【医学课件】临床微生物标本采集规范PPT课件

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临床微生物标本采集规范PPT课件
临床微生物标本 采集规范
天祝县人民医院 蔡福元
2017-04-13
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主要内容
标本规范化采集的重要性 国内微生物标本的采集目前存在的问题 微生物标本采集基本原则 临床微生物标本的采集
2
标本规范化采集的重要性
正确采集、处理与运送细菌培养的标本直接关系到 致病菌培养的正确性与阳性率的高低,是临床细菌 检验成功的关键。
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为了提高病人血培养的阳性率,最好 的抽血时间是:
A.发热开始时 B.寒战开始时 C.发热最高峰时 D.寒战结束时 E.预计寒战发热前
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2.采集部位
要求:从两侧上肢静脉采血,“双瓶双侧”采 血培养。至少做到“双侧双瓶”。必要时从下 肢静脉采血做第三套血培养。 说明:不建议采集 (1)动脉血,因其诊断价值没有比静脉血更大; (2)静脉留置导管,因其常伴有高污染率。如 果必须从留置导管内采血,也应同时从外周静 脉采集另外一个血培养标本,以帮助阳性结果 的判读。
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要求:
严格无菌操作,不允许在皮肤消毒后用手按 压静脉,除非带有无菌手套。
不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头, 采用真空采血装置能降低污染率。
说明: 无论采用何种采血方法,血培养可接受的污 染率通常是≤3%。研究表明,经过专门培训 的熟练抽血者采集血培养的污染率为3%,而 未经培训的住院医生和护士污染率则达11%。 因此对临床护士就血培养标本采集进行专门 的、严格的培训是非常必要的。
婴幼儿患者,推荐同时采集2次(不同部位 )血培养标本。
说明:除特殊情况之外,在采取血培养后的2
至5天内,无需重复采取血培养。因为抗菌
治疗的2至5天内,血液中的细菌不会立即
消失。研究证明,血培养只做1套的检出率

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对可疑烈性呼吸道传染病(如SARS、肺 炭疽、肺鼠疫等)患者采集检验标本时 必须注意生物安全防护。
对于细菌性肺炎,痰标本送检每天1次, 连续2-3天;不建议24h内多次采集,除 非痰液外观性状改变;
怀疑分枝杆菌感染者,应连续收集3天清 晨痰液送检
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(二)采集方法
1、自然咳痰法 以晨痰为佳。用清水反 复漱口,用力咳出呼吸道深部的痰,痰液 直接吐入无菌容器中,尽快送检。否则有 的细菌(如肺炎链球菌、流感嗜血杆菌) 在外界可能死亡。不能及时送检的标本, 室温保存≤2h。要求采到肺深部的痰液, 不要唾液。
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可置肉汤培养
临床微生物标本采集 (一)血培养检测采血指征
临床上疑为败血症、脓毒血症 或其他血液感染的患者
1. 发热(≥38℃)或低温 (≤36℃)
2. 寒战 3. 白细胞增多(>10×109/L, 特别有“核左移”未成熟的或杆 6
5 . 血小板减少 6.皮肤粘膜出血
7.昏迷,休克 8.多器官衰竭
3.支气管镜采集法
–-经支气管镜直接吸引
–-支气管肺泡灌洗
–-防污染样本毛刷 28
(三)注意事项
1. 痰标本不能及时送检者,可暂存4℃ 冰箱。室温下耽搁数小时,定植于口 咽部的非致病菌过度生长而肺炎链球 菌、葡萄球菌和流感嗜血杆菌检出率 则明显降低。
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2. 在临床上咳痰仍是诊断肺部感染最 常用的标本,但咳痰也最易被口咽部 正常菌群污染。痰液标本的细菌学检 验,必须区分是病原菌还是来自上呼 吸道的正常菌群。经过洗涤处理的痰 液或自气管镜采集及气管穿刺所获标 本,结果比较可靠。
素。成人血培养采血量在2~30ml之间,病原 菌检出率及采血量成正比例增长。每增加1ml 的血液,病原菌的检出率增加3.2%。儿童患 者因为血液中病原菌浓度较高,血培养量无 需等同于成人。对血液病患者或者血容量相 对较低的患者建议使用儿童瓶来减少血液的 采集量增加病原菌的检出率。

2024版临床微生物学标本的采集优秀课件

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03
标本保存与运输要求
标本保存条件及时间限制
标本保存条件
根据微生物种类和检测项目的要求,选择合适的保存条件,如 温度、湿度和光照等。一般来说,细菌、真菌等微生物标本应 保存在2-8℃的冰箱中,病毒等微生物标本则应保存在-20℃或 更低的温度下。
时间限制
微生物标本的保存时间不宜过长,以免微生物死亡或变异。一 般来说,细菌、真菌等微生物标本的保存时间不应超过24小时, 病毒等微生物标本的保存时间则更短,一般不超过数小时。
质量控制
在初步处理过程中,应采取严格的质量 控制措施,如使用标准菌株进行对照、 定期校准实验设备等,确保处理结果的 准确性和可靠性。
常见问题及解决方案
标本污染
在采集、运输或保存过程中,标本可能受到污染。解决方 案包括加强采集人员的培训、使用无菌技术、确保运输和 保存条件符合要求等。
标本不合格 有些标本可能不符合检测要求,如采集量不足、保存不当 等。此时应重新采集标本,并向患者和医护人员说明原因 和注意事项。
准备好采集所需物品
根据不同的标本类型和采集部位,准 备好相应的采集物品,如无菌棉签、 无菌试管、穿刺针等。
对于需要特殊保存的标本,还应准备 好相应的保存液和运输容器,以确保 标本在运输和保存过程中的稳定性和 可靠性。
确保采集物品在有效期内,且包装完 好无破损。
02
各类标本采集方法
血液标本采集
01
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目录
• 标本采集前准备 • 各类标本采集方法 • 标本保存与运输要求 • 实验室接收与处理流程 • 结果解读与临床应用价值 • 总结与展望
01
标本采集前准备
了解患者病史及用药情况
详细询问患者病史,包括现病史、既往病史、家族史等,以评估患者感染的风险和 可能的病原体类型。

临床微生物标本的采集ppt课件

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3、做好包装和防护
临床标本及感染性物质,不管运送距 离有多远,应严格注意标本的包装,并且应 采取安全防护措施。
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标本送检样本
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标本的接受、处理原则
当标本送至实验室时,应有病人基本信息、标本来源、采集时 间等。
实验室遇到下列情况标本时拒绝接受 1.不正确的运送温度 2.不正确的运送工具 3.延长送检时间 4.标本容器上未贴病人信息或贴错 5.标本有泄漏 6.盛标本的容器有破损 7.标本有明显污染 8.标本量不足或已干涸 9.24h内重复送检的标本(不包括血培养) 10.对某种试验不适合的标本
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临床常见标本 采集、运送与
接种
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临床常见的标本:
血液 痰及鼻咽分泌物 尿液 粪便 穿刺液(脑脊液、胆汁、胸腹水等) 脓液及创伤感染分泌物 生殖道
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血液
正常人的血液是无菌 的。当细菌侵入时可引 起菌血症或败血症。
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血液培养的意义:
菌血症 感染性心内膜炎 临床不明原因的感染 假体植入后感染(人工关节、人工瓣膜) 静脉导管相关性感染 肺炎
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常见临床标本的采集及处理
泌尿生殖道标本
二、生殖道和尿道标本 送检指针:
女性患者
外阴阴道炎 细菌性阴道炎
阴道溃疡 尿道炎 宫颈炎 子宫颈炎 子宫内膜炎 输卵管炎 卵巢脓肿
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男性患者
尿道炎 附睾炎 前列腺炎 生殖器
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标本采集(根据不同感染种类和病变特征采集不同的标本)
尿道分泌物
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泌尿生殖道标本
一、尿液标本 适应症:尿路感染

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二、痰标本中常见病原体
细菌
金黄色葡萄球菌、凝固酶阴性葡萄球菌、肺炎链球菌、A群链球菌、肠球菌卡他莫拉菌、脑膜炎奈瑟菌、白喉棒状杆菌、类白喉棒状杆菌、结核分枝杆菌、炭疽芽胞杆菌、流感嗜血杆菌、克雷伯杆菌、铜绿假单胞菌、大肠埃希菌、百日咳杆菌、军团菌、支原体和衣原体等
真菌
白假丝酵母菌、隐球菌、曲霉菌和毛霉菌等
真菌
念球菌、曲霉菌、隐球菌、球孢子菌
厌氧菌
拟杆菌、产气荚膜梭菌
三、临床意义
血液感染是一种危重的全身感染,对其进行病原菌的检验,提供病原学的诊断极为重要。 当少量细菌侵入血液循环,为一过性,不繁殖或很少繁殖,不引起或仅引起轻微的炎症反应者称为菌血症,若有全身性炎症反应的表现称为脓毒症。血液标本的细菌培养是诊断菌血症的基本而重要的方法,若从患者血液中检出细菌,一般视为病原菌感染,提示有菌血症。
其他
放线菌(衣氏放线菌、诺卡菌)
三、临床意义
由创伤、手术、侵入性器械操作等外科治疗引起的感染最为常见。细菌造成伤口感染一般认为需每克组织内细菌数量在105 ~106个以上。外伤性创伤感染以葡萄球菌和链球菌多见,且易发生混合感染。烧伤创面最常见革兰阴性杆菌感染,如铜绿假单胞菌等,次为革兰阳性球菌感染,可单独也可混合细菌感染。
真菌性肺炎
支原体肺炎
细菌性肺炎
第六节 粪便
一、标本采集
用药前自然排便,采集脓血、黏液部分2~3g。外观无异常的粪便应从粪便的表面不同部位取材。液体便取絮状物1~2ml,置无菌容器内送检。如排便困难或婴幼儿患者,可用直肠拭子法采集标本。
粪便标本送检 对住院的腹泻成人患者,应采集住院3日内粪便标本送检,标本采集后应尽快送检,有条件的提倡使用运送培养基。
细菌种类

临床微生物标本采集医学PPT课件

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【标本的采集方法】
防止皮肤寄生菌或环境微生物引起的污染是血培 养的关键问题,采血前严格执行消毒程序是十分 重要的。 1 皮肤消毒程序: 用蘸有复合碘棉签从穿刺点向外以1.5~2cm直径 画圈进行消毒,消毒皮肤作用60s。
★对碘过敏的病人只能用75%酒精消毒,消毒60s, 待穿刺 消毒部位干燥后穿刺采血。
2 培养瓶消毒程序 ①用75%酒精擦拭血培养瓶橡皮塞子,作用60s。 ②在血液注入血培养瓶之前,用无菌纱布或棉签 清除橡皮塞子表面剩余的酒精,然后注入血液。 3 培养瓶接种程序 抽取血液后,不要换针头,直接注入血培养瓶中, 轻轻颠倒混匀,以防血液凝固。如果同时作需氧 和厌氧培养,应先将标本接种到厌氧瓶中,然后 再注入需氧瓶,严格防止将空气注入厌氧瓶中。 (蝶形针/注射器)
几种特殊情况:
①可疑新生儿败血症时,除发热或低温外,很少培养 出细菌,应增加尿液和脑脊液培养。 ②老年菌血症病人可能不发热或不低温,如伴有身体不 适、肌痛或中风,可能是感染性心内膜炎,也应采取血 培养。 ★骨髓培养与血液培养的送检指征是基本一致的,临 床常规血液感染有指征时以抽取血培养为主。但当骨 髓炎时或长期使用抗菌药物患者,抽取骨髓培养阳性 率会远高于血培养。
【标本采集方法】 1 自然咳痰法:咳痰前,先用清水或漱口液反复 漱口(为减少口腔正常菌群污染标本),有假牙 者应取下假牙,然后用力自气管中咳出第一口痰 于无菌容器内。 对于痰量少或无痰的患者可采用雾化吸入45℃10 %NaCL水溶液,使痰液易于排出。对咳痰少的幼 儿,可轻轻压迫胸骨上部的气管,使其咳嗽。
血液及骨髓标本
一、标本送检指征
病人出现以下临床表现之一时,应采集血培 养。 ①发热(≥38℃)或低温(≤36℃);② 寒战;③白细胞增多(>10×109/L,特别 有“核左移”时);④粒细胞减少(成熟的 多形核白细胞<1×109/L);⑤血小板减少; ⑥皮肤、粘膜出血;⑦昏迷;⑧多器官衰 竭;⑨血压降低;⑩呼吸加快。

微生物样本采集的标准化与规范化ppt课件

微生物样本采集的标准化与规范化ppt课件
4)咽用压舌板压舌;用无菌拭子在后咽部、扁桃体 和其它感染部位采集标本;怀疑白喉可用无菌拭
子从患者病变部位假膜及其边缘取材立刻送检。 肉汤拭子≤2小时,室温;拭子:≤1小时,室温, 1次/天。
咽拭子标本采集
3. 尿
外尿道多寄居有正常菌群,故采集尿液时 更应注意无菌操作,常用清洁中段尿作为 送检标本。中段尿用于细菌培养,最好用 晨尿。诊断泌尿系感染的细菌学标准一般 为菌落计数≥105CFU/ml。针对于老年人多 重症及卧床患者排尿困难,可相应采用导 尿管采集标本。采集和容器为无菌尿瓶, 标本量≥1毫升,条件≤2小时,室温,1次/ 天。
3)肛拭子:小心将拭子插入肛门,大约在括约肌之 上2-3厘米;轻轻旋转拭子采集肛门隐窝的标本;
要在拭子上明显看到粪便,才能检测腹泻病原体 。拭子采集,≤2小时,室温,1次/天。除了长期
卧床、无便(如中毒性痢疾)患者及频繁腹泻患
者,不推荐做拭子常规培养。用于检测淋病奈瑟 菌、志贺菌、弯曲菌、B群链球菌的肛携带者以及 不能留取粪便标本的患者。可检测霍乱弧菌。
培养瓶消毒程序:
用75%酒精擦拭血培养瓶橡皮塞(不能用含碘消 毒剂),作用60s。用无菌纱布或无菌棉签清除橡 皮塞表面残余液体.然后注入血液。
血 培 养 标 本 采 集 流 程 需氧和厌氧血培养瓶
采集次数
急性脓毒血症 10分钟内从不同部位抽血2-3次; 急性感染性心内膜炎 从不同部位抽血3次,每次
10. 褥疮
褥疮拭子培养的临床意义不大。应选择供 活检组织或注射器吸出物。以无菌盐水清 洗褥疮表面;如不做活检,用力以拭子抹 取褥疮基底部;将拭子置入肉汤培养基中 。≤2小时,室温,1次/天/来源。
参考文献
汪复 张婴元 吴菊芳等,实用抗感染治疗学 ,北京: 人民卫生出版社,2004,24 ~33.

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❖ 好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患 照顾质量,降低医疗成本。
微生物样本采样基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查Байду номын сангаас2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检甚至床旁接种尤其是厌氧培养 5.棉拭子标本宜用运送培养基 6.混有正常菌群污染标本,不可置肉汤培养 7.标本容器须灭菌处理,但不得使用消毒剂 8.送检标本应注明来源和检验目的
说明:实验数据表明细菌入血后约1小时,寒战和发 烧开始出现2小时内,此时为采集血培养标本进行 病原菌培养的最佳时机。在不同的时间点采血只有 在以下情况才有必要:疑似感染性心内膜炎或其他 血管内(如导管相关性感染)感染患者的连续性菌 血症。
2.采集部位
要求:从两侧上肢静脉采血,“双瓶双侧”采血 培养。至少做到“双侧双瓶”。必要时从下肢静 脉采血做第三套血培养。
9. CRP升高
对入院危重感染患者未进行系统性抗菌药物治疗之 前,应及时采集血培养。
(二)血培养检测消毒程序
1.皮肤消毒程序:严格执行三步法(防止皮肤寄生菌污染) (1)用75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上; (2)然后用1%-2%碘酊作用30秒或10%碘伏作用60秒, 从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达3cm以上; (3)最后用75%酒精脱碘,待酒精挥发干燥后采血。 新生儿及对碘过敏的患者,只能用75%酒精消毒60s, 待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。
说明:除特殊情况之外,在采取血培养后的2至5天 内,无需重复采取血培养。因为抗菌治疗的2至5 天内,血液中的细菌不会立即消失。研究证明, 血培养只做1套的检出率为65%,做2套和3套的 检出率分别为80%和96%。单瓶的血培养检出率 不高,而且结果很难做出临床解释。

《微生物标本采集》ppt课件

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《微生物标本采集》ppt课件$number{01}目录•微生物标本采集概述•微生物标本采集前的准备•微生物标本采集方法与技巧•微生物标本的保存与运输•微生物标本的质量控制与安全管理•微生物标本采集的实践应用与案例分析01微生物标本采集概述微生物标本的定义与分类定义微生物标本是指从自然界或人体中分离、培养或收集的微生物及其代谢产物,用于科学研究、教学、临床诊断和生物制品生产等领域。

分类根据来源和性质不同,微生物标本可分为环境微生物、临床微生物、工业微生物和农业微生物等几大类。

微生物标本采集的目的与意义目的获取具有代表性的微生物样本,为后续的实验研究提供可靠的物质基础。

意义微生物标本采集是微生物学研究的基础工作,对于揭示微生物的多样性、分布规律以及与人类和环境的相互关系具有重要意义。

微生物标本采集的原则与要求原则:确保采集的标本具有代表性、典型性和可比性,同时遵循安全、无菌操作的原则。

要求根据研究目的选择合适的采样地点和时间;妥善保存和运输标本,确保其活性不受损失;详细记录采样信息,包括时间、地点、环境参数等。

使用无菌的采样器具,避免交叉污染;02微生物标本采集前的准备123了解患者的病情与病史评估患者体征观察患者的体温、脉搏、呼吸等生命体征,了解患者的病情严重程度。

询问患者病史包括既往病史、家族病史、过敏史等,以评估患者感染的风险和可能的病原体类型。

了解患者症状详细询问患者的症状,如发热、咳嗽、腹泻等,以初步判断感染部位和可能的病原体。

选择合适的标本采集部位根据感染部位选择根据患者的症状和体征,选择合适的标本采集部位,如呼吸道、消化道、泌尿道等。

考虑病原体特性不同的病原体在体内的分布和繁殖部位不同,需根据病原体的特性选择合适的采集部位。

避免污染在选择采集部位时,应尽量避免受到外源性污染,如皮肤表面的污垢、消毒液等。

根据采集标本的类型和后续检测需求,选择合适的容器,如无菌试管、培养皿等。

选择合适的容器准备试剂检查容器与试剂根据检测需求,准备相应的试剂,如培养基、抗凝剂、保存液等。

2024版临床微生物学标本采集处理操作规范PPT课件

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按照医疗废弃物处理规范,对实验过程中 产生的废弃物进行分类、包装和处理,防 止交叉感染和环境污染。
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02
引言
临床微生物学的重要性
临床微生物学是研究微生物与疾 病关系的科学,对感染性疾病的 诊断、治疗和预防具有重要意义。
微生物检测可为临床提供准确的 病原体诊断依据,指导医生合理 使用抗生素,减少耐药菌株的产
生。
临床微生物学的发展推动了医学 科学的进步,为人类的健康事业
作出了巨大贡献。
标本采集处理的意义
标本采集是微生物检测的第一 步,直接关系到检测结果的准 确性和可靠性。
标识明确
在运输容器外标明患者信息、标本类 型、数量及采集时间等。
运输条件
根据标本类型选择合适的运输条件, 如温度、光照等,确保标本在运输过 程中保持稳定。
安全防护
运输过程中需采取必要的安全防护措 施,防止标本泄漏或破损。
06
质量控制与安全防护
质量控制
标本采集前准备 确保采集工具无菌、无污染,遵守无菌
使用干净、无菌的容器收集尿液,避免污染。
清洁中段尿是常用的采集方法。女性应先清 洁外阴部,男性应翻转包皮清洁尿道口,然 后排尿弃去前段尿,留取中段尿。
采集时间
采集量
根据需要检测的项目,选择不同时间段的尿 液进行采集。如晨尿、随机尿、餐后尿等。
留取足够量的尿液标本,以满足检测需求。

培训护士临床微生物标本采集规范ppt课件

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血培养检测采血指征
临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者 1. 发热(≥38℃)或低温(≤36℃) 2. 寒战 3. 白细胞增多(>10×109/L、“核左移”、未成熟白 细胞增多) 4. 粒细胞减少(成熟的多核白细胞<1×109/L) 5. 血小板减少 6.皮肤粘膜出血 7.昏迷,休克 8.多器官衰竭 9. CRP升高
擦除过多的分泌物和排出液,用无菌棉拭子 采取阴道口内4cm内侧壁或后穹窿处分泌物
宫颈分泌物
先清除阴道和宫颈局部分泌物,然后轻压宫颈使 宫颈内分泌物流出,用女性拭子插入宫颈管1-2cm转 动并停留10~30s采取分泌物,置入灭菌试管内送检
注意事项
生殖器是开放性器官,标本采集过程中应严格遵
循无菌操作规程以减少杂菌污染
血培养检测消毒程序

皮肤消毒程序
1.75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上
2.1%-2%碘酊作用30秒或10%碘伏作用60秒,从穿刺 点向外画圈消毒,至消毒区域直径达3cm以上
3.75%酒精脱碘,待酒精挥发干燥后采血

培养瓶瓶塞消毒
用75%酒精消毒培养瓶塞,充分待干待干60秒
注意:塑料帽下面的橡皮塞并非是无菌的,必须进
抽吸液体

内耳:对复杂的、反复的或慢性顽固的中耳炎做鼓 膜穿刺术,接触耳鼓室先用肥皂水清洗耳道再用 注射器收集液体;对破裂的鼓室,借助耳科诊视
器,用软杆拭子收集液体
外耳:用湿拭子将耳道的任何碎屑或痂皮拭去;在 外耳道用力旋转拭子取样
鼻或鼻咽分泌物
直接用拭子涂抹病灶部位,切勿接触周围粘膜或皮 肤,标本立即送检
9.眼、耳、鼻、咽拭子
标本采集规范
标本采集

结膜:分别用(无菌盐水预湿)拭子绕每一个结
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(二)血培养检测消毒程序
1.皮肤消毒程序:严格执行三步法(防止皮肤寄生菌污染) (1)用75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上; (2)然后用1%-2%碘酊作用30秒或10%碘伏作用60秒, 从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达3cm以上; (3)最后用75%酒精脱碘,待酒精挥发干燥后采血。 新生儿及对碘过敏的患者,只能用75%酒精消毒60s, 待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。 2.培养瓶消毒程序: (1)用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞,作用60秒。 (2)用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞表面剩余的酒 精,然后注入血液。
标本规范化采集的重要性



正确采集、处理与运送细菌培养的标本直接关系到 致病菌培养的正确性与阳性率的高低,是临床细菌 检验成功的关键。 标本质量的好坏直接影响诊断结果的正误,不当的 标本可导致假阴性、假阳性结果的出现,因此标本 采集与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重 要的临床感染信息的基础。 好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患 照顾质量,降低医疗成本。
2.采集部位 要求:从两侧上肢静脉采血,“双瓶双侧”采血 培养。至少做到“双侧双瓶”。必要时从下肢静 脉采血做第三套血培养。 说明:不建议采集 (1)动脉血,因其诊断价值没有比静脉血更大; (2)静脉留置导管,因其常伴有高污染率。如果 必须从留置导管内采血,也应同时从外周静脉采 集另外一个血培养标本,以帮助阳性结果的判读。
4.采血量 要求: 成年患者推荐的采血量为每套不少于10ml,每 瓶不少于5ml。 婴幼儿患者推荐的采血量为每瓶不少于2ml。 说明:血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。 成人血培养采血量在2~30ml之间,病原菌检出率与 采血量成正比例增长。每增加1ml的血液,病原菌 的检出率增加3.2%。儿童患者因为血液中病原菌浓 度较高,血培养量无需等同于成人。对血液病患者 或者血容量相对较低的患者建议使用儿童瓶来减少 血液的采集量增加病原菌的检出率。
临床微生物标本 采集规范
标本采集和运送是细菌培养成 功的最最重要的关键
但由于标本的采集和运送常由护士或医 生或病人自己完成,所以也是最不容易做好 的事情,而且不知道问题所在之处,造成的 后果是: 临床医生最不能接受的问题:阳性率低
国内微生物标本的采集目前存在的问题 : 标本送检率低 从全国来看,抗感染治疗 前,送检相关标本可能只占应送标本的一半 左右,与抗菌药物应用率之高形成鲜明的反 差。一些医师在经验性治疗受挫后方送标本, 此时已失去阳性培养的机会。 标本有缺陷 正确收集各种临床标本, 关注特检标本采样与送检的方法和条件,是 完成病原学诊断的先决条件。
标本收集部位
非无菌部位 眼 耳 呼吸道 肠胃道 泌尿道 皮肤 毛发 无菌部位 血液 脊髓液 胸膜液 腹膜液 关节液
一、血培养标本采集规范
(一)血培养检测采血指征 临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的 患者 1. 发热(≥38℃)或低温(≤36℃) 2. 寒战 3. 白细胞增多(>10×109/L,特别有“核左移”未 成熟的或杆状核白细胞增多) 4. 粒细胞减少(成熟的多核白细胞<1×109/L) 5. 血小板减少 6.皮肤粘膜出血 7.昏迷,休克 8.多器官衰竭 9. CRP升高 对入院危重感染患者未进行系统性抗菌药物治疗之 前,应及时采集血培养。
6.血培养标本的运送 要求:(1)采集后的血培养瓶应在1小时之内 送往实验室。 (2)血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏和 冷冻。 说明:血培养瓶冷藏或冷冻会将一些微生物杀 灭。
二 痰培养 标本采集规范
我国痰培养现状
标本送检率低
苛养菌检出率极低
结果重复性差
报告速度慢
(三)血培养标本采集和运送
1.采集时间 要求:对怀疑菌血症、真菌血症的患者,在考虑使用 抗菌药物之前,应立即采集血培养标本。必须同时 或间隔短时间内采集2套(每套包括1只普通血培养 瓶及1只厌氧血培养瓶)以上血培养标本。 说明:实验数据表明细菌入血后约1小时,寒战和发 烧开始出现2小时内,此时为采集血培养标本进行 病原菌培养的最佳时机。在不同的时间点采血只有 在以下情况才有必要:疑似感染性心内膜炎或其他 血管内(如导管相关性感染)感染患者的连续性学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检甚至床旁接种尤其是厌氧培养 5.棉拭子标本宜用运送培养基 6.混有正常菌群污染标本,不可置肉汤培养 7.标本容器须灭菌处理,但不得使用消毒剂 8.送检标本应注明来源和检验目的
要求: 严格无菌操作,不允许在皮肤消毒后用手按 压静脉,除非带有无菌手套。 不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头, 采用真空采血装置能降低污染率。 说明:无论采用何种采血方法,血培养可接受 的污染率通常是≤3%。研究表明,经过专门 培训的熟练抽血者采集血培养的污染率为3%, 而未经培训的住院医生和护士污染率则达 11%。因此对临床护士就血培养标本采集进 行专门的、严格的培训是非常必要的。
所谓“双瓶双侧”,是指从一个部位采血 接种一套培养瓶,再从另一部位采血接种另 一套培养瓶。(通常是双臂) 所谓“双侧双瓶”,是指从一个部位采血 接种一个需氧瓶,再从另一部位采血接种另 一个厌氧瓶。 一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为 单个血培养。

3.采集次数 要求:对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者,推荐 同时采集2~3套(不同部位)血培养标本。(即 双瓶双臂同时采集血培养标本。) 婴幼儿患者,推荐同时采集2次(不同部位)血培 养标本。 说明:除特殊情况之外,在采取血培养后的2至5天 内,无需重复采取血培养。因为抗菌治疗的2至5 天内,血液中的细菌不会立即消失。研究证明, 血培养只做1套的检出率为65%,做2套和3套的 检出率分别为80%和96%。单瓶的血培养检出率 不高,而且结果很难做出临床解释。
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