血培养采样、送检、检验方法
血样采集及送检操作技术规范
内蒙古优然牧业有限责任公司血样采集及送检操作技术规范文件编号：YR/GF/XM/10版号：[A/0]编制：畜牧单元审核：秦学森审批：高杰日期： 2016年8月12日1 目的规范牧场检疫类牛只血液样品采集工作流程及相关操作，确保血液样品在采集、传递、送检过程中的人员及样品安全。
2 适用范围优然牧业畜牧单元隶属牧场及相关职能部门。
3职责及分工3.1 牧场保健经理负责采血及送检工作的总体安排和协调，牧场保健部负责采血及送检工作的具体实施及操作。
3.2实施采血时，每个采血小组至少包括3名工作人员，具体分工如下：记录人员1名——负责进行采血记录。
采血操作1名以上——负责对牛只尾根部位进行消毒、采血等操作。
样品收集1名——负责样品归集、编号、整理、冷藏及送样等工作。
4 操作流程4.1 物品准备4.1.1采血管普通管：无抗凝剂，可用于K病抗体效价检测、B病检疫、H病复检等。
抗凝管：含有抗凝剂的真空负压采血管，可用于H病复检等。
4.1.2其它物品离心机、离心管、防水记号笔（用于样品编号）、酒精棉球、保鲜膜、垃圾袋、样品保温冷藏箱、冰袋、胶带等。
4.2人员防护血样采集人员应穿戴手套、口罩、胶靴、工作服等，做好个人防护工作。
4.3 血液样品采集流程4.3.1 采血方式采用牛只尾根部采血方式。
4.3.2抽检要求K病抗体检测采血操作时，应遵循随机抽检原则。
牛只并列保定后，一次性连续抽检数量不得超过3头。
4.3.3采血量标准检测单项——采血量为4~5ml/牛。
检测多项——采血量为8~10ml/牛。
4.3.4血样采集4.3.4.1采血操作人员单手抬起牛尾，对采血部位消毒。
4.3.4.2采血操作人员持针由下向上，于尾根腹侧中间垂直刺入牛尾血管，见有回血，迅速将采血针粗头插入一次性真空采血管内，采集足量血液。
4.3.4.3将采集完毕的样品交给样品收集人员，样品收集人员使用防水记号笔将牛号直接编写在采血管上，并对采血管按照用途进行保存。
血标本采集与送检制度
血标本采集与送 检质量控制
血标本采集与送 检相关法律法规 与标准
血标本送检规定
血标本采集与送 检安全防护
采集前准备
确认患者身份信息，核对医嘱和检验项目 告知患者采血的目的、注意事项和配合方法 准备采血器具，如试管、注射器等，检查是否符合无菌要求 采血前应让患者休息一段时间，避免剧烈运动或情绪激动
采集后的血标 本应按规定进 行标识、分类 和保存，确保 信息准确无误。
送检时应使用 专用容器，确 保容器密封、 无破损，并按 照规定时间、 路线及时送达
检验机构。
安全事故处理与预防
血标本采集与送检过程中可能出现的安全事故类型 安全事故发生的原因及案例分析 安全事故的预防措施和注意事项 安全事故发生后的处理流程和责任追究
法律法规与标准 在血标本送检过 程中的实践案例
法律法规与标准 在血标本采集与 送检制度中的重 要性及未来发展
采集质量控制
采集人员的资质和培训：确保采集人员具备相应的资质和专业技能，定期进行培训和考核。
采集设备的校准和维护：确保采集设备准确可靠，定期进行校准和维护，及时更换损坏 的部件。
采集流程的规范和优化：制定规范的采集流程，确保采集过程中的每一步都符合标准要 求，不断优化流程提高采集效率和质量。
采集环境的质量控制：确保采集环境符合相关标准和规定，避免环境因素对采集结果的影响。
采集方法与注意事项
采集方法：根据不同检测项目，选择合适的采血管和采集量，按照标准 流程进行采集
注意事项：采集前需核对患者身份，确保信息准确；采集过程中要避 免溶血、污染等不良情况；采集后要及时送检，避免长时间放置。
采集后处理
血标本采集后应立即进行初步处理，如分离血清或血浆 采集后的血标本应标记清楚，包括患者信息、采集时间和送检目的 血标本应保存在适当的温度和湿度条件下，以避免变质或污染 在送检前应对血标本进行核对，确保与检验申请单一致
血培养标本采集 (2)精选全文
可编辑修改精选全文完整版血培养标本细菌学采集、运送、验收标准操作规程1．目的标准血培养标本细菌学采集、运送、验收标准操作规程，确保检验结果精确可靠。
2. 范围微生物实验室受理血培养瓶。
3. 职责3.1 医护人员正确采集血培养标本送检。
3.2 临床科室标本运输人员负责及时将血培养标本送至检验科微生物室。
2血培养指证2.1患者出现寒战，发热〔≥38℃〕或低温〔≤36℃〕.2.2白细胞增多〔＞10×109/L，特别有“核左移〞未成熟的或带状的白细胞增多〕皮肤粘膜出血；血液病患者出现粒细胞减少〔成熟的多形核白细胞<1×109/L〕，血小板减少等.2.3疑心血流感染时，医院内肺炎.2.4留置中心静脉导管超过72h.2.5感染性心内膜炎、骨髓炎、昏迷。
2.6有严峻根底疾病、免疫缺陷伴全身感染病症、多器官衰竭。
2.7临床医生疑心有血流感染可能的其他情况.〔血压降低，CRP 升高及呼吸快〕。
2.8新生儿菌血症，应同时做尿液和脑脊液培养。
3血培养采集3.1采集血量：采血量以培养基的 1/10 为宜，成人每瓶采集：5～10ml,婴儿每瓶采集：1～2ml。
儿童每瓶采集：2～5 ml。
婴幼儿病人，一般只抽一瓶需氧瓶进行培养，无需常规做厌氧瓶。
3.2血培养份数和采血时间对疑心菌血症的成人患者，推举同时采集2-3套〔不同部位〕血培养标本。
婴幼儿患者，推举同时采集2次〔不同部位〕血培养标本。
一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份培养或一套血培养。
屡次采血不应在同一部位进行，应更换部位。
对于间歇性寒颤或发热应在寒颤或体温顶峰到来之前0.5-1小时采集血液。
对于某些全身性和局部感染患者采血培养的建议：〔一瓶需氧瓶，一瓶厌氧瓶为一套，或者两套需氧瓶为一套〕急性发热疑心菌血症者，应尽量在抗菌药使用之前，在10分钟内于不同部位采集两套血培养标本。
对于非急性感染，疑心有菌血症者，应在24h内于不同部位采集2-3份血标本，每次采血的间隔不应小于3h，并应于抗菌给药前采血。
血培养标本采集、运送与报告标准操作规程
血培养标本采集、运送与报告标准操作规程一、血培养指征患者出现寒战，体温超过38℃或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过72h；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24h后，以寒战、发热时采集为宜。
三、采血流程（一）消毒1、培养瓶消毒程序：用消毒液消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。
2、皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5cm以上，待消毒液挥发干燥后（常需30s以上）穿刺采血。
（二）静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内的空气，直接注入血培养瓶，勿换针头（如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头），先注入厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。
近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。
（三）注意事项1、检验单需要注明抗菌药物使用的情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。
2、采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。
3、采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。
4、细菌性心内膜炎：在24h内取血3次，每次间隔不少于30min；必要时次日再做血培养2次。
5、采血量：以培养基与血液之比10：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。
采血量过少会明显降低阳性率。
成人每次每培养瓶采血8～10ml，婴幼儿每次每培养瓶采血2ml。
四、运送要求1、所有标本采集后都应立即送往实验室，最好在2h内。
血液标本的采集方法及注意事项
血液标本的采集方法及注意事项第一篇：血液标本的采集方法及注意事项血液标本的采集方法及注意事项生化检验用的血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。
静脉血是最常用的标本，静脉穿刺是最常用的采血方法。
毛细血管采血主要用于儿童，血气分析多使用动脉血。
（一）静脉采血法1.采血步骤采血前要核对病人姓名、年龄、性别、编号及检验项目等，按试验项目要求，准备好相应的容器，如空白试管、抗凝管或促凝管等。
病人应取坐位或卧位，采血部位通常是前臂肘窝的正中静脉。
若用普通采血法，采血后应取下针头，将血液沿管壁缓慢注入试管内。
2.注意事项（1）很多生化成分受膳食影响，因此，采血前要确认病人是否空腹。
（2）避免充血和血液浓缩：采血时应动作迅速，尽可能缩短止血带使用时间。
用止血带压迫时间最好不超过半分钟，否则将使生化结果升高或下降。
（3）若病人正在进行静脉输液，不宜在输液同侧手臂采血；若女性病人做了乳腺切除术，应在手术对侧手臂采血。
（4）采血的体位：体位改变可引起一系列的生理变化，使血液中的许多指标发生改变。
一般采取直立位采血，其二标本的测定值比卧位高5％～15％。
因此，采血时要注意保持正确的体位（坐位或卧位），以及体位的一致性。
（5）采血时只能向外抽，决不能向静脉内推，以免注入空气，形成气栓而造成严重后果。
（6）防止溶血：造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁；穿刺不顺利，组织损伤过多；淤血时间过长；抽血速度太快；血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫；震荡过于剧烈等。
若用普通注射器采血后，未取针头直接将血注入真空管内，也易造成溶血。
体内溶血属合格标本，但应在报告单上注明。
（二）动脉采血法肱动脉、股动脉、桡动脉以及其它任何部位的动脉都可以作为采血点，但多选择肱动脉和桡动脉。
在摸到明显搏动处，按常规消毒，左手固定搏动处，右手持注射器，针头成60°角刺入，血液将自动进入注射器内。
（三）真空采血法双向针一端插入真空试管内，另一端在持针器的帮助下刺入静脉，血液在负压作用下自动流入试管内。
血培养标本的采集
血培养标本的采集
1.容器：根据不同血培养的目的，选用不同的培养液，另备酒精灯及火柴。
2.采血环境：要求室内清洁、无尘土飞扬，防污染。
3.采血时，应严格遵守无菌技术操作原则。
并嘱患者头偏向一侧。
4.严格消毒穿刺部位。
用2.5%碘酒消毒一遍待干后，再用75%酒精消毒二遍或用0.5%络合碘消毒二遍。
5.标本宜在患者寒颤、高热时（体温超过38.5℃以上）或使用抗生素前采集，以提高细菌培养的阳性率。
6.血培养取血量为5ml，感染心内膜炎患者，为提高培养阳性率采血量5—10ml。
7.血液注入培养液瓶前后用火焰消毒瓶口和及瓶塞。
8.如患者已用抗生素应在化验单上注明。
9.立即送检。
血培养采集流程标准操作
血培养采集流程标准操作
一、采集指征
当患者出现以下症状时，应考虑进行血培养：
1.高烧：体温超过38℃或低体温。
2.寒战。
3.白细胞计数异常：白细胞数量显著增加或减少。
4.疑似感染性心内膜炎患者。
5.疑似血液感染，如败血症、脓毒血症等。
二、采集时机
血培养的最佳采集时机是在患者发热或寒战发作时，或者在未使用抗生素前。
如果已经使用抗生素，应在下次用药前采集血培养。
在成人中，血培养应在发病后72小时内采集。
三、采集方法
1.准备：准备好所需器材，包括血培养瓶、注射器、消毒剂等。
2.消毒：对采血部位进行消毒，确保采血过程的无菌操作。
3.采集：从患者不同部位采集两套血培养，分别用于需氧菌和厌氧菌的培养。
每套血培养应抽取8-10ml血液，儿童为1-5ml。
4.轻摇：采血后轻轻摇动血培养瓶，确保血液与培养基充分混合。
5.送检：将血培养瓶及时送至实验室进行培养和鉴定。
四、运输和储存
血培养瓶应在室温下运输，并避免阳光直射。
在储存期间，应保持血培养瓶直立，避免剧烈震动，以确保细菌的正常生长。
以上是血培养采集流程的标准操作，遵循这些步骤可以提高血培养的阳性率，为临床诊断和治疗提供准确依据。
血培养标本采集、运送与报告标准操作规程
血培养标本采集、运送与报告标准操作规程一、血培养指征患者出现寒战，体温超过38°C或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：1．医院内肺炎2．留臵中心静脉导管大于72小时3．感染性心内膜炎4．骨髓炎5．有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状6．临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做血培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24小时后，以寒战、发热时采集为宜。
三、采血标准流程1.采集容器：根据检验申请单到检验科标本接受室领取血培养瓶。
2.采集时间及频率（1）急性脑膜炎、骨髓炎、关节炎细菌性肺炎和肾盂肾炎发热患者，应在抗生素治疗或更换前，从不同部位采集血液标本，做2次血液培养（应在抗生素治疗前完成）。
（2）疑似心内膜炎患者：急性病例，在抗生素治疗或改变前1～2小时，从各个不同部位采血3次做血培养培养；亚急性病例，第一天24小时内，相隔1小时连续采集3次血标本培养，若24～48小时全部阴性，再采集2～3次血标本培养；若已经抗生素治疗患者，连续3天，每天取2次血液标本。
3.采集方法（1）选择合适的采血部位，严格无菌操作用双针采血系统（或注射器）直接穿刺静脉，去除培养瓶上的封盖帽，用75%乙醇棉球消毒橡皮塞，待干。
(2)以双针采血管另一端的针头穿刺血培养瓶，使血液定量流入厌氧瓶，将针头从厌氧瓶内拔出，插进需氧瓶中再注入定量的血标本。
用注射器抽血时，将一定量的血先注入厌氧瓶后再注入需氧瓶。
(3)标本采集后，用无菌棉球压迫穿刺点，叮嘱病人压紧穿刺点5分钟，用75%乙醇去除血培养瓶上的血液并进行消毒，在血培养瓶上表明采血部位（左/右）。
(4)骨髓标本的采集：穿刺采集的骨髓标本注入儿童培养瓶内送检（血培养瓶瓶盖的消毒同上），如标本量太少，可同时接种于血琼脂平板送检。
(5)中心静脉留臵导管血标本的采集：用75%乙醇消毒导管及周围皮肤，在用碘伏按同样的方法消毒，待干，拔去导管盖，消毒针心，先插入无菌注射器抽取至少0.5～1ml血液废弃（以消除干扰因素和导管末端的污染），另取一无菌注射器抽取0.5～1ml血液注入儿童血培养瓶内送检，然后在导管内注入肝素或无菌生理盐水。
微生物标本采集与送检
微生物标本的采集与送检一、血液培养1、血液培养的送检指征：⑴症状指征：发热（≥38℃）、皮疹、肝脾肿大、关节疼痛、神志不清、昏迷或休克。
⑵疾病指征：化脓性病灶或损害、粘膜损伤性疾病、肝脏疾病、糖尿病、血液疾病及恶性肿瘤、艾滋病、呼吸道感染或呼吸衰竭、长期输液或导管介入疾病、血液透析患者。
2、采集流程：⑴培养瓶消毒程序：75%酒精擦拭橡皮塞，作用60秒后，用无菌棉签清除橡皮塞表面残余酒精；⑵皮肤消毒程序：75%酒精擦拭静脉穿刺部位，从穿刺点向外花圈消毒，至消毒区域直径3cm以上，作用60秒，待酒精挥发干燥后采血；⑵静脉穿刺和培养瓶接种程序：用注射器无菌穿刺取血（成人：5-10ml，婴幼儿1-2ml），直接注入血培养瓶后，轻轻颠倒混匀并立即送检。
3、注意事项：⑴血培养采血最好不要和其他检验项目采血同时进行，否则应先采血培养标本；⑵切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血；⑶不宜从静脉导管或静脉留置口取血；⑷建议在患者出现寒战、体温升高前采血。
如患者有明显的发热前期症状，在患者寒战前或寒战后1h内采血可提高阳性率；⑸应同时在不同部位或在不同时间段内采集2次以上标本，只采集一瓶的血培养标本是不允许的，因为一瓶血培养标本的培养结果很难解释是致病菌还是污染菌。
⑹一般情况下（怀疑为持续性菌血症者除外），在采血后的2-5天内，无需重复采血培养标本。
二、脑脊液培养1、脑脊液培养的送检指征：⑴症状指征：发热等感染性全身性症状、颅内压升高症状、脑膜刺激症状等。
⑵疾病指征：化脓性、非化脓性脑膜炎。
2、采集方法：检查和细胞计数、⑵经脑室导管采集：无菌操作采集脑部脓肿或活检标本的抽吸物，立即送检。
3、注意事项：⑴如果只采集了一管脑脊液，应首先送到细菌室；⑵做脑脊液培养的同时，建议同时做血培养。
三、胸腹水培养1、胸水培养的送检指征：⑴症状指征：多伴有胸痛、发热、胸腔积液。
⑵疾病指征:细菌性肺炎引起的胸膜炎、真菌感染引起的胸腔积液。
2、腹水培养的送检指征：⑴症状指征：腹部有积液伴腹痛、呕吐、肌紧张、肠鸣音弱或消失等。
正确采集血培养标本的方法
正确采集血培养标本的方法正确采集血培养标本的方法包括以下步骤：1．皮肤消毒：在抽血前，需要用肥皂和水彻底清洁抽血部位的皮肤，然后使用消毒剂进行皮肤消毒。
消毒剂可以使用氯己定乙醇（70%-80%）、碘酊（1%-2%）或碘伏（10%）等。
消毒后等待1-2分钟，待消毒液完全干燥后再进行抽血。
2．抽血：选择合适的静脉进行抽血，通常选择肘部或手部的静脉。
使用一次性注射器或真空采血装置进行抽血。
在抽取第一针血液后，应该更换针头再进行后续的抽取操作，避免交叉感染。
3．混匀：在抽血完成后，需要将血液注入培养瓶中。
在注入前，需要将培养瓶轻轻摇匀，确保其中的营养液和中和剂充分混合。
注入时，应该同时抽取需氧瓶和厌氧瓶，每个培养瓶中的血液量不应少于10毫升。
4．标记：在将血液注入培养瓶后，需要在瓶上标记采血日期、采血时间、患者姓名等信息。
同时，还需要记录采血部位和采血量等信息。
5．送检：在采集完血培养标本后，需要尽快将标本送往实验室进行检查。
如果不能及时送检，应该将培养瓶放置在室温下保存，但不要超过2小时。
需要注意的是，在采集血培养标本时，还需要注意以下几点：6．采集前，患者应该保持正常的生活习惯，避免过度疲劳或剧烈运动，以免影响检查结果。
7．采集前，患者应该避免使用抗生素等药物，以免影响细菌的生长。
8．采集时，应该选择合适的注射器和针头，避免过小或过大的针头导致采血困难或产生气泡。
9．采集时，应该尽可能避免污染样本，如避免在采样过程中交叉感染、保持采样环境和设备的清洁等。
10．标记时，应该准确记录患者的个人信息和采样时间、部位等信息，避免混淆和错误判断。
11．送检时，应该尽快将样本送往实验室进行检查，避免长时间保存和运输导致细菌死亡或污染等问题。
总之，正确采集血培养标本是进行病原菌检测和疾病诊断的重要步骤。
在实际操作过程中，需要严格遵守无菌操作原则，确保样本质量和实验室结果的准确性。
血培养标本的采集方法及运送
血流感染严重威胁患者的生命
明确诊断是各种病原菌感染 减少抗菌药物的误用和滥用 大大地改善患者的预后 减低患者的病死率，减少医疗费用
1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检 5.棉拭子标本宜用运送培养基 6.混有正常菌群污染标本，不可置肉汤培养 7.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂。 8.送检标本应注明来源和检验目的
不推荐静脉留置导管，因其常伴有高污染 率。如果必须从留置导管内采血，也应同 时从外周静脉采集另外一个血培养标本以 帮助阳性结果的判读提供解释。
在采血之前，血培养瓶的橡皮塞需使用75%酒精 消毒并干燥。然后再进行穿刺部位的皮肤消毒。 严格按照“酒精、含碘消毒剂、酒精”的消毒步骤 操作，并等待足够的消毒时间。
发热≥38℃，低温≤36℃ 寒战 9 白细胞增多（＞10*10 /L，特别是核左移） 粒细胞减少，血小板减少 皮肤、黏膜出血 血压降低、昏迷、多器官衰竭、呼吸加快 （＞20/分）
成人患者：推荐同时采集２套（不同部 位）血培养标本。（即双瓶双臂同时采 集血培养标本4瓶。） 婴幼儿患者：推荐同时采集不同部位血 培养标本2瓶（使用儿童专用需氧培养瓶， 婴幼儿患者厌氧菌所致菌血症比较罕 见）。
标本采集时机 标本采集方法 标本的质与量 标本的运送与保存 镜检筛选合格标本（退检制度） 高质量、多种分离培养基 培养环境
采集与运送
山东省临床实验室血培养指导原则 和操作指南
山东省卫生厅医政处 山东省临床检验中心
对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在 考虑使用抗菌药物之前，应立即采集 血培养标本。 必须同时或间隔短时间内采集２套以 上血培养标本。 寒战和发热初起时采血可提高培养阳 性率。 怀疑血流感染时应尽早采血
血培养的规范化操作流程
血培养的规范化操作流程血培养是临床实验室常见的一种微生物学检查方法，用于检测人体内是否存在细菌、真菌或其他微生物的感染。
在进行血培养时，需要遵循一系列规范化的操作步骤，以确保结果的准确性和可靠性。
以下是血培养的规范化操作流程。
1.检测前准备：-检测人员应佩戴个人防护装备，如实验服、手套、口罩等，以防止交叉感染。
-准备好所需的试剂和设备，包括培养基、血培养瓶、离心机、恒温箱等。
-检查培养基是否过期、封装是否完好，并进行质量检验。
2.标本采集：-根据临床需要，在合适的部位采集血液标本，并确保采集时的无菌操作。
-选择适当的采样器官，如使用灌注式血培养瓶，可选择适合的瓶颈部位。
-采集标本后应立即将其送至实验室进行处理。
3.标本处理：-将血液标本倒入血培养瓶中，通常一组采用两瓶血培养瓶，以增加检测的灵敏度。
-标本处理前应在标本瓶上标记样本信息，如患者姓名、标本号码、采样时间等。
-轻轻摇晃血培养瓶，以混匀血液和培养基，避免凝块的形成。
4.培养条件：-将血培养瓶放入恒温箱中，设置适当的温度和湿度条件（通常为35-37摄氏度和5-10%CO2）。
-检测周期根据临床需要而定，通常为24小时和48小时，有时可能需要更长的时间。
-定期检查恒温箱中血培养瓶的状态，确保温度和湿度的稳定。
5.细菌培养和观察：-在设定的培养周期后，检查血培养瓶中是否有细菌的生长。
-若瓶内产生了混浊或沉淀，则可能存在细菌生长，应进行下一步鉴定和分离。
-借助显微镜观察瓶内的液体或沉淀物，观察细菌形态、染色性质、运动性等特征。
6.细菌鉴定和药敏试验：-对生长的细菌进行鉴定，可以通过生物化学试验、分子生物学方法和免疫学方法等。
-鉴定完成后，可进行药敏试验，以确定对不同抗生素的敏感性和耐药性。
-鉴定和药敏试验的结果应记录在实验记录表中，并向临床医生提供及时的检测报告。
7.结果解读和报告：-根据细菌鉴定和药敏试验的结果，对病原体是否存在感染、感染的种类以及抗生素的选择等进行解读。
规范血培养及微生物标本送检
定期对血培养及微生物标本的质量进行评 价，发现问题及时整改，以提高质量控制 水平。
质量控制结果分析
分析质量控制数据
对质量控制数据进行统计和分析， 找出存在的问题和不足之处，为 进一步改进提供依据。
制定改进措施
针对存在的问题和不足之处，制 定相应的改进措施，以提高血培 养及微生物标本的质量控制水平。
标本采集部位
血培养及微生物标本的采集时间应尽量接 近患者发病时间，以反映真实的感染情况 。
采集部位应选择无感染、无炎症、无破损 的皮肤或粘膜，以减少污染。
标本采集量
标本保存和运输
血培养及微生物标本的采集量应满足检测 需要，同时也要考虑患者的承受能力。
采集后的血培养及微生物标本应妥善保存 ，并在规定时间内送达实验室，避免长时 间暴露在不适宜的环境中。
采集时机
选择合适的时机进行血培养标本采集，通常在患者发热、寒战等感 染症状明显时采集，以提高阳性检出率。
消毒准备
采集前应对采血部位进行严格的消毒，以减少污染的风险。
采集过程
01
02
03
采集方法
采用无菌技术进行静脉穿 刺，确保血液的纯净。
采集量
根据不同的培养需求，采 集适量的血液，一般为每 瓶5-10毫升。
。
延迟送检
标本采集后未能及时送检，导 致病原菌死亡或繁殖。
标识错误
标本标识不清晰或错误，导致 检验结果与患者不匹配。
检验结果解读错误
检验人员对检验结果解读不准 确或不全面，影响临床诊断和
治疗。
问题原因分析
操作不规范
采血人员操作不规范，未能严 格遵守无菌操作原则。
培训不足
采血人员缺乏相关培训，对血 培养及微生物标本送检流程不 熟悉。
血培养标本采集与运送标准操作规程
血培养标本采集与运送标准操作规程一、引言血培养标本采集与运送是临床微生物学中非常重要的步骤，对于准确诊断和治疗疾病起着关键作用。
本文旨在规范血培养标本的采集与运送操作，以提高标本质量、减少污染及误诊率。
二、采集前准备1. 确认患者身份：核对患者的姓名、年龄、性别等个人信息，确保无误。
2. 选择合适的采集器械：根据采集需求，选择适当的采集器械，如无菌针头、无菌试管、培养瓶等。
三、采集操作1. 患者准备：告知患者采集过程，让其了解并配合操作。
保证患者处于舒适、稳定的状态。
2. 消毒程序：对采集部位进行消毒，常用消毒剂如酒精、碘酒，按照规程进行彻底消毒。
3. 采集血样：将无菌针头插入患者的静脉或血管，抽取适量血液，并根据需要分装入无菌试管或培养瓶中。
4. 混匀标本：轻微摇晃或轻拍血样容器，确保血液与培养液充分混合。
四、采集后处理1. 采集器械处理：丢弃使用过的针头、试管等器械，并进行相应的处理，如焚烧或贴有“感染性废物”标签的特殊垃圾袋中。
2. 患者鼓励：告知患者采集已完成，感谢其的配合并鼓励其继续配合后续治疗。
五、运送操作1. 标本标识：确保标本上有患者的姓名、住院号、采集日期和时间等必要信息，以免混淆或丢失。
2. 运送容器：选择合适的运输容器，如耐压、耐震动、密封好的容器，确保标本在运输过程中不泄漏或受到破坏。
3. 防护措施：运送标本时，保持容器稳定，避免与其他容器、物品摩擦和震动，防止标本破损或污染。
4. 运送温度：根据不同培养需求，将标本置于适当的温度条件下运送，如冷藏、冷冻或常温等。
确保温度在规定范围内，避免标本质量受损。
5. 运送时效：尽量缩短标本送达实验室的时间，以保持标本的活性和准确度。
在运送前与实验室联系，确认实验室接收时间和运送方式。
六、备注事项1. 采集者要佩戴符合要求的个人防护装备，包括手套、口罩、防护眼镜等，以确保采集过程中不发生交叉感染。
2. 采集器械和容器要严格按照规定进行消毒、清洁和灭菌，以杀灭或去除潜在污染的微生物。
临床微生物标本规范化采集和送检
规范血培养的标本采集
血标本采集方法
（一）静脉血标本（最常用） （二）动脉血标本(血气分析) （三）毛细血管标本（血常规）
静脉血标本分类及目的
全血标本
血清标本 血培养标本
血沉、血常规、
凝血机制检测等
血清酶、脂类、 电解质、肝功能
血中的致病 菌
注意事项
（1）严禁在输液、输血的针头处 抽取标本，以免影响检验结果。 （最好在对侧采集）
血培养标本采集与送检要求—２
血培养标本采集的数量：
研究结果 ➢一套血培养的阳性率为65％ ➢二套血培养的阳性率为80％ ➢三套血培养的阳性率为96％
1套血培养定义：从一个静脉穿刺部位或静脉导管 所获血液的培养，不论被接种在1个还是多个血培 养瓶内只能算是1套
血培养标本采集与送检要求--3
1. 留置深静脉导管且怀疑导管相 关血流感染：
b. 男性：先用肥皂水清洗尿道口，后用清水 冲洗，留取中段尿
c. 儿童、婴儿：先以无菌生理盐水清洗外阴 部或外生殖器，将无菌试管对准尿道口， 待尿排出后送检
采集方法
➢ 中段尿采集方法 （最常用） ➢ 集尿法 结核分枝杆菌检查时，可用一清洁容器，
留24小时尿取其沉渣10-15ml送检 ➢ 未留置导尿管的患者：导尿法 ➢ 留置导尿管的患者：应在导尿管远端接口处用无菌
注射器抽取尿液。 ➢ 肾盂尿采集法 ➢ 膀胱穿刺采集法
中段尿采集方法
a. 女性：成年女性外阴部先以肥皂水清洗， 再以无菌水冲洗，然后排尿弃去前段尿， 留取中段尿10ml左右于无菌试管内送检
菌操作同时采集2套血培养。 （2）当任何部位感染怀疑合并菌血症时，在抗菌药物使用
前从不同外周静脉穿刺部位同时采集2套血培养。 （3）对不明原因的发热、亚急性心内膜炎，建议抽取3套
检验科血培养的检验流程
检验科血培养的检验流程下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成，希望大家下载以后，能够帮助大家解决实际的问题。
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血培养采样、送检、检验方法
血培养的规范化操作血培养检测采血指征：对入院的危重患者未进行系统性抗生素治疗前，应及时进行血液培养，患者出现以下体征时可作为采集血培养的重要指征：1．发热（≥38℃）或低温（≤36℃）。
2．寒战。
3．白细胞增多（>10×10 9/L，特别有“核左移”未成熟的或带状的白细胞增多。
4．粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1×10 9/L）。
5．血小板减少。
6．皮肤粘膜出血。
7．昏迷。
8．多器官衰竭。
或同时具备上述几种体征时应采血培养。
在评估可疑新生儿败血症时，除发热或低烧外，很少培养出细菌，应该补充尿液和脑脊液培养。
肺炎链球菌与流感嗜血杆菌菌血症的患儿（特别是2岁以下的幼儿）一般多见于门诊，常伴有明显发热（≥38.5℃）和白细胞增多（≥20×109/L）。
老年菌血症患者，可能不发热或不低热，如伴有身体不适，肌痛或中风可能是感染性心内膜炎的重要指征。
血培养检测皮肤消毒程序：血培养为防止皮肤寄生菌污染，可使用消毒剂（碘酊或碘伏）对皮肤进行严格仔细的消毒处理，最大限度地减低皮肤污染。
感染性心内膜炎，特别是心脏瓣膜修复术的感染，可能由皮肤寄生的微生物引起（例如：表皮葡萄球菌或棒杆菌属）。
因此，在采集过程中血培养的污染一定要减小至最低程度。
用做培养的血液均不应该在静脉或动脉的导管中抽取，除非静脉穿刺无法得到血液或用来评价与导管感染相关性指标。
如果抽取了导管血，也应同时在其他部位穿刺获取非导管内静脉血液进行血培养。
皮肤消毒严格按以下步骤进行：1．首先用70%酒精擦拭静脉穿刺部位待30秒钟以上。
2．然后用一根碘酊或碘伏棉签消毒皮肤（1%-2%碘酊30秒或10%碘伏消毒60秒），从穿刺点向外以1.5cm~2cm直径画圈进行消毒。
3．最后用70%酒精脱碘。
严格执行三步消毒后，可行静脉穿刺采血。
注意对碘过敏的患者，只能用70%酒精消毒，消毒60秒钟，待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。
血培养标本的采集与运送操作规程
血培养标本的采集与运送操作规程血培养标本的采集与运送操作规程一目的1、确保血标本样本培养的准确性。
2、采集血标本做细菌培养。
二用物准备一次性换药弯盘、碘酊、75%酒精、血培养瓶2套、10ml注射器2支、止血带三操作方法及程序1、洗手、戴口罩。
2、消毒用消毒液消毒培养瓶橡皮塞待干后使用。
用消毒液从穿刺点向外面划圈消毒至消毒区域直径达5cm以上待消毒液挥发干燥后30S穿刺采血。
消毒方法75%酒精消毒---碘酊消毒---75%酒精消毒待干。
3、采集部位外周静脉血、中心静脉血。
4、外周血标本采集参照护理部静脉血采集法。
5、中心静脉血标本采集遵循以上消毒方法对导管的肝素帽或输液接头进行消毒然后用10ml射器回抽导管5ml后弃掉然后用10ml注射器采集血样标本后立即注入血培养瓶内。
再用10ml无菌生理盐水脉冲式冲洗导管管腔内的残留血后给予封管液3ml进行封管封管后夹闭导管或继续输液治疗。
6、穿刺取血后排尽针头内空气直接注入血培养瓶勿更换针头先注入厌氧瓶、绕后注入需氧瓶轻轻混匀以防血液凝固。
同时采集标本间隔时间小于5分钟。
7、立即送实验室室温放置不超过12小时。
四注意事项1、检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。
2、采血部位通畅为肘静脉切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
3、采血时机发热高峰1小时内或开始时最好在使用抗生素之前或停用抗菌药物24h后。
4、采血次数应该同时分别在两个不同部位采集血标本在两个不同部位分离到同样菌才能确定时病原菌。
5、采血量以培养基与血液之比10：1为宜成人每次每培养瓶采血8-10ml婴幼儿2ml。
6、运送要求所有标本采集后都应立即送往实验室最好在2小时内。
血培养瓶送到检验科放入培养箱之前不应暂存于冰箱内。
血液培养标本采集的注意事项血培养标本采集和运送是血液细菌培养成功的重要环节！但由于标本的采集和运送常有护士或医生完成,所以也是最容易忽视的事情，由于不了解问题所在，引发的主要后果是血培养阳性率下降，这也是目前国内血培养阳性率低的主要原因。
血培养项目检测流程
血培养的污染菌
凝固酶阴性葡萄球菌、革兰阳性棒状杆菌、芽孢杆菌、痤疮丙酸杆菌和微球菌等是常见的污染菌。
血培养的耐药表型报告
耐药表型的报告
血培养的耐药分析报告
谢谢关注 敬请指导！
成人 10~15ml
消毒程序：儿皮童肤消毒3~(三5m步l法)——30S酒精、30S碘酊、30S酒
精
婴幼皮肤儿消毒1(一~2步m法l )——0.5%葡萄糖酸洗必泰作用
30s(不适用骨于髓2个月1以~2内m的l 新生儿)，或70%异丙醇自然干燥
（适用于2个月以内的新生儿）。
培养瓶消毒——60S酒精、无菌纱布、棉签擦干
方法2
连续速率 法
去除前面2小时的采集点，每6个点拟合一个斜率，至少连续9个拟合点满足：1.斜率比值 （加速度）大于0.64；2.斜率值大于0.54。最短报阳时间为4小时20分。
方法3 方法4 方法5
方法6
阈值法 15个数据点内有6个点超过阈值32，最快报阳时间为1小时。
阴性
当前采集点时间减去上瓶时间大于5天。
血培养-采样量
血液中细菌和真菌的检出率依赖于足够的血量，但并非越多越好，超过一定数量的采血量会
稀释培养基内的肉汤，使肉汤无法有效中和血中的抑制物质（补体、抗体、抗生素）。血量
与培养液的比例以 1：10为宜，但对已接受抗菌药物长达 10 天以上的患者， 采血量与培养
基的比例应为 1：20 或大于 1：20 为宜。
Matrix Assisted Laser Desorption/Ionization Time-Of-Flight Mass Spectrometry
MALDI TOF MS基质辅助激光解析电离飞行时间质谱仪
检测器
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血培养的规范化操作血培养检测采血指征：对入院的危重患者未进行系统性抗生素治疗前，应及时进行血液培养，患者出现以下体征时可作为采集血培养的重要指征：1．发热（≥38℃）或低温（≤36℃）。
2．寒战。
3．白细胞增多（>10×10 9/L，特别有“核左移”未成熟的或带状的白细胞增多。
4．粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1×10 9/L）。
5．血小板减少。
6．皮肤粘膜出血。
7．昏迷。
8．多器官衰竭。
或同时具备上述几种体征时应采血培养。
在评估可疑新生儿败血症时，除发热或低烧外，很少培养出细菌，应该补充尿液和脑脊液培养。
肺炎链球菌与流感嗜血杆菌菌血症的患儿（特别是2岁以下的幼儿）一般多见于门诊，常伴有明显发热（≥38.5℃）和白细胞增多（≥20×109/L）。
老年菌血症患者，可能不发热或不低热，如伴有身体不适，肌痛或中风可能是感染性心内膜炎的重要指征。
血培养检测皮肤消毒程序：血培养为防止皮肤寄生菌污染，可使用消毒剂（碘酊或碘伏）对皮肤进行严格仔细的消毒处理，最大限度地减低皮肤污染。
感染性心内膜炎，特别是心脏瓣膜修复术的感染，可能由皮肤寄生的微生物引起（例如：表皮葡萄球菌或棒杆菌属）。
因此，在采集过程中血培养的污染一定要减小至最低程度。
用做培养的血液均不应该在静脉或动脉的导管中抽取，除非静脉穿刺无法得到血液或用来评价与导管感染相关性指标。
如果抽取了导管血，也应同时在其他部位穿刺获取非导管内静脉血液进行血培养。
皮肤消毒严格按以下步骤进行：1．首先用70%酒精擦拭静脉穿刺部位待30秒钟以上。
2．然后用一根碘酊或碘伏棉签消毒皮肤（1%-2%碘酊30秒或10%碘伏消毒60秒），从穿刺点向外以1.5cm~2cm直径画圈进行消毒。
3．最后用70%酒精脱碘。
严格执行三步消毒后，可行静脉穿刺采血。
注意对碘过敏的患者，只能用70%酒精消毒，消毒60秒钟，待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。
血培养检测培养瓶消毒程序：1．用70%酒精或碘溶液（不要使用碘）消毒血培养瓶橡皮塞子。
2．酒精作用待60秒。
3．在血液注入血培养瓶之前，用无菌纱布清除橡皮塞子表面剩余的酒精，然后注入血液。
要点：血培养的关键是防止皮肤寄生菌或环境引起的污染，由污染菌引起的假阳性增加了患者抗生素的使用量，延长了住院日，延误病情诊断并增加了经济负担等。
然而，在理想的消毒条件下，仍有3%~5%血培养中混有污染菌，它们来源于皮肤（表皮葡萄球菌，痤疮丙酸杆菌，梭杆菌属，类白喉群）或来源于环境（革兰阳性芽孢杆菌属，不动杆菌属），这些微生物有时有致病作用。
对两次不同部位血培养生长同一种微生物，不同类无菌部位标本培养中生长同一种微生物，微生物快速生长（48h内）。
上述情况下，应考虑是真正的感染。
临床实验室工作人员和医生之间应经常讨论血培养结果，建立良好的交流关系对各方面都有益处。
例如查病例回顾性调查分析：1995~1999年血中分离的70例凝固酶阴性葡萄球菌，入院48h内检出者，39.3%（24例）为污染菌，48h后检出者（9例）100%为污染菌，污染菌检出时间显著长于病原菌。
提示血培养中凝固酶阴性葡萄球菌污染率较高。
因此，采血前严格执行皮肤消毒程序非常重要。
血培养检测采血量：对从菌血症或真菌菌血症患者血培养中获得微生物，每个培养瓶抽取的血量是唯一重要的变量。
当培养的血量从2ml增加到20ml时，血培养的阳性率增加30%~50%，因为培养的血液量增加1ml，阳性率增加3%~5%。
用静脉穿刺获得的血量，成人和儿童不同。
儿童，特别是新生儿很难获得大量的血液，对婴幼儿和儿童，一般静脉采血1ml~5ml用于血培养，当细菌浓度足够高时，血液少于1ml也足以检测菌血症。
标本量大于1ml，细菌量也增加，对于感染的儿童没毫升血液比成人有更多的微生物。
对于成人血培养的标本量少于10 ml不易培养出细菌，每瓶最低限量应是10ml血液，20ml~30ml最合适，血液和肉汤的比一般推荐为1:5至1:10。
几乎所有现代的血培养系统假如血液量均在10ml以上。
虽然静脉采血30ml可增加细菌量，但这不太切合实际，这很容易造成医院获得性贫血。
血培养的数量和采血时间：血培养的数量和采血时间关系到菌血症的病理生理学，一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单次血培养。
研究已经证实，采集适量的血液注入2~3瓶血培养瓶中足以检测所有的菌血症和真菌菌血症。
对间歇性菌血症，用于培养的血液应在估计寒战或体温高峰到来之前采集，因为细菌流入血液与寒战发作通常间隔1h，在发烧时血液可能没有细菌，实际上，血培养通常是在寒战或发烧后进行。
由于细菌很快会从血液中清除，因此，在寒战或发烧后应尽快抽取血培养。
正是由于这个原因，我们一般不推荐在任意时间抽取静脉血进行培养，研究资料表明任意时间采血并不能提高微生物的检出率。
实际上已经证明在24h内同一时间或任意时间抽血培养发现微生物的结果相似。
无论何时，采集血培养应该在使用抗生素之前进行，推荐同时采集2~3瓶，每瓶20ml~30ml血样进行培养来做最初的平谷，这也更切合实际。
先前饿抗生素治疗可能导致血培养结果阴性，微生物延迟生长更为常见。
有研究证实，对链球菌心内膜炎患者，在做血培养的前两周内患者接受了抗生素治疗，血培养的阳性率从97%下降到91%。
由于有很好的血培养技术，对感染性心内膜炎患者血培养的阳性率应该达到95%以上。
对特殊的全身性和局部感染患者采集血培养的建议：1．怀疑记性原发性菌血症、真菌菌血症、脑膜炎、骨髓炎、关节炎或肺炎的患者：应立即采集2或3份血培养瓶，快速进行血培养。
2．不明病源的发热，如隐性脓肿，伤寒热和波浪热：发热开始采集2或3份血培养。
24h至36h后，估计温度升高之前（通常在下午）立即采集2份以上血培养。
3．怀疑菌血症或真菌菌血症，血培养结果持续阴性，应改变学培养方法，以便获得罕见的或苛养的微生物。
4．感染性心内膜炎，对急性心内膜炎患者1h（2h内）采集3份血培养，如果所有结果24h后阴性，再采集3份血培养瓶。
入院前两周内接受抗生素治疗的患者，连续三天采集血培养，每天2份。
要点：大部分临床医生对成年患者采集血量不足，采集血培养份数不够，采血时机不合适，通常在患者体温高热时，24h内采集一瓶血培养，降低了血培养的阳性率，不符合才学的基本规程，实验室应该做大量宣传沟通工作。
血培养检测运输标准：采血后血培养瓶或采集管应立即送到临床微生物实验室。
血培养瓶和采集管短期内置于室温不影响细菌检出，不要冷藏，如果血培养瓶在送往实验室培养或自动化仪器检测之前不得已需放置一段时间，应置于35℃~37℃孵箱中。
但含血液的采集管不应置于孵箱中，若有细菌生长会释放出一些气体，采集管有破裂或渗漏的危险。
实验室收到血培养瓶后立即进行肉眼观察微生物生长情况。
采用自动化连续检测血培养系统，有一点很让人忧虑，那就是标本运送有时被延误，这样会导致微生物检测延迟（尽管微生物生长不受影响），目前很少有人注重这一点。
尽管自动化连续检测系统有允许延迟上瓶检测微生物生长的原理，培养瓶在运送过程中还应尽量减少延迟。
血培养检测接受标准：实验室收到血培养后，应按以下步骤操作：1．检查培养瓶确保它们被安全地放置。
2．用肉眼观查微生物生长的情况，注意血液层上面是否有絮状沉淀、均匀的或表面下的浑浊、溶血、液体培养基凝固、有一层表面薄膜、产生气体、血层表面或深层有白色颗粒等，如有上述情况产生提示有微生物生长。
3．检查瓶子上的标签，确认资料是否齐全，与申请单上的患者资料是否一致。
4．保证获得适量的血液。
5．检查血液是否超过要求的基线。
6．放置在孵箱中或上机进行检测。
由于菌血症和真菌菌血症的检测对临床感染性基本的诊断十分重要，实验室工作人员应认真接收血标本，对儿童和承认，不管抽血量多少，均应该进行培养并在报告单上注明血量，有可能延误菌血症或真菌菌血症的检测。
血培养检测不规范处理方法：送到实验室的血标本应认真处理，减少标本错误和标本污染。
标本处理不当及不正确采集，医院及实验室工作人员本身携带的病菌均可能造成标本污染。
因此，建议发生下列不规范的血培养时应该及时处理。
1. 血培养或培养管无标签或贴错标签、培养瓶或培养管有渗漏、破裂或明显的污染、血标本采集后放置12h以上、用不适当的培养瓶或培养管收集标本。
处理方法：立即与临床医师联系，报告：“标本不规范的具体理由”。
2. 用失效的培养瓶或培养管收集标本。
]处理方法：与医生联系，报告：“用过期培养瓶收集血标本，请用效期内的培养瓶收集标本并送检。
3. 送交血标本的量不足或只送一瓶血培养。
处理方法：与医生联系，报告：“送交的血培养标本量不足，请补送足量血液培养瓶”。
4. 未送推荐的培养瓶数或类型处理方法：与医生联系，报告：如“只送需氧瓶不符合规程，血培养的基本规程推荐送两种培养瓶：需氧瓶和厌氧瓶”。
要点：每位临床医师都应该对患者负责任，实验室工作人员发现不规范的血标本后，应该即使同志临床医生以便重复采集血培养进行补救。
血培养检测微生物室处理血培养预防感染的安全程序：1．细菌室工作人员，在所有的血培养处理过程中都应戴乳胶手套。
2．拒收不符合安全标准的血培养瓶或培养管。
3．在生物安全柜内打开或穿刺培养瓶或家一个胶膜防护装置（如：把培养瓶置于丙烯酸酯膜后或戴上口面罩）。
4．在生物安全柜内操作肉眼观察有微生物生长迹象的培养瓶。
5．操作产生的气溶胶，可能含有高浓度的致病菌或真菌，利用实验室的方法和技术采取正确的自我保护措施。
6．用于培养基的塞子和胶带可能含有高浓度的致病菌，应防止接触。
7．正确处理与血培养有关的污染物。
8．立即报告血培养结果及抗生素敏感试验结果。
血培养检测——阳性结果的处理：传统手工法血培养应该每天至少检查一次，对48h~72h未生长的培养瓶至少应进行需氧传种培养一次。
对培养瓶进行肉眼检查，注意下列几点提示有微生物生长：1．血与肉汤混合物出现浑浊。
2．在血液层上有絮状沉淀，某些链球菌在沉积的红细胞表面上，会有小的“棉球样”生长。
3．肉汤内出现浑浊生长。
4．肉汤表面有薄膜生长。
5．出现溶血。
6．产生气体，许多发酵菌可产气，梭菌属会产生大量的气体，出现明显的溶血现象。
7．血液层表面或深层有白色颗粒。
8．液体培养基凝固。
如果怀疑血培养阳性，应立即进行革兰染色，以无菌手续从培养瓶中取肉汤2~3滴涂片，自然干燥，加热固定并染色。
染色结果应尽快报告，如革兰阳性球菌为成对或成堆或成链，革兰阴性杆菌为小杆菌或球杆菌等。
革兰染色结果可指导医生为患者经验选择抗生素治疗，并作为实验室进行细菌鉴定补充试验的参考依据，它对于鉴别葡萄球菌和链球菌非常有用。
如果血培养阳性革兰染色未发现细菌，应做吖啶橙染色进行二次镜检，这对检测弯曲菌菌血症和布鲁菌菌血症很有帮助，而革兰染色很少发现这些细菌。