临床医生如何做血培养(11-7-17)
临床医生用药指南
循环、血液系统：1．升血压――(1).多巴胺，20mg/支（2ml），多巴胺6支+38ml NS 2（3）ml/小时 or 9支＋32ml NS（9-18!）ml/小时/多巴酚丁胺配成50ml液体泵入。
标准用法：开始时每分钟按体重1～5μg/㎏，10分钟内以每分钟1～4μg/㎏速度递增，以达到最大疗效。
静注5分钟内起效可再加NS 49ml+去甲肾上腺1ml 2ml/h !(2).多巴胺体重*3mg(1ug/min*kg) +NS(共50ml) 极量:1.2mg*公斤体重/小时，2-20ml/小时多巴酚丁胺体重*3mg+NS(共50ml) 2-20ml/小时去甲肾上腺素体重*0.03mg+NS(共50ml) 2-8ml/小时2.快速降血压――(1).开搏通（卡托普利）12.5mg/片舌下含服 /心痛定（硝苯地平）10mg 舌下含服（2－3min 起效，20分钟达到最高值，服用间隔大于4小时）(2).压宁定25mg/5ml(1支)×10,0.6ml/h泵入.5分钟内见效。
标准用法：可加入20ml注射液(相当于100mg乌拉地尔)，再用上述液体稀释到50ml。
静脉输液的最大药物浓度为每毫升4mg乌拉地尔。
输入速度根据病人的血压酌情调整。
推荐初始速度为每分钟2mg，维持速度为每小时9mg。
3.输白蛋白――(输血前用苯海拉明1支肌注)贝林10g/50ml（一瓶）（等同于200ml血浆,保留180ml水） ivgtt输血浆200-400ml（输血、血浆后用生理盐水250ml 冲）半小时后20mg速尿（水肿较重时）4．止血――(1).立芷雪1ku im（15-25分钟后起效）+ 1ku 入壶: （5-10分钟后起效）。
如术前PT+APTT延长，术前一天晚肌注一支.(2)..垂体后叶素6单位先入壶，再泵入250ml糖/12单位 8小时*3（持续24小时）或者先入壶，再500/40单位静滴 .(3).先用两支思他宁（生长抑素）（3mg/支），再24小时泵6mg/h（思他宁加垂体后叶素止血最强）(4).外用：强生止血纱布（可吸收） or 干纱布＋普舒莱士（冻干人凝血酶原复合物）溶于生理盐水5.血小板过高――阿司匹林肠溶1片（100mg）po qd / 速碧林（低分子肝素钠） 0.3-0.4ml(1支) ih qd6.骨科术后防止血栓形成――法安明（达肝素钠）5000 iu/0.2ml ih bid7.化疗后白细胞低――(1).100UG/支瑞白注射液（重组人粒细胞集落刺激因子） ih .可连用3天。
血培养指导原则
三、标本的运送要求和拒收标准
（一）运送要求 1、采集后的血培养瓶应立即送往实验室。 2、接种前后的血培养瓶均不得冷藏或冷冻。
（二）拒收标准
如遇以下情况，实验室拒收并要求重送： 标签错误或未贴标签 血培养瓶破损或渗漏 血液凝固
四、血培养的培养周期
手工法为7天，自动仪器法为5天。
说明：送检血培养申请单明确疑为真菌感染，或者反复血培养阴 性，而有具有明显系统性炎症的临床症状，应适当延长培养时 间。
1. 2. 3. 4. 5.
分级报告制度
（二）、直接药敏试验结果报告 （三）、最终结果书面报告
无菌生长（孵育的时间应报告在内） 阳性结果报告（最终鉴定结果、最终药敏结果）
其他报告或记录
标本被拒收时，需即刻通知临床重新采血，并记录在案 最终结果与紧急口头报告结果不符，需要变更时，需即 刻与临床沟通，做紧急口头报告。同时必须在书面报告 上提供正确的结果，同时注明变更的内容。 其他需临床注意的事项，如：本次采血不够、标本转运 时间过长、标本采集份数不够等信息。
对于自动化血培养仪：尽管有研究表明95%-97%具有临床价 值的细菌会在3-4天内被自动化血培养系统检出，但任建议采 用5天的培养周期。
关于结果报告
原则：紧急处理和报告优先原则 在有条件的医院，通过HIS系统，让临床医生随 时掌握血培养检测的进展情况，包括：
血培养已开单但未收到 血培养已收到 检测中，尚无结果 24小时无生长 48小时无生长 阳性报警，分离培养和药敏进行中，并报告初步图片染色结果 阳性培养报告（细菌鉴定和药敏试验的最终结果）
（1）在穿刺前或穿刺期间，为防止静脉滑动，可
戴乳胶手段固定静脉，不可接触穿刺点。 （2）用注射器无菌穿刺取血后，勿换针头（如果行 第二次穿刺，应换针头）直接注入血培养瓶，或严 格按厂商推荐的方法采血。 （3）血标本接种到培养瓶后，轻轻颠倒混匀以防血 液凝固 。
血培养的意义及操作规范
问题： 应该采集多少血液?
要采集多少血液? 答 案：
采血量是影响灵敏度最关键因素 成人一份标本 2 个培养瓶（需氧＋厌氧），每瓶 8 － 10ml ，共 20ml；要求至少采两份标本，即40ml。 儿童一般只需采集需氧瓶，在保证采集血量＜ 1％总血量下， 一般为1－3ml 采血量不足时应优先保证需氧瓶，因临床90％以上的感养瓶的消毒程序：
1. 去掉培养瓶口的塑料瓶盖。 2. 75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞子60秒。
3. 自然待干。
4. 将标本注入培养瓶内。 5. 颠倒混匀标本与肉汤，以避免血液凝集。 （儿童采血量少，更应注意颠倒混匀）
使用蝶翼针采血
1 2 3
皮肤消毒
培养瓶消毒
标注采血量
4
5
6
准备采血针
静脉穿刺
负压采血
血培养瓶的接种顺序
• 如果用注射器采血，应先接种厌氧瓶避免空气 进入。 • 如果用蝶形针采血，应先接种需氧瓶，以免装 置里的空气送到厌氧瓶中。 • 如果抽取的血液少于推荐量，血液应先足量接 种需氧瓶，剩余的血液应该接种在厌氧瓶中。
我院常用血培养瓶
树 脂 需 氧 瓶 含 溶 血 素 厌 氧 瓶 树 脂 儿 童 瓶
儿童类似于成人，应在24小时内采2 －3次血培养
初发患者，绝不能只采1套标本
血培养套数与阳性检出率（％）
96％ 80％ 65％ 99％
Cockerill, CID 2004
问题： 标本须间隔多久采集?
标本须间隔多久采集? 答 案：
从不同部位，同时或短时间内采集 2 － 3 套血 培养，因为体内巨噬细胞吞噬系统会在 15 ～ 30min内清除掉进入人体内的细菌 当怀疑感染性心内膜炎或其他的血管内感染 （导管相关性）菌血症和真菌血症时，则间 隔采血，每隔1----2小时采血一次，2套—— 3套血培养。
血培养操作规程
血培养检测规范化操作（世上最全基本操作流程）2016-08-22来源:南方检验医学网阅读: 1291次【字号:大中小】导读：一、血培养检测采血指征：对入院的危重患者未进行系统性抗生素治疗前，应及时进行血液培养,患者出现以下体征时可作为采集血培养的重要指征： 1．发热（38℃)或低温（36℃）。
2．寒战。
3．白细胞增多（1010 9/L，特别有核左移未成熟的或带状的白细胞一、血培养检测采血指征:对入院的危重患者未进行系统性抗生素治疗前,应及时进行血液培养,患者出现以下体征时可作为采集血培养的重要指征：1．发热(≥38℃）或低温（≤36℃）。
2．寒战。
3．白细胞增多(〉10×10 9/L，特别有“核左移”未成熟的或带状的白细胞增多。
4．粒细胞减少（成熟的多核白细胞〈1×10 9/L）。
5．血小板减少。
6．皮肤粘膜出血.7．昏迷。
8．多器官衰竭。
或同时具备上述几种体征时应采血培养。
在评估可疑新生儿败血症时,除发热或低烧外，很少培养出细菌，应该补充尿液和脑脊液培养.肺炎链球菌与流感嗜血杆菌菌血症的患儿（特别是2岁以下的幼儿）一般多见于门诊，常伴有明显发热(≥38。
5℃）和白细胞增多（≥20×109/L）.老年菌血症患者,可能不发热或不低热,如伴有身体不适，肌痛或中风可能是感染性心内膜炎的重要指征.血培养检测皮肤消毒程序：血培养为防止皮肤寄生菌污染，可使用消毒剂（碘酊或碘伏）对皮肤进行严格仔细的消毒处理，最大限度地减低皮肤污染。
感染性心内膜炎，特别是心脏瓣膜修复术的感染，可能由皮肤寄生的微生物引起(例如：表皮葡萄球菌或棒杆菌属）.因此，在采集过程中血培养的污染一定要减小至最低程度.用做培养的血液均不应该在静脉或动脉的导管中抽取，除非静脉穿刺无法得到血液或用来评价与导管感染相关性指标。
如果抽取了导管血，也应同时在其他部位穿刺获取非导管内静脉血液进行血培养。
皮肤消毒严格按以下步骤进行：1．首先用70％酒精擦拭静脉穿刺部位待30秒钟以上。
临床微生物学血培养操作规范
临床微生物学血培养操作规范中华医学会检验医学分会编者按：根据卫生部指示，中华医学会检验医学分会成立了《临床检验操作规范》编写组。
《临床微生物学检验操作规范》是该规范的一部分。
该规范在撰写过程中始终坚持先进性、科学性、实用性和可行性的指导原则，在查阅文献和总结经验的基础上，完成了编写任务。
其间曾举行多次审稿会，对讨论稿进行了充分地研讨和修改。
为了使检验界临床微生物学同行尽快参照执行《临床微生物学检验操作规范》，本刊将陆续刊登该规范1～10专题，每期1个专题，以飨读者。
希望广大检验医学人员在学习、执行该规范的同时提出意见，以便再版时修改。
当微生物侵入血液迅速繁殖超出免疫系统清除这些微生物的能力时形成菌血症或真菌菌血症。
一过性菌血症常发生于对感染灶的外料处理、黏膜的创伤操作和易污染的外科手术，亦可发生于全身或局部感染的早期；间歇性菌血症常发生于腹腔等部位未能及时引流的脓肿；持续性菌血症常见于感染性心内膜炎等血管内膜感染，亦常发生于伤寒和波浪热的最初几周。
血培养常见菌：革兰阴性菌主要包括大肠埃希菌、肺炎克雷柏菌、肠杆菌，伤寒沙门菌、绿脓假单胞菌、不动杆菌属等；革兰阳性菌主要包括金黄色葡萄球菌、凝固酶阴性葡萄球菌、念珠菌属等。
菌血症是临床医学急症，尽快采集血液进行培养。
一、血标本采集和运送1.采血指征：一般患者出现以下一种体征时可作为采血的重要指证：发热（≥38℃）或低温（≥36℃），寒战，白细胞增多（计数大于10.0×109/L,特别有“核左移”时），皮肤黏膜出血、昏迷、多器官衰竭，血压降低，C反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，或同时具备上述几种体征时而临床可疑菌血症应采集血液培养。
新生儿可疑菌血症，应该同时做尿液和脑脊液培养。
对入院危重感染患者应在未进行抗菌药物治疗之前，及时做血培养。
2.皮肤消毒程序：严格执行以下三步法：（1）70%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上。
血培养标本采集操作流程及要点说明【精华】8
标本采集，输送的标准操作程序 (1)采集血标本操作流程 (20)静脉血标本采集操作流程 (22)标本采集，输送的标准操作程序[目的]规范标本采集，保证实验室枪测前标本质量。
[范围]微生物实验宣所有标本。
[职责]采集、运送微生物标本的临床各科室工作人员。
【标准操作程序】1．血液、骨髓标本1.1采集指征对可疑血流感染患者未进行抗菌药物治疗前。
应及时进行血液培养。
可疑血流感染的患者出现以下一项或几项体征时应及时采集血培养：1) 发热(≥38℃)或低温(≤36℃)。
2) 寒战。
3) 白细胞增多（计数大于10,000×109／L，特别有“核左移”未成熟的或带状的白细胞)。
4) 粒细胞减少(成熟的多核白细胞小于1000×109／L)。
5)血小板减少。
6)皮肤粘膜出血。
7)昏迷。
8)多器官衰竭。
9)血压降低。
10)呼吸加快。
11)降钙素原升高(PCT)12)C反应蛋白升高(CRP)在评估可疑新生儿败血症时。
除发热或低烧外,很少培养出细菌，应该补充尿液和脑脊液培养。
肺炎链球菌与流感嗜血杆茵菌血症的患儿(特别是2岁或以下的幼儿)一般出现于门诊，常伴有明显发热（≥38.5℃)和白细胞增多(总数≥20,000×109 /L)。
老年菌血症患者，可能不发热或低体温，如伴有身体不适，肌痛或中风可能是感染性心内膜炎的重要信号。
1.2血培养次数和采血时间采血应该尽量在使用抗菌药之前进行，推荐同时采集2-3套(不同部位)血培养，以助于提高阳性检出率，区别病原菌与污染菌。
（一套血培养为一瓶需氧培养加一瓶厌氧培养。
一次静脉采血只能注入到1套培养瓶中)。
尽可能选用可中和或吸附抗菌药物的培养基。
临床对可疑菌血症患者应立即采集血培养标本，对间歇性寒战或发热可在寒战时或体温高峰到来之前0.5-1h进行采血。
除特殊情况之外（如怀疑细菌性内心膜炎），采集血培养后的2至5天内，无需重复采集血培养。
1.3特殊的全身性和局部感染患者采集血培养的建议：1.3.1急性心内膜炎:对于可能的心内膜炎患者,必须在经验使用抗菌药物前30min之内抽取血培养，起始采集3套血培养，如果在24h之内仍报告为阴性，则继续采集2套血培养，全部培养一共为5套。
血培养标本采集与运送标准操作规程
血培养标本采集与运送标准操作规程一、血培养指征患者出现以下一种或同时具备几种临床表现时，可作为血培养的重要指征：①发热（≥38°C）或低温（≤36°C）②寒战③白细胞增多（计数大于10×109/L，特别有“核左移”未成熟的或杆状核的白细胞）；④粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1.0×109/L）；⑤血小板减少；⑥皮肤粘膜出血⑦昏迷，休克⑧多器官衰竭⑨CRP、PCT升高⑩临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能，尽可能在患者寒战开始时，发热高峰前30-60分钟采血，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24h后。
三、采血流程(一)采血前进行手卫生，如需用手固定血管，应戴无菌手套。
(二)消毒1．培养瓶消毒：用75%酒精消毒培养瓶橡皮塞，待自然干燥60s。
2．皮肤消毒三步骤：①以采血点为中心，由内向外以75%酒精，待干30s以上。
②用2%碘酊作用30S或安尔碘作用60S，从穿刺点向外画圈消毒，直径达3 cm以上. ③用75%酒精脱碘。
对碘过敏的患者，在第一步的基础上再用75%酒精消毒60s，待酒精彻底挥发干燥后采血。
(二)静脉穿刺和培养瓶接种用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶（勿换针头），轻轻混匀以防血液凝固。
或采用负压血培养瓶及一次性采血针将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。
四、注意事项1．标本注明血液采集时间和部位。
2．采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。
3．采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。
4．细菌性心内膜炎：在24 h内取血3次，每次间隔不少于30 min；必要时次日再做血培养2次。
血培养操作规范及临床意义
评估治疗效果
判断感染类 型
指导临床用 药
评估治疗效 果
预测疾病预 后
预测预后
指导抗生素使用：根据血培养结果选择敏感抗生素 预测病情进展：阳性结果提示感染，阴性结果提示感染可能较小 评估预后：根据培养结果判断病情严重程度和预后 指导治疗：根据培养结果调整治疗方案，提高治疗效果
监测耐药性
血培养在监测耐药性方面的作 用
采血次数
成人：至少2次 儿童：至少1次 特殊情况：根据临床需要，可多次采血 注意事项：避免在同一天内多次采血
培养基选择
选择无菌、无毒的培养基 根据培养目的选择适合的培养基 培养基的成分和浓度应符合要求 培养基应在使用前进行灭菌和质量控制
培养温度和时间
培养温度：35-37℃ 培养时间：通常为2-4周，根据具体病原菌和药物敏感试验结果而 定
感谢观看
汇报人：
临床医生需要 综合考虑多种 检测结果和临 床表现，以做 出准确的诊断 和治疗决策。
06
血培养的未来发展方向
提高培养阳性率
优化采血技术：提 高采血技巧和操作 规范，减少污染和 交叉感染
改进培养基：研发 更高效的培养基， 提高培养阳性率
自动化技术应用： 引入自动化技术， 提高培养效率和准 确性
临床意义：提高培 养阳性率有助于更 准确地诊断感染， 指导临床治疗
扩大检测范围：将血培养检测范围扩展到更多病原体种类，如真菌、寄生虫等
提高检测灵敏度：通过优化培养基和检测方法，提高对低浓度病原体的检测灵敏度
实现早期诊断：通过缩短检测时间，为临床提供早期诊断依据，有助于患者及时得到有效治疗
实现自动化和智能化操作
自动化技术：利用机器人和自动化设备进行血培养操作，提高工作效率和 准确性
临床医生如何解读血培养结果
第21页
——— 关于采血间隔
“两套血培养采集间隔无特殊要求。”
临床医生如何解读血培养结果
第22页
答案：关于标本采集间隔时间
对于非连续性菌血症，同时或短时间内采集2－3套血培 养，因为体内巨噬细胞吞噬系统会在15～30min内去 除掉进入人体内细菌。
可疑急性心内膜炎患者要马上取血作血培养，30分钟内 完成3套血培养采集，采集后马上进行抗菌药经验治疗。 假如24小时内汇报阴性，则继续采集2套血培养。
染为需氧菌或兼性需氧菌感染
临床医生如何解读血培养结果
第26页
答 案：关于采集血液量
临床医生如何解读血培养结果
第27页
———关于各种血液标本采 集次序
先采生化、凝血标本，再采血培养标本。”
临床医生如何解读血培养结果
第28页
答案：采各种血液标本先后次序
血培养对无菌操作要求比注射、采集生化、凝血等 其它标本要高。
临床医生如何解读血培养结果
第25页
答 案：关于采集血液量
采血量是影响灵敏度最关键原因 成人一份标本2个培养瓶（需氧＋厌氧），每瓶8－
10ml，共20ml；要求最少采两份标本，即40ml。 儿童普通只需采集需氧瓶，在确保采集血量＜1％总血
量下，普通为1－3ml 采血量不足时应优先确保需氧瓶，因临床90％以上感
临床医生如何解读血培养结果
第45页
Qestion
怀疑导管相关血流感染(CRBSI)时应怎 样送检?
临床医生如何解读血培养结果
第46页
送检方法：保留情况
采取最少2套血培养，其中最少1套来自外 周静脉，并做好标志，另外1套则从导管中 心采获，两个起源采血时间必须靠近 （≯5min），各自做好标识。
血培养医学课件
血培养医学课件汇报人：2023-12-15•血培养简介•血培养的过程与操作•血培养阳性结果的分析与解读目录•血培养的临床应用与价值•血培养的局限性及改进方案•血培养医学课件总结与展望01血培养简介血培养是通过采集患者血液标本，在培养基中培养血液中的微生物，以检测并鉴定病原菌的一种方法。
血培养的定义血培养主要用于诊断血流感染、败血症等感染性疾病，以及指导临床抗生素治疗。
血培养的目的通常在患者发热、寒战等感染症状出现时采集血液标本。
采集时机采集部位采集方法一般选择肘静脉或股静脉等大血管进行穿刺采血。
需严格遵守无菌操作原则，使用一次性无菌注射器抽取适量血液注入血培养瓶中。
030201血培养的常见应用诊断血流感染当患者疑似患有血流感染时，血培养可用于检测血液中的病原菌，为诊断提供依据。
诊断败血症败血症是指病原菌侵入血液循环，并在其中大量生长繁殖，产生毒性代谢产物，引起全身性中毒症状。
血培养可用于确诊败血症。
指导抗生素治疗通过血培养可以确定病原菌的种类和药敏试验结果，为临床医生选择敏感抗生素提供依据，提高治疗效果。
02血培养的过程与操作血培养的实验室操作标本采集在患者发热初期或使用抗生素前，采集静脉血液作为血培养的标本。
采血量通常为5-10毫升，根据不同检测项目和目的进行选择。
培养条件将接种后的培养基放在35℃的环境中，保持95%的湿度，并持续不断地进行通气。
培养基将采集的血液样本分别接种在两个或三个不同的培养基中，以增加培养的阳性率。
常用的培养基包括胰蛋白胨大豆肉汤、巧克力琼脂等。
观察记录每隔1-2天对培养基进行观察，记录细菌的生长情况、菌落形态和颜色等。
根据细菌的形态、大小、染色性等特点，结合显微镜观察结果，对细菌进行初步鉴定。
形态学鉴定通过细菌对各种底物的生化反应，如氧化酶试验、糖发酵试验等，对细菌进行进一步鉴定。
生化鉴定利用分子生物学技术，如PCR、基因测序等手段，对细菌进行高精度鉴定。
分子生物学鉴定血培养的细菌鉴定将含有不同抗生素的纸片贴在培养基上，观察细菌对不同抗生素的敏感程度。
血培养标本采集注意事项
血培养标本采集注意事项血培养标本采集注意事项血培养是临床诊断败血症的重要方法，阳性结果对明确诊断、对症治疗有极高的应用价值。
但据文献报道目前国内的血培养阳性率仅为17.8%~18.4%。
为了提高血培养的阳性率，客观的反映出败血症患者血内存在病原菌的实际状况，需要临床医生精确选用血培养，检验师精心分离鉴定，更需要护理人员正确、无菌的操作技术!下面是yjbys店铺为大家带来的血培养标本采集注意事项，欢迎阅读。
一、采血时机1、尽可能在抗菌药物使用前;2、对已经使用抗菌药物的病人，最好在下次用药前采集;3、寒战和发热初起时采血可提高阳性率;4、怀疑血流感染时应尽早采血，不要强调体温超过39才抽血。
二、采集方法1、手卫生：洗手或手消毒，最容易忽略，却也是很重要的一条;2、准备血培养瓶：根据检验申请单，选择合适的`血培养瓶，检查血培养瓶有无破损、保质期，用75%酒精消毒血培养瓶塞，作用60s，待干。
在血液注入血培养瓶之前，用无菌纱布或棉签清除橡皮塞残留的酒精;3、皮肤消毒：按常规消毒穿刺部位皮肤，使用消毒剂[碘酊或聚维酮碘(碘伏)]对皮肤进行严格仔细的消毒处理，消毒范围为8×10cm，待干，防止皮肤寄生菌或环境引起的污染。
4、持采血针按常规方法刺入静脉，另一头刺入相应血培养瓶内，利用瓶内真空抽取血标本，如用注射器无菌穿刺取血后,勿换针头直接注入血培养瓶。
(使用采血针采血时应先采集需氧瓶后采集厌氧瓶，使用注射器采集标本时则反之)5、建议每套血培养同时接种至需氧瓶和厌氧瓶，有利于微需氧菌和厌氧菌的检出。
如果不能满足推荐的采血量时，应首先满足需氧瓶;婴幼儿血培养一般只抽一瓶需氧瓶进行培养，无需常规做厌氧瓶。
6、血液注入血培养瓶后轻摇瓶子以防血液凝固。
三、标本运送1、已采集的标本应视为潜在性生物危险品，均应置于防漏、防渗、相对密封的容器中收集、存储与转运。
2、血培养采样结束后应由专人立即送至微生物实验室核收，一般不得超过2小时;如因某种原因不能及时送检，应将已采集好的血液培养瓶放在室温，切勿放入冰箱内冷藏或冷冻。
临床微生物实验室血培养操作标准
临床微生物实验室血培养操作标准1 范围本标准规定了血培养标本临床微生物检验的技术要求。
本标准适用于开展血培养的临床微生物实验室。
2 术语一套血培养：从同一穿刺点同时采集的血液标本，分别注入需氧和厌氧瓶；静脉输液港：一种植入皮下，可长期留置在体内的静脉输液装置；HACEK菌群：嗜沫嗜血杆菌、伴放线放线杆菌、人心杆菌、啮氏艾肯菌和金氏金菌；血培养污染率：一般由凝固酶阴性葡萄球菌、革兰阳性棒状杆菌、芽孢杆菌、痤疮丙酸杆菌和微球菌等污染引起的阳性瓶占总送检瓶数的比例。
3 导言人体血液中有很多物质，包括溶菌酶、白细胞、免疫球蛋白、补体等，可在几分钟内将入侵血流的微生物清除。
当微生物感染超出人体免疫系统的防御能力时，人体不能将微生物局限于原始感染的部位，或在治疗中不能通过切除、引流等措施清除感染源，那这些微生物将侵入血液迅速繁殖形成菌血症或真菌血症。
一过性菌血症常发生于对感染灶的外科处理、黏膜的创伤操作和易污染的外科手术，亦可发生于全身或局部感染的早期；间歇性菌血症常发生于腹腔等部位未能及时引流的脓肿；持续性菌血症常发生于感染性心内膜炎等血管内膜感染以及伤寒和波浪热的最初几周。
菌血症是临床急症，应尽快采集血液进行培养。
血培养是对入住急诊科、ICU患者、移植患者以及静脉插管患者的败血症进行早期诊断的一种方法，并根据阳性血培养病原菌的药物敏感性试验，可为临床医生提供最佳的抗菌药物治疗方案，对降低病死率有很大帮助，血培养对于临床诊断和预后评估也具有重要的意义。
4 血样采集和培养瓶接种4.1 采血指证可疑感染患者出现以下一种或几种特征时，可以考虑采集血培养：发热（≧38℃）或低温（≤36℃），寒战，白细胞计数增多（计数＞10.0×109 /L，特别有“核左移”时）或减少（计数＜3.0×109 /L），皮肤黏膜出血，昏迷，多器官衰竭，血压降低，C反应蛋白、降钙素原（PCT）、1，3-β-D-葡聚糖（G试验）升高及突然发生的急性呼吸、体温和生命体征改变。
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接种需氧瓶，然后将剩余的血液接种入厌氧瓶。因
为多数菌血症是由需氧和兼性需氧细菌造成的，而 这些细菌从需氧瓶中更好的被分离。
由于婴幼儿患者厌氧菌所致菌血症比较罕见，婴幼
儿血培养可以仅用需氧瓶，为提高检出率、区分污 染菌，应采用两只需氧瓶为一组血培养。仍然采用 双侧双瓶的采血方式。
真菌血培养采用需氧血培养瓶采集标本。采用中和/
生物的检出率增加3％。
一份标本 2 个瓶子，每瓶 10ml ，共 20ml ；
要求至少采两份血，2份4个瓶子，共40ml。
要采集多少血液?
但并非越多越好，超过一定数量的采血量
会稀释培养瓶内的肉汤，使肉汤无法有效 中和血中的抑制物质（补体、抗体、抗生 素）。
血液与肉汤的最佳比例为1：4－1：10。
大肠杆菌
血培养现状—阳性检出率低（10%）
血流中含菌量低 血液中抗菌物质
抗生素的应用
培养条件限制 临床实践欠规范
血培养现状—假阳性率高
皮肤消毒不彻底 采血操作不规范 临床实践欠规范
优化血培养流程、提高检出率
采血时机 采血份数
采血量
规范操作
问题一： 怀疑血流感染，何时采血最佳？
Sepsis shock: Sever Sepsis 加低血压
明确血培养的临床意义
污染瓶： • 约2%
• 这些菌（阳性杆菌、棒状杆菌、 丙酸杆菌、气球菌、凝固酶－葡 萄球菌、微球菌）也引起全身感 染 • 污染瓶只见于一套瓶中的1-2瓶 • 只有第二套来鉴别 • 不作药敏 • 保留此瓶几天，等待第2套结果 • JCM 2002：40：2437－2444 如何减少污染瓶
是同一菌
没生长
可能污染菌，
作药敏
按菌谱评 估
评估内容： 阳性瓶数 第2套结果 病史 白细胞数 体温 影像学 病理 与医生讨论
是病原菌
临床医生如何分析血培养结果
明确血培养的临床意义
成人菌血症的分类
社区获得性菌血症
大肠 肺链 金葡 肠杆菌科菌 脑膜炎奈瑟菌
BSOP 3715
医院获得性菌血症
用药。（微生物室、院感科、临床科室）
2.药敏试验报告，纠正经验用药。
重视病原学检查,尽可能在应用抗菌药物之前留 取标本送检。以提高病原学诊断率,为选药和调整 药物提供依据。
微生物的培养流程
临床
细菌 培养
检验 医生
医生
病人 病情
何种 标本
留取 标本
标本 合格
细菌 培养
结果 回报
临床 分析
血流感染
采血份数
100 90 80 70 60 50 40 30 20 10 0 1 2 3 4 Blood Culture Set
Cockerill, CID 2004
采血份数
Weinstein et al. Detection of Bloodstream Infections in Adults: How Many Blood Cultures Are Needed?J Clin Microbiol,2007,45:3546-3548
先采那种标本？
先采生化、凝血标本？先采血培养标本？ 血培养对无菌操作的要求比注射、采集生
化、凝血等其它标本要高。
所以要最先采集血培养标本。
夜班血培养怎么办？
4℃冷藏或放入35℃的温箱？还是室温下即可？ 培养瓶夜班未能及时送到检验科，存在室温即可，
不能冷藏也不能放入35℃的温箱，过夜不会对检 测造成影响，但仍需尽快送检。
采血量（ml）与检出率的关系
100 90 80 70 60 50 40 30 20 10 0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60
% Relative Yield
ml
Overall/Mayo
要采集多少血液?
采血量是影响灵敏度最关键因素。 血培养物每增加1ml，真性菌血症成年人微
寒战
血培养
体温
细菌浓度
0
30 时间 (分钟)
60
研究表明：细菌通常在病人寒战和发热前1h进入血流
为了提高病人血培养的阳性率， 最好的抽血时间是：
你认为哪个对？
A.发热开始时 B.寒战开始时 C.发热最高峰时 D.寒战结束时 E.预计寒战发热前
采集血培养样本的最佳时间？
尽可能在患者寒战或开始发热时采血 如患者已经应用抗菌药物进行治疗，应在
（18.1%）
J Microbiol Immunol Infect.2007;40:445-449
J Microbiol Immunol Infect.2007;40:445-449
采集部位
要求：从两侧上肢静脉采血，“双瓶双侧”采血培养。 至少做到“双侧双瓶”。必要时从下肢静脉采血做第三 套血培养。 说明：不建议采集
菌血症和真菌血症
→ 早期诊断
阳性血培养：证实有感染性的病原体
→ 鉴定病原体 → 优化抗菌药物治疗 → 改善预后
什么时候进行血培养?
脓毒症患者应常规行血培养 怀疑血流感染患者常规行血培养，如：
不明原因的发热(＞37℃)或体温过低(＜36℃)
休克，寒颤，僵直
严重的局部感染(脑膜炎，心内膜炎，肺炎，肾盂肾炎，腹 部术后感染，…)、假体植入后感染„人工关节、人工瓣膜‟
剩余的血应该接种到厌氧瓶中。
Baron, EJ., M.P. Weinstein, W.M. Dunne, Jr., P. Yagupsky, D.F. Welch, and D.M. Wilson.Cumitech 1C, Blood Cultures IV. Coordinating ed., E.J. Baron. ASN Press, Washington,D.C> 2005
灭活抗菌药物的血培养瓶可提高真菌的检出率。自 动化血培养系统不能用于双相真菌的检测。
问题三： 应该采几份血液标本?
采血份数
100 90 80 70 60 50 40 30 20 10 0 1 2 3 Blood Culture Set
Weinstein MP, Reller LB, Murphy JR, and Lichtenstein KA Rev Inf Dis 5:35, 1983
基本概念：血流感染
血流遭受的微生物（细菌或真菌）侵入所引
起的感染
患者有发热、寒战或低血压等临床症状且血
培养有致病菌
基本概念：血培养
血培养是一项实验室检查，从患者体内采
血，并将其装入含有培养基的瓶中，以此 来确定导致患者感染的微生物（细菌或真 菌）是否已经侵入患者的血液。
血培养非常重要
治疗感染性疾病必须掌握两个评估
评估病原体、评估耐药性
评估疾病的严重程度
提高感染样本送检率 加强细菌耐药监测
关注细菌性疾病的病原学诊断，已成为 临床工作者、临床微生物与微生态工作者、 药学家和从事感染控制的工作者共同关注的 热门焦点。
临床医生要合理用好两种数据
1. 本地区、本单位病原流行病学资料，指导经验
• 凝固酶阴性葡萄球菌 • 大肠、 • 金葡、 • 肠杆菌科菌、 • 绿脓杆菌、 • 肠球菌 • 厌氧菌 • 肺链、 • 酵母菌
乙链
伤寒杆菌 布氏杆菌 淋球菌
明确血培养的临床意义
儿童菌血症的分类 儿童：
肺链
脑膜炎奈瑟菌 金葡菌
BSOP 3715
新生儿
• • • • B群链球菌 大肠杆菌 凝固酶阴性葡萄球菌 酵母菌
应该采几份血液标本?
每位患者采血最少2份，3份更好。 成年病人单一套的血培养从不被建议，因为这是
不合适的数量，培养结果将很难做出解释。
因多部位同时采血发生污染的几率较小，便于对
结果进判断。
注意：从一个解剖学位臵穿刺采血，算“一份”。
问题四： 标本须间隔多久采集?
问题五： 应该采集多少血液?
（1）动脉血，因其诊断价值没有比静脉血更大；
（2）静脉留臵导管，因其常伴有高污染率。如果必须从 留臵导管内采血，也应同时从外周静脉采集另外一个血 培养标本，以帮助阳性结果的判读。
所谓“双瓶双侧”，是指从一个部位采血接种一
套培养瓶(需氧+厌氧)，再从另一部位采血接种另一 套培养瓶。（通常是双臂）
问题六： 强调医护的沟通与合作
严格执行无菌技术
哪一个瓶子应该首先接种？
如果用带翅的或蝶形的血液采集装臵，血液首
先装入需氧瓶，以免装臵里的空气传送到厌氧 瓶中。
如果用注射器及针，首先接种厌氧瓶避免空气
进入。
哪一个瓶子应该首先接种？
如果抽取血液的量少于推荐量，血液应首先接种
பைடு நூலகம்
到需氧瓶里，因为多数菌血症是由需氧菌和兼性 细菌导致的。另外，致病酵母样真菌和严格需氧 菌 ( 例如：假单胞菌 ) 几乎都是从需氧瓶中培养出 来的。
没生长
可能污染菌， 不作药敏，除 非医生要求
不是
按菌谱评 估
评估内容： 阳性瓶数 第2套结果 病史 白细胞数 体温 影像学 病理 与医生讨论
是病原菌，作药敏
Richer JCM, 2002; 40:2437-2444
血培养瓶可疑污染菌
48小时内留取 第2套血培养？ 留取
未留
按菌谱评 估
生长菌是同一菌？
Pseudobacteraemia： 病原菌来源于病人血流之 外
不正确采血 实验室操作 可产生暴发性，消毒液被 菌污染 白细胞过多 过量的血量 其它
仪器问题
血培养瓶可疑污染菌
细菌室如何分析研究污染瓶
没收到