外源GB对盐胁迫下2种黄芪种子萌发及幼苗抗氧化酶的影响

合集下载
  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

福建农业学报 2020,35(8):891−895 Fujian Journal of Agricultural Sciences doi: 10.19303/j.issn.1008-0384.2020.08.012
韩多红,王恩军,张勇. 外源GB对盐胁迫下2种黄芪种子萌发及幼苗抗氧化酶的影响 [J]. 福建农业学报,2020,35(8):891−895.
HAN D H, WANG E J, ZHANG Y. Effect of Glycine Betaine on Seed Germination and Antioxidant Enzymes in Seedlings of Astragalus membranaceus under Salt Stress [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences,2020,35(8):891−895.
外源GB对盐胁迫下2种黄芪种子萌发及
幼苗抗氧化酶的影响
韩多红1,2,王恩军2,张 勇2
(1. 河西学院生命科学与工程学院,甘肃 张掖 734000;2. 甘肃省河西走廊特色
资源利用省级重点实验室,甘肃 张掖 734000)
摘 要:【目的】 探讨外源甜菜碱(Glycinebetaine,GB)对缓解盐胁迫下2 种黄芪种子及幼苗的作用机理。

【方法】 对受盐胁迫(100 mmol·L−1 NaCl)的蒙古黄芪和膜荚黄芪的种子及幼苗进行施加不同浓度(0 ~40 mmol·L−1)外源GB处理,测定不同处理后种子的发芽势、发芽率、发芽指数、活力指数和相对盐害率,以及幼苗SOD、CAT、POD、APX、GR和DHAR的活性。

【结果】 盐胁迫会抑制2 种黄芪种子的萌发,30 mmol·L−1外源GB处理的蒙古黄芪和膜荚黄芪分别比盐胁迫对照组(100 mmol·L−1 NaCl,CK2)的发芽率提高159.07 %和167.01 %,相对盐害率降低74.38 %和76.18 %。

用10~30 mmol·L−1外源GB处理盐胁迫下的黄芪幼苗,可提高SOD、CAT和POD活性,增强APX、GR和DHAR活性,但不同品种存在差异,膜荚黄芪增加幅度大于蒙古黄芪。

【结论】 30 mmol·L−1的外源GB能有效缓解盐胁迫对黄芪植株的伤害,品种间存在差异,膜荚黄芪的耐盐性及对外源GB的生理响应大于蒙古黄芪。

关键词:甜菜碱;蒙古黄芪;膜荚黄芪;盐胁迫;抗氧化酶
中图分类号: S 567.1文献标志码:A文章编号:1008-0384(2020)08−0891−05 Effect of Glycine Betaine on Seed Germination and Antioxidant Enzymes in Seedlings
of Astragalus membranaceus under Salt Stress
HAN Duohong1,2, WANG Enjun2, ZHANG Yong2
(1. College of life sciences and engineering, Hexi University, Zhangye, Gansu 734000, China; 2. Key Provincial Laboratory of Universities in Gansu Province for Characteristic Resources Utility in Hexi Corridor, Zhangye, Gansu 734000, China)Abstract: 【Objective】 Effects of exogenous treatment of glycine betaine (GB) on seeds and seedlings of Astragalus membranaceus under salt stress was studied to decipher the stress alleviation. 【Method】 The seeds and seedlings of A.
membranaceus (Fisch.) Bge.var.mongholicus (Bge.) Hsiao (Am H) and A. membranaceus (Fisch.) Bge. (Am B) under 100 mmol·L−1 NaCl stress were treated with GB 0–40 mmol·L−1. The rate, potential, and index of seed germination as well as the seedling vigor index and relative salt damage occurrence percentage to the plants were determined. The activities of SOD, CAT, POD, APX, GR and DHAR in the seedlings were analyzed. 【Result】 Addition of GB 30 mmol·L−1 to the salt containing medium increased the germination rate of Am H seeds by 159.07% and of Am B seeds by 167.01%, while reduced the relative rate of salt damage on Am H seedlings by 74.38% and on Am B seedlings by 76.18% in comparison to those without the addition. Under salt stress, the seedlings treated with GB 10–30 mmol·L−1 raised on the SOD, CAT, POD, APX, GR and DHAR activities in varying degrees. In general, the activity increases were greater on seedlings of Am B than those of Am H.
【Conclusion】 The addition of GB 30 mmol·L−1 effectively ameliorated the adverse effects of the salt stress on the seeds and seedlings of A. membranaceus and more pronounced on Am B than on Am H.
Key words: glycine betaine;Astragalus membranaceus (Fisch.) Bge.var.mongholicus (Bge.) Hsiao;Astragalus membranaceus (Fisch.) Bge.;salt stress;antioxidant enzyme activity
收稿日期:2019−12−06 初稿;2020−07−03 修改稿
作者简介:韩多红(1977−),男,副教授,研究方向:中药材栽培及药用植物资源利用(E-mail:******************)
基金项目:全国第四次中药资源普查项目(GSZYPC201815);甘肃省河西走廊特色资源利用重点实验室面上项目(XZ1405);甘肃省高校产业支撑引导项目(2019C-01)
0 引言
【研究意义】土壤盐渍化已成为当前全球极其重要的农业与环境问题,全球20%的耕地和33%的灌溉农田受到土壤盐分的影响,加上生产中不合理灌溉和过度施肥等农业措施也进一步加剧土壤次生盐渍化[1]。

甜菜碱(Glycinebetaine, GB)属于季铵型水溶性生物碱,是一种生理抗盐剂,通过生理调节作用减缓由于盐胁迫对植物造成的伤害,以达到提高植物耐盐性的目的,对植物维持呼吸作用和光合作用的正常进行也具有重要的生理意义[2]。

因此,利用外源GB诱导植物产生抗逆性是提高植物抵御不良环境的有效方法,对增强农作物的耐盐性具有重要的意义。

【前人研究进展】研究表明,盐渍条件下,植物体内会发生渗透胁迫,导致细胞氧化损伤和膜系统伤害[3−5]。

外源甜菜碱(GB)的添加,可有效调节植物光合作用生理过程,促进幼苗生长,缓解低温造成的氧化损伤,提高植物的抗盐性[6−9]。

目前,对黄芪的研究大多集中在栽培、药用成分、药理作用等方面[10−12]。

【本研究切入点】在盐胁迫条件下,外源GB对黄芪盐分调控效应的研究未见报道。

【拟解决的关键问题】本研究以蒙古黄芪和膜荚黄芪为材料,研究在盐胁迫下其种子萌发和幼苗抗氧化酶代谢的变化规律,并分析2种黄芪耐盐性的差异性,探讨盐胁迫下外源GB对植物的调控机制,为黄芪在河西走廊大片盐碱化土地上的栽培提供依据和参考。

1 材料与方法
1.1 试验材料
黄芪种子由甘肃省张掖市民乐诚泰药业有限公司黄芪种植基地提供,经河西学院张勇教授鉴定为蒙古黄芪Astragalus membranaceus(Fisch.)Bge. var. mongholicus(Bge.)Hsiao和膜荚黄芪Astraglus membranaceus(Fisch.)Bge.的干燥成熟种子。

试验于2019年5月在河西学院生命科学与工程试验中心进行。

1.2 试验方法
1.2.1 种子萌发指标的测定 选择籽粒饱满的种子用64% H2SO4处理4 min破除硬实,清水冲洗30 min 后,用2% NaClO消毒5 min,蒸馏水冲洗干净。

设置6个处理:CK1(蒸馏水)、CK2(100 mmol·L−1NaCl )、T1(100 mmol·L−1NaCl + 10 mmol·L−1GB)、T2(100 mmol·L−1 NaCl+ 20 mmol·L−1GB)、T3(100 mmol·L−1NaCl+ 30 mmol·L−1GB)、T4(100 mmol·L−1NaCl + 40 mmol·L−1GB )。

依照国际种子检验规程,发芽床试验采用滤纸法,每处理1个培养皿,重复3次,共18个培养皿。

每个培养皿中垫有两层滤纸,在不同处理的培养皿中分别加入相应的处理液6 mL。

供试种子先破除硬实后置于培养皿中,每个培养皿放入50粒种子,置于恒温培养箱中,设定温度25 ℃、光照时间10 h、光照强度2 000 lx。

每天统计种子萌发数,第3 d计算发芽势(G V),第7 d计算发芽率(G R)、发芽指数(G I)、活力指数(V I)和相对盐害率。

G V = 3 d内正常发芽种子数/全部供试种子数×100%
G R = 7 d内正常发芽种子数/全部供试种子数×100%
G I = Σ (G t/D t)
式中,G t为浸种后t日的发芽数;D t为相应发芽日数。

V I = S×G I
式中,S为平均鲜重。

相对盐害率=[(CK1发芽率−胁迫处理发芽率)/ CK1发芽率]×100%
1.2.2 幼苗生理指标的测定 选取经64% H2SO4破除硬实处理后的黄芪种子,放入25 ℃的恒温培养箱中浸种催芽,待种子露白后播种于装有蛭石的育苗钵内,6个处理,每处理3个育苗钵,每育苗钵内播种30粒种子,用1/4 Hoagland培养液进行浇灌,在幼苗2叶期时定苗,每钵留生长一致的幼苗15株,3个重复。

在第51 d后进行处理:每天每钵分2次根施5 mL的处理液,7 d后测定保护酶活性。

超氧化物歧化酶(SOD)活性、过氧化物酶(POD)活性、过氧化氢酶(CAT)活性参照陈建勋等[13]的方法测定;抗坏血酸过氧化物酶(APX)活性、谷胱甘肽还原酶(GR)活性、脱氢抗坏血酸还原酶(DHAR)活性参照段九菊等[14]的方法测定。

1.3 数据处理
试验数据以平均值±标准误表达,应用SPSS16.0统计分析软件进行单因素方差分析(one-way ANOVA)和LSD法(a=0.05)多重比较,Origin8.0绘图。

2 结果与分析
2.1 外源GB对盐胁迫下黄芪种子萌发指标的影响
由表1看出,CK2(盐胁迫对照处理)2种黄芪种子发芽率、发芽势、发芽指数和活力指数均较CK1(纯水对照处理)明显降低,相对盐害率均达62%以上。

CK2与CK1相比,蒙古黄芪的发芽率降低65.58%,膜荚黄芪降低64.50%。

在盐胁迫下添加外源GB浓度为10~30 mmol·L−1(T1、T2、T3)情况
892福建农业学报第 35 卷
下,随着外源GB浓度增大,2种黄芪的各项发芽指标总体呈升高的趋势,相对盐害率呈下降趋势;当盐胁迫下的外源GB浓度为40 mmol·L−1(T4)时则各项发芽指标显著下降,相对盐害率显著上升。

T3处理的各项发芽指标均达到最大值,与CK2处理相比,蒙古黄芪的发芽率(G R)、发芽势(G V)、发芽指数(G I)和活力指数(V I)分别升高159.07%、341.28%、189.25%和184.62%,膜荚黄芪分别升高167.01%、372.41%、210.10%和200.00%,蒙古黄芪和膜荚黄芪的相对盐害率分别较CK2降低74.38%和76.18%。

表1外源GB对盐胁迫下黄芪种子萌发的影响
Table 1 Effect of GB on seed germination of A. membranaceus under salt stress
种质材料Germplasm Materials
处理
Treatment
发芽率
Germination rate/%
发芽势
Germination
vigor/%
发芽指数
Germination index
活力指数
Vigor index
相对盐害率
Relative salt
damage rate/%
蒙古黄芪
Astragalus membranaceus(Fisch.)Bge.
var. mongholicus(Bge.)Hsiao CK167.78 ± 2.22 a44.13 ± 1.79 a9.06 ± 0.10 a0.59 ± 0.08 a0.00 ± 0.00 f CK223.33 ± 1.93 f8.26 ± 0.21 e 2.79 ± 0.13 f0.13 ± 0.01 c65.33 ± 3.97 a T130.00 ± 1.92 e15.56 ± 1.11 d 4.26 ± 0.20 e0.17 ± 0.00 c52.14 ± 2.82 b T248.22 ± 0.29 c32.67 ± 2.04 c 5.63 ± 0.17 c0.26 ± 0.07 bc30.54 ± 0.93 d T360.44 ± 1.55 b36.45 ± 0.12 b8.07 ± 0.19 b0.37 ± 0.01 b16.74 ± 1.80 e T433.22 ± 0.59 d17.56 ± 0.59 d 4.90 ± 0.04 d0.24 ± 0.01 bc40.54 ± 2.02 c
膜荚黄芪
Astraglus membranaceus(Fisch.)Bge.CK162.65 ± 2.48 a41.22 ± 0.02 a8.83 ± 0.27 a0.52 ± 0.04 a0.00 ± 0.00 e CK222.24 ± 0.11 e7.35 ± 0.16 e 2.30 ± 0.22 e0.11 ± 0.02 d62.21 ± 1.08 a T128.08 ± 2.10 d14.45 ± 0.56 d 4.09 ± 0.12 d0.14 ± 0.05 cd55.18 ± 2.92 b T242.66 ± 2.23 c29.08 ± 2.03 c 5.38 ± 0.09 c0.23 ± 0.00 c34.92 ± 2.59 c T359.38 ± 2.98 b34.25 ± 2.24 b7.13 ± 0.49 b0.33 ± 0.03 b14.82 ± 1.65 d T433.61 ± 2.15 d15.79 ± 0.40 d 4.52 ± 0.22 d0.21 ± 0.03 cd45.97 ± 5.23 bc
注:表中数值为平均数±标准差,同列数据中无相同小写字母表示处理间差异显著(P<0.05)。

Note: Data are mean±standard error; those with different lowercase letters on same column indicate significant differences between treatments (P<0.05). Different lowercase letters on top of column indicate significant difference, while same lowercase letter no significant difference (P>0.05). Same for Fig. 2.
2.2 外源GB对盐胁迫下黄芪幼苗抗氧化酶活性的影响
由图1可知,不同品种的纯水对照处理(CK1),膜荚黄芪幼苗SOD、POD和CAT活性均比蒙古黄芪高;盐胁迫对照处理(CK2)的2个黄芪品种(蒙古黄芪和膜荚黄芪)的SOD、POD和CAT活性均有升高,分别比CK1提高18.34%和22.23%、12.41%和13.63%、31.65%和33.72%,且2种黄芪的POD、CAT活性均与CK1差异显著(P<0.05)。

盐胁迫下添加外源GB的4个处理(T1、T2、T3、T4),2种黄芪幼苗SOD、POD和CAT活性均呈先上升后下降的趋势,T3达到最大值。

T3处理的SOD、POD和CAT 活性,蒙古黄芪分别较CK2提高41.23%、89.15%和50.67%,膜荚黄芪分别较CK2提高42.92%、91.44%和53.41%,差异均达显著水平(P<0.05)。

表明外源GB可显著提高黄芪幼苗在盐胁迫下的SOD、POD 和CAT活性,且膜荚黄芪的提高幅度大于蒙古黄芪。

由图2可知,盐胁迫对照处理(CK2)的2种黄芪APX、GR和DHAR活性均比纯水对照处理(CK1)大幅度下降,两者存在显著性差异(P<0.05)。

盐胁迫下添加外源GB的4个处理(T1、T2、T3、T4),2种黄芪幼苗的APX、GR和DHAR活性均呈先上升后下降的趋势,在T3处理达到最大值,T4处理出现下降。

与CK2相比,T3处理的APX、GR和DHAR 活性,膜荚黄芪分别提高323.02%、139.38%和109.92%,蒙古黄芪分别提高343.23%、167.25%和111.01%,差异均达显著水平(P<0.05)。

表明外源GB可显著提高黄芪幼苗在盐胁迫下的APX、GR 和DHAR活性,且外源GB对膜荚黄芪的盐胁迫缓解效果优于蒙古黄芪。

第 8 期韩多红等:外源GB对盐胁迫下2种黄芪种子萌发及幼苗抗氧化酶的影响893
3 讨论与结论
3.1 外源GB 对盐胁迫下黄芪种子发芽指标的影响
植物最重要的繁殖器官是种子,因此植物种子在萌发阶段的耐盐状况可以反映该物种的耐盐能力
[15]。

本研究中,盐胁迫会导致2种黄芪种子的发
芽率等指标明显降低,相对盐害率大幅上升,但在添加外源GB (≤30 mmol·L −1
)后,发芽率等指标均出现升高,表明外源GB 可有效缓解盐胁迫对种子萌发造成的抑制作用。

在盐胁迫处理下,蒙古黄芪种子的发芽率等指标降幅较大;在外源GB 处理后,膜荚黄芪的发芽率等指标增幅较大,表明膜荚黄芪种子对盐胁迫的耐受性和调控响应性均高于蒙古黄芪。

3.2 外源GB 对盐胁迫下黄芪幼苗抗氧化酶活性的影响
盐胁迫可引起植物体内产生活性氧簇(ROS ),由于ROS 的增加,细胞中抗氧化酶(SOD 、POD 、CAT 和APX 等)活性都会有所升高以清除产生的ROS
[16]。

逆境中保护酶活性会增强或维持较高的水
平,才能清除活性氧自由基使之保持较低水平,以防止自由基对生物膜结构和功能的破坏
[17]。

SOD 能
催化O 2−
发生歧化反应产生H 2O 2和O 2,H 2O 2随后主要被POD 、CAT 和AsA-GSH 循环清除,APX 在AsA-GSH 循环中清除H 2O 2起着关键作用, 而MDHAR 、DHAR 和GR 主要通过影响AsA 和GSH 的再生,为APX 清除H 2O 2提供底物
[18]。

本研究中,盐胁迫下,
2种黄芪幼苗中的SOD 、CAT 、POD 活性出现小幅度的升高,但APX 、GR 和DHAR 的活性出现显著下降;在外源GB (≤30 mmol·L −1
)处理后,SOD 、POD 和CAT ,以及AsA-GSH 循环的关键酶APX 、GR 和DHAR 活性均出现升高。

这表明,黄芪幼苗可通过调节自身SOD 等酶的活性来抵御盐胁迫伤害,外源GB 可有效提高抗氧化酶的活性,缓解盐胁迫伤害,这可能是由于外源GB 可作为辅因子参与Ca 2+
-CaM 信号转导途径, 调控相关蛋白表达所致。

同样在经外源GB 处理后,膜荚黄芪的抗氧化酶活性高于蒙古黄芪,说明品种之间存在差异性。

综上所述,盐胁迫会对黄芪种子的萌发和幼苗
c c
d bc c bc c b a a bc ab CK 1CK 2T 1T 2T 3T 4处理 Treatment P O D 活性f
e
f e c c d b a a d b CK 1CK 2T 1
T 2
T 3
T 4
处理 Treatment C A T 活性e c d d bc cd bc b a a bc b CK 1CK 2T 1T 2T 3T 4
处理 Treatment
蒙古黄芪膜荚黄芪
注:图柱上方同一个种不同处理间无相同小写字母表示在0.05水平上差异显著(P <0.05),同一个种不同处理间有相同小写字母表示在0.05水平上差异不显著(P >0.05),图2同。

Note: The absence of the same lowercase letter in the same treatment above the figure column indicates a significant difference at the 0.05level (P <0.05), while the presence of the same lowercase letter in the same treatment indicates no significant difference at the 0.05 level (P >0.05),as shown in Fig 2.
图 1 外源GB 对盐胁迫下黄芪幼苗SOD 、POD 和CAT 活性的影响
Fig. 1 Effects of GB on SOD, POD and CAT activities in A. membranaceus seedlings under salt stress
b e c
c a
a
d
b
a a c
b CK 1CK 2T 1T 2
T 3
T 4
处理 Treatment G R 活性b d c c b b d c a a
c
b CK 1CK 2T 1T 2T 3T 4处理 Treatment a
d a d bc
c d cd b
b d cd CK 1CK 2T 1
T 2
T 3
T 4
处理 Treatment
蒙古黄芪 Astragalus membranaceus (Fisch.) Bge. var. mongholicus (Bge.) Hsiao
膜荚黄芪 Astraglus membranaceus (Fisch.) Bge.
图 2 外源GB 对盐胁迫下黄芪幼苗APX 、GR 和DHAR 活性的影响
Fig. 2 Effects of GB on APX, GR and DHAR activities in A. membranaceus seedlings under salt stress
894
福建农业学报
第 35 卷
生长造成伤害,添加外源GB 可有效缓解盐胁迫的伤害,本试验适宜的添加浓度为30 mmol·L −1。

2种黄芪品种相比较,膜荚黄芪的耐盐性及对外源GB 调控的响应性强于蒙古黄芪。

因此,在干旱多盐碱的河西走廊种植区,可通过适宜浓度的外源GB 调节来提高黄芪的耐盐性,并根据实际情况选择合适品种种植,以减轻盐胁迫对植物生长发育的影响。

参考文献:
王佺珍, 刘倩, 高娅妮, 等. 植物对盐碱胁迫的响应机制研究进展
[J ]. 生态学报, 2017, 37(16):5565−5577.
WANG Q Z, LIU Q, GAO Y N, et al. Review on the mechanisms of the response to salinity-alkalinity stress in plants [J ]. Acta Ecologica Sinica , 2017, 37(16): 5565−5577.(in Chinese )
[1]张立新, 李生秀. 甜菜碱与植物抗旱/盐性研究进展 [J ]. 西北植物学
报, 2004, 24(9):1765−1771.
ZHANG L X, LI S X. Research progress on relationships betaine and drought/salt resistance of plants [J ]. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica , 2004, 24(9): 1765−1771.(in Chinese )
[2]张腾国, 胡馨丹, 李萍, 等. 盐及低温胁迫对油菜ROS 和抗氧化酶活
性的影响 [J ]. 兰州大学学报(自然科学版), 2019, 55(4):497−505.
ZHANG T G, HU X D, LI P, et al. Effects of low temperature and salt stress on the activity of ROS and antioxidant enzymes in Brassica campestris seedlings [J ]. Journal of Lanzhou University(Natural Sciences), 2019, 55(4): 497−505.(in Chinese )
[3]雷泽湘, 费永俊, 胡南. 弯叶画眉草对盐胁迫的生理响应 [J ]. 福建
农业学报, 2008, 23(1):68−71.
LEI Z X, FEI Y J, HU N. Physiological responses of Eragrostis curvula to salt stress [J ]. Fujian Journal of Agricultural Sciences ,2008, 23(1): 68−71.(in Chinese )
[4]翁锦周, 林江波, 陈永快, 等. NaCl 胁迫对桉树幼苗膜脂过氧化与膜
保护酶系统的影响 [J ]. 福建农业学报, 2007, 22(2):197−201.WENG J Z, LIN J B, CHEN Y K, et al. Effects of salt stress on membrane lipid peroxidation and protective enzyme systems in Eucaly ptus seedlings [J ]. Fujian Journal of Agricultural Sciences , 2007,22(2): 197−201.(in Chinese )
[5]郭振洁, 王芸, 何学敏, 等. 根施外源甜菜碱对胡杨幼苗叶片积累甜
菜碱与耐盐特性的影响 [J ]. 干旱区研究, 2017, 34(4):847−855.GUO Z J, WANG Y, HE X M, et al. Effect of Root-applied Glycinebetaine on Glycinebetaine Accumulation and Salinity Tolerance of Seedling of Populus euphratica [J ]. Arid Zone Research ,2017, 34(4): 847−855.(in Chinese )
[6]杨晓云, 宋涛, 刘辉, 等. 外源甜菜碱对NaCl 胁迫下玉米幼苗生长和
叶绿素含量的影响 [J ]. 湖北农业科学, 2017, 56(5):830−833,875.
YANG X Y, SONG T, LIU H, et al. Effects of Exogenous Glycine Betaine on the Growth and Chlorophyll Content of Maize Seedlings under NaCl Stress [J ]. Hubei Agricultural Sciences , 2017, 56(5):830−833, 875.(in Chinese )
[7]刘术均, 刘爱群, 何明. 外源甜菜碱对低温胁迫下茄子幼苗抗性的影
响 [J ]. 北方园艺, 2018(22):57−61.
LIU S J, LIU A Q, HE M. Effect of Exogenous Glycine Betaine on Eggplant Seedling Resistance Under Low Temperature Stress [J ].
[8]Northern Horticulture , 2018(22): 57−61.(in Chinese )
李小玲, 华智锐, 郭青青. 甜菜碱对盐胁迫黄芩抗逆性的影响 [J ].
贵州农业科学, 2018, 46(1):77−81.
LI X L, HUA Z R, GUO Q Q. Effect of Betaine on Stress Resistance of Scutellaria baicalensis under Salt Stress [J ]. Guizhou Agricultural Sciences , 2018, 46(1): 77−81.(in Chinese )
[9]杨光, 钱丹, 郭兰萍, 等. 重金属对膜荚黄芪种子生长及抗氧化系统
的影响 [J ]. 中国中药杂志, 2010, 35(9):1095−1099.
YANG G, QIAN D, GUO L P, et al. Effects of heavy metal on Astragalus membranaceus seeds germination and physiological target [J ]. China Journal of Chinese Materia Medica , 2010, 35(9):1095−1099.(in Chinese )
[10]张慧, 张丽萍, 周学刚, 等. 蒙古黄芪和膜荚黄芪生长发育比较研
究 [J ]. 中国中药杂志, 2009, 34(12):1591−1592.
ZHANG H, ZHANG L P, ZHOU X G, et al. Comparative study on the growth and development of Astragalus membranaceus (Fisch.) Bge.var. mongholicus (Bge.) Hsiao and Astraglus membranaceus (Fisch.)Bge [J ]. China Journal of Chinese Materia Medica , 2009, 34(12):1591−1592.(in Chinese )
[11]王渭玲, 梁宗锁, 谭勇. 膜荚黄芪干物质累积及氮、磷、钾吸收规律
的研究 [J ]. 中国中药杂志, 2007, 32(9):789−793.
WANG W L, LIANG Z S, TAN Y. Study on accumulation of dry matter and aborption of N.P and K of Astragalus membranaceus [J ].China Journal of Chinese Materia Medica , 2007, 32(9):789−793.(in Chinese )
[12]陈建勋, 王晓峰. 植物生理学实验指导[M]. 北京: 中国农业出版社,
2000.
[13]段九菊, 郭世荣, 康云艳, 等. 外源亚精胺对盐胁迫下黄瓜(Cucumis
sativus L.)叶绿体活性氧清除系统和结合态多胺含量的影响 [J ]. 生态学报, 2009, 29(2):653−661.
DUAN J J, GUO S R, KANG Y Y, et al. Effects of exogenous spermidine on active oxygen scavenging system and bound polyamine contents in chloroplasts of cucumber under salt stress [J ]. Acta Ecologica Sinica , 2009, 29(2): 653−661.(in Chinese )
[14]周璐璐, 伏兵哲, 许冬梅, 等. 盐胁迫对沙芦草萌发特性影响及耐盐
性评价 [J ]. 草业科学, 2015, 32(8):1252−1259.
ZHOU L L, FU B Z, XU D M, et al. Effects of salt stress on germination characteristics of Agropyron mongolicum and salt-tolerance evaluation [J ]. Pratacultural Science , 2015, 32(8):1252−1259.(in Chinese )
[15]赵可夫. 植物抗盐生理[M]. 北京: 中国科学技术出版社, 1993.
[16]谭会娟, 李新荣, 刘玉冰, 等. 盐胁迫下红砂愈伤组织的抗氧化能力
与耐盐性研究 [J ]. 中国沙漠, 2013, 33(2):549−553.
TAN H J, LI X R, LIU Y B, et al. Study on the antioxidative ability and salt tolerance of Reaumuria soongorica callus under salt stress [J ]. Journal of Desert Research , 2013, 33(2): 549−553.(in Chinese )
[17]温泽林, 刘慧英, 周艳, 等. 一氧化氮参与外源谷胱甘肽对盐胁迫下
番茄幼苗抗氧化损伤的调控 [J ]. 植物生理学报, 2018, 54(4):607−617.
WEN Z L, LIU H Y, ZHOU Y, et al. The involvement of nitric oxide in exogenous glutathione regulates antioxidant defense capacity against salt stress in tomato seedlings [J ]. Plant Physiology Journal ,2018, 54(4): 607−617.(in Chinese )
[18](责任编辑:杨小萍)
第 8 期韩多红等:外源GB 对盐胁迫下2种黄芪种子萌发及幼苗抗氧化酶的影响
895。

相关文档
最新文档