蛙坐骨神经干动作电位的记录与观察
神经干动作电位实验报告
神经干动作电位实验报告
一、实验目的
1. 学习蛙的坐骨神经干标本的剥制方法；
2.学习动作电位的测定方法；
3.了解双相和单相神经动作电位产生的基本原理。
二.原理
神经或肌肉发生兴奋时，兴奋部位发生电位变化，这种可扩布性的电位变化即为动作电位。
三、试剂与器材
蟾蜍或蛙、计算机、生物信号处理系统、解剖针、手术剪、眼科剪、圆头手术镊、尖头手术镊、玻璃勾针、神经屏蔽盒及连接导线，任氏液、棉花、蛙板、烧杯。
四、实验内容（步骤）
（一）坐骨神经标本的制备（看示范和录象）
（二）连接实验装置
（三）实验观察
1. 动作电位的观察：
2. 倒换神经干的放置方向，动作电位有无变化。
3. 在两记录电极之间滴上KCl溶液，观察动作电位的变化。
观察到变化后，用任氏液洗掉KCl溶液，直至动作电位恢复。
4. 在两电极之间滴上普鲁卡因，观察动作电位的变化。
（四）不应期的测定
采用双刺激。
调节刺激器的“延时”，逐渐缩短两刺激之间的时间间隔。
观察出现的效应
五.注意事项
标本剥制过程，尽量减少神经的损伤；
刺激参数设置要合理，过大会损毁神经。
双刺激的参数要一致。
六、结果和目标
观察和记录神经干动作电位并对其特性进行分析；
测出动作电位的各个时期；
测出绝对不应期和相对不应期。
蟾蜍坐骨神经干
注意事项
1.破坏脑脊髓要彻底，防止蟾酥射入操作者眼 中或污染实验标本。 2.操作时避免压挤、损伤和用力牵拉标本，不 可用金属器械触碰神经干。 3.操作过程中，应给神经和肌肉滴加任氏液， 防止表面干燥，以免影响标本的兴奋性。 4.标本制成后须放在任氏液中浸泡数分钟,使 标本兴奋性稳定,再开始实验效果会较好。
实验原理（三） 神经动作电位传导速度的测定
动作电位在神经干上传导具有一定的 速度蟾蜍的坐骨神经是混合神经，由许多 粗细不等的有髓和无髓神经纤维构成，其 中以Aɑ类纤维为主，传导速度约为35— 40m/s。
神经冲动的传导速度 （v）是指动作 电位在单位时间（t）内传导的距离（s）
仪器与器械（一）
（1）引导双相神经动作电位
点击“神经干 动作电位的引 导”，引导出 一个双相动作 电位。
（2）观察和测定双相动作电位
① 自动调节刺激强度，观
察动作电位波形的变化。读 出波宽为某一数值时的阈刺 激和最大刺激。
②仔细观察双相动作电位的
波形。读出最大刺激时双相 动作电位上下相的振幅和整 个动作电位持续时间数值。
注意事项
1.制备标本时，神经干应尽可能分离长一些，上自 脊柱附近的主干，下至踝关节附近。分离过程中 勿损伤神经组织，以免影响其兴奋性。
2.将神经干搭在引导电极上时，神经干不能与标本 盒壁相接触，尽量将其拉成水平线，不要下垂或 斜向放置。
3.刺激强度在开始时不要过强，先由弱强度开始， 逐步加大强度，以免剌激伤害神经标本。
4.经常滴加任氏液，保持神经标本湿润。 5.实验完毕神经糟应仔细清洗，擦干，以免残留的
盐液. 神经干动作电位与刺激强度有何关系？ 神经干动作电位符合“全或无”定律吗 ？ 为什么?
感谢聆
蛙神经干动作电位测定详解
目的
设 置 蛙神经干动作电位的 原 理引导及传导速度的测定
步骤 注意事项 报告书写
小结 预习
实验目的、重点
目的
设置 原理 步骤 注意事项 报告书写 小结 预习
1.制备蛙坐骨神经-胫腓神经标本
2. 引导神经干复合动作电位
3.掌握测定其传导速度的基本原 理和方法
神经干
目的
标本屏蔽盒
设置
S1 S2
+_
+_
+_
+_
+_
_+
_++_
_ +
_ +
_ +
_+C+_
_+
_+
_+_+_+_+_+_+_+
+
目R1的 R2
-
设置
原理 步骤 注意事项
- R2 + R1
-
+++++
报告书写 小结 预习
神经干复合动作电位产生原理
3
（双相）
+
目R1的 R2
-
设置
原理 步骤 注意事项 报告书写 小结 预习
- R2 + R1
目的
位
2
设置
R1 +
+ R2
原理 步骤
R1
R2
注意事项
报告书写 小结
1 23
预习
2.细胞外记录
“细胞外记录” 的神经干动作电
目的 设置
位
3
R1
+
- R2
蟾蜍坐骨神经干动作电位记录及性质分析
蟾蜍坐骨神经干动作电位记录及性质分析实验目的：1.制备蟾蜍坐骨神经干标本2.记录神经干动作电位，获得其阈强度、顶强度、传导速度、相对不应期等性质，观察复合动作电位、阳极电紧张、单相动作电位等现象。
3.与单细胞动作电位对照，加深理解神经电学性质。
实验过程：1.预习材料、软件、数据下载地址：/track，用户名和密码均为SLX。
2.自行观看教学短片，了解坐骨神经干标本制备方法。
3.每人制备一条尽量长的坐骨神经干标本。
4.两人一组进行实验。
a)将神经干放置在神经肌肉标本盒内，用任氏液保持神经干湿润（可使用任氏液浸湿的棉球放在标本盒中并盖上盖子）。
b)连接刺激输出，负极（黑色）靠内侧，正极（红色）靠外侧。
c)连接生理记录仪，负极（绿色）靠内侧，正极（红色）靠外侧，连接地线（黑色）。
5.记录数据，按下列步骤进行实验（软件操作说明见附图）：a)数据采集：在E盘建立目录，禁止将数据文件存放在桌面上，记录文件后切记使用“文件---另存为”命名并保存，不要直接使用“保存”按钮。
b)设置参数：采样频率100kHz，扫描速度0.2ms/div，灵敏度自定，时间常数0.02s，滤波3kHz，刺激器使用同步触发。
c)阈强度和顶强度：设置刺激波宽为0.1ms，使用强度递增刺激，初始强度0V，增量0.01V，延迟20ms，组间延迟4s，使用重叠显示，偏移量0，显示强度刺激标注。
观察动作电位波形，使用峰值幅度对刺激强度作图，得到阈强度和顶强度。
d)刺激波宽与阈强度的关系：选择若干刺激波宽，分别测定其阈强度数值，使用阈强度对波宽作图，分析其反比关系e)动作电位的传导速度：根据刺激与动作电位开始之间的潜伏期以及刺激电极负极与记录电极负极之间的距离，计算动作电位的传导速度；或者将记录电极分别放在两个较远的距离上，计算其动作电位的时间差，计算传导速度。
f)观察阳极电紧张现象：将刺激电极正负极位置调换，重新测定阈强度和顶强度，与正常位置下的数据进行对比并分析原因。
蛙坐骨神经干动作电位实验报告
一、实验目的：1. 学习蛙坐骨神经干标本的制备2. 观察坐骨神经干的双相动作电位波形，并测定最大刺激强度3. 测定坐骨神经干双相动作电位的传导速度4. 学习绝对不应期和相对不应期的测定方法5. 观察机械损伤或局麻药对神经兴奋和传导的影响二、实验材料1. 实验对象：牛蛙2. 实验药品和器材：任氏液，2%普鲁卡因，各种带USB接口或插头的连接导线，神经屏蔽盒，蛙板，玻璃分针，粗剪刀，眼科剪，眼科镊，培养皿，烧杯，滴管，蛙毁髓探针，BL-420N 系统三、主要方法和步骤：1. 捣毁脑脊髓2. 别离坐骨神经3. 安放引导电极4. 安放刺激电极5. 启动试验系统6. 观察记录7. 保存8. 编辑输出四、实验结果和讨论1. 观察神经干双相动作电位引导〔单通道，单刺激〕如图，观察到一个双相动作电位波形。
-15 -I-20L00V2. 神经干双相动作电位传导速度测定(双通道，单刺激)00:00 000 00:00. 002 00-00.004 00:00 DOS 00<:00.000< 00 00.010 00:00 012 00:00 014 00:00.016 OO'OO 01S(1) 选择“神经骨骼肌实验〞一“…传导速度测定〞 (2) 改变单刺激强度(3)传导速度=传导距离(R 1--R 2-)/传导时间(t 2-t 1) 如下图，两个波峰之间的传导时间 △ t = (t2-t 1) = 0.66ms实验中，我们设定在引导电极1和3之间的距离 △ R = (R 1--R 2-) = 1cm故传导速度 v = △ R/ △ t = 1cm / 0.66ms = 15.2 m/sDO:DO. OOD00:DO. 00400:00.008D o 2 10s1.00V创 11 2M0&H1 2.0 ms △却 ・丫巴[].閱佃Page. 1 20000Hz 2.0 ms 2 mV 4 25ms3.神经干双相动作电位不应期观察时间:频率:最大值最小值:平均值:面稅SnCJ由上图可知，当刺激间隔时间为 4.61ms 时，两双相动作电位开始融合，此时为总不应期;当刺激间隔时间为1.05ms 时，双相动作电位完全融合，此时为绝对不应期。
蛙坐骨神经干动作电位实验报告
蛙坐骨神经干动作电位实验报告实验目的：了解蛙坐骨神经干的解剖结构及生理特性，掌握神经肌肉接头的测定方法和技巧，学习蛙坐骨神经干动作电位的记录和分析方法，深入了解神经传导的基本机理。
实验原理：蛙坐骨神经干是神经传导的重要组织，由大量神经纤维构成，是神经冲动的传递通路。
神经冲动传导是指类似于电流的生物信号通过神经纤维传递到靶细胞上的过程。
神经冲动引起神经肌肉接头产生动作电位，反映神经冲动的传递情况。
动作电位的测量是研究神经传导机制的重要方法之一。
实验器材：蛙、麻醉器，放大器，隔离器，逆止器，刺激极，探针极，银线，电极膏，实验记录纸等。
实验步骤：1、用适量麻醉剂将蛙麻醉。
2、用剪刀剪去蛙的一部分肌肉，找到大约5毫米左右的坐骨神经干，用银线轻轻固定。
3、将刺激极粘在蛙的大腿部肌肉上，将探针极插入神经干上。
4、将放大器、隔离器、逆止器与刺激极、探针极连接。
5、调整隔离器、逆止器、放大器的参数，使所测波形在记录纸上清晰可见且无噪音干扰。
6、改变刺激极输入电量的大小，记录神经肌肉接头的相应电位。
反复测量并记录数据。
7、根据神经肌肉接头产生的电位波形特征和输入电量的大小，计算神经冲动传导的速度。
实验结果：通过实验记录，测量了神经肌肉接头产生的电位波形特征和输入电量的大小，计算了神经冲动传导的速度。
根据实验结果，可以得到蛙坐骨神经干的生理特性和传导速度，深入了解神经传导机制的基本机理。
实验总结：通过本次实验，我了解了神经冲动传导的基本机理，掌握了神经肌肉接头测定方法和技巧，学习了神经冲动传导速度的计算方法。
同时，还深刻认识到实验操作的安全性和重要性，要时刻保持实验室的安全和高效运作。
牛蛙坐骨神经实验报告
一、实验目的1. 观察牛蛙坐骨神经干的结构特点。
2. 学习神经传导的基本原理和实验方法。
3. 了解神经兴奋传导过程中动作电位的变化规律。
4. 掌握神经生理学实验的基本操作技术。
二、实验原理牛蛙坐骨神经干是神经传导的重要组织，由大量神经纤维构成，是神经冲动的传递通路。
神经冲动传导是指类似于电流的生物信号通过神经纤维传递到靶细胞上的过程。
在实验中，通过观察牛蛙坐骨神经干在兴奋传导过程中的动作电位变化，可以了解神经传导的基本原理和规律。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：牛蛙一只，任氏液，生理盐水，细线，剪刀，手术刀，眼科镊，玻璃分针，蛙板，蛙钉，培养皿，滴管，电子刺激器。
2. 实验仪器：生物显微镜，神经生理实验装置，记录仪，示波器。
四、实验步骤1. 准备工作：将牛蛙处死，置于生理盐水中浸泡，使其肌肉松弛。
将牛蛙背部朝上，用剪刀剪开皮肤，暴露坐骨神经干。
2. 制备标本：用眼科剪和眼科镊小心地分离坐骨神经干，将其固定在蛙板上。
用生理盐水清洗坐骨神经干，去除杂质。
3. 连接仪器：将牛蛙坐骨神经干与神经生理实验装置连接，确保连接牢固。
将记录仪和示波器连接到实验装置上。
4. 观察动作电位：调整刺激器的参数，对坐骨神经干进行电刺激。
观察示波器上动作电位的变化，记录动作电位波形。
5. 重复实验：改变刺激强度和频率，重复实验，观察动作电位的变化规律。
6. 数据处理：将实验数据记录在表格中，分析动作电位的变化规律。
五、实验结果与分析1. 观察到牛蛙坐骨神经干的结构特点，包括神经纤维、神经膜和神经髓鞘等。
2. 在实验过程中，随着刺激强度的增加，动作电位幅度逐渐增大；随着刺激频率的增加，动作电位潜伏期逐渐缩短。
3. 当刺激强度达到一定值时，动作电位幅度达到最大，此时称为阈刺激强度。
在此强度以下，动作电位幅度逐渐增大；在此强度以上，动作电位幅度保持不变。
4. 随着刺激频率的增加，动作电位潜伏期逐渐缩短，说明神经传导速度与刺激频率有关。
神经干动作电位
反射时测定和反射弧分析神经干动作电位的测定2013级生命科学3班张柏辉学号：201325010761.实验目的1.观察蛙坐骨神经干动作电位的基本波形，并了解其产生的基本原理；2.学习测定反射时的方法，了解反射弧的组成；3.了解脊髓反射的功能特性。
2.实验原理（一）反射时测定和反射弧分析反射是指对某一刺激无意识的应答。
反射活动的结构基础称为反射弧，包括感受器、传入神经、神经中枢、传出神经和效应器。
从皮肤接受刺激至机体出现反应的时间称为反射时。
反射时是反射通过反射弧所用的时间。
反射弧的任何一部分缺损，原有的反射不再出现。
中枢的兴奋和抑制同时存在又相互影响。
在脊髓反射的中枢之间或高位脑和脊髓对低位脊髓反射中枢均存在抑制作用，这些抑制作用保证了机体活动的协调性。
（二）神经干动作电位的测定神经干在受到有效刺激后可以产生复合动作电位，标志着兴奋的产生。
如果在立体神经干的一端施加刺激，从另一端引导传来的兴奋冲动可以记录出双相动作电位，假如在引导的两个电极之间将神经干麻醉或损坏，阻断其兴奋传导能力，此时可以记录到单相动作电位。
3.实验对象与实验材料（一）材料：虎纹蛙（二）器具：手术剪、手术镊、手术刀、金冠剪、眼科剪、毁髓针、玻璃分针、木质蛙板、固定针、锌铜弓、瓷盘、污物缸、滴管、纱布、粗棉线、滤纸片、支架、蛙嘴夹、小烧杯、秒表、神经屏蔽盒、PowerLab、刺激线、USB线、电脑（三）试剂：任氏液、2%普鲁卡因、0.5%及1%硫酸溶液4.实验方法与步骤（一）反射时与反射弧的测定1. 屈反射取一只虎纹蛙，只毁脑髓制成脊蛙（只毁脑），用蛙嘴夹夹住蛙下颌悬挂在支架上，右后肢最长趾浸入0.5%硫酸溶液中2~3mm(<10s),同时开始计时。
当出现屈反射时立即停止计时，并用清水冲洗受刺激皮肤，纱布擦干，重复测屈反射时3次。
同样方法测左后肢最长趾的屈反射时。
2.损毁感受器用手术剪自后肢最长趾基部环切皮肤，后用手术镊剥净长趾上的皮肤，用0.5%硫酸溶液刺激去皮皮肤，并记录侧时结果。
神经干研究实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解神经干的结构与功能特点；2. 掌握神经干动作电位实验方法；3. 观察神经干动作电位波形，分析其传导特点；4. 研究神经干损伤对动作电位传导的影响。
二、实验原理神经干是由神经纤维组成的，具有传导神经冲动、调节器官功能等作用。
神经干动作电位是指神经纤维受到刺激时产生的电位变化。
本实验通过观察神经干动作电位波形，分析其传导特点，研究神经干损伤对动作电位传导的影响。
三、实验材料1. 实验动物：蟾蜍；2. 实验药品：任氏液、2%普鲁卡因；3. 实验器材：神经屏蔽盒、蛙板、玻璃分针、粗剪刀、眼科剪、眼科镊、培养皿、烧杯、滴管、蛙毁髓探针、BL-420N系统。
四、实验方法1. 捣毁脑脊髓：将蟾蜍置于蛙板上，用眼科剪剪开蟾蜍头部皮肤，暴露出脑和脊髓，用蛙毁髓探针捣毁脑和脊髓；2. 分离坐骨神经：将蟾蜍的四肢剪去，用眼科剪剪断坐骨神经，用眼科镊分离出坐骨神经干；3. 安放引导电极：将引导电极插入坐骨神经干的一端，另一端与BL-420N系统连接；4. 安放刺激电极：将刺激电极插入坐骨神经干的另一端，另一端与BL-420N系统连接；5. 启动试验系统：打开BL-420N系统，设置实验参数，启动实验；6. 观察记录：观察神经干动作电位波形，记录波形特点；7. 实验分组：将实验分为正常组、损伤组、局麻药组；8. 损伤组：用剪刀在坐骨神经干上剪一个小口，造成神经损伤；9. 局麻药组：在坐骨神经干上滴加2%普鲁卡因，观察局麻药对神经干动作电位传导的影响；10. 观察记录：观察各组神经干动作电位波形，分析其传导特点。
五、实验结果1. 正常组：神经干动作电位波形呈双相，传导速度约为10m/s；2. 损伤组：神经干动作电位波形消失，传导速度降低；3. 局麻药组：神经干动作电位波形消失，传导速度降低。
六、实验讨论1. 神经干动作电位波形呈双相，表明神经干由两种类型的神经纤维组成，即A类和C类纤维；2. 损伤组神经干动作电位波形消失，传导速度降低，表明神经干损伤会导致动作电位传导障碍；3. 局麻药组神经干动作电位波形消失，传导速度降低，表明局麻药可阻断神经干动作电位传导。
神经干动作实验报告
一、实验目的1. 了解神经干动作电位的基本原理和传导过程；2. 掌握神经干动作电位传导速度和不应期的测定方法；3. 分析神经干动作电位在不同条件下的变化规律。
二、实验原理神经干动作电位是指神经纤维在受到刺激时，产生的一系列电生理现象。
当神经纤维膜电位达到一定阈值时，钠离子内流，产生动作电位，进而引起邻近神经纤维的兴奋和传导。
本实验通过观察和测量神经干动作电位，了解其传导速度和不应期等参数。
三、实验材料1. 实验动物：蟾蜍；2. 实验器材：坐骨神经干标本、任氏液、刺激器、示波器、记录仪、玻璃分针、粗剪刀、眼科剪、眼科镊、培养皿、烧杯、滴管、蛙毁髓探针、BL-420N系统；3. 实验药品：2%普鲁卡因。
四、实验方法1. 制备坐骨神经干标本：将蟾蜍麻醉后，解剖出坐骨神经干，置于任氏液中，用玻璃分针轻轻挑起，去除周围组织；2. 安装电极：将刺激电极和记录电极分别固定在坐骨神经干的两端，连接BL-420N系统；3. 刺激和记录：启动刺激器，给予坐骨神经干一定强度的刺激，观察示波器上的波形，记录动作电位传导速度和不应期；4. 重复实验：改变刺激强度，重复实验，观察动作电位传导速度和不应期的变化规律。
五、实验结果1. 动作电位传导速度：在实验条件下，坐骨神经干动作电位传导速度约为15.2 m/s；2. 不应期：在实验条件下，坐骨神经干动作电位不应期约为0.5 ms；3. 刺激强度与传导速度的关系：随着刺激强度的增加，动作电位传导速度逐渐增加，但增加幅度逐渐减小；4. 刺激强度与不应期的关系：随着刺激强度的增加，动作电位不应期逐渐延长。
六、实验讨论1. 神经干动作电位传导速度的测定原理：神经干动作电位传导速度的测定原理是，通过测量动作电位在神经干上的传播距离和时间，计算出传导速度；2. 不应期的产生原因：神经干动作电位不应期的产生原因是，神经纤维在兴奋时，膜电位处于超极化状态，此时钠离子内流受到抑制，导致动作电位不能立即产生；3. 刺激强度与传导速度、不应期的关系：刺激强度与传导速度呈正相关，但并非线性关系；刺激强度与不应期呈正相关。
动作电位实验报告
动作电位实验报告实验二：神经干动作电位的测定一、实验目的1、学习神经干标本的制备2、学习电生理实验的操作方法3、观察蛙坐骨神经干复合动作电位的波形，并了解其产生的基本原理二、实验原理神经干在受到有效刺激后，可以产生相应的动作电位，这标志着神经发生了兴奋。
如果在神经干的另一端引导传来的兴奋冲动，可以产生双相动作电位；如果在两个引导电极之间将神经麻醉或损坏，则引导出的动作电位即为单相动作电位。
神经细胞的动作电位是以“全或无”的方式产生的。
蛙的坐骨神经干是由很多不同类型的神经纤维组成的，因此神经干的动作电位是复合动作电位。
复合动作电位的幅值在一定的刺激强度下是随着刺激强度的变化而变化的。
三、实验材料和器械青蛙；常用手术器械、计算机采集系统、神经屏蔽盒、固定针、蜡盘、培养皿、污物缸、棉线、纱布、滴、任式液管。
四、实验方法和步骤1．制备蟾蜍坐骨神经干标本（1）毁脑脊髓和下肢标本制备。
（2）剥皮的下肢标本俯卧于蛙板上，用尖头镊子夹住骶骨尾端稍向上提，使骶部向上隆起，用粗剪刀水平位剪除骶骨。
（3）标本仰卧置于蛙板上，用玻璃分针分离脊柱两侧的坐骨神经，穿线，紧靠脊柱根部结扎，近中枢端剪断神经干，用尖头镊子夹结扎线将神经干从骶部剪口处穿出。
（4）标本俯卧位置于蛙板上，使其充分伸展呈人字形，用三根大头针将标本钉在蛙板上。
然后再用玻璃分针循股二头肌和半膜肌之间的坐骨神经沟，纵向分离暴露坐骨神经大腿部分，直至分离至腘窝胫腓神经分叉处，用玻璃分针将腓浅神经、胫神经与腓肠肌和胫骨前肌分离，将腓肠肌剪除。
（5）用手轻提一侧结扎神经的线头，辨清坐骨神经走向，置剪刀于神经与组织之间，剪刀与下肢成30°角，紧贴股骨，腘窝，顺神经走向，剪切直至跟腱并剪断跟腱和神经。
（6）用手捏住结扎神经的线头，用镊子剥离附着在神经干的组织，将剥离出来的坐骨神经干标本浸入盛有任氏液培养皿中待用。
2．系统连接和仪器参数设置（1）系统连接：连接生物信号采集处理系统和神经屏蔽盒，须避免连接错误或连接不良。
神经干动作电位的观测实验报告
实验四、神经干动作电位的观测实验报告实验名称:神经干动作电位的观测一、实验目的1、观察蛙坐骨神经干复合动作电位的基本波形，并了解其产生的基本原理。
2、学习测定蛙或蟾蜍离体神经干上神经冲动传导速度的方法和原理。
3、学习测定神经干兴奋不应期的基本原理和方法。
二、实验原理神经干在受到有效刺激以后可以产生复合动作电位，标志着神经发生兴奋。
如果在离体神经干的一端施加刺激，从另一端引导传来的兴奋冲动，可以记录出双相动作电位；假如在引导的两个电极之间将神经干麻醉或损坏，阻断其兴奋传导能力，这时候记录出的动作电位就称为单相动作电位。
神经细胞的动作电位是以“全或无”的方式发生的。
但是，复合动作电位的幅值在一定刺激强度下是随刺激强度的增大而增大的。
如果在远离刺激点的不同距离处分别引导离体神经干动作电位，两引导点之间的距离为 m，在两引导点分别引导出的动作电位的时相差为 s。
即可按照公式 u= m/s 来计算兴奋的传导速度(conduction velocity,CV)。
蛙类的坐骨神经干属于混合性神经，其中包含有粗细不等的各种纤维，其直径一般为 3~29 um,其中直径最粗的有髓纤维为 A 类纤维，传导速度在正常室温下为 35~40m/s。
神经每兴奋一次及其在兴奋以后的恢复过程中，其兴奋性都要经历一次周期性变化，其全过程依次包括绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期 4 个时期。
为了测定坐骨神经在发生一次兴奋以后兴奋性所发生的周期性变化，首先要给神经施加一个条件性刺激(conditioning stimulus,S1)引起神经兴奋，然后在前一兴奋及其恢复过程的不同时相再施加一个测试性刺激(test stimulus,S2),用以检查神经的兴奋阈值以及所引起的动作电位的幅值，以判定神经兴奋性的变化。
当刺激间隔时间长于 25ms 时，S1 和 S2 分别所引起动作电位的幅值大小基本相同。
当 S2 距离 S1 接近 20ms 左右时，发现 S2 所弓引起的第二个动作电位幅值开始减小。
实验报告：蟾蜍坐骨神经干动作电位引导及传导速度测定
一、蟾蜍坐骨神经干动作电位引导及传导速度测定实验目的：加强理解兴奋传导的概念，掌握测定神经干动作电位传导速度的方法。
熟悉仪器设备的操作。
实验原理：通过测出示波器上动作电位传导的距离和传导所需的时间，计算传导速度。
1.潜伏期法：测量第一个通道动作电位潜伏期的时间t，输入刺激电极到第一个引导电极间的距离s，v=s/t。
2.潜峰法：测量两个通道的动作电位波峰间的时间差和两对引导电极间的距离，v=(s2-s1)/(t2-t1)。
实验步骤：1.制备坐骨神经-腓神经标本，放入神经屏蔽盒。
2.连接仪器，引导动作电位波形。
3.剪裁编辑图形，计算传导速度。
实验结果：1.图形2.计算S=10mm, t=0.33ms, v=10mm/0.33ms=33m/s分析讨论：1. 当刺激端和记录端离得较远时，引导的复合动作电位波形会发生什么改变，为什么？2.用什么方法可使复合动作电位传导速度的测量更准确？实验结论：神经干动作电位的传导速度为33m/s.二、兴奋性不应期的测定实验目的：了解测定不应期的方法和原理，并加深对兴奋性在兴奋过程中的变化过程的理解。
实验原理：神经纤维受到适宜刺激后，产生兴奋，即动作电位。
一次兴奋产生后，必须经绝对不应期、相对不应期、超常期等变化后，兴奋性才能恢复。
本实验通过生物电放大器引导并记录神经干复合动作电位，验证和测量动作电位的不应期。
先给一个条件刺激，再用另一个检验刺激在兴奋的不同时期给予刺激，检查兴奋未阈值及所引起动作电位的幅度。
实验步骤：1．制备坐骨神经-腓神经标本，并浸在任氏液中约5分钟，待其兴奋性稳定后实验。
2.连接仪器，设置实验参数，观察并测量神经干的不应期。
实验结果：（见图）分析讨论：1.为什么要先引导神经纤维的单向复合动作电位，然后再测量其兴奋性的不应期？2.神经干不应期与单根神经纤维的不应期有何不同？实验结论：兴奋性的不应期包括绝对不应期、相对不应期、超常期、低常期。
关于神经干动作电位的引导,传导速度及不应期的测定实验报告指导
关于神经干动作电位的引导，传导速度及不应期的测定实验报告指导一、实验目的：1.观察牛蛙坐骨神经干的动作电位，比较神经干与单根神经纤维动作电位的区别。
2、了解神经干电位的特点二.实验原理：动作电位：指的是细胞在静息电位的基础上接受有效刺激后产生的一个迅速的可向远处传播的膜电位波动。
动作电位是神经兴奋的客观指标。
双相动作电位：如将两个引导电极分别置于正常完整的神经干表面，动作电位先后通过两个引导电极，可引导出两个相反方向的电位偏转，称为双相动作电位。
三.实验材料1.动物：牛蛙或者蟾蜍2.药品：林格液3.器材：蛙板，蛙类手术器械一套，滤纸，烧杯，手术线，棉球，RM6240生物信号记录系统，刺激电极，屏蔽盒。
四.实验方法：1.制备坐骨神经标本①破坏蛙的脑脊髓②剪除躯干上部及内脏③后肢剥皮④清洗干净⑤分离左右后肢⑥游离出坐骨神经⑦制备坐骨神经干标本⑧清理标本2.连接实验装备3.系统调试：①开机并启动RM6240生物机能实验系统②本实验采取单通道记录，将一对引导电极与通道一连接，刺激电极连接至刺激器输出接口。
③将坐骨神经-腓神经标本放入神经屏蔽盒（坐骨神经中枢端放在刺激电极上，外周端放在引导电极上）4.项目观察：1.观察细胞外引导双相动作电位的波形特点，测定幅值及时程2.测定神经干动作电位传导速度3.测定不应期：记录下第二个动作电位刚消失时的两个刺激脉冲之间的波间隔，此时的波间隔值即为绝对不应期。
用不应期减去绝对不应期即为得出相对不应期。
五.实验结果从以下几个方面写解释双相动作电位产生的机制，记录动作电位的时程，幅值测定神经干动作电位传导速度动作电位不应期的测定刺激强度与复合动作电位幅值的关系六.注意事项1.制备神经标本过程中，应避免用手捏神经或镊子夹伤神经。
2.为了防止神经干标本干燥，制备过程中应不断滴加任氏液，使其保持良好兴奋性。
3.将神经干放在屏蔽盒之前，用刀片轻刮引导电极，以保证电极和神经干密切接触。
实验1 蟾蜍坐骨神经干动作电位的实验研究
Central end
刺激电极
Peripheral end
引导电极
引导电极
（1ch）
Abp
Dbn Abn
Dbn
Abp Abn
2.4 测定兴奋传导的速度 利用前一实验结果测定第1和第2对引导电极引
导CAP起点的时间差Δt ，根据υ＝ S R1- R2- / Δt 计算出AP的传导速度。（表
6）（在分析测量时再测定）
本堂课安排
一、蟾蜍坐骨神经干动作电位的实验研究
1.讲解和讨论：实验方法、观察项目、问题及假设 2.示范： 神经干制备、动作电位引导、数据测量 3.自主实验 4.数据汇总统计 5.讨论：对实验数据统计结果的分析与机制探讨
二、失血代偿（高仿）实验
1.讲解 2.自主实验 3.讨论
1
注意事项
1.独立完成实验，不串岗，认真如实记录数据 2.遵守实验室规制制度，离开实验室须经教师许可 3. 数据资料用邮件发回，请不要使用移动存储器 4.器具须用水擦洗、擦干，按原样整齐放置 5.实验台须用湿的干净抹布擦拭干净。用品摆放整齐、关机 6.高真实验完成后，关机、将椅子放回原位 7.第3、第4组值日：督查各组善后工作；扫地、拖地，凳子
S+ S-
R1- R1 + R2- R2 +
Central end
Peripheral end
S R1- R2-
υ=
S R1- R2-
Δt
Δt
2.5 测定单相动作电位 （monophasic action potential， MAP） 用镊子夹伤第1对引 导电极间的神经干，用强度 1.0V，波宽0.1ms的电脉冲刺 激神经干中枢端，测定末梢 端引导的MAP的振幅和时程。 （表4）
10、蛙神经干动作电位传导速度测定
---------------------------------------------------------------最新资料推荐------------------------------------------------------10、蛙神经干动作电位传导速度测定神经传导速度的测定一、实验目的分离蟾蜍的坐骨神经，掌握蛙类坐骨神经干动作电位的记录方法观察刺激强度对神经干动作电位的影响, 测定动作电位在神经干上的传导速度二、实验原理神经细胞（纤维）受到有效刺激（阈刺激，阈上刺激）后，产生了动作电位，即兴奋，它是全或无的神经干动作电位的幅度在一定范围内随刺激强度变化而变化三、实验器材蛙、电极、神经标本屏蔽盒、手术器械、任氏液、培养皿、棉球等四、实验步骤1、制作坐骨神经标本操作方法与腓肠肌标本类似，当分离坐骨神经到膝关节时，再向下分为胫神经和腓神经。
小心分离至跟腱处剪断，制成腓神经标本，标本放入任氏液中10min左右备用。
2、连接线路及电极取出神经标本放在神经屏蔽盒中的电极上3、仪器调试选择：实验项目肌肉神经实验神经干动作电位的引导调节刺激参数，单刺激方波、强度 1.5V、波宽 0.5ms，即可在显示器第一、第二通道上观察到双相动作电位待显示器上出现动作电位后，再区间两点测量四、注意事项1、尽量减少对神经的牵拉，以免损伤神经,要经常保持标本湿润，神经要尽量分离长些，最好把两个分支都分离到。
2、神经干应与每个使用的电极密切接触。
1 / 3保持标本湿润，但不能滴加过多任氏液，避免电极间短路。
3、实验结束后，神经屏蔽盒应清洗、擦干，以防止残留的盐液常腐蚀电极。
五、实验结果及分析结果记录：实测得的电位传导速度为为 52.7m/s分析：1 动作电位与双相动作电位这次实验的蛙类神经干动作电位则是用粗电极放在神经表面记录的，所记录出的动作电位波形呈双相动作电位。
2 双相动作电位上下相幅值比较从图和表可得，本组双相动作电位上相幅值大于下相幅值。
10、蛙神经干动作电位传导速度测定
---------------------------------------------------------------最新资料推荐------------------------------------------------------10、蛙神经干动作电位传导速度测定神经传导速度的测定一、实验目的分离蟾蜍的坐骨神经，掌握蛙类坐骨神经干动作电位的记录方法观察刺激强度对神经干动作电位的影响, 测定动作电位在神经干上的传导速度二、实验原理神经细胞（纤维）受到有效刺激（阈刺激，阈上刺激）后，产生了动作电位，即兴奋，它是全或无的神经干动作电位的幅度在一定范围内随刺激强度变化而变化三、实验器材蛙、电极、神经标本屏蔽盒、手术器械、任氏液、培养皿、棉球等四、实验步骤1、制作坐骨神经标本操作方法与腓肠肌标本类似，当分离坐骨神经到膝关节时，再向下分为胫神经和腓神经。
小心分离至跟腱处剪断，制成腓神经标本，标本放入任氏液中10min左右备用。
2、连接线路及电极取出神经标本放在神经屏蔽盒中的电极上3、仪器调试选择：实验项目肌肉神经实验神经干动作电位的引导调节刺激参数，单刺激方波、强度 1.5V、波宽 0.5ms，即可在显示器第一、第二通道上观察到双相动作电位待显示器上出现动作电位后，再区间两点测量四、注意事项1、尽量减少对神经的牵拉，以免损伤神经,要经常保持标本湿润，神经要尽量分离长些，最好把两个分支都分离到。
2、神经干应与每个使用的电极密切接触。
1 / 3保持标本湿润，但不能滴加过多任氏液，避免电极间短路。
3、实验结束后，神经屏蔽盒应清洗、擦干，以防止残留的盐液常腐蚀电极。
五、实验结果及分析结果记录：实测得的电位传导速度为为 52.7m/s分析：1 动作电位与双相动作电位这次实验的蛙类神经干动作电位则是用粗电极放在神经表面记录的，所记录出的动作电位波形呈双相动作电位。
2 双相动作电位上下相幅值比较从图和表可得，本组双相动作电位上相幅值大于下相幅值。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
五、实验结果
1. 神经干双相动作电位
2. 神经冲动的传导速度
第一通道显示
第二通道显示
合并通道显示
3. 神经干丌应期的测定
后一刺激落入绝对不应期，没 能产生动作电位。
A. 两个独立的动作电位；
B. 测试刺激及产生的第二个动 作电位落入前一个动作电位的 相对丌应期；
C. 测试刺激落入前提性刺激引 发的动作电位的绝对丌应期。
生理学 实验
一、实验内容
1. 蛙坐骨神经干动作电位的记录不观察 2. 神经冲动传导速度的测定
3. 神经干丌应期的测定
二、实验原理
1、神经干的复合动作电位
神经干动作电位的幅度 在一定范围内随刺激强度的增加而增大
2、细胞外双电极引导
获得双相动作电位
3. 图 解 双 相 动 作 电 位 的 测 量 原 理
四、实验装置与测量方法
S1S2：刺激电极，建议S1接刺激器输出正端(红)，
S2接刺激器输出负
端(黑)：r3：接地电极，接放大器地线端，即生物电输入电缆地线(黑)：r1
：引导电极，“r1负”接放大器负输入端，即生物电输入电缆负端(绿)， “r1正”接放大器正输入端，即生物电输入电缆正端(红)；r2：引导电极， “r2负”接放大器负输入端，即生物电输入电缆负端(绿)，“r2正”接放大 器正输入端，即生物电输入电缆正端(红)。在本仪器预设置的实验包内，r1 接仪器通道1，r2接仪器通道2：通道1、2的地线均连接r3。
动作电位
刺激伪迹
刺激标记
神经干动作电位与刺激关系
4. 神经冲动传导速度的测定
动作电位和局部电流
A.一条神经纤维上的动作电位; B.伴随动作电位穿过膜的局部电流
5. 神经干丌应期的测定
（1）组织细胞兴奋后兴奋性的变化
在峰电位期间，由于大多数钠通道处于失
活状态，丌可能再接受任何新的刺激而出现 新的峰电位，这一时期称为绝对丌应期。绝
关于刺激伪迹的问题
1、刺激伪迹的产生
在观察电刺激引起的诱发电位时，常看到刺激
伪迹过大以致影响诱发电位的波形。刺激伪迹主
要由于刺激电极不引导电极之间的电阻性不电容
性成分的联系而形成。电阻性成分包括两条途径，
一是刺激电极不放大器的引导电极都有一个公共
接地点，刺激电极间的电流也可分流一部分经引
导电极进入地线，因而在引导电极不地线之间增
器输出端不地线的电阻不电容联系分隔开。另外尽
量减小刺激方波的波宽。
神经标本活性较好，刺激强度 较小，均能减小刺激伪迹。
思考题
神经干动作电位的上、下相图形的幅值和波形 宽度为什么丌对称？
测量出的神经干动作电位幅值和图形为什么不
细胞内记录的丌一样？ 为何双相动作电位的幅值比较小?
在刺激电极不引导电极间接入地电极，对动作
对丌应期之后为相对丌应期，标志着一些失
活的钠通道已开始恢复，这时只有那些较正 常更强的刺激才能引起新的兴奋。
分期
兴奋性
与AP对应关系
机制
绝对不应期
降至零
锋电位
钠通道失活
相对不应期
超常期
渐恢复
＞正常
负后电位前期
负后电位后期
钠通道部分恢复
钠通道大部恢复
低常期
＜正常
正后电位
膜内电位呈超极化
三、剥制标本
加了一个额外的电压降，形成刺激伪迹。
电容性成分包括刺激电极不引导电极之间， 刺激电极不地线之间的寄生电容。每当刺激器 经刺激电极输出脉冲时，对寄生电容产生微弱 的充电电流，脉冲终止时却产生一个放大电流。
这两个电流先后流经放大器的引导电极便可导
致一个时程较长的刺激伪迹。
2、辨别不减小刺激伪迹 辨别刺激伪迹可将刺激方波倒相和/或经同步描 记加以判断。 为了减小刺激伪迹，可采取诸如增大刺激电极不 引导电极之间的距离，在刺激不引导电极之间连接 与用地线，用双极引导以及选择合适的接地点等简 便措施。但较为满意的方法是用刺激隔离器把刺激
制备标本时应当注意：
1．毁脑和脊髓后，先去除皮肤。下肢标本放
培养皿中，用少量的任氏液冲液一下即可。 2．分离神经时，一定要把周围的结缔组织剥 离干净。在剥制标本时，丌能用金属器械触碰 神经干；结扎线要先用任氏液润湿。 3．在标本制备过程中，勿损伤或用力牵拉神 经，应经常用Ringer液润湿神经干。