蛋白质印迹法westernblot

蛋白质印迹法

蛋白质印迹法(免疫印迹试验)即Western Blot。它是分子生物学、生物化学和免疫遗传学中常用的一种实验方法。

其基本原理是通过特异性抗体对凝胶电泳处理过的细胞或生物组织样品进行着色。通过分析着色的位置和着色深度获得特定蛋白质在所分析的细胞或组织中表达情况的信息。

蛋白免疫印迹(Western Blot )是将电泳分离后的细胞或组织总蛋白质从凝胶转移到固相支持物NC膜或PVDF膜上，然后用特异性抗体检测某特定抗原的一种蛋白质检测技术，现已广泛应用于基因在蛋白水平的表达研究、抗体活性检测和疾病早期诊断等多个方面。

中文名蛋白质印迹法外文名Western Blot

蛋白免疫印迹Western Blot

类似方法1 Southern Blot 杂交方法

类似方法2 Northern Blot 杂交方法

使用材料聚丙烯酰氨凝胶电泳⑴

原理

与Southern Blot 或Northern Blot 杂交方法类似，但Western Blot法采用的是聚丙烯酰胺凝胶电泳，被检测物是蛋白质，“探针”是抗体,“显色”用标记的二抗。经过PAG（聚丙烯酰胺凝胶电泳）分离的蛋白质样品，转移到固相载体（例如硝酸纤维素薄膜）上，固相载体以非共价键形式吸附蛋白质，且能保持电泳分离的多肽类型及其生物学活性不变。以固相载体上的蛋白质或多肽作为抗原，与对应的抗体起免疫反应，再与酶或同位素标记的第二抗体起反应，经过底物显色或放射自显影以检测电泳分离的特异性目的基因表达的蛋白成分。该技术也广泛应用于检测蛋白水平的表达。⑴

分类

Western Blot 显色的方法主要有以下几种:

i. 放射自显影

ii. 底物化学发光ECL

iii. 底物荧光ECF

iv. 底物DAB呈色

现常用的有底物化学发光ECL和底物DAB呈色，体同水平和实验条件的是用第一种方法，发表文章通常是用底物化学发光

ECL。只要买现成的试剂盒就行，操作也比较简单，原理如下(二抗用HRP标记)：反应底物为过氧化物+鲁米诺，如遇到HRR 即发光，可使胶片曝光，就可洗出条带。[2]

操作步骤

试剂准备

1、SDS-PAG试剂：见电泳实验。

2、匀浆缓冲液：1.0M Tris-HCI(pH 6.8)1.0ml ；10%SD$.0ml ; B -巯基乙醇0.2ml ; ddfO 2.8ml。

3、转膜缓冲液：甘氨酸2.9g ; Tris 5.8g ; SDS 0.37g ;甲醇200ml ;加ddHO定容至1000ml。

4、0.01M PBS(pH7.4) : NaCl 8.0g ; KCl 0.2g ; N&HPO41.44g ; KHPO4 0.24g ;力口ddfO至1000ml。

5、膜染色液：考马斯亮兰0.2g ;甲醇80ml;乙酸2ml; ddH z O118 ml。包被液(5%兑脂奶粉，现配)：脱脂奶粉1.0g溶于20ml 的

0.01M PBS 中。

6、显色液：DAB6.0mg; 0.01M PBS10.0ml ;硫酸镍胺0.1ml ; "02 1.0 卩l。

样品制备

1、单层贴壁细胞总蛋白的提取：

(1)倒掉培养液，并将瓶倒扣在吸水纸上使吸水纸吸干培养液 (或将瓶直立放置一会儿使残余培养液流到瓶底然后再用移液

器将其吸走)。

(2)每瓶细胞加3ml 4C预冷的PBS( 0.01M pH7.2〜7.3 )。平放轻轻摇动1min洗涤细胞，然后弃去洗液。重复以上操作两次，共洗细胞三次以洗去培养液。将PBS弃净后把培养瓶置于冰上。

（3）按1ml裂解液加10卩I PMSF（ 100mM,摇匀置于冰上。（PMSF要摇匀至无结晶时才可与裂解液混合。）

4）每瓶细胞加400卩1含PMSF的裂解液，于冰上裂解30min , 为使细胞充分裂解培养瓶要经常来回摇动。

（5）裂解完后，用干净的刮棒将细胞刮于培养瓶的一侧（动作要快）,然后用枪将细胞碎片和裂解液移至1.5ml离心管中（整个操作尽量在冰上进行）。

6）于4C下12000rpm离心5min （提前开离心机预冷）。

7）将离心后的上清分装转移到0.5ml的离心管中放于一20C 保存。

2、组织中总蛋白的提取：

（1）将少量组织块置于1〜2ml匀浆器中球状部位，用干净的剪刀将组织块尽量剪碎。

（2）加400 Z 单去污剂裂解液裂（含PMSF于匀浆器中，进行匀浆。然后置于冰上。

（3）几分钟后再碾一会儿再置于冰上，要重复碾几次使组织尽量碾碎。

4）裂解30 min后，即可用移液器将裂解液移至1.5ml离心管中，然后在4C下12000rpm离心5min ,取上清分装于0.5ml 离心管中并置于—20C保存。

3、加药物处理的贴壁细胞总蛋白的提取：

由于受药物的影响，一些细胞脱落下来，所以除按（一）操作外还应收集培养液中的细胞。以下是培养液中细胞总蛋白的提取：1）将培养液倒至15ml离心管中，于2500rpm离心5min。

2）弃上清，加入4ml PBS并用枪轻轻吹打洗涤，然后2500rpm 离心5min。弃上清后用PBS重复洗涤一次。

（3）用枪洗干上清后，加100 yL裂解液（含PMSF冰上裂解

30min，裂解过程中要经常弹一弹以使细胞充分裂解。

(4)将裂解液与培养瓶中裂解液混在一起4C、12000rpm离心5min，取上清分装于0.5ml离心管中并置于—20C保存。

含量测定

1、制作标准曲线

(1 )从—20C取出1mg/ml BSA，室温融化后，备用。

(2)取18个1.5ml离心管，3个一组，分别标记为0卩g,

2.5 卩 g, 5.0 卩 g, 10.0 卩 g, 20.0 卩 g, 40.0 卩 g。 (3 )按下表

Photometer , Eppentoff ) 上比色分析。

2、检测样品蛋白含量

(1)取足量的1.5ml离心管，每管加入4C储存的考马斯亮蓝溶液

1ml。室温放置30min后即可用于测蛋白。

(2 )取一管考马斯亮蓝加0.15mol/L NaCI溶液100ml，混匀

放置2分钟可做为空白样品，将空白倒入比色杯中在做好标准曲线的程序下按blank测空白样品。

(3 )弃空白样品，用无水乙醇清洗比色杯2次(每次0.5mL), 再用无菌水洗一次。

(4) 取一管考马斯亮蓝加95ml 0.15mol/L NaCl NaCl溶液和5ml待测蛋白样品，混匀后静置2min，倒入扣干的比色杯中按