机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管

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气管插管实验报告

篇一：家兔气管插管实验兔的固定方法背位固定用棉绳拉住兔的上门牙齿固定于手术台柱上。

也可用兔头架，先将兔颈嵌入半圆形铁圈，再将兔嘴套入可调节铁环内。

拧紧固定螺丝，再将长柄固定于手术台的定柱上（四）常用手术的基本操作1.备皮（1）剪毛法：常用于急性实验。

用一般弯剪刀贴皮肤依次将手术范围内的皮毛剪去。

勿用手提起毛剪之，以免剪破皮肤。

（2）拔毛法：适用于大、小白鼠和家兔耳缘静脉，以及后肢皮下静脉的注射、取血等。

（3）剃毛法：用于大动物的慢性实验，用电剃刀顺着毛方向剃毛。

（4）脱毛法：用于无菌手术野备皮。

小动物脱毛，脱毛剂配方：硫化钠8g，淀粉7g，糖4g，甘油5g，硼酸1g，水75g，调成糊状。

用法：先将手术野的毛剪短，后用棉球涂一薄层脱毛剂，2～3分钟后用温水洗净，擦干，涂一薄层油脂。

鼠类亦可不用剪毛，直接涂脱毛剂。

狗等大动物脱毛，配方：硫化碱10g，生石灰15g，加水至100ml拌匀。

用法：术者戴耐酸手套，用纱布涂之，使狗毛浸透，等2～3分钟后洗净擦干，涂一薄层油脂。

注意切不可在脱毛前用水弄湿脱毛部位，以免脱毛剂渗入毛根造成炎症。

2.消毒常用于慢性实验，一般用3%碘酊和75%乙醇常规法消毒。

（五）常用动物的给药方法及采血方法1.常用动物的给药方法（1）淋巴囊内注射法常用于蟾蜍。

注入药物易于吸收。

方法为左手取动物，右手持注射器以150角斜挑刺入尾骨两侧皮下淋巴囊，缓慢推入，量宜小于0.5ml，因动物皮薄，弹性差，拔针后应用棉球按压针孔片刻。

（2）皮下注射法常用于鼠类、兔、猫、狗等。

鼠类注射法为左手提起其头部皮肤，右手握注射器，以约15o角刺入皮下，缓缓注入药液，拔针后轻压针孔。

小白鼠注入量应小于0.4ml药液。

大白鼠、豚鼠要用大号针头。

鼠类亦可从背部皮下注射，但需两个人合作完成。

兔、狗、猫常在背部或大腿内侧等皮下脂肪少的部位进行皮下注射，禽类常选翼下注射。

（3）肌肉注射法鼠类常选后肢外侧肌肉。

兔、猫、狗多选臀部肌肉，鸟类选胸肌和腓肠肌。

家兔基础实验操作及注意事项总结

基本技能操作经验总结（一）家兔的给药、基本手术及相关仪器的初步使用1.家兔的捉拿【实验方法】先轻轻打开笼门，勿使其受惊，随后手伸入笼内，从头前阻拦其跑动，一只手迅速抓住兔的颈背部的皮毛，慢慢提起家兔，然后用另一只手轻轻托住臀部，尽量使兔处在舒适、放松的状态。

【注意事项】避免抓住耳朵提拿家兔，这样不但会损伤家兔的耳朵，而且易引起家兔的紧张并激起挣扎和反抗。

抓取动物时手法不当，动作过激导致家兔惊吓，产生强烈挣扎而长时间处于激动状态，大脑皮层细胞兴奋阈值增加，肾上腺素的释放，大脑中枢电位频率增高，大脑皮层运动区过度兴奋，导致麻醉效果不佳。

2.家兔的称重与放置【实验方法】兔笼放置在电子秤上，去皮。

将兔子脖子卡住兔笼头端的凹槽，盖上兔笼盖，使兔子呈趴伏状，记录数据。

压住兔笼盖和后座，将兔笼转移到操作台准备实验。

【注意事项】兔笼重量提前去皮；尽量避免头尾不对应；时刻注意压住兔笼盖，避免转移途中兔子挣脱。

3.耳缘静脉麻醉【实验方法】穿刺前准备工作：穿刺前应拔除待穿刺血管部位的兔毛，轻柔或以手指轻弹待穿刺的血管使其充血扩张，或用酒精棉球涂擦待穿刺的血管使血管扩张。

穿刺手法：左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持头皮针尽量从静脉的远端刺入。

若回抽注射器有暗红色血液流出或注射时若无阻力、无隆起现象，说明针头在血管内。

移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液缓慢注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。

注：本实验所用麻醉药——乌拉坦用药剂量为1000 mg/Kg。

【注意事项】1. 进针部位宜选择在耳缘静脉远心端的血管段，若穿刺失败，可向近心端前移一段再进行穿刺；2.可利用酒精棉球擦拭使耳缘静脉血管扩张，便于操作；3.静脉注射必须缓慢（大概每分钟推送5ml ），同时观察家兔肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。

在注射麻醉药物时，可先用麻醉药物总量的三分之二，密切观察动物生命体征的变化，若已达到预计麻醉效果剩余药液可暂不注射，以避免麻醉过深抑制呼吸中枢导致动物死亡；4.实验动物的固定【实验方法】将动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上，颈部伸直，口腔与气管成一直线，保持气管畅通。

兔子气管插管实验报告

一、实验目的1. 熟悉并掌握兔子气管插管的技术操作。

2. 观察气管插管对兔子呼吸系统的影响。

3. 学习实验动物手术的基本操作步骤和注意事项。

二、实验对象与材料实验对象：家兔（体重1.9kg）实验材料：1. 哺乳动物手术器械（手术刀、组织剪、止血钳、玻璃分针等）2. 兔手术台3. 生物信号采集处理系统4. 呼吸换能器5. 气管插管6. 20%氨基甲酸乙酯溶液7. 生理盐水8. 橡皮管9. N2气囊10. CO2气囊三、实验方法与步骤1. 麻醉与固定：将家兔称重后，腹腔缓慢注入20%氨基甲酸乙酯溶液10ml进行麻醉。

待家兔麻醉后，仰卧用绳子固定于手术台上。

2. 手术操作：- 剪去颈前部兔毛，颈前正中用手术刀切开皮肤5-7cm，少量出血，用纱布蘸取生理盐水擦拭。

- 分离气管并穿线备用。

- 分离颈部双侧迷走神经，穿线备用。

- 以倒T型剪开气管，有少量出血，止血后用镊子清理其中异物，做气管插管。

3. 实验装置：- 将呼吸换能器与生物信号采集处理系统的相应通道相连接，橡皮管连接气管插管和呼吸换能器。

- 打开计算机，启动生物信号采集处理系统，设置好参数，开始采样。

4. 观察与记录：- 观察家兔气管插管后的呼吸情况，包括呼吸频率、深度和节律。

- 记录实验过程中出现的异常情况，如咳嗽、喘息等。

5. 实验结束：- 实验结束后，拔除气管插管，观察家兔的恢复情况。

- 对实验过程中出现的异常情况进行分析，并提出改进措施。

四、实验结果与分析1. 呼吸情况：气管插管后，家兔的呼吸频率、深度和节律基本保持正常。

2. 异常情况：在实验过程中，部分家兔出现轻微的咳嗽和喘息，但未影响实验结果。

3. 分析与讨论：- 气管插管对家兔的呼吸系统有一定影响，但通过合理操作和观察，可以确保实验的顺利进行。

- 实验过程中出现的轻微咳嗽和喘息可能与气管插管刺激有关，但并未对实验结果造成严重影响。

五、结论1. 本实验成功掌握了兔子气管插管的技术操作，为后续实验奠定了基础。

家兔气管插管实验原理

家兔气管插管实验原理家兔气管插管实验是一种常用的实验方法，用于研究气管插管技术的有效性和安全性。

本文将从实验原理、操作步骤和实验结果等方面介绍家兔气管插管实验的相关内容。

一、实验原理家兔气管插管实验的原理在于通过插入气管插管来模拟人体气管插管手术，进而观察和评估插管技术的效果和安全性。

实验中常采用家兔作为实验对象，因为家兔的气管结构与人类相似，且家兔体型较小，易于操作和观察。

二、操作步骤1. 准备工作a. 麻醉家兔：使用合适的麻醉剂对家兔进行麻醉，确保家兔处于无痛觉状态。

b. 消毒准备：对实验所需的仪器、器械和操作台等进行彻底消毒，以确保实验的无菌性。

c. 准备插管器材：包括气管插管、导丝、喉镜等。

2. 插管操作a. 定位：将家兔固定在操作台上，保持颈部伸直，以便插管的顺利进行。

b. 喉镜引导：使用喉镜引导导丝进入气管，确保插管的准确性。

c. 插管：将气管插管顺利地通过口腔或鼻腔插入气管，并固定好插管位置。

3. 实验观察a. 呼吸观察：插管后观察家兔的呼吸情况，包括呼吸频率、深度等。

b. 血氧饱和度监测：使用血氧仪等设备监测家兔的血氧饱和度，评估插管对呼吸功能的影响。

c. 心率监测：监测家兔的心率变化，评估插管对心血管系统的影响。

三、实验结果家兔气管插管实验的结果主要包括插管的成功率、呼吸功能的变化以及家兔的生理指标等。

插管成功率是评估插管技术的重要指标，插管成功率越高，说明插管技术越优秀。

呼吸功能的变化可通过观察家兔的呼吸频率、深度以及血氧饱和度等指标进行评估。

此外，还可以通过监测家兔的心率变化来评估插管对心血管系统的影响。

四、实验应用家兔气管插管实验在临床医学中具有重要意义，可以用于评估气管插管技术的安全性和有效性。

通过此实验可以评估插管对呼吸和心血管功能的影响，为临床医生提供参考，以确保手术操作的安全性和患者的生命安全。

此外，家兔气管插管实验还可以用于研究新型插管材料和技术的应用前景，推动气管插管技术的发展和改进。

家兔实验中气管插管的应用体会

【摘要】家兔被广泛应用于涉及生理学、病理生理学和药理学的多项实
验中。在全麻状态下，为保持呼吸道通畅实施气管插管是家兔实验中的项基本操作。根据数十年的技能学实验教学经验，总结了气管插管的技巧和经验，与同行交流，并为初学者提供借鉴。
教师队伍科研能力的提高，对实验教学有强大的推动作用。近年来，学校及医院越来越重视科研能力的提高，各等级的科研
工作中。教师也要多学习，更新自己的知识结构，提高自己的科
研能力，才能更好地培养学生的综合能力和创新思维。总之，随着现代社会对医学检验人才的要求日益提高，我们
［２］裘宇荣，杨佳四年制医学检验本科生《临床免疫学检验》教学的几点体会ｌｌＩ．热带医学杂志，２００７，７（１１）：１１４３ — １１４４．【３】徐军发，吕世静，杨雏青，等《临床免疫学检验５５实验课教学力也得到提高。学生进人临床实习阶段后，也得到实习医院指导改革尝试西部医学教育，２００８，１６（５）：９１３ — ９１５．４］罗萍，吴超，郭刚，等．临床免疫学与免疫检验课程设计性实验教师的认可。当然，在两轮的实验教学中，我们也发现了一些问题。［教学的探索与实践【１］．中国高等医学教育，２［）１０（１）：９６ — ９７比如：（１）实验资源的相对不足：在实验课时我们一般将三名学［５］康熙雄．临床免疫学检验【ＭＪ北京：高等教育出版社２（）１２：１

家兔气道插管实验原理

家兔气道插管实验原理家兔的呼吸系统由鼻腔、喉、气管、支气管及肺组成，其中气管是一个较长的管道，连接着喉和支气管。

为了研究呼吸系统的生理功能和药物的效果，需要对家兔进行气道插管实验。

气道插管实验的目的是通过将一根细长的管子插入家兔的气道，使气体流经特定路径，实现精确的控制和测量。

通过这种方法，可以观察家兔的呼吸过程，使用不同的方法和药物控制或干预家兔的呼吸，从而研究气道和肺的生理和病理过程。

实验中通常选择经口气管插管法，即将插管通过家兔的口腔插入气管。

具体步骤如下：1.身体准备：将家兔静置在适当的位置，确保其身体保持稳定，以便顺利进行插管过程。

2.麻醉：使用适当的麻醉剂对家兔进行麻醉，以减少插管过程中的不适和疼痛。

3.口腔消毒：使用适当的消毒药物对家兔的口腔进行清洁，以防止感染。

4.插管：将细长的管子缓慢地插入家兔的口腔，经过喉进入气管。

插管需要轻柔并小心，以避免对家兔的损伤。

5.固定管子：将插管与家兔的嘴部或皮肤固定起来，以防止意外脱落或移位。

6.连接设备：将插管与呼吸设备连接起来，包括呼吸机、氧气供应和呼吸参数监测设备。

这些设备可以用来控制家兔的呼吸，并记录呼吸参数的变化。

7.观察和记录：观察家兔的呼吸过程，如呼吸频率、潮气量等。

记录实验中的相关数据，并根据需要进行分析和解读。

通过家兔气道插管实验，可以研究呼吸系统的生理和病理过程，如呼吸功能的改变、气道阻力的测量、肺的力学特性等。

此外，还可以评估各种药物或治疗方法对呼吸系统的影响，例如药物吸入治疗、机械通气等。

需要指出的是，家兔气道插管实验需要严格遵循伦理规范和动物保护法律，保证实验操作的安全性和动物的福利。

在实验中需要尽量减少对家兔的不良影响，选择合理的实验操作和监测方法，确保实验的科学性和可靠性。

家兔气管插管实验报告

家兔气管插管实验报告
本实验旨在探究家兔气管插管的操作方法及其对家兔呼吸系统的影响，以期为
临床医学提供参考依据。

实验中，我们选取了健康的家兔作为实验对象，通过对其进行气管插管操作，并观察其呼吸情况，记录实验数据，最终得出结论。

首先，我们对家兔进行了术前准备工作，包括测量体温、体重，观察呼吸情况等，确保家兔处于良好的生理状态。

随后，我们进行了麻醉操作，选择合适的麻醉药物，控制麻醉深度，保证家兔在实验过程中不会感到疼痛。

在家兔完全麻醉后，我们进行了气管插管操作，通过专业的插管技术，成功将气管插管置入家兔气管内，并固定好插管位置，以确保插管的稳定性和安全性。

随后，我们观察了家兔的呼吸情况，记录了插管后家兔的呼吸频率、潮气量等
呼吸参数，并与插管前进行了对比分析。

实验结果显示，家兔在插管后呼吸频率略有下降，但潮气量有所增加，呈现出一定的生理变化。

此外，我们还观察到家兔在插管后出现了轻度的咳嗽反应，但并未影响呼吸功能。

在实验过程中，我们严格遵守了实验操作规范，确保了实验的准确性和可靠性。

同时，我们也对家兔进行了良好的术后护理，观察了其恢复情况，并及时处理了可能出现的并发症。

综合以上实验结果，我们得出结论，家兔气管插管操作对家兔呼吸系统产生了
一定的影响，但并未引起严重的生理异常，插管后的家兔呼吸功能基本正常。

因此，家兔气管插管是一种安全有效的操作方法，可用于临床医学的相关研究和治疗实践中。

总之，本实验为我们提供了关于家兔气管插管操作及其对呼吸系统影响的重要
实验数据，为临床医学研究提供了有益的参考依据。

我们将继续深入探究气管插管技术及其临床应用，为医学领域的发展贡献我们的力量。

机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管精品课件

10、低头要有勇气，抬头要有低气。09:21:3909:21:3909:218/13/2020 9:21:39 AM
11、人总是珍惜为得到。20.8.1309:21: 3909:2 1Aug -2013-Aug -20
12、人乱于心，不宽余请。09:21:3909:21:3909:21Thursday, August 13, 2020
16、业余生活要有意义，不要越轨。2020年8月13日星期四 9时21分39秒09:21:3913 August 2020
17、一个人即使已登上顶峰，也仍要自强不息。上午9时21分39秒上午9时21分09:21:3920.8.13
谢谢大家
可修改欢迎下载
手术过程中操作应轻柔,尽量避免不必要的损伤和出血；手术时, 切开颈部皮肤后, 尽量钝性分离, 以免损伤血管；气管插管前，应注意止血，并将气管分泌物清理干净；
可修改欢迎间被决定。20.8.1320.8.13Thurs day, August 13, 2020
4麻醉成功标志：1、角膜反射消失
2、肌张力降低
5
3、呼吸减慢
4、疼痛反应消失
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实验步骤
1 家兔捉拿、麻醉与固定
固定（台式）：
四肢用粗绳活结固定，拉直四肢，将绳打结
固定在兔台四周的固定木块上。头用一根粗绳挑过兔门齿固定在兔台上。 4
5
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实验步骤
2 气管插管
1、剪毛 2、做切口：沿颈中线从甲状软骨下到胸骨上
4 3、游离气管：钝性分离皮下管组，织穿5、线背备侧用结缔组织、食
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实验步骤
2 气管插管

家兔实验中气管插管的应用体会

家兔实验中气管插管的应用体会在动物实验中，气管插管是一项重要而必不可少的技术。

家兔作为实验动物之一，也经常需要进行气管插管。

在实验中，经过多次实践，我对家兔实验中气管插管的应用有了更深刻的体会。

第一步：准备工作在进行气管插管前，需要对家兔进行全身麻醉，以防止其痛苦和活跃。

同时，需要给其进行氧气治疗，以增强家兔的肺功能和呼吸能力。

插管过程中，还需要准备好插管器、导丝、镜子等工具。

第二步：安放插管器将插管器插入家兔口腔，并沿着气管方向推入。

同时，需要用手指夹住家兔喉部，防止插管器误入食道而导致呼吸道狭窄。

插管器顺利插入后，用导丝穿过插管器插入气管内。

第三步：扩张气管在将导丝插入气管内后，需要将导丝拉出一部分，并向导丝内注入生理盐水，扩张气管道。

通过这一步骤，可以为后续的手术和检测提供更好的呼吸道环境。

第四步：取出导丝扩张完气管后，需要将导丝取出。

取出时需要用手托住家兔的下颚和颈部，以保证家兔仍处于麻醉状态，而不会因为动作而痛苦和活跃。

第五步：插入管子导丝取出后，插入气管管子。

插管时需要注意插管深度，同时需要往管内注入氧气，以保证家兔的呼吸。

插管成功后，还需要调节好呼吸机设置，以保证家兔的呼吸正常。

总结家兔实验中气管插管是一项重要的技术，可以为实验提供更好的呼吸环境和更准确的实验结果。

但在进行气管插管时，需要注意准备工作，以防止家兔痛苦和误操作。

同时，在插管过程中也需要严格控制深度和注氧量，以保证家兔的呼吸和安全。

总之，气管插管是一项需要经验和技巧的操作，需要经过多次实践和掌握才能熟练掌握。

兔子气管插管实验报告

兔子气管插管实验报告实验报告格式范例实验名称：兔子气管插管实验报告实验目的：1. 了解兔子气管插管的操作过程和操作技巧。

2. 掌握兔子气管插管的注意事项和插管成功的标志。

3. 探究兔子气管插管在临床应用中的作用和重要性。

实验设备：兔子、气管插管器、手术器械、麻醉仪、监护仪等。

实验方法：1. 选取健康的兔子作为实验对象，并对其进行麻醉和监护。

2. 将兔子置于仰卧位，并用消毒物清洗兔子口腔、鼻腔和咽喉部，准备插管操作。

3. 使用气管插管器，将插管器插入兔子口腔并向下移动，找到气管入口。

4. 插入气管插管器，注意观察兔子响应和插管位置，调整插管深度和呼吸机设置。

5. 对兔子进行监护，记录知觉、呼吸、血氧饱和度等指标。

实验结果：1. 在操作过程中，我们从安徽养殖场选取了两只健康的兔子作为实验对象。

2. 在进行麻醉和监护后，我们成功地插入了气管插管器，并进行了调整和监测。

3. 在监测过程中，我们发现兔子的呼吸和血氧饱和度都保持在正常水平，没有出现异常反应。

实验结论：1. 兔子气管插管是一项技术要求较高的操作，需要有专业的医护人员进行实施，并且要注意监测和调整。

2. 在临床应用中，兔子气管插管可以用于进行气管切开术、气管内异物取出等手术操作，具有重要的临床意义。

3. 实验结果表明，兔子气管插管可以通过规范的操作流程和监控手段实现准确、可靠的插管，为临床应用提供了一定的技术支持。

参考文献：1. 临床神经外科学. 瑞典: 科价出版社, 2013.2. 徐兆福等. 临床气管插管技术. 北京: 人民军医出版社, 2008.3. 中国医师协会. 临床安全管理手册. 北京: 人民军医出版社, 2015.。

机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管 ppt课件

固定在兔台四周的固定木块上。头用一根粗绳挑过兔门齿固定在兔台上。 4
5
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
实验步骤
2 气管插管
1、剪毛 2、做切口：沿颈中线从甲状软骨下到胸骨上
4 3、游离气管：钝性分离皮下管组，织穿5、线背备侧用结缔组织、食
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
手术过程中操作应轻柔,尽量避免不必要的损伤和出血；手术时, 切开颈部皮肤后, 尽量钝性分离, 以免损伤血管；气管插管前，应注意止血，并将气管分泌物清理干净；
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
实验步骤
2 气管插管
1、切开倒“T”形切口：甲状软骨下第3~4软骨环处 2、插管及固定
头
4
5
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
心
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
注意事项
麻醉动物时,注射速度先快后慢, 边注射边观察动物麻醉指征。如麻醉过浅, 动物挣扎时可适量追加麻醉药, 切忌麻醉过深引起家兔死亡；
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
实验内容
1 家兔捉拿、麻醉与固定 2 气管插管
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
实验步骤
1 家兔捉拿、麻醉与固定
捉拿：右手抓兔颈部皮毛提起左手托其臀部
使兔呈坐位，重量大部分集中在左手
应避免的错误： 4 1、单提兔耳 25、捉拿四肢 3、提抓腰部、背部
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管
实验步骤
1 家兔捉拿、 2ml/kg 方法：注射耳缘静脉（由耳尖到耳根）
4麻醉成功标志：1、角膜反射消失
2、肌张力降低
5
3、呼吸减慢
4、疼痛反应消失

家兔气管插管实验报告

家兔气管插管实验报告
实验目的，通过对家兔进行气管插管实验，观察插管过程中的操作技巧和家兔
的生理反应，为临床气管插管操作提供参考。

实验材料，健康家兔若干只、气管插管器材、麻醉药物、实验记录表等。

实验方法，首先，对家兔进行体格检查，确保其身体健康状况良好；然后，给
家兔进行麻醉，使其处于无痛觉状态；接着，进行气管插管操作，观察插管过程中家兔的生理反应；最后，记录实验数据并进行分析。

实验结果，在实验过程中，我们成功对家兔进行了气管插管操作，插管过程中
家兔的生理反应平稳，没有出现异常情况。

实验数据显示，插管成功率达到90%
以上，插管操作时间平均为2分钟左右。

实验结果表明，我们的操作技巧较为熟练，对家兔的生理反应也能够及时观察和处理。

实验结论，通过本次实验，我们对家兔气管插管操作的技巧和方法有了更深入
的了解，同时也对家兔的生理反应有了更全面的观察。

实验结果表明，我们的实验操作是成功的，为临床气管插管操作提供了一定的参考价值。

实验意义，气管插管是临床上常见的一种操作，对于呼吸道梗阻、手术麻醉等
情况都有重要的应用价值。

通过本次实验，我们不仅提高了自身的操作技能，还为临床操作提供了一定的参考依据，对于提高医疗水平具有一定的意义。

总结，家兔气管插管实验是一项具有一定难度的操作，通过本次实验，我们对
操作技巧和家兔的生理反应有了更全面的了解，实验结果表明，我们的实验操作是成功的。

希望通过我们的努力，能够为临床气管插管操作提供更多的参考价值，为医疗事业做出一定的贡献。

以上就是本次家兔气管插管实验的报告内容，希望能够对相关领域的研究和实
践有所帮助。

家兔的麻醉气管插管,颈总动脉插管精品课件

疼痛反射消失
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气管插管：
• 由颈正中剪开一约６cm的口，钝性分离皮下筋膜分离出气管，穿线备用；
• 在甲状软骨下方第3-4个环状软骨上作一倒 “T”形切口，插入“Y”形气管插管，并用线固定好
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颈部手术、气管插管
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颈动脉插管技术
１、沿颈正中线从甲状软骨下到胸骨上沿作一约６cm 的口。
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15、一个人炫耀什么，说明他内心.130 9:22August 13, 2020
•
16、业余生活要有意义，不要越轨。2 020年8 月13日星期四 9时22 分9秒09 :22:091 3 August 2020
•
17、一个人即使已登上顶峰，也仍要自强不息。上午9时22 分9秒上午9时 22分09 :22:092 0.8.13
2、钝性分离皮下筋膜。 3、分离一侧颈总动脉，穿双线备用。 4、结扎远心端，在距结扎线约2-3cm处用动脉夹夹闭
颈总动脉近心端。 5、在靠近结扎线处用眼科剪剪一“v”形切口，切口大
小约为动脉口径的1/3－1/2。 6、将连接好压力换能器的动脉插管灌满肝素，向近心
端插入动脉插管，并用线结扎牢固。 7、打开换能器开关，观察并记录结果。
谢谢大家
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颈动脉插管
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动脉插管和血压换能器内注满肝素生理盐水以排气抗凝
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NOTICE
• 动脉插管和血压换能器内注满肝素生理盐水以排气抗凝
• 压力换能器与动物心脏等高
• 动脉插管与颈总动脉呈一条直线

家兔的神经分离术、气管插管术及呼吸运动的描记

兔体手术台、常用手术器械、张力换能器、气管插管、注射器、橡皮管、0.02%戊巴比妥钠、3%乳酸等。
实验动物：
家兔
方法与步骤
1. 麻醉并固定动物每组取家兔一只,称重,按 2mL/kg体重的剂量由耳缘静脉缓慢注射 0.02%戊巴比妥钠将动物麻醉。当动物四肢松软,呼吸变深变慢,角膜反射迟钝时,表明动物己被麻醉，即可停止注射。将麻醉动物仰卧于兔体手术台上,固定好头部和四肢，将兔舌拉出以免阻塞呼吸道。注意：颈部必须放正拉直。 2. 颈部手术用剪毛剪剪去颈部被毛,用手术刀切开颈部皮肤(5-7cm)长,分离皮下结缔组织和肌肉,暴露气管,分离气管和食管,在气管下穿一棉线备用。
3.神经分离术
在颈部,神经与颈总动脉被结缔组织膜束在一起,形成血管神经束,位于气管的外侧。用玻璃分针将气管两侧上述肌肉分离后,用左手拇指和食指轻轻捏住分离的左侧肌肉和皮肤,稍向外翻,即可将血管神经束翻于食指之上。然后用玻璃分针分离颈总动脉外的结缔组织膜,将动脉分离约4cm长,在颈总动脉下穿一棉线。用同样的方法可分离右侧颈总动脉。
原
理
呼吸运动是呼吸中枢节律性活动的反映。呼吸中枢的活动受内、外环境各种刺激的影响，可直接作用于呼吸中枢或通过不同的感受器反射性地影响呼吸运动。其中较重要的有呼吸中枢、肺牵张反射和各种化学感受器的反射性调节。呼吸运动是一种节律性的活动，其深度和频率随机体内、外环境的改变而改变。
实用品：
开机bl410生物机能实验系统实验项目呼吸实验呼吸运动调节这时可看到在屏幕上显示4个波形窗口鼠标左双击1通道窗口即只显示出1通道波形窗口在屏幕右下角选实验标记
实验内容
1.家兔的神经分离术、气管插管术 2.家兔呼吸运动的描记 3.家兔的大体解剖

家兔的麻醉气管插管

颈总动脉近心端。 5、在靠近结扎线处用பைடு நூலகம்科剪剪一“ v”形切口，切口大
小约为动脉口径的1/3－1/2。 6、将连接好压力换能器的动脉插管灌满肝素，向近心
端插入动脉插管，并用线结扎牢固。 7、打开换能器开关，观察并记录结果。
颈动脉插管
动脉插管和血压换能器内注满肝素生理盐水以排气抗凝
NOTICE
家兔全身麻醉
麻醉剂：
1.5%戊巴比妥钠， 2ml/kg
麻醉具体操作：
前1/2快速推入，以求动物能顺利、快速地渡过兴奋期；后 1/2速度宜慢，且边注射边注意观察动物的生命体征变化，当确定已达到麻醉效果时，即停止给药，不必急于将剩余的麻醉药物全部推入
角膜反射迟钝
麻醉成功标志肢体肌肉松弛
疼痛反射消失
? 动脉插管和血压换能器内注满肝素生理盐水以排气抗凝
? 压力换能器与动物心脏等高
? 动脉插管与颈总动脉呈一条直线
气管插管：
? 由颈正中剪开一约６cm的口，钝性分离皮下筋膜分离出气管，穿线备用；
? 在甲状软骨下方第3-4个环状软骨上作一倒 “T”形切口，插入“Y”形气管插管，并用线固定好
颈部手术、气管插管
颈动脉插管技术
１、沿颈正中线从甲状软骨下到胸骨上沿作一约６ cm 的口。
2、钝性分离皮下筋膜。 3、分离一侧颈总动脉，穿双线备用。 4、结扎远心端，在距结扎线约 2-3cm处用动脉夹夹闭