非无菌产品微生物检查：微生物计数法
USP2022年版〈61〉非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法-中文版
USP43 <61>非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法介绍下文所述的试验将允许在有氧条件下生长的嗜温细菌和真菌的定量计数。
这些测试主要用于确定一种物质或制剂是否符合既定的微生物质量标准。
当用于此类目的时，应按以下的规定进行，包括要样品取样量，和解释判断如下所述结果。
本方法不适用于含有活微生物作为活性成分的产品。
可采用包括自动化方法在内的替代微生物学方法，前提是已经证明与药典方法等效。
一般程序在避免待检产品的受到外来微生物污染的条件下进行测定。
防止污染的措施必须确保不会影响待检产品中微生物的检出。
如果待检产品具有抗菌活性，则应尽可能将其去除或中和。
如果灭活剂用于此目的，必须证明其微生物有效性和无毒性。
如果表面活性物质用于样品制备，应确认其对微生物无毒性，并且与所用的任何灭活剂相容性。
计数方法按照说明，使用薄膜过滤法或平板计数法之一。
最可能数(MPN)法通常用于微生物计数准确度较差；但是，对于某些生物负荷非常低的产品，这可能是最合适的方法。
方法的选择是基于产品的性质和微生物限度标准等因素。
所选方法必须允许测试足够的样本量，以判断是否符合质量标准。
所选方法的适用性必须经确认。
生长促进试验、计数方法和阴性对照的适用性一般要求必须建立检测待测产品中微生物的能力。
如果引入了可能影响测试结果的测试性能或产品变化，则必须确认其适用性。
试验菌株的制备使用试验菌株的标准化稳定悬浮液或按如下所述进行制备。
采用适宜的菌种保藏技术，以确保用于接种的微生物的传代次数不超过5代。
如表1所述，分别培养每种细菌和真菌测试菌株。
霉孢子悬浮，可将0.05%的聚山梨醇酯80加入该缓冲液中。
悬浮液在2h之内使用，或存放在2～8℃条件下24h内使用。
作为制备并稀释黑曲霉或枯草杆菌营养细胞的新鲜悬浮液的替代方法，可制备稳定的孢子悬浮液，然后将适量的孢子悬浮液用于试验接种。
稳定的孢子悬浮液可在2～8℃下保存，保存期需经过时间验证。
752015年药典 通则1105 非无菌产品微生物限度检查
752015年药典通则1105 非无菌产品微生物限度检查通则1105非无菌产品微生物限度检查：微生物计数；微生物计数法系用于能在有氧条件下生长的嗜温细菌和；微生物计数试验环境应符合微生物限度检查的要求；如供试品有抗菌活性，应尽可能去除或中和；供试液制备时如果使用了表面活性剂，应确认其对微生；计数方法；计数方法包括平皿法、薄膜过滤法和最可能数法（Mo；供试品检查时,应根据供试品理化特性和微生物限度标；计数培养基适用通则1105 非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法微生物计数法系用于能在有氧条件下生长的嗜温细菌和真菌的计数。
当本法用于检查非无菌制剂及其原、辅料等是否符合规定的微生物限度标准时，应按下述规定进行检验，包括样品的取样量和结果的判断等。
除另有规定外，本法不适用于活菌制剂的检查。
微生物计数试验环境应符合微生物限度检查的要求。
检验全过程必须严格遵守无菌操作，防止再污染，防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。
单向流空气区域、工作台面及环境应定期进行监测。
如供试品有抗菌活性，应尽可能去除或中和。
供试品检查时, 若使用了中和剂或灭活剂，应确认其有效性及对微生物无毒性。
供试液制备时如果使用了表面活性剂，应确认其对微生物无毒性以及与所使用中和剂或灭活剂的相容性。
计数方法计数方法包括平皿法、薄膜过滤法和最可能数法（Most-Probable-Number Method，简称MPN 法）。
MPN 法用于微生物计数时精确度较差，但对于某些微生物污染量很小的供试品，MPN 法可能是更适合的方法。
供试品检查时,应根据供试品理化特性和微生物限度标准等因素选择计数方法，检测的样品量应能保证所获得的试验结果能够判断供试品是否符合规定。
所选方法的适用性须经确认。
计数培养基适用性检查和供试品计数方法适用性试验供试品微生物计数中所使用的培养基应进行适用性检查。
供试品的微生物计数方法应进行方法适用性试验，以确认所采用的方法适合于该产品的微生物计数。
非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法(15版中国药典公示稿)
胰酪大豆胨 琼脂培养基 和胰酪大豆 胨液体培养 基，培养温 度 30 ～ 35℃，培养 时间不超过 3 天，接种 量不大于 100cfu
胰酪大豆胨 琼脂培养基 / 胰酪大豆 胨液体培养 基 （ MPN 法），培养 温 度 30 ～ 35 ℃ ， 培 养 时间不超过 3 天，接种量 不大于 100cfu
计数培养基适用性检查 计数方法适用性试验
试验菌株
试验菌液 的制备
需氧菌总数 计数
霉菌和酵 母菌总数
计数
需氧菌总数 计数
霉菌和酵 母菌总数
计数
金黄色葡萄球菌 (Staphylococcus
aureus) 〔CMCC(B)26 003)〕
胰酪大豆 胨琼脂培 养基或胰 酪大豆胨 液体培养 基，培养温 度 30 ～ 35℃，培养 时 间 18 ～ 24 小时
获得丰富
的孢子
注：当需用玫瑰红钠琼脂培养基测定霉菌和酵母菌总数时，应进行培养基适用性检查，
检查方法同沙氏葡萄糖琼脂培过 5 代（从菌种保藏中心获得的干燥菌
种为第 0 代），并采用适宜的菌种保藏技术进行保存，以保证试验菌株的生物学
特性。计数培养基适用性检查和计数方法适用性试验用菌株见表 1。
胰酪大豆胨 琼脂培养基 （ MPN 法 不 适用），培 养温度 30～ 35 ℃ ， 培 养 时间不超过 5 天，接种量 不大于 100cfu
沙氏葡萄 糖琼脂培 养基，培养 温度 20～ 25℃，培养 时间不超 过 5 天，接 种量不大 于 100cfu
沙氏葡萄 胰酪大豆胨 沙 氏 葡 萄 胰酪大豆胨 沙氏葡萄
糖琼脂培 琼 脂 培 养 糖 琼 脂 培 琼脂培养基 糖琼脂培
黑曲霉
养基或马 基，培养温 养基，培养 （ MPN 法 不 养基，培养
2015版中国药典微生物限度解析
《中国药典》2015年版修订后将分为三个附录： – 1、非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法 – 2、非无菌产品微生物限度检查：控制菌检查法 – 3、非无菌药品微生物限度标准
1.非无菌产品微生物限度检查： ----微生物计数法
1.1 总则：环境、要求 1.2 计数方法：平皿法、薄膜过滤法、最可能数法
1.4.2供试品检查
• 供试液制备
– 根据供试品的理化特性与生物学特性,采取适 宜的方法制备供试液。供试液制备若需加温 时,应均匀加热,且温度不应超过 45℃。供试 液从制备至加入检验用培养基,不得超过 1小 时。
– 常用的供试液制备方法如下。如果下列供试 液制备方法经确认均不适用，应建立其他适 宜的方法。
每一试验菌株平行制备2 管或2 个平皿；接种量不大于100cfu ； 同时，用相应的对照培养基替代被检培养基进行上述试验。 结果判定：
被检固体培养基上的菌落平均数与对照培养基上的菌落平 均数的比值应在0.5-2 范围内，且菌落形态大小应与对 照培养基上的菌落一致；被检液体培养基管与对照培 养基管比较，试验菌应生长良好。
• 本检查法可采用替代的微生物检查法，包括自动 检测方法，但必须证明替代方法等效于药典规定 的检查方法。
不适用于活菌制剂的检查
1.1 总则：
• 环境： – 微生物计数试验环境应符合微生物限度检查的要 求。(在不低于GMP 现行版要求的D 级洁净环境 、局部洁净度不低于B 级的单向流空气区域内进 行)【10版：在环境洁净度10000级下的局部洁净 度100级的单向流空气区域内】【 20版：不低于 D级背景下的生物安全柜或B级洁净区域内进行】 – 检验全过程必须严格遵守无菌操作，防止再污染 ，防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检 出。 – 单向流空气区域、工作台面及环境应定期进行监 测。
1105非无菌产品微生物限度检查微生物计数法
1105 非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法
微生物计数法系用于能在有氧条件下生长的嗜温细菌和真菌的计数。 当本法用于检查非无菌制剂及其原、辅料等是否符合相应规定的微生物限度标准时， 应按下述规定进行检验，包括样品的取样量和结果的判断等。除另有规定外，本法不适用于 活菌制剂的检查。 微生物计数试验环境应符合微生物限度检查的要求。检验全过程必须严格遵守无菌 操作，防止再污染，防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。单向流空气区域、 工作台面及环境应定期进行监测。 如供试品有抗菌活性，应尽可能去除或中和。供试品检查时, 若使用了中和剂或灭活 剂，应确认其有效性及对微生物无毒性。 供试液制备时如果使用了表面活性剂，应确认其对微生物无毒性以及与所使用中和剂 或灭活剂的相容性。
计数培养基适用性检查和供试品计数方法适用性试验
供试品微生物计数中所使用的培养基应进行适用性检查。 供试品的微生物计数方法应进行方法适用性试验，以确认所采用的方法适合于该产品 的微生物计数。 若检验程序或产品发生变化可能影响检验结果时，计数方法应重新进行适用性试验。
2020 年版第一次征求意见稿
表 1 试验菌液的制备和使用
⒉ 接种和稀释 按表 1 规定及下列要求进行供试液的接种和稀释,制备微生物回收试验用供试液。 所加菌液的体积应不超过供试液体积的 1%。为确认供试品中的微生物能被充分检出，首 先应选择最低稀释级的供试液进行计数方法适用性试验。 （1）试验组 取上述制备好的供试液，加入试验菌液，混匀，使每 1ml 供试液或 每张滤膜所滤过的供试液中含菌量不大于 100cfu。 （2）供试品对照组 取制备好的供试液, 以稀释液代替菌液同试验组操作。 （3）菌液对照组 取不含中和剂及灭活剂的相应稀释液替代供试液,按试验组操作 加入试验菌液并进行微生物回收试验。 若因供试品抗菌活性或溶解性较差的原因导致无法选择最低稀释级的供试液进行方 法适用性试验时，应采用适宜的方法对供试液进行进一步的处理。如果供试品对微生物 生长的抑制作用无法以其他方法消除，供试液可经过中和、稀释或薄膜过滤处理后再加 入试验菌悬液进行方法适应性试验。 ⒊ 抗菌活性的去除或灭活 供试液接种后，按下列“微生物回收”规定的方法进行微生物计数。若试验组菌落 数减去供试品对照组菌落数的值小于菌液对照组菌数值的 50%，可采用下述方法消除供 试品的抑菌活性。 ⑴ 增加稀释液或培养基体积。 ⑵ 加入适宜的中和剂或灭活剂。 中和剂或灭活剂（表 2）可用于消除抗菌剂的抑菌活性，最好在稀释剂或培养基灭 菌前加入。若使用中和剂或灭活剂，试验中应设中和剂或灭活剂对照组，即取相应量稀 释液替代供试品同试验组操作，以确认其有效性和对微生物无毒性。中和剂或灭活剂对 照组的菌落数与菌液对照组的菌落数的比值应在 0.5～2 范围内。
1105非无菌产品微生物限
1105非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法中菌药典2015年版表3供试品的最少检验量供试品供试品装量每支供试品接人每种培养基的最少量液体制剂^I m llm l<C V^40m l40m K V< 100m lV>100m l全量半量，但不得少于l m l20m l10%但不少于20m l固体制剂M〈50m g50m g^M<C300m g300m g^M<C5g全量半量150m g500m g半量（生物制品）生物制品的原液及半成品半量医疗器具外科用敷料棉花及纱布缝合线、一次性医用材料带导管的一次性医疗器具(如输液袋）其他医疗器具取lOOmg 或lc m X 3cm整个材料①二分之一内表面积整个器具®(切碎或拆散开）①如果医用器械体积过大，培养基用量可在2000m l以上，将其完全浸没。
1105非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法微生物计数法系用于能在有氧条件下生长的嗜温细菌和真菌的计数。
当本法用于检查非无菌制剂及其原、辅料等是否符合相应的微生物限度标准时，应按下述规定进行检验，包括样品的取样量和结果的判断等。
除另有规定外，本法不适用于活菌制剂的检査。
微生物计数试验环境应符合微生物限度检查的要求。
检验全过程必须严格遵守无菌操作，防止再污染，防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。
单向流空气区域、工作台面及环境应定期进行监测。
如供试品有抗菌活性，应尽可能去除或中和。
供试品检査时，若使用了中和剂或灭活剂，应确认其有效性及对微生物无毒性。
供试液制备时如果使用了表面活性剂，应确认其对微生物无毒性以及与所使用中和剂或灭活剂的相容性。
计数方法计数方法包括平皿法、薄膜过滤法和最可能数法（M ost-P rob a b l e-Numb e r M e tho d,简称MP N法）。
MP N法用于微生物计数时精确度较差，但对于某些微生物污染量很小的供试品，M P N法可能是更适合的方法。
非无菌制剂的微生物限度检查法：微生物计数法
困难或不确定,可将该管培养物转接种至胰蛋白大豆肉汤培养基或胰蛋 白大豆琼脂培养基,在同一温度条件下培养1~2天,在进行结果判断。根 据生长管数从表3查对每1g或每1mL供试品中最大可能的菌落数。
试验菌株 试验菌的制 备 培养基促生产试验 总需氧菌细 菌数测定 金黄色葡萄球 菌ATCC 6538 NCIMB 9518 CIP 4.83 NBRC 13276 胰蛋白大豆 琼脂或胰蛋 白大豆肉汤 30~35℃ 18~24小时 胰蛋白大豆 琼脂或胰蛋 白大豆肉汤 ≤100 cfu 30~35℃ ≤3天 胰蛋白大豆 琼脂或胰蛋 白大豆肉汤 ≤100 cfu 30~35℃ ≤3天 胰蛋白大豆 琼脂或胰蛋 白大豆肉汤 ≤100 cfu 总酵母菌和 霉菌数测定 供试品计数方法的适用性试 验 总需氧细菌 数测定 胰蛋白大豆 琼脂/MPN胰 蛋白大豆肉 汤 ≤100 cfu 30~35℃ ≤3天 胰蛋白大豆 琼脂/MPN胰 蛋白大豆肉 汤 ≤100 cfu 30~35℃ ≤3天 胰蛋白大豆 琼脂/MPN胰 蛋白大豆肉 汤 总酵母菌和 霉菌数测定
供试品计数方法的适用性确认试验
供试液制备
根据供试品的理化特性选择供试液的制备方法，若下列制备方法经 确认均不适宜，应采用适宜的替代方法。 水溶性产品 取规定量，用pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液、pH7.2磷 酸盐缓冲液或胰蛋白大豆肉汤培养基溶解或稀释，一般制成1：10供试 液。如果需要，调节供试液pH值至6~8。必要时，用同一稀释液将供试 液进一步稀释。 水不溶性非油脂类产品 取规定量，用pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓 冲液、pH7.2磷酸盐缓冲液或胰蛋白大豆肉汤培养基制成1：10的混悬 液。引湿性较差的供试品，可在稀释剂中加入表面活性剂助悬，如1g/L 的聚山梨酯80。如果需要，调节供试液pH值至6~8。必要时，用同一稀 释液将供试液进一步稀释。 油脂类产品 取规定量，溶解于经过滤除菌的无菌十四烷酸异丙酯 中，或与最少量并能使供试品乳化的无菌聚山梨酯80或其他无抑菌性表 面活性剂充分混合，必要时可采用不超过40℃的热的稀释剂，特殊情况 下最多不超过45℃，若需要乳化可在水浴中进行，然后加入预热的稀释 剂使成1：10供试液，保持温度，小心混合，并在最短时间内形成乳液 状。必要时，用含适宜浓度的无菌聚山梨酯80或其他非抑制性无菌表面 活性剂的稀释剂进一步10倍系列稀释。 液体或固体的气雾剂 取规定量容器数，从每一供试品容器中取全量 或一定剂量的样品无菌转移至薄膜过滤器或无菌容器中进一步取样检 查。 贴剂 取规定数量贴剂，去除贴剂保护层（释放内衬），将具有黏 性的一面朝上置无菌玻璃板或塑料垫上。用适宜的无菌多孔材料（如无 菌纱布）覆盖在黏性面上，防止贴剂相互粘连，然后将其置于适宜体积 并含有灭活剂（如聚山梨酯80 或卵磷脂）的稀释剂中，剧烈振摇至少 30分钟。
【2020版中国药典】通则-非无菌微生物限度检查
【2020版中国药典】通则-非无菌微生物限度检查1105非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法
微生物计数法系用于能在有氧条件下生长的嗜温细菌和真菌的计数。
当本法用于检查非无菌制剂及其原、辅料等是否符合规定的微生物限度标准时，应按下述规定进行检验，包括样品的取样量和结果的判断等。
除另有规定外，本法不适用于活菌制剂的检查。
学习：将旧版的“相应”更换为“规定”，更便于按照1107进行判定执行。
微生物计数试验环境应符合微生物限度检查的要求。
检验全过程必须严格遵守无菌操作，防止再污染，防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。
洁净空气区域、工作台面及环境应定期进行监测。
学习：将旧版的“单向流空气区域”更换为“洁净空气区域”。
计数方法
……供试品检查时，应根据供试品理化特性和微生物限度标准等因素选择计数方法，检测的样品量应能保证所获得的试验结果能够判断供试品是否符合规定。
所选方法的适用性须经确认。
……
提示：后文增加了对于“贵重药品、微量包装药品”的检验量的更全面的表述，因注意结合此处的要求。
计数培养基适用性检查和供试品计数方法适用性试验
……菌液制备……取黑曲霉的新鲜培养物加人适量含0.05%(ml/ml)聚山梨酯80的pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或……
学习：此处改动同无菌检查法，将“3~5ml”的具体量调整为“适量”，便于根据孢子的量灵活掌握菌液制备方法。
培养基适用性检查
微生物计数用的商品化的预制培养基、由脱水培养基或按处方配制的培养基均应进行培养基适用性检查。
学习：类似于无菌检查法，此处将“成品培养基”修改为“商品。
非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法
非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法浙江省食品药品检验研究院郑小玲计数方法的概况主要内容1计数培养基适用性检查2供试品计数方法适用性检查3供试品检查4结果判断5平皿法薄膜过滤法MPN 法有氧条件下生长的嗜温细菌和真菌的计数不适用活菌制剂的检查受控环境洁净环境下的局部洁净度不低于B 级可采用替代方法确认方法的适用性细菌数：营养琼脂培养基，30～35℃，3天霉菌和酵母菌数：玫瑰红钠琼脂培养基，20～28℃，5天。
酵母菌计数：酵母浸出粉胨葡萄糖琼脂需氧菌总数（TAMC)：胰酪大豆胨琼脂（TSA），胰酪大胨肉汤（TSB）30～35℃，3～5天霉菌和酵母菌总数（TYMC)：沙氏葡萄糖琼脂培养基，20～25℃，5～7天修订后•菌种及菌液制备菌种：标准菌株(CMCC)，传代次数不超过5代金葡、铜绿、枯草、白念、黑曲菌液制备：用pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液制菌悬液。
菌液制备后室温放置，2小时内使用；2～8℃，24小时内使用。
黑曲霉孢子悬液可保存在2～8℃，在验证过的贮存期内使用。
•阴性对照以稀释剂进行阴性对照组，应无菌生长TSA、TSB、SDA：1、实验用菌株：TSA:金葡、铜绿、枯草、白念、黑曲TSB：金葡、铜绿、枯草SDA:白念、黑曲2、接种：TSA、SDA:涂布法、倾注法。
TSB：直接接入接种量不大于100cfu，细菌30～35℃培养不超过3天，真菌20～25℃培养不超过5天。
每一试验菌株平行制备2管或2个平皿。
对照培养基替代被检培养基同法操作。
3、TSA、SDA与对照培养基比较，回收率为50%～200%，菌落形态与对照培养基一致。
TSB与对照培养基比较，试验菌应生长良好。
玫瑰红钠培养基、SDA+抗生素、选择性培养基供试液制备1.液体供试品2.固体、半固体或黏稠性供试品3.需用特殊方法制备供试液的供试品（1）非水溶性供试品（2）膜剂（3）肠溶及结肠溶制剂（4）气雾剂、喷雾剂（5）贴剂（6）具抑菌活性的供试品1.水溶性供试品2.水不溶性非油脂类供试品3.油脂类供试品4.需用特殊方法制备供试液的供试品（1）膜剂（2）肠溶及结肠溶制剂（3）气雾剂、喷雾剂（4）贴膏剂修订后如药典上所列方法经确认不适用，可采用其他适宜方法。
USP61非无菌产品的微生物检查：微生物的计数检查
＜61＞微生物试验（61）非无菌产品的微生物检查：微生物计数试验序言后面描述的试验对可在好氧条件下生长的嗜温细菌和真菌进行定量计数。
设计此试验主要是为了确定一种原料药和制剂的微生物质量是否符合已建立的质量标准。
作此用途时，遵循下面给出的说明，包括采样编号，并按照下面的说明判定结果。
此方法不适用于以活的微生物作为活性成份的产品。
也可以使用其它的微生物规程，包括自动化方法，只要它们和已经证明的药典方法等效。
通用规程在设计好的条件下进行检定，避免供试品受到外部微生物的污染。
避免污染所采取的预防措施必须不影响试验中出现的任何微生物。
如果供试品中含有抑菌活性，那么应当尽可能的将其去除或中和。
如果用灭活剂来达到此目的，那么必须证明其有效性以及对微生物不具有毒性。
如果表面活性剂用于样品制备，那么必须证明其对微生物的无毒性及与所用灭活剂的相容性。
计数方法如下所示，使用膜过滤法或平板计数法其中一种。
通常微生物计数用最大几率计数（MPN）法是最不精确的；但是，对生物负荷极低的特定产品组，它可能是最为适宜的方法。
选择方法取决于这些因素，如产品性质及要求的微生物限度。
选择的方法必须允许对足量的样品量进行试验，从而判断是否符合质量标准。
必须建立所选方法的适用性。
促生长试验和计数方法的适用性一般考虑必须建立实验检出供试品中所含微生物的能力。
如果试验操作或产品方面引入了可能影响试验结果的变更，则必须确认适用性。
试验菌株的制备使用标准化的稳定试验菌悬液，或者按下述说明制备。
使用种子批培养保存技术（生产菌种系统）以便从原始主种子批中取出用于接种的活菌传代不超过5次。
每种细菌和真菌试验菌株的生长情况在表1中分别详细说明。
使用pH 7.0的氯化钠-蛋白胨缓冲液或pH 7.2的磷酸盐缓冲液制备试验悬液；为了悬浮黑曲霉孢子，可加入0.05%的聚山梨醇酯80（吐温80）。
在2小时内使用悬液，如果在2°到8°保存，可在24小时内使用。
国际协调会非灭菌产品微生物检查ICH(11版)
非灭菌产品微生物检查：微生物计数法（ICH）概述本检查法可用于好氧的嗜温细菌和真菌的计数。
当本检查法用于确定非规定灭菌制剂及其原、辅料是否符合相应的微生物限度标准时，按下列规定进行检验，包括其取样量和结果判断等。
本检查法不适用于以活菌作为活性成分的制剂的微生物限度检查。
本检查法可采用替代的微生物计数方法，包括自动测定方法，但必须验证替代方法优于或与药典方法相当。
一般程序本检查应在严格避免外来微生物污染供试品的实验条件下进行，防止微生物污染的措施不得影响供试品中污染微生物的检出如果供试品具有抗菌活性，应尽可能去除或中和。
供试品检查时，如果使用了灭活剂，应对其有效性及对微生物的无毒性进行验证。
如果在供试液制备时使用了表面活性剂，应验证其对微生物无毒性及与灭活剂的相容性。
计数方法检查时可采用薄膜过滤法或下列平板计数法中的一种。
最大可能数法（Most-Probabl -Number, MPN）用于微生物计数其精确度较低，但当供试品的微生物污染程度极低时，MPN法可能是最适宜的方法。
检查时根据供试品的特性和其微生物限度标准选择计数方法。
该方法应满足所用的供试品检验量足以符合试验结果的判断。
供试品计数方法的适用性必须确定。
培养基促生长试验验和计数方法适用性确定试验总则供试品中污染的微生物计数方法的适用性应进行确认。
若检验程序或供试品发生变化可能影响检验结果时，计数方法的适用性应重新进行确认。
菌液制备试验菌液可用标准稳定的菌悬液（商品化）或按下列规定程序制备。
试验菌应采用适宜的保存技术保存，试验所用的菌株传代次数不得超过5代（从菌种保存中心获得的菌种为第0代）。
各试验菌株的培养及接种量见表1。
使用pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或者pH7.2磷酸盐缓冲液制备菌悬液，黑曲霉孢子悬液可用含0.05％（v/v）聚山梨酯80的缓冲液。
菌悬液应在2小时内使用，若保存在2～8℃的菌悬液可以在24小时内使用。
相对体积的黑曲霉和枯草芽孢杆菌的稳定孢子悬液可替代新鲜的孢子悬液，稳定孢子悬液可保存在2～8℃，并在验证过的贮存期内使用。
1105非无菌产品微生物限度检查微生物计数法
胰酪大豆胨琼脂 培养基和胰酪大 豆胨液体培养基， 培 养 温 度 30 ～ 35℃，培养时间不 超过3 天，接种量 不大于 100cfu
计数方法适用性试验
需氧菌
霉菌和酵母菌
总数Байду номын сангаас数
总数计数
胰酪大豆胨琼脂
培养基或大豆胨
液体培养基（MPN）
法，培养温度 30～
35℃，培养时间不
超过 3 天，接种
量不 大于100cfu
表 1 试验菌液的制备和使用
试验菌株
金黄色葡萄球菌 (Staphylococcus aureus) 〔CMCC(B)26
003〕
试验菌液 的制备
胰酪大豆胨琼脂培养 基或胰酪大豆胨液体 培养基，培养温度 30～35℃，培养时间 18～24 小时
计数培养基适用性检查
需氧菌
霉菌和酵母菌
总数计数
总数计数
胰酪大豆胨琼脂
沙氏葡萄糖琼 脂培养基，培养 温度 20～25℃， 培养时间不超 过5 天，接种量 不大于 100cfu
注：当需用玫瑰红钠琼脂培养基测定霉菌和酵母菌总数时，应进行培养基适用性检查，检查方法同沙氏葡萄糖琼脂培养基。
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2020 年版第二次征求意见稿
菌种及菌液制备 菌种 试验用菌株的传代次数不得超过 5 代（从菌种保藏中心获得的干燥菌种为第 0 代），并采用适宜的菌种保藏技术进行保存，以保证试验菌株的生物学特性。计数培养基 适用性检查和计数方法适用性试验用菌株见表 1。 菌液制备 按表 1 规定程序培养各试验菌株。取金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、枯 草芽孢杆菌、白色念珠菌的新鲜培养物，用 pH7.0 无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或 0.9%无 菌氯化钠溶液制成适宜浓度的菌悬液；取黑曲霉的新鲜培养物加入 3～5ml 适量含 0.0 5％（ml/ml）聚山梨酯 80 的 pH7.0 无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或 0.9%无菌氯化钠溶液， 将孢子洗脱。然后，采用适宜的方法吸出孢子悬液至无菌试管内，用含 0.05%（ml/ml）聚 山梨酯80 的 pH7.0 无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或 0.9%无菌氯化钠溶液制成适宜浓度的黑 曲霉孢子悬液。 菌液制备后若在室温下放置，应在 2 小时内使用；若保存在 2～8℃，可在24 小时内 使用。黑曲霉孢子悬液可保存在 2～8℃，在验证过的贮存期内使用。 阴性对照 为确认试验条件是否符合要求，应进行阴性对照试验，阴性对照试验应无菌生长。 如阴性对照有菌生长，应进行偏差调查。 培养基适用性检查 微生物计数用的成品培养基、由脱水培养基或按处方配制的培养基均应进行培养基适 用性检查。 按表 1 规定，接种不大于 100cfu 的菌液至胰酪大豆胨液体培养基管或胰酪大豆胨琼 脂培养基平板或沙氏葡萄糖琼脂培养基平板，置表 1 规定条件下培养。每一试验菌株平 行制备 2 管或 2 个平皿板。同时，用相应的对照培养基替代被检培养基进行上述试验。 被检固体培养基上的菌落平均数与对照培养基上的菌落平均数的比值应在 0.5~2 范围内，且菌落形态大小应与对照培养基上的菌落一致；被检液体培养基管与对照培养 基管比较，试验菌应生长良好。 计数方法适用性试验 ⒈供试液制备 根据供试品的理化特性与生物学特性,采取适宜的方法制备供试液。供试液制备若 需加温时，应均匀加热，且温度不应超过 45℃。供试液从制备至加入检验用培养基， 不得超过 1 小时。
EP2.6.12非无菌药品微生物检验-微生物总数试验
2.6.12 非无菌产品的微生物检查-微生物计数试验（B.HARMONISED METHOD欧日美三方协调方法）1 介绍本试验适用于可以在有氧环境下生长的嗜温细菌和真菌的定量计数。
本试验方法主要是用于一种物质或者制剂的微生物检测，以判断它的微生物质量是否符合已建立的质量标准。
如本方法用于上述目的的话，需要按下面的描述进行操作，包括取样量和结果判断。
本方法不适用于以活微生物为活性成分的产品。
如果经证明，其他的微生物检查方法（包括自动化方法）和药典方法相当，也可以使用。
2 一般要求在能够防止外来微生物污染的环境条件下进行检测。
所采取的防微生物污染措施必须对待测产品中已有的微生物无影响。
如果待测产品具有抑菌活性，则应该尽可能地将抑菌活性成分除去或者中和。
如果使用灭活剂，则必须证明该灭活剂的功效及其对微生物不存在毒性。
如果样品制备使用了表面物质，应证明其对微生物没有毒性以及其与使用的灭火剂的兼容性。
3 计数方法按照规定使用平皿法或薄膜过滤法。
最大可能数法(MPN)是准确度最低的方法，但是对于微生物负荷量很低的产品确是最适合的方法。
方法的选择取决于产品的性质和规定的微生物限度等因素。
所选用的方法必须能够测定足够的样品量以判断产品的微生物质量是否与质量标准相符合。
同时必须证明所选用方法的适用性。
4培养基促生长试验，计数方法适用性和阴性对照4.1 总则必须证明所选用的方法具有能够检测待测物质中微生物的能力。
如果试验条件或者产品发生了变化并可能影响到检测结果，则方法的适用性需要确认。
4.2 试验菌株的制备使用稳定的标准菌悬液或者按照下述方法进行制备。
应该采用种批培养维护技术（种源批次系统）以保证用于接种的活微生物的传代次数不超过五代。
按照表2.6.12-1所示培养每一种细菌和真菌菌株。
使用pH 7.0 氯化钠蛋白胨缓冲液或者pH 7.2磷酸盐缓冲液配制试验用悬液；对于制备黑曲霉孢子悬液，可在缓冲液中加入0.05％聚山梨醇酯80。
欧洲药典 7.0 _非无菌产品的微生物限度检查
2.6.12非无菌产品的微生物限度检查：微生物计数试验1.简介：该法所描述的是在需氧条件下生长的嗜温性细菌和真菌类微生物的定量检测。
设计该试验的最初目的是为了确定一种物质或制剂是否符合微生物质量的既定标准。
如果是这种目的，则需要遵从下面的说明，包括所需样品数，从而根据下面所提到的方法来进行结果解释。
该法不适用于包含微生物作为活性成分的产品。
如果与药典的等效性作了相关说明，可以使用自动收集法作为替代法。
2.一般步骤设计方法时所用条件要避免外在微生物对待测产品的污染。
必须釆取措施，使其不影响任何待测微生物。
如果待测产品有抗菌活性，必须将这种活性去除或中和掉。
如果因此使用了灭活剂，必须证明它们对微生物的高效性和无毒性。
如果在样品制备中加了表面活性剂，必须证明它们对微生物的无毒性和与灭活剂的兼容性。
3.计数方法按规定用微孔滤膜法或平板计数法。
MPN法对微生物测定来说是最不精确的方法，但如果某些产品所含微生物的量极少，则该法是最合适的。
方法选择基于下列因素：如产品的特性和所要求的微生物限量。
所选方法必须能够测定充足的样品从而来判断其是否符合标准。
所选方法的适用性必须建立。
4.促生长实验、计数法的适用性和阴性对照4-1 总则该试验检测产品中微生物的检测能力必须被验证。
如果测试条件改变或产品改变，必须证实方法的适适用性，因为这些改变可能影响试验的最终结果。
4-2 试验菌株的准备使用测试菌株标准稳定的悬浮液或按下面方法制备。
使用批菌种培养技术（seed-lot systems）使得用于接种的微生物从最初的主批种子传代不多于5次。
细菌和真菌试验株的生长分别见表2.6.12-2。
使用氯化钠蛋白胨（pH 7.0）缓冲液或pH 7.2的磷酸缓冲液制作试验用悬浮液。
对于黑曲霉菌需要加入0.05％聚山梨醇酯80到缓冲液中。
在两小时内使用该菌悬液或2-8℃下可保存24小时。
作为一种可替代的制备方法，稀释含有黑曲霉菌或枯草芽孢杆菌的新鲜悬浮液，该悬浮液中加有营养细胞，从而可以制得一种稳定的孢子悬浮液，对于接种试验来说需要将该孢子悬浮液调整到一个合适的体积下。
非无菌产品微生物限查微生物计数法
应 的 微 生 物 限 度 标 准 时 ，应 按 下 述 规 定 进 行 检 验 ，包括样品 的 取 样 量 和 结 果 的 判 断 等 。除 另 有 规 定 外 ，本法不适用于活 菌制剂的检査。
微 生 物 计 数 试 验 环 境 应 符 合 微 生 物 限 度 检 查 的 要 求 。检 验 全 过 程 必 须 严 格 遵 守 无 菌 操 作 ，防 止 再 污 染 ，防止污染的 措 施 不 得 影 响 供 试 品 中 微 生 物 的 检 出 。单 向 流 空 气 区 域 、工 作台面及环境应定期进行监测。
胰酪大豆胨琼脂培养 基或胰酪大豆胨液体培 养 基 （M P N 法 ）， 培 养 温 度 3 0 〜 35X ：， 培 养 时 间 不 超 过 3 天 ，接种量不 大 于 lOOcfu
医疗器具
带导管的一次性医疗器具 二分之一内表面积
(如输液袋）
其他医疗器具
整个器具®(切碎或拆散开）
① 如 果 医 用 器 械 体 积 过 大 ，培 养 基 用 量 可 在 2 0 0 0 m l以 上 ，将其 完全浸没。
1 1 0 5 非无菌产品微生物限 度 检 查 ：微 生物 计 数 法
微生物计数法系用于能在有氧条件下生长的嗜温细菌和 真菌的计数。
胰酪大豆胨琼脂
胰酪大豆胨琼脂培养
培养基或胰酪大豆 基和胰酪大豆胨液体培
胨 液 体 培 养 基 ，培 养 基 ，培 养 温 度 30〜
养 温 度 3 0 〜 3 5 *C ， 3 5 aC ， 培 养 时 间 不 超 过
培 养 时 间 1 8 〜 24 3 天 ， 接 种 量 不 大 于
EP2.6.12中文版 非无菌产品微生物检验-微生物总数试验
2.6.12非无菌产品的微生物检查-微生物计数试验（B.HARMONISEDMETHOD欧日美三方协调方法）1介绍本试验适用于可以在有氧环境下生长的嗜温细菌和真菌的定量计数。
本试验方法主要是用于一种物质或者制剂的微生物检测，以判断它的微生物质量是否符合已建立的质量标准。
如本方法用于上述目的的话，需要按下面的描述进行操作，包括取样量和结果判断。
本方法不适用于以活微生物为活性成分的产品。
如果经证明，其他的微生物检查方法（包括自动化方法）和药典方法相当，也可以使用。
2一般要求在能够防止外来微生物污染的环境条件下进行检测。
所采取的防微生物污染措施必须对待测产品中已有的微生物无影响。
如果待测产品具有抑菌活性，则应该尽可能地将抑菌活性成分除去或者中和。
如果使用灭活剂，则必须证明该灭活剂的功效及其对微生物不存在毒性。
如果样品制备使用了表面物质，应证明其对微生物没有毒性以及其与使用的灭火剂的兼容性。
3计数方法按照规定使用平皿法或薄膜过滤法。
最大可能数法是准确度最低的方法，但是对于微生物负荷量很低的产品确是最适合的方法。
方法的选择取决于产品的性质和要求的微生物限度等因素。
所选用的方法必须能够测定足够的样品量以判断产品的微生物质量是否与质量标准相符合。
同时必须证明所选用方法的适用性。
4培养基促生长试验，计数方法适用性和阴性对照4.1一般要求必须证明所选用的方法具有能够检测待测物质中微生物的能力。
如果试验条件或者产品发生了变化并可能影响到检测结果，则方法的适用性需要验证。
4.2试验菌株的制备使用稳定的标准菌悬液或者按照下述方法进行制备。
应该采用种批培养维护技术（种源批次系统）以保证用于接种的活微生物的传代次数不超过五代。
按照表2.6.12-1所示培养每一细菌和真菌菌株。
使用pH7.0氯化钠蛋白胨缓冲液或者pH7.2磷酸盐缓冲液配制试验用悬液如果制备黑曲霉孢子悬液，可在缓冲液中加入0.05％聚山梨醇酯80（吐温80。
悬液在配制好后的两个小时内使用，如果储存于2-8°C，可以在24小时内使用。
2015年版中国药典微生物限度检查法
1.1 总则：
• 环境： – 微生物计数试验环境应符合微生物限度检查的要 求。(在不低于GMP 现行版要求的D 级洁净环境 、局部洁净度不低于B 级的单向流空气区域内进 行)【10版：在环境洁净度10000级下的局部洁净 度100级的单向流空气区域内】。 – 检验全过程必须严格遵守无菌操作，防止再污染 ，防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检 出。 – 单向流空气区域、工作台面及环境应定期进行监 测。
菌数报告规则
– 需氧菌总数测定宜选取平均菌落数小于 300cfu 的稀释级、霉菌和酵母菌总数测定宜 选取平均菌落数小于100cfu 的稀释级，作为 菌数报告（取两位有效数字）的依据。取最 高的平均菌落数，计算1g、1ml 或10 cm² 供 试品中所含的微生物数。 – 如各稀释级的平皿均无菌落生长，或仅最低 稀释级的平板有菌落生长，但平均菌落数小 于1 时，以﹤1 乘以最低稀释倍数的值报告菌 数。
1.4.2供试品检查
• 供试液制备 – ⑴ 水溶性供试品
• 取供试品，用 pH7.0 无菌氯化钠-蛋白胨 缓冲液，或pH7.2 磷酸盐缓冲液，或胰酪 大豆胨液体培养基溶解或稀释制成 1:10 供试液。若需要，调节供试液 pH 值至 6 ～8。必要时，用同一稀释液将供试液进 一步 10倍系列稀释。水溶性液体制剂也 可用混合的供试品原液作为供试液。
1.3.1菌液制备及使用
试验菌株 试验菌液的制备
金黄色葡萄球菌 〔CMCC(B) 26 003)〕
铜绿假单胞菌 〔CMCC（B)10 104〕 枯草芽孢杆菌 〔CMCC(B) 63 501〕 白色念珠菌 〔CMCC(F) 98 001〕
胰酪大豆胨琼脂培养基或胰酪大豆胨液体培 养基 【10版：营养肉汤或营养琼脂培养基】 30～35℃，18～24小时
USP 61 微生物限度检测——计数法
Use the Membrane Filtration method or one of the Plate-Count Methods, as directed. The Most-
Probable-Number (MPN) Method is generally the least accurate method for microbial counts; however, for certain product groups with very low bioburden, it may be the most appropriate method.
2. GENERAL PROCEDURES通用规程
Carry out the determination under conditions designed to avoid extrinsic microbial contamination of the product to be examined. The precautions taken to avoid contamination must be such that they do not affect any microorganisms that are to be revealed in the test. 微生物计数环境应能防止外来微生物对供试品的污染。防止污染的措施不能影响供试品中微生物 的检出。
<61>MICONSTERILE PRODUCTS: MICROBIAL ENUMERATION TESTS
非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法
1. INTRODUCTION导言
The tests described hereafter will allow quantitative enumeration of mesophilic bacteria and fungi that may grow under aerobic conditions. 微生物计数法系用于能在有氧条件下生长的嗜温细菌和霉菌的定量计数。
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非无菌产品微生物检查：微生物计数法微生物计数法系用于能在有氧条件下生长的嗜温细菌和真菌的计数。
当本法用于检查非无菌制剂及其原、辅料等是否符合规定的微生物限度标准时，应按下述规定进行检验，包括样品的取样量和结果的判断等。
除另有规定外，本法不适用于活菌制剂的检查。
本检查法可采用替代的微生物检查法，包括自动检测方法，但必须证明替代方法等效于药典规定的检查方法。
微生物计数试验应在环境洁净度10 000级下的局部洁净度100级的单向流空气区域内进行。
检验全过程必须严格遵守无菌操作,防止再污染,防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。
单向流空气区域、工作台面及环境应定期按《医药工业洁净室（区）悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的测试方法》的现行国家标准进行监测。
如供试品有抗菌活性，应尽可能去除或中和。
供试品检查时, 若使用了中和剂或灭活剂，应确认其有效性及对微生物的无毒性。
供试液制备时如果使用了表面活性剂，应确认其对微生物无毒性以及与所使用的中和剂或灭活剂的相容性。
计数方法计数方法包括平皿法、薄膜过滤法和最可能数法（Most-Probable-Number Method，简称MPN法）。
MPN法用于微生物计数时精确度较差，但对于某些微生物污染量很小的供试品，MPN法可能是更适合的方法。
供试品检查时,应根据供试品理化特性和微生物限度标准等因素选择计数方法，同时所选方法的供试品用量应保证试验结果能够判断供试品是否符合规定。
所选方法的适用性须经确认。
计数培养基适用性检查和计数方法适用性试验供试品微生物计数中所使用的培养基应进行适用性检查。
供试品的微生物计数方法应进行方法适用性试验，以确认所采用的方法适合于该产品的微生物计数。
若检验程序或产品发生变化可能影响检验结果时，计数方法应重新进行适用性试验。
表1 试验菌液的制备和使用采用适宜的方法吸出孢子悬液至无菌试管内，用含0.05％(ml/ml)聚山梨酯80的pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液制成适宜浓度的黑曲霉孢子悬液。
菌液制备后若在室温下放置，应在2小时内使用；若保存在2～8℃，可在24小时内使用。
稳定的黑曲霉孢子悬液可保存在2～8℃，在验证过的贮存期内使用。
阴性对照为确认试验条件是否符合要求，应以稀释剂代替供试品进行阴性对照试验，阴性对照试验应无菌生长。
供试品检查时也需进行阴性对照试验。
如果阴性对照有菌生长，应进行偏差调查。
培养基适用性检查微生物计数用的成品培养基、由脱水培养基或按处方配制的培养基均应进行培养基适用性检查。
按表1规定，接种不大于100cfu的菌液至胰酪大豆胨肉汤管或胰酪大豆胨琼脂平板培养基或沙氏葡萄糖琼脂平板培养基，置表1规定条件下培养。
每一试验菌株平行制备2管或2个平皿。
同时，用相应的对照培养基替代被检培养基进行上述试验。
被检固体培养基上的菌落平均数与对照培养基上的菌落平均数的比值应在0.5-2范围内，且菌落形态大小应与对照培养基上的菌落一致；被检液体培养基管与对照培养基管比较，试验菌应生长良好。
计数方法适用性试验⒈供试液制备根据供试品的理化特性与生物学特性,采取适宜的方法制备供试液。
供试液制备若需加温时,应均匀加热,且温度不应超过45℃。
供试液从制备至加入检验用培养基,不得超过1小时。
常用的供试液制备方法如下。
如果下列供试液制备方法经确认均不适用，应建立其他适宜的方法。
⑴水溶性供试品取供试品，用pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液，或pH7.2磷酸盐缓冲液，或胰酪胨大豆肉汤培养基溶解或稀释制成1:10供试液。
若需要，调节供试液pH 值至6～8。
必要时，用同一稀释液将供试液进一步10倍系列稀释。
水溶性液体制剂也可用混合的供试品原液作为供试液。
⑵水不溶性非油脂类供试品取供试品，用pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液，或pH7.2磷酸盐缓冲液，或胰酪胨大豆肉汤培养基制备成1:10供试液。
分散力较差的供试品，可在稀释剂中加入表面活性剂如1g/L的聚山梨酯80，使供试品分散均匀。
若需要，调节供试液pH值至6～8。
必要时，用同一稀释液将供试液进一步10倍系列稀释。
⑶油脂类供试品取供试品，加入经过滤除菌的十四烷酸异丙酯使溶解，或与最少量并能使供试品乳化的无菌聚山梨酯80或其他无抑菌性的无菌表面活性剂充分混匀。
表面活性剂的温度一般不超过40℃（特殊情况下，最多不超过45℃），小心混合，若需要可在水浴中进行，然后加入预热的稀释剂使成1∶10供试液，保温，混合，并在最短时间内形成乳状液。
必要时，用含适宜浓度的无菌聚山梨酯80或其他无抑制性无菌表面活性剂的稀释剂进一步10倍系列稀释。
⑷需用特殊方法制备供试液的供试品膜剂供试品取供试品,剪碎,加pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液，或pH7.2磷酸盐缓冲液，或胰酪胨大豆肉汤培养基，浸泡，振摇，制备成1∶10的供试液。
若需要，调节供试液pH值至6～8。
必要时，用同一稀释液将供试液进一步10倍系列稀释。
肠溶及结肠溶制剂供试品取供试品，加入pH6.8无菌磷酸盐缓冲液（用于肠溶制剂）或pH7.6无菌磷酸盐缓冲液（用于结肠溶制剂），置45℃水浴中,振摇,使溶解,制备成1∶10的供试液。
必要时，用同一稀释液将供试液进一步10倍系列稀释。
气雾剂、喷雾剂供试品取供试品,置冰冻室冷冻约1小时，取出，迅速消毒供试品开启部位，用无菌钢锥在该部位钻一小孔，放至室温，并轻轻转动容器，使抛射剂缓缓全部释出。
用无菌注射器从每一容器中吸出全部药液于无菌容器中混合，然后取样检查。
贴膏剂供试品取供试品,去掉防粘层，将粘贴面朝上放置在无菌玻璃或塑料器皿上，在粘贴面上覆盖一层适宜的无菌多孔材料（如无菌纱布），避免贴膏剂粘贴在一起。
将处理后的贴膏剂放入盛有适宜体积并含有表面活性剂（如聚山梨脂80或卵磷脂）稀释液的容器中，振荡至少30分钟。
必要时，用同一稀释液将供试液进一步10倍系列稀释。
⒉接种和稀释按下列要求进行供试液的接种和稀释,制备微生物回收试验用供试液。
所加菌液的体积应不超过供试液体积的1%。
为确认供试品中的微生物能被充分检出，首先应选择最低稀释级的供试液进行计数方法适用性试验。
（1）试验组取上述制备好的供试液，加入试验菌液，混匀，使每1ml供试液或每张滤膜所滤过的供试液中含菌量不大于100cfu。
（2）供试品对照组取制备好的供试液, 以稀释液代替菌液同试验组操作。
（3）菌液对照组取不含中和剂、灭活剂及表面活性剂的相应稀释液替代供试液,按试验组操作加入试验菌液并进行微生物回收试验。
若因供试品抗菌活性或溶解性较差的原因导致所采用的计数方法不能通过方法适用性试验时，应采用适宜的方法对供试液进行进一步的处理。
如果供试品对微生物生长的抑制作用仍无法消除，供试液可经过中和、稀释或薄膜过滤处理后再加入试验菌悬液进行方法适应性试验。
⒊抗菌活性的去除或灭活供试液接种后，按下列“微生物回收”规定的方法进行微生物计数。
若试验组菌落数减去供试品对照组菌落数的值与菌液对照组的比值不在0.5-2范围内，可采用下述方法消除供试品的抑菌活性。
⑴增加稀释液或培养基体积.⑵加入适宜的中和剂或灭活剂。
中和剂或灭活剂（表2）可用于消除抗菌剂的抑菌活性，最好在稀释剂或培养基灭菌⑷上述几种方法的联合使用。
若没有适宜消除供试品抑菌活性的方法，对特定试验菌回收的失败，表明供试品对该试验菌具有抗菌活性，同时也表明供试品不可能被该类微生物污染。
但是，供试品也可能仅对特定试验菌株具有抑制作用，而对其他菌株没有抑制作用。
因此，根据供试品须符合的微生物限度标准和菌数报告规则，在不影响检验结果判断的前提下，应采用能使微生物生长的更高稀释级的供试液进行计数方法适用性试验。
若方法适用性试验符合要求，应以该稀释级供试液作为最低稀释级的供试液进行供试品检查。
⒋供试品中微生物的回收表1所列的计数方法适用性试验用的各试验菌应逐一进行微生物回收试验。
微生物的回收可采用平皿计数法、薄膜过滤法或MPN法。
⑴平皿计数法平皿计数法包括倾注法和涂布法。
表1中每株试验菌每种培养基至少制备2个平皿，以算术均值作为计数结果。
倾注法取照上述“供试液的制备”、“接种和稀释”和“抑菌活性的中和或消除”制备的供试液1ml，置直径90mm的无菌平皿中, 注入15～20ml温度不超过45℃熔化的胰酪大豆胨琼脂或沙氏葡萄糖琼脂培养基，混匀，凝固，倒置培养。
若使用直径较大的平皿，培养基的用量应相应增加。
按表1规定条件培养、计数。
同法测定供试品对照组及菌液对照组菌数。
计算各试验组的平均菌落数。
涂布法取15～20ml温度不超过45℃的胰酪大豆胨琼脂或沙氏葡萄糖琼脂培养基，注入直径90mm的无菌平皿，凝固，制成平板，采用适宜的方法使培养基表面干燥。
若使用直径较大的平皿，培养基用量也应相应增加。
每一平皿表面接种上述照“供试液的制备”、“接种和稀释”和“抑菌活性的中和或消除”制备的供试液不少于0.1ml。
按表1规定条件培养、计数。
同法测定供试品对照组及菌液对照组菌数。
计算各试验组的平均菌落数。
⑵薄膜过滤法薄膜过滤法所采用的滤膜孔径应不大于0.45μm,直径一般为50mm,若采用其他直径的滤膜,冲洗量应进行相应的调整。
选择滤膜材质时应保证供试品及其溶剂不影响微生物的充分被截留。
滤器及滤膜使用前应采用适宜的方法灭菌。
使用时,应保证滤膜在过滤前后的完整性。
水溶性供试液过滤前先将少量的冲洗液过滤以润湿滤膜。
油类供试品,其滤膜和滤器在使用前应充分干燥。
为发挥滤膜的最大过滤效率,应注意保持供试品溶液及冲洗液覆盖整个滤膜表面。
供试液经薄膜过滤后,若需要用冲洗液冲洗滤膜,每张滤膜每次冲洗量为100ml。
总冲洗量不得超过1000ml,以避免滤膜上的微生物受损伤。
取照上述“供试液的制备”、“接种和稀释”和“抑菌活性的中和或消除”制备的供试液适量（一般取相当于1g、1ml或10cm2的供试品, 若供试品中所含的菌数较多时，供试液可酌情减量），加至适量的稀释液中,混匀,过滤。
用适量的冲洗液冲洗滤膜。
若测定总需氧菌数，转移滤膜菌面朝上贴于胰酪大豆胨琼脂培养基平板上；若测定霉菌和酵母总数，转移滤膜菌面朝上贴于沙氏葡萄糖琼脂培养基平板上。
按表1规定条件培养、计数。
每株试验菌每种培养基至少制备一张滤膜。
同法测定供试品对照组及菌液对照组菌数。
⑶ MPN法MPN法的精密度和准确度不及薄膜过滤法和平皿计数法，尤其是用于霉菌计数，其结果是不可信的。
因此，MPN法仅在总需氧菌数没有适宜计数方法的情况下使用。
若使用该方法，按下列步骤进行。
取照上述“供试液的制备”、“接种和稀释”和“抑菌活性的中和或消除”制备的供试液至少3个连续稀释级，每一稀释级取3份1ml分别接种至3管装有9～10ml胰酪胨大豆肉汤培养基中，同法测定菌液对照组菌数。
必要时可在培养基中加入表面活性剂、中和剂或灭活剂。