来。
为此,一般会加入溶解MTT的溶剂,如二甲基亚砜。
这样,细
胞溶解后,甲醛溴分解物会被溶剂溶解,形成溶液中的紫色产物。
紫色产物的光密度与细胞的存活数量成正比。
接下来,使用酶标仪或分光光度计来测量溶液的吸光度。
常用波长为570 nm,或根据细胞系和实验条件选择适当的波长。
吸光度值越高,表示细胞的存活越多;而吸光度值越低,表示细胞的存活越少。
通过对待测物不同浓度的MTT细胞毒性实验的细胞存活率数
据进行线性回归分析,可以评估待测物的毒性效应。
通常使用IC50值(有效半数抑制浓度)来描述化合物对细胞的毒性。
IC50值越小,说明待测物对细胞的毒性越大。
总结起来,MTT细胞毒性实验通过测量细胞内MTT还原产物的吸光度来评估待测物对细胞的毒性效应。
生命科学如何研究受到化学品毒害
生命科学如何研究受到化学品毒害随着化学品的广泛应用,人们对于其在生物系统中的影响越来越关注。
化学品的长期使用甚至会对人体健康和环境造成严重影响。
而生命科学正是研究受到化学品毒害问题的重要学科之一。
本文将从生命科学角度探讨如何研究受到化学品毒害。
一、从细胞水平研究受到化学品毒害细胞是生命的基本单位,其对化学品的反应是研究受到化学品毒害的重要方面。
基于细胞的研究可以了解化学物质与细胞的相互作用和影响的机制。
大约在20世纪30年代,科学家们开始了解到许多化学物质的细胞毒性。
近年来,随着技术的发展,利用新的高通量方法对细胞进行毒性测定已成为主要手段。
目前,广泛应用的方法包括MTT法、MTS法、细胞凋亡、细胞周期分析、细胞膜完整性检测、内源氧化活性检测、ROS、细胞钙浓度、激酶方案和基因表达等。
这些方法在评价化学品毒性及毒理学机制方面均有广泛应用。
一些用于暴露化学物质的间隔不同的方法也可用于细胞的高通量毒性检测,如:毒物浓度梯度曝露、时间梯度曝露、暴露时间/缓冲时间梯度、间歇性曝露和二级曝露等。
这些方法可在不同的细胞解剖学、功能和基因组表达层面研究化学品与细胞的相互作用。
二、动物模型是研究化学品毒害的关键动物模型的研究是判断化学品毒性的主要途径之一。
精心设计的实验可评估涉及药理学、毒理学和生物学的繁多信号通路。
通过选择合适的动物模型,可以分析化学物质在动物体内的代谢和转化以及其中起关键作用的通路,以此评估化学品的毒性和毒理学机制。
现在最常用的动物模型包括小鼠、大鼠、兔子、狗和猴等。
目前,遗传学和生物技术的繁荣,使得动物的基因组获得了广泛的关注,实际上,利用小鼠遗传改变模拟了很多人类疾病,这种情况在毒理研究中亦可使用。
基于遗传组学研究毒理机制,可以利用这些动物模型对化学品性质和机制进行较准确的评估。
在毒理学评估中,常规的试验可以评估毒性和可能引起的损伤、联合毒素和代谢等。
由候选化学品引起的和监控响应可以在动物模型中显现,从不同的视角调查其在生物系统内的表现。
纳米材料体外细胞毒性研究现状与展望
纳米材料体外细胞毒性研究现状与展望作者:汪保林邱慧来源:《世界中医药》2017年第02期摘要纳米科学是上个世纪80年代末发展起来的新兴学科,是21世纪最有前途的新科学技术之一。
随着纳米材料应用的日益广泛,其所带来的健康风险也越来越大,对其生物安全性的研究也刻不容缓。
文章就纳米材料的毒性影响因素,对细胞造成的毒性效应机制及其体外细胞毒性的评价方法进行详细阐述,并综述了近几年来关于纳米材料毒性研究的最新进展及对纳米技术安全性评估进行了系统的讨论。
关键词纳米材料;细胞毒性;影响因素;评价方法Abstract Nanoscience emerged in the last 1980 s and is developed as one of the most promising new science and technology in the 21st century. With the increasing widespread application of nanomaterials,their health risk has been greatly increased and researches on its biological safety are imperatively needed. In this paper,the toxic influential factors,the cytotoxicity mechanism of nanomaterials and the evaluation methods on cytotoxicity of nanomaterials in vitro were elucidated in detail. Simultaneously,the latest developments on the toxicity of nanomaterials and the security assessment of nano technologies were also systematically discussed.Key Words Nanomaterials;Cytotoxicity;Influential factors;Evaluative methods中图分类号:R-331;R319文献标识码:Adoi:10.3969/j.issn.1673-7202.2017.02.052从“纳米牙膏”到“纳米防晒霜”,全球目前已有300多种运用纳米技术上市的产品。
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透射电镜照片可见低浓度纳米金组细胞形态正
● 常 ,生长良好 ,随着纳米金浓度增高 ,镜下可见团聚
的纳米金粒子 ,仍可见纤维细胞正常形态 ,在 30 μg/ m l纳米金组 ,可见人成纤维细胞已失去正常细胞形 态 ,呈明显的空泡性变 。 2 .2 M T T 结果及毒性评级 不同浓度纳米金粒子
sponse ,low dose ofgold nano-particles has w ellbiocom patibility w ith H F ,and 30 .000 m g·L - 1 gold nano-particles has m oderate cyto-
toxicity .
K ey w ords :gold nano-flow er ;cytotoxicity ;M TT m ethod ,hum an fibroblast
L - 1纳米金溶胶组 ,其 RG R 与空白对照组有显著差异 ,1 .875 m g·L - 1 、3 .750 m g·L - 1 组毒性评级为 0 级 ,7 .500 m g·L - 1 、
15 .000 m g·L - 1组毒性评级为 1 级 ,倒置显微镜下细胞形态正常 ,生长良好 ,30 .000 m g·L - 1 组毒性评级为 3 级 ,镜下可
见细胞明显的空泡变性 ;结论 此种纳米金粒子的体外细胞毒性呈剂量依赖关系 ,低浓度纳米金粒子具有良好的生
物相容性 ,30 .000 m g·L - 1纳米金粒子有中度细胞毒性 。
关键词 :纳米金 ;人成纤维细胞 ;细胞毒性 ;M TT 法
中图分类号 :Q 2
文献标识码 :A
Investigation of gold nano-particles cytotoxicity by M TT m ethod in vitro SONG W en-zhi ,YIN W an-zhong ,YANG H uan ,et al .
— 1242 —
文章编号 :1007 - 4287(2011)08 - 1242 - 04
Chin J Lab D iagn ,A ugust ,2011 ,V ol 15 ,N o .8
M TT 法检测纳米金粒子体外细胞毒性的研究
宋文植1 ,尹万忠2 倡 ,杨 欢1 ,姜雅萍1 ,张天夫1 ,王 伟1
phology and w ellgrow th underinverted m icroscope observation in low dose ofgold nano-particles groupsw hile obvious vacuolardegen -
eration in 30 .000 m g·L - 1 gold nano-particles group .C onclusion The cytotoxicity of the gold nano-particles had does-effect re-
透射电镜下观察纳米金粒子形态 ,可见制备的
● ◆ 纳米金粒子呈球形 ,直径约 25 nm ,粒径均匀 ,分散
性较好 ,可见-紫外吸收光谱上可见纳米金溶胶主吸
收峰位于 540 nm 。
●
图 1 纳米金粒子透射电镜照片
●
图 2 纳米金粒子紫外-可见吸收光谱
●
A :空白对照 ;B -F :1 .875 ,3 .750 ,7 .500 ,15 .000 ,30 .000 m g·L - 1 粒子组
ogy of H F cells w as observed under the inverted m icroscope ;R esults The R elative grow th rate(RG R )w as 112 .653% ,111 .293% ,
89 .524% ,72 .109% ,46 .803% respectively in differentdose ofgold nano-particles groups ,the the RG R in 15 .000 m g·L - 1 ,30 .000
(Chin J Lab D iagn ,2011 ,15 :1242)
以纳米金为代表的贵金属纳米材料因其独特的 理化性能成为材料学家关注的热点 ,不仅在电子 、催 化[1 ,2]等高科技领域广泛应用 ,而且被越来越多地 应用于生物检测 、医学成像 、新型药物载体[3 - 5]等生 物医学研究领域 ,本实验拟对所制备的球形纳米金 粒子对人成纤维细胞的体外细胞毒性进行研究 ,以 为其在生物医学领域的应用提供依据 。 1 材料与方法 1 .1 实验材料及仪器 自备球形纳米金溶胶 ;人成 纤维 细 胞 ;DM EM 培养基 (G ibco ,美 国 ) ;胎 牛 血 清
基金项目 :吉林 省 科 技 厅 科 研 基 金 资 助 课 题 (200705325 ) ;吉 林 大 学 基本科研业务费项目资助课题 (200903062)
倡 通讯作者
(TBD ,美国) ;二甲基亚砜(Sigm a ,美国) ;0 .25% 胰酶 (H yclone ,美国)四甲基偶氮唑盐(M TT ,Sigm a ,美国) ; 其余试剂均为国产分析纯 ;JEO L JEM -1200EX 透射 电镜 (日本电子 ) ,CA RY 100 紫外可见吸收光 谱 仪 (瓦里安 ,美国) ;D NM -9602 酶标分析仪(北京普朗新 技术有限公司) ;1 × 70-S8F 倒置相差显微镜(O LYM - PU S ) 。 1 .2 方法 1 .2 .1 球形纳米金溶胶的制备 柠檬酸钠还原法 制备球形纳米金粒子 ,具体步骤如下 :将100 m l0畅25 m M 四氯金酸水溶液置于 250 m L 圆底烧瓶中 ,搅拌 条件下加热至沸腾状态 ,然后加入 5% 柠檬酸钠水 溶液 1 m L ,待溶液变成酒红色后 5 m in 停止加热 ,空
培养液中加入不同浓度纳米金溶胶(1 .875 m g·L - 1 、3 .750 m g·L - 1 、7 .500 m g·L - 1 、15 .000 m g·L - 1 、30 .000 m g·L - 1 )各
组细胞相对增殖率(RG R )分别为 112 .653% ,111 .293% ,89 .524% ,72 .109% ,46 .803% ,加入 15 .000 m g·L - 1 、30 .000 m g·
m g·L - 1 group had significantdifference com pared w ith blank group (P < 0 .05) ,the cytoxicity grade w as 0 grade in 1 .875 m g·L - 1 、
3 .75 m g·L - 1 groups ,1 grade in 7 .5 m g·L - 1 、15 m g·L - 1 groups and 3grade in 30 .000 m g·L - 1 groups .The H F had norm alm 月 第 15 卷 第 8 期
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气自然冷却 ,得到球形纳米金粒子 ,直径约 25 nm 。 1 .2 .2 细胞培养 取手术切除的新鲜儿童包皮组 织 ,75% 酒精消毒后去除结缔组织 ,PBS 冲洗 3 次 , 剪成 5 m m × 5 m m 小块 ,0 .4% 中性蛋白酶 4 ℃ 消化 24 h ,分离真皮和表皮 ,将真皮剪碎 ,用 0 .25% Ⅰ 型
RG R (% ) = 试验组平均 OD 值 × 100% /阴性对 照组平均 O D 值
实验中所有结果用均 值 ± 标 准 差 表 示 ,通 过 SPSS 软件包进行统计学处理 ,试验组与阴性对照组 组间差异用 t检验 ,P < 0 .05 为显著性差异 。 2 结果 2 .1 纳米金粒子与细胞形态观察 纳米金粒子透 射电镜照片及可见-紫外吸收光谱见图 1 ,2 。
H um an fibroblasts(H F) w ere cultured w ith m edium contained differentdose ofsphericalgold nano-particles(1 .875 m g·L - 1 、3 .750
m g·L - 1 、7 .500 m g·L - 1 、15 .000 m g·L - 1 、30 .000 m g·L - 1 ) for24 hours ,the cytotoxicity effectw as tested by M TT m ethod ,m orphol-
(1 .吉林大学中日联谊医院 口腔科 ,吉林长春 130033 ;2 .吉林大学第一临床医院 耳鼻咽喉头颈外科)
摘要 :目的 研究球形纳米金粒子对人成纤维细胞的体外细胞毒性作用 ;方法 应用柠檬酸钠还原法制备纳米
金溶胶 ,将纳米金溶胶制备成不同浓度的含金培养液 ,采用 M TT 法体外检测其对人成纤维细胞的细胞毒效应 。 结果
]胶原酶 37 ℃ 消化 3 - 4 h ,加含 10% FBS 的 DM EM 终
止消化 ,200 目网过滤 ,1 000 r·m in - 1 离心 5 m in ,加 DM EM 重悬细胞 ,转移至培养瓶内培养 ,4 h 后首次 换液 ,去除混有的杂细胞 。 传代 48 - 72 小时 ,取处 于对数生长期的细胞 ,0 .25% 胰酶消化后调整细胞 密度为 1 × 105 个·m L - 1 ,均匀接种到 96 孔板内 ,每 孔 200 μL ,5% CO 2 ,37 ℃ 孵育 ,至细胞单层铺满孔底 后 ,吸 弃 原 培 养 液 ,将 制 备 的 纳 米 金 粒 子 溶 胶 用 DM EM 细胞培养液 (加入 100 U ·m L - 1 青霉素-链霉 素) 稀释后加入到细胞培养板中 ,根据加入的纳米 金浓 度 不 同 分 为 7 组 ,各 组 试 验 终 浓 度 分 别 为 1畅875 ,3畅750 ,7畅500 ,15畅000 ,30畅000 m g·L - 1 ,每个浓 度设 6 复孔 ,空白对照组只加 DM EM 细胞培养液 。 作用 24 h 后 ,吸弃原培养液 ,倒置相差显微镜下观 察细 胞 形 态 。 各 孔 用 D PBS 小 心 清 洗 1 遍 ,加 入 DM EM 培养液 200 μl ,再加入 5 g·L - 1 M TT 溶液 10 μl ,继续培养 4 h 后中止培养 ,小心吸去孔内培养液 , 每孔加入 100 μl二甲基亚砜 ,置摇床上低速振荡 10 m in ,使结晶物充分溶解 。 在酶标仪 O D 值 570 nm 处 测量各孔的吸光值 ,参比波长 650 nm 。 1 .2 .3 评价标准和统计处理 细胞相对增值率 (RG R )计算及细胞毒性评价标准参考ISO 2109932-5 细胞毒性试验[6]采用 5 分制法进行细胞毒性分级 :0 级 :RG R ≥ 100% ,Ⅰ 级 :RG R 在 75% - 99% ,Ⅱ 级 : RG R 在 50% - 74% ,Ⅲ 级 :RG R 在 25% - 49% ,Ⅳ 级 RG R 在 1% - 24% ,Ⅴ 级 RG R < 1% 。 0 级和 Ⅰ 级被 认为没有细胞毒性 ,Ⅱ 级为轻度细胞毒性 ,Ⅲ 级和 Ⅳ 级为中度细胞毒性 ,Ⅴ 级为明显细胞毒性 。