常规根系测定指标及方法
植物根系的测定实验报告
一、实验目的1. 了解植物根系的基本结构和功能。
2. 掌握植物根系活力的测定方法。
3. 分析不同环境因素对植物根系活力的影响。
二、实验原理植物根系是植物的重要组成部分，其主要功能是吸收水分和养分，固定植物体，同时还有合成和运输营养物质的作用。
植物根系活力是指根系对外界环境变化的适应能力和吸收、合成、运输等功能的表现。
本实验采用氯化三苯基四氮唑（TTC）法测定植物根系活力，通过观察根系在TTC溶液中的还原反应，来评估根系的活力。
三、实验材料与方法1. 实验材料：小麦、玉米、大豆种子；TTC溶液；蒸馏水；培养皿；剪刀；镊子；电子天平；显微镜等。
2. 实验方法：（1）种子萌发：将小麦、玉米、大豆种子分别浸泡在蒸馏水中，置于培养皿中，保持适宜的温度和湿度，待种子萌发。
（2）根系活力测定：将萌发的植物幼苗取出，用剪刀剪去地上部分，用蒸馏水清洗根系，去除泥土。
（3）TTC染色：将清洗干净的根系浸泡在TTC溶液中，置于黑暗处，恒温培养箱中培养24小时。
（4）根系活力测定：将染色后的根系取出，用蒸馏水清洗，去除多余的TTC溶液。
（5）显微镜观察：将清洗干净的根系置于显微镜下，观察根系活力。
四、实验结果与分析1. 小麦根系活力测定结果：小麦根系在TTC溶液中染色后，呈现出明显的红色，说明小麦根系具有较强的活力。
2. 玉米根系活力测定结果：玉米根系在TTC溶液中染色后，呈现出淡红色，说明玉米根系活力较弱。
3. 大豆根系活力测定结果：大豆根系在TTC溶液中染色后，呈现出暗红色，说明大豆根系活力较强。
4. 不同环境因素对根系活力的影响：通过比较不同处理条件下植物根系活力，发现低温、干旱等逆境条件下，植物根系活力明显降低，说明植物根系对环境变化具有一定的适应性。
五、实验结论1. 植物根系活力是植物对外界环境变化适应能力的重要体现。
2. 小麦、大豆根系活力较强，玉米根系活力较弱。
3. 植物根系对低温、干旱等逆境具有一定的适应性。
常规根系测定指标及方法
烟草根系常见测定指标及实验方法一、烟草根系发生特点烟草根属直根系,由主根、侧根与不定根三部分组成。
烟草由苗床栽入大田后,主根受人为控制,经常萎缩,而侧根与不定根迅速发展成一庞大根群。
1级、2级侧根的增长及根长密度在时间、空间上的动态变化与其地上地下关系的变化就是一致的。
烟草的根系数量的增加与活力的提高存在双峰现象:第1次出现在团棵期至旺长期。
移栽后40d前(团棵期),烟草的生长中心在地下部,根系生长迅速,并且所形成的根分布在较浅的土层中。
旺长期,生长中心从地下部转移到地上部,0～10cm土层出现了大量不定根,因此0～10cm内1级、2级侧根根长密度表现为增长趋势。
而其它各土层内由于物质供应的减少,根长密度表现为缓慢增长,甚至呈下降的趋势;第2次出现在打顶后的圆顶期。
圆顶期,由于打顶使根系生长又出现一次高峰,各土层1级、2级侧根根长密度均表现出增长的趋势。
因此打顶具有诱发侧根数量的增加与活力提高的作用。
到后期,随着烟叶的逐渐成熟,根系开始死亡,根系生长速度减缓,根长密度变化不大。
烟草生育后期下层分枝密度减少,下层较细的侧根有机物质供应不足,导致衰老死亡而出现的相对减少。
二、衡量根系的指标1、根系生物量根鲜重在植物营养研究方面很有应用价值。
养分吸收大多用根鲜重作参量。
根鲜重容易测定,但准确程度与根外粘附水分有关,故受操作影响较大。
根干重对于养分与水分吸收不就是个理想的参数,因为老而粗的根所占的重量很大,而吸收养分与水分的能力很小。
但当了解植物地下部的生产力时,干重常作为估计的标准。
在估算根冠比(R/S)时,也要用根干重。
测定根干重一般采用烘干重量法。
根系干重与鲜重:烟草根系从土壤中挖出、洗净后,用吸水纸或滤纸吸干根表面水分,用电子天平称取根鲜重。
获得鲜重数据后装入牛皮带放入烘箱内,在80℃下烘干,称其干重。
2、根系形态根系形态特征包括根系体积、几何形状、长度、分布深度、根密度、分枝状况、根重、根表面积、根毛数量与根尖数等。
实验四 根系活力的测定
实验四根系活力的测定一、意义根系是植物对水分和矿质营养的主要吸收器官，同时又是植物体中重要物质如氨基酸、激素等物质合成、同化、转化的器官，因此根的生长情况和活动能力直接影响植物个体的生长情况、营养水平和产量水平等具有重要的实际意义。
在科学研究中常把根系的呼吸强度、阳离子代还量（CEC）、对有色物质的吸附量和ATP酶的活性等作为作物根系活力的指标。
二、测定原理TTC（2，3，5－氯化三苯基四氮唑）的氧化态是无色的，可被氢还原成不溶性的红色三苯基甲月朁（TTF）。
具有活力的组织和细胞在呼吸作用中，脱氢酶催化底物氧化脱氢产生NADH、NADPH 等还原性物质，当TTC渗入组织或细胞时呼吸过程产生的还原物质可将其还原成TTF（红色），组织或细胞被染成红色。
死细胞无呼吸，不发生这样的氧化还原反应。
应用这一原理，可根据组织或细胞染色情况来检测种子、花粉、根系等的活力。
植物根引起的TTC还原，可因加入琥珀酸、延胡索酸、苹果酸得到加强；而被丙二酸、碘乙酸所严重抑制。
还原强度（即根系活力强弱）可用TTF的生成量来表示。
TTF在485 nm 处有吸收峰，用乙酸乙酯提取后测定OD485，通过标准曲线计算TTF的生成量，用单位时间内单位根重产生的TTF表示根系的活力。
三、仪器设备1.分光光度计；2.分析天平（感量0.1mg）；3.托盘天平（感量0.1 g）；4.温箱；5.研钵：1套；6．4 cm漏斗：2 个；7.量筒10 mL：1 个；8.刻度移液管：0.5 mL、2 mL、5 mL；9．10 mL容量瓶（或10 mL具塞刻度试管）：8个；10．试管架：1 个；11.石英砂适量；12.高型称量瓶（30×60 mm）：2 个。
四、试剂1.乙酸乙酯（分析纯）；2.连二亚硫酸钠（Na2S2O4），分析纯，粉末；3．1 %TTC溶液：准确称取TTC 1.0000 g，溶于少量水中，定容到100 mL，用时稀释至需要浓度；4．0.1 mol ·L -1 pH 7.5磷酸缓冲液；5．1 mol ·L -1 硫酸：用量筒取比重1.84的浓硫酸55 mL，边搅拌边加入盛有500 mL蒸馏水的烧杯中，冷却后稀释至1000 mL；6．0.4 mol ·L -1琥珀酸：称取琥珀酸4.72 g，溶于水中，定容至100 mL。
名词解释根系活力的测定
名词解释根系活力的测定标题：名词解释：根系活力的测定导语：根系活力是植物生长的关键指标之一，它反映了植物根部的生命力和适应环境的能力。
本文将探讨如何测定根系活力，并分析其重要性。
一、根系活力的概念与重要性根系活力指的是植物根系的生物学活力程度，既包括根长、侧根数量等形态指标，也包括吸水、吸收养分、抗逆性等功能指标。
根系活力的测定对于解析植物的营养吸收能力、适应环境能力以及预测植物的生长状况具有重要意义。
二、根系活力的测定方法1. 根长测定法：此方法适用于观察植物根系的生长状况。
首先，选取具有代表性的试验对象，将其根系取出并轻轻清洗。
然后，使用根尖沙盘或扫描仪等设备对根系进行测量与记录。
最后，根据测量结果计算得到根长指数等数据，以反映根系活力。
2. 根系求和测定法：此方法适用于评估植物根系的总体生物学活力。
通过取样调查，将所得的根系数量与长度之和作为根系活力的测定指标。
这种方法虽然操作简便，但在抵抗病虫害等因素时存在较大的不确定性。
3. 根系吸水性测定法：此方法重点关注植物根系的吸水能力。
通过给根系提供含有不同浓度的水溶液，测定吸收水分的速度，从而评估根系的吸水性能。
这种方法可以为灌溉和肥料施用提供依据，但过程较为复杂，需要充分的实验设计和仪器设备。
三、根系活力测定的意义和应用1. 营养管理与调控：根系活力的测定可以帮助农民和园艺爱好者了解植物对营养元素和肥料的吸收利用情况，进而优化肥料施用方案，提高养分利用效率。
2. 抗逆性评估：根系活力测定可以反映植物对环境逆境（如缺水、高温、盐碱等）的耐受能力。
通过对不同品种或不同处理下植物根系活力的比较，可以评估植物的抗逆性，为育种和遗传改良提供重要参考。
3. 土壤改良与植被修复：根系活力的测定是评估土壤质量和植被修复效果的重要手段。
通过测定植物根系的长度、数量和吸水能力等指标，可以间接评估土壤的肥力、水分与气候适应能力，为土壤改良和植被修复提供指导。
四、根系活力测定方法的局限性和发展方向在根系活力测定方法中存在一些局限性，如测量误差、仪器设备成本高、操作繁琐等。
判断植物根系生长的参数
判断植物根系⽣长的参数
为了分析植物根系⽣长情况，必须⽉⼀定购参数来描述，如根数、根的分枝、根长、根鲜重、根⼲重、根表⾯积、根体积、根半径、⽐根长、报冠⽐、根尖、根⽑等。
根据研究⽬的相根系参数测定所需的时间和劳⼒，权衡应选择的根系参数，然后决定根系研究⽅法。
下⾯是⼀些常⽤根系参数及其意义：
（1）总根长（重）：单位⼟壤⾯积的总根长（重），单位是km/m'[8/m2），表征植物根系总星的⼤⼩。
（2）根长（根重）密度；单位⼟壤体积的根长（根重），单位是cm⼋m3（8/cm3），反映出植物在菜⼀⼟壤层次根长（很重）的多少。
（3）根冠⽐：地下部分⽣物量与地上部分⽣物量之⽐，根冠⽐⼤的植物，分配⾄根的同化物多，根系相对发达。
该参数也反映出地上和地下部分的关系。
（4）单位地上部分所具有的根长：总根长与地上部分⽣物量之⽐。
表⽰供应单位地上部分所需要的根长，该值⼤，根系相对发达，与根冠⽐意义相似。
（5）⽐根长：单位重量的根所具有的根长，单位⼀船是m/8·表⽰根系粗细的⼀个参数，⽐根长⼤，根细，反之，则较粗。
相关仪器根系分析仪根系分析系统。
常规根系测定指标及方法
烟草根系常见测定指标及实验方法一、烟草根系发生特点烟草根属直根系，由主根、侧根和不定根三部分组成。
烟草由苗床栽入大田后，主根受人为控制，经常萎缩，而侧根和不定根迅速发展成一庞大根群。
1级、2级侧根的增长及根长密度在时间、空间上的动态变化与其地上地下关系的变化是一致的。
烟草的根系数量的增加和活力的提高存在双峰现象：第1次出现在团棵期至旺长期。
移栽后40d前(团棵期)，烟草的生长中心在地下部，根系生长迅速，并且所形成的根分布在较浅的土层中。
旺长期，生长中心从地下部转移到地上部，0～10cm土层出现了大量不定根，因此0～10cm内1级、2级侧根根长密度表现为增长趋势。
而其它各土层内由于物质供应的减少，根长密度表现为缓慢增长，甚至呈下降的趋势；第2次出现在打顶后的圆顶期。
圆顶期，由于打顶使根系生长又出现一次高峰，各土层1级、2级侧根根长密度均表现出增长的趋势。
因此打顶具有诱发侧根数量的增加和活力提高的作用。
到后期，随着烟叶的逐渐成熟，根系开始死亡，根系生长速度减缓，根长密度变化不大。
烟草生育后期下层分枝密度减少，下层较细的侧根有机物质供应不足，导致衰老死亡而出现的相对减少。
二、衡量根系的指标1、根系生物量根鲜重在植物营养研究方面很有应用价值。
养分吸收大多用根鲜重作参量。
根鲜重容易测定，但准确程度与根外粘附水分有关，故受操作影响较大。
根干重对于养分和水分吸收不是个理想的参数，因为老而粗的根所占的重量很大，而吸收养分和水分的能力很小。
但当了解植物地下部的生产力时，干重常作为估计的标准。
在估算根冠比（R/S）时，也要用根干重。
测定根干重一般采用烘干重量法。
根系干重和鲜重：烟草根系从土壤中挖出、洗净后，用吸水纸或滤纸吸干根表面水分，用电子天平称取根鲜重。
获得鲜重数据后装入牛皮带放入烘箱内，在80℃下烘干，称其干重。
2、根系形态根系形态特征包括根系体积、几何形状、长度、分布深度、根密度、分枝状况、根重、根表面积、根毛数量和根尖数等。
根系活力的测定(TTC法)实验综述报告
根系活力的测定(TTC法)实验综述报告根系活力的测定(TTC法)实验综述报告摘要：根系活力是评估植物健康状况和生长能力的重要指标之一。
本实验综述报告将介绍一种常用的根系活力测定方法——三苯基氯化四唑(TTC)法，并重点介绍了该方法的原理、步骤和应用。
通过对多个实验研究的概述，我们可以了解到TTC法在根系活力测定中的优势和不足，并展望了未来在该领域的发展方向。
1. 引言根系活力是植物根系生理功能的重要指标之一。
通过测定根系活力，可以评估植物吸收和利用养分的能力，以及应对环境胁迫和病原体的能力。
因此，测定根系活力对于研究植物生长发育、抗逆性和资源利用效率等具有重要意义。
2. TTC法的原理和步骤TTC法是一种常用的根系活力测定方法，它利用三苯基氯化四唑颜料的还原作用来反映根系活力。
其原理是，根系组织通过代谢产物还原三苯基氯化四唑，使其从无色变为红色。
实施TTC法的步骤主要包括：准备TTC溶液、处理根系样本、添加TTC溶液、孵育和测定根系活力。
3. TTC法的应用TTC法广泛应用于不同植物根系的活力测定中。
它可以用于各种实验条件下的根系活力研究，包括光照、温度、生长激素、缺水和盐胁迫等。
通过TTC法，我们可以了解不同处理对根系生理代谢的影响，评估植物在不同环境条件下的生长适应性。
4. TTC法的优势和不足TTC法作为根系活力测定的常用方法，具有一些优势。
首先，它操作简单、成本低廉、效果可靠。
其次，可以通过可视化的红色形成判断根系活力，评估根系的发育状况。
然而，TTC法也存在一些不足之处，如容易受到环境条件的干扰，结果的可视化程度受到主观因素的影响等。
5. 未来发展方向在未来，TTC法可以与其他技术相结合，以提高根系活力测定的准确性和可靠性。
光学显微镜、分子生物学技术和高通量测定等新技术的应用，将进一步拓展我们对根系活力的认识。
此外，开展TTC法的标准化研究，建立更严格的操作规范，有助于提高测定结果的一致性和可比性。
4植物根系和根际的研究方法
第4章植物根系和根际的研究方法第一节植物根系的研究方法植物根系具有吸收和输送养分和水分、合成植物激素和其他有机物质、储存营养物质以及支撑植物使之固定于土壤中等多方面的作用。
它是植物与外界环境之间进行物质交换的主要器官，因此它与植物营养有着密切的关系。
但植物根系的研究比地上部分的研究要困难的多。
一、根系研究方法（一）钉板法：常用。
1、钉板的制作：小板：50cm×50cm，钉长5cm，钉距5cm。
大板：60cm×100cm，钉长5cm，钉距5cm。
2、取样3、清洗4、根系摄影与测定（二）容器法：容器种植主要研究根系生理或生态学特性。
条件容易控制。
1、容器大小与根系体积适应2、种植盒的制作：（三）玻璃壁或玻璃管法：用探头观察根系生长情况。
（四）多孔膜法：尼龙纤维多孔膜(孔径0.3m)二、根系测定方法（一）根系形态特征及其测定方法根系形态特征包括根系体积、几何形状、长度、分布深度、根密度、分枝状况、根重、根表面积、根毛数量和根尖数等。
根系形态与养分、水分的吸收能力有密切关系。
在植物营养研究中，常用的根形态参数主要有根重、根长、根表面积、根密度、根毛和根尖数等。
1、根重根重对于表征根的总量是一个很好的参数，植物吸收养分的数量和速率通常用单位根重作参量。
根重分为根干重和根鲜重两种。
根干重对于养分和水分吸收不是个理想的参数，因为老而粗的根所占的重量很大，而吸收养分和水分的能力很小。
但当了解植物地下部的生产力时，干重常作为估计的标准。
在估算根/冠比（R/S）时，也要用根干重。
测定根干重的方法，一般采用烘干重量法。
在105o C条件下烘干10-20h或在60-70o C下烘干20h，称重。
根鲜重是个理想参数，在植物营养研究方面很有应用价值。
养分吸收大多用根鲜重作参量。
根鲜重容易测定，但准确程度与根外粘附水分有关，故受操作影响较大。
2、根长根长被定义为单位土壤表面积上根系的总长度（L A ），计算公式为：L A ＝ 当根长测定后，如已知根的平均直径，则可以推算根系表面积和根体积，也可用于计算养分吸收速率。
根系实验报告
一、实验目的本次实验旨在通过测定植物根系活力，了解不同环境因素对根系活力的影响，从而为提高植物生长和产量提供理论依据。
二、实验材料与方法1. 实验材料（1）植物：小麦、玉米、大豆等（2）实验容器：塑料盆、塑料杯等（3）土壤：富含有机质的壤土（4）实验试剂：TTC（2,3,5-三苯基氯化四氮唑）等2. 实验方法（1）实验设计：采用完全随机区组设计，将实验分为对照组、干旱组、盐害组、氮肥过量组、氮肥不足组等，每组设置多个重复。
（2）根系活力测定：采用TTC法测定根系活力。
具体操作如下：①将植物根系洗净，用滤纸吸干水分；②将根系浸泡在TTC溶液中，置于黑暗条件下反应24小时；③取出根系，用蒸馏水冲洗，置于显微镜下观察根系染色情况；④计算根系活力：根据根系染色程度，将根系活力分为5个等级，分别为0-4级。
三、实验结果与分析1. 不同环境因素对根系活力的影响（1）干旱组：与对照相比，干旱组根系活力明显降低，根系染色程度较低，说明干旱对根系活力有显著抑制作用。
（2）盐害组：与对照相比，盐害组根系活力降低，根系染色程度较低，说明盐害对根系活力有显著抑制作用。
（3）氮肥过量组：与对照相比，氮肥过量组根系活力降低，根系染色程度较低，说明氮肥过量对根系活力有显著抑制作用。
（4）氮肥不足组：与对照相比，氮肥不足组根系活力降低，根系染色程度较低，说明氮肥不足对根系活力有显著抑制作用。
2. 不同植物根系活力比较（1）小麦根系活力：在干旱、盐害、氮肥过量、氮肥不足等条件下，小麦根系活力均低于玉米和大豆，说明小麦根系对不良环境因素的抵抗能力较弱。
（2）玉米根系活力：在干旱、盐害、氮肥过量、氮肥不足等条件下，玉米根系活力均高于小麦和大豆，说明玉米根系对不良环境因素的抵抗能力较强。
（3）大豆根系活力：在干旱、盐害、氮肥过量、氮肥不足等条件下，大豆根系活力均高于小麦和玉米，说明大豆根系对不良环境因素的抵抗能力最强。
四、结论1. 干旱、盐害、氮肥过量、氮肥不足等环境因素对植物根系活力有显著抑制作用。
测定植物根系活力的方法
测定植物根系活力的方法植物根系活力的测定方法是评估植物根系对环境中水、养分吸收、物质转运和生长发育的能力。
根系活力的好坏直接影响植物的生长和发育，因此了解植物根系活力的方法对于植物科学研究和农业生产具有重要意义。
以下将介绍几种常用的植物根系活力的测定方法。
1.根系生物学特性测定法：通过观察和记录植物根系的形态特征和生物学特性来评估根系活力。
这包括根长、根径、根重等指标的测定，以及根系分布类型的形态观察。
利用这些指标可以判断植物根系的生长速度、形态健康程度和养分吸收能力。
2.根系解剖学测定法：通过对植物根系进行解剖学观察，以评估根系的发育状态和组织结构。
常用的方法包括石蜡切片和酶解法。
石蜡切片可以观察根系的细胞构造、组织分化和结构特点，进而了解根系的生长发育情况。
酶解法则可以通过酶解组织中的细胞壁来观察和测定各种细胞器官的数量和形态特征，进一步了解根系细胞的内部结构和生物化学成分。
3.根系生理生化测定法：通过测定植物根系生理和生化指标来评估根系的活力。
例如，可以测定根系中的ATP含量、蛋白质含量、酶活性等。
这些指标可以反映根系的能量代谢和生化途径的活跃程度，从而评估根系对环境应激的响应和适应能力。
4.根际土壤生态学测定法：通过分析和评估植物根系周围土壤的物理、化学和生物学性质来间接评估根系活力。
例如，可以测定土壤pH值、有机质含量、水分含量、微生物数量和多样性等指标。
这些指标可以反映根际土壤的生态环境和根系与土壤相互作用的程度，进而评估根系的活力和土壤肥力。
5.根系功能测定法：通过测定植物根系的吸收能力和生理功能来评估根系活力。
例如，可以测定根系对不同养分元素的吸收速率和效率，以及对重金属、盐分、毒物和逆境胁迫的耐受能力。
这些指标可以评估植物根系对环境因子的适应和响应能力，从而判断根系的活力和适应性。
综上所述，了解植物根系活力的方法有多种，常用的包括根系生物学特性测定法、根系解剖学测定法、根系生理生化测定法、根际土壤生态学测定法和根系功能测定法等。
根生物量国标
根生物量国标
根生物量国标是指国家颁布的有关植物根系生物量的标准。
在土壤生态系统、农业、林业等领域，根生物量的监测和评估具有重要意义。
通过了解根生物量，可以评估土壤质量、预测作物生长情况、制定合理的农业管理措施等。
根生物量的国标通常包括以下内容：
1.采样方法：规定根系生物量采样的方法，包括采样前的准备工作、采样时间、采样深度、采样点设置等。
2.样品处理：对采集的根系样品进行处理，包括清洗、晾干、称重等步骤。
3.数据记录与分析：记录每个样品的根系生物量，并对数据进行统计分析，包括平均值、标准差等指标。
4.注意事项：包括样品保存、安全防范措施等。
制定根生物量国标的意义在于，通过规范化的方法和标准化的流程，保证根生物量监测的准确性和可比性。
这有助于不同地区、不同时间的研究结果可以进行比较和分析，从而更好地指导农业生产和管理。
此外，根生物量国标还可以为其他相关领域的研究提供参考和依据。
例如，在土壤生态系统中，根生物量与土壤有机质、土壤水分等指标密切相关。
通过根生物量的监测，可以了解土壤生态系统的结构和功能，为环境保护和生态修复提供科学依据。
总之，根生物量国标是土壤生态、农业、林业等领域中不可或缺的一项标准。
通过实施这一标准，可以更好地了解植物根系的生长情况和生态功能，为农业生产和管理提供科学依据和技术支持。
根系活力的测定实验报告
根系活力的测定实验报告根系活力的测定实验报告引言：植物的根系是其生长发育的基础，根系的健康与否直接影响着植物的生长状况和产量。
因此，测定根系活力对于了解植物的生长状态和优化栽培管理具有重要意义。
本实验旨在通过测定根系活力的方法，探究植物根系的健康状况，并为植物栽培提供参考依据。
实验材料与方法：实验材料：小麦种子、培养皿、滤纸、蒸馏水、酒精、石蜡、显微镜等。
实验方法：1. 将小麦种子浸泡在蒸馏水中，放置于室温下孵化24小时，使种子发芽。
2. 准备培养皿，将滤纸铺在底部，加入适量的蒸馏水。
3. 将发芽的小麦种子均匀分布在滤纸上，盖上培养皿盖。
4. 将培养皿放置于光照适宜的环境中，保持适宜的温度和湿度。
5. 在培养过程中，观察小麦根系的生长情况，并记录观察结果。
6. 在观察结束后，将小麦根系取出，用酒精进行固定处理。
7. 将固定后的根系进行染色，常用的染色剂有苏丹红、伊红等。
8. 在染色后，使用显微镜观察并记录根系的形态特征，并进行测量。
实验结果与分析：通过实验观察发现，小麦种子在适宜的温度和湿度条件下，经过一段时间的孵化，根系开始生长并逐渐发展。
根系的生长速度与健康状况密切相关，健康的根系生长迅猛，根系长度较长，根毛丰富，根尖呈白色或浅黄色。
而受到环境不良条件或病害侵袭的根系生长缓慢，根系长度较短，根毛稀疏，根尖呈暗色或变形。
根系的形态特征也是评估根系活力的重要指标之一。
正常生长的根系呈分枝状，根毛发达，根尖锐利。
而受到逆境影响的根系则呈现出畸形生长的特点，如根系弯曲、根毛退化、根尖变形等。
通过实验测量根系的长度、根毛的密度等参数，可以进一步定量评估根系活力。
根系长度的测量可以通过显微镜下的目测或图像处理软件进行，根毛的密度可以通过计数单位面积内的根毛数目来确定。
根系长度和根毛密度的增加通常表明根系的活力较高，植物对环境的适应能力较强。
结论：通过本实验的测定方法，我们可以对植物根系的活力进行初步评估。
根系活力的测定
根系活力的测定（TTC法）植物根系是活跃的吸收器官和合成器官，根的生长情况和活力水平直接影响地上部的生长和营养状况及产量水本。
本实验练习测定根系活力的方法，为植物营养研究提供依据。
一、 原理氯化三苯基四氮唑（TTC）是标准氧化电位为80mV的氧化还原色素，溶于水中成为无色溶液，但还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲腙，生成的三苯甲腙比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，所以TTC 被广泛地用作酶试验的氢受体，植物根系中脱氢酶所引起的TTC还原，可因加入琥珀酸，延胡索酸，苹果酸得到增强，而被丙二酸、碘乙酸所抑制。
所以TTC还原量能表示脱氢酶活性并作为根系活力的指标。
二、材料、设备仪器及试剂（一）材料：水培或砂培小麦、玉米等植物根系。
（二）仪器设备：1. 分光光度计；2. 分析天平（感量0.1mg）；3. 电子顶载天平（感量0.1g）；4. 温箱；5. 研钵；6. 三角瓶50ml；7. 漏斗；8. 量筒100ml；9. 吸量管10ml；10. 刻度试管10ml；11. 试管架；12. 容量瓶10ml；13. 药勺；14. 石英砂适量；15. 烧杯10ml、1000ml。
（三）试剂：1. 乙酸乙酯（分析纯）。
2. 次硫酸钠（Na2S2O4），分析纯，粉末。
3.1％TTC溶液 准确称取TTC1.0g，溶于少量水中。
定容到100ml。
用时稀释至各需要的浓度。
4. 磷酸缓冲液（1／15mol/L，pH7）。
5. 1mol/L硫酸 用量筒取比重1.84的浓硫酸55ml，边搅拌边加入盛有500ml蒸馏水的烧杯中，冷却后稀释至1000ml。
6. 0.4mol/L琥珀酸 称取琥珀酸4.72g，溶于水中，定容至100ml即成。
三、实验步骤（1）TTC标准曲线的制作 取0.4％TTC溶液0.2ml放入10ml量瓶中，加少许Na2S2O4粉摇匀后立即产生红色的甲月替。
再用乙酸乙酯定容至刻度，摇匀。
然后分别取此液0.25ml、0.50ml、1.00ml、1.50ml、2.00ml置10ml容量瓶中，用乙酸乙酯定容至刻度，即得到含甲月替25μg、50μg、100μg、150μg、200μg的标准比色系列，以空白作参比，在485nm波长下测定吸光度，绘制标准曲线。
常规根系测定指标及方法
烟草根系常见测定指标及实验方法一、烟草根系发生特点烟草根属直根系，由主根、侧根和不定根三部分组成。
烟草由苗床栽入大田后，主根受人为控制，经常萎缩，而侧根和不定根迅速发展成一庞大根群。
1级、2级侧根的增长及根长密度在时间、空间上的动态变化与其地上地下关系的变化是一致的。
烟草的根系数量的增加和活力的提高存在双峰现象：第1次出现在团棵期至旺长期。
移栽后40d前(团棵期)，烟草的生长中心在地下部，根系生长迅速，并且所形成的根分布在较浅的土层中。
旺长期，生长中心从地下部转移到地上部，0～10cm土层出现了大量不定根，因此0～10cm内1级、2级侧根根长密度表现为增长趋势。
而其它各土层内由于物质供应的减少，根长密度表现为缓慢增长，甚至呈下降的趋势；第2次出现在打顶后的圆顶期。
圆顶期，由于打顶使根系生长又出现一次高峰，各土层1级、2级侧根根长密度均表现出增长的趋势。
因此打顶具有诱发侧根数量的增加和活力提高的作用。
到后期，随着烟叶的逐渐成熟，根系开始死亡，根系生长速度减缓，根长密度变化不大。
烟草生育后期下层分枝密度减少，下层较细的侧根有机物质供应不足，导致衰老死亡而出现的相对减少。
二、衡量根系的指标1、根系生物量根鲜重在植物营养研究方面很有应用价值。
养分吸收大多用根鲜重作参量。
根鲜重容易测定，但准确程度与根外粘附水分有关，故受操作影响较大。
根干重对于养分和水分吸收不是个理想的参数，因为老而粗的根所占的重量很大，而吸收养分和水分的能力很小。
但当了解植物地下部的生产力时，干重常作为估计的标准。
在估算根冠比（R/S）时，也要用根干重。
测定根干重一般采用烘干重量法。
根系干重和鲜重：烟草根系从土壤中挖出、洗净后，用吸水纸或滤纸吸干根表面水分，用电子天平称取根鲜重。
获得鲜重数据后装入牛皮带放入烘箱内，在80℃下烘干，称其干重。
2、根系形态根系形态特征包括根系体积、几何形状、长度、分布深度、根密度、分枝状况、根重、根表面积、根毛数量和根尖数等。
实验五 根系活力的测定
实验五根系活力的测定一、意义根系具有吸收养分、水分、支持植株和合成有机物的能力。
它是作物赖以生存的基础。
根系的生长和地上部的生长是密切相关的和互为依存的，根系生长好才能保证地上部各器官也相应地繁茂茁壮。
因此，研究根系的活力对于搞清作物的根部营养，提高作物根系吸收养分、水分能力等具有重要的实际意义。
在科学研究中常把根系的呼吸强度、阳离子代换量（CEC）、对有色物质的吸附量和ATP 酶的活性等作为作物根系活力的指标。
二、测定原理及方法（一）根系表面积的测定1．甲烯兰吸附法（1）原理：根据植物根系吸收矿质养分的理论，根系对溶质的最初吸收具有吸附的特性。
假定吸收时在根系表面均匀地覆盖了一层被吸附物质的单分子层，因此能根据根系对某物质的吸附量来测定根的吸收面积。
常用甲烯兰（C16H18H3SCl）作为被吸附物质，已知1mg甲烯兰胶单分子层时占用l.1平方米的面积。
故可由它被吸附前后溶液的浓度变化用比色法准确地测定根系总吸收面积。
当根系在甲烯兰溶液中已达饱和并仍留在溶液中时，根系的活跃部分能把已吸附在根表的甲烯兰吸收到细胞中去，并继续吸附甲烯兰。
因此,又可以从后一吸附量中求出根系的活跃吸收面积。
（2）方法：①取出完整根系（注意保留根尖和细根），小心地清洗掉根表吸持的砂粒和土粒，洗诤后用吸水纸除去根表水分。
②将根放入有刻度的容器中〈试管或置筒〉，缓缓加水至某一刻度，取出根系待水从根上流入容器中，准确用滴定管加水至刻度处，加入水量即为根系的总体积，并记载。
③根据根系的总体积，吸取0.0002 N的甲烯兰溶液（每升溶液中含甲烯兰64 mg），吸取量约为根系总体积的十倍，分别放入三个有1、2、3编号的小烧杯中，准确记下每杯所取溶液的毫升数。
④取量好体积的根系，用吸水纸小心吸去根表水分，切忌损伤根系，依次浸入盛有甲烯兰溶液的小烧杯中，在每杯中浸泡的时间为l.5分钟。
注意每次取出时都要使甲烯兰溶液从根表流回到原烧杯中。
根系测定方法
根系氧化还原力的测定根系氧化还原力与呼吸作用有着密切的关系，它是根系活力的重要表现。
α-萘胺能被根系所氧化，当根系的氧化力增大时，有氧呼吸旺盛，吸收养分的能力也增强，所以对α-萘胺的氧化力可作为根系活力的重要指标。
1．方法原理吸附在根表面的α-萘胺会被根系所氧化，生成红色的2-羟基-1-萘胺而沉淀于有氧化力的根的表面，使这部分根染成红色。
据认为该反应是在过氧化物酶的催化下进行的，该酶的活力愈强，对α-萘胺的氧化力也愈强，染色也愈深。
故可根据根表面染色的深浅，定性的判断根的活力。
定量测定是根据α-萘胺与根系接触一定时间后α-萘胺量的减少量来确定。
α-萘胺在酸性环境中与对氨基苯磺酸和亚硝酸盐作用生成红色的偶氮燃料，就可以用比色法来测量α-萘胺含量。
2．仪器药品分光光度计；天平（1/万）；烧杯（500ml）；移液管（10ml,2ml,1ml）；刻度试管（20ml）；试剂瓶（60ml或100ml）；试管架；容量瓶（100和1000ml）；量筒；三角瓶（100ml）；黑蜡光纸；滤纸；棕色瓶。
1)40ppmα-萘胺：准确称取0.1gα-萘胺溶于50ml水，微微加热溶解后定容至100ml，成1000ppm母液贮于棕色瓶中暗处保存。
用前稀释25倍。
2)1%对氨基苯磺酸溶液：称1g对氨基苯磺酸溶于100ml30%乙酸中。
3)100ppm亚硝酸钠溶液：称0.1g亚硝酸钠溶于1000ml蒸馏水中。
4)067mol.L-1的磷酸缓冲液（pH7）：称取分析纯磷酸氢二钠11.864g溶于1000ml蒸馏水中，为A液。
称取磷酸二氢钾9.073g溶于1000ml蒸馏水中为B液，用时A液60ml,B 液40ml混合而成。
3．测定方法定性观察：取20ppmα-萘胺α-萘胺溶液500ml加入烧杯，把带有地上部的根（离体根染色程度降低）浸入其中，并在烧杯周围用黑纸包住，在室温下静置24-26小时后观察染色程度。
新根和稍老的侧根都能染成分红色。
常规根系测定指标及方法
常规根系测定指标及方法常规根系测定是植物生理学中的一项重要实验技术，通过测定植物根系的生理指标，可以评估植物根系的发育水平、生理功能以及对环境适应性等方面的情况。
常规根系测定主要包括根长、根表面积、根体积、根冠比、根系解剖结构等指标的测定。
下面将逐一介绍这些指标以及相关的测定方法。
首先，根长是评估植物根系发育水平的一项关键指标，常用的测定方法有直尺法和显微镜法。
直尺法是将根系从土壤中取出后，用尺量取根系的长度，然后记录下来。
显微镜法则是将取出的根系放在显微镜下进行观察和测量，通过图片软件计算根长。
其次，根表面积是评估根系吸收养分能力的重要指标，通常使用比色法或比重法进行测定。
比色法是将取出的根系放入1%鲁丽蓝溶液中浸泡一段时间后，将根系取出，洗净并放入显微镜下进行观察和测量。
比重法是利用根系浸泡方法，将根系在由饱和硫酸钠溶液和纯水混合物中浸泡一段时间后，取出并记录下质量。
第三，根体积是评估植物根系生长能力的一项关键指标，常用的测定方法有体积法和直径法。
体积法是通过测量一个含有根系的容器的容积，在根系完全浸泡在容器中的情况下，记录下液体的体积。
直径法则是在容器上一定高度的范围内，测量根系的直径，并通过计算得到根体积。
另外，根冠比是评估植物根系与地上部分生物量分配关系的一项重要指标。
常用的测定方法是在取出的根系和地上部分植物进行干重称量后，计算二者的比值。
最后，根系解剖结构是评估根系内部组织构造和发育情况的一项重要指标。
常用的测定方法是通过显微镜观察和测量根系切片的形态特征和细胞组织结构。
总之，常规根系测定是评估植物根系发育水平和生理功能的一项重要技术，主要测定指标包括根长、根表面积、根体积、根冠比以及根系解剖结构等。
这些指标的测定方法根据实验的具体目的和要求选择合适的方法进行测定，从而为根系生理研究提供可靠的数据和结果。
根系活力测定方法
实验一根系活性的测定1．原理：植物的根系能氧化吸附在根表面的α-萘胺，生成红色的α-羟基-1-奈胺，沉淀于有氧化力的根表面，使这部分根染成红色。
根对α-萘胺氧化能力与其呼吸强度有密切关系，日本人相见、松中等人认为α-萘胺氧化的本质就是过氧化物酶的作用，该酶的活力愈强，对α-萘胺的氧化力也愈强，染色也愈深。
所以，可以根据染色深浅定性的判断根的活力。
α-萘胺在酸性环境中与对氨基苯磺酸和亚硝酸盐作用生成红色的偶氮染料，可供比色测定α-奈胺含量。
2.药品：（1）40ppm（ug/ml）α-萘胺溶液：精确称取0.10g分析纯α-萘胺，先用2ml95%酒精溶解，加约50ml蒸馏水移入100ml容量瓶中，然后稀释至刻度，保存于棕色瓶中，置于低温暗处保存。
用前稀释25倍（40ml稀释至1000ml）即为40ppm溶液。
（2）１％对氨基苯磺酸溶液：称1ｇ对氨基苯磺酸溶于100ml30%乙酸（醋酸）中。
（3）100ppm亚硝酸钠溶液：称0.10g亚硝酸钠溶于1000ml蒸馏水中。
（4）0.067mol/L pH7.0磷酸缓冲液分子量0.067mol PH7.0(1000ml磷酸缓冲液)所需量（ｇ）Ｎa2HPO4.2H2O 178.057.1184gＮa2HPO4.12H2O 358.22 14.4004gKH2PO4136.09 3.6292gＮa2HPO4.2H2O 7.1184g (或Ｎa2HPO4.12H2O 14.4004g)+ KH2PO4 3.6292g定容到1000ml容量瓶中。
3.方法与步骤：(1)α-萘胺标准曲线的绘制：用40ppmα-萘胺溶液配制成0、5、10、20、30、40ppm各浓度α-萘胺的配制：用40ppm溶液配制α-萘胺标准曲线的绘制混匀，置室温（20~25度）下５分钟使之显色，最后加入蒸馏水，使整个容积为25ml, 摇匀，在20-60分钟内用510nm波长进行比色，以对照光密度为０，读取光密度，以α-萘胺含量作横坐标，光密度作纵坐标绘制标准曲线。
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烟草根系常见测定指标及实验方法一、烟草根系发生特点烟草根属直根系，由主根、侧根和不定根三部分组成。
烟草由苗床栽入大田后，主根受人为控制，经常萎缩，而侧根和不定根迅速发展成一庞大根群。
1级、2级侧根的增长及根长密度在时间、空间上的动态变化与其地上地下关系的变化是一致的。
烟草的根系数量的增加和活力的提高存在双峰现象：第1次出现在团棵期至旺长期。
移栽后40d前（团棵期），烟草的生长中心在地下部，根系生长迅速，并且所形成的根分布在较浅的土层中。
旺长期，生长中心从地下部转移到地上部，0〜10cm 土层出现了大量不定根，因此0〜10cm内1级、2级侧根根长密度表现为增长趋势。
而其它各土层内由于物质供应的减少，根长密度表现为缓慢增长，甚至呈下降的趋势；第2次出现在打顶后的圆顶期。
圆顶期，由于打顶使根系生长又出现一次高峰，各土层1级、2级侧根根长密度均表现出增长的趋势。
因此打顶具有诱发侧根数量的增加和活力提高的作用。
到后期，随着烟叶的逐渐成熟，根系开始死亡，根系生长速度减缓，根长密度变化不大。
烟草生育后期下层分枝密度减少，下层较细的侧根有机物质供应不足，导致衰老死亡而出现的相对减少。
二、衡量根系的指标1、根系生物量根鲜重在植物营养研究方面很有应用价值。
养分吸收大多用根鲜重作参量。
根鲜重容易测定，但准确程度与根外粘附水分有关，故受操作影响较大。
根干重对于养分和水分吸收不是个理想的参数，因为老而粗的根所占的重量很大，而吸收养分和水分的能力很小。
但当了解植物地下部的生产力时，干重常作为估计的标准。
在估算根冠比（R/S ）时，也要用根干重。
测定根干重一般采用烘干重量法。
根系干重和鲜重：烟草根系从土壤中挖出、洗净后，用吸水纸或滤纸吸干根表面水分，用电子天平称取根鲜重。
获得鲜重数据后装入牛皮带放入烘箱内，在80 C 下烘干，称其干重。
2、根系形态根系形态特征包括根系体积、几何形状、长度、分布深度、根密度、分枝状况、根重、根表面积、根毛数量和根尖数等。
根系形态与养分、水分的吸收能力有密切关系。
在植物营养研究中，常用的根形态参数主要有根长、根表面积、根体积、根直径等。
2.1根数：根基部的根数。
在洗净根系去掉地上部分后，先数基部的根数。
2.2根长：每个根的长度累计为根长度。
在平整桌面上用铅笔画上1米的长度然后倒少量水保持浅水层，将湿根置于上，把根拉直，累计每条根的长度，得到样品的总根长。
2.4根粗：随机选取10个根，在有少量水的桌面上紧密排成一排，并用小刀修齐顶端。
用小尺测量十个根的粗度，并记录下来。
2.5根体积：根系体积的测定一般采取排水法测定，因为根系的体积等于其所排出同体积水的量。
取1L的量筒，（具体的量筒规格根据样品的根系大小而定）。
注入500ml左右水，记下量筒读数。
用滤纸吸干洗净的根系表面的水，揉成团放入量筒内，用玻棒将根系全部沉入水里，再次记下量筒读数，两次之差即为样品根体积。
2.6根系表面积：根据根系对某种物质的吸附量来测定根的吸收面积。
一般常用甲烯蓝作为被吸附物质，其被吸附的数量可以根据供试液浓度的变化用比色法准确地测出。
当根系在甲烯监溶液中已达吸附饱和而仍留在溶液中时，根系的活跃部分能把原来吸附的物质吸收到细胞中去，因而可继续吸附甲烯蓝。
从后一个吸附量可求出活跃吸收面积。
2.7比根长：衡量根直径的重要参数之一，比根长值越大，说明根越细小。
根系长度和根干质量的比值为比根长，单位为m g-1 2.8根/冠比（R/S ）:是地下部与地上部干重的比值，即:R/S =根系干重/地上部干重R/S是描述根系与地上部生长相互关系的参数，通过测定根/冠比，可以了解植物地下部与地上部的分布及二者之间的关系。
一般地S>R,故R/S V 1。
在缺磷情况下，R/S增大。
植物根系的生长具有“趋肥性”，即根系能够迅速伸展到土壤养分相对丰富的地方，以扩大吸收养分的范围。
在一定的土壤养分含量范围内，养分含量偏低，促进根系伸展而抑制地上部生长，R/S比较大；反之，养分含量偏高，根系较短，促进地上部生长，R/S比下降。
3、根系活力与酶活性根系活力需要用挑取足量新鲜根系洗净，放入冰盒或液氮内带回实验室，-80 C 冰箱内保存备用。
3.1根系活力采用a -萘胺法或者氯化三苯基四氮唑（TTC）还原法测定。
3.2丙二醛（Malondialdehyde ，MDA ）植物在逆境或衰老条件下，会发生膜脂的过氧化作用。
丙二醛（MDA ）是膜脂过氧化产物之一，其浓度表示脂质过氧化强度和膜系统伤害程度，所以丙二醛是逆境生理指标。
通过测定丙二醛的多少可以直接作物的受逆境压迫的程度。
含量采用硫代巴比妥酸法测定。
3.3根的阳离子交换量植物根系的阳离子交换量（cationexchangecapacity ，简称CEC）是指每1000g 干根所能吸收的全部交换性阳离子的厘摩尔数（cmol（+）/kg ），是根系的重要生理生化指标之一。
其大小与植物种类、品种、根细胞壁果胶的羧基含量等有关。
三、实验方法1、根系活力（«-萘胺法）一,测定的意义及原理：植物的根系能氧化吸附在根表面的a -萘胺，生成红色的a -羟基-1-奈胺，沉淀于有氧化力的根表面，使这部分根染成红色。
根对a -萘胺氧化能力与其呼吸强度有密切关系，日本人相见、松中等人认为a -萘胺氧化的本质就是过氧化物酶的作用，该酶的活力愈强，对a -萘胺的氧化力也愈强，染色也愈深。
所以，可以根据染色深浅定性的判断根的活力。
a -萘胺在酸性环境中与对氨基苯磺酸和亚硝酸盐作用生成红色的偶氮染料，可供比色测定a -奈胺含量。
，药品:(1 ) 40ppm ( ug/ml ) a -萘胺溶液：精确称取 0.10g 分析纯a -萘胺，先用2ml95%酒精 溶解，加约50ml 蒸馏水移入100ml 容量瓶中，然后稀释至刻度，保存于棕色瓶中，置于 低温暗处保存。
用前稀释 25倍(40ml 稀释至1000ml )即为40ppm 溶液。
(2 )1%对氨基苯磺酸溶液：称1 g 对氨基苯磺酸溶于 100ml30%乙酸(醋酸)中。
(3) 100ppm 亚硝酸钠溶液：称 0.10g 亚硝酸钠溶于1000ml 蒸馏水中。
(4)0.067mol/LpH7.0 磷酸缓冲液分子量0.067mol PH7.0(1000ml磷酸缓冲液)所需量(g)N a 2HP0 4.2H 2O 178.057.1184g N a 2HP0 4.12H 20 358.22 14.4004gKH 2PO 4136.09 3.6292gN a 2HPO 4.2H 2O 7.1184g ( 或N a 2HPO 4.12H 2O 14.4004g)+ KH 2PO 4 3.6292g 定容到 1000ml 容量瓶中。
三，方法与步骤：(1) a -萘胺标准曲线的绘制：用 40ppm a -萘胺溶液配制成 0、5、10、20、30、40ppma -泰减标辄曲线的绘制5匀，在20-60分钟内用510nm 波长进行比色，以对照光密度为0,读取光密度，以a -萘胺含量作横坐标，光密度作纵坐标绘制标准曲线。
(2)将待测根系吸净吸干附着水称取 磷酸缓冲液各25ml ，混匀。
，从瓶中取 2ml 溶液放入25ml 容量瓶。
将其余的 25 C 下震荡3-6小时(如无震荡器时要在反应期间，2mL 溶液放入另一刻度试管，因为a -萘胺溶液会1g 放入100ml 三角瓶中，加 40ppm 的a -萘胺溶液和(3)静置5-10分钟后(根吸附以完毕) 溶液塞好瓶塞后，放在震荡器上，在 定时的摇动)，反应时间完毕后，再取自动氧化，所以要同时做无根的同样操作的空白试验（根样最好用整根；用切碎的根，a 萘胺溶液的氧化量会意外增加）。
2ml 测定液中，各加入 10ml 蒸馏水，混匀后再加入 的亚硝酸钠溶液1ml ，混匀，置于室温下 5分钟使之显 25ml ，在20-60分钟内用510nm 波长进行比色， 读取光密度，由标准曲线查出a -萘胺含量。
也可以将根系烘干，以干重计算根系活力（更 为准确些）。
（5）结果计算根系对a -萘胺的生物氧化量 Y （ug.g -1 .h -1 ）按下式进行计算 Y=[ （A-B ） - （C-D ） ]*E/ （t*W ）式中：A-第一次取液测定值（ug.ml -1），作为开始值，这是根表面氧化物质的氧化作用而 不是根的酶促反应；B-第二次取液测定值，是根的酶促反应后（如 3小时）剩余的a -萘胺浓度（ug.ml -1 ）。
A-B 即a -萘胺氧化总量；C-第一次空白测定值（ug.ml -1）; D-第二次空白测定值； C-D 即a -萘胺自发氧化量；E-稀释倍数24 （48/2 ）（因从48ml 中又取2ml ）； t-3小时； W-样品鲜重（也可以用干重计算）；2、根系活力（TTC 法）一、原理氯化三苯基四氮唑 （TTC ）是标准氧化电位为 80mV 的氧化还原色素， 溶于水中成为无色溶液， 但还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲（TTF ），如下式：生成的三苯甲（TTF ）比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，所以 TTC 被广泛用作酶试验的氢受体，植物根系中脱氢酶所引起的 TTC 还原，可因加入琥珀酸、延胡索酸、苹果酸得到增强， 而被丙二酸、碘乙酸所抑制。
所以 TTC 还原量能表示脱氢酶活性，并作为根系活力的指标。
二、实验材料、试剂与仪器设备 （一）试剂1. 乙酸乙酯（分析纯）。
2. 次硫酸钠（Na2S2O4，分析纯），粉末。
3.1 %TTC 溶液：准确称取 TTC1.0g ，溶于少量水中，定容到 100mL 。
用时稀释至需要的浓度。
4.磷酸缓冲液（1/15mol/L，pH7.0 ）。
5.1mol/L 硫酸：用量筒取比重 1.84的浓硫酸55mL ，边搅拌边加入盛有 500mL 蒸馏水的烧杯 中，冷却后稀（4）在上述两次及空白试验所吸取的 1%对氨基苯磺酸 1ml 和100ppm 色，然后加入蒸馏水，使整个容积为释至1000mL。
6.0.4mol/L 琥珀酸：称取琥珀酸4.72g，溶于水中，定容至100mL即成。
（二）仪器设备小烧杯3个，研钵1个，移液管：0.5mL1支、10mL1支、5mL3支，刻度试管6支，分光光度计，分析天平（感量0.1mg），电子顶载天平（感量0.1g），温箱，试管架，药勺，石英砂适量，滤纸。
三、实验步骤1. 定性测定（1 ）配制反应液把 1 % TTC溶液、0.4mol / L的琥珀酸和磷酸缓冲液按1:5:4比例混合。
（2 ）把根仔细洗净，把地上部分从茎基部切除。
将根放入三角瓶中，倒入反应液，以浸没根为度，置37 C左右暗处放1〜3h，以观察着色情况，新根尖端几毫米以及细侧根都明显地变成红色，表明该处有脱氢酶存在。