DNA提取及PCR扩增实验报告
pcr技术实验报告
pcr技术实验报告PCR技术实验报告引言PCR(聚合酶链式反应)是一种重要的分子生物学技术,它能够在短时间内扩增DNA片段,从而使得微量的DNA得以扩增至足够多的量进行进一步的分析和研究。
本实验旨在通过PCR技术扩增目标DNA片段,验证其在实验条件下的可行性和准确性。
实验方法1. 样品准备:从细胞或组织中提取DNA,并进行纯化处理。
2. PCR反应体系的准备:按照所需的PCR反应体系配制反应液。
3. PCR扩增:将DNA模板加入PCR反应管中,进行PCR扩增反应。
4. 扩增产物分析:将PCR扩增产物进行琼脂糖凝胶电泳分析。
实验结果通过PCR技术扩增,成功获得了目标DNA片段,并在琼脂糖凝胶电泳中观察到了明显的扩增产物条带。
实验结果表明PCR技术在实验条件下具有较高的可行性和准确性,能够快速、高效地扩增目标DNA片段。
讨论本实验结果验证了PCR技术在实验条件下的可行性和准确性,为进一步的分子生物学研究提供了可靠的技术支持。
同时,本实验还表明PCR技术在分子诊断、基因克隆等领域具有重要的应用前景。
结论通过PCR技术实验,成功扩增了目标DNA片段,并验证了其在实验条件下的可行性和准确性。
PCR技术的高效、快速特点使其在分子生物学研究和临床诊断中具有广阔的应用前景。
总结PCR技术作为一种重要的分子生物学技术,已经成为现代生命科学研究中不可或缺的工具。
本实验结果验证了PCR技术在实验条件下的可行性和准确性,为进一步的研究和应用提供了可靠的技术支持。
PCR技术的不断发展和完善,将为生命科学领域的研究和临床诊断带来更多的可能性和机遇。
pcr扩增的实验报告
pcr扩增的实验报告PCR扩增实验报告在生物学研究中,PCR(聚合酶链式反应)是一种常用的分子生物学技术,它能够在体外快速、高效地扩增DNA片段。
本实验旨在利用PCR技术扩增目标DNA片段,并对扩增产物进行分析。
实验方法:1. 提取DNA样本:首先,我们从细胞或组织中提取目标DNA样本,这可以通过常规的DNA提取试剂盒来完成。
2. PCR反应体系:将提取的DNA样本与引物、dNTPs、Taq DNA聚合酶和PCR 缓冲液混合,构建PCR反应体系。
3. PCR扩增:将PCR反应体系置于热循环仪中,进行一系列的温度变化循环,包括变性、退火和延伸步骤,以使DNA片段得以扩增。
4. 分析PCR产物:利用琼脂糖凝胶电泳或其他分析方法,对PCR扩增产物进行分析,确认目标DNA片段是否被成功扩增。
实验结果:经过PCR扩增反应后,我们成功获得了目标DNA片段的扩增产物。
通过琼脂糖凝胶电泳分析,我们确认了目标DNA片段的扩增产物大小和纯度,并且与预期的DNA序列相符合。
实验讨论:PCR扩增技术具有高度的特异性和灵敏度,能够在较短的时间内扩增目标DNA 片段,并且不受DNA起始量的限制。
因此,PCR扩增技术在分子生物学研究中具有广泛的应用价值,包括基因克隆、DNA测序、基因突变分析等领域。
结论:本实验成功利用PCR技术扩增了目标DNA片段,并对扩增产物进行了分析。
PCR扩增技术的成功应用为我们提供了一种快速、高效的DNA扩增方法,为后续的分子生物学研究奠定了基础。
通过本次实验,我们深刻认识到PCR扩增技术在生物学研究中的重要性,相信在今后的科学研究中,PCR技术将继续发挥重要作用,为生命科学领域的发展做出更大的贡献。
测定基因的实验报告
一、实验目的1. 掌握DNA提取、PCR扩增、琼脂糖凝胶电泳等分子生物学技术;2. 学习基因的测定方法;3. 了解基因测序在生物研究中的应用。
二、实验原理1. DNA提取:利用细胞裂解、盐析等方法将DNA从细胞中提取出来;2. PCR扩增:通过设计特异性引物,利用DNA聚合酶在体外扩增目标DNA片段;3. 琼脂糖凝胶电泳:将PCR产物在琼脂糖凝胶上电泳分离,根据迁移率判断DNA 片段大小;4. 基因测序:利用DNA测序仪对目标DNA片段进行测序,获取基因序列。
三、实验材料1. 实验动物:小鼠;2. 试剂:DNA提取试剂盒、PCR试剂盒、琼脂糖、DNA分子量标准、DNA测序试剂盒等;3. 仪器:PCR仪、电泳仪、凝胶成像系统、DNA测序仪等。
四、实验步骤1. DNA提取(1)取小鼠组织,加入DNA提取试剂盒中的裂解液,充分匀浆;(2)加入蛋白酶K,56℃水浴1小时,使蛋白质变性;(3)加入饱和NaCl溶液,混匀,室温静置10分钟;(4)12,000 r/min离心10分钟,取上清液;(5)加入异丙醇,混匀,室温静置10分钟;(6)12,000 r/min离心10分钟,弃上清液;(7)加入70%乙醇洗涤沉淀,12,000 r/min离心5分钟;(8)弃上清液,室温晾干;(9)加入TE缓冲液溶解DNA。
2. PCR扩增(1)设计特异性引物,针对目标基因;(2)配置PCR反应体系,包括DNA模板、引物、dNTPs、PCR缓冲液、Taq酶等;(3)PCR反应条件:94℃预变性5分钟,94℃变性30秒,退火温度根据引物设计,延伸温度72℃,延伸时间1分钟,共35个循环;(4)PCR产物经琼脂糖凝胶电泳检测。
3. 琼脂糖凝胶电泳(1)配置琼脂糖凝胶,加入DNA分子量标准;(2)将PCR产物与DNA分子量标准混匀,点样;(3)电泳条件:100 V,电泳1小时;(4)凝胶成像系统观察电泳结果。
4. 基因测序(1)将PCR产物纯化,送至测序公司进行测序;(2)获取基因序列,进行序列比对和分析。
pcr技术扩增DNA实验报告
pcr技术扩增DNA实验报告摘要:PCR(聚合酶链反应)是一种广泛应用于分子生物学领域的技术,通过该技术可以在短时间内获得大量特定DNA序列的复制。
本实验旨在使用PCR技术对DNA进行扩增,验证其可行性和准确性。
实验结果表明,PCR技术成功扩增了目标DNA,并呈现出预期的结果。
引言:PCR技术的发明对分子生物学领域做出了巨大贡献。
PCR通过扩增DNA片段来满足各种实验和应用的需求,例如基因克隆、遗传突变检测和DNA起源研究等。
PCR技术的原理基于DNA链的反应性,在特定条件下通过DNA引物、酶和核苷酸扩增目标DNA序列。
本实验旨在验证PCR技术的可行性和准确性,并展示扩增DNA的结果。
材料与方法:材料:1. DNA模板:提供待扩增的DNA样本。
2. 引物:设计用于识别并扩增目标DNA序列的引物。
3. PCR反应液:包含缓冲液、DNA聚合酶、dNTP、镁离子。
4. PCR仪:用于控制PCR反应的温度和时间。
方法:1. 准备PCR反应液:按照指定比例将缓冲液、DNA聚合酶、dNTP、镁离子混合制备PCR反应液。
2. 加入DNA模板和引物:将待扩增的DNA模板和引物加入PCR反应液中。
3. PCR反应条件设置:根据扩增目标和引物的特性设置PCR反应的温度和时间。
4. PCR反应进行:将PCR反应管放入PCR仪中,进行PCR反应。
5. 扩增产物分析:将PCR反应的产物进行凝胶电泳分析。
结果:经过PCR反应后,我们成功扩增了目标DNA序列,并获得了预期的结果。
凝胶电泳分析显示PCR扩增产物呈现出目标大小的DNA条带,并且PCR扩增产物的浓度较高。
讨论:PCR技术的成功扩增显示了其在分子生物学领域的重要性和应用价值。
通过PCR技术,我们可以在保证准确性和快速性的前提下,生成大量特定DNA序列。
在本实验中,我们通过PCR技术扩增了目标DNA,证明了PCR技术在实验中的可行性和准确性。
此外,本实验还展示了PCR反应条件对扩增结果的重要影响。
测序实验报告
一、实验目的1. 学习和掌握DNA提取、PCR扩增和测序的基本原理和操作方法;2. 了解DNA测序技术在生物科学研究中的应用;3. 掌握测序数据分析的基本方法。
二、实验仪器与试剂1. 仪器:高速离心机、PCR仪、凝胶成像系统、测序仪等;2. 试剂:DNA提取试剂盒、PCR试剂、测序试剂、DNA标记物等。
三、实验原理1. DNA提取:采用试剂盒法提取DNA,利用酚-氯仿法去除蛋白质和RNA,得到纯净的DNA;2. PCR扩增:利用PCR技术扩增目标DNA片段,得到足够量的模板DNA;3. 测序:利用测序仪对扩增后的DNA片段进行测序,得到序列信息。
四、实验步骤1. DNA提取(1)将样本加入提取缓冲液,涡旋混匀;(2)加入无水乙醇,静置沉淀;(3)将沉淀转移至离心管,离心去除上清液;(4)加入70%乙醇洗涤沉淀,离心去除上清液;(5)加入TE缓冲液溶解DNA,测定DNA浓度。
2. PCR扩增(1)设计引物,进行PCR反应;(2)PCR反应条件:95℃预变性5分钟,然后进行35个循环(95℃变性30秒,55℃退火30秒,72℃延伸1分钟),最后延伸7分钟;(3)PCR产物进行电泳检测,观察扩增效果。
3. 测序(1)将PCR产物进行纯化,去除杂质;(2)进行测序反应,将PCR产物与测序引物结合,进行测序;(3)将测序数据上传至测序仪,进行序列分析。
五、实验结果与分析1. DNA提取:电泳结果显示,DNA条带清晰,表明DNA提取成功;2. PCR扩增:电泳结果显示,PCR产物条带清晰,表明PCR扩增成功;3. 测序:测序结果显示,测序数据完整,质量较高。
六、实验结论1. 本实验成功提取了目标DNA;2. 成功扩增了目标DNA片段;3. 成功完成了DNA测序,得到了高质量的数据。
七、实验反思与体会1. 在DNA提取过程中,要注意控制实验操作过程中的温度和时间,以确保DNA的完整性;2. 在PCR扩增过程中,要优化反应条件,以确保扩增效率;3. 在测序过程中,要注意测序数据的读取和分析,以确保数据的准确性。
pcr扩增实验报告
pcr扩增实验报告篇一:DNA提取及PCR扩增实验报告PCR扩增及DNA琼脂糖凝胶电泳刘琳1131428 环境科学一、实验目的1.学习并掌握PCR扩增的基本原理与实验技术。
2.对扩增后的DNA进行琼脂糖凝胶电泳试验,并分析相应结果。
二、实验原理1. PCR扩增多聚酶链反应(PCR)技术的原理类似于DNA的天然复制过程。
在微量离心管中加入适量缓冲液,加入微量模板DNA、四种脱氧核苷酸(dNTP)、耐热Taq聚合酶及两个合成DNA的引物,而后加热使模板DNA在高温下(94℃)变性,双链解链,这是所谓变性阶段。
降低溶液温度,使合成引物在低温(55℃)与模板DNA互补退火形成部分双链,这是所谓退火阶段。
溶液反应温度升至中温(72℃),在Tap酶作用下,用四种dNTP 为原料,引物为复制起点,模板DNA的一条双链在解链和退火之后延伸为两条双链,这是延伸阶段。
如此反复,在同一反应体系中可重复高温变性、低温退火和DNA合成这一循环,使产物DNA 重复合成,并在重复过程中,前一循环的产物DNA可作为后一循环的模板DNA而参与DNA的合成,使产物DNA 的量按指数方式扩增。
经过30~40个循环,DNA扩增即可完成。
2. DNA琼脂糖凝胶电泳实验DNA分子在高于其等电点的溶液中带负电,在电场中向阳极移动。
在一定的电场强度下,DNA分子的迁移速度取决于分子筛效应,即分子本身的大小和构型是主要的影响因素。
DNA分子的迁移速度与其相对分子量成反比。
不同构型的DNA分子的迁移速度不同。
该电泳方法以琼脂凝胶作为支持物,利用DNA分子在泳动时的电荷效应和分子筛效应,达到分离混合物的目的。
三、实验材料仪器:PCR扩增仪、薄壁管、离心管、移液枪、枪头、微波炉、电泳仪、水平电泳槽、制胶版、紫外透射仪。
试剂:TapDNA聚合酶、dNTP、buffer、两种引物、16S全长DNA样本、无菌ddH2O、模板DNA 、TBE、琼脂糖、EB、显色剂。
pcr基因扩增实验报告
pcr基因扩增实验报告PCR基因扩增实验报告引言:PCR(聚合酶链反应)是一种体外DNA复制技术,通过特定引物和DNA聚合酶酶活,可以在短时间内扩增特定DNA片段。
PCR技术广泛应用于基因工程、疾病诊断和法医学等领域。
实验目的:1.掌握PCR技术的基本原理和操作方法;2.通过PCR扩增特定基因片段,验证扩增效果;3.了解PCR技术在基因工程中的应用。
材料与方法:1.实验材料:PCR试剂盒、DNA模板、引物、PCR仪、电泳仪等。
2.实验步骤:(1)提取DNA模板;(2)配置PCR反应体系;(3)设置PCR反应条件;(4)进行PCR扩增;(5)检测扩增产物;(6)进行电泳分析。
结果与讨论:1.提取DNA模板:从样本中提取DNA模板是PCR扩增的前提,本实验采用常规的酚/氯仿法提取DNA模板,提取后的DNA浓度为X ng/μl,纯度良好,满足PCR 扩增的要求。
2.配置PCR反应体系:根据PCR试剂盒的说明书,按照一定比例配置PCR反应体系,包括DNA模板、引物、dNTPs、聚合酶等。
反应体系中的每个组分都有其特定的浓度和作用,合理配置反应体系可以提高PCR扩增效果。
3.设置PCR反应条件:PCR反应需要设置一系列温度和时间参数,包括变性、退火和延伸等步骤。
本实验设置的PCR反应条件为:预变性95℃,30s;变性95℃,5s;退火60℃,30s;延伸72℃,30s,共循环30次。
4.进行PCR扩增:将PCR反应体系加入PCR管,放入PCR仪中进行扩增反应。
根据设定的PCR反应条件,PCR仪会自动控制温度和时间,反复循环进行扩增。
本实验扩增后的PCR产物为明亮的条带,表明PCR扩增成功。
5.检测扩增产物:为了验证PCR扩增的准确性,我们对扩增产物进行测序分析。
结果显示,扩增产物与目标基因序列完全匹配,证明PCR扩增的准确性和可靠性。
6.进行电泳分析:将PCR产物与DNA分子量标记物共同进行电泳分析,根据PCR产物的大小和标记物的位置,可以确定PCR产物的大小。
pcr扩增的实验报告
pcr扩增的实验报告PCR扩增的实验报告引言:PCR(聚合酶链式反应)是一种在分子生物学中广泛应用的技术,它能够通过体外扩增DNA片段,从而使得微量的DNA样本得以大量复制。
PCR扩增技术的发展,极大地促进了基因组学、遗传学和生物医学研究的进展。
本文将介绍我们在实验室中进行的PCR扩增实验的方法、结果和讨论。
材料与方法:1. DNA模板:我们使用了来自人类基因组的DNA样本作为PCR扩增的模板。
2. 引物:设计了两对引物,分别用于扩增目标DNA片段的前端和后端。
3. dNTPs:使用了含有四种脱氧核苷酸的混合物。
4. 聚合酶:选择了高度稳定的热稳聚合酶。
5. 缓冲液:使用了含有镁离子的PCR缓冲液。
6. 模板DNA扩增仪:我们使用了PCR仪来控制反应的温度和时间。
7. 凝胶电泳仪:用于检测扩增产物的大小和纯度。
实验步骤:1. 首先,我们从DNA样本中提取所需的模板DNA。
2. 根据目标DNA片段的序列,设计引物,并合成引物。
3. 准备PCR反应体系:在无菌条件下,将DNA模板、引物、dNTPs、聚合酶和缓冲液按照一定比例混合。
4. 将PCR反应体系放入PCR仪中,设置好扩增程序的温度和时间。
5. 扩增结束后,取出PCR反应体系,进行凝胶电泳分析。
6. 在凝胶电泳仪上运行PCR产物和DNA分子量标准,观察扩增产物的大小和纯度。
结果与讨论:通过凝胶电泳分析,我们成功地观察到了目标DNA片段的扩增产物。
根据扩增产物的大小与DNA分子量标准的比较,我们可以确定PCR扩增反应的特异性和准确性。
此外,我们还观察到扩增产物的纯度较高,没有出现明显的非特异性扩增。
PCR扩增技术的优点在于其快速、高效和特异性。
通过合理设计引物,可以选择性地扩增目标DNA片段,而不受其他DNA的干扰。
此外,PCR扩增还可以在短时间内复制大量的DNA,从而满足后续实验的需要。
然而,PCR扩增也存在一些潜在的问题。
例如,扩增反应中可能出现引物的非特异性结合,导致非特异性扩增产物的出现。
DNA提取及PCR扩增实验报告
PCR扩增及DNA琼脂糖凝胶电泳刘琳1131428 环境科学一、实验目的1.学习并掌握PCR扩增的基本原理与实验技术。
2.对扩增后的DNA进行琼脂糖凝胶电泳试验,并分析相应结果。
二、实验原理1. PCR扩增多聚酶链反应(PCR)技术的原理类似于DNA的天然复制过程。
在微量离心管中加入适量缓物DNADNAO、模1.1 0.5 ul 1.2 9个薄1.3 将薄壁管放入PCR扩增仪中,按照预定程序进行PCR扩增。
其中循环过程需要达到30~40次。
程序如下:预变性:94℃3min循环:94℃变性30s55℃退火30s72℃延伸30s末次延伸:72℃5min1.4 PCR扩增完成后,将样品取出并保存于15℃环境中。
2. DNA琼脂糖凝胶电泳实验2.1称取0.2g琼脂糖粉末,放到一锥形瓶中,加入适量的0.5×TBE电泳缓冲液。
然后置微波炉加热至完全溶化,溶液透明。
摇匀,待冷却至60℃左右,在胶液内加入适量的EB。
2.2 取有机玻璃制胶板槽,在一端插好梳子,在槽内缓慢倒入已冷至60℃左右的胶液,使之形成均匀水平的胶面。
2.3 待胶凝固后,小心拔起梳子,使加样孔端置阴极段放进电泳槽内。
2.4 在槽内加入0.5×TBE电泳缓冲液,至液面覆盖过胶面。
取1μl缓冲液和5μl待测DNA样品混合后,用移液枪滴加至凝胶的加样孔中。
2.5 接通电泳仪和电泳槽,并接通电源,调节稳压输出,电压最高不超过5V/cm,开始电泳。
点样端放阴极端。
根据经验调节电压使分带清晰。
2.6 观察溴酚兰的带(蓝色)的移动。
当其移动至距胶板前沿约1cm处,可停止电泳。
2.7 在紫外透视仪的样品台上重新铺上一张保鲜膜,赶去气泡平铺,然后把凝胶放在上面。
关上样品室外门,打开紫外灯,通过观察孔进行观察。
9上面一在第2.最好在加完所有其它反应成分后才加模板DNA。
3.配琼脂糖时应使其完全溶化后方可制胶。
4.EB具有致癌作用,配制及使用时应带一次性手套。
检测转基因实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本实验旨在通过分子生物学技术检测转基因烟草植株中目标基因的整合和表达情况,验证转基因植株的遗传稳定性,为后续的转基因烟草的研究和应用提供科学依据。
二、实验材料1. 转基因烟草植株:含有目标基因的烟草再生植株。
2. 实验试剂:DNA提取试剂盒、PCR试剂盒、DNA分子量标准、限制性内切酶、连接酶、T载体、感受态细胞、质粒提取试剂盒等。
3. 实验仪器:PCR仪、凝胶成像系统、离心机、电泳仪、显微镜等。
三、实验方法1. DNA提取- 将转基因烟草植株的叶片剪成小块,使用DNA提取试剂盒提取总DNA。
2. PCR扩增- 设计特异性引物,针对目标基因进行PCR扩增。
- 将提取的DNA作为模板,进行PCR扩增。
3. 电泳检测- 将PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳,观察扩增条带。
4. 测序验证- 对扩增的特异性条带进行测序,验证其序列与目标基因的一致性。
5. Southern blot检测- 使用限制性内切酶酶切转基因烟草植株DNA和野生型烟草DNA。
- 将酶切产物进行琼脂糖凝胶电泳,转移至硝酸纤维素膜上。
- 使用放射性同位素标记的目标基因探针进行杂交。
- 显影后观察杂交信号。
6. Northern blot检测- 提取转基因烟草植株RNA,进行反转录PCR,扩增目标基因mRNA。
- 将扩增产物进行琼脂糖凝胶电泳,转移至硝酸纤维素膜上。
- 使用放射性同位素标记的目标基因探针进行杂交。
- 显影后观察杂交信号。
四、实验结果1. PCR扩增- 转基因烟草植株DNA的PCR产物在预期位置出现特异性条带,而野生型烟草DNA没有扩增产物。
2. 测序验证- 测序结果显示,扩增产物序列与目标基因序列一致。
3. Southern blot检测- 转基因烟草植株DNA的酶切产物与探针杂交后,在预期位置出现杂交信号,而野生型烟草DNA没有杂交信号。
4. Northern blot检测- 转基因烟草植株RNA的RT-PCR产物与探针杂交后,在预期位置出现杂交信号,而野生型烟草RNA没有杂交信号。
pcr扩增目的基因实验报告
pcr扩增目的基因实验报告PCR(聚合酶链反应)是一种重要的分子生物学技术,通过扩增目的基因,可以在短时间内获得大量的目的基因产物。
本文将介绍PCR扩增目的基因的实验过程和结果分析。
一、实验目的本实验的目的是通过PCR扩增目的基因,以便后续的分析和应用。
PCR技术的优势在于其高效、快速和特异性,可以在短时间内获得大量的目的基因产物。
二、实验材料与方法1. 材料:(1)PCR试剂盒:包括聚合酶、引物、dNTPs等。
(2)DNA模板:包括待扩增的目的基因DNA。
(3)PCR仪:用于控制反应温度。
2. 方法:(1)DNA提取:从待扩增的样品中提取目的基因DNA,可以采用常规的DNA 提取方法,如酚/氯仿提取法或商用DNA提取试剂盒。
(2)PCR反应体系的准备:按照PCR试剂盒说明书中的比例将试剂加入PCR 反应管中,同时加入目的基因DNA模板。
(3)PCR扩增:将PCR反应管放入PCR仪中,按照以下程序进行扩增:预热(95℃,5分钟);循环反应(95℃,30秒;退火温度,30秒;72℃,时间根据目的基因大小确定,一般为1分钟/千碱基);最终延伸(72℃,10分钟)。
(4)PCR产物分析:将PCR扩增产物进行电泳分析,可以采用琼脂糖凝胶电泳或聚丙烯酰胺凝胶电泳方法。
三、实验结果与分析通过PCR扩增目的基因后,我们进行了琼脂糖凝胶电泳分析。
结果显示,在目的基因区域出现了明显的特异性条带,证明PCR扩增成功。
此外,我们还观察到PCR扩增产物的大小与预期一致,表明PCR反应的特异性良好。
根据PCR扩增产物的大小,我们可以进一步判断目的基因的存在与否。
如果PCR扩增产物与预期大小一致,则说明目的基因存在于样品中;反之,如果未观察到特异性条带,则说明目的基因不存在或浓度过低。
此外,PCR扩增产物的强度也可以反映目的基因的相对丰度。
如果PCR扩增产物的强度较弱,则说明目的基因在样品中的浓度较低;反之,如果PCR扩增产物的强度较强,则说明目的基因在样品中的浓度较高。
DNA提取及PCR扩增实验报告
PCR扩删及DNA琼脂糖凝胶电泳之阳早格格创做刘琳1131428 环境科教一、真验脚段1.教习并掌握PCR扩删的基根源基本理与真验技能.2.对于扩删后的DNA举止琼脂糖凝胶电泳考查,并分解相映截止.二、真验本理1. PCR扩删多散酶链反应(PCR)技能的本理类似于DNA的天然复造历程.正在微量离心管中加进适量缓冲液,加进微量模板DNA、四种脱氧核苷酸(dNTP)、耐热Taq散合酶及二个合成DNA的引物,而后加热使模板DNA正在下温下(94℃)变性,单链解链,那是所谓变性阶段.落矮溶液温度,使合成引物正在矮温(55℃)与模板DNA互补退火产死部分单链,那是所谓退火阶段.溶液反应温度降至中温(72℃),正在Tap酶效率下,用四种dNTP为本料,引物为复造起面,模板DNA的一条单链正在解链战退火之后蔓延为二条单链,那是蔓延阶段.如许反复,正在共一反应体系中可重复下温变性、矮温退火战DNA合成那一循环,使产品DNA重复合成,并正在重复历程中,前一循环的产品DNA可动做后一循环的模板DNA而介进DNA的合成,使产品DNA的量按指数办法扩删.通过30~40个循环,DNA扩删即可完毕.2. DNA琼脂糖凝胶电泳真验DNA分子正在下于其等电面的溶液中戴背电,正在电场中背阳极移动.正在一定的电场强度下,DNA分子的迁移速度与决于分子筛效力,即分子自己的大小战构型是主要的效率果素.DNA分子的迁移速度与其相对于分子量成反比.分歧构型的DNA分子的迁移速度分歧.该电泳要领以琼脂凝胶动做支援物,利用DNA分子正在泳动时的电荷效力战分子筛效力,达到分散混同物的脚段.三、真验资料仪器:PCR扩删仪、0.2ul薄壁管、1.5ml离心管、移液枪、枪头、微波炉、电泳仪、火仄电泳槽、造胶版、紫中透射仪.试剂:TapDNA散合酶、dNTP、buffer、二种引物、16S 齐少DNA样本、无菌ddH2O、模板DNA、TBE、琼脂糖、EB、隐色剂.四、真验步调1. PCR扩删本次考查采用细菌16S rDNA V3区片段举止扩删.1.1根据估计,最先与1.5ml离心管依照2.5ul 10×2O的比率摆设脚量的PCR反应体系.1.2 分别背9个薄壁管中分别加进24 ul的反应体系,并分别增加8种分歧的模版,并于第9个薄壁管中加进无菌ddH2O 动做阳性对于照.1.3 将薄壁管搁进PCR扩删仪中,依照预约步调举止PCR 扩删.其中循环历程需要达到30~40次.步调如下:预变性: 94℃3min循环: 94℃变性30s55℃退火30s72℃蔓延30s终次蔓延:72℃ 5min1.4 PCR扩删完毕后,将样品与出并保存于15℃环境中.2. DNA琼脂糖凝胶电泳真验称与琼脂糖粉终,搁到一锥形瓶中,加进适量的0.5×TBE 电泳缓冲液.而后置微波炉加热至真足凝结,溶液透明.摇匀,待热却至60℃安排,正在胶液内加进适量的EB.2.2 与有机玻璃造胶板槽,正在一端插好梳子,正在槽内缓缓倒进已热至60℃安排的胶液,使之产死匀称火仄的胶里.2.3 待胶凝固后,留神拔起梳子,使加样孔端置阳极段搁进电泳槽内.正在槽内加进0.5×TBE电泳缓冲液,至液里覆盖过胶里.与1μl缓冲液战5μl待测DNA样品混同后,用移液枪滴加至凝胶的加样孔中.2.5 交通电泳仪战电泳槽,并交通电源,安排稳压输出,电压最下不超出5V/cm,启初电泳.面样端搁阳极度.根据体味安排电压使分戴浑晰.2.6 瞅察溴酚兰的戴(蓝色)的移动.当其移动至距胶板前沿约1cm处,可停止电泳.2.7 正在紫中透视仪的样品台上重新铺上一弛保陈膜,赶去气泡仄铺,而后把凝胶搁正在上头.闭上样品室中门,挨启紫中灯,通过瞅察孔举止瞅察.五、真验截止与计划如图所示:从左至左,分别是模版1-8号,第9列为阳性对于照.前8列均有明隐的条戴出现,而阳性对于照无隐现,证明扩删真足效验很好.图中有上下二条线,上头一条线所覆盖的条戴基础不妨代表扩删的爆收的片段位子,参照图不妨瞅出扩删片段正在200bp安排.正在第9个阳性对于照的第二条线处不妨瞅到较为朦胧的条戴,并不是是出现假阳性,而是由于二散物而爆收的条戴.通过该条戴与最左侧的marker对于比可知该片段出当前100bp安排,并不是由于真验支配等问题而爆收的传染.真验的照片隐现真验截止有拖尾局里,然而是本去不效率后绝真验.正在真验历程中由于有些试剂加到了管壁上头,并不真足加进,大概会出现一些缺面.其余正在第1列条戴中出现了其余的明戴,大概是由于正在前期的扩删真验中滴加试剂时由于量过少而举止的摇匀战混同等支配爆收了非特同性扩删,也有大概是果为胶板创造历程中梳子的位子分歧适大概者胶板创造时边沿处不敷匀称引导爆收传染.然而总体而止,真验截止较为谦意.六、真验注意事项1.由于PCR技能非常敏感,可使一个DNA分子得以扩删,拆有PCR试剂的离心管挨启之前,应先正在微量离心机上做瞬间离心使液体重积于管底.PCR扩删反应的条件,要统造好温度、时间战循环次数.2.最佳正在加完所有其余反应身分后才加模板DNA.3.配琼脂糖时应使本去足凝结后圆可造胶.4.EB具备致癌效率,配造及使用时应戴一次性脚套.并正在博门的真验室内使用.七、真查支获1.通过本次真验教习并掌握了PCR反应的基根源基本理、真验历程及技能.2.通过本次真验掌握了电泳真验分散DNA的本理战要领.八、思索题1、如果您的钻研中要扩删大肠杆菌某个酶的基果,您怎么样举止相闭真验?通过PCR扩删出念要的片段,而后通过凝胶电泳真验举止回支,并与符合的载体连交,转移进体验态细胞.通过培植提与量粒,举止酶切大概PCR考证,测序最后考证,保存菌种2.一对于引物序列为5‘-GACTCCAGTCGAATCTACCA-3’战5‘-AACCGTGGCGACACCGCTAA请估计它们的Tm值及采用符合的退火温度,如果按您算的退火温度干PCR时不得到相映的产品,您怎么办理?5‘-GACTCCAGTCGAATCTACCA-3’Tm值=4(G+C)+2(A+T)-(5~10℃)=4(3+7)+2(6+4)-(5~10℃)=60℃-(5~10℃)=50~55℃5‘-AACCGTGGCGACACCGCTAA’Tm值=4(G+C)+2(A+T) -(5~10℃)=4(5+7)+2(6+2) -(5~10℃)=64℃-(5~10℃)=54~59℃果此退火温度不妨采用正在55℃不妨通太过解几个逐步普及退火温度的反应以普及特同性.启初矮于估算的Tm5℃,以2℃为删量,逐步普及退火温度.较下的退火温度会缩小引物二散体战非特同性产品的产死.为赢得最佳截止,二个引物应具备近似的Tm值.引物对于的Tm好别如果超出5℃,便会令引物正在循环中使用较矮的退火温度而表示出明隐的过失起初.如果二个引物Tm 分歧,将退火温度设定为比最矮的Tm矮5℃大概者为了普及特同性,不妨正在根据较下Tm安排的退火温度先举止5个循环,而后正在根据较矮Tm安排的退火温度举止结余的循环.那使得正在较为宽紧的条件下不妨赢得脚段模板的部分拷贝.。
pcrdna实验报告
PCR-DNA实验报告简介PCR-DNA是一种常用的分子生物学实验技术,可以通过扩增DNA片段来研究DNA序列。
本实验报告将详细介绍PCR-DNA实验的步骤和思路。
实验目的本实验的目的是通过PCR方法扩增特定的DNA片段,从而验证样本中的目标基因是否存在。
通过PCR-DNA实验,可以快速、准确地扩增出目标基因片段,为后续的基因分析和研究提供基础。
材料与方法1.样本准备:收集待测样本,如细胞、组织或DNA提取物。
2.引物设计:根据目标基因序列设计引物,确保引物与目标基因片段特异性结合。
3.PCR反应体系准备:按照设计的引物和待测样本的要求,准备PCR反应液,包括引物、缓冲液、DNA模板、酶和dNTPs等。
4.PCR扩增:将PCR反应体系置于热循环仪中,按照设定的PCR程序进行扩增反应,包括一系列的变温步骤。
5.PCR产物分析:将扩增产物用琼脂糖凝胶电泳进行分析,观察扩增片段的大小和纯度。
6.结果解读:根据电泳图结果,判断目标基因是否存在,并计算扩增产物的浓度。
步骤与思路步骤1:样本准备首先,我们需要收集待测样本。
样本可以是细胞、组织或DNA提取物,具体根据实验需求选择适当的样本类型,并按照相应的方法提取DNA。
步骤2:引物设计在进行PCR-DNA实验之前,我们需要设计引物。
引物是一种能够特异性结合目标基因序列的寡核苷酸链。
通过引物的特异性结合,可以确保扩增出目标基因片段而不产生非特异性扩增。
引物设计可以借助一些在线工具,如NCBI网站提供的Primer-BLAST等。
在设计引物时,需要考虑引物的长度、碱基组成、熔解温度等参数。
步骤3:PCR反应体系准备准备PCR反应体系时,需要按照设计的引物和待测样本的要求,将各种反应试剂按比例混合。
一般的PCR反应体系包括引物、缓冲液、DNA模板、酶和dNTPs 等。
确保反应体系中的每一个组分都处于适当的浓度范围。
步骤4:PCR扩增PCR扩增是整个实验的核心步骤。
pcr基因扩增实验报告
pcr基因扩增实验报告PCR基因扩增实验报告第一章:引言PCR(聚合酶链反应)是一种在分子生物学研究中广泛应用的技术,它可以快速、高效地扩增DNA片段。
PCR的原理是利用DNA聚合酶在适宜的温度下,通过多次循环的变温步骤,将目标DNA片段扩增至足够数量。
本实验旨在通过PCR 技术扩增目标基因片段,以进一步研究其功能和结构。
第二章:材料与方法2.1 实验材料- DNA样本- 特异性引物- dNTPs- MgCl2- Taq DNA聚合酶- PCR反应缓冲液- 离心管- 热循环仪- 洗涤液- 紫外灯2.2 实验步骤1. 准备PCR反应体系:将PCR反应缓冲液、dNTPs、MgCl2、特异性引物、DNA样本和Taq DNA聚合酶按照所需浓度加入离心管中,并在冰上混合均匀。
2. 将混合好的反应体系放入热循环仪中,进行PCR扩增反应。
3. 设置热循环仪参数:预热至95°C,保持5分钟;循环反应条件:95°C,保持30秒;56°C,保持30秒;72°C,保持30秒,重复30个循环;最终延伸72°C,保持10分钟。
4. 扩增结束后,将反应体系离心,将上清液转移到新的离心管中。
5. 使用紫外灯照射PCR产物,观察扩增结果。
第三章:结果与分析经过PCR扩增反应后,我们观察到目标基因片段得到了显著的扩增。
通过紫外灯照射,我们可以清晰地看到目标片段的特征条带。
这表明PCR扩增反应成功地扩增了我们感兴趣的基因片段。
第四章:讨论与结论通过PCR技术,我们成功地扩增了目标基因片段,并得到了明确的结果。
这为后续的实验研究奠定了基础。
PCR技术的高效性和准确性使其成为现代分子生物学研究的重要工具之一。
在今后的实验中,我们将进一步探究这一目标基因片段的功能和结构,以深入了解其在生物体中的作用。
结尾:PCR基因扩增实验是一项重要的分子生物学技术,能够在短时间内扩增目标基因片段。
本实验通过PCR技术成功扩增了目标基因片段,并且得到了明确的结果。
pcr 实验报告
pcr 实验报告PCR 实验报告引言PCR (Polymerase Chain Reaction) 是一种广泛应用于生物学和医学领域的技术,它能够在短时间内扩增特定DNA片段,从而使得微量的DNA样本得以快速检测和分析。
本实验旨在通过PCR技术对目标基因进行扩增,并对扩增产物进行分析和鉴定。
材料与方法1. DNA 提取:从细胞或组织中提取目标DNA。
2. PCR 反应体系准备:根据实验需求,准备合适的PCR反应液,包括DNA模板、引物、酶、缓冲液和核苷酸等。
3. PCR 扩增:将PCR反应液置于PCR仪中,按照设定的温度和时间参数进行扩增。
4. PCR产物分析:通过凝胶电泳或其他方法对PCR扩增产物进行分析和鉴定。
结果与讨论1. DNA 提取:通过使用商用DNA提取试剂盒,成功地从细胞中提取到目标DNA。
提取后的DNA经过定量测定,确保其浓度和纯度符合实验要求。
2. PCR 反应体系准备:根据目标基因序列设计引物,并通过引物序列的特异性和互补性进行合成。
同时,准备PCR反应液中所需的酶、缓冲液和核苷酸等成分。
3. PCR 扩增:将DNA模板、引物和PCR反应液混合均匀后,置于PCR仪中进行扩增。
根据目标基因的长度和扩增条件的设定,PCR反应的温度和时间参数也有所调整。
4. PCR产物分析:将PCR扩增产物进行凝胶电泳分析,通过观察电泳图谱,可以判断扩增是否成功以及目标基因的大小和纯度。
实验结果显示,通过PCR技术成功地扩增到了目标基因。
电泳图谱显示出明显的目标带,且带的大小与预期一致,表明PCR扩增反应有效。
此外,电泳图谱上未出现其他杂带,说明扩增产物的纯度较高。
结论本实验通过PCR技术成功地扩增了目标基因,并对扩增产物进行了分析和鉴定。
PCR技术的应用使得在微量DNA样本中进行特定基因扩增成为可能,为生物学和医学研究提供了有力的工具。
同时,PCR技术还具有快速、灵敏和可重复性等优点,为基因检测、疾病诊断和遗传学研究等领域带来了巨大的便利。
分子生物学实验一二报告
分子生物学实验一二报告实验一:DNA提取引言:DNA提取是分子生物学实验中的基础实验,通过提取DNA我们可以进一步进行分子生物学上的一系列实验。
DNA提取的目的是从细胞中分离出DNA,常用于构建基因库、PCR扩增等实验。
材料与方法:1.取一定数量的细胞样本,如细菌、植物、动物组织等。
2.加入细胞裂解缓冲液,将细胞破裂释放DNA。
3.加入蛋白酶K以降解蛋白质。
4.加入酒精使DNA沉淀,并用无菌纯水洗涤DNA沉淀。
5. 用Tris-EDTA缓冲液溶解DNA。
6.用紫外可见光谱仪检测DNA浓度和纯度。
结果与讨论:通过以上步骤,我们成功地从细胞中提取出了DNA。
观察到DNA溶液呈现典型的黄绿色,说明DNA浓度较高。
利用紫外可见光谱仪检测DNA的浓度和纯度,结果显示DNA浓度为2μg/μL,纯度(A260/A280)为1.8,表明提取的DNA质量良好。
实验二:PCR扩增引言:PCR全称聚合酶链式反应,是一种快速、特异性并且高灵敏度的DNA扩增技术。
PCR可以扩增出目标DNA的大量复制品,常用于基因克隆、基因突变分析等实验。
材料与方法:1.准备PCR反应体系,包括目标DNA,引物,聚合酶、缓冲液及dNTPs。
2.将反应体系加入PCR仪中,设置好反应条件(温度、时间)。
3.进行PCR扩增反应。
4.用琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物。
结果与讨论:通过PCR扩增反应,我们成功得到了目标DNA的扩增产物。
在琼脂糖凝胶电泳中观察到明显的目标DNA条带,且相对应的分子量与预期一致。
这表明PCR扩增反应成功地复制出了目标DNA,并得到纯净的PCR产物。
结论:通过DNA提取实验,我们成功地从细胞中提取出了DNA,并通过PCR扩增技术得到了目标DNA的扩增产物。
这些结果验证了我们实验的有效性,并为后续的分子生物学研究奠定了基础。
附注:以上报告仅为示例,实际报告应根据具体实验结果和实验目的进行撰写。
pcr技术扩增实验报告
pcr技术扩增实验报告实验目的:本次实验旨在通过PCR技术扩增特定DNA片段,以验证PCR技术在分子生物学研究中的应用,并加深对PCR原理的理解。
实验原理:PCR(聚合酶链式反应)是一种分子生物学技术,用于快速复制特定的DNA序列。
该技术利用DNA聚合酶在体外进行DNA复制,通过反复的变性、退火和延伸三个步骤,实现目标DNA片段的指数级扩增。
实验材料:1. DNA模板2. 引物3. 2×PCR反应缓冲液4. 2.5 mM dNTPs混合液5. Taq DNA聚合酶6. 无核酸酶水7. PCR仪8. 电泳设备及试剂实验步骤:1. 配制PCR反应体系:按照所需体积加入2×PCR反应缓冲液、dNTPs混合液、引物、Taq DNA聚合酶和DNA模板,最后用无核酸酶水补足至总体积。
2. 将配制好的反应体系放入PCR仪中,设置PCR程序:包括预变性(95°C,3分钟)、变性(95°C,30秒)、退火(根据引物的Tm值,30秒)、延伸(72°C,30秒),共进行30个循环,最后进行终延伸(72°C,5分钟)。
3. PCR扩增结束后,取出PCR产物,用1.5%琼脂糖凝胶电泳检测扩增效果。
实验结果:通过电泳分析,观察到PCR产物在预期大小的DNA片段处出现明亮的条带,表明PCR扩增成功。
条带清晰,无非特异性扩增,说明引物特异性好,PCR反应条件适宜。
实验讨论:1. PCR扩增过程中,引物的设计至关重要,需要保证引物的特异性和Tm值的一致性。
2. 反应体系中各组分的浓度对PCR扩增效率有显著影响,需要根据实验条件进行优化。
3. PCR过程中的温度控制对扩增效果至关重要,需要严格按照设定程序进行。
实验结论:本次PCR技术扩增实验成功扩增了目标DNA片段,验证了PCR技术在分子生物学研究中的有效性和实用性。
通过优化实验条件,可以进一步提高PCR扩增的特异性和效率。
生物验证dna实验报告
生物验证dna实验报告引言DNA(脱氧核糖核酸)是存在于细胞核和线粒体中的生物大分子,负责携带、传递和遗传生物的遗传信息。
验证DNA的可靠性和完整性是许多生物研究的基础之一。
本实验旨在使用PCR(聚合酶链反应)技术验证DNA的存在,并通过电泳技术观察DNA片段的迁移和大小。
材料与方法材料1. 大豆叶片样本2. 无菌蒸馏水3. DNA提取试剂盒4. DNA扩增试剂盒5. PCR扩增仪6. 等电聚丙烯酰胺凝胶7. DNA分离和染色试剂盒8. UV透射仪方法1. DNA提取:将大豆叶片样本粉碎,加入提取试剂,经过一系列步骤将DNA 从样本中提取出来。
2. PCR扩增:根据实验需要选择合适的引物,在PCR扩增仪中将DNA进行多轮扩增,以增加其数量。
3. 凝胶电泳:将PCR扩增产物与DNA标记物混合,加载至凝胶孔中。
通电后,DNA片段根据大小迁移,形成具有不同迁移距离的条带。
4. 染色与可视化:采用DNA染色剂染色并使用UV透射仪观察和记录DNA的迁移和大小。
结果与讨论实验中成功从大豆叶片样本中提取出DNA,并通过PCR扩增使其增加到足够的数量。
凝胶电泳结果显示,样本中存在多个不同大小的DNA片段。
通过和DNA 标记物对照,我们确定了扩增片段的大小,并发现它们与预期大小相一致。
这些结果证明了DNA提取和PCR扩增的有效性,进一步确认了提取出的DNA 的可靠性。
凝胶电泳结果也说明了该实验方法的可行性和精确性。
生物验证DNA的实验,不仅可以用于在科研中证明特定物种的存在和遗传特征,还可以在法医学和生物学课程中用于鉴定个体、研究群体遗传结构等。
然而,作为一种实验手段,凝胶电泳也有其局限性。
一些较小的DNA片段可能会在凝胶中移动得过慢或移动不远,使其观察困难。
此外,凝胶电泳也不能提供关于DNA序列的信息,只能通过片段大小的差异对不同DNA进行区分。
结论通过本实验,我们成功提取出大豆叶片样本中的DNA,并通过PCR扩增将其增加到足够的数量。
pcr扩增dna实验报告
pcr扩增dna实验报告PCR扩增DNA实验报告引言:PCR(聚合酶链式反应)是一种重要的分子生物学技术,它能够在体外迅速扩增DNA片段。
PCR技术的广泛应用使得科学家们能够更深入地研究DNA的结构和功能,为医学诊断、基因工程和进化研究等领域带来了巨大的进展。
本实验旨在通过PCR扩增DNA的过程,进一步了解PCR技术的原理和应用。
实验材料与方法:材料:- DNA模板:本实验选取了一段来自人类基因组的DNA片段作为模板。
- 引物:设计了一对引物,分别位于目标DNA片段的两端。
- dNTPs:脱氧核苷酸三磷酸盐,提供扩增过程中所需的碱基单元。
- DNA聚合酶:用于合成新的DNA链。
- 缓冲液:提供适宜的pH和离子浓度,维持反应的稳定性。
- MgCl2:镁离子,作为DNA聚合酶的辅助因子。
- 模板DNA稀释液:用于稀释DNA模板,以获得适宜的反应浓度。
- 超纯水:用于制备反应体系。
方法:1. 准备反应体系:根据所需扩增片段的长度和反应体系的总体积,计算所需的试剂量,并将其加入反应管中。
2. 加入DNA模板:取适量的DNA模板加入反应管中。
3. 加入引物:将设计好的引物加入反应管中。
4. 加入dNTPs:加入适量的dNTPs。
5. 加入DNA聚合酶:将DNA聚合酶加入反应管中。
6. 加入MgCl2:加入适量的MgCl2。
7. 加入模板DNA稀释液:加入适量的模板DNA稀释液。
8. 加入超纯水:加入适量的超纯水,使反应体系的总体积达到所需的体积。
9. 进行PCR扩增:将反应管放入PCR仪中,按照所需的扩增程序进行扩增反应。
10. 分析PCR产物:将PCR产物进行凝胶电泳分析,观察扩增效果。
实验结果与讨论:经过PCR扩增,我们成功地获得了目标DNA片段的扩增产物。
通过凝胶电泳分析,我们观察到了明显的DNA条带,其大小与预期的目标片段相符。
这表明PCR反应成功地扩增了我们所需要的DNA片段。
PCR技术的成功应用离不开准确的引物设计和合适的反应条件。
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PCR扩增及DNA琼脂糖凝胶电泳
刘琳1131428 环境科学
一、实验目的
1 •学习并掌握PCR扩增的基本原理与实验技术。
2 •对扩增后的DNA进行琼脂糖凝胶电泳试验,并分析相应结果。
二、实验原理
1. PCR 扩增
多聚酶链反应(PCR技术的原理类似于DNA的天然复制过程。
在微量离心管中加入适量缓冲液,加入微量模板DNA四种脱氧核苷酸(dNTP)、耐热Taq聚合酶及两个合成DNA
的引物,而后加热使模板DNA在高温下(94C )变性,双链解链,这是所谓变性阶段。
降低溶液温度,使合成引物在低温(55C )与模板DNA互补退火形成部分双链,这是所谓退火阶段。
溶液反应温度升至中温(72C),在Tap酶作用下,用四种dNTP为原料,弓I物为复制起点,模板DNA 勺一条双链在解链和退火之后延伸为两条双链,这是延伸阶段。
如此反复,在
同一反应体系中可重复高温变性、低温退火和DNA合成这一循环,使产物DNA重复合成,并
在重复过程中,前一循环的产物DNA可作为后一循环的模板DNA而参与DNA的合成,使产物DNA的量按指数方式扩增。
经过30〜40个循环,DNA扩增即可完成。
2. DNA琼脂糖凝胶电泳实验
DNA分子在高于其等电点的溶液中带负电,在电场中向阳极移动。
在一定的电场强度下,
DNA分子的迁移速度取决于分子筛效应,即分子本身的大小和构型是主要的影响因素。
DNA 分子的迁移速度与其相对分子量成反比。
不同构型的DNA分子的迁移速度不同。
该电泳方法
以琼脂凝胶作为支持物,利用DNA分子在泳动时的电荷效应和分子筛效应,达到分离混合物
的目的。
三、实验材料
仪器:PCR扩增仪、0.2ul薄壁管、1.5ml离心管、移液枪、枪头、微波炉、电泳仪、水平电泳槽、制胶版、紫外透射仪。
试剂:TapDNA聚合酶、dNTR buffer、两种引物、16S全长DNA羊本、无菌ddHO 模板DNA、TBE琼脂糖、EB显色剂。
四、实验步骤
1. PCR 扩增
本次试验选择细菌16S rDNA V3 区片段进行扩增。
1.1 根据计算,首先取1.5ml 离心管按照
2.5ul 10 x Buffer 、1 ul dNTR 0.5 ul 341GC、
0.5 ul 534 、0.125 ul Taq 、19.375u ddH 2O的比例配置足量的PCR反应体系。
1.2 分别向9个薄壁管中分别加入24 ul 的反应体系,并分别添加8种不同的模版,并于第9个薄壁管中加入无菌ddfO作为阴性对照。
1.3将薄壁管放入PCR扩增仪中,按照预定程序进行PCR扩增。
其中循环过程需要达到30~40 次。
程序如下:
预变性:94 C 3min
循环:94 C 变性30s
55 C 退火30s
72 C 延伸30s
末次延伸:72 C 5min
1.4 PCR扩增完成后,将样品取出并保存于15C环境中。
2. DNA琼脂糖凝胶电泳实验
2.1称取0.2g琼脂糖粉末,放到一锥形瓶中,加入适量的0.5 XTBE电泳缓冲液。
然后置微
波炉加热至完全溶化,溶液透明。
摇匀,待冷却至60C左右,在胶液内加入适量的EB
2.2取有机玻璃制胶板槽,在一端插好梳子,在槽内缓慢倒入已冷至60 C左右的胶液,使
之形成均匀水平的胶面。
2.3待胶凝固后,小心拔起梳子,使加样孔端置阴极段放进电泳槽内。
2.4在槽内加入0.5 X TBE电泳缓冲液,至液面覆盖过胶面。
取 1 d缓冲液和5 d待测DNA
样品混合后,用移液枪滴加至凝胶的加样孔中。
2.5接通电泳仪和电泳槽,并接通电源,调节稳压输出,电压最高不超过5V/cm,开始电泳。
点样端放阴极端。
根据经验调节电压使分带清晰。
2.6观察溴酚兰的带(蓝色)的移动。
当其移动至距胶板前沿约1cm处,可停止电泳。
2.7在紫外透视仪的样品台上重新铺上一张保鲜膜,赶去气泡平铺,然后把凝胶放在上面。
关上样品室外门,打开紫外灯,通过观察孔进行观察。
五、实验结果与讨论
如图所示:从左至右,分别是模版1-8
号,第9列为阴性对照。
前8列均有明显的条带出现,而阴性对照
无显示,说明扩增整体效果很好。
图中有上下
两条线,上面一条线所覆盖的条带基本可以代
表扩增的产生的片段位置,参照图可以看出扩
增片段在200bp左右。
在第9个阴性对照的第
二条线处可以看到较为模糊的条带,并非是出
现假阴性,而是由于二聚物而产生的条带。
通
过该条带与最右侧的marker对比可知该片段出
现在100bp左右,并非由于实验操作等问题而
产生的污染。
实验的照片显示实验结果有拖尾现象,但
是并不影响后续实验。
在实验过程中由于有些
试剂加到了管壁上面,并没有完全加入,可能
会出现一些误
差。
另外在第1列条带中出现了其他的亮带,可能是由于在前期于量过少而进行的摇匀和融合等操作产生了非特异性扩增,也有可能是因为胶板制作过程中
梳子的位置不合适或者胶板制作时边缘处不够均匀导致产生污染。
但总体而言,实验结果较
为满意。
六、实验注意事项
1. 由于PCR技术非常敏感,可使一个DNA分子得以扩增,装有PCR式剂的离心管打开之
前,应先在微量离心机上作瞬间离心使液体沉积于管底。
PCR T增反应的条件,要控制好温
度、时间和循环次数。
2. 最好在加完所有其它反应成分后才加模板DNA
3. 配琼脂糖时应使其完全溶化后方可制胶。
4. EB具有致癌作用,配制及使用时应带一次性手套。
并在专门的实验室内使用。
七、实验收获
1. 通过本次实验学习并掌握了PCF反应的基本原理、实验过程及技术。
2. 通过本次实验掌握了电泳实验分离DNA的原理和方法。
八、思考题
1 、如果你的研究中要扩增大肠杆菌某个酶的基因,你如何进行相关实验?
通过PCR T增出想要的片段,然后通过凝胶电泳实验进行回收,并与合适的载体连接,转化进感受态细胞。
经过培养提取质粒,进行酶切或PCR验证,测序最终验证,保存菌种
2. 一对引物序列为5 -GACTCCAGTCGAATCTACC和-35 -AACCGTGGCGACACCGCT计算它们的Tm值及选择合适的退火温度,如果按你算的退火温度做PCR寸没有得到相应的产物,你怎
么解决?
5‘-GACTCCAGTCGAATCTACC'A-3
Tm值=4( G+C +2(A+T)-(5 〜10C ) =4 ( 3+7) +2 ( 6+4) -(5 〜10C )
=60 C -(5 〜10C ) =50~55 C
5‘-AACCGTGGCGACACCG'CTAA
Tm值=4 ( G+C +2(A+T) -(5 〜10C )
=4(5+7)+2(6+2) -(5 〜10C )
=64 C -(5 〜10 C )=54~59 C
因此退火温度可以选择在55 C
可以通过分析几个逐步提高退火温度的反应以提高特异性。
开始低于估算的Tm5C ,以
2C 为增量,逐步提高退火温度。
较高的退火温度会减少引物二聚体和非特异性产物的形成。
为获得最佳结果,两个引物应具有近似的Tm值。
引物对的Tm差异如果超过5C ,就会令引
物在循环中使用较低的退火温度而表现出明显的错误起始。
如果两个引物Tm不同,将退火
温度设定为比最低的Tm低5C或者为了提高特异性,可以在根据较高Tm设计的退火温度
先进行5个循环,然后在根据较低Tm设计的退火温度进行剩余的循环。
这使得在较为严紧
的条件下可以获得目的模板的部分拷贝。