中和抗体测定

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hpv疫苗的中和抗体评价方法金标准

hpv疫苗的中和抗体评价方法金标准

hpv疫苗的中和抗体评价方法金标准
中和抗体评价方法是一种用于评估疫苗的免疫效果的重要指标。

通常的金标准评价方法为细胞中和试验。

具体而言,金标准评价方法的步骤如下:
1. 收集疫苗接种者的血清样本。

2. 准备不同的表达目标抗原的细胞系,例如HPV表达的细胞。

3. 将血清样本与特定表达目标抗原的细胞系共孵育,使其产生抗原-抗体反应。

4. 观察和测定细胞系的存活率或病毒拮抗效果。

5. 使用傅立叶变换红外光谱仪等设备进行测试。

基于中和抗体的评价方法,研究人员可以评估疫苗对病毒的防护效果。

这种评价方法允许测量病毒进入细胞和复制的能力,从而确定疫苗是否能够有效抵抗病毒感染。

通过这种方法,可以得出关于疫苗免疫效果的有关数据和结论。

中和抗体的检测方法和原理

中和抗体的检测方法和原理

中和抗体的检测方法和原理
中和抗体是一种针对病毒、细菌等微生物的特殊抗体,能够与它们结合并中和它们的毒力。

这种抗体的检测方法包括:
1. 病毒中和试验:将病毒与中和抗体混合,观察病毒是否被中和。

可通过该方法检测病毒感染后体内产生的中和抗体水平。

2. 细菌中和试验:将细菌与中和抗体混合,观察细菌是否被中和。

可通过该方法检测细菌感染后体内产生的中和抗体水平。

3. 免疫荧光染色法:利用荧光标记的中和抗体与病原体结合,观察荧光信号来检测中和抗体的水平。

4. 酶联免疫吸附法:利用酶标记的中和抗体与病原体结合,在加入底物后观察酶反应产生的颜色来检测中和抗体的水平。

中和抗体的原理是,它能够结合病原体的毒素或病原体本身,从而阻止它们进一步侵袭机体。

因此,检测中和抗体水平可以评估机体对某种病原体的抵抗能力,对诊断疾病、预防疾病等具有重要作用。

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血清-病毒中和试验的标准操作规程

血清-病毒中和试验的标准操作规程

血清-病毒中和试验的标准操作规程(编号:034)
1、目的及使用范围
该SOP以PRRSV为例,测定血清中的病毒中和抗体滴度。

2、主要仪器及试剂
CO2细胞培养箱、普通光学显微镜、超净工作台(生物安全级别)、电动吸引器、移液器、水浴锅、DMEM培养基、胎牛血清、96孔细胞培养板
3、相关器皿的预处理
玻璃制品要高压灭菌
4、操作步骤
4.1按常规细胞培养方法培养Marc-145细胞
4.2胰酶消化Marc-145细胞,均分与96孔板中,100μL/孔,并保证细胞数为(2~8)×105/孔;CO2细胞培养箱培养16~24h;
4.3抗血清56℃水浴锅灭活30min,与含100 TCID50 PRRSV的DMEM(2%FBS)2倍倍比稀释,混匀后,37℃孵育1h;
4.4弃除96孔板中细胞培养基,加入血清-病毒混合物100μL/孔,置于CO2细胞培养箱中,吸附1h;
4.5弃除上清,用无菌PBS洗2次,吸干各孔中的残留液后,加入含2%FBS的DMEM,置于CO2细胞培养箱培养3~5d;
4.6第4天,于光学显微镜下观察细胞病变CPE,记录病变孔数目;
4.7计算中和抗体滴度,按照运用Reed-Muench法计算。

5、问题向导
5.1细胞病变不明显
根据细胞状态或病毒种类的不同,细胞病变时间会相应发生改变,一般而言,第3天就会出现CPE,第4天就可以计算其中和抗体滴度。

5.2 Reed-Muench法计算中和抗体滴度范例,见表1。

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中和抗体的检测方法和原理

中和抗体的检测方法和原理

中和抗体的检测方法和原理
中和抗体是指可以结合病原体并防止其进入宿主细胞或抑制其复
制的抗体。

中和抗体检测主要通过体外细胞培养或动物实验的方式进行。

1. 细胞培养法检测中和抗体
细胞培养法检测中和抗体主要包括细胞防御性中和试验、对中和
抗体的小胶片半微量滴度试验和复合病原体细胞培养中和试验。

其中,细胞防御性中和试验是最常用的方法。

该方法使用细胞系于体外培养,将病原体与中和抗体一起加入培养基内,观察病原体在细胞内是否被
清除,从而判断中和抗体的效力。

2. 动物实验法检测中和抗体
动物实验法检测中和抗体是通过注射病原体,将中和抗体加入动
物体内,观察病原体在动物体内的复制能力,从而判断中和抗体的效力。

常用的动物实验包括小鼠腹腔注射法、兔子狂犬病中和抗体测定
法等。

以上方法主要依靠病原体的复制和细胞的防御能力进行判断,从
而确定中和抗体的效力。

该方法有很高的可靠性和准确性,可广泛应
用于病毒、细菌和其他病原体等的检测中。

中和抗体检测应用于新型冠状病毒mRNA_疫苗效力分析

中和抗体检测应用于新型冠状病毒mRNA_疫苗效力分析

国家药监局重点实验室专栏[重点实验室简介]国家药品监督管理局生物制品质量研究与评价重点实验室是国家药监局2019年首批认定的重点实验室ꎬ依托单位为中国食品药品检定研究院生物制品检定所ꎮ生物制品检定所主要开展应用基础研究ꎬ方向包括:治疗类生物技术产品㊁预防类菌苗/疫苗及其创新性产品和一些重要的体内外诊断试剂(血液筛查)的质量控制和质量评价研究ꎻ建立符合国际规范的质量检定用标准物质㊁生产与检定用菌种库和细胞库等ꎮ通过提供疫苗及生物技术产品等国家标准物质㊁建立标准的检验技术㊁研究与制定完善的药品质量标准ꎬ生物制品检定所在我国药品质量控制㊁创新性药品研究与产业化发展中起到不可或缺的技术支撑作用ꎮ生物制品质量研究与评价重点实验室具备完善的生物制品检验检测体系ꎬ检测技术范围与检测能力在国内相同领域是唯一的也是最全面的ꎬ共获得的CNAS实验室资质认定的项目222项ꎮ2013年生物制品检定所被评估认定成为WHO生物制品标准化和评价合作中心ꎬ2017年通过WHO生物制品标准化和评价合作中心再认定ꎮ通过广泛的国际药交流(WHO㊁英国NIBSC㊁美国药学会㊁美国FDA和人用药物注册技术要求国际协调会议ICH等)ꎬ重点实验室不仅引进国外先进的药品质量监管理念和技术ꎬ还将我国的一些优势技术运用于国际标准品和国际药品质量标准的建立中ꎬ在相关领域的国际标准制定中发挥重要作用ꎮ实验室主任:徐苗ꎬ女ꎬ医学博士ꎬ研究员ꎬ博士生导师ꎬ中国食品药品检定研究院生物制品检定所所长ꎮ主要从事疫苗等生物制品质量控制与评价的研究和管理工作ꎮ先后主持国家级课题4项ꎬ参与省部级以上课题6项ꎬ以第一或通信作者在«Naturalprotocols»«EmergingMicrobes&Infections»等杂志上发表论文80余篇ꎬ编写专著5部ꎬ获授权专利6项ꎬ其中3项已经完成转化ꎬ先后获得中华预防医学会科学技术一等奖㊁中国防痨协会科学技术奖一等奖㊁中国药学会科学技术奖二等奖㊁北京市科学技术二等奖等多个奖项ꎮ获国家市场监管总局抗击新冠疫情先进个人㊁中国药学会以岭生物青年生物奖等ꎮ㊀基金项目:国家重点研发计划(No.2021YFC2302404)作者简介:吴小红ꎬ女ꎬ硕士ꎬ副研究员ꎬ研究方向:新型冠状病毒mRNA疫苗及狂犬病疫苗质量控制ꎬE-mail:wuxiaohong@nifdc.org.cn通信作者:刘欣玉ꎬ男ꎬ博士ꎬ研究员ꎬ研究方向:疫苗质量控制ꎬTel:010-53851780ꎬE-mail:liuxinyu@nifdc.org.cn中和抗体检测应用于新型冠状病毒mRNA疫苗效力分析吴小红ꎬ赵丹华ꎬ所玥ꎬ彭沁华ꎬ王红玉ꎬ刘欣玉ꎬ李玉华(中国食品药品检定研究院虫媒病毒疫苗室ꎬ国家药品监督管理局生物制品质量研究与评价重点实验室ꎬ北京102629)摘要:目的㊀通过对新型冠状病毒(2019novelcoronavirusꎬ2019-nCoV)mRNA疫苗(新冠mRNA疫苗)免疫小鼠后产生的中和抗体进行检测ꎬ探索中和抗体检测法应用于mRNA疫苗体内效力评价的可行性ꎮ方法㊀采用6~8周BALB/c小鼠进行后肢肌肉免疫ꎬ检测不同免疫剂量和不同免疫程序的中和抗体滴度ꎮ并对8家企业生产的新冠mRNA疫苗免疫的小鼠血清进行中和抗体和IgG抗体检测ꎮ结果㊀2㊁5㊁10μg不同剂量mRNA疫苗按照不同免疫程序免疫小鼠后中和抗体检测结果显示ꎬ抗体阳转率均为100%ꎬ中和抗体反应有明显的剂量-效应关系ꎮ2针间隔14d加强免疫组抗体滴度显著高于间隔7d加强免疫组及1针组(F=57.13ꎬP<0.001)ꎮ2μg剂量间隔7d加强免疫和间隔14d加强免疫产生的中和抗体几何平均滴度(geometricmeantiterꎬGMT)分别为218和468ꎬ差异有统计学意义(t=3.40ꎬP=0.003)ꎻ5μg剂量间隔7d加强免疫和间隔14d加强免疫产生的中和抗体GMT分别为499和1436ꎬ差异有统计学意义(t=3.62ꎬP=0.002)ꎻ10μg剂量间隔7d加强免疫和间隔14d加强免疫产生的中和抗体GMT分别为608和1909ꎬ差异有统计学意义(t=3.23ꎬP=0.005)ꎮ国内8家企业生产的新冠mRNA疫苗免疫小鼠后均可产生高滴度的IgG抗体(104.5~107.5)和中和抗体(102.6~104.8)ꎬ效力测定结果均符合企业质量标准ꎮ各企业生产的mRNA疫苗的中和抗体滴度结果差异有统计学意义(F=70.03ꎬP<0.001)ꎮ结论㊀小鼠免疫后中和抗体检测可用于mRNA疫苗的体内效力评价ꎮ关键词:新型冠状病毒ꎻmRNA疫苗ꎻ中和抗体ꎻIgG抗体ꎻ效力中图分类号:R917㊀文献标志码:A㊀文章编号:2095-5375(2023)11-0896-006doi:10.13506/j.cnki.jpr.2023.11.009StudyonthepotencyofmRNACOVID-19vaccineinvivousingneutralizingantibodyassayWUXiaohongꎬZHAODanhuaꎬSUOYueꎬPENGQinhuaꎬWANGHongyuꎬLIUXinyuꎬLIYuhua(NMPAKeyLaboratoryforQualityControlandEvaluationofBiologicalProductsꎬDivisionofArbovirusVaccineꎬNationalInstitutesforFoodandDrugControlꎬBeijing102629ꎬChina)Abstract:Objective㊀ToevaluatethepotencyofmRNACOVID-19vaccineinvivobyneutralizingantibodyassayaf ̄termiceimmunizationꎬandestablishamethodforevaluatingtheefficacyofthevaccine.Methods㊀BALB/cmiceat6~8weekswereimmunizedwithmRNACOVID-19vaccineandtheneutralizingantibodytitersofdifferentimmunedosageanddifferentvaccinationschedulesweredetected.Thevariantvaccinesproducedbydifferentmanufactureswereimmunizedatintervalsof7dor14dꎬandserumsampleswascollectedat7daftertheseconddoseofimmunization.2019novelcoronavir ̄us(2019-nCoV)neutralizingantibodytiterandIgGantibodytiterweredetectedbypseudovirusneutralizationtestanden ̄zymelinkedimmunosorbentassayseparately.Results㊀Theresultsofneutralizingantibodyatdifferentimmunedosageof2ꎬ5ꎬ10μgmRNAvaccineshowedthattheseropositiverateofantibodyinmicewas100%andtheneutralizingantibodyreac ̄tionhadanobviousdose-effectcorrelation.Theneutralizationantibodytiterofthe14-dayintervalgroupwassignificantlyhigherthanthatofthe7-dayintervalgroupandonedosegroup(F=57.13ꎬP<0.001).Thegeometricmeantiters(GMT)ofneutralizingantibodyinducedby2μgdosageintervalof7-dayand14-daywere218and468ꎬrespectivelyꎬwithsignifi ̄cantdifference(t=3.40ꎬP=0.003)ꎻTheGMTofneutralizingantibodyinducedby5μgdosageintervalof7-dayand14-daywere499and1436ꎬrespectivelyꎬwithsignificantdifference(t=3.62ꎬP=0.002)ꎻTheGMTofneutralizingantibodiesinducedby10μgdosageintervalof7-dayand14-daywere608and1909respectivelyꎬwithsignificantdifference(t=3.23ꎬP=0.005).HighlevelsofIgGantibody(104.5~107.5)andneutralizingantibody(102.6~104.8)couldbedetectedafterimmunizingmicewiththeCOVID-19mRNAvaccineꎬpotencyofthevaccineswereallmetwiththerequirementswithgoodlotconsistenceꎬthereweresignificantdifferenceintheantibodytitersamongthevariousvaccineproducedbydifferentman ̄ufacturers(F=70.03ꎬP<0.001).Conclusion㊀TheneutralizingantibodytestofthemiceafterimmunizationcanbeusedtoevaluatethepotencyofCOID-19mRNAvaccineinvivo.Keywords:2019novelcoronavirusꎻmRNAvaccineꎻNeutralizingantibodyꎻIgGantibodyꎻPotency㊀㊀新型冠状病毒感染(coronavirusdisease2019ꎬCOVID-19)的流行对人类健康造成了严重影响ꎮ疫苗接种已被证实对严重疾病㊁降低住院率和死亡率非常有效[1-2]ꎮ其中mRNA疫苗由于具有能够同时诱导体液免疫和细胞免疫㊁研发和生产周期短㊁容易实现量产等优势ꎬ成为国际上主要采用的COVID-19疫苗研发技术ꎮ随着新型冠状病毒(2019-nCoV)变异株的不断出现ꎬ单价变异株疫苗及多价变异株疫苗可作为加强免疫以及异源序贯免疫来应对病毒变异造成的感染威胁[3]ꎮ新冠mRNA疫苗的效力评价目前尚无国际标准ꎬ欧洲及世界卫生组织(WHO)专家多推荐体外活性研究作为该疫苗效力评价的主要方法[4-6]ꎮ鉴于mRNA疫苗为创新技术疫苗ꎬ缺乏系统的疫苗质量研究经验ꎬ我国现阶段采用体内和体外双效力指标进行评价[7]ꎬ体内效力的评价可利用动物免疫后检测中和抗体和/或总抗体的方法来进行[8]ꎮ本研究对新冠mRNA疫苗不同免疫剂量和不同免疫程序诱导的中和抗体反应进行初步研究ꎬ并对新冠变异株mRNA疫苗及二价mRNA疫苗免疫小鼠后的抗体阳性率和抗体水平进行体内效力分析ꎬ从而评价mRNA疫苗的质量ꎮ1㊀材料与方法1.1㊀实验动物㊀SPF级BALB/c小鼠ꎬ6~8周龄ꎬ体重18~22gꎬ雌雄不限ꎬ由中国食品药品检定研究院动物所提供ꎬ实验动物生产许可证号:SCXK(京)2022-0002ꎬ使用许可证号:SYXK(京)2022-0014ꎬ动物实验伦理批准文号:中检动(福)第2022(B)008号ꎮ1.2㊀主要试剂及仪器㊀10ˑPBS㊁TMB㊁终止液购自索莱宝公司ꎻHRP标记的羊抗小鼠IgG购自美国Jackson公司ꎻBSA购自美国Sigma公司ꎻDMEM㊁胎牛血清㊁胰酶㊁HEPES㊁双抗均购自美国Gibco公司ꎻ荧光素酶检测试剂购自美国普洛麦格Promega公司ꎻPromegaGloMax96微孔板化学发光检测仪(Glomaxnavigator)购自美国普洛麦格Promega公司ꎻ酶标仪(InfiniteM200)购自美国蒂肯公司ꎮ1.3㊀实验用疫苗㊁细胞㊁不同型别假病毒㊀实验用疫苗为国内企业生产的mRNA疫苗ꎬ编号V1~V9ꎮ其中V1为原型株疫苗ꎬV2~V7为二价2019-nCoV变异株mRNA疫苗(OmicronBA.4/5株和Delta株双价㊁OmicronBA.4/5株和Beta株双价㊁OmicronBA.2株和原型株双价以及OmicronXBB.1.5株和BQ.1.7株双价)ꎬV8~V9是2019-nCoV变异株mRNA疫苗(OmicronBA.1)ꎻVero细胞购自ATCCꎬ本室传代保存ꎻ假病毒原型株㊁Delta株㊁Beta株㊁O ̄micronBA.1㊁OmicronBA.2㊁OmicronBA.4/5㊁OmicronXBB.1.5购自北京云菱生物技术公司ꎻ不同株2019-nCoVS蛋白抗原分别购自北京义翘神州生物技术有限公司和北京百普赛斯公司ꎮ1.4㊀免疫剂量及免疫程序1.4.1㊀mRNA疫苗免疫剂量和免疫程序研究㊀将V1mRNA疫苗(原型株)配制成不同浓度后ꎬ按照不同的免疫程序分成A㊁B㊁C3组:A组程序为免疫1针ꎬ14d采血ꎻB组程序为间隔7d加强免疫1针后7d采血ꎻC组程序为间隔14d加强免疫1针后7d采血ꎮ每种免疫程序按照不同的免疫剂量分成3个小组ꎬ分别是每只小鼠注射2㊁5和10μgꎬ共计9组ꎬ每组10只小鼠ꎮ同时10只小鼠注射生理盐水作为阴性对照组ꎮ每只小鼠后肢肌肉注射100μL疫苗ꎬ眼球取血分离血清ꎬ-20ħ保存备用ꎮ用假病毒中和试验法检测抗2019-nCoV中和抗体ꎮ1.4.2㊀实验疫苗免疫和检测㊀mRNA变异株疫苗及二价疫苗均按照企业的免疫剂量和免疫程序进行免疫和采血ꎬ分离血清后于-20ħ保存ꎮ分别进行中和抗体和IgG结合抗体的检测ꎮ1.5㊀假病毒中和试验(PBNA法)㊀按照操作规程进行[9-10]ꎬ在96孔板上3倍系列稀释的血清100μLꎬ分别加入各型假病毒[用DMEM培养基稀释至1.3ˑ104半数组织培养感染剂量(TCID50)/mL]ꎬ每孔加入50μLꎬ同时设立病毒对照和细胞对照ꎮ37ħ5%CO2培养箱中和1hꎬ加入2ˑ105个/mL的Vero细胞悬液ꎬ每孔100μLꎬ37ħ5%CO2培养箱培养20~28h后ꎬ从细胞培养箱中取出96孔板ꎬ用多道移液器从每个上样孔中吸弃150μL上清ꎬ然后加入100μL荧光素酶检测试剂ꎬ室温避光反应2minꎮ反应结束后ꎬ用多道移液器将反应孔中的液体反复吹吸6~8次ꎬ使细胞充分裂解ꎬ从每孔中吸出100μL液体ꎬ加于对应96孔化学发光检测板中ꎬ置于化学发光检测仪中读取发光值ꎮ计算抑制率={1-[样品组的发光强度均值-空白对照CC(CellControlꎬCC)均值]/[阴性组的发光强度VC(VirusControlꎬVC)均值-空白对照值CC均值]}ˑ100%ꎮ根据中和抑制率结果ꎬ按照ReedMuench法计算中和抗体滴度半数效应剂量(50%maximaleffectiveconcentrationꎬEC50)ꎬEC50>30为抗体阳性ꎮ1.6㊀特异性抗2019-nCoVSpike蛋白IgG抗体检测㊀将2019-nCoV各株抗原分别用1ˑPBS稀释至2μg mL-1ꎬ取96孔板每孔加100μLꎬ(5ʃ3)ħ条件下包被过夜16hꎬPBST洗板3次ꎬ拍干后加入封闭液(2%BSA溶液)ꎬ100μL/孔ꎬ37ħ孵箱里封闭2hꎬ加入系列稀释后的待检测血清样本ꎬ37ħ孵箱里孵育后1hꎬPBST洗板3次ꎬ加入辣根过氧化物酶(HRP)标记的羊抗小鼠IgG抗体ꎬ每孔100μLꎬ37ħ孵育后1hꎬPBST洗板3次ꎬ加入底物TMB50μLꎬ室温避光显色3~5minꎬ加入1mol L-1硫酸溶液终止液终止ꎬ150μL/孔ꎬ在酶标仪上检测波长450nm/630nm的OD值ꎬ以阴性小鼠吸光度均值的2.1倍为cutoff值ꎮ血清A值大于cutoff值为抗体阳性ꎬ取阳性A值最大的血清稀释度为血清的IgG抗体滴度ꎮ1.7㊀统计学方法㊀使用GraphPadPrism8.0进行数据分析ꎬ相同免疫剂量不同免疫程序以及相同免疫程序不同免疫剂量间中和抗体滴度以及不同企业mRNA疫苗免疫后中和抗体之间比较采用单因素方差分析评估组间差异ꎬ中和抗体和IgG抗体之间差异采用t检验分析ꎬP<0.05表示差异有统计学意义ꎮ2㊀结果2.1㊀不同免疫剂量和不同免疫程序的抗体反应㊀针对原型株mRNA疫苗不同免疫剂量和免疫程序的中和抗体检测结果显示ꎬ2㊁5㊁10μgmRNA疫苗免疫小鼠后ꎬ1针免疫组和2针免疫组抗体阳性率均为100%ꎮ2㊁5㊁10μg首针免疫后14d或21d中和抗体反应具有明显的剂量-效应关系ꎮ相同免疫剂量㊁不同免疫程序结果显示ꎬ2针免疫组高于1针免疫组ꎬ其中2μg剂量组不同针次之间抗体滴度结果差异有统计学意义(F=20.64ꎬP<0.001)ꎻ5μg剂量组不同针次之间抗体滴度结果差异有统计学意义(F=18.27ꎬP<0.001)ꎻ10μg剂量组不同针次之间抗体滴度结果差异有统计学意义(F=11.37ꎬP<0.001)ꎮ2针免疫组中14d加强免疫组高于7d加强免疫组及1针组(F=57.13ꎬP<0.001)ꎮ其中2μg间隔7d加强免疫和间隔14d加强免疫组产生的中和抗体几何平均滴度(geometricmeantiterꎬGMT)分别为218和468ꎬ14d为7d的2.15倍ꎬ差异有统计学意义(t=3.40ꎬP=0.003)ꎻ5μg间隔7d加强免疫和间隔14d加强免疫产生的中和抗体GMT分别为499和1436ꎬ14d为7d的2.88倍ꎬ差异有统计学意义(t=3.62ꎬP=0.002)ꎻ10μg间隔7d加强免疫和间隔14d加强免疫产生的中和抗体GMT分别为608和1909ꎬ14d为7d的3.14倍ꎬ差异有统计学意义(t=3.23ꎬP=0.005)ꎮ相同免疫程序㊁不同免疫剂量诱导的抗体反应结果显示ꎬ1针免疫组不同剂量间相比(F=7.33ꎬP=0.003)ꎻ2针免疫组ꎬ间隔7d不同剂量间相比(F=6.40ꎬP=0.005)ꎻ2针免疫组ꎬ间隔14d不同剂量间相比(F=7.64ꎬP=0.002)ꎬ差异均有统计学意义ꎬ结果见表1ꎮ表1㊀V1疫苗不同免疫剂量和免疫程序的中和抗体滴度及阳性率剂量/μgGMT(95%CI)A组B组C组F值P值阳性率(%)260(46~73)218(167~629)468(263~674)20.64P<0.001100.05187(102~271)499(311~688)1436(759~2112)18.27P<0.001100.010349(52~646)608(269~948)1909(709~3109)11.37P<0.001100.0F值7.336.407.643.40a3.62b3.23cP值0.0030.0050.0020.003a0.002b0.005c阳性率(%)100.0100.0100.0///㊀注:GMT为几何平均滴度:95%CI:95%可信区间ꎻ/表示无统计ꎻabc2㊁5㊁10μg间隔7d和间隔14d中和抗体滴度分别进行t检验ꎮ2.2㊀8家企业生产的新冠变异株mRNA疫苗体内效力检测结果㊀8家企业生产的疫苗V2~V9按照企业的免疫剂量和免疫程序免疫BALB/c小鼠后ꎬ中和抗体及特异性IgG抗体检测结果见表2ꎮ表2㊀不同企业生产的mRNA疫苗抗体检测结果生产者免疫程序检测批数LgIgG(GMT)中和抗体EC50(GMT)(LgEC50)V37d2针免疫14d采血V47d2针免疫14d采血V514d2针免疫21d采血V614d2针免疫21d采血V714d2针免疫21d采血V814d2针免疫28d采血V914d2针免疫28d采血25.95.61202(3.1)N/A35.65.71268(3.1)N/A15.96.0410(2.6)966(3.0)26.05.7617(2.8)1456(3.2)36.05.7644(2.8)1671(3.2)46.96.6667(2.8)3935(3.6)14.54.81291(3.1)2080(3.3)24.74.91556(3.2)2353(3.4)34.74.81361(3.1)2582(3.4)44.64.91050(3.0)1931(3.3)16.06.11274(3.1)3812(3.6)26.15.81170(3.1)2798(3.4)36.05.81589(3.2)3097(3.5)46.06.01298(3.1)4074(3.6)15.04.87495(3.9)1427(3.2)25.15.06230(3.8)1257(3.1)35.35.29580(4.0)2806(3.4)17.1/24453(4.4)/27.5/27976(4.4)/37.5/26979(4.4)/15.6/65630(4.8)/25.6/40445(4.6)/35.6/25343(4.4)/F值或t值11.47a17.56b70.03cP值P<0.001aP<0.001bP<0.001c㊀注: / 代表该疫苗为单价疫苗ꎻ N/A 代表该组分未检测ꎻ 1㊁2㊁3㊁4 分别代表检测批数ꎮa代表组分1IgG结合抗体和中和抗体滴度t检验结果ꎻb代表组分2IgG结合抗体和中和抗体滴度t检验结果ꎻc代表各企业之间中和抗体滴度方差分析结果ꎮ组分1和组分2代表双价疫苗中的单价组分ꎬ如V7疫苗:组分1为德尔塔株ꎬ组分2为奥密克戎BA.4/5株ꎮ2.3㊀特异性IgG结合抗体和中和抗体结果分析㊀检测结果以对数转换后进行t检验ꎬ组份1IgG和EC50比较t=11.47ꎬP<0.001ꎻ组份2IgG和EC50比较t=17.56ꎬP<0.001ꎬ均显示中和抗体检测结果和IgG结合抗体检测差异有统计学意义ꎮPearson相关系数r分别为0.42和0.22ꎮ虽然两种方法抗体检测结果相关性较差ꎬ但均可以检测到高水平的抗体特异性反应ꎮ两种方法检测各企业3~4批疫苗ꎬIgG抗体结果批间变异系数在1.0%~7.6%ꎬ中和抗体结果批间变异系数在2.0%~7.9%ꎬ提示两种抗体检测方法均可以用于评价疫苗体内效价的批间一致性ꎮ各企业mRNA疫苗的中和抗体结果对数转换后进行组间方差分析ꎬ差异有统计学意义(F=70.03ꎬP<0.001)ꎮ3㊀讨论新冠mRNA疫苗临床前和临床研究中均证实疫苗的有效性与动物或人群保护力之间有一定的量效关系[11-14]ꎮ中和抗体是最重要的保护性抗体ꎬ与2019-nCoV感染者症状严重程度之间也有一定的相关性[15-16]ꎮ因此建立标准的中和抗体检测平台技术对COVID-19疫苗进行评价尤为重要[17]ꎮ本研究采用的假病毒中和方法经国内多家实验室联合验证[9ꎬ18]ꎬ抗体检测结果相对客观ꎬ与IgG结合抗体检测相比更能体现疫苗的免疫原性ꎮ尤其对于多价疫苗ꎬ假病毒中和抗体检测方法可实现对不同变异株抗体分别进行检测ꎬ能较好的反映出针对多价疫苗各毒株组份疫苗诱导的抗体中和活性ꎮ通过对1批mRNA原型株疫苗不同免疫剂量和不同免疫程序的分析ꎬ提示mRNA疫苗免疫小鼠后的中和抗体水平与免疫剂量和免疫程序有密切关系ꎮ本研究发现ꎬ同等剂量下(2㊁5㊁10μg)间隔7d与间隔14d2针免疫的抗体结果差异有统计学意义ꎬ对于mRNA疫苗来说ꎬ间隔7d的第2针加强免疫不是产生高滴度中和抗体的最适宜的程序ꎬ疫苗实际使用过程中第2针加强免疫的时间选择在21d或28d[11-12]ꎮ因此mRNA疫苗体内效力的评价应适当关注免疫程序的设计ꎮ研究结果显示mRNA变异株单价疫苗或二价疫苗中针对不同组分的IgG抗体滴度均在104.5~107.5间ꎬ符合各企业的质量标准(不低于103或104)ꎬ且各企业生产的疫苗IgG抗体结果批间一致性良好ꎬ变异系数在1.0%~7.6%之间ꎮ假病毒法检测中和抗体滴度在102.6~104.8之间ꎬ不同企业生产的疫苗免疫后中和抗体水平差异有统计学意义(F=70.03ꎬP<0.001)ꎬ与国产mRNA疫苗已公布的Ⅰ~Ⅱ期临床研究数据一致ꎬ不同企业新冠mRNA疫苗在人体内产生的中和抗体滴度有差异[12-15]ꎮ各企业不同批次中和抗体检测结果变异系数为2.0%~7.9%ꎮ因此中和抗体检测可用于不同企业mRNA疫苗效力的比较研究以及疫苗批间一致性的评价ꎮ辉瑞公司生产的BNT162b为30μg/剂ꎬ莫德纳公司mRNA-1273为100μg/剂ꎮ两款疫苗对2019-nCoV感染的保护效力分别达到了94.6%和94.1%ꎬ不同的人用剂量和免疫程序可产生相同的临床保护力[19-21]ꎮmRNA-1273Ⅲ期临床研究结果显示接种该疫苗后假病毒法检测中和抗体滴度半数抑制稀释(50%inhibitorydilutionꎬID50)为10㊁100和1000ꎬ测算疫苗保护效力分别为78%㊁91%和96%[22]ꎻ新冠灭活疫苗NVX-CoV2373中和抗体滴度ID50为50㊁100和7230(IU50 mL-1)ꎬ疫苗保护效力分别为75.7%㊁81.7%和96.8%[23]ꎮ本研究结果显示国产新冠mRNA疫苗小鼠免疫后中和抗体均达到较高水平ꎬ无论是1针免疫还是2针免疫EC50除个别企业因单价组分配比含量低ꎬ造成滴度偏低(V4)外ꎬ其余企业中和抗体滴度均在在1000以上甚至更高ꎬ提示国产新冠mRNA疫苗的体内效力结果已达到较高的标准要求ꎮ虽然本研究未利用上述新冠mRNA疫苗进一步开展攻毒保护力研究ꎬ但随着mRNA疫苗大量的临床研究数据以及真实世界的保护力数据公布ꎬ会对疫苗的效力评价标准提供更有效的数据支持ꎮ尽快建立效力评价用疫苗参考品和血清检测用标准物质ꎬ提高国产mRNA疫苗的质量评价水平是下一步研究方向ꎮ参考文献:[1]㊀EARLEKAꎬAMBROSINODMꎬFIORE-GARTLANDAꎬetal.EvidenceforantibodyasaprotectivecorrelateforCO ̄VID-19vaccines[J].Vaccineꎬ2021ꎬ39(32):4423-4428. 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标准操作规程(SOP)——流感禽流感微量中和抗体检测

标准操作规程(SOP)——流感禽流感微量中和抗体检测

标准操作规程(SOP)——一、目的微量中和试验是一种敏感性高、特异性强的血清学方法,用于测定血清中的病毒特异性中和抗体水平。

中国国家流感中心的所有技术人员,必须按照本文件相关的操作规程,进行流感/禽流感微量中和抗体检测实验,以确保实验的准确性。

二、范围适用于中国国家流感中心的所有技术人员进行流感/禽流感微量中和抗体检测。

三、责任进行流感/禽流感微量中和抗体检测的技术人员需严格按照规定进行操作。

四、程序(一)生物安全要求H5,H7亚型高致病性禽流感病毒,H2N2亚型流感病毒的操作需要在生物安全3级(BSL-3)实验室中进行。

其余流感病毒的操作需要在生物安全2级(BSL-2级)实验室中进行。

操作人员必须严格按照相应实验室的要求做好个人防护。

(二)材料1.中和反应实验材料(1)病毒:一般采用接种鸡胚尿囊腔后收获的流感/禽流感病毒液,在-70℃中保存,并且注意避免反复冻融。

进行中和试验之前,需先进行病毒滴度(TCID50)的滴定。

具体步骤如下,1)病毒的稀释:可采取对数或者半对数稀释的方法。

以下介绍半对数稀释法。

取1管冻存病毒尿囊液,用病毒培养液进行1:100稀释。

第一列4个孔每孔加入146μL 1:100稀释过的病毒液,其它各列每孔加入100 μL 病毒培养液。

然后用多道加样器从第一孔吸46μL 至第二孔,做系列半对数稀释,使之成为10-2、10-2.5、10-3、10-3.5……10-7。

每孔含有100μL 病毒液。

2)每孔加入100μL MDCK 细胞悬液(1.5×104细胞/孔),37℃,5%CO 2培养箱孵育18~22h 。

每一滴度作平行4孔。

3)细胞固定、ELISA 操作如下述。

4)OD 值 〉2倍MDCK 细胞对照OD 值判定为阳性5)病毒滴度计算见组织细胞半数感染量滴定SOP 。

(2)血清样品:包括待检血清、阳性及阴性血清对照。

如果待检血清有可能需要多次检测,则需将待检血清进行小量分装,-20℃至-70℃保存均可,避免多次反复冻融。

中和实验方法

中和实验方法

RSV特异性中和抗体滴度检测一、实验原理:抗体与相应的病毒粒子特异地结合,使后者失去对易感动物或细胞的致病力。

(该试验方法以测定抗病毒血清的中和价,将待检血清2倍递增稀释,加等量已知毒价的病毒液。

)二、实验分类:1. 固定血清--稀释病毒中和试验2. 固定病毒—稀释血清中和试验3. 简单定性中和试验4. 空斑减少法三、实验步骤:1.提前设定56 ℃水浴锅,将分装好的待测血清于56 ℃灭活(降低补体对实验结果的影响)30min 。

2.将加过双抗的培养基DMEM/F-12(用于Hep-2细胞;Vero细胞常用DMEM培养基)和BI血清进行37℃预热30min,与此同时灭好实验台(该准备3599细胞培养板灭过菌枪头以及15ml和50ml摇菌管)为后续实验做准备。

3.实验台灭菌30min,灭好台子后进行实验,首先取1.5mlEP管,用DMEM/F-12培养基8倍稀释待测血清(每管中加培养基210µl,再加相应的血清30µl),拆开96孔培养板后在盖子进行设计(实验设计参考图1),最后向每孔中加入75µl的培养基,按照实验设计加入相应的稀释血清75µl,用排枪以两倍梯度稀释血清。

(注意:最终到256倍时吸出的多余的75µl血清并弃掉。

)4.实验孔以及阳性对照孔分别每孔加入25 µl(注意:加毒时应从血清低浓度到高浓度)的104 TCID50病毒混匀,4℃孵育2 h。

5.在实验剩余半小时左右进行消化细胞,镜检细胞汇合度为90%左右即可用,弃掉培养液后,用2-3 ml无血清培养吹洗几遍细胞(意图为去除死细胞或活性不好的细胞),加入2 ml 胰酶后开始计时,将细胞培养板置于37℃的CO2无菌培养箱培养消化2-3min,在镜检细胞间有间隙或细胞收缩为单个状态为好,加入等体积的无血清培养基终止,小心吸掉液体,加入有血清的培养基2-3ml轻轻地吹下皿底部的细胞,轻微用枪吹吸几次使其成为均匀的单细胞悬液后转移到新的15ml离心管中等待细胞计数。

中和抗体的效价测定方法

中和抗体的效价测定方法

中和抗体的效价测定方法引言:中和抗体是一种特殊的抗体,它能够与病原体结合并中和其活性,从而起到抵抗感染的作用。

中和抗体的效价测定是评估中和抗体活性的重要方法,对于疫苗研发、抗体治疗和免疫学研究具有重要意义。

本文将介绍常用的中和抗体效价测定方法。

一、细胞中和法细胞中和法是一种常用且准确的中和抗体效价测定方法。

其基本原理是将病原体与中和抗体共同作用于易感细胞,通过观察细胞的病变情况来评估中和抗体的效价。

具体步骤如下:1. 培养易感细胞:选择适合的易感细胞株,如Vero细胞,并进行培养。

2. 制备病原体:根据需求选择合适的病原体,如病毒或细菌,并进行培养和病毒滴度检测。

3. 中和抗体的稀释:将中和抗体按照一系列稀释倍数制备成不同浓度。

4. 细胞感染:将培养好的易感细胞接种至孔板中,并加入一定量的病原体。

5. 中和实验:将不同浓度的中和抗体与细胞感染体系共同处理,包括对照组和实验组。

6. 观察细胞病变:在一定时间后,观察细胞的病变情况,如细胞形态、细胞存活率等。

7. 计算效价:通过比较对照组和实验组的细胞病变情况,计算中和抗体的效价。

二、中和试验中和试验是另一种常用的中和抗体效价测定方法,其基本原理是将病原体与中和抗体共同作用于体外体系,通过观察病原体活性的变化来评估中和抗体的效价。

具体步骤如下:1. 制备病原体:根据需求选择合适的病原体,如病毒或细菌,并进行培养和病毒滴度检测。

2. 中和抗体的稀释:将中和抗体按照一系列稀释倍数制备成不同浓度。

3. 中和实验:将不同浓度的中和抗体与病原体共同处理,包括对照组和实验组。

4. 检测病原体活性:通过合适的方法检测病原体的活性变化,如病毒滴度测定、细菌生长抑制等。

5. 计算效价:通过比较对照组和实验组的病原体活性变化,计算中和抗体的效价。

三、血清中和效价血清中和效价是一种常用的中和抗体效价测定方法,其基本原理是将病原体与中和抗体共同作用于动物体内,通过观察动物体内病原体感染情况来评估中和抗体的效价。

病毒中和抗体检测

病毒中和抗体检测

病毒中和抗体检测1.病毒TCID50检测TCID50 是指组织培养物(细胞)半数致死剂量。

它有几个性质我们必须明白:1)它表示的是计量,不是浓度;2)它是一个单位;3)它的值等于1,实际上问它的值等于多少是一个没有意义的问题,就像问km的值等于多少一样,如果非要说出的的值等于多少,那我们只能说它的值在任何情况下都等于1。

理解这三个性质对于理解TCID50非常重要,但是这三个性质经常被误解,所以导致对TCID50的理解出现偏差。

首先我们来看一下这个表示法的意思:病毒滴度为108.2TCID50/ml 。

它表示的是每ml病毒溶液里含有108.2个TCID50的病毒,这和氯化钠的浓度为4.5mol/L表示每L溶液中含有4.5个mol的氯化钠是一样的道理。

经常可以听到人说我的病毒的TCID50是10x.x。

这个说法是不科学的,应该说我这个溶液里含有10x.x个TCID50的病毒或者说我这个溶液的病毒滴度是10xx TCID50/ml。

也可以说病毒的TCID50效价是10-x.x。

TCID50=10^5.64/0.1ml。

即:将病毒悬液作10^5.64稀释后,接种细胞0.1ml,可以使50%的细胞产生CPE。

(将病毒悬液作10^5.64稀释后,0.1ml中含1个TCID50,作其他一些实验时(如中和试验),一般常用100TCID50/0.1ml或者100TCID50/0.05ml)本方法的优缺点:①.优点:出现阳性结果时间较短,且较明显;②.缺点:有时候,在用枪头吸出细胞生长液时,容易出现污染;使用本方法时的注意事项:①.稀释病毒时,每做一个病毒稀释度都需要换枪头,减少浓度误差;②.96孔板,每孔接种的细胞量:一般在此种测定病毒滴度的方法下,要将细胞密度适当调低,至少要比正常传代时低一些,否则细胞生长速度过快,未到7天则细胞出现死亡,对观察CPE不利.一般情况下,小塑料瓶(8-9ml液体为正常用量),培养长慢单层后,消化细胞,加入6ml培养液,吹匀,吸出其中的2ml,到另外的瓶子,在该瓶中加入14-16ml即可,如果不放心,可以用显微镜看一下,细胞数过多则补加培养液,少则补加剩余4ml的细胞悬液;维持液,即病毒培养液,配方为:①.MEM+2%小牛血清+3%谷氨酰胺+1%双抗+NaHCO3; ②. MEM+3%谷氨酰胺+1%双抗+NaHCO3;两种维持液的不同在于是否有FBS(小牛血清).我个人曾经做过实验,在状态很好的细胞上接种病毒,分别使用两种不同的维持液,最终结果是一样的,没有什么不同,所以可以根据个人需要进行选择.另外,曾经请教过专门做中和实验的老师,他认为适当的FBS对细胞有保护作用,而且他说这是国外文献上的报道.1)细胞准备1.1 检查培养瓶中的单层细胞,以5ml胰酶-EDTA轻微冲洗1.2 加入4-5ml 胰酶-EDTA以覆盖单层细胞1.3 放平培养瓶,37℃5%CO2培养箱中孵育10-20min,直到细胞脱落1.4 加入5-10ml培养液,洗下细胞后移到离心管中1.5 以PBS洗细胞两次(12000rpm, 5min)1.6 以D-MEM重悬细胞,并用血球计数板计数1.7 以D-MEM将将细胞浓度调整到1×10^5/ml --1.5×10^5/ml1.8 在微量培养板的各孔中加入100μl细胞, 相当于?×10^4细胞/孔1.9 在37℃5%CO2培养箱中过夜培养(18-22h),用处于生长相刚达到完全融合的细胞进行病毒的滴定2)病毒制备3)病毒稀释3.1 取冻存的病毒,以病毒生长培养液(VGM)稀释10倍,即100微升病毒液+900微升稀释液,共1毫升。

hpv中和抗体标准

hpv中和抗体标准

hpv中和抗体标准
中和抗体效价≤1:40为阴性,>1:40为阳性。

如1:20为阴性,1:80为阳性。

HPV中和抗体检测适用于所有全程规范接种完HPV疫苗人群,以下特殊人群建议优先、尽早进行抗体检测:
免疫功能低下、服用免疫抑制剂、恐癌者(抑郁症、焦虑症状)、艾滋病及感染者、患妇科炎症(宫颈病变史)、具有癌症家族史、同性恋、吸毒人员、早婚早育、多产、经期延长、多性伴、性病。

目前国内HPV疫苗抗体检测采用世界卫生组织(WHO)在《HPV VLP疫
苗质量、安全性及效力评价指导原则》中推荐的金标准方法——PBNA法(假病毒中和试验)。

其检测原理是模拟HPV活病毒与中和抗体发生中和
抑制反应,抗体型别不受限制,但只检测各抗体型别中具有免疫保护作用的中和抗体,因而被称为检测HPV中和抗体的“金标准”方法。

请注意,如有其他不适请及时就医或咨询专业机构。

中和抗体的效价测定方法

中和抗体的效价测定方法

中和抗体的效价测定方法引言:中和抗体是一种能够与病原体结合并阻止其入侵宿主细胞的抗体。

对于评估中和抗体的效力,确定其效价是非常重要的。

本文将介绍几种常用的中和抗体效价测定方法。

一、细胞中和实验法细胞中和实验法是一种常见的测定中和抗体效价的方法。

该方法通过将病原体与中和抗体混合,然后与特定宿主细胞进行培养,观察细胞是否受到病原体的感染来评估中和抗体的效力。

这种方法可以定量测定中和抗体的效价,并且可以用于不同病原体的效价测定。

二、病毒中和实验法病毒中和实验法是一种常用的测定病毒中和抗体效价的方法。

该方法通过将病毒与中和抗体混合,然后与特定宿主细胞进行培养,观察细胞是否受到病毒的感染来评估中和抗体的效力。

这种方法可以定量测定中和抗体的效价,并且可以用于不同病毒的效价测定。

三、ELISA法ELISA法是一种常用的测定中和抗体效价的方法。

该方法通过将病原体与中和抗体混合,然后将混合物加入包含特定抗原的酶标板孔中,将抗体与抗原结合后,用酶标法检测酶活性来评估中和抗体的效力。

这种方法可以定量测定中和抗体的效价,并且可以用于不同抗原的效价测定。

四、中和试验法中和试验法是一种常用的测定中和抗体效价的方法。

该方法通过将病原体与中和抗体混合,然后将混合物加入宿主细胞中,观察细胞是否受到病原体的感染来评估中和抗体的效力。

这种方法可以定量测定中和抗体的效价,并且可以用于不同病原体的效价测定。

五、中和效力指数计算法中和效力指数计算法是一种常用的测定中和抗体效价的方法。

该方法通过将中和抗体与病原体进行反应,然后根据中和效果的程度来计算中和效力指数。

这种方法可以定量测定中和抗体的效价,并且可以用于不同病原体的效价测定。

结论:中和抗体的效价测定是评估中和抗体效力的重要方法。

细胞中和实验法、病毒中和实验法、ELISA法、中和试验法和中和效力指数计算法是常用的中和抗体效价测定方法。

在进行中和抗体效价测定时,应选择合适的方法和实验条件,以确保测定结果的准确性和可靠性。

中和抗体测定方法

中和抗体测定方法

中和抗体测定方法
中和抗体测定方法是一种可以用来检测病毒感染的方法。

中和抗体是一种特殊的抗体,它可以与病毒结合并阻止病毒在细胞内或体内复制和感染其他细胞。

因此,中和抗体的测定可以用来判断病毒是否在体内,以及人体是否对病毒具有抵抗力。

中和抗体测定通常采用体外细胞培养法或小鼠腹腔注射法,以获取中和抗体。

常用的中和抗体测定方法包括中和试验、酶联免疫吸附法和荧光中和抗体测定法。

这些方法对于病毒感染的诊断和治疗非常重要,可以有效地指导临床医生制定合理的治疗方案。

但是,中和抗体测定方法也存在一些局限性,例如需要耗费大量时间和资源进行实验,同时也存在一定的误差。

因此,在实际应用中需要综合考虑各种因素,选择最适合的中和抗体测定方法。

- 1 -。

第三章中和试验(Neutralization)及中和抗体

第三章中和试验(Neutralization)及中和抗体

中和抗体:
1. 快速离心中和抗体(兔抗大鼠 TNF-α)的冻干粉管, 使管盖和管壁上的粉末收集至管底; 2. 加入无菌的双蒸水 200ul,将中和抗体重悬配制成浓度为 0.25mg/ml的贮存液,4 oC可 保存 6 个月,如长期保存,则需分装冻存于 -20oC; 3. 根据细胞因子(重组TNF-α)的ED50(半数有效浓度)来确定中和抗体工作液的浓度 此细胞因子(重组TNF-α, 产品标号: 500-P72, 生产商: Peprotech)的ED50 为 0.05ng/ml, 配制的中和抗体工作液的浓度是此ED50的 10000X,5000X,2000X,1000X,500X, 200X,即 500ng/ml,250ng/ml,100ng/ml,50ng/ml和 25ng/ml和 10ng/ml。因此需将 0.25mg/ml 的中和抗体贮存液用 RPMI-1640 工作液分别作 1:500 ,1:1000 , 1:2500 , 1:5000,1:10000 和 1:25000 稀释。
[试剂配制]
细胞因子:
8. 快速离心细胞因子(重组 TNF-α)的冻干粉管, 使管盖和管壁上的粉末收集至管 底; 9. 加入无菌的双蒸水 100ul,将细胞因子重悬配制成浓度为 0.2mg/ml的贮存液, 4oC可保存 1 周,如长期保存,则需分装冻存于 -20oC; 10. 取一定量的贮存液(0.2mg/ml),用 RPMI-1640 培养液进行 1:100,000 稀释,即 获得浓度为 2.0 ng/ml 的重组 TNF-α 工作液。
实验仪器和材料:
小鼠 L929 细胞 RPMI-1640 培养液 细胞因子--重组大鼠 TNF-α,产品标号:400-14,规格:20ug,生产商:Peprotech 中和抗体--兔抗大鼠 TNF-α,产品标号:500-P72,规格:50ug,生产商:Peprotech 培养板 离心机 培养箱

中和抗体测定

中和抗体测定
(注意型别的区分和对应)
➢轻摇混匀后,放入CO2孵箱,培养2~4小时
加入事先准备好的细胞悬液0.1ml/孔
➢Hep-2 : 5~10×104/ml
再次摇匀,密封好放在36.5℃培养5~7天。
病毒分离技术(四) ——中和抗体测定
对照的设立
➢血清对照( 1∶4),标准血清和待检血清同 时设立
➢细胞对照、稀释液对照 ➢100CCID50的抗原对照
➢1.5~2.5的反对数: 31.62~316.2(32~320 CCID50/0.025ml )
题外话
感谢大家多年来对免 疫预防工作的支持
新的问题不断涌现, 促使我们不断的向前
未来,任重而道远
匀后,将这个稀释度的血清向下一个稀释度 移0.05ml,至最高稀释孔吹吸均匀后,弃去 0.05ml。
(在微量板上进行,板子标记和稀释详见附录1)
血清对照1∶4 血清稀释1∶4
1∶16 1∶64 1∶256 1∶1024 血清对照1∶4 血清稀释1∶4 1∶16 1∶64 1∶256 1∶1024
血清1 ○○ ○○ ◎○ ◎○ ◎○ ◎○ ○○ ○○ ◎○ ◎○ ◎○ ◎○
➢SabineⅡ:取1.50的反对数,即得到攻击病毒的 含量:31.6CCID50/0.025ml。
➢SabineⅢ:取2.00的反对数,即得到攻击病毒的 含量:100CCID50/0.025ml。
病毒分离技术(四) ——中和抗体测定
简单的判定是否有效的方法:
➢32~320 CCID50/0.025ml 的对数: 1.505~2.505(1.5~2.5)
➢SabineⅡ:
LogCCID50=0+0.5-1×(100+75+25)/100=-1.50

新冠中和抗体参考值

新冠中和抗体参考值

新冠中和抗体参考值新冠中和抗体参考值是评估人体免疫系统对新型冠状病毒(SARS-CoV-2)感染后产生的抗体水平的一项重要指标。

中和抗体是一种能够与病毒结合并阻止其进入人体细胞的抗体。

了解人体中和抗体的参考值对于评估个体免疫状态、预测免疫效果以及开展相关疫苗研究等具有重要意义。

根据多项研究结果,新冠中和抗体的参考值可以根据实验设定和使用的试剂不同而有所差异。

因此,不同实验室或研究机构可能会有不同的参考值范围。

以下是一些常见的新冠中和抗体参考值范围,供参考:1. 中和抗体滴度中和抗体滴度是一种量化检测中和抗体水平的方法。

一般来说,滴度为1:80 或更高的中和抗体滴度被认为是阳性,表示免疫系统对病毒感染有保护效果。

2. 中和效价中和效价是评估中和抗体活性强弱的指标。

一般来说,中和效价越高,表示中和抗体的浓度越高,抗体对病毒的中和能力越强。

3. 中和抗体指数中和抗体指数由免疫测定结果得出,是中和抗体滴度与阳性对照抗体滴度之比。

一般来说,中和抗体指数大于1表示阳性。

4. 免疫球蛋白G(IgG)浓度免疫球蛋白G(IgG)是中和抗体的一种类型,是最常用的抗体。

一般来说,IgG抗体浓度大于15.0 AU/ml 或15.0 U/ml表示抗体阳性。

需要指出的是,参考值的具体范围可能因测试方法的差异而有所变化。

因此,在进行中和抗体测定时,最好参考实验室提供的具体参考值范围或咨询专业医生的意见。

此外,研究还表明,中和抗体水平可能会随时间变化。

在感染后的早期阶段,中和抗体水平可能相对较低。

然而,随着时间的推移,中和抗体水平可能会增加,并达到一定的稳定水平。

因此,在评估中和抗体结果时,时间因素也需要考虑进去。

总之,新冠中和抗体参考值是评估抗体水平的重要指标,可以通过滴度、效价、中和抗体指数和IgG浓度等进行评估。

不同实验室或研究机构的参考值可能有所差异,因此需要参考具体的实验室参考值范围。

同时,中和抗体水平可能会随时间变化,因此也要考虑感染时间因素。

中和试验

中和试验

中和试验中和试验是病毒或毒素与相应的抗体结合后,失去对易感动物的致病力的试验方法。

所属分类:免疫学概述动物受到病毒感染后,体内产生特异性中和抗体,并与相应的病毒粒子呈现特异性结合,因而阻止病毒对敏感细胞的吸附,或抑制其侵入,使病毒失去感染能力。

中和试验(Neutralization Test)是以测定病毒的感染力为基础,以比较病毒受免疫血清中和后的残存感染力为依据,来判定免疫血清中和病毒的能力。

两种试验方法介绍中和试验常用的有两种方法:一种是固定病毒量与等量系列倍比稀释的血清混合,另一种是固定血清用量与等量系列对数稀释(即十倍递次稀释)的病毒混合。

(一) 定血清-稀释病毒法(病毒中和试验)1.病毒毒价的测定毒价单位:衡量病毒毒价(毒力)的单位过去多用最小致死量(MLD),即经规定的途径,以不同的剂量接种试验动物,在一定时间内能致全组试验动物死亡的最小剂量。

但由于剂量的递增与死亡率递增不呈线性关系,在越接近100%死亡时,对剂量的递增越不敏感。

而一般在死亡率越接近50%时,对剂量的变化越敏感,故现多改用半数致死量(LD50)作为毒价测定单位,即经规定的途径,以不同的剂量接种试验动物,在一定时间内能致半数试验动物死亡的剂量。

用鸡胚测定时,毒价单位为鸡胚半数致死量(ELD50)或鸡胚半数感染量(EID50)。

用细胞培养测定时,用组织细胞半数感染量(TCID50)。

在测定疫苗的免疫性能时,则用半数免疫量(IMD50)或半数保护量(PD50)。

(1) LD50的测定(以流行性乙型脑炎病毒为例)。

测定方法:将接种病毒,并已发病濒死的小鼠,无菌法取脑组织,称重、加稀释液充分研磨,配制成10-1悬液,3 000r/min离心20分钟,取上清液,以10倍递次稀释成10、10、10……10,每个稀释度分别接种5只小鼠,每只脑内注射0.03ml,逐日观察记录各组的死亡数。

本例高于50%病毒稀释度的对数-6,距离比例为0.5,称释系数的对数为-1。

病毒中和抗体检测

病毒中和抗体检测

病毒中和抗体检测1.病毒TCID50检测TCID50 是指组织培养物(细胞)半数致死剂量.它有几个性质我们必须明白:1)它表示的是计量,不是浓度;2)它是一个单位;3)它的值等于1,实际上问它的值等于多少是一个没有意义的问题,就像问km的值等于多少一样,如果非要说出的的值等于多少,那我们只能说它的值在任何情况下都等于1。

理解这三个性质对于理解TCID50非常重要,但是这三个性质经常被误解,所以导致对TCID50的理解出现偏差。

首先我们来看一下这个表示法的意思:病毒滴度为108.2TCID50/ml .它表示的是每ml病毒溶液里含有108。

2个TCID50的病毒,这和氯化钠的浓度为4.5mol/L表示每L溶液中含有4.5个mol 的氯化钠是一样的道理.经常可以听到人说我的病毒的TCID50是10x。

x.这个说法是不科学的,应该说我这个溶液里含有10x。

x个TCID50的病毒或者说我这个溶液的病毒滴度是10xx TCID50/ml。

也可以说病毒的TCID50效价是10-x.x。

TCID50=10^5.64/0.1ml。

即:将病毒悬液作10^5.64稀释后,接种细胞0.1ml,可以使50%的细胞产生CPE.(将病毒悬液作10^5。

64稀释后,0。

1ml中含1个TCID50,作其他一些实验时(如中和试验),一般常用100TCID50/0。

1ml或者100TCID50/0。

05ml)本方法的优缺点:①.优点:出现阳性结果时间较短,且较明显;②.缺点:有时候,在用枪头吸出细胞生长液时,容易出现污染;使用本方法时的注意事项:①.稀释病毒时,每做一个病毒稀释度都需要换枪头,减少浓度误差;②。

96孔板,每孔接种的细胞量:一般在此种测定病毒滴度的方法下,要将细胞密度适当调低,至少要比正常传代时低一些,否则细胞生长速度过快,未到7天则细胞出现死亡,对观察CPE不利.一般情况下,小塑料瓶(8-9ml液体为正常用量),培养长慢单层后,消化细胞,加入6ml培养液,吹匀,吸出其中的2ml,到另外的瓶子,在该瓶中加入14—16ml即可,如果不放心,可以用显微镜看一下,细胞数过多则补加培养液,少则补加剩余4ml的细胞悬液;维持液,即病毒培养液,配方为:①。

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病毒分离技术(四) ——中和抗体测定
病毒滴定对照结果的判断
➢SabineⅠ:取2.75的反对数,即得到攻击病毒的 含量:562CCID50/0.025ml。
➢SabineⅡ:取1.50的反对数,即得到攻击病毒的 含量:31.6CCID50/0.025ml。
➢SabineⅢ:取2.00的反对数,即得到攻击病毒的 含量:100CCID50/0.025ml。
(注意型别的区分和对应)
➢轻摇混匀后,放入CO2孵箱,培养2~4小时
加入事先准备好的细胞悬液0.1ml/孔
➢Hep-2 : 5~10×104/ml
再次摇匀,密封好放在36.5℃培养5~7天。
病毒分离技术(四) ——中和抗体测定
对照的设立
➢血清对照( 1∶4),标准血清和待检血清同 时设立
➢细胞对照、稀释液对照 ➢100CCID50的抗原对照
中和试验时所用抗原量过大或过小都会影 响血清抗体滴度。每次试验应设病毒对照, 核 对 所 用 病 毒 剂 量 , 一 般 应 在 32 ~ 3认2可0C。CID50/0.025ml 的 用 量 时 其 结 果 才 被
(病毒滴定对照见附录4)
病毒分离技术(四) ——中和抗体测定
中和作用,
➢向血清板上加入已稀释好的标准毒株悬液 0.025ml (200CCID50) 。
血清5
Ⅰ型板
血清2
血清3
○○◎◎
○○◎◎
○○○◎
○○○○
○●●●
●●●●
○○○○
○○●●
○○●●
○○●●
●○●●
●○●●
血清6
血清7
血清4 ○○ ○○ ○○ ○● ●● ●● ○○ ●○ ●● ●● ●● ●●
血清8
CCID50 100 10 1 0.1 100 10 1 0.1 100 10 1 0.1
❖每个对照设两孔,血清、抗原的量各为0.025ml/孔, 补加稀释液0.025ml/孔,细胞对照孔的稀释液应为 0.05ml,然后全部加细胞悬液0.1ml/孔,密封后放 34.5℃培养5~7天。
病毒分离技术(四)
——中和抗体测定
结果判定
当100CCID50的抗原对照出现完全病变时,判定 最终结果
➢标准血清稀释(根据血清效价而定)
• standard serumⅠ: 1∶8000 • standard serum Ⅱ: 1∶2000 • standard serum Ⅲ: 1∶2000
病毒分离技术(四) ——中和抗体测定
标准毒株稀释(200CCID50/0.025ml)
(病毒滴定及攻击病毒含量的计算与稀释见附录2、3)
匀后,将这个稀释度的血清向下一个稀释度 移0.05ml,至最高稀释孔吹吸均匀后,弃去 0.05ml。
(在微量板上进行,板子标记和稀释详见附录1)
血清对照1∶4 血清稀释1∶4
1∶16 1∶64 1∶256 1∶1024 血清对照1∶4 血清稀释1∶4 1∶16 1∶64 1∶256 1∶1024
血清1 ○○ ○○ ◎○ ◎○ ◎○ ◎○ ○○ ○○ ◎○ ◎○ ◎○ ◎○
血清5
Ⅰ型板
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
血清2
血清3
○○○○
○○○○
◎○◎○
◎○◎○
◎○◎○
◎○◎○
○○○○
○○○○
◎○◎○
◎○◎○
◎○◎○
◎○◎○
血清6
血清7
血清4 ○○ ○○ ◎○ ◎○ ◎○ ◎○ ○○ ○○ ◎○ ◎○ ◎○ ◎○
血清8
病毒分离技术(四)
——中和抗体测定
待检血清稀释方法示例:
稀释度
1:4 1:16 1:64 1:256
1:1024
稀释液
0.15
0.15
0.15
0.15
0.15
血清
0.05 → 0.05 → 0.05 → 0.05 → 0.05 废0.05




移入它孔 (每孔×5) 0.025 0.025 0.025
0.025
病毒分离技术(四)
——中和抗体测定
待检血清稀释
➢用排枪向第2排孔及Ⅱ、Ⅲ型板的相应稀释度 的两排孔中,每孔移入0.025ml,原稀释孔保 留0.025ml。
病毒分离技术(四)
——中和抗体测定
目的
➢评价人群中抗脊灰病毒的免疫状态。 ➢评价OPV的有效性和免疫效果。
适用范围
➢人群脊髓灰质炎中和抗体效价的测定。 ➢免疫成功率的监测。
病毒分离技术(四)
——中和抗体测定
必备材料
必备材料
➢ 待检血清(灭活处理) ➢ 96孔微量板
➢ 稀释液(MM)
➢ 细胞悬液5~10×104/ml
病毒分离技术(四)病 结毒 果滴 判定 断 ——中和抗体测定示意图
100=1
●●●●●●● ●
●●●●●●● ● ●●●●●●● ●
SabineⅠ
●◎◎●◎◎◎ ◎
●●●●●●● ●
●●◎●●◎● ● ◎◎●◎●◎◎ ◎
SabineⅡ
◎◎◎◎◎◎◎ ◎
●●●●●●● ●
●●●●●●● ● ●◎●◎●◎◎ ●
SabineⅢ
◎◎◎◎◎◎◎ ◎
病毒分离技术(四)
——中和抗体测定
Spearsman—Karber公式: LogCCID50=Xm+1/2d-d(Pi/100)
Xm=所用病毒最低稀释度(最高浓度)的 对数
d=稀释度系数(倍数)的对数。 ∑Pi=各稀释度出现CPE百分数的总和。
病毒分离技术(四)
——中和抗体测定
病毒滴定结果的判定
➢SabineⅠ:
LogCCID50=0+0.5-1×(100+100+100+25)/100=-2.75
➢SabineⅡ:
LogCCID50=0+0.5-1×(100+75+25)/100=-1.50
➢SabineⅢ:
LogCCID50=0+0.5-1×(100+100+50)/100=-2.00
➢ 标准血清 (WHO CDC/EPI)
➢ 微量可调式移液器 ➢ 无菌吸尖/无菌吸管 ➢ 无菌1.5ml离心管/试

➢ 封板胶带
➢ 标准病毒(Sabin ⅠⅡⅢ) ➢ CO2孵箱 (滴度≥106.0CCID50/ml)
病毒分离技术(四)
——中和抗体测定
待检血清稀释(1∶4~1∶1024)
➢每份待检血清的稀释在Ⅰ型板的第1排进行。 ➢0.15ml稀释液,加入 0.05ml的血清,吹吸均
当最高稀释度的血清病毒混合液接种的2孔细胞中 有1孔不出现CPE,该稀释度的倒数即为该血清标 本的中和抗体滴度。
血清对照1∶4 血清稀释1∶4
1∶16 1∶64 1∶256 1∶1024 血清对照1∶4 血清稀释1∶4 1∶16 1∶64 1∶256 1∶1024
血清1 ○○ ○○ ○○ ○○ ●● ●● ○○ ○○ ○○ ○○ ○○ ○○
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