单克隆抗体的制备方法
单克隆抗体制备方法(全)
单克隆抗体制备方法1975年Kohler和Milstein发现将小鼠骨髓瘤细胞与和绵羊红细胞免疫的小鼠脾细胞进行融合,形成的杂交瘤细胞既可产生抗体,又可无性繁殖,从而创立了单克隆抗体杂交瘤技术。
这一技术上的突破使血清学的研究进入了一个高度精确的新纪元。
采用杂交瘤技术制备单克隆抗体包括动物免疫、细胞融合、选择杂交瘤、检测抗体、杂交瘤细胞的克隆化、冻存以及单克隆抗体的大量生产,要经过几个月的一系列实验步骤。
主要仪器设备:超净工作台、CO2恒温培养箱、超低温冰箱(-70℃)、倒置显微镜、精密天平或电子天平、液氮罐、离心机(水平转子,4000r/min)、37℃水浴箱、纯水装置、滤器、真空泵等。
其需要的主要器械包括:100ml、50ml、25ml细胞培养瓶,10ml、1ml刻度吸管,试管,滴管(弯头、直头),平皿,烧杯,500ml、250ml、100ml盐水瓶,青霉素小瓶,10ml、5ml、1ml注射器等,96孔、24孔细胞培养板,融合管(50ml圆底带盖玻璃或塑料离心管),眼科剪刀,眼科镊,血细胞计数板,可调微量加样器(~50ul,~200ul,~1000ul),弯头针头,200目筛网,小鼠固定装置等。
此外,一般的单克隆抗体制备方法大同小异。
方法动物的选择与免疫1. 动物的选择BALB/C小鼠,较温顺,离窝的活动范围小,体弱,食量及排污较小,一般环境洁净的实验室均能饲养成活。
目前开展杂交瘤技术的实验室多选用纯种BALA/C小鼠。
2. 免疫方案选择合适的免疫方案对于细胞融合杂交的成功,获得高质量的McAb至关重要。
一般在融合前两个月左右根据确立免疫方案开始初次免疫,免疫方案应根据抗原的特性不同而定。
(1)可溶性抗原免疫原性较弱,一般要加佐剂,半抗原应先制备免疫原,再加佐剂。
常用佐剂:福氏完全佐剂、福氏不完全佐剂。
初次免疫抗原1~50μg加福氏完全佐剂皮下多点注射或脾内注射(一般0.8~1ml,0.2ml/点)↓3周后第二次免疫剂量同上,加福氏不完全佐剂皮下或ip(腹腔内注射)(ip剂量不宜超过0.5ml)↓3周后第三次免疫剂量同一,不加佐剂,ip(5~7天后采血测其效价)↓2~3周加强免疫,剂量50~500μg为宜,ip或iv(静脉内注射)↓3天后取脾融合目前,用于可溶性抗原(特别是一些弱抗原)的免疫方案也不断有所更新,如:①将可溶性抗原颗粒化或固相化,一方面增强了抗原的免疫原性,另一方面可降低抗原的使用量。
单克隆抗体制备流程图
单抗制备流程1975年,Kohler和Milstein发现将小鼠骨髓瘤细胞和绵羊红细胞免疫的小鼠脾细胞进行融合,形成的杂交细胞既可产生抗体,又可无限增殖,从而创立了单克隆抗体杂交瘤技术。
这一技术上的突破不仅为医学与生物学基础研究开创了新纪元,也为临床疾病的诊、防、治提供了新的工具。
制备单克隆抗体包括动物免疫、细胞融合、选择杂交瘤、检测抗体、杂交瘤细胞的克隆化、冻存以及单克隆抗体的大量生产,要经过几个月的一系列实验步骤,下面按照制备单克隆抗体的流程顺序,逐一介绍其实验方法。
一、细胞融合前准备(一) 免疫方案选择合适的免疫方案对于细胞融合杂交的成功,获得高质量的McAb至关重要。
一般要在融合前两个月左右确立免疫方案开始初次免疫,免疫方案应根据抗原的特性不同而定。
.1.颗粒性抗原免疫性较强,不加佐剂就可获得很好的免疫效果。
下面以细胞性抗原为例的免疫方案:初次免疫1×107/ ip (腹腔内注射)↓2~3周后第二次免疫1×107/ ip↓3周后\加强免疫(融合前三天) 1×107/ ip或iv(静脉内注射)↓取脾融合2.可溶性抗原免疫原性弱,一般要加佐剂,常用佐剂:福氏完全佐剂,福氏不完全佐剂。
要求抗原和佐剂等体积混合在一起,研磨成油包水的乳糜状,放一滴在水面上不易马上扩散呈小滴状表明已达到油包水的状态。
商品化福氏完全佐剂在使用前须振摇,使沉淀的分枝杆菌充分混匀。
初次免疫 Ag 1~50μg 加福氏完全佐剂皮下多点注射│(一般~1ml /点)^↓3周后第二次免疫剂量同上,加福氏不完全佐剂皮下或ip│(ip剂量不宜超过↓3周后第三次免疫剂量同上,不加佐剂,ip}│ (5~7天后采血测其效价,检测免疫效果)↓2~3周后加强免疫,剂量50~500μg为宜,ip或iv↓3天后取脾融合目前,用于可溶性抗原(特别是一些弱抗原)的免疫方案也不断有所更新,如①将可溶性抗原颗粒化或固相化,一方面增强了抗原的免疫原性,另一方面可降低抗原的使用量。
单克隆抗体的过程
单克隆抗体的过程
单克隆抗体的过程是指从单一的淋巴细胞中制备出一种特异性
很高、只与一种抗原结合的抗体。
这种抗体被称为单克隆抗体,是研究和应用领域中非常重要的工具。
单克隆抗体制备的过程主要包括以下几个步骤:
1. 免疫原注射:将一种抗原注射到小鼠或大鼠体内,以激发其
免疫系统产生特异性抗体。
2. 淋巴细胞分离:从小鼠或大鼠的脾脏或淋巴结中取出特异性
抗体产生的淋巴细胞。
3. 融合细胞制备:将淋巴细胞与骨髓瘤细胞进行融合,得到一
种能够长期生长和分泌抗体的杂交瘤细胞。
4. 筛选杂交瘤:通过对杂交瘤进行筛选,筛选出只分泌与所需
抗原结合的单克隆抗体的杂交瘤细胞。
5. 培养单克隆抗体:将根据筛选结果得到的杂交瘤细胞进行培养,得到单克隆抗体。
6. 纯化单克隆抗体:采用各种化学和生物学方法,将得到的单
克隆抗体进行纯化和加工处理。
单克隆抗体制备的过程需要经过多个阶段,其中淋巴细胞的分离、杂交瘤的筛选和单克隆抗体的培养是关键步骤。
随着技术的不断发展,单克隆抗体制备的效率和质量也在不断提高,为生命科学和医学研究提供了更加可靠的工具。
- 1 -。
单克隆抗体的制备流程
单克隆抗体的制备流程1.免疫原的制备和动物的免疫:在开始制备单克隆抗体之前,首先需要制备免疫原。
免疫原可以是蛋白质、多肽、多糖、细胞表面抗原等。
制备免疫原的常用方法包括化学合成、原核表达系统、真核表达系统等。
制备好免疫原后,将其与适当的佐剂混合,然后通过注射等方式将免疫原引入到实验动物体内。
通常使用小鼠、大鼠或兔子作为免疫动物。
2.脾细胞的获取和混合瘤细胞的建立:在免疫过程中,免疫原会刺激机体产生大量的抗体。
当机体免疫反应达到一定水平时,需要从免疫动物体内获取脾脏,获得含有抗体产生细胞的脾细胞悬液。
将脾细胞与能激活脾细胞的细胞(如骨髓瘤细胞)进行融合,形成混合瘤细胞。
3.杂交瘤细胞的筛选和鉴定:将混合瘤细胞进行稀释,分装到96孔板中,使每个孔中只包含一个细胞。
这样每个孔中的细胞都是一个潜在的单克隆细胞。
随后,每个孔中的细胞在培养基中进行培养,以使细胞形成单个克隆。
根据杂交瘤细胞产生的特定抗体,可以使用ELISA等方法进行筛选和鉴定,以确定具有所需抗体的杂交瘤细胞。
4.单克隆抗体的生产和纯化:将筛选出来的单克隆杂交瘤细胞进行扩大培养,并定期收集培养上清液以获取单克隆抗体。
为了提高单克隆抗体的纯度和浓度,通常需要对培养上清液进行多次纯化。
典型的纯化方法包括亲和层析、离子交换层析、凝胶过滤层析等。
综上所述,单克隆抗体的制备流程包括免疫原的制备和动物的免疫、脾细胞的获取和混合瘤细胞的建立、杂交瘤细胞的筛选和鉴定,以及单克隆抗体的生产和纯化等几个主要步骤。
每个步骤都需要精确操作和耐心等待,但最终可以获得高纯度和高特异性的单克隆抗体,这在生物医学研究和临床诊断中具有重要的应用价值。
单克隆抗体制备
单克隆抗体制备1. 免疫动物:三只Balb/c小鼠2. 佐剂:首先用完全弗氏佐剂(CFA),后用不完全弗氏佐剂(IFA)。
3. 免疫原:蛋白或KLH偶联多肽。
每次免疫使用50-100µg免疫原。
4. 免疫:用PBS稀释免疫原,然后与相应的佐剂1:1混合。
抗原和佐剂完全混合形成稳定的乳剂,将该乳剂在小鼠双肩周围的皮肤下进行皮下注射和后腿进行肌肉注射。
每个区域大约用1/8的免疫原。
接着将1/2的免疫原进行腹腔注射,这样免疫原可以持久存在从而提高免疫应答。
以后每个星期进行腹腔注射直到达到要求的效价。
5. 第0星期预采血完全弗氏佐剂(CFA)混合的100µg抗原免疫小鼠。
第2星期完全弗氏佐剂(CFA)混合的50µg抗原免疫小鼠。
第3星期不完全弗氏佐剂(IFA)混合的50µg抗原免疫小鼠。
第4星期溶解在PBS中的50µg抗原免疫小鼠。
第5星期取适当的细胞或组织进行ELISA和WB检测,溶解在PBS中的50µg抗原免疫小鼠。
第X星期取适当的细胞或组织进行ELISA和WB检测,溶解在PBS中的50µg抗原免疫小鼠。
6. 杂交瘤融合和筛选:用PEG方法将效价最好的小鼠脾细胞和骨髓瘤细胞F0进行融合。
用抗原对融合的杂交瘤克隆进行筛选,检测它们的特异性和敏感性。
ELI SA阳性的克隆可用WB检测,筛选出来的克隆至少还需要亚克隆两次。
7. 大规模抗体生产:筛选得到两个克隆最后进行大规模培养(每个克隆1L)或者取腹水(每个克隆5只小鼠)。
用蛋白A/G对培养液或腹水进行纯化,平均每个克隆可以得到3-5mg 抗体。
8. 注意:每个融合平均可以得到900多个克隆,对于多肽抗原可以得到100个左右的ELISA阳性克隆,重组蛋白抗原可以得到100-150个ELISA阳性克隆。
亚克隆实验做的越早,越容易保存克隆。
因此,为了保存和复苏阳性克隆,尽早进行筛选检测是必需的。
单克隆抗体的制备流程
单克隆抗体的制备流程
一、抗体cDNA克隆
2、结合分离:抗体和抗原之间采用免疫学方法,进行亲和结合分离,在病理学中,可以采用细胞亲和免疫电泳或者细胞色素紧缩技术来进行识
别性结合分离抗体。
3、mRNA提取:使用RNAsy Plus Kit根据操作说明提取亲和结合分
离后的抗体的mRNA,用于cDNA合成。
4、cDNA合成:使用双链cDNA合成试剂盒,根据说明书操作,将mRNA合成双链cDNA。
5、克隆:将双链cDNA进行克隆,经过构建的一系列步骤,最终将cDNA克隆到载体上,构建出抗体cDNA克隆库。
二、抗体cDNA克隆抗体制备
1、选择克隆体:选择抗体cDNA克隆库中的抗体表达克隆,采用PCR
技术进行选择,并检测克隆体具有良好的免疫特性,可以快速确定最佳克
隆体。
2、表达载体构建:将最佳克隆体插入到表达载体中,构建出属于克
隆体的表达载体,以此保证克隆体的正确表达。
3、表达系统筛选:利用多种表达系统,筛选出最佳的表达系统,以
此来达到最佳的表达效果。
4、表达调控:对于最佳的表达系统,根据cDNA克隆体的特性,进行
最佳的表达调控,以此达到最佳的抗体表达效果。
单克隆抗体制备步骤及注意事项
单克隆抗体制备步骤及注意事项一、脾细胞的准备:1.将Balb/c小鼠拉颈脱臼处死,浸泡于75%酒精3~5min。
无菌操作取出脾脏,置于盛有5mL不完全培养液的平皿中,洗涤3次去除脾脏表面的脂肪和结缔组织。
2.将洗好的脾脏用剪刀剪成3~5个小块,然后将脾脏研碎,过细胞筛,收集细胞。
3.将脾脏细胞悬液在1000r/min条件下,离心5min,弃上清。
再以同样的方法洗涤离心一次。
4.将沉淀细胞重新悬浮于10mL不完全培养液中,计活细胞数,取108个脾淋巴细胞悬液备用。
注意事项:➢免疫脾细胞一般取最后一次加强免疫3天以后的脾脏,制备成细胞悬液,因为此时B淋巴母细胞比例较大,融合的成功率较高。
二、骨髓瘤细胞的准备:1.选好骨髓瘤细胞株,取体外培养对数生长期细胞或体内生长的肿瘤分离骨髓瘤细胞。
2.取对数生长骨髓瘤细胞离心,用无血清培养液洗2次。
3.制备细胞悬液,计活细胞数。
4.调整细胞浓度,取107细胞悬液备用。
注意事项:➢常用的骨髓瘤细胞系有:NS1、SP2/0、X63、Ag8.653等。
➢骨髓瘤细胞系应和免疫动物属于同一品系,这样杂交融合率高,也便于接种杂交瘤细胞在同一品系小鼠腹腔内生产大量McAb。
➢骨髓瘤细胞的培养适合于一般的培养液,如RPMI-1640基础培养液,DMEM培养基。
小牛血清的浓度一般在10~20%。
细胞的最大密度不得超过106个/mL。
➢一般扩大培养以1:10稀释传代,每3~5天传代一次。
细胞的倍增时间为16~20小时。
➢一般准备融合前的两周就应开始复苏骨髓瘤细胞,为确保该细胞对HA T的敏感性,每3~6个月应用8~AG(8氮杂鸟嘌呤)筛选一次,以防止细胞的突变。
➢保证骨髓瘤细胞处于对数生长期,良好的形态,活细胞计数高于95%,也是决定细胞融合的关键。
三、细胞融合:1.将骨髓瘤细胞与脾细胞按1:10 或1:5的比例混合,加入20~50mL RPMI-1640培养液。
2.在1000r/min条件下离心8min,弃上清,用滴管轻轻吸净残留液体。
单克隆抗体的制备方法
单克隆抗体的制备方法
一、单克隆抗体制备法
1. 免疫动物:采用合适体表面抗原的方案,给指定动物(通常为小鼠)注射给定的抗原合剂,产生抗原特异性免疫应答,使动物体内产生单克隆抗体。
2. 抗体分离:采用配体结合层析或免疫沉淀法从免疫动物血清或体液中分离出单克隆抗体,用硫酸铵离析可以得到抗体的抗原特异性的的IgG类分子。
3. 抗体纯化:采用实现纯化的技术结合其他细胞分析技术,将抗体从抗体分离产物中得到抗体的纯度大于95%的IgG纯化成分。
4. 抗体测试:可以采用实验室的抗原-抗体免疫试验来确认得到的单克隆抗体的特异性以及抗体复应性,检测其免疫固定特异性以及抗体复应性,确认其抗体复应性。
单克隆抗体的制备方法与应用
单克隆抗体的制备方法与应用一、前言单克隆抗体是指一种具有高度特异性和亲和力的抗体,其来源于单个B细胞克隆。
相比多克隆抗体,单克隆抗体更加纯净、稳定和可靠,因此在生物医学研究、诊断和治疗等方面有着广泛的应用。
本文将介绍单克隆抗体的制备方法与应用。
二、单克隆抗体的制备方法1. 免疫动物首先需要选取适当的动物进行免疫,通常选择小鼠或大鼠。
在进行免疫前需要对动物进行预处理,例如注射低剂量的抗生素来消除潜在的感染。
2. 免疫原选择选择合适的免疫原是制备单克隆抗体的关键步骤。
常见的选择包括蛋白质、多肽、细胞表面分子等。
在选择时需要考虑到其特异性、稳定性和可重复性等因素。
3. 免疫程序在进行免疫前需要对动物进行预处理,例如注射低剂量的抗生素来消除潜在的感染。
接着,将免疫原注射到动物体内,通常需要多次免疫以增强免疫效果。
在免疫过程中需要对动物进行监测,例如采集血样检测抗体水平。
4. 融合细胞的制备在获得足够的抗体后,需要从动物体内采集B细胞并与骨髓瘤细胞进行融合。
常用的骨髓瘤细胞包括SP2/0和NS0等。
5. 单克隆抗体筛选通过限稀法或单一细胞分离法等方法将融合细胞分离为单个克隆,并通过ELISA、免疫印迹等方法筛选出特异性较高的单克隆抗体。
接着对筛选出的单克隆抗体进行扩增和纯化等处理。
三、单克隆抗体的应用1. 生物医学研究单克隆抗体在生物医学研究中有着广泛的应用,例如作为特定蛋白质或分子的检测工具、用于药物开发和治疗等。
2. 诊断单克隆抗体在诊断方面也有着重要的应用,例如用于肿瘤标志物的检测、病原体的检测等。
3. 治疗单克隆抗体在治疗方面也有着广泛的应用,例如用于治疗癌症、自身免疫性疾病等。
其中一些单克隆抗体已经被批准为药物并用于临床治疗。
四、总结单克隆抗体是一种具有高度特异性和亲和力的抗体,在生物医学领域中有着广泛的应用。
其制备方法包括适当动物选择、合适免疫原选择、多次免疫程序、融合细胞制备和单克隆抗体筛选等步骤。
单克隆抗体的制备
单克隆抗体的制备1975年Kohler和Milstein发现将小鼠骨髓瘤细胞与和绵羊红细胞免疫的小鼠脾细胞进行融合,形成的杂交瘤细胞既可产生抗体,又可无性繁殖,从而创立了单克隆抗体杂交瘤技术。
这一技术上的突破使血清学的研究进入了一个高度精确的新纪元。
免疫细胞化学的技术关键之一是制备特异性强、亲合力大、滴度高的特异性抗体,由于每种抗原都有几个抗原决定簇,用它免疫动物将产生对各个决定簇的抗体,即多克隆抗体。
单克隆抗体则是由一个产生抗体的细胞与一个骨髓瘤细胞融合而形成的杂交廇细胞经无性繁殖而来的细胞群所产生的,所以它的免疫球蛋白属同一类型,质地纯一,而且它是针对某一抗原决定簇的,因此特异性强,亲合性也一致。
单克隆抗体(McAb)的特性和常规血清抗体的特性比较见2-3。
单克隆抗体的制备方法如下。
(一)动物的选择与免疫1.动物的选择纯种BALB/C小鼠,较温顺,离窝的活动范围小,体弱,食量及排污较小,一般环境洁净的实验室均能饲养成活。
目前开展杂交瘤技术的实验室多选用纯种BALA/C小鼠。
2.免疫方案选择合适的免疫方案对于细胞融合杂交的成功,获得高质量的McAb 至关重要。
一般在融合前两个月左右根据确立免疫方案开始初次免疫,免疫方案应根据抗原的特性不同而定。
(1)可溶性抗原免疫原性较弱,一般要加佐剂,半抗原应先制备免疫原,再加佐剂。
常用佐剂:福氏完全佐剂、福氏不完全佐剂。
初次免疫抗原1~50μg加福氏完全佐剂皮下多点注射或脾内注射(一般0.8~1ml,0.2ml/点)↓3周后第二次免疫剂量同上,加福氏不完全佐剂皮下或ip(腹腔内注射)(ip剂量不宜超过0.5ml)↓3周后第三次免疫剂量同一,不加佐剂,ip(5~7天后采血测其效价)↓2~3周加强免疫,剂量50~500μg为宜,ip或iv(静脉内注射)↓3天后取脾融合目前,用于可溶性抗原(特别是一些弱抗原)的免疫方案也不断有所更新,如:①将可溶性抗原颗粒化或固相化,一方面增强了抗原的免疫原性,另一方面可降低抗原的使用量。
单克隆抗体的主要步骤
单克隆抗体的主要步骤单克隆抗体是一种由单一源头的B淋巴细胞分泌的抗体,具有高度特异性和亲和力。
单克隆抗体的制备过程可以分为六个主要步骤,包括免疫原选择、免疫动物免疫、细胞融合、筛选和克隆、生物制剂和表征以及大规模生产。
第一步是免疫原选择。
在制备单克隆抗体之前,需要选择适合的免疫原。
免疫原可以是蛋白质、多肽、糖类或其他生物分子。
选择合适的免疫原对于获得高亲和力和特异性的单克隆抗体至关重要。
第二步是免疫动物的免疫。
通常使用小鼠作为免疫动物,将免疫原注射到小鼠体内,刺激其免疫系统产生抗体。
免疫过程可以持续数周或数月,以确保免疫系统充分产生抗体。
第三步是细胞融合。
细胞融合是将免疫小鼠的B淋巴细胞与骨髓瘤细胞融合,形成杂交瘤细胞。
骨髓瘤细胞具有不受限制的生长能力,而免疫小鼠的B淋巴细胞则具有产生抗体的能力。
细胞融合可以通过化学方法或电融合方法完成。
第四步是筛选和克隆。
在细胞融合后,需要筛选出产生单一抗体的杂交瘤细胞。
常用的筛选方法包括酶联免疫吸附试验(ELISA)和细胞流式细胞术。
通过这些筛选方法,可以鉴定出产生特定抗原抗体的杂交瘤细胞,并进行单克隆化处理。
第五步是生物制剂和表征。
单克隆抗体的生物制剂包括抗体纯化和浓缩。
纯化可以通过亲和层析、离子交换层析、凝胶过滤等方法进行。
表征是对单克隆抗体进行验证,包括亲和力测定、特异性检测、结构分析等。
最后一步是大规模生产。
一旦获得了单克隆抗体的正式生物制剂和表征结果,就可以进行大规模的生产。
大规模生产通常采用细胞培养技术,通过培养细胞株来产生大量的单克隆抗体。
生产的单克隆抗体可以用于临床治疗、诊断试剂的生产以及科研领域的应用。
总结起来,制备单克隆抗体的主要步骤包括免疫原选择、免疫动物免疫、细胞融合、筛选和克隆、生物制剂和表征以及大规模生产。
这些步骤的顺序和细节可能会有所不同,取决于具体的实验目的和方法。
制备单克隆抗体需要耗费时间和精力,但它可以提供高度特异性和亲和力的抗体,对于生命科学研究和医学应用具有重要意义。
简述单克隆抗体制备原理。
简述单克隆抗体制备原理。
单克隆抗体是一种通过人工合成而获得的高度特异性的抗体,通常用于检测、诊断和治疗各种疾病。
单克隆抗体的制备原理主要涉及以下几个步骤:
1. 细胞培养:选择适当的细胞系,如B细胞或T细胞等,将其培养在适宜条件下。
2. 分子标记:使用一定的技术和分子标记技术,如荧光标记、放射性标记等,将目标分子或目标分子的基因编码序列引入细胞中。
3. 基因重组:利用基因工程技术,如基因重组载体、基因编辑工具等,将目标分子的基因与相应的单克隆抗体基因进行重组。
4. 表达和处理:将重组后的单克隆抗体基因导入细胞中,使其表达目标分子。
随后,对表达后的单克隆抗体进行筛选和纯化。
5. 扩增和制备:利用适当的扩增技术和设备,如PCR、冻存技术等,将筛选得到的单克隆抗体进行扩增,并制备成所需的浓度和规模。
单克隆抗体制备的原理是基于人工合成抗体的概念,通过分子标记和基因工程技术,将目标分子的基因与单克隆抗体基因进行重组,
使其在细胞中表达并产生高特异性的抗体。
随后,通过筛选、纯化和扩增等技术,获得所需的单克隆抗体。
人单克隆抗体制备
人单克隆抗体制备一、引言人单克隆抗体是由一种单一的免疫细胞克隆产生的抗体,具有高度特异性和亲和力。
与传统的多克隆抗体相比,人单克隆抗体具有更好的一致性和稳定性,因此在医学研究和临床应用中具有重要意义。
二、制备方法人单克隆抗体的制备可以通过以下步骤完成:1. 免疫原选择:选择与目标疾病相关的适当免疫原,如病毒、细菌、肿瘤抗原等。
2. 免疫动物免疫:将免疫原注射到合适的动物体内,如小鼠、大鼠等,以激发免疫反应。
3. 混合细胞免疫:从免疫动物中获取免疫细胞,如B细胞,与骨髓细胞融合,形成杂交瘤细胞。
4. 杂交瘤细胞筛选:使用选择性培养基筛选出能够产生目标抗体的杂交瘤细胞。
5. 单克隆细胞扩增:将合适的杂交瘤细胞注射到小鼠或裸鼠体内,获得单个克隆的杂交瘤细胞。
6. 抗体表达和纯化:将单克隆细胞培养并收集上清液,通过亲和层析、离子交换层析等技术纯化目标抗体。
三、应用领域人单克隆抗体在医学领域有广泛的应用,主要包括以下几个方面:1. 治疗:人单克隆抗体可以用于治疗各种疾病,如癌症、自身免疫性疾病等。
通过与靶标分子结合,抑制病理过程或刺激免疫系统,达到治疗效果。
2. 诊断:人单克隆抗体可以作为诊断试剂,用于检测疾病的标志物或特定分子。
例如,通过检测血清中的特定抗体可以判断是否感染某种病原体。
3. 研究工具:人单克隆抗体可以作为研究工具,用于研究特定分子的功能、相互作用等。
例如,可以使用单克隆抗体来检测蛋白质在细胞中的定位和表达水平。
4. 药物研发:人单克隆抗体也可以作为药物研发的载体。
通过将药物结合到抗体上,可以提高药物的靶向性和稳定性,减少副作用。
四、发展前景人单克隆抗体制备技术的不断发展,为医学研究和临床治疗带来了巨大的机遇。
随着基因工程和生物技术的进步,越来越多的人单克隆抗体将被制备出来,并在各个领域得到广泛应用。
然而,人单克隆抗体的制备过程还存在一些挑战和限制。
例如,制备过程中可能出现杂交瘤细胞的不稳定性和纯化困难等问题。
单克隆抗体制备流程
单抗制备流程1975年,Kohler和Milstein发现将小鼠骨髓瘤细胞和绵羊红细胞免疫的小鼠脾细胞进行融合,形成的杂交细胞既可产生抗体,又可无限增殖,从而创立了单克隆抗体杂交瘤技术。
这一技术上的突破不仅为医学与生物学基础研究开创了新纪元,也为临床疾病的诊、防、治提供了新的工具.制备单克隆抗体包括动物免疫、细胞融合、选择杂交瘤、检测抗体、杂交瘤细胞的克隆化、冻存以及单克隆抗体的大量生产,要经过几个月的一系列实验步骤,下面按照制备单克隆抗体的流程顺序,逐一介绍其实验方法。
一、细胞融合前准备(一)免疫方案选择合适的免疫方案对于细胞融合杂交的成功,获得高质量的McAb至关重要。
一般要在融合前两个月左右确立免疫方案开始初次免疫,免疫方案应根据抗原的特性不同而定。
1.颗粒性抗原免疫性较强,不加佐剂就可获得很好的免疫效果。
下面以细胞性抗原为例的免疫方案:初次免疫1×107/0。
5ml ip (腹腔内注射)↓2~3周后第二次免疫1×107/0。
5ml ip↓3周后加强免疫(融合前三天)1×107/0.5ml ip或iv(静脉内注射)↓取脾融合2。
可溶性抗原免疫原性弱,一般要加佐剂,常用佐剂:福氏完全佐剂,福氏不完全佐剂。
要求抗原和佐剂等体积混合在一起,研磨成油包水的乳糜状,放一滴在水面上不易马上扩散呈小滴状表明已达到油包水的状态。
商品化福氏完全佐剂在使用前须振摇,使沉淀的分枝杆菌充分混匀.初次免疫 Ag 1~50μg 加福氏完全佐剂皮下多点注射│(一般0。
8~1ml 0.2ml/点)↓3周后第二次免疫剂量同上,加福氏不完全佐剂皮下或ip│(ip剂量不宜超过0。
5ml)↓3周后第三次免疫剂量同上,不加佐剂,ip│ (5~7天后采血测其效价,检测免疫效果)↓2~3周后加强免疫,剂量50~500μg为宜,ip或iv↓3天后取脾融合目前,用于可溶性抗原(特别是一些弱抗原)的免疫方案也不断有所更新,如①将可溶性抗原颗粒化或固相化,一方面增强了抗原的免疫原性,另一方面可降低抗原的使用量。
单克隆抗体制备的原理
单克隆抗体制备的原理
单克隆抗体制备的原理
单克隆抗体是指由同一种细胞分泌的具有相同结构和功能的抗体分子。
单克隆抗体制备的过程主要包括以下几个步骤:抗原制备、免疫动物、细胞融合、筛选和克隆。
1. 抗原制备
首先需要准备纯化的抗原,通常采用多肽、蛋白质或其他生物大分子
作为抗原。
这些抗原必须具有足够的纯度和特异性,以便在后续步骤
中能够有效地诱导特异性免疫反应。
2. 免疫动物
将纯化的抗原注射到实验动物体内,例如小鼠、大鼠或兔子等。
这些
实验动物会产生针对该特定抗原的免疫反应,并产生多种不同类型的
抗体。
3. 细胞融合
将产生针对目标抗原特异性的B淋巴细胞与肿瘤细胞进行融合,形成
杂交瘤(hybridoma)。
肿瘤细胞通常来自于小鼠或人类,由于其具
有不受限制的增殖能力,可以保证单克隆抗体的持续生产。
4. 筛选
对杂交瘤进行筛选,以确定产生特定单克隆抗体的杂交瘤。
通常采用ELISA、Western blotting等技术对杂交瘤进行筛选,以检测其是否
产生目标抗原的特异性抗体。
5. 克隆
将产生目标抗原特异性抗体的杂交瘤进行单克隆化处理。
这个过程中
需要将杂交瘤分离,并将其分别培养在不同的培养基上。
最终,每个
单一细胞会形成一个单克隆群落,并产生相同结构和功能的抗体分子。
总之,单克隆抗体制备是一项复杂而精密的过程。
通过以上步骤,可
以从多种不同类型的B淋巴细胞中筛选出具有特定结构和功能的单克
隆抗体,并为医学、科学等领域提供了广阔应用前景。
单克隆抗体的制备原理及方法
单克隆抗体的制备原理及方法单克隆抗体是指来源于单一B细胞克隆的抗体,具有单一的抗原特异性。
它是一种高度纯化、高度特异性的抗体,广泛应用于生物医学研究、临床诊断和治疗等领域。
本文将介绍单克隆抗体的制备原理及方法。
首先,单克隆抗体的制备原理是基于B细胞的克隆扩增。
当机体受到抗原刺激后,B细胞会产生多种抗体,其中具有特异性的B 细胞将被筛选出来,然后与癌细胞融合形成杂交瘤细胞。
这些杂交瘤细胞具有B细胞的分泌抗体能力和癌细胞的无限增殖能力,能够长期稳定地分泌单一种类的抗体。
其次,单克隆抗体的制备方法包括免疫动物、细胞融合、筛选鉴定和大规模培养等步骤。
首先,需要选择合适的免疫动物,如小鼠、大鼠、兔子等,然后将抗原注射到动物体内,刺激B细胞产生抗体。
接着,收集免疫动物的脾细胞和癌细胞,进行细胞融合,得到杂交瘤细胞。
随后,通过细胞培养和限稀稀释法,筛选出分泌特异性抗体的杂交瘤细胞。
最后,对筛选出的单克隆抗体进行鉴定和鉴定,确保其具有高亲和力和特异性。
在实际操作中,制备单克隆抗体需要严格控制各个步骤的条件,包括抗原的选择和纯化、免疫动物的免疫程序、杂交瘤细胞的筛选和鉴定等。
此外,还需要考虑单克隆抗体的应用领域和特定要求,如在临床诊断中需要高灵敏度和高特异性的抗体,而在治疗中则需要稳定性和低免疫原性的抗体。
总之,单克隆抗体的制备原理及方法是基于B细胞的克隆扩增,通过免疫动物、细胞融合、筛选鉴定和大规模培养等步骤,最终得到具有单一抗原特异性的抗体。
制备单克隆抗体需要严格控制各个步骤的条件,并考虑其应用领域和特定要求。
希望本文能够为单克隆抗体的制备提供一定的参考和帮助。
单克隆抗体的制备原理及方法
单克隆抗体的制备原理及方法
单克隆抗体是一种来源于同一B细胞克隆的抗体,具有单一的抗原结合特异性。
它在生物医学领域有着广泛的应用,如药物研发、疾病诊断和治疗等方面。
本文将介绍单克隆抗体的制备原理及方法。
首先,制备单克隆抗体的原理是通过免疫细胞融合技术获得单克隆抗体细胞系。
该技术主要包括以下几个步骤,免疫原注射、混合细胞培养、细胞融合、筛选和克隆等。
其中,免疫原注射是指将目标抗原注射到小鼠等动物体内,刺激其产生特异性抗体;混合细胞培养是将小鼠脾细胞与骨髓瘤细胞混合培养,促使它们融合形成杂交瘤细胞;细胞融合是通过聚乙二醇等化合物促使免疫细胞与骨髓瘤细胞融合,形成杂交瘤细胞;筛选和克隆是通过限稀稀释法或限稀稀释法筛选出单克隆杂交瘤细胞,并将其进行克隆扩增,最终得到单克隆抗体细胞系。
其次,制备单克隆抗体的方法主要包括动物免疫、细胞融合、杂交瘤筛选和克
隆等步骤。
动物免疫是指将目标抗原注射到小鼠等动物体内,刺激其产生特异性抗体;细胞融合是通过将免疫细胞与骨髓瘤细胞融合,形成杂交瘤细胞;杂交瘤筛选是通过限稀稀释法或限稀稀释法筛选出单克隆杂交瘤细胞;克隆是将筛选出的单克隆杂交瘤细胞进行克隆扩增,最终得到单克隆抗体细胞系。
总之,单克隆抗体的制备原理及方法是通过免疫细胞融合技术获得单克隆抗体
细胞系。
其制备方法包括动物免疫、细胞融合、杂交瘤筛选和克隆等步骤。
这些步骤的顺序和方法的选择都对单克隆抗体的制备起着至关重要的作用。
希望本文的介绍能够对单克隆抗体的制备原理及方法有所帮助。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
4.McAb识别抗原表位的鉴定 用竞争结合试验,测相加指数的方法,测定McAb所识别抗原位点,来确定McAb的识别的表位是否相同。
↓
用20%小牛血清(NCS)或胎牛血清(FCS)的培养液混悬,调整细胞数至1×105/ml
↓
加入96孔板,100μl/孔
↓
放入37。c CO2孵箱培养
(2)制备免疫脾细胞
最后一次加强免疫3天后小鼠拉颈处死
↓
无菌取脾脏,培养液洗一次
↓
脾脏研碎,过不锈钢筛网↓源自离心,细胞用培养液洗2次↓
计数
↓
取108脾淋巴细胞悬液备用
杂交瘤细胞的冻存方法同其他细胞系的冻存方法一样,原则上细胞应在每支安瓿含1×106以上,但对原始孔的杂交瘤细胞可以因培养环境不同而改变,在24孔培养板中培养,当长满孔底时,一孔就可以装一支安瓿冻存。
细胞冻存液:50%小牛血清;40%不完全培养液;10%DMSO(二甲基亚砜)。
冻存液最好预冷,操作动作轻柔、迅速。冻存时从室温可立即降至0℃后放入-70℃超低温冰箱,次日转入液氮中。也可用细胞冻存装置进行冻存。冻存细胞要定期复苏,检查细胞的活性和分泌抗体的稳定性,在液氮中细胞可保存数年或更长时间。
(X63×BALB/C脾细胞)杂交瘤
8-氮鸟嘌呤
--
F0
BALB/C骨髓瘤
8-氮鸟嘌呤
--
S194/5.XXO.BU.1
P3/X63-Ag8
5-溴脱氧尿嘧啶核苷
--
MPC11-45.6TG1.7
BALB/C骨髓瘤MPC-11
6-巯鸟嘌呤
r2bK
210.RCY3.Ag1.2.3
LOU大鼠骨髓瘤R210
(2)颗粒抗原免疫性强,不加佐剂就可获得很好的免疫效果。以细胞性抗原为例,免疫时要求抗原量为1~2×107个细胞。
初次免疫1×107/0.5ml ip
↓2~3周后
第二次免疫1×107/0.5ml ip
↓3周后
加强免疫(融合前三天)1×107/0.5ml ip或iv
↓
取脾融合
细胞融合
1.细胞融合前准备
2.McAb的Ig类与亚类的鉴定 一般在用酶标或荧光素标记的第二抗体进行筛选时已经基本上确定了抗体的Ig类型。如果用的是酶标或荧光素标记的兔抗鼠IgG或IgM,则检测出来的抗体一般是IgG类或IgM类。至于亚类则需要用标准抗亚类血清系统作双扩或夹心ELISA来确定。在作双扩试验时,如加入适量的PEG(3%),更有利于沉淀线的形成。
②90s内加入37℃预温的1ml 45%PEG(分子量4000)溶液,边加边轻微摇动。37℃水浴作用90s。
③加37。C预温的不完全培养液以终止PEG作用,每隔2min分别加入1ml、2ml、3ml、4ml、5ml和6ml。
④离心,800rpm, 6min。
⑤充上清,用含20%小牛血清HAT选择培养液重悬。
在用HAT选择培养1~2天内,将有大量瘤细胞死亡,3~4天后瘤细胞消失,杂交细胞形成小集落,HAT选择培养液维持7~10天后应换用HT培养液,再维持2周,改用一般
是十分重要的。因为在没有建立一个稳定分泌抗体的细胞系的时候,细胞的培养过程中随时可能发生细胞的污染、分泌抗体能力的丧失等等。如果没有原始细胞的冻存,则可因上述意外而前功尽弃。
单克隆抗体的制备方法
动物的选择与免疫
1.动物的选择纯种BALB/C小鼠,较温顺,离窝的活动范围小,体弱,食量及排污较小,一般环境洁净的实验室均能饲养成活。目前开展杂交瘤技术的实验室多选用纯种BALA/C小鼠。
2.免疫方案选择合适的免疫方案对于细胞融合杂交的成功,获得高质量的McAb至关重要。一般在融合前两个月左右根据确立免疫方案开始初次免疫,免疫方案应根据抗原的特性不同而定。
(3)制备骨髓瘤细胞
取对数生长骨髓瘤细胞离心
↓
用无血清培养液洗2次
↓
计数,取得×107细胞备用
(4)融合
①将骨髓瘤细胞与脾细胞按1:10或1:5的比例混合在一起,在50ml离心管中用无血清不完全培养液洗1次,离心,1200rpm,8min;弃上清,用吸管吸净残留液体,以免影响聚乙二醇(PEG)浓度。轻轻弹击离心管底,使细胞沉淀略松动。
(2)体内接种杂交瘤细胞,制备腹水或血清。
①实体瘤法:对数生长期的杂交瘤细胞按1~3×107/ml接种于小鼠背部皮下,每处注射0.2ml,共2~4点。待肿瘤达到一定大小后(一般10~20天)则可采血,从血清中获得单克隆抗体的含量可达到1~10mg/ml。但采血量有限。
②腹水的制备:常规是先腹腔注射0.5ml Pristane (降植烷)或液体石蜡于BALB/C鼠,1~2周后腹腔注射1×106个杂交瘤细胞,接种细胞7~10天后可产生腹水,密切观察动物的健康状况与腹水征象,待腹水尽可能多,而小鼠频于死亡之前,处死小鼠,用滴管将腹水吸入试管中,一般一只小鼠可获5~10ml腹水。也可用注射器抽提腹水,可反复收集数次。腹水中单克隆抗体含量可达到5~10mg/ml,这是目前最常用的方法,还可将腹水中细胞冻存起来,复苏后转种小鼠腹腔则产生腹水块、量多。
↓3周后
第三次免疫剂量同一,不加佐剂,ip(5~7天后采血测其效价)
↓2~3周
加强免疫,剂量50~500μg为宜,ip或iv(静脉内注射)
↓3天后
取脾融合
目前,用于可溶性抗原(特别是一些弱抗原)的免疫方案也不断有所更新,如:①将可溶性抗原颗粒化或固相化,一方面增强了抗原的免疫原性,另一方面可降低抗原的使用量。②改变抗原注入的途径,基础免疫可直接采用脾内注射。③使用细胞因子作为佐剂,提高机体的免疫应答水平,增强免疫细胞对抗原的反应性。
单克隆抗体的鉴定
对制备的McAb进行系统的鉴定是十分必要的,应做下述几个方面的鉴定:
1.抗体特异性的鉴定除用免疫原(抗原)进行抗体的检测外,还应该用与其抗原成分相关的其它抗原进行交叉试验,方法可用ELISA、IFA法。例如:①制备抗黑色素瘤细胞的McAb,除用黑色素瘤细胞反应外,还应该用其它脏器的肿瘤细胞和正常细胞进行交叉反应,以便挑选肿瘤特异性或肿瘤相关抗原的单克隆抗体。②制备抗重组的细胞因子的单克隆抗体,应首先考虑是否与表达菌株的蛋白有交叉反应,其次是与其它细胞因子间有无交叉。
r1K
P3/X63-Ag8.653(X63-Ag8.653)
P3/X63-Ag8
8-氮鸟嘌呤
--
P3/NSI-1-Ag4-1(NS-1)
P3/X63-Ag8
8-氮鸟嘌呤
-K(不分泌型)
P3/X63-Ag8.Ul(P3Ul)
(X63×BALB/C脾细胞)杂交瘤
8-氮鸟嘌呤
--
SP2/0-Ag14(SP2/0)
5.McAb亲合力的鉴定用ELISA或RIA竞争结合试验来确定McAb与相应抗原结合的亲合力。
2.细胞融合的步骤
(1)制备饲养细胞层:一般选用小鼠腹腔巨噬细胞。
与免疫小鼠相同品系的小鼠,常用BALB/C小鼠,6~10周
↓
拉颈处死,浸泡在75%酒精内,3~5min
↓
用无菌剪刀剪开皮肤,暴露腹膜
↓
用无菌注射器注入5~6ml预冷的培养液(严禁刺破肠管)
↓
反复冲洗,吸出冲洗液
↓
冲洗液放入10ml离心管,1200rpm/分离5~6min
8-氮鸟嘌呤
-K
GM15006TG-A12
人骨髓瘤GM1500
6-巯鸟嘌呤
r1K
U-266AR
人骨髓瘤U-266
8-氮鸟嘌呤
ε λ
骨髓瘤细胞的培养可用一般的培养液,如RPMI1640,DMEM培养基。小牛血清的浓度一般在10%~20%,细胞浓度以104~5×105/ml为宜,最大浓度不得超过106/ml。当细胞处于对数生长的中期时,可按1:3~1:10的比例传代。每3~5天传代一次。细胞在传代过程中,部分细胞可能有返祖现象,应定期用8-氮鸟嘌呤进行处理,使生存的细胞对HAT呈均一的敏感性。
(1)可溶性抗原免疫原性较弱,一般要加佐剂,半抗原应先制备免疫原,再加佐剂。常用佐剂:福氏完全佐剂、福氏不完全佐剂。
初次免疫抗原1~50μg加福氏完全佐剂皮下多点注射或脾内注射(一般0.8~1ml,0.2ml/点)
↓3周后
第二次免疫剂量同上,加福氏不完全佐剂皮下或ip(腹腔内注射)(ip剂量不宜超过0.5ml)
(1)骨髓瘤细胞系的选择:骨髓瘤细胞应和免疫动物属于同一品系,这样杂交融合率高,也便于接种杂交瘤在同一品系小鼠腹腔内产生大量McAb。常用的骨髓瘤细胞系见表2-4。
表2-4用于融合试验的主要骨髓瘤细胞系
名称
来源
耐受药物
Ig链
H L
P3/X63-Ag8(X63)
BALB/C骨髓瘤MOPC-21
8-氮鸟嘌呤
(2)饲养细胞:在组织培养中,单个或少数分散的细胞不易生长繁殖,若加入其它活细胞,则可促进这些细胞生长繁殖,所加入的这种细胞数被称为饲养细胞。在制备McAb的过程中,许多环节 需要加饲养细胞,如在杂交瘤细胞筛选、克隆化和扩大培养过程中,加入饲养细胞是十分必要的。常用的饲养细胞有:小鼠腹腔巨噬细胞(较为常用)、小鼠脾脏细胞或胸腺细胞。也有人用小鼠成纤维细胞系3T3经放射线照射后作为饲养细胞。饲养细胞的量为一般为2×104或105细胞/孔。
⑥将上述细胞,加到已有饲养细胞层的96孔板内,每孔加100μl。一般一个免疫脾脏可接种4块96孔板。
⑦将培养板置37℃、5%CO2培养箱中培养。
选择杂交瘤细胞及抗体检测
1.HAT选择杂交瘤细胞脾细胞和骨髓瘤细胞经PEG处理后,形成多种细胞的混合体,只有脾细胞与骨髓细胞形成的杂交瘤细胞才有意义。在HAT选择培养液中培养时,由于骨髓瘤细胞缺乏胸苷激酶或次黄嘌呤鸟嘌呤核糖转移酶,故不能生长繁殖,而杂交瘤细胞具有上述两种酶,在HAT选择培养液可以生长繁殖。