电泳技术要求PDF
电泳漆技术标准
二、电泳漆的工艺性能。电泳漆在使用过程中的工艺稳定性才是关键。电泳 漆的槽液工艺参数如下：
项
目
单
位
指
标
PH 值（25℃） 电导率（25℃） 固体份 溶剂含量 灰份（黑） 灰份（灰） MEQ 值 施工温度 施工电压 施工时间 电泳电压 泳透力 （一汽钢管法 210V） 库仑效率 击穿电压 L 效果 重溶性 加热减量 沉淀性 超滤液 PH 值 超滤液固体份 阳极液 PH 值 阳极液电导率 槽液更新周期 月 % μm/cm % % % % 毫克当量/100g
40—60（60 ）
≥5 ≥10
% H cm 级 mm 小时 小时 小时 小时 小时 小时
0
≤2 ≥540 ≥900（1000） ≥300 ≥90 ≥1 ≥48
使用两年后涂层完整
注：我厂现有设备限定的工艺参数如下： 1. 电泳电压：100—250V 2. 电泳时间：150—180S 3. 烘道烘干温度：＜ 180℃ 4. 烘道烘干时间：＜ 30min
℃
5.8—6.6
≤1600
15—18 2.5—4.5 9±4 21±3 30±4 28—32 170—250 150—210 170—250
≥80 ≥25 ＞280
V S V % mg/c V
水平面与垂直面涂膜外观无明显差别 % %
≤8 ≤8
24h 静止，工作液不分层，颜料沉淀≤50mL/L,易搅起 5.8—6.8 0.4—0.7 2.5—5 600—1000
电泳漆的技术要求
电泳漆主要考虑两个方面的因素：涂料的漆膜性能和工艺性能。 一、电泳漆膜的性能，必须达到如下要求： 项 颜色 外观 膜厚 光泽度 铅笔硬度 冲击强度 附着力 柔韧性 耐盐雾性(工件) 耐盐雾性(试片) 耐水性 耐酸性 耐碱性 耐机油性 耐候性 目 指 标 单 位 检 测 方 法 目测 目测 μm
Q-RT 011-2008电泳涂层要求(1)
宁波锐泰机械制造有限公司企业标准Q/RT 011-2008电泳涂层要求2008-12-17发布 2008-12-20实施 宁波锐泰机械制造有限公司发布前 言本标准对《电泳涂层的主要性能指标》进行了修订，统一了标准的行文格式。
本标准对金属零（部）件电泳涂层的常规检验项目与特殊检验项目进行了区分。
本标准增加的内容有：耐盐雾试验、电泳涂装L形试板试验效果的判定级别、泳透力板耐盐雾试验判定以及划格试验判定级别。
本标准自实施之日起代替《电泳涂层的主要性能指标》。
本标准由宁波锐泰机械制造有限公司工程技术部提出，由宁波锐泰机械 制造有限公司标准化委员会归口。
本标准主要起草人： 李春艳本标准首次发布日期：2007年7月11日，修订日期2008年12月17日。
宁波锐泰机械制造有限公司企业标准电泳涂层要求 Q/RT 011-20081 范围本标准规定了金属零(部)件电泳涂层要求及试验方法。
本标准适用于电泳涂层验收。
2 规范性引用文件下列标准中的条款通过本标准的引用而成为本标准的条款。
凡是注日期的引用文件，其随后所有的修改单（不包括勘误的内容）或修订版均不适用于本标准。
凡是不注日期的引用文件，其最新版本适用于本标准。
JB/T 10242-2001 阴极电泳涂装通用技术规范QC/T 484-1999 汽车油漆涂层3 金属零（部）件电泳涂层常规检验项目及试验方法3.1 外观金属零（部）件电泳涂层外观均匀、平整、光滑，无杂质、缩孔、凹陷、起皱、掉皮、涂料痕迹，无露底。
3.2 涂层厚度涂层厚度要求：20±5 μm。
按照GB/T1764-79规定进行，检测仪器用杠杆千分尺（精确度为2μm）或磁性测厚仪（测定范围0～500μm、精确度为2μm）。
3.3附着力—划格试验按GB/T9286规定进行，划格间距为1mm，试验后评定结果达0级或1级。
0级：切割边缘完全平滑，无一格脱落。
1级：在切口交叉处有少许涂层脱落但交叉切割面积受影响不能明显大于5%。
Invitrogen E-Gel Power Snap电泳系统说明书
唯一款整合凝胶电泳和成像的平台，简化DNA 电泳流程 Invitrogen TM E-Gel TM Power Snap 电泳系统整合了快速实时的核酸电泳和高分辨率成像功能，为您提供无与伦比的便利性。
这种整合式设计有助于减少流程时间，加速您的科研发现。
• 快速分析—从上样到成像，最快仅需15分钟• 操作简单—大尺寸触摸屏，直观的用户界面和操作系统 • 安全方便—配合使用Invitrogen TM E-Gel TM 预制胶，将化学品危害降至最低台式设计，快速便捷Invitrogen TM E-Gel TM Power Snap式设备，配备有蓝光透射仪，操作安全，此外，它还自带琥珀色滤光片，可用于对预染了SYBR TM Safe 或 SYBR TM Gold染料的脂糖凝胶中的样品进行实时样品追踪。
方案，适用于不同类型的E-Gel琼脂糖凝胶。
高分辨率数码相机快速简单完成凝胶成像无需外接电源直接由下方电泳设备供电方便转移图片文件32GB海量存储凝胶图片选择适合的E-Gel 预制琼脂糖凝胶类型E-Gel Powe Snap 电泳设备与以下E-Gel 预制琼脂糖凝胶兼容，仪器内预设针对不同凝胶类型的运行程序方案。
参考下表，选择适合的E-Gel 预制琼脂糖凝胶类型。
了解更多，请登录thermofi/egels 。
E-Gel SizeSelect II 预制琼脂糖凝胶最为巧妙的DNA 凝胶纯化方法，二代测序的得力助手Invitrogen TM E-Gel ™ SizeSelect ™ II 琼脂糖凝胶是二代测序的得力助手，无需切胶和纯化试剂盒，即可从凝胶中回收您感兴趣的DNA 条带，适用于<1kb DNA 片段的分离，纯化的DNA 片段可直接用于二代测序平台文库的构建或下游克隆实验。
上样电泳回收目标条带通过三个简单的步骤完成DNA 的凝胶纯化E-Gel SizeSelect II 琼脂糖凝胶为双梳凝胶。
将样品加到上面一排孔中，开始电泳，直至条带迁移至底部一排孔中。
电泳漆技术说明
目录一、公司简介二、电泳原理三、规范工艺流程四、产品简介五、全系列丙烯酸聚氨酯电著产品简介六、全系列产品规格七、全系列涂膜性能八、补给剂资料九、管理对策十、问题点与对策十一、各型号产品说明书二、电泳涂装原理：阴极电泳涂料是一种具有半水溶型和悬体系特征的多组份体系，在电场作用下，已中和的阳离子树脂携带的涂料粒子在阴极进行电沉积，其过程包括电泳、电解、电沉积、电渗四种现象。
1、电泳：悬浮在极性液体中的带电粒子由于电场影响而发生泳动的现象。
阳离子型树脂粒子向作为阴极的工件移动。
2、电解：液体中的氢离子和氢氧根离子在直流电源的作用下，生成氢气和氧气，阴极界面PH值升高。
3、电沉积：阳离子涂料粒子在吸引它的电极（阴极）上被还原为中性不溶脂，析出粘附，形成不溶解的涂膜。
过程如下：H2O≒H++OH-阳极：2H++2OH—- 2e→H2O+1/2O2↑+2H+阴极：2OH-+2H++2e→H2↑+2OH-R1 R 1∣∣~NH++OH-→~N↓+H2O ∣∣R 2 R24、电渗：在外电场力作用下，涂膜内部所含的水份从涂膜中渗析出来移向槽液，进行内聚部分脱水。
电渗使亲水涂膜变为憎水涂膜，脱水使涂膜致密化。
由于上述四个过程是连续进行的，获得的涂膜在烘干之前含水量在10%以下，可以直接进行水洗、烘干，最后形成连续均一的品质优良的涂膜。
三、规范工艺流程：1.环氧体系电泳流程：高温脱脂（加超声波）→常温脱脂→水洗三次→酸洗除锈→水洗三次→流动水洗→表调→磷化→水洗三次→流动水洗→纯水洗两次→电泳涂装→回收水洗三次→纯水浸洗两次→纯水喷淋→脱水剂洗/吹洗→烘干固化→成品包装2.透明有色体系电泳流程：电镀工件（抛光工件）→化学除油（加超声波）→水洗两次→电解除油→水洗三次（溢流水洗）→中和（弱酸洗）→水洗三次（溢流水洗）→纯水洗两次→电泳涂装（透明及各色）→回收纯水洗两次→纯水洗三次（溢流）→脱水剂洗→滴水（吹净水珠）→烘烤→成品包装四、产品简介：1.环氧体系电泳涂料：本公司之环氧体系电泳涂料目前主要以色浆、乳液双组份供应市场。
SDS-PAGE电泳的标准操作规程
SDS-PAGE电泳的标准操作规程（编号：039）1、目的及适用范围SDS-PAGE电泳的分离原理，是根据大多数蛋白质都能与阴离子表面活性剂十二烷基硫酸钠（SDS）按重量比结合成复合物，使蛋白分子所带的负电荷远远超过天然蛋白分子的净电荷，消除了蛋白分子的电荷效应，使蛋白按分子大小分离，主要用于蛋白质分子量的测定、蛋白质混合组分的分离和蛋白质亚基组分的分析等方面。
2、主要仪器恒压或恒流电源、垂直板、制胶模具3、试剂及配制方法试剂配制方法或要求H2O 电阻率不低于18.2 MΩ.cm1.5 M Tris-HCl 1.5 moL/L Tris-HCl缓冲液，pH 8.830% Acrylamide 30% 丙烯酰胺溶液（避光保存）10% SDS 10% SDS溶液10% APS 10% 过硫酸铵溶液（临用前配制）TEMED TEMED溶液1 M Tris-HCl 1 moL/L Tris-HCl缓冲液，pH 6.815.1g、甘氨酸94 g、SDS 5 g，水稀释至1 L，pH 8.35×电极缓冲液 Tris2×Loading buffer 100 mM Tris-HCl（pH6.8）、4% SDS、0.2% 溴酚蓝、20% 甘油，用于非还原SDS-PAGE电泳，如用于还原SDS-PAGE电泳，则再加2% β-巯基乙醇5×Loading buffer 250 mM Tris-HCl（pH6.8）、10% SDS、0.5% 溴酚蓝、50% 甘油，用于非还原SDS-PAGE电泳，如用于还原SDS-PAGE电泳，则再加5% β-巯基乙醇考马斯亮蓝染色液 0.1%考马斯亮蓝R250、25%异丙醇、10%冰醋酸，水稀释至1 L考马斯亮蓝脱色液醋酸100 mL、乙醇50 mL、水850 mL4、操作步骤4.1 制胶：取合适的密封垫片和两块已清洁的干燥的玻璃板，组装成灌胶的模具，按下表制成分离胶，灌入模具内一定高度（一般离玻璃板上端3.5 cm），小心加水或异丙醇封顶（约0.5 cm高），室温下聚合（温度不同，聚合时间不同，20℃大约需30 min）。
[指南]核酸电泳的注意事项
![[指南]核酸电泳的注意事项](https://img.taocdn.com/s3/m/a356bd4a3a3567ec102de2bd960590c69ec3d863.png)
核酸电泳的注意事项1. 琼脂糖：不同厂家、不同批号的琼脂糖，其杂质含量不同，影响DNA的迁移及荧光背景的强度，应有选择地使用。
2. 凝胶的制备：凝胶中所加缓冲液应与电泳槽中的相一致，溶解的凝胶应及时倒入板中，避免倒入前凝固结块。
倒入板中的凝胶应避免出现气泡，以免影响电泳结果。
3. 电泳缓冲液：为保持电泳所需的离子强度和pH，应常更新电泳缓冲液。
4. 样品加入量：一般情况下，0.5cm宽的梳子可加0.5μg的DNA量，加样量的多少依据加样孔的大小及DNA中片段的数量和大小而定。
当加样孔大时，样品上样量应相应加大，否则会造成条带浅甚至辩认不清；反之则应适当减少加样量，但是上样量过多会造成加样孔超载，从而导致拖尾和弥散，对于较大的DNA此现象更明显。
5. DNA样品中盐浓度会影响DNA的迁移率，平行对照样品应使用同样的缓冲条件以消除这种影响。
DNA迁移率取决于琼脂糖凝胶的浓度，迁移分子的形状及大小。
采用不同浓度的凝胶有可能分辨范围广泛的DNA分子，制备琼脂糖凝胶可根据DNA分子的范围来决定凝胶的浓度。
小片段的DNA电泳应采用聚丙烯酰胺凝胶电泳以提高分辨率。
回收率低或为零1. 漂洗缓冲液中没加入乙醇.在使用前应确保乙醇已加入漂洗液PW中。
2. 吸附材料上有乙醇残留.洗脱时硅胶膜或硅胶树脂上有漂洗缓冲液残留，因含乙醇会降低洗脱效率。
在洗脱前可通过再次离心或置于50℃烤箱中5-10分钟，彻底去除漂洗缓冲液。
3. 洗脱缓冲液pH值偏低.DNA只在低盐buffer中才能被洗脱，如洗脱缓冲液EB (10 mM Tris·Cl, pH 8.5)或水。
洗脱效率取决于pH值。
最大洗脱效率在pH7.0-8.5间。
当用水洗脱时确保其pH值在此范围内。
4. 洗脱液加入位置不正确.洗脱液应加在硅胶膜中心部位以确保洗脱液会完全覆盖硅胶膜的表面，达到最大洗脱效率。
DNA质量不好洗脱产物含有乙醇残留.洗脱时硅胶膜或硅胶树脂上有漂洗缓冲液残留，会使洗脱产物中含有乙醇，影响下游操作。
琼脂糖凝胶电泳法（agarosegelelectrophoresis）
琼脂糖凝胶电泳法（agarose gel electrophoresis）agarose gel electrophoresisThe principle of 1. agarose gel electrophoresisAgarose gel electrophoresis is a standard method for isolation, identification and purification of DNA fragments. The technique is simple and rapid and can be used to distinguish DNA fragments that cannot be isolated by other methods such as density gradient centrifugation. When the dye Ethidium (bromide, EB) is dyed with low concentration fluorescent dye, DNA bands of 1-10ng can be detected at least under ultraviolet light so that the position of DNA fragments in the gel can be determined. In addition, a specific DNA band can be recovered from the electrophoretic gel for subsequent cloning operations.Agarose can be made into various shapes, sizes, and porosities. Agarose gel separated DNA slices with a wide range of sizes. Agarose gels of different concentrations could separate DNA fragments from 200bp to near 50kb. Agarose is commonly used in horizontal devices for electrophoresis under constant electric field with constant intensity and direction.Agarose is mainly used as a solid support substrate in DNA electrophoresis, and its density depends on the concentration of agarose. In the electric field, the negative charge DNA moves towards the anode at the neutral pH, and the migration rate is determined by the following factors:Molecular size of 1. DNA:A linear double stranded DNA molecules in a certain concentration in agarose gel migration rate and molecular weight of DNA is inversely proportional to the logarithm of the molecular, the greater the resistance is greater, more difficult in the gel pores. Therefore, the slower migration.2. agarose concentrationA linear DNA molecule of a given size has a different migration rate at different concentrations of agarose gels. The logarithm of mobility of DNA electrophoresis is linearly related to gel concentration. The choice of gel concentration depends on the size of the DNA molecule. The concentration required for separating DNA fragments less than 0.5kb is 1.2-1.5%, and the concentration of DNA molecules larger than 10KB is 0.3-0.7%, and the concentration of DNA fragments between them is0.8-1.0%.Conformation of 3.DNA moleculeWhen the DNA molecule is in different conformation, it moves in the electric field, not only in relation to the molecular weight, but also to its conformation. The same molecular weight of the linear, open loop and ultra helical DNA in agarose gel moving speed is not the same, ultra helical DNA moving fastest, and linear double stranded DNA move the slowest. As in the electrophoresis of plasmid purity found several gel DNA with plasmid DNA is difficult to determine the cause of different conformation or because of containing other caused by DNA, can be gradually recovered from the agarose gel, DNA, respectively,hydrolysis, using the same restriction enzyme and gel electrophoresis, as in the DNA appear on the map is the same. For the same kind of DNA.4 、 supply voltageAt low voltage, the migration rate of the linear DNA fragment is proportional to the applied voltage. But with the increase of field strength, the migration of DNA with different molecular weight fragment rate will increase with different amplitude, fragment is larger, because the field strength increases caused by migration rate increased more significantly, so the voltage increases, the effective separation range of agarose gel will be reduced. To maximize the resolution of the DNA fragment greater than 2KB, the voltage shall not exceed 5v/cm.5, the presence of embedded dyesEthidium bromide, a fluorescent dye, was used to detect DNA in agarose gels,The dye is embedded between the stacked base pairs, stretching the elongated and notched ring DNA, making it more rigid and reducing the linear DNA mobility by 15%.6. effect of ionic strengthThe composition and ionic strength of electrophoretic buffer affect the electrophoretic mobility of DNA. In the absence of ion existence (such as the misuse of distilled water gel), theconductivity minimum, DNA almost does not move in high ionic strength buffer in (such as the error plus 10 x buffer), has very high conductance and obvious heat production would cause serious gel melting or denaturation of DNA.For natural double stranded DNA, several commonly used electrophoretic buffers are TAE[, EDTA (pH8.0) and Tris- acetic acid], TBE (Tris-, boric acid and EDTA), TPE (Tris-, phosphoric acid and EDTA) are generally formulated as concentrated mother liquor and stored at room temperature.2. steps of agarose gel electrophoresis1. take 5 * TBE buffer, 20ml add water to 200ml, prepare 0.5 * TBE dilution buffer.2. glue preparation: weigh 0.4g agarose, a 200ml conical flask, adding 0.5 50ml * TBE dilution buffer, placed in a microwave oven (or electric heating) to remove all agarose melting, shake, this is the 0.8% agarose gel. During heating, the agarose particles attached to the bottle wall shall be shaken from time to time to enter the solution. Heating should be covered with sealing film to reduce moisture evaporation.3., the preparation of rubber board: plexiglass trough trough at the ends of each with rubber paste (width 1cm) sealed tightly. Place the sealed glue trough on the horizontal support, insert the sample comb, and pay attention to observe the gap between the comb tooth edge and the bottom of the rubber tank to keep the clearance of about 1mm. Adding to the ethidium bromide agarose liquid cooled to 45-60 DEG C in (EB) solution to thefinal concentration of 0.5 g /ml (or not added EB gel after electrophoresis, but EB solution with 0.5 g/ml staining). Absorb a small amount of molten agarose gel with a pipette and seal the inner side of the adhesive. After the agarose solution is coagulated, the remaining agarose is carefully poured into the gel groove to form a uniform adhesive layer. Pour glue when the temperature can not be too low, otherwise the solidification is uneven, the speed can not be too fast, otherwise prone to bubbles. After the gel has been completely solidified, dial the comb and pay attention not to damage the gel at the bottom of the comb. Then add 0.5 * TBE dilution buffer to the surface of the comb, just above the surface of the rubber sheet. Because of the edge effect, there will be some uplift near the sample slot, which prevents the buffer from entering the sample tank, so make sure the sample tank is filled with buffer.4. add sample: take 10 L enzymolysis liquid and mix with 2 l 6 * sample liquid, carefully add into the sample trough with micro liquid gun. If the content of DNA is low, the amount of sample can be increased according to the above proportion, but the total volume can not exceed the capacity of the sample tank. When each sample is added, replace the tip head to prevent contamination. Attention should be paid to handling the sample, avoiding damage to the gel or piercing the gel at the bottom of the sample slot.5. electrophoresis: after finishing the sample, close the electrophoresis cover and turn on the power immediately. The control voltage is kept at 60-100V and the current is above 40mA. When the br blue indicator band is moved to the gum 3/4, theelectrophoresis is stopped at all times.6. dyeing: no EB rubber plate, after electrophoresis, moved into 0.5 g/ml EB solution, dyeing at room temperature for 20-25 minutes.SevenObserve and photograph: adjust the shooting range and focal length of the lens under the long wavelength ultraviolet lamp with the wavelength of 254nm, and observe or dye the electrophoresis gel board with EB added. The presence of DNA showed a reddish orange fluorescence band visible to the naked eye. Finally, print the photos and make the relevant analysis records.Note: 1. observation of DNA can not be separated from ultraviolet transmittance instrument, but ultraviolet light has a cutting effect on DNA molecule. When the DNA is recovered from the glue, the illumination time should be shortened and the long wavelength ultraviolet lamp (300-360nm) should be adopted to reduce the ultraviolet ray cutting DNA.2.EB is a potent mutagen that has potential carcinogenicity and is moderately toxic. Therefore, gloves must be used when preparing and using it, and do not spill EB on the table or on the ground. Any container or article contaminated with EB must be specially treated before it can be washed or discarded.3. when the EB is too much, the gel is too dark and the DNA band is not clear, the gel can be distilled into distilled water andbe re observed after 30 minutes.4. avoid the formation of bubbles when preparing agarose gel5., the sample should be of appropriate concentration and smaller volume, with a micro syringe slowly add samples, point sample, the power must be in a closed state. In order to indicate the distance between electrophoresis and to prevent the sample from floating in the buffer of the electrophoresis bath, the sample buffer containing sucrose or glycerol and indicator (bromo phenol blue, xylene blue, etc.) is often added into the prepared sample. In addition, the salt content in the sample can not be too high, otherwise, the electrophoresis will occur in the disappearance of zones and the uneven front. The content of DNA in the sample should be no less than 0.1 mu g in each zone, and the concentration of DNA is too high, which will widen the electrophoresis zone and change the swimming distance of DNA.6., under the violet light observation, should wear protective glasses or plexiglass mask, so as not to damage the eye.。
SDS-PAGE电泳技术
4.4试剂和溶液（以下所用试剂均为分析纯级）4.4.1 纯化水4.4.2 A液（1.5mol/L Tris-HCl，pH8.8）：称取18.17g Tris加80ml纯化水溶解，用6 mol/L 盐酸调pH值至8.8，加纯化水定容至100ml。
4.4.3 B液（30%丙烯酰胺）：称取29.1g丙烯酰胺，0.9 g N,N’-甲叉双丙烯酰胺于100ml 烧杯中，加纯化水溶解，用量筒定容至100ml，待其完全溶解后用滤纸过滤，避光4℃保存。
4.4.4 C液（10%SDS）：称取10g SDS于100ml烧杯中，加纯化水溶解，用量筒定容至100ml。
4.4.5 D液：10%过硫酸铵溶液（4℃保存有效期为3个月）。
4.4.6 E液（1.0mol/L Tris-HCl，pH6.8）：称取12.11g Tris加80ml纯化水溶解，用6 mol/L 盐酸调pH值至6.8，加纯化水定容至100ml。
4.4.7 电极缓冲液母液（5×），称取15.1g Tris，94.0g甘氨酸，5.0g SDS加800ml纯化水溶解，用6mol/L盐酸调pH值至8.3，加纯化水定容至1000ml。
4.4.8 电极缓冲液，量取200ml电极缓冲液母液，加700ml纯化水稀释，再用6 mol/L 盐酸调pH值至8.3，加纯化水定容至1000ml。
4.4.9 供试品缓冲液，称取0.303g Tris，0.189ml盐酸，4ml甘油，0.002g溴酚蓝，0.8g SDS，加纯化水定容至10ml，此溶液用于非还原SDS-PAGE电泳，如用于还原SDS-PAGE电泳，则再加2ml β-巯基乙醇；4℃保存。
4.4.10 考马斯亮蓝染色液，称取1.25g考马斯亮蓝R-250，250ml甲醇，50ml冰醋酸，加纯化水溶解至500 ml。
4.4.11 考马斯亮蓝脱色液，量取150ml 95%乙醇，75ml冰醋酸，加纯化水至1000 ml。
电泳工艺安全操作规程
电泳工艺安全操作规程
《电泳工艺安全操作规程》
一、前言
电泳工艺是一种广泛应用于工业生产中的涂装技术，但在操作时必须严格遵守安全操作规程，以确保人身安全和设备安全。
本规程旨在规范电泳工艺操作，保障操作人员的安全。
二、操作前准备
1. 在进行电泳工艺操作前，操作人员必须穿戴好相关的劳动防护用具，包括防护眼镜、手套、防护服等。
2. 检查设备和工具是否正常，如有异常及时进行维修或更换。
三、操作过程
1. 操作人员必须全神贯注，不能分心，以避免操作失误造成事故。
2. 禁止使用带有金属的工具进行电泳工艺操作，以避免触电或其他意外发生。
3. 在操作时必须遵守设备操作流程和规程，禁止擅自改变工艺参数。
4. 在操作过程中，如发现异常情况，应立即停止操作，并通知相关人员进行处理。
四、操作后维护
1. 操作结束后，要及时关闭设备电源和清理工作区域，确保设备和场地的整洁和安全。
2. 对操作设备进行定期维护和保养，确保设备的正常运行。
3. 对操作过程中出现的问题或事故进行记录和汇报，以便进行事故分析和改进工艺。
五、紧急处理
在操作过程中如发生事故或意外情况，操作人员应立即采取相应的应急措施，通知相关人员进行处理。
通过遵守以上安全操作规程，能够有效减少电泳工艺操作中的安全风险，保障操作人员和设备的安全，确保工艺的正常运行。
电泳技术的临床应用-完整版
电泳技术的临床应用-完整版
电泳技术的临床应用-完整版
一、引言
电泳技术是一种常用的生物分析方法，其在临床应用中发挥着重要的作用。
本文将详细介绍电泳技术在临床应用中的各个方面，包括基本原理、常用技术类型、临床检测方法以及应用案例等。
二、基本原理
电泳技术是利用电场作用下分离物质的一种方法。
其原理基于分子在电场中的迁移速率与其电荷量、形状和大小有关。
主要原理包括凝胶电泳和毛细管电泳两种类型，分别适用于分离大分子和小分子。
本章将详细阐述这两种类型的原理和适用范围。
三、常用技术类型
电泳技术有多种类型，常用的包括聚丙烯酰胺凝胶电泳、蛋白质凝胶电泳、DNA凝胶电泳等。
本章将分别介绍这些常用的技术类型，包括原理、操作步骤和实验条件等。
四、临床检测方法
电泳技术在临床应用中可用于多种检测方法，包括基因突变检测、蛋白质定量和分析、DNA指纹技术等。
本章将详细介绍这些临床检测方法的原理、步骤和应用案例。
五、应用案例
电泳技术在临床应用中有许多成功的案例，本章将选取几个典型的应用案例进行详细介绍，包括基因突变检测在遗传病诊断中的应用、蛋白质电泳在肿瘤标记物检测中的应用等。
六、附录
本文档涉及的附件包括电泳实验数据表格、实验操作图解等。
具体内容请参见附件部分。
七、法律名词及注释
本文所涉及的法律名词及注释包括但不限于：国家药品监督管理局、医疗器械管理法、医疗器械注册证等。
具体的法律名词及注释请见法律名词及注释部分。
06电泳-蛋白质电泳技术-to S
6.1.3 电泳技术的分类
原则上按电泳的分离原理来分。可分为三类： 自由移动界面电泳
纸电泳 醋酸纤维素薄膜电泳 淀粉凝胶电泳 琼脂糖凝胶电泳 聚丙烯酰胺凝胶电泳 毛细管电泳
14
区带电泳
稳态电泳（等电聚焦，等速电泳）
2011-11-7
北京理工大学生命科学与技术学院 生物分析化学
纸电泳（Paper electrophoresis）； 醋酸纤维素薄膜电泳（Cellulose Acetate electrophoresis）； 聚丙烯酰胺凝胶电泳（Polyacrylamide Gel electrophoresis）（PAGE）； SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS－PAGE）。
V=J
E大，V快； K大，V小。
2011-11-7
25
2011-11-7
26
北京理工大学生命科学与技术学院 生物分析化学
北京理工大学生命科学与技术学院 生物分析化学
6.1.5 凝胶电泳的支持介质
为什么要用支持介质？
抗对流；抗扩散。
6.1.5 凝胶电泳的支持介质
按支持介质的不同把电泳技术分五类：
2011-11-7 3
6.1.1 电泳技术的发展
o1909 Michaelis 测定了酶的等电点和胶体粒子在电泳中的迁移， 并将这种迁移命名为 “电泳” o1912－1915 Ellis, Powis 观察电泳迁移 o1923－1924 Svedlberg 对电泳过程的白蛋白进行荧光照相 o1934 Ab Abramson 研究了膜蛋白的尺寸、形状对电迁移的影响 oSvedlberg & Tiselius 又使用光学方法观察白蛋白的电迁移过程， 直接测量感光板上电泳带的迁移距离。 1937 Tiselius 利用“shadow 阴影照相法”观察到电场中蛋白 质界面的移动，并证明了血清是由白蛋白、 1、2、和 球蛋 白组成——称为 “移界电泳法” ——moving boundary EP
电泳环境技术
请记住，这些厂家可能符合这些废气排放标准，但不符
合有关气味的有关规定。 一般情况下，绝大多数电泳涂料用户（汽车制造商） 在使用许可产品，需要补加有机溶剂，每年少于５ｔ。在 这里，如果电泳后涂层实行湿喷面漆等所造成的溶剂消 耗是必须分开来评估的。还有如果油漆剥落（从工件或 夫具上），也必须作为一个单独过程中的来评估，因为它 会造成液体与固体之间的污染物（因化学剥离），或气体 与固体之间的污染物（燃烧）。 涂料／化学品供应商能协助汽车厂家确定所排放废 气的性质和程度。
表1废气处理序号方法物理化学原理设备过滤从废气中将固体和液体分离过滤器纤维纸沉降槽吸收在液体介质中诱捕有害气体冷凝低温分离高沸点危害物质吸附在固体介质中诱捕有害气体例如活性炭等从固体基体中去除污染物洗涤器生物洗涤器生物过滤器制冷机冷凝分离器固体床吸收器作为吸附焚烧用蒸汽和加热气体使可燃有机产品化学转化热补充燃烧催化补充燃烧电加速补充燃烧蓄热式补充燃烧2008年6月杭州表2排放物处理3排放物的处理与电泳装置正在运行的电泳线的排放废物来源除了电泳后清洗区前处理槽阳极和超滤系统循环形成废水外还有电泳烘房里的化学交联剂和烘干过程中的油烟分解物等
从除油器收集的油水通过乳化分离成废油和水，其 分离的水和清洗水、没有浆的废磷化液一起输送至持续 中和槽进行中和处理。含有六价铬（｛屯，－ｆＪｄ液中的化合物） 的废水输送至中和槽前被收集进行铬去毒，然后至中和 槽。清洗超滤装置（当有必要放空时）用的去离子水先 进行固体涂料凝聚，然后进行去毒，再输送到中和槽。如 果电泳涂料是含铅的，它与磷化后的清洗水混合生成磷 酸铅沉淀物。 废水中和是用ＮａＯＨ（或Ｃａ（ＯＨ）ｒ），Ｈ，ＳＯ。和Ｆｅ３＋溶 液，最后输送到沉降槽，添加絮凝Ｎ／Ｊ０速沉淀，然后过 滤，清水通过ＰＨ值调整后排放【３】。淤泥经过压滤没有进 一步使用，一般倾倒至指定处理废物的空桶中集中处理。 经过上述清洗过程的废水将在当地的污水处理厂进
电泳工艺
电泳工艺一：工艺流程：酸洗→水洗→预脱脂→脱脂→水洗→水洗→磷化→水洗→水洗→超声波清洗→纯水洗→电泳→喷淋洗→水洗→纯水洗→风干→烘烤设备：1．电泳槽：材料PVC或玻璃缸，配有漆液主循环过滤系统、超滤系统、热交换循环系统、阳极隔膜箱，主要分为主槽和副槽，副槽内电泳漆不直接参与电泳涂层，而是电泳漆液循环泵吸入口，积聚泡，加漆及超滤液返回电泳槽的周转的地方，一般电泳主槽和副槽容积比为1：10，平时循环落差为50mm左右。
2．超滤机：超滤即通过半透膜，该膜孔径在10-3-10-2μm，能将槽液中悬浮的颜料，高分子树脂截面挡回而使用槽液中的去离子水、有机溶剂、无机杂子、低分子树脂和前处理带来的磷酸盐通过半透膜，收集汇流在一起成为超滤渗透液，超滤的品种有管式、卷式、中空纤维式、板式，目前以卷式和中空纤维较好。
其中UF排量根据槽体大小选择，以我们公司为例有20L、50L、100L、200L、500L/每小时的UF排量。
3．纯水机：电泳时纯水的要求较高，好的纯水是保证电泳涂装性能的基础，纯水机有反渗透、电渗析、离子交换树脂等几种。
目前市面上用得多的是离子交换，其出水量根据生产选择，以我公司为例有0.5T/H、1T/H、2T/H、5T/H的纯水机。
4．电源：间歇式软启动，自动计时控制功能，稳压限流功能，过流短路过载保护功能。
各工艺的要求及指标：1．酸洗：根据工件的锈蚀情况而定，如果工件无锈蚀，此工艺可省去，如需要，建议用磷酸。
2．脱脂：此工序非常重要，脱脂的程序直接影响到后序工艺及成品的质量和效率，本工艺要求超声波，以除去夹层中的油脂，温度在70℃左右。
3．磷化：此目的是增强漆膜结合力及整体涂层防护功能，根据工件的特点，即弹簧本身及夹缝三角铁的松紧程度，此工序可用镀锌替代。
4．超声波清洗：由于工件夹缝多的特点，此工序是为了彻底清除夹缝中的残液，以免影响后续工艺，工序中为清水中清洗，水温在80℃左右为佳。
5．电泳：此工艺所用产品为新一代高柔韧性的产品KLL-8098，具有较优异的涂层性能，配槽比例为漆：水=1：4，操作电压60-150V，时间60S，温度180℃，操作条件的选择应根据工件的大小数量进行择优选取。
钣金电泳件技术要求和试验方法
钣⾦电泳件技术要求和试验⽅法钣⾦⼆次加⼯(电泳件)⽬次前⾔............................................................................. II 钣⾦电泳件检验规范. (13)1 范围 (13)2 规范性引⽤⽂件 (13)3 技术要求及试验⽅法 (13)4 检验规则 (15)5 标志、包装、运输和贮存 (16)6 对⽐及审查(针对新⼚家、新物料) (16)附录 A （规范性附录）涂膜⼀般制备⽅法 (21)附录 B （规范性附录）涂膜（漆膜）外观质量测定⽅法 (22)附录 C （规范性附录）涂膜（漆膜）厚度测定⽅法 (23)附录 D （规范性附录）涂膜（漆膜）光泽度测定⽅法 (24)附录 E （规范性附录）涂膜（漆膜）附着⼒测定⽅法—划格法 (25)附录 F （规范性附录）涂膜（漆膜）铅笔硬度测定⽅法 (26)附录G （规范性附录）涂膜（漆膜）冲击⼒测定⽅法 (27)附录H （规范性附录）涂膜（漆膜）耐中性盐雾性能测定 (28)附录I （规范性附录）涂膜（漆膜）柔韧性测定⽅法--圆柱法 (30)附录J （规范性附录）钣⾦喷塑件、电镀件、电泳件、喷漆件检验报告模板 (31)钣⾦电泳件检验规范1 范围本标准规定了钣⾦电泳件产品的技术要求、试验⽅法、检验规则及标志、包装、运输、贮存要求。
本标准适⽤于公司家⽤和类似⽤途电器产品⽤的钣⾦电泳件的检验。
2 规范性引⽤⽂件下列⽂件对于本⽂件的引⽤是必不可少的，凡是注⽇期的引⽤⽂件，仅注⽇期的版本适⽤于本⽂件。
凡是不注⽇期的引⽤⽂件，其最新版本（包括所有的修改单）适⽤于本⽂件。
QJ/GD 12.12.004 环保标识使⽤管理规定QJ/GD 40.01.011 外协外购件⼊⼚验收通则QJ/GD 92.00.001 环保产品中有害物质控制管理规定3 技术要求及试验⽅法3.1 外观3.1.1 漆膜完整，⽆起泡、针孔、杂质、划伤、露底等缺陷，切边及孔边⽑刺不能⼤于0.1mm。
ed电泳[整理版]
![ed电泳[整理版]](https://img.taocdn.com/s3/m/a8e34262f56527d3240c844769eae009581ba276.png)
电泳electrophoresis简单说电泳就是把某些物质放在一个可以游泳的地方（某种基质），然后在这个泳池的两端加上电压，让这种物质在里面游起来，以达到某种实验或应用目的。
什么是电泳溶液中带电粒子（离子）在电场中移动的现象。
利用带电粒子在电场中移动速度不同而达到分离的技术称为电泳技术。
1937 年瑞典学者A.W.K.蒂塞利乌斯设计制造了移动界面电泳仪，分离了马血清白蛋白的3种球蛋白，创建了电泳技术。
在确定的条件下，带电粒子在单位电场强度作用下，单位时间内移动的距离（即迁移率）为常数，是该带电粒子的物化特征性常数。
不同带电粒子因所带电荷不同，或虽所带电荷相同但荷质比不同，在同一电场中电泳，经一定时间后，由于移动距离不同而相互分离。
分开的距离与外加电场的电压与电泳时间成正比。
在外加直流电源的作用下，胶体微粒在分散介质里向阴极或阳极作定向移动，这种现象叫做电泳。
利用电泳现象使物质分离，这种技术也叫做电泳。
胶体有电泳现象，证明胶体的微粒带有电荷。
各种胶体微粒的本质不同，它们吸附的离子不同，所以带有不同的电荷。
利用电泳可以确定胶体微粒的电性质，向阳极移动的胶粒带负电荷，向阴极移动的胶粒带正电荷。
一般来讲，金属氢氧化物、金属氧化物等胶体微粒吸附阳离子，带正电荷；非金属氧化物、非金属硫化物等胶体微粒吸附阴离子，带负电荷。
因此，在电泳实验中，氢氧化铁胶体微粒向阴极移动，三硫化二砷胶体微粒向阳极移动。
利用电泳可以分离带不同电荷的溶胶。
例如，陶瓷工业中用的粘土，往往带有氧化铁，要除去氧化铁，可以把粘土和水一起搅拌成悬浮液，由于粘土粒子带负电荷，氧化铁粒子带正电荷，通电后在阳极附近会聚集出很纯净的粘土。
工厂除尘也用到电泳。
利用电泳还可以检出被分离物，在生化和临床诊断方面发挥重要作用。
本世纪40年代末到50年代初相继发展利用支持物进行的电泳，如滤纸电泳，醋酸纤维素膜电泳、琼脂电泳；50年代末又出现淀粉凝胶电泳和聚丙烯酰胺凝胶电泳等。
氢氧化铁胶体电动电位的测定（电泳法）
氢氧化铁胶体电动电位的测定（电泳法）氢氧化铁胶体电动电位的测定⼀、⽬的要求1、掌握电泳法测定Fe(OH)3溶胶电动电势的原理和⽅法。
2、通过实验观察并熟悉胶体的电泳现象。
⼆、实验原理在胶体溶液中，分散在介质中的微粒由于⾃⾝的电离或表⾯吸附其他粒⼦⽽形成带⼀定电荷的胶粒，同时在胶粒附近的介质中必然分布有与胶粒表⾯电性相反⽽电荷数量相同的反离⼦，形成⼀个扩散双电层。
在外电场作⽤下，荷点的胶粒携带起周围⼀定厚度的吸附层向带相反电荷的电极运动，在荷电胶粒吸附层的外界⾯与介质之间相对运动的边界处相对于均匀介质内部产⽣⼀电势，为ζ电势。
它随吸附层内离⼦浓度，电荷性质的变化⽽变化。
它与胶体的稳定性有关，ζ绝对值越⼤，表明胶粒电荷越多，胶粒间斥⼒越⼤，胶体越稳定。
本实验⽤界⾯移动法测该胶体的电势。
在胶体管中，以KCl为介质，⽤Fe(OH)3溶胶通电后移动，借助测⾼仪测量胶粒运动的距离，⽤秒表记录时间，可算出运动速度。
当带电胶粒在外电场作⽤下迁移时，胶粒电荷为q，两极间的的电位梯度为E，则胶粒受到静电⼒为f1=Eq胶粒在介质中受到的阻⼒为f2=Kπηru若胶粒运动速率u恒定，则f1=f2 qE=Kπηru (1)根据静电学原理ζ=q/εr (2)将(2)代⼊(1)得u=ζεE/Kπη (3)利⽤界⾯移动法测量时，测出时间t 时胶体运动的距离S，两铂极间的电位差Φ和电极间的距离L，则有E=Φ/L，u=s/t (4)代⼊(3)得S=(ζΦε/4πηL)·t作S—t图，由斜率和已知得ε和η，可求ζ电势。
电泳公式可表⽰为：上式中η为分散介质的粘度，ε为介电常数，25℃时，η=0.000894Pa·S，ε=78.36，U为加于电泳测定管两端的电压（V），l是两极间的距离（cm），u是电泳速度（cm·s-1)。
Fe(OH)3胶体，KCl辅助溶液，电泳管，直尺，电泳仪图2.14.1 电泳仪四、实验步骤1．洗净电泳管，然后在电泳管中加⼊50ml的Fe(OH)3胶体溶液，⽤滴管将KCl 辅助溶液延电泳管壁缓慢加⼊，以保持胶体与辅助液分层明显，（注意电泳管两边必须加⼊等量的辅助液）。
电泳检验标准
______________________________________________________________________________________________________________
油渍裸手触摸时没有粘
油渍裸手触摸时有 /
手感，且未有结成块状
粘手感，且有结成
块状
允收图片
缺陷图片
允收
轻微缺陷
主要缺陷
检验方法
面积小于 1/10 ，且未腐 面积大于 1/10 ，且 整个工件金属
目视检查
蚀至基材
腐蚀至基材
全部腐蚀至基
材
任何位置的翘曲，变形
/
都不允许
/
目视检查与
样件对比
3 碰伤 零 件 表 面 的 呈 / 划 凹陷或条状的 伤 浅沟
刮伤长在 13 毫米，宽 刮伤长在 13 毫米， 不超过正常制 目视检查与
A、B 面： L<0.1 ，H<0.1 ，N=1; C 面： L<0.25 ，H<0.2 ，N=1
A、B 面： L<0.1 ，H<0.1 ，N=1; C 面： L<0.25 ，H<0.2 ，N=1
精品资料
不允收
不允收
目视 检查
与样
件对
比
A 、 B ：0.1<L<0.2 ，
任何影响产品
目视
0.1<H<0.15 ；N=1 ： 外观 /机械寿命
检查
C 面： 0.25<L<0.35 ； 的颗粒
与样
0.2<H<0.0.25 ； N=1
件对
比
A 、 B ：0.1<L<0.2 ，