免疫组化入门实验操作

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免疫组化实验步骤流程

免疫组化实验步骤流程

免疫组化实验步骤流程1.样品制备:a.组织样品:从动物或人体获得的组织样品首先需要固定在福尔马林中,然后通过蜡包埋技术将组织固定在蜡块中。

之后,将蜡块切成薄片,然后将薄片分别放置于载玻片上。

b.细胞样品:将细胞悬浮液放置在载玻片上,并用福尔马林进行固定。

2.抗原恢复:固定的组织或细胞样品经过脱水和脱脂处理后,需要通过抗原恢复来揭示隐藏的抗原。

抗原恢复的方法可以是热处理、酶切或化学处理等。

3.形成蛋白结合位点:将载玻片上的样品用蛋白结合剂如牛血清白蛋白(BSA)、鱼胶或生物素素蛋白结合剂等进行封闭处理,以防止非特异性结合。

4.孵育抗体:a.主抗体:将特异性的首要抗体加入到样品中,与目标抗原结合形成抗原抗体复合物。

b.辅助抗体:添加荧光素或酶标记的次抗体,与主抗体结合,以扩大信号的产生。

5.洗涤:用缓冲液洗涤载玻片,以去除未结合的抗体和其他无关物质。

6.信号增强:a.酶标记的实验,为了增加信号强度,可以加入荧光素或发光底物。

b.荧光标记的实验,可以直接观察荧光。

7.显色:在酶标记的实验中,加入染色底物以产生可见的颜色,从而定位并显示目标抗原的存在。

8.盖玻片:在涂抹适当封片剂后,将载玻片盖上一片封片玻片,以保护样品并减少光的干扰。

9.显微镜观察:使用显微镜观察载玻片下的样品,并通过图像系统进行图像捕捉和分析。

10.结果评估:评估图像和数据以确定抗原的表达和分布情况。

根据实验目的,可以进行半定量或定量的数据分析。

需要注意的是,免疫组化实验中的条件、试剂和步骤会因实验目的不同而略有差异。

因此,在进行实验前需仔细阅读相关文献和制定适合的实验方案,以确保实验结果的准确性和可靠性。

免疫组化操作步骤(自编)

免疫组化操作步骤(自编)

免疫组化操作步骤一免疫组化( LP 法)操作步骤:1.切片常规脱蜡至水。

如需抗原修复,可在此步后进行2. 缓冲液洗 3min/2 次。

3. 为了降低内源性过氧化物酶造成的非特异性背景染色 , 将切片放在 Hydrogen Peroxide Block 中孵育 10-15 分钟。

4. 缓冲液洗 5min/2 次。

5. 滴加 Ultra V Block ,在室温下孵育 5 分钟以封闭非特异性的背景染色。

(注:孵育不要超过 10 分钟,否则会导致特异性染色降低。

如果一抗的稀释液中含有 5 - 10% 正常羊血清,这一步可以省略。

)6. 缓冲液洗 5min/2 次。

7. 滴加一抗工作液 37 ℃孵育 1 - 2 小时。

(具体孵育时间和温度由试验者最终决定)8. 缓冲液洗 5min/2 次。

9 .滴加 Primary Antibody Enhancer( 增强子 ) , 在室温下孵育 20 分钟。

10 .缓冲液洗 5min/2 次。

11 .滴加 HRP Polymer( 酶标二抗 ) ,在室温下孵育 30 分钟。

(注: HRP Polymer 对光敏感,应避免不必要的光暴露并储存在不透明的小瓶中。

)12 .缓冲液洗 5min/2 次。

13 .向 1ml DAB Plus Substrate ( 或 AEC Plus Substrate) 中滴加 1-2 滴 DAB Plus Chromogen (或 AEC Plus Chromogen ) , 混匀后滴加到切片上,孵育 3 - 15 分钟。

(具体时间由染色深浅决定。

)14 .自来水充分冲洗 , 复染,脱水 , 透明 , 封片。

二.免疫组化 ( 三步法 ) 操作步骤:( 1 )、石蜡切片脱蜡至水。

( 2 )、 3%H 2 O 2 室温孵育 5-10 分钟,以消除内源性过氧化物酶的活性。

( 3 )、蒸馏水冲洗, PBS 浸泡 5 分钟 x2 (如需抗原修复,可在此步后进行)。

免疫组化法实验操作步骤

免疫组化法实验操作步骤

免疫组化法实验操作步骤-CAL-FENGHAI-(2020YEAR-YICAI)_JINGBIAN免疫组化染色实验操作流程实验目的:观察标记物在细胞中的表达及分布。

一、病例资料和实验分组标本:经10% 福尔马林液固定,常规石蜡包埋,4µm厚切片编号备用。

二、试剂及免疫组化方法实验试剂:xx两步法免疫组画试剂盒和DAB显色试剂盒进行组化染色。

抗体1,抗体2。

二甲苯、无水乙醇、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠、柠檬酸、柠檬酸钠、甲醇、30% H2O2、羊血清、Triton液、中性树脂等。

仪器(1)10µl、100µl、200µl、1000µl可调微量加样枪(2)4℃冰箱(3)光学显微镜(4)恒温水浴锅(5)恒温烤箱(6)电热蒸馏水器(7)LEICA显微镜及VISITRON照相系统(8)其他:量筒、电炉、高压锅、染缸、湿盒、脱蜡架、冲洗球、免疫组化笔等。

主要试剂的配置(1) PBS缓冲液NaCl g磷酸氢二钠 g磷酸二氢钠 g加入1000ml容量瓶,加ddH2O至1000ml定容。

充分混合(2)L柠檬酸盐溶液(PH )A液:柠檬酸溶液(4℃保存)柠檬酸1000mlddH2OB液:柠檬酸钠溶液(4℃保存)柠檬酸钠1000mlddH2O900ml dH2O 缓冲液现用现配(1000ml mol/L)A液(18ml)+B液(82ml)充分混合,调整PH ,充分混合,调整PH (3)3% H2O230% H2O2:甲醇=1:9(4)%Triton的配制Triton原液 ml液4℃保存备用。

(5)5%羊血清的配制(1ml)羊血清 50µl%Triton 950µl4℃保存。

免疫组化方法(1)石蜡切片60℃烤箱烤片30min.(2)石蜡切片常规脱蜡二甲苯Ι15min -- 二甲苯Ⅱ15min -- 无水乙醇Ι15min -- 无水乙醇Ⅱ5min -- 无水乙醇Ⅲ 5min -- 95%乙醇5min -- 90%乙醇5min -- 80%乙醇5min -- 70%乙醇5min -- 蒸馏水冲洗3min,浸泡待用(浸泡在什么溶液中)。

免疫组化实验步骤完整版

免疫组化实验步骤完整版

免疫组化实验步骤完整版步骤1:标本采集和固定首先,需要从待检测样本中采集组织或细胞。

可以使用手术切片、活体组织、培养的细胞等作为标本。

然后,将采集的样本固定在载玻片或切片上,以保持其结构和形态的完整性。

步骤2:抗原暴露和体细胞抗原消除接下来,需要处理标本以使抗原裸露出来,并消除非特异性的抗体结合和细胞膜结合的抗原。

这一步骤常常涉及对组织或细胞的预处理,例如用石蜡脱脂、酶解抗体和孵化等。

步骤3:抗体特异性结合选择特异性的抗体用于检测待测蛋白质。

这些抗体可以是直接标记的一抗,或间接标记的二抗。

一抗是专门与目标抗原结合的抗体,而二抗则可以与一抗结合,以提高信号的灵敏度和特异性。

这一步骤中还需要选择适当的阴性对照,即未携带待检测抗原的样本。

步骤4:探针检测根据需要,可以使用不同的探针来检测目标分子。

常用的探针有标记的一抗、荧光探针、放射性标记物等。

标记的一抗可以直接结合抗原,然后使用染色剂进行可视化;荧光探针则通过荧光显微镜进行检测;放射性标记物可以通过放射自显影等方法进行检测。

步骤5:显色和对比计数将荧光、酶标记或放射性标记的物质显色,以便于检测和计数。

在染色的过程中,需要防止非特异性的染色,例如使用阻断剂、胶原等。

步骤6:结果分析根据观察到的染色强度、分布模式等结果,分析待测蛋白质在样本中的表达情况。

这可能需要与阴性对照和阳性对照进行比较,以确定实验结果的可靠性。

步骤7:图像捕获和分析使用显微镜或其他成像设备,将荧光、染色或放射性标记的图像捕获下来。

可以使用图像分析软件来计算和比较样本中的染色强度、面积等参数。

步骤8:数据统计和结果报告根据实验结果进行数据统计和分析,并将结果记录在报告中。

报告应包括样本信息、实验方法、结果和结论等内容,并根据需要进行解释和讨论。

总结:免疫组化实验是一种广泛应用于研究、诊断和治疗的方法。

它的步骤包括标本采集和固定、抗原暴露和体细胞抗原消除、抗体特异性结合、探针检测、显色和对比计数、结果分析、图像捕获和分析、数据统计和结果报告。

免疫组化实验步骤

免疫组化实验步骤

免疫组化实验步骤免疫组化操作步骤一、实验原理与意义免疫组织化学又称免疫细胞化学,是指带显色剂标记的特异性抗体在组织细胞原位通过抗原抗体反应和组织化学的呈色反应,对相应抗原进行定性、定位、定量测定的一项新技术。

它把免疫反应的特异性、组织化学的可见性巧妙地结合起来,借助显微镜(包括荧光显微镜、电子显微镜)的显像和放大作用,在细胞、亚细胞水平检测各种抗原物质(如蛋白质、多肽、酶、激素、病原体以及受体等)。

(一)、仪器设备1. 18cm不锈钢高压锅或电炉或用微波炉.2. 水浴锅(二)、试剂1. PBS缓冲液(ph7.2―7.4):NaC137mmol/L,KCl2.7mmol/L ,Na2HPO4 4.3mmol/L, KH2PO4 1.4mmol/L. 2.0.01mol/L柠檬酸钠缓冲液(CB,ph6.0,1000ml):柠檬酸三钠3g,柠檬酸0.4g。

3.0.5mol/L EDTA缓冲液(ph8.0):700ml水中溶解186.1g EDTA& 8226;2H2O,用10mmol/L NaOH调至ph8.0,加水至1000ml.4. 1mol/L的TBS缓冲液(ph8.0):在800ml水中溶解121gTris 碱,用1N的HCl调至pH8.0, 加水1000ml。

5. 酶消化液:a.0.1%胰蛋白酶:用0.1%CaCl 12(ph7.8)配制。

b.0.4%胃蛋白酶液:用0.1N的HCl配制。

6. 3%甲醇―H2O2溶液:用30%H2O2和80%甲醇溶液配制7. 风裱剂:a.甘油和0.5mmol/L碳酸盐缓冲液(pH9.0–9.5)等量混合 b 油和TBS(PBS)配制8.TBS/PBS PH9.0–9.5,适用于荧光纤维镜标本;ph7.0-7.4适合光学纤维标本(三)、操作流程1、脱蜡和水化:脱蜡前应将组织芯片在室温中放置60分钟或60℃恒温箱中烘烤20分钟。

a 组织芯片置于二甲苯中浸泡10分钟,更换二甲苯后在浸泡10分钟b 无水乙醇中浸泡五分钟c 95%乙醇中浸泡五分钟d 75%乙醇中浸泡五分钟2、抗原修复:用于福尔马林固定的石蜡包埋组织芯片:A 抗原热修复a 高压热修复在沸水中加入EDTA(ph8.0)或0.01m枸橼酸钠缓冲溶液(ph6.0).盖上不锈钢锅盖,但不能锁定。

免疫组化实验操作方法

免疫组化实验操作方法

免疫组化步骤:一.标本脱蜡及水化1.90℃恒温烘箱孵育半小时。

(或者60℃恒温烘箱孵育2h或过夜)(目的:使蜡块融化)2.依次放入二甲苯I,II各处理20min。

(目的:脱蜡)3.按不同的酒精浓度(100%,90%,80%,70%)(610室 100%,95%,80%,75%)分别水化10min。

(目的:洗去石蜡,然后一遍一遍置换高浓度的酒精)4.蒸馏水洗涤5min×2次。

(目的:洗去酒精)5.PBS缓冲液洗涤5min×2次。

二.标本抗原修复及封闭1.取出切片,放置于3%的过氧化氢槽中(30%过氧化氢30ml 加蒸馏水到300ml,即稀释10倍),室温孵育15min。

(目的:脱去内源性过氧化物酶)2.PBS缓冲液洗涤5min×2次。

(目的:洗去过氧化氢)3.取出标本,加入95℃~100℃预热抗原修复液(柠檬酸抗原修复液,PH 6.0)中低火、微波15min。

(抗原修复液先加热至100℃沸腾,然后微波炉调至解冻档,即差不多95℃~100℃。

目的:打开键,利于之后的抗原抗体反应)4.自然冷却至室温。

(或者放在冰水里冷却,速度较快)5.PBS缓冲液洗涤3min×3。

6.取出切片,擦干切片组织周围的液体,放置于湿盒中,标本加入羊血清(5%~10%),每张片子约50ul(30ul~50ul不等,即覆盖组织即可),室温孵育30min。

(此步骤为封闭)(SUPER PAP PEN在组织周围画圈,即可防止羊血清外溢)三.抗体加入及显色1.将切片上的液体甩干,滴加入50ul一抗工作液于组织上,于4℃冰箱中过夜(一般8~10小时,时间过一些问题也不大)。

(或者37℃恒温箱中孵育2h)2.将切片上的液体甩干,放置PBS缓冲液中洗涤3~5min×3~5次。

(时间可以短一些,但多洗涤几次)3.将切片上的液体甩干,加入二抗(每张片子约30ul~50ul,覆盖组织即可)室温下孵育30min。

免疫组化法实验操作步骤

免疫组化法实验操作步骤

免疫组化法实验操作步骤步骤一:取材固定1.将需要处理的组织或细胞样本,如切片或离心沉淀等,放置在含有适当浓度的固定试剂(如4%的中性缓冲甲醛)中,使其固定。

2.这一步的目的是保持蛋白质的结构和形态,使其对后续步骤的抗体反应更加稳定。

步骤二:脱水和包埋1.将样本从固定试剂中洗涤,并逐渐转移到乙醇溶液中,以脱水。

2.将样本转移到适当浓度的透明剂(如甲基丙烯酸甲酯)中,使其透明化。

3.最后,将样本包埋在合适的固化剂(如尼龙、蜡、树脂等)中,以便后续的切片操作。

步骤三:切片和烘干1.使用组织切片机将样本以适当的厚度切成切片。

2.将切片放置在加热平台上,烘干以去除切片中的水分。

步骤四:抗体处理1.使用适当的抗体稀释液将抗体与切片接触。

抗体可为一抗或二抗,具体选择取决于实验需求。

2.将切片放置在含有抗体的湿润孵育盒中,使其与抗体反应。

孵育温度和时间取决于抗体的要求,一般在4℃下孵育过夜。

步骤五:洗涤1.将切片取出,并置于洗涤缓冲液中,用于去除未结合的抗体。

2.反复洗涤3-4次,每次至少5分钟,确保切片完全清洗。

步骤六:标记1.添加适当浓度的二抗,如辣根过氧化物酶(HRP)标记的二抗,与已经结合的一抗反应。

2.孵育切片与二抗共反应,孵育温度和时间根据试剂的要求进行。

步骤七:显色和染色1.使用合适的显色剂将切片进行显色。

常见的显色剂有DAB(二氨基联苯氧化物)和VIP(有机磷染料)等。

2.彩色染色可根据实验需求进行,可以使用核染料如伊红、快速伊红等对细胞核进行染色。

步骤八:石蜡去除和封片1.将切片浸入去石蜡溶液中,去除石蜡。

2.使用适当稀释的巴豆胶溶液将切片封闭,确保切片在显微镜下观察时保持湿润。

步骤九:显微镜观察1.将封片放置在显微镜载物台上,使用适当放大倍率的显微镜观察切片。

2.观察切片的染色情况、抗体标记的结果等,记录并进行分析。

这些是一般的免疫组化法实验操作步骤,根据具体实验需求和试剂要求,可能会有一些细微的差异和额外的步骤。

免疫组化实验流程 临床医学研究中心

免疫组化实验流程  临床医学研究中心

免疫组化实验操作流程
1. 60℃烤片2 小时,烤片后放置一会恢复到室温
2. 脱蜡。

脱蜡剂脱蜡10 分钟,两次
3. 水化。

依次经过无水乙醇、95%、90%、80%、70%,各5 分钟,蒸馏水5 分钟
4. PBS 洗5 分钟,两到三次
5. 抗原修复。

采用0.01M pH
6.0 枸橼酸高压锅沸水浴修复,配制2L修复液置于高压锅内煮开,然后放入玻片用900W煮到冒气2min后关火,没有冒气后可以拔掉限压阀排气并开盖,然后降温到室温后取出。

PBS 洗 5 分钟,两到三次。

6. 3%双氧水封闭20 分钟,PBS 洗5 分钟,两到三次
7. 封闭液封闭,37℃或室温30min
8. 一抗孵育,4℃过夜.
9. 复温20 分钟,一抗可回收,PBS 洗5 分钟,两到三次
10. 二抗孵育,37℃ 20 分钟(二抗为生物素标记的羊抗兔IgG),PBS 洗5 分钟,两到三次(具体按说明书)
11. 三抗孵育,37℃ 20 分钟(三抗为辣根酶标记的链酶亲和素),PBS 洗5 分钟,两到三次(具体按说明书)
12. DAB 显色,镜下观察结果,适时终止。

(配制按说明书)
13. 苏木素复染5 分钟,镜下观察结果,适时终止,自来水冲洗片刻,0.5%的盐酸酒精(75%酒精配制)溶液分化几秒,自来水冲洗 5 分钟或用1%氨水泡2min蓝化
14. 脱水。

依次经过70%、80%、90%、95%、无水乙醇,每级1秒至1min,透明剂10min,两次
15. 封片,水溶性封片剂或中性树脂封片
图像分析软件Olympus CellSens Dimension 光学显微镜400X。

免疫组化操作步骤

免疫组化操作步骤

免疫组化操作流程试剂准备1. PBS缓冲液(pH7.2~7.4): NaCl 137mmol/L,KCl2.7mmol/L,Na2HPO4 4.3mmol/L,KH2PO4 1.4mmol/L。

2. 0.01mol/L柠檬酸盐缓冲液(CB,pH6.0,1000ml):柠檬酸三钠 3g,柠檬酸 0.4g。

即抗原修复液3.PBST: PBS+吐温-20(1000:1)洗液可全部运用PBST4. 3% 甲醇-H2O2溶液:用30%H2O2和80%甲醇溶液配制。

5. 封片剂:中性树脂+二甲苯。

操作流程免疫组织化学染色SP法:1. 脱蜡、水化:脱蜡前,应将切片在60℃恒温箱中烘烤60~120分钟,观察石蜡应溶解。

从烤箱拿出切片后尽快置于二甲苯中浸泡30分钟,更换二甲苯后再浸泡30分钟;无水乙醇中浸泡3分钟;95%乙醇中浸泡3分钟;70%乙醇中浸泡3分钟(我用80%);50%乙醇中浸泡3分钟;自来水中浸泡3分钟;梯度脱蜡2. 抗原修复:(用于福尔马林固定的石蜡包埋组织切片)高压热修复高压锅里放少许水,用一量杯或容器(大小能容纳玻片架为宜)装抗原修复液放入高压锅里一起煮沸,再放入玻片架,盖上不锈钢高压锅的盖子,将排气阀门套上,待听到阀门冒气时,即可倒计时2min,之后将玻片杯一起放入凉水中,静置15min,平衡至室温。

电磁炉1000W 2min。

3.丢弃抗原修复液,将玻片浸泡在去离子水中(时间不限)可省略4.用组织笔沿组织边缘画线(可与组织边缘留适当间隙),画完立即放入PBST溶液中浸泡3遍X3min(三个容器,每个容器3min,时间不限制)。

5. 3%H2O2滴加在切片上,室温静置15分钟(3%的H2O2用30%的H2O2加双蒸水稀释10倍,现配现用。

目的为阻断内源性过氧化物酶);6. PBST洗3次各3分钟(过三缸)7. 滴加正常山羊血清封闭液,室温30分钟。

用与一抗不同源的血清即可,本人用Western-blotting的含胎牛血清封闭液。

免疫组化实验步骤

免疫组化实验步骤

免疫组化操作步骤一、实验原理与意义免疫组织化学又称免疫细胞化学,是指带显色剂标记的特异性抗体在组织细胞原位通过抗原抗体反应和组织化学的呈色反应,对相应抗原进行定性、定位、定量测定的一项新技术。

它把免疫反应的特异性、组织化学的可见性巧妙地结合起来,借助显微镜(包括荧光显微镜、电子显微镜)的显像和放大作用,在细胞、亚细胞水平检测各种抗原物质(如蛋白质、多肽、酶、激素、病原体以及受体等)。

(一)、仪器设备1. 18cm不锈钢高压锅或电炉或用微波炉.2. 水浴锅(二)、试剂1. PBS缓冲液(ph7.2―7.4):NaC137mmol/L,KCl2.7mmol/L ,Na2HPO4 4.3mmol/L, KH2PO4 1.4mmol/L. 2.0.01mol/L柠檬酸钠缓冲液(CB,ph6.0,1000ml):柠檬酸三钠3g,柠檬酸0.4g。

3.0.5mol/L EDTA缓冲液(ph8.0):700ml水中溶解186.1g EDTA& 8226;2H2O,用10mmol/L NaOH调至ph8.0,加水至1000ml.4. 1mol/L的TBS缓冲液(ph8.0):在800ml水中溶解121gTris碱,用1N的HCl调至pH8.0, 加水1000ml。

5. 酶消化液:a.0.1%胰蛋白酶:用0.1%CaCl 12(ph7.8)配制。

b.0.4%胃蛋白酶液:用0.1N的HCl配制。

6. 3%甲醇―H2O2溶液:用30%H2O2和80%甲醇溶液配制7. 风裱剂:a.甘油和0.5mmol/L碳酸盐缓冲液(pH9.0–9.5)等量混合 b 油和TBS(PBS)配制8.TBS/PBS PH9.0–9.5,适用于荧光纤维镜标本;ph7.0-7.4适合光学纤维标本(三)、操作流程1、脱蜡和水化:脱蜡前应将组织芯片在室温中放置60分钟或60℃恒温箱中烘烤20分钟。

a 组织芯片置于二甲苯中浸泡10分钟,更换二甲苯后在浸泡10分钟b 无水乙醇中浸泡五分钟c 95%乙醇中浸泡五分钟d 75%乙醇中浸泡五分钟2、抗原修复:用于福尔马林固定的石蜡包埋组织芯片:A 抗原热修复a 高压热修复在沸水中加入EDTA(ph8.0)或0.01m枸橼酸钠缓冲溶液(ph6.0).盖上不锈钢锅盖,但不能锁定。

免疫组化操作规程及操作流程

免疫组化操作规程及操作流程

免疫组化操作规程及操作流程免疫组化技术是一种常用的细胞和组织学研究方法,广泛应用于病理学、生物学、药理学等领域。

下面将详细介绍免疫组化操作规程及操作流程。

一、实验前准备1.准备实验所需的试剂和试验设备,包括抗体、缓冲液、加标物、显色剂等。

2.检查免疫组化试剂的有效期,确保试剂的质量。

二、标本处理1.收集组织标本,如活检样本或动物组织。

2.快速处理标本,迅速取出,并选择适当的处理方法,如固定、包埋等。

3.处理过程中要避免标本的冻融、干燥等。

三、抗原回复1.对于经过固定的组织标本,使用抗原回复方法来恢复组织标本中的抗原活性。

2.选择适当的抗原回复方法,如热处理、酶解等。

四、非特异性结合阻断1.使用非特异性抗血清或蛋白质来阻断非特异性结合位点。

2.使非特异结合抗体活性降低,减少假阳性结果。

五、抗体处理2.优化抗体浓度,确保抗体与标本中的抗原结合。

3.对于特定抗体,可以进行荧光标记或酶标记等。

六、免疫组织染色1.用适当的缓冲液稀释抗体,并将其应用于组织标本上。

2.根据实验需求选择适当的孵育时间和温度。

3.利用显色剂或荧光显像剂对标本进行染色。

七、显微镜观察与分析1.将染色后的标本放置在显微镜下观察,并选择适当的增强荧光信号方法。

2.结合相关的正对照和负对照进行结果分析,确定一些蛋白质在组织中的表达情况。

3.分析结果并记录数据。

八、结果分析与报告1.根据观察结果,分析样本中目标抗原的表达情况。

2.比较不同样本之间的差异,得出结论并撰写实验报告。

九、实验后处理1.清洗使用过的实验工具和材料,避免交叉污染。

2.妥善处理废弃物和化学品,根据实验室内相应的安全操作规范进行处理。

免疫组化步骤

免疫组化步骤

步法免疫组化实验步骤详解: 1•脱蜡:脱蜡要达到将原组织玻片上的石蜡充分脱掉的目的,加热只是为了加速石蜡的溶解;
二甲苯1(15min 60 度)--二甲苯15min 60 度)--100% 乙醇
(10min)--90% 乙醇(5min) --80%乙醇(5min)--70% 乙醇(5min)--
蒸馏水(5min)
2•抗原修复(微波修复法):目的是让蛋白抗原充分暴露
1)柠檬酸盐溶液:(PH: 6.0) 500ml不同的蛋白应采用不同的抗原修复条件,比如说膜蛋白PDGFRA的煮沸时间不能过长;核蛋白KI67 及包浆蛋白应充分煮沸;
2)E DTA修复液(PH: 9.0)稀释后体积是 500ml cox2 及 PDGFRA!
白的抗原修复的效果较好;
3.清洗:PBS 5min*3 次;
4.去除组织 H2O2 酶:3%H2O2 37 度 10min ;
5.清洗:PBS 5min*3 次;
6•—抗孵育:4度过夜;
过夜--过夜--过夜--过夜--过夜
7•取出玻片盒,放置于室温复温 30min (—般不做此步骤);
8•—抗回收:将一抗回收标记清楚以备进行其他实验;
9.清洗:PBS 5min*3 次;
10•孵育二抗:37度30min ;二抗的添加主要是根据一抗的来源,抗
鼠、抗兔或者其他;
11.清洗: PBS 5min*3 次
12.DAB显色:DAB的显色时间主要取决于棕色颗粒的数目和浓度; 一般在3min-10min之间;
13•复染:用苏木精染色,根据显微镜下核的深度来判断;
14.蓝化:将染过的核放在水中10min左右;
15透明、封片:蓝化后的玻璃切片滴加中性树脂透明后封片;16•放置于65度烤箱,烘干,观察实验结果。

免疫组化法实验操作步骤

免疫组化法实验操作步骤

免疫组化法实验操作步骤免疫组织化学(Immunohistochemistry, IHC)是一种利用抗体与组织中的抗原特异性结合的技术。

它是一种重要的研究方法,可以用于检测和定位组织中的特定蛋白质和其他生化分子。

以下是免疫组织化学实验的一般操作步骤:1.样本处理:a.固定:将待检测的组织样本进行固定处理,以保持其形态结构并保留组织内的抗原。

b.切片:将固定的组织样本切成非常薄的切片(通常为3-5微米厚),并将其放置在载玻片上。

2.抗原解蓝(抗原恢复):a.对于不同类型的组织样本,选择适当的抗原解蓝方法。

b.抗原解蓝可以通过加热、酶解或其他方法来恢复组织样本中的抗原。

3.阻断非特异性结合:a. 使用一种非特异性的蛋白质来阻断载玻片上未特异性结合的位点,例如牛血清蛋白(Bovine Serum Albumin, BSA)或小鼠免疫球蛋白(Mouse IgG)。

b.加入适当浓度的阻断剂,并孵育片玻片上的切片,以阻断非特异性结合位点。

4.主抗体孵育:a.加入含有特定抗原的主抗体溶液,其可以与组织样本中特定的抗原结合。

b.孵育片玻片上的切片,使主抗体与待检测的抗原结合。

5.洗涤:a.用缓冲液或PBS等洗涤溶液洗涤载玻片上的切片,以去除未结合的主抗体。

6.二抗孵育:b.孵育片玻片上的切片,使辅助抗体与主抗体结合。

7.洗涤:a.再次用缓冲液或PBS洗涤载玻片上的切片,以去除未结合的辅助抗体。

8.信号放大:a.可根据需要,使用染色剂或底物来增强或显色识别待检测抗原的结合位置。

b.例如,使用荧光染料或酶底物,通过显微镜观察或光镜观察,可使抗原可视化。

9.洗涤:a.最后一次用缓冲液或PBS洗涤载玻片上的切片,以去除未结合的染色剂或底物。

10.封片:a.加入适当的封片剂,如富含丙酮的溶液,将载玻片上的切片封装起来,以保护切片和保存染色结果。

免疫组织化学是一种复杂的实验技术,需要仔细的操作和精确的控制条件才能得到准确的结果。

免疫组化实验操作,新手快速入门必看!

免疫组化实验操作,新手快速入门必看!

免疫组化实验操作,新手快速入门必看!YBIO钰博生物01/免疫组化原理免疫组织化学(immunohistochemistry,IHC)是一种综合定性、定位和定量;形态、机能和代谢密切结合为一体的研究和检测技术。

在原位检测出病原的同时,还能观察到组织病变与该病原的关系,确认受染细胞类型,从而有助于了解疾病的发病机理和病理过程。

作用:通过颜色来显示蛋白质的有无、定位(胞外、胞膜、胞浆、胞核)、含量变化样本种类:按来源:①组织;②培养细胞按制作方式:①石蜡片②冰冻片③细胞片免疫组化/荧光图YBIO钰博生物02/免疫组化流程图YBIO钰博生物03/免疫组化实验步骤01 固定固定的目的是为了使蛋白质凝固,减少或终止内源性/外源性细胞内分解酶的反应,防止组织细胞自溶,保存组织或细胞内的抗原性。

现在常用的固定剂有中性甲醛液,4%多聚甲醛-磷酸盐缓冲液。

有些固定剂对特殊组织有更好的效果,如苦味PLP固定液对于含糖组织保存更好,Helly固定液对于胰岛和垂体效果较好等。

02 脱水、石蜡包埋和制片脱水用梯度乙醇(由低到高)充分脱水,对于一些易脆的组织应减少高浓度酒精里的停留时间,透明的时间也应该控制缩短。

对组织浸蜡时,一般选用56℃-58℃熔点石蜡,浸蜡温度最好不超过60℃,防止抗原的损失。

包埋时应果断迅速,切片时注意检查刀片是否出现缺口,防止;蜡带出现裂痕。

03 脱蜡和水化使组织恢复到固定后的正常状态暴露抗原,方便与一抗结合。

若脱蜡与水化不完全易出现局灶性反应和浸洗不完全,产生非特异性背景着色。

04 抗原修复由于组织在甲醛或多聚甲醛在固定中,发生蛋白之间交联及醛基的封闭作用,从而掩盖抗原决定簇。

通过抗原修复,使得细胞内抗原决定簇重新暴露,提高抗原检测率,常用方法通常使用高压加热修复,使用高压加热修复对修复温度和时间的把握十分重要,温度越高修复时间越短,温度与修复时间呈负相关。

修复结束后注意室温冷却,让蛋白自然复性。

免疫组化操作规程及操作流程

免疫组化操作规程及操作流程

免疫组化操作规程一、实验原理与意义免疫组织化学又称免疫细胞化学,是指带显色剂标记的特异性抗体在组织细胞原位通过抗原抗体反应和组织化学的呈色反应,对相应抗原进行定性、定位、定量测定的一项新技术。

它把免疫反应的特异性、组织化学的可见性巧妙地结合起来,借助显微镜(包括荧光显微镜、电子显微镜)的显像和放大作用,在细胞、亚细胞水平检测各种抗原物质(如蛋白质、多肽、酶、激素、病原体以及受体等)。

二、实验器材微波炉、吹风机、组化笔、湿盒、烤箱、振荡器、染缸、光学显微镜、纯木浆卫生纸、计时器和通风橱等。

三、试剂配制1. 0.01 M PBS(pH 7.34 ):9.0 g NaCl + 50 ml 0.2 M PB 加双蒸水至1000 ml;1000 ml0.2M PB (pH 7.4)=5.93 g NaH 2 PO 4 ·2H 2 O+58.02 g Na 2 HPO 4 ·12H 2 O in 1000 ml 双蒸水或=190 ml A + 810 ml B(A. 0.2 M NaH 2 PO 4 ·2H 2 O:15.6 g in 500 ml ddH 2 O;B. 0.2M Na 2 HPO 4 ·12H 2 O:71.632 g in 1000 ml dH 2 O)。

2. Citrate Buffered Saline(0.01 M 柠檬酸缓冲液,PH6.0):28 ml A + 72 ml B + 200 ml ddH 2 O(A.Citrate acid(柠檬酸):10.5 g 加双蒸水至1000 ml;B.Citrate sodium(柠檬酸钠):29.41 g 加双蒸水至1000 ml)。

3. 细胞通透液:由终浓度分别为0.3%双氧水和0.3%Triton X-100 混合而成。

配制方法是先用微波加热的36 ml PBS,再接着加120 ul TritonX-100,并加热一会儿,冷却至临用前加0.4 ml 30%H 2 O 2 。

免疫组化实验步骤

免疫组化实验步骤

免疫组化实验步骤1.血样制备:-采集血液样本,离心分离血浆或血清。

-用PBS洗涤血浆或血清,去除杂质。

2.组织固定:-采集待检组织样本,用缓冲福迪液进行固定。

常用的福迪液包括4%的甲醛和10%的中性缓冲福迪液。

-将组织固定在玻片上,通常通过石蜡包埋来保护组织样本。

3.切片:-使用旋转式或电动切片机将固定的组织切割成5-10μm厚的切片。

-将切片放置在带有去福迪剂密封的玻片上,然后进行脱脂和重水处理。

4.抗原恢复:-将切片浸泡在适当的抗原恢复缓冲液中,以恢复切片中的抗原结构。

-常用的抗原恢复方法包括热敏感抗原恢复、酶消化抗原恢复和酸碱抗原恢复等。

5.阻断非特异性结合位点:-使用适当浓度的蛋白抑制剂(如牛血清蛋白)在切片上进行阻断,防止非特异性结合。

-将切片在室温下孵育一段时间,以使蛋白抑制剂有效阻断非特异性结合。

6.抗体染色:-添加特定的初级抗体到切片上,与待检测的特定抗原结合。

-孵育切片,使初级抗体与抗原结合。

-将切片用PBS或缓冲盐水洗涤去除未结合的抗体。

7.信号放大:-添加合适的二级抗体到切片上,与初级抗体结合。

二级抗体可标记有荧光染料、酶或金粒等。

-孵育切片,使二级抗体与初级抗体结合。

-将切片用PBS或缓冲盐水洗涤去除未结合的二级抗体。

8.检测与成像:-根据二级抗体标记的方式,使用合适的检测方法进行信号放大。

-如果使用荧光标记的二级抗体,可以利用荧光显微镜观察和拍摄图像。

-如果使用酶标记的二级抗体,可以使用底物和显色试剂进行检测和成像。

9.结果分析:-观察并分析免疫组化染色结果,评估抗原的定位和表达情况。

-可以使用计算机图像分析系统进行定量分析和比较。

10.结论和报告:-根据实验结果,得出结论并撰写实验报告。

-将实验结果与已知文献资料进行对比和解释,讨论可能的研究价值和应用前景。

注意事项:-实验过程中需严格遵守无菌操作规范,以避免交叉污染和误差。

-选用合适的正对照和阴性对照,以确保实验结果的准确性和可靠性。

免疫组化实验步骤

免疫组化实验步骤

免疫组化实验步骤
1 前期准备
免疫组化实验试验主要是利用细胞中含有特定标志物的抗体,来观察细胞中某些特定蛋白质的位置和分布情况,其前期准备工作有以下几点需要考虑:
1、要做免疫组化实验必须首先准备一些*抗体,即抗特定标志物的抗体;
2、准备标本培养环境,保证细胞存活活跃;
3、清点实验要用到的必要物质,检查是否所有实验材料都已准备就绪;
4、准备实验记录,如实验方案、实验步骤、实验结果等,以保证实验数据的准确性和可比性。

2 具体实验步骤
免疫组化实验是实验员非常关注的一个实验,下面罗列出其具体实验步骤:
1、将标本培养到细胞形成一定规模的培养皿;
2、冷冻切割:将细胞悬停的溶液,用-20度的硫酸乙酸或三氯甲烷冷冻,然后将其分割为明显的薄片;
3、将冷冻标本培养到特定的沉淀液中,然后以石蜡改变其物理性质,使蛋白质定置固定;
4、将固定的载体实验片上滴涂稀释的抗体,经一定的反应时间,使其与抗原结合;
5、以使抗体以及它所结合的标志物发挥发色效果,得以定位特定的蛋白质。

免疫组化实验往往被用来观察某个蛋白质在不同细胞水平和组织水平分布情况,从而形成具有一定科学依据性的认识,为临床医学研究和药物方案提供可靠的指导和依据。

免疫组化操作步骤

免疫组化操作步骤

免疫组化操作步骤免疫组化(Immunohistochemistry,IHC)是一种广泛应用于病理学和生物医学研究中,用于检测和定量分析组织或细胞中特定抗原的方法。

它通过将标记有特定抗体的染色剂与细胞或组织中的相应抗原结合,从而实现对抗原的定位和可视化。

以下是免疫组化操作的详细步骤:准备组织样本:1.选择需要研究的组织样本,可以是固定的组织块、冰冻切片或细胞涂片。

2.如果是固定的组织块,使用福尔马林等适当的固定剂进行固定,并进行脱水和包埋。

3.如果是冰冻切片,将组织冷冻在液氮中,使用微型切片机切割薄片。

4.如果是细胞涂片,将细胞均匀涂布在载玻片上。

脱脂和再脱水:1. 对于固定的组织块和细胞涂片,使用低渗透性石蜡溶液(如xylene)进行脱脂,一般需要多次处理。

2.使用梯度酒精浓度(例如100%,90%,80%和70%)进行再脱水处理,每个浓度的浸泡时间一般为5-10分钟。

抗原修复:1.固定的组织块可使用热诱导抗原修复(如加热高压反应釜中)或酶诱导抗原修复(如2%的蛋白酶)进行抗原修复。

2.冰冻切片和细胞涂片不需要抗原修复。

阻断非特异性结合位点:1.使用一种非特异性抗体,如牛血清蛋白、小鼠和兔血清、杂交小鼠兔血清混合物等,进行阻断非特异性结合位点,减少假阳性反应。

一抗和二抗处理:1.加入特异性一抗,该抗体将结合目标抗原。

一抗的浓度根据实验要求和文献建议进行选择。

2.在室温下,对样本进行适当时间的孵育,以便一抗与抗原结合。

4.加入标记有荧光素或酶素的二抗,如荧光素-同种同型抗体或酶标记的抗小鼠或抗兔免疫球蛋白。

5.孵育样本适当时间,以便二抗与一抗结合。

洗涤:1.使用缓冲液对样本进行洗涤,以去除未结合的抗体和其他非特异性的结合物。

2.洗涤的时间和次数根据实验要求和抗体的特性进行调整。

可视化和显色:1.对于荧光标记的二抗,使用荧光显微镜观察并拍摄图像。

2.对于酶标记的二抗,使用适当的显色物质,如DAB(3,3'-二氨基苯啶)或VIP(维泊酶)等,进行显色反应。

免疫组化入门实验操作

免疫组化入门实验操作

免疫组化入门实验操作1.一、实验目的:2.了解免疫组化基本原理。

3.了解免疫组化实验操作及注意事项。

4.免疫组化结果判定。

通过实验, 让学生熟悉免疫组化操作流程及注意事项, 对抗原抗体结合、抗原修复和酶催化底物显色进行研究。

要求学生通过查阅文献, 在归纳、对比、总结的基础上对免疫组化有进一步的了解。

二、实验原理:三、实验材料:一抗: CD5.CK8、Ki671.二抗: MaxVision32.其它:柠檬酸抗原修复液、过氧化物酶阻断剂、PBS缓冲液、DAB.孵育盒、染色架、苏木素、盖玻片、冲洗瓶、中性树胶, 孵育盒。

3.四、实验步骤:4.脱蜡水化5.二甲苯5min, 二甲苯5min, 二甲苯5min, 无水乙醇2min, 无水乙醇2min, 95%酒精2min, 85%酒精2min, 自来水冲洗。

6.抗原修复7.高压锅中加入1200mL柠檬酸修复液, 电磁炉煮沸后放入切片, 扣紧锅盖,功率调至800W, 至压力阀均匀喷气后计时 1.5min, 移开高压锅室温冷却10min, 自来水冷却。

8.过氧化物酶阻断9.修复结束后, 流水冲洗干净, 除去自来水, 在离组织3mm处用免疫组化油笔画圈或用纸巾擦干组织外残留的液体, 滴加50 μL(一滴)过氧化物酶阻断剂, 室温孵育10min, PBS冲洗3×3min。

10.一抗11.甩去PBS, 纸巾擦干组织3mm外的残留液体, 每张切片加50 μL(一滴)相应一抗, 室温下孵育60分钟, PBS冲洗3×3min。

12.二抗13.甩去PBS, 纸巾擦干组织3mm外的残留液体, 每张切片加50 μL(一滴)MaxVisionTM试剂, 室温下孵育30分钟, PBS冲洗3×3min。

14.DAB15.甩去PBS液, 纸巾擦干组织3mm外的残留液体, 每张切片加50 μL(一滴)新鲜配制的DAB, 显色5分钟, 自来水冲洗。

16.苏木素复染17.每张切片滴加50 μL(一滴)苏木素, 20-30秒后自来水冲洗30s以上, 或浸泡于PBS中30s以上再自来水冲洗。

免疫组化基本操作流程

免疫组化基本操作流程

免疫组化基本操作流程操作流程:1、脱蜡和水化脱蜡前,将组织切片放在60℃恒温箱中烘烤30-90分钟。

(1)置于二甲苯 I中浸泡 10分钟,在二甲苯I I中再浸泡 10分钟;(2)无水乙醇 I中浸泡5分钟,在无水乙醇I I中再浸泡5分钟;(3)95%乙醇中浸泡3-5分钟;(4)80%乙醇中浸泡3-5 分钟;(5)75%乙醇中浸泡3-5分钟;(6)蒸馏水中浸泡3-5分钟;2、去除内源性过氧化氢酶用蒸馏水或 PBS配置新鲜的 3%H2O2,室温封闭 10分钟,PBS/蒸馏水洗3次,每次3-5分钟。

3、抗原修复用于福尔马林固定的石蜡包埋组织芯片(1)微波热修复:取一定量的抗原修复液于微波盒中,微波加热至沸腾;将脱蜡水化后的组织芯片置于耐高温塑料切片架上,放入已沸腾的缓冲液中,中高档微波P-60继续处理10-20分钟;取出微波盒冷却至室温,取出玻片,先用蒸馏水洗两次后用PBS洗3-5次,每次5分钟。

(2)酶消化方法:常用0.1% 胰蛋白酶和0.4% 胃蛋白酶液。

胰蛋白酶使用前预热至37℃,切片也预热至37℃,消化时间约为5-30分钟;胃蛋白酶消化37℃时间为10-30 分钟。

4、免疫组织化学染色(1)滴加正常山羊血清封闭液,37℃,30分钟。

(2)甩去多余液体,滴加一抗,37℃孵育1小时或4℃过夜(4℃过夜后在37℃复温30-45分钟)。

(3)PBS洗3次,每次5分钟。

(4)滴加二抗,孵育条件参见所用试剂盒。

(5)PBS洗3次,每次5分钟。

(6)DAB显色,在显微镜下掌握染色程度。

(7)自来水/蒸馏水洗终止染色,苏木素复染,盐酸酒精分化;(8)脱水、透明、封片、镜检。

操作规程1、脱蜡和水化(1)脱蜡前,将组织切片放在60℃恒温箱中烘烤1-3小时,恒温箱温度不得高于70℃,恒温箱内不得长期(超过24小时)存放物品,烤片结束后且恒温箱内没有其他切片等物品,请及时关闭恒温箱,避免恒温箱使用时间过长。

(2)使用通风橱内的二甲苯和梯度乙醇脱蜡,不得将二甲苯和梯度乙醇拿到通风橱外使用。

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免疫组化入门实验操作一、实验目的:1.了解免疫组化基本原理。

2.了解免疫组化实验操作及注意事项。

3.免疫组化结果判定。

通过实验,让学生熟悉免疫组化操作流程及注意事项,对抗原抗体结合、抗原修复和酶催化底物显色进行研究。

要求学生通过查阅文献,在归纳、对比、总结的基础上对免疫组化有进一步的了解。

二、实验原理:三、实验材料:一抗:CD5、CK8、Ki67二抗:MaxVision3其它:柠檬酸抗原修复液、过氧化物酶阻断剂、PBS缓冲液、DAB、孵育盒、染色架、苏木素、盖玻片、冲洗瓶、中性树胶,孵育盒。

四、实验步骤:1.脱蜡水化二甲苯5min,二甲苯5min,二甲苯5min,无水乙醇2min,无水乙醇2min,95%酒精2min,85%酒精2min,自来水冲洗。

2.抗原修复高压锅中加入1200mL柠檬酸修复液,电磁炉煮沸后放入切片,扣紧锅盖,功率调至800W,至压力阀均匀喷气后计时 1.5min,移开高压锅室温冷却10min,自来水冷却。

3.过氧化物酶阻断修复结束后,流水冲洗干净,除去自来水,在离组织3mm处用免疫组化油笔画圈或用纸巾擦干组织外残留的液体,滴加50 μL(一滴)过氧化物酶阻断剂,室温孵育10min,PBS冲洗3×3min。

4.一抗甩去PBS,纸巾擦干组织3mm外的残留液体,每张切片加50 μL(一滴)相应一抗,室温下孵育60分钟,PBS冲洗3×3min。

5.二抗甩去PBS,纸巾擦干组织3mm外的残留液体,每张切片加50 μL(一滴)MaxVisionTM试剂,室温下孵育30分钟,PBS冲洗3×3min。

6.DAB甩去PBS液,纸巾擦干组织3mm外的残留液体,每张切片加50 μL(一滴)新鲜配制的DAB,显色5分钟,自来水冲洗。

7.苏木素复染每张切片滴加50 μL(一滴)苏木素,20-30秒后自来水冲洗30s以上,或浸泡于PBS中30s以上再自来水冲洗。

8.封片梯度酒精脱水干燥(85%酒精2min,95%酒精2min,无水乙醇2min,无水乙醇2min,二甲苯1min),或直接电吹风吹干,中性树胶封固。

一、柠檬酸缓冲液高温高压修复法取一定量pH=6.0柠檬酸盐缓冲液(800-1500ml)于压力锅中,大火加热至沸腾;将脱蜡水化后的组织切片至于不锈钢或耐高温塑料切片架上,放入已沸腾的缓冲液中。

盖上锅盖,扣上压力阀,将功率调至800W,继续加热至喷气,从喷气开始计时,1.5分钟后,压力锅离开热源,室温冷却10分钟后用自来水冲淋高压锅外壁加速冷却至室温,取出玻片,自来水冲洗干净。

注意事项:1、加热时间长短(1.5分钟)和加热功率(800W)的控制很重要,时间过短可能会使染色强度变浅,时间过长可能会使染色背景加深。

2、必须使用不锈钢或耐高温塑料切片架,不能使用铜架,以防缓冲液pH值增高而导致掉片。

3、高压锅离开热源后必须等缓冲液冷却后,才能把切片取出。

4、为防止组织脱落,必须使用防脱玻片。

5、缓冲液的量必须保证所有切片都能浸泡到。

二、EDTA水煮修复法取500mlEDTA抗原修复液于1000ml不锈钢锅中,加热至沸腾,将电磁炉功率调至保温状态(120W),使修复液保持微沸状态。

将脱蜡水化后的切片置于耐高温染色架上,再将染色架缓慢放入不锈钢锅中(注意:若快速放入可能会导致组织脱落),之后加盖继续加热20分钟。

再将不锈钢锅从电磁炉上移开,室温冷却10分钟后用自来水冲淋不锈钢锅外壁加速冷却至室温,取出玻片,自来水冲洗干净,除去自来水,在离组织3mm处用免疫组化油笔画圈,PBS 冲洗2次,每次3分钟。

1、加热时间长短(20分钟)和加热功率(120W)的控制很重要2、修复液不能重复使用。

3、工作液的量必须保证切片始终能浸泡在液体内。

4、为防止组织脱落,必须使用防脱玻片。

5、抗原修复后一定要等修复液冷却后,才能将切片取出。

石蜡切片制作和HE染色一、目的要求:简要介绍石蜡切片的制作和苏木精、曙红染色法(简称H.E 染色法),借以了解石蜡切片制作的基本原理和一般方法。

二、实验用具:解剖器一套、单面刀片、切片刀、切片机、载玻片、盖玻片、标本瓶、烧杯、量筒、漏斗、染色缸、树胶瓶、酒精灯、毛笔、绘图纸、滤纸、熔蜡箱(或恒温箱)、展片台(或烫板)、小木块、蜡带盒、烤片盒、切片托盘。

三、实验材料:蛙或小白鼠。

四、实验内容:(一)药品:1、70%、80%、90%、95%酒精及无水酒精:95%以下的各级浓度酒精是用95%酒精加蒸馏水稀释而成。

简单的稀释方法:所需稀释的浓度是多少,就量取多少毫升原浓度的酒精,再加蒸馏水至该酒精的原浓度即可。

例如,配制70%酒精,就量取70ml95%酒精,然后加入25ml蒸馏水即成。

2、固定液:常用的固定液有10%福尔马林、Bouin氏液和Zenker氏液等。

Bouin氏液在组织学切片技术方面应用甚广,配方如下:苦味酸饱和水溶液75ml福尔马林25ml冰醋酸5ml3、蛋白甘油:蛋白甘油是粘贴蜡片用的粘片剂。

配方如下:取一新鲜鸡蛋的蛋白,充分搅拌成雪花状泡沫,然后滤去泡沫,加入等量甘油,搅拌均匀,再加入一小粒麝香草酚防腐。

4、染色液:以H.E.染色法为例,需配制苏木精染液和曙红染液。

⑴、苏木精染液:苏木精是一种碱性染料,它可将染色质染成蓝紫色。

配方有多种,现介绍Harris氏苏木精的配制:甲液:苏木精0.5 g95%酒精5.0 ml 乙液:硫酸铝钾(或硫酸铝铵)10g蒸馏水100 ml氧化汞0.25g冰醋酸几滴先将甲液溶解,再将硫酸铝钾溶于蒸馏水中,并加热使溶解,然后将两液混合煮沸,离开火焰后缓缓加入氧化汞。

冷却后过滤,加入几滴冰醋酸即成。

⑵、0.5%曙红酒精溶液:即0.5g曙红溶于100ml95%酒精中。

曙红是一种酸性染料,它可使多种细胞的细胞质染成粉红色或红色。

5、盐酸酒精:盐酸酒精用于分色。

配制方法是在100ml70%酒精中加入1ml盐酸。

6、其它:二甲苯、切片石蜡、中性树胶等。

(二)、操作步骤:进行组织学研究,必须把活的组织或器官制作成切片标本,以便在显微镜下进行观察。

切片标本也就是利用组织的不同结构,经过染色后呈现出不同的颜色和不同的折光率而制作的。

制片的方法众多,但基本要求是尽量保持结构的真相,切成薄的切片,应用不同的染色方法,使内部结构清晰易见。

石蜡切片法是最常用的一种制片法。

其制作过程是:取材→固定→冲洗→脱水→透明→浸蜡→包埋→切片→贴片→烤片→脱蜡→复水→染色→脱水→透明→封藏。

现分述如下:1、取材和固定:固定的目的在于保存组织内细胞原有的结构和形态,使其与生活时相似,因此要求固定的材料越新鲜越好。

把动物杀死后应立即割取组织块,并快速投入固定液中。

将蛙或小白鼠快速剪去头部,打开腹腔,用锐利的刀片割取小块组织(肝、肠等)。

组织块的大小以厚度不超过5mm 为宜。

然后,将取下的组织块迅速投入Bouin氏固定液中。

固定时间为数小时至24小时(需视组织块的大小而定)。

2、冲洗:经固定的材料,可根据不同的固定液,分别用水或酒精冲洗,以洗去固定液,否则固定液留在组织会有碍染色.用Bouin氏液固定的材料,可直接移入70%酒精中,多换几次酒精,直至无黄色时为止。

也可在酒精中加入几滴氨水或饱和碳酸锂溶液,以迅速洗去黄色。

但留少许黄色也无妨碍。

浸洗后的材料若暂时不制片,可保存于70%酒精中。

3、脱水:柔软并含有多量水分的组织是易切成薄片的,故必须增加组织的硬度。

石蜡切片法就是使石蜡渗入组织,以达到支持增硬的作用。

但水与石蜡是不相混合的,因此,在浸蜡、包埋前须将组织中的水分完全除去,这一步骤即为脱水。

常用的脱水剂是酒精。

脱水时,先从低浓度的酒精开始,然后,递增浓度,直至无水酒精。

具体方法是,将材料经70%酒精→80%酒精→95%酒精(Ⅰ)→95%酒精(Ⅱ)→无水酒精(Ⅰ)→无水酒精(Ⅱ),各级酒精1-2小时。

脱水应彻底,否则材料不能透明,影响石蜡的浸入,致使难以切片。

4、透明:酒精与石蜡不能混和,因此,脱水后的材料在浸蜡前,还必须经过透明。

透明剂既可替代组织中的酒精,又能溶解石蜡,以利石蜡的渗入。

二甲苯是常用的一种透明剂。

将脱水后的材料经1:1无水酒精与二甲苯→二甲苯(Ⅰ)→二甲苯(Ⅱ),各级时间为0.5-2小时,务使组织达到透明为止。

5、浸蜡:将已透明的材料移入熔化的石蜡内浸渍即为浸蜡。

其目的是去除组织中的透明剂,而使石蜡渗入整个组织,获得一定的硬度和韧度,以便切成薄的切片。

先将装有56-58℃石蜡的三个蜡杯放在熔蜡箱内熔化,并使熔蜡箱的温度保持恒定(约58℃),切勿太高或太低。

然后将透明了的材料放入蜡杯(Ⅰ)→蜡杯(Ⅱ)→蜡杯(Ⅲ)。

浸蜡时间视材料大小而定,一般总的浸蜡时间为2-4小时左右。

6、包埋:将浸蜡后的材料包埋于石蜡中,并使它凝固成蜡块,这一过程称为包埋。

包埋前,视组织块的大小先将绘图纸折成一纸盒,作为包埋的容器。

纸盒折法如下:先折1、2线,次折3、4线,然后使a、b两折重叠,向外折出5线;同法折出6线,再折c线。

最后依同法折出7、8线及d线即成。

将纸盒盛满已熔化的石蜡,随即将第三杯中已浸蜡的材料放入其中,应注意切面朝下,位置放正。

然后速将纸盒半浸于冷水中,待石蜡表面凝结后,将纸盒全部浸入水中冷却。

石蜡全部凝固后,拆去纸盒即成蜡块。

7、切片:切片前,先将蜡块用刀片修整成上下两边平行的正方形或长方形,否则切出的蜡带弯曲不直,或无法连成带状。

将修整后的蜡块粘在小木块上,小木块装在切片机上,以待切片。

在旋转式切片机上将蜡块切成4-8um厚的薄片。

切下的薄片连。

蜡带。

用毛笔轻轻取下蜡带,放在蜡带盒内备用。

8、贴片或烤片:将蜡片粘贴在载玻片上即为贴片。

用小玻棒蘸取一点蛋白甘油滴于一干净的载玻片上,用手指涂匀,并加几滴蒸馏水于载玻片上。

将蜡带按要求切成适当长度的蜡片,然后用小镊子将蜡片轻放在载玻片的水面上,再把载玻片放在展片台上(温度为45℃左右)。

蜡片受热后即慢慢展平。

待完全展平后,用解剖针将切片位置拨正,倾去载玻片上的余水后,将其放在烤片盒中,置于50℃左右恒温箱内烤干。

9、染色:染色剂多为水溶液,故染色前必须先经脱蜡、复水等步骤。

染色方法众多,以H.E.染色法而言有下列步骤:⑴、脱蜡:将烤干的切片放入二甲苯(Ⅰ)→二甲苯(Ⅱ)中,各为5min,以溶去切片上的石蜡。

⑵、复水:是将脱蜡后的切片经各级浓度酒精逐渐下降到水的过程,即将二甲苯(Ⅱ)中取出的切片移入无水酒精→95%酒精→80%酒精→70%酒精→蒸馏水,各级中停留1-5min。

⑶、染色:①、将蒸馏水洗涤后的切片移入Harris苏木精液中5-10min,使细胞核着色。

②、用自来水洗去切片上残余的染液。

③、用1%盐酸酒精分色数分钟。

分色时就是褪去细胞质不应着色部分的颜色,而使细胞核着色得清晰适度。

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