聚乙二醇衍生化磷脂与脂质体立体稳定性

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peg脂质体的摩尔分数 -回复

peg脂质体的摩尔分数 -回复

peg脂质体的摩尔分数-回复“PEG脂质体的摩尔分数”是指聚乙二醇(Polyethylene Glycol,简称PEG)在脂质体制备过程中所占的摩尔比例。

脂质体是由磷脂组成的膜状结构,在医药及生物科学领域有着广泛的应用,例如药物传递、基因治疗、免疫学研究等。

PEG脂质体是一种通过添加PEG改善脂质体稳定性和药物递送效果的改进型脂质体。

本文将从脂质体的概念、PEG的作用机制以及PEG脂质体的制备步骤等方面,阐述PEG脂质体摩尔分数的具体含义及其影响因素。

一、脂质体的概念和作用脂质体是一种由磷脂分子聚集而成的人工膜状结构,其磷脂分子构成的双层结构能够在水中形成稳定的球形封闭空间,称为“小囊泡”。

小囊泡的特点是能与水相溶液相容,同时能够通过调整磷脂的结构来携带和传递水溶性物质。

在药物递送领域,脂质体可以通过载体作用帮助药物进入细胞,实现药物的靶向性和缓释性递送。

二、PEG的作用机制PEG是一种亲水性分子,其在脂质体制备中的加入可以有效提高脂质体的稳定性和药物递送效果。

PEG分子结构特殊,具有可以与水形成氢键的羟基官能团,从而使脂质体膜对水的渗透性下降。

PEG能够包裹在脂质体表面,形成一层亲水性羟基保护层,防止水分子进入脂质体内部,并减小脂质体颗粒间的聚集作用。

此外,PEG还具有优良的纳米尺寸调控能力,可以影响脂质体的大小和分散状态,进而影响药物的释放速度和稳定性。

三、PEG脂质体的制备步骤PEG脂质体的制备过程主要包括磷脂溶解、PEG添加和脂质体形成等步骤。

首先,将适量的磷脂溶解于合适的有机溶剂中,如氯仿、甲醇或双氯甲烷。

通常选择活性炭作为吸附剂,去除磷脂中的杂质。

其次,在磷脂溶液中加入一定量的PEG溶液。

PEG的摩尔分数通常是参考PEG与磷脂的摩尔比例,根据脂质体所需性质的不同进行调整。

PEG脂质体的适宜摩尔分数范围一般为0.1-0.3。

然后,用机械搅拌或超声处理的方法将磷脂溶液和PEG溶液充分混合,使其形成均匀的混合溶液。

脂质体药物的结构或功能性成分的质量控制

脂质体药物的结构或功能性成分的质量控制

脂质体药物的结构或功能性成分的质量掌控脂质体药物一般由活性成分、结构或功能性成分(包含脂质、非脂质)和其它辅料构成。

脂质中的磷脂用于形成脂质双分子层,胆固醇能够嵌入到磷脂膜中,调整膜的流动性,修饰磷脂(如聚乙二醇化磷脂)可以改善脂质体的理化性质或体内药代动力学行为。

另外,一些非脂质成分也可参加脂质体结构形成、稳定脂质体或给予脂质体新功能,同样应对其质量进行研究与掌控。

对于新辅料或超出常规用法用量的非活性成分,需供应充分完整的研究资料以支持其使用。

1、脂质体结构或功能性成分的表征对于合成或半合成的磷脂(如二肉豆蔻酰磷脂酰胆碱、氢化大豆卵磷脂等),应基于标准光谱、核磁共振、质谱或基于对照品的色谱等证明其结构,并明确脂质的构成(如各磷脂成分和脂肪酸的百分比、酰基侧链的具体位置、脂肪酸的不饱和程度)。

对于自然来源的磷脂混合物(如蛋黄卵磷脂或大豆卵磷脂),应供应重要磷脂成分的百分比范围,并对脂肪酸进行掌控。

对于修饰磷脂,如聚乙二醇化磷脂,聚乙二醇的分子量及分布、聚乙二醇和磷脂的连接臂、聚乙二醇的端基修饰等,可能显著影响脂质体药物的制备、体内外稳定性、脂质体的粒径和药物的释放等属性,应准确表征其结构。

2、脂质体结构或功能性成分的来源和生产应依据脂质体结构或功能性成分的类型、特征或来源供应相应的信息,并进行相应的质量掌控研究。

对于合成或半合成磷脂等结构或功能性成分,应确定起始原材料、合成工艺和纯化步骤,并对关键步骤、关键工艺参数以及中心产品进行适当掌控。

应供应起始原材料、其它原材料子、溶剂或试剂的质量标准。

对于自然来源的磷脂混合物和用于制备半合成磷脂的自然来源的起始原材料,应明确生物源(如鸡蛋)及其国家或地区、供应商等,并供应提取和纯化步骤的描述。

应供应动物蛋白、病毒去除和/或灭活的研究及验证资料,并合理掌控热原/细菌内毒素。

3、脂质体结构或功能性成分的质量标准磷脂或其它结构或功能性成分可能在非脂质体剂型中或类型显著不同的脂质体中使用,并具有药典标准或其它质量标准。

甾醇分子差异对脂质体结构稳定性的影响

甾醇分子差异对脂质体结构稳定性的影响

㊀㊀2023年4月第38卷第2期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀JOURNAL OF LIGHT INDUSTRY㊀Vol.38No.2Apr.2023㊀收稿日期:2022-02-27基金项目:国家自然科学基金青年基金项目(31901682);广东省普通高校青年创新人才类项目(2018KQNCX259);广东省创新强校工程创新团队项目(2021KCXTD035)作者简介:邓莉梅(1996 ),女,四川省资阳市人,广东工业大学硕士研究生,主要研究方向为食品递送系统㊂E-mail :1176993285@通信作者:于泓鹏(1979 ),男,河南省商丘市人,广东工业大学副教授,博士,主要研究方向为油脂制备及安全㊂E-mail :yuh-peng@邓莉梅,刘宇佳,朱杰,等.甾醇分子差异对脂质体结构稳定性的影响[J].轻工学报,2023,38(2):33-40.DENG L M,LIU Y J,ZHU J,et al.Effect of sterol molecular difference on the structural stability of liposomes[J].Journal of Light Industry,2023,38(2):33-40.DOI:10.12187/2023.02.004甾醇分子差异对脂质体结构稳定性的影响邓莉梅1,2,刘宇佳2,朱杰2,于泓鹏11.广东工业大学轻工化工学院,广东广州510006;2.东莞理工学院化学工程与能源技术学院/中国轻工业健康食品开发与营养调控重点实验室,广东东莞523808摘要:通过添加胆固醇㊁β-谷甾醇和豆甾醇,采用乙醇注入法结合动态高压微流射技术制备甾醇脂质体,研究不同甾醇对脂质体膜结构稳定性的影响㊂结果表明:β-谷甾醇和豆甾醇的加入,使甾醇脂质体粒径从(48.35ʃ0.41)nm 分别增至(106.27ʃ0.90)nm 和(107.27ʃ0.59)nm ,Zeta 电位保持不变,均在-30mV 左右;电子显微镜观察发现,添加甾醇的脂质体形成了稳定的磷脂双分子层结构;甾醇可以使脂质体的盐稳定性和pH 稳定性增强,但对温度稳定性无显著影响;β-谷甾醇和豆甾醇的加入使脂质体膜的流动性㊁疏水性和微极性都显著减小,这表明脂质体磷脂双分子膜的结构变得更加致密㊂关键词:胆固醇;β-谷甾醇;豆甾醇;脂质体;结构稳定性中图分类号:TS201.1㊀㊀文献标识码:A㊀㊀文章编号:2096-1553(2023)02-0033-080 引言脂质体(Liposome)是由磷脂自组装形成的具有双分子层结构的闭合囊泡,尺寸分布可以在10nm到几μm 之间,是食品营养与健康领域一种非常重要的递送介质[1]㊂脂质体具有与生物膜类似的空间分子结构,因而具有良好的生物相容性㊁安全性㊁非免疫原性及缓释效果,在食品㊁医药㊁化妆品等领域都倍受关注[2-3]㊂目前,脂质体在乳制品[4]㊁饮料[5]㊁肉制品[6]㊁巧克力[7]等食品中的应用与研究较为广泛㊂脂质体是一种热力学不稳定体系,易受温度㊁pH 值㊁离子强度等因素影响而引发膜结构破裂㊁磷脂层降解㊁包封物泄露等问题,限制了其在复杂食品体系中的推广与应用㊂为了改善脂质体结构的稳定性,通常采用的物理处理方法包括超声[8]㊁均质[9]㊁动态高压微射流[10]等,也可以通过化学方法对脂质体膜进行修饰,其中,甾醇[11]㊁多糖[12]㊁人工高聚物[13]㊁聚乙二醇[14]㊁蛋白质[15]等作为脂质体双层磷脂膜的修饰成分得到了广泛关注㊂甾醇的分子结构属于类异戊二烯衍生物,是细胞膜的主要构成成分,对细胞膜的结构和功能起着㊃33㊃㊀2023年4月第38卷第2期㊀重要作用㊂但在脂质体形成过程中,甾醇本身无法形成囊泡,通常需要以相对较高的浓度将其结合到磷脂的双分子层膜中,以调节磷脂膜的流动性和通透性[16]㊂与其他脂质体相比,甾醇脂质体制备工艺简单,容易实现规模化生产,并已应用于医药行业㊂目前,胆固醇(Cholesterol)在脂质体的制备过程中是最常使用的甾醇之一,然而胆固醇摄入过多会增加人体患心脑血管疾病和动脉粥样硬化的风险[17]㊂随着人们对食品品质和健康需求的提高,以及对功能性食品的逐渐重视,对人体健康更加有益的植物甾醇逐渐受到业界青睐㊂植物甾醇具有与胆固醇类似的分子结构,其中,β-谷甾醇(β-sitosterol)和豆甾醇(Stigmasterol)具有降低心脑血管疾病风险㊁抗癌㊁抗炎镇痛等功效[18]㊂此外,β-谷甾醇和豆甾醇分子结构不同于胆固醇,两者在C24上的侧链均为乙基基团,而豆甾醇在C22上还具有双键结构[11]㊂但这种结构上的差异对脂质体制备与贮藏过程中磷脂双分子层结构稳定性的影响尚不明确㊂基于此,本研究拟制备包含胆固醇㊁β-谷甾醇及豆甾醇的3种甾醇脂质体,通过测定甾醇脂质体的平均粒径和Zeta电位,结合电镜图像分析,对比不同甾醇对所制备甾醇脂质体微观结构的影响;采用荧光法测定甾醇脂质体磷脂膜的流动性㊁疏水性及微极性,并通过红外光谱探讨甾醇与磷脂的相互作用关系;最后测定不同甾醇脂质体在盐溶液㊁温度㊁pH值等环境因素胁迫下的稳定性,旨在为制备能够替代胆固醇的植物甾醇脂质体用于构建新型健康食品脂质递送体系提供理论支持和数据参考㊂1㊀材料与方法1.1㊀材料与试剂大豆卵磷脂(SPC,纯度90%)㊁二甲基亚砜(DMSO,纯度99%),上海阿拉丁生化科技股份有限公司产;胆固醇(纯度98%)㊁β-谷甾醇(纯度98%),上海源叶生物科技有限公司产;豆甾醇(纯度90%)㊁1,6-二苯基-1,3,5-己三烯(DPH,纯度98%)㊁芘(纯度97%)㊁8-苯氨基-1-萘磺酸(ANS,纯度97%),上海麦克林生化科技有限公司产;无水乙醇㊁吐温-80㊁丙酮㊁HCl㊁NaOH㊁NaCl,均为分析纯,国药集团化学试剂有限公司产㊂1.2㊀主要仪器与设备M-110EH30型高压微射流均质机,美国Mic-fofluidics公司产;Nicolet IS50型红外光谱仪,美国赛默飞公司产;F-7100型荧光光谱仪,日本日立高新技术公司产;Zetasizer Nano-ZS90型激光粒度分析仪,英国Malvern公司产;Spark型多功能微孔板检测仪,瑞士TECAN公司产;Sigma-500型场发射扫描电镜,德国蔡司公司产㊂1.3㊀实验方法1.3.1㊀甾醇脂质体的制备㊀采用乙醇注入法结合动态高压微射流技术,制备胆固醇脂质体(Choles-terol Liposome,Chol-LP)㊁β-谷甾醇脂质体(β-sitos-terol Liposome,Sit-LP)和豆甾醇脂质体(Stigmasterol Liposome,Sti-LP),以空白脂质体(Liposome,LP)为对照㊂方法如下:将磷脂和甾醇以物质的量比3ʒ1溶于无水乙醇中,用注射器匀速缓慢地注入含有吐温-80(质量分数为0.2%)的去离子水中,乙醇和水的体积比为1ʒ8;以750r/min的转速在室温下搅拌60min,使磷脂充分水化,将混合溶液转移至茄形瓶中,40ħ旋转蒸发20min,至乙醇全部除去;将粗脂质体溶液经动态高压微射流18000psi循环1次,得到磷脂质量浓度为10mg/mL的脂质体溶液㊂1.3.2㊀脂质体微观结构表征㊀使用激光粒度分析仪测定脂质体的粒径和Zeta电位㊂为避免多次散射引起测量误差,将待测样品用去离子水稀释10倍后加入聚苯乙烯比色皿中,在25ħ下平衡120s,折光系数为1.490,检测器角度为90ʎ,每个样品至少平行测量3次,结果取平均值㊂将样品滴在硅片上自然晾干并喷金处理30s,将喷金后的样品放入电镜仓中,以3kV的加速电压在场发射扫描电镜下观察脂质体的微观形貌㊂1.3.3㊀脂质体膜的流动性测定㊀采用DPH荧光探针法研究脂质体膜的流动性[19]㊂用去离子水将脂质体稀释10倍后与DPH-DMSO(2μmol/L)溶液以5ʒ1的体积比混合,避光孵育60min㊂孵育后的样品在激发波长360nm㊁发射波长430nm的条件下记录荧光强度,通过公式②计算荧光偏振度(P):G=I90,0/I90,90①㊃43㊃㊀邓莉梅,等:甾醇分子差异对脂质体结构稳定性的影响P=(I0,0-GˑI0,90)/((I0,0+GˑI0,90)②其中,I0,0和I0,90分别为平行的发射光偏振为激发光的荧光强度;I90,0和I90,90分别为垂直的激发光偏振为发射光的荧光强度;G为光栅校正系数㊂P与膜的流动性成反比,P越大,脂质体膜的流动性越小㊂1.3.4㊀脂质体膜的疏水性测定㊀脂质体膜的疏水性采用ANS荧光探针法测定[20]㊂将脂质体稀释10倍后与ANS(8mmol/L)水溶液混合,样品与ANS的体积比为50ʒ1,混合物在室温下避光孵育30min㊂荧光测量的激发波长为350nm,发射光谱采集范围为375~600nm,PTM电压为600V,狭缝宽度均为5nm㊂由于ANS对疏水腔具有较高的亲和力,同时在水环境中没有荧光信号,故荧光强度反映了ANS 的吸收量,用于表示分子的有序程度㊂1.3.5㊀脂质体膜的微极性测定㊀参考芘荧光探针法研究脂质体膜的微极性[20]㊂将脂质体稀释10倍后与芘-丙酮(2mmol/L)溶液混合,样品与芘-丙酮溶液的体积比为50ʒ1,将混合物置于4ħ冰箱避光孵育12h㊂荧光测量的激发波长为338nm,发射光谱采集范围为350~450nm,电压为600V,狭缝宽度均为2.5nm㊂记录芘荧光光谱第1个峰(I1)和第3个峰(I3)的荧光强度,并计算I1/I3㊂1.3.6㊀傅里叶变换红外光谱(FTIR)测定㊀将冻干的样品放置在红外光谱仪样品台上,应用ATR模式研究不同甾醇与磷脂的分子间相互作用,每个样品扫描32次并计算平均值,扫描范围为400~ 4000cm-1,分辨率为4cm-1㊂1.3.7㊀脂质体稳定性测定㊀1)盐稳定性:参考K.D.Tai[19]的方法,将NaCl(100~1000mmol/L)溶液加入到脂质体悬浮液中,NaCl溶液与脂质体悬浮液的体积比为9ʒ1㊂混合液在室温下孵育1h,通过激光粒度分析仪测定脂质体的粒径㊂粒径大小变化程度用ΔS表示:ΔS=孵育后的粒径-初始粒径初始粒径ˑ100%③㊀㊀2)pH稳定性:配制pH值为2.0~12.0的缓冲液并加入到脂质体悬浮液中,缓冲液与脂质体悬浮液的体积比为9ʒ1㊂混合液在室温下孵育1h,通过激光粒度分析仪测定脂质体的粒径㊂粒径大小变化程度用ΔS表示㊂3)温度稳定性:使用激光粒度分析仪的trend 模式测量温度对脂质体粒径的影响㊂温度范围为25~65ħ,测量间隔温度为10ħ,平衡时间为2min㊂粒径大小变化程度用ΔS表示㊂1.4㊀统计分析所有实验至少完成3次平行实验,结果以(平均值ʃ标准差)表示㊂数据使用SPSS19.0软件进行统计分析,当P<0.05时,认为差异具有统计学意义㊂2㊀结果与分析2.1㊀甾醇对脂质体微观结构的影响分析甾醇对脂质体微观结构与粒径分布的影响如图1所示㊂由图1a)和1b)可知,甾醇的加入使脂质体粒径显著增大(P<0.05)㊂未添加甾醇时,脂质体粒径为(48.35ʃ0.41)nm,脂质体溶液呈无色透明状;添加甾醇后,Chol-LP㊁Sit-LP和Sti-LP的粒径分别增加至(98.24ʃ1.21)nm㊁(106.27ʃ0.90)nm和(107.27ʃ0.59)nm,脂质体溶液变为乳白色状㊂K.D.Tai等[21-23]在研究中也发现,甾醇的加入会使脂质体粒径显著增大(P<0.05)㊂这可能是由于甾醇的加入使磷脂排列更紧密,增强了膜的刚性,使脂质体在均质时不易被破碎,且易形成较大的囊泡结构㊂但甾醇对脂质体的Zeta电位没有显著影响,所有脂质体的Zeta电位值均在-30mV左右㊂这可能是由于甾醇不带电荷,且甾醇的加入未引起磷脂头部基团发生剧烈的变化[24]㊂甾醇的加入对脂质体的分散性具有明显的影响㊂由图1c) f)可知,未添加甾醇的脂质体粒径呈双峰分布,甾醇的加入使脂质体粒径呈明显的单峰分布,且单分散系数显著减小(P<0.05),这表明添加甾醇会使脂质体粒径分布更均一㊂未添加甾醇时,空白脂质体没有形成磷脂双分子层结构(见图1c)),只形成了均匀球形的单室脂质囊泡;添加甾醇后,所有脂质体样品都呈现出规则的磷脂双分子层结构,双分子层厚度约为100nm㊂这是由于在使用场发射扫描电镜制样过程中,脂质体从原来的球形结构变成扁平结构,增加了粒径观察尺寸㊂该结果表明,甾醇在脂质体制备过程中对脂质体的结构稳定性具有重要意义㊂㊃53㊃㊀2023年4月第38卷第2期㊀图1㊀甾醇对脂质体微观结构与粒径分布的影响Fig.1㊀Effects of sterols on the microstructure and particle size distribution of liposomes2.2㊀甾醇对脂质体磷脂膜结构稳定性的影响分析㊀㊀采用3种结合在磷脂膜不同部位的荧光探针研究甾醇对脂质体磷脂膜结构稳定性的影响㊂DPH是一种疏水性极强的荧光探针,易进入脂质体膜烃链中间的疏水核心区域,其长轴通常与脂肪酸酰基链平行排列,常被用于测量膜的流动性和微黏度[25]㊂当磷脂膜流动时,DPH会产生不同程度的倾斜,经荧光激发可产生水平和垂直方向不同的偏振分量,从而反映脂质体膜的流动性㊂甾醇对脂质体磷脂膜结构稳定性的影响如图2所示㊂由图2a)可知,添加甾醇后,脂质体的偏振度显著增加,即膜流动性显著降低(P<0.05)㊂这是由于甾醇的加入使磷脂形成了更有序更紧密的膜结构,使DPH的运动受到了限制㊂值得注意的是,3种甾醇脂质体磷脂膜的偏振度无显著性差异,表明胆固醇㊁β-谷甾醇和豆甾醇都使脂质体形成了致密的膜结构㊂杨贝贝等[22,26]研究表明,β-谷甾醇对磷脂膜排序程度大于豆甾醇,这可能与甾醇添加量有关㊂当甾醇添加量过多时,甾醇会在磷脂膜中聚集㊁析出,从而使磷脂膜的流动性增加㊂K.D.Tai等[20]研究发现,当β-谷甾醇的添加量大于33%时,脂质体的偏振度开始降低㊂ANS是一种对微环境极性变化高敏感度的荧光探针,常用来测量脂质双分子层中磷脂分子极性头基的迁移程度及磷脂膜的疏水性,其水相中没有荧光信号,与脂质体结合后荧光强度会显著增强[27]㊂图2b)显示了不同甾醇脂质体在484nm处的ANS荧光强度及其发射光谱,由此可知,甾醇的加入使脂质体的ANS荧光强度显著降低(P<0.05)㊂研究[27]表明,ANS结合发生在磷脂膜与水相的交界处,即磷酸基附近㊂脂质体的荧光强度降低,表明甾醇的加入使进入磷脂膜的ANS荧光探针减少了㊂这可能是因为磷脂头部基团与甾醇之间形成了分子间相互作用,阻碍了ANS与磷脂膜的结合㊂同时,3种甾醇脂质体的ANS荧光强度之间存在显著差异(P<0.05),表明不同甾醇分子结构与磷脂产生了不同强度的分子间作用力㊂芘的荧光发射光谱在370~430nm范围内具有5个特征振动峰,其绝对强度㊁相对强度㊁宽度和位置取决于微环境的极性[28]㊂I1与I3的比值常被用来研究脂质体磷脂膜的微极性,I1/I3越小,表明芘所处微环境的微极性越弱[29]㊂由图2c)可知,甾醇的加入显著降低了脂质体磷脂膜的微极性(P<㊃63㊃㊀邓莉梅,等:甾醇分子差异对脂质体结构稳定性的影响0.05),表明甾醇的加入使脂质体磷脂膜的结构更图2㊀甾醇对脂质体磷脂膜结构稳定性的影响Fig.2㊀Effects of sterols on stability ofliposome membrane structure加紧密,水分子较难进入磷脂双分子层中㊂Sit-LP和Sti-LP 的微极性显著低于Chol-LP,这可能是由于β-谷甾醇和豆甾醇的烷基链比胆固醇多一个乙基,这增加了磷脂分子与甾醇分子间的空间位阻,使芘不易进入磷脂膜的疏水区域㊂2.3㊀甾醇与磷脂的相互作用分析不同甾醇脂质体的FTIR 图如图3所示㊂由图3可知,甾醇的加入没有引起脂质体膜发生剧烈的变化㊂所有脂质体在3306~3319cm -1范围内都出现了宽而强的峰,这是O H 的伸缩振动峰㊂此外,CH 2的不对称拉伸振动峰(2923cm -1)㊁C O 的拉伸振动峰(1735cm -1)㊁PO 2-的不对称伸缩振动峰(1230cm -1)和C O C 的不对称拉伸振动峰(1140cm -1)在所有脂质体均有出现㊂Sit-LP 和Sti-LP 的CH 2对称拉伸振动峰(2853cm -1)向高频有微小的移动㊂Sit-LP 和Chol-LP 的PO 2-对称伸缩振动峰(1030cm -1)和N + CH 3的不对称拉伸振动峰(987cm -1)都向低波数迁移,O H 的弯曲振动峰(1652cm -1)也有较大的迁移,表明β-谷甾醇和胆固醇的OH -与磷脂的PO 2-形成了氢键㊂由此可知,甾醇的加入对磷脂的尾链影响较小,对磷脂的头部基团影响较大㊂图3㊀不同甾醇脂质体的FITR 图Fig.3㊀FITR spectroscopy of different sterol liposomes2.4㊀甾醇对脂质体环境稳定性的影响分析脂质体的环境稳定性研究对进一步考查脂质体在复杂食品体系中的应用情况至关重要㊂不同甾醇对脂质体环境稳定性的影响如图4所示㊂由图4a)可知,甾醇的加入对脂质体的盐稳定性有较大提升㊂当盐浓度超过200mmol /L 时,LP 的粒径增加明显,在800mmol /L 时粒径达到最大值㊂LP粒径增大可能是由于LP 的磷脂膜没有甾醇的支㊃73㊃㊀2023年4月第38卷第2期㊀撑,在高盐浓度下,磷脂的过度堆积使膜更易塌图4㊀不同甾醇对脂质体环境稳定性的影响Fig.4㊀Effects of different sterols onenvironmental stability of liposomes陷,随后聚集形成更大的囊泡[30]㊂而对于Chol-LP㊁Sit-LP和Sti-LP,盐的加入使脂质体的粒径明显减小,且粒径基本不随盐浓度的增加而增加,整体较为稳定㊂在盐溶液中,脂质体粒径变小可能是由于盐浓度增加可使脂质体外的渗透压增加,脂质体脱水,粒径减小㊂由图4b)可知,LP的粒径在低于65ħ时无明显变化,在65ħ时急剧增加,可能发生了膜的破裂和聚集㊂Sit-LP对温度变化较为敏感,其粒径随温度的上升逐渐增加㊂Sti-LP和Chol-LP的温度稳定性较好,在实验温度范围内,Sti-LP与Chol-LP的粒径无显著变化㊂由如4c)可知,甾醇的加入使脂质体的pH稳定性有一定程度的提高(P<0.05)㊂未添加甾醇的LP粒径受pH值的影响较大,在pH值<5及pH值>9时,粒径均有明显的增加,这可能是由于高浓度的H+㊁OH-引起了膜融合㊂在较低pH值下,磷脂易被质子化,从而破坏磷脂间的相互作用,脂质体稳定性降低[31]㊂在较高pH值下,OH-诱导磷脂头基取向发生改变,膜结构被破坏[24]㊂甾醇与磷脂形成的氢键抑制了头基的改变及质子化,因此,添加甾醇的脂质体其粒径基本不随pH值的改变而改变㊂但甾醇脂质体粒径整体较处理前都明显减小,可能是受离子强度改变的影响㊂综上所述,甾醇的加入使脂质体的环境稳定性有所增强,这对脂质体在复杂食品体系中的应用具有重要意义㊂3 结论本文研究了不同甾醇对脂质体结构稳定性的影响,通过对脂质体微观结构㊁磷脂膜结构稳定性及甾醇与磷脂分子间相互作用进行考查,发现,甾醇的加入使脂质体的粒径显著增大,但对脂质体的Zeta电位基本没有影响;胆固醇㊁β-谷甾醇和豆甾醇的加入对脂质体的盐稳定性和pH稳定性都有较显著的提升,但对温度稳定性基本没有改善㊂此外,通过脂质体膜微观结构研究发现,β-谷甾醇和豆甾醇均能使磷脂膜结构更加致密,且β-谷甾醇脂质体的膜稳定性明显优于胆固醇脂质体,具有可替代胆固醇制备脂质体的潜力㊂本研究深入探讨了不同甾醇对脂质体结构稳定性的影响,可为制备能够替代胆固醇的植物甾醇脂质体用于构建新型健康脂质递送体系提供新的研究思路㊂㊃83㊃㊀邓莉梅,等:甾醇分子差异对脂质体结构稳定性的影响参考文献:[1]㊀AKHAVAN S,ASSADPOUR E,KATOUZIAN I,et al.Lipid nano scale cargos for 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脂质体主动载药技术研究进展

脂质体主动载药技术研究进展

脂质体主动载药技术研究进展一、概述随着医药科技的飞速发展,药物传递系统作为连接药物研发与临床应用的关键桥梁,其重要性日益凸显。

在众多药物传递系统中,脂质体作为一种生物相容性好、毒性低、能够有效保护药物并提高药物靶向性的载体,受到了广泛关注。

脂质体主动载药技术,作为脂质体研究领域的热点之一,通过主动调控脂质体的组成、结构和功能,实现药物的高效、精准输送,为提高药物疗效、降低副作用、提升患者生活质量提供了有力支持。

脂质体主动载药技术的基本原理在于利用脂质体的特殊结构和性质,通过主动靶向和或主动转运的方式,实现药物的高效、精准和可控释放。

脂质体是由磷脂双分子层构成的纳米级囊泡,其结构与生物细胞膜相似,因此具有良好的生物相容性和细胞膜融合能力。

这种结构特点使得脂质体能够包裹水溶性或脂溶性药物,并在体内运输过程中保持稳定。

主动载药技术的关键在于利用细胞膜上的转运蛋白或受体,通过配体受体相互作用或主动转运机制,将药物定向输送到病变组织或细胞。

本文旨在对脂质体主动载药技术的研究进展进行系统性梳理和总结,以期为相关领域的科研工作者和从业人员提供有益的参考和启示。

将对脂质体主动载药技术的基本概念、原理及其发展历程进行简要介绍,为后续研究内容的展开奠定基础。

随后,将重点围绕脂质体主动载药技术的关键要素,如脂质体的制备工艺、药物的装载与释放机制、靶向性的实现策略等进行深入探讨。

还将对脂质体主动载药技术在不同疾病治疗领域的应用案例进行分析,以展示其在实际应用中的潜力和优势。

将对脂质体主动载药技术面临的挑战和未来的发展趋势进行展望,以期为推动该技术的进一步发展提供有益的思考和建议。

1. 脂质体的定义与特性脂质体(Liposomes)是一种由磷脂双分子层构成的纳米级囊泡结构,其内部可以包裹水溶性药物,而双层之间则可以容纳脂溶性药物。

自上世纪60年代被发现以来,脂质体因其独特的药物传递特性,在医药领域受到了广泛关注。

生物相容性与生物可降解性:脂质体的磷脂成分与细胞膜结构相似,因此具有良好的生物相容性。

聚乙二醇的应用

聚乙二醇的应用
1.2.1 PEG亲水性单纯PEG2000,以任意线圈构象存在时,每个分子能结合136±4个水分子,而以Brush构象存在的DHP-PEG2000中的每个PEG2000分子能结合210±6个水分子。随PEG-脂质复合物浓度增加至约7mol%时,脂质体双分子层绝热压缩系数增加,提示脂质头基区水分子减少,使脂质体表层脂质双分子层缺如降低,磷脂酰基链侧面包蔽增加。PEG水合作用与脂质头基区去水合作用对含有5~7mol%PEG-脂质复合物的脂质体热力学稳定性均有正向作用,而当PEG-脂质复合物浓度更高时,由于PEG侧面排斥作用,脂质头基区水合增加,双分子层包蔽弱化,脂质体稳定性反而降低[10]。
单甲氧基聚乙二醇(MPEG5000)与预先制备好的脂质体膜中的二棕榈酰磷脂酰乙醇胺(DPPE)共价结合,制成SLs。后者在体外血浆中能稳定存在,其与血浆成分的吸附比不含MPEG的脂质体慢;体内
研究表明,与末修饰的t1/2最长的脂质体相比,SLs的血循环清除可减慢30%[5]。
1.2影响PEG立体位阻的因素
右,但从PEG一2000开始随分子增加,溶液的粘度增大,溶液的混匀程度下降,导致反应物无法充分接触,得到的产率也下降至65%左右。
N.N一二乙基苯胺是制备优秀染料、药物和彩色显影剂的重要中间体,传统合成方法是将定量的苯胺、氯乙烷放人装有液碱的高压釜中,夹套蒸气升温到120~C,压力1.2MPa时,停气。其后由于反应热产生,温度可升到215~230~C,压力达4.5~5.5 MPa,反应3h,出料用水汽蒸馏,得粗品,加苯二甲酸酐酯化,再进行一次蒸馏得成品。
药片等固体药物制剂配方中如加入适量大分子PEG可增加打片时药物的流动性,并提高主药的胃内溶解性最终有助于增加生物利用度。
PEG在医药行业的其它新用途包括:

辅酶Q10 脂质体的制备及稳定性研究

辅酶Q10 脂质体的制备及稳定性研究

辅酶Q10 脂质体的制备及稳定性研究2007-7-1 18:34| 发布者: nety| 查看: 354| 评论: 0辅酶Q10(coenzyme Q10,CoQ10)广泛存在于线粒体内膜中,是细胞代谢的激活剂。

临床上辅酶Q10 主要用于治疗心血管疾病[1],对其他多种疾病也有辅助疗效,目前有片剂、胶囊、软胶囊、注射剂等多种剂型。

因辅酶Q10 极不溶于水,当前上市的辅酶Q10 注射剂稳定性较差,辅酶Q10 极易析出,有待于改进剂型。

脂质体可增强药物的稳定性,且对缺血心肌、肝脏等组织具有被动靶向性。

国内有辅酶Q10 脂质体质量评价的报道[2],但较为笼统,作者制备了辅酶Q10 脂质体,较系统的研究了其稳定性,并采用新方法测定了辅酶Q10 脂质体包封率。

1 仪器与药品1.1 仪器集热式恒温磁力搅拌器(浙江省乐成电器厂);Lipex–Extruder 挤出仪(Northern 公司);微孔滤膜(上海亚东分离器材厂);HPLC 色谱仪(Waters 公司);PHS–2C 型精密酸度计(上海雷磁仪器厂);GAST 真空泵(MFG 公司)。

1.2 药品辅酶Q10(沈阳济世制药公司);注射用豆磷脂(上海太伟药业);胆固醇(天津博迪化工有限公司);无水乙醇为色谱纯,其他试剂为分析纯。

2 方法与结果2.1 辅酶Q10 脂质体的制备2.1.1 乙醇注入法制备辅酶Q10 脂质体精密称取一定量的辅酶Q10 及一定质量比的磷脂和胆固醇,以2 mL 无水乙醇溶解,快速均匀注入到pH=7.0 的磷酸盐缓冲液10 mL 中,60 ℃下搅拌并减压蒸发除去乙醇,即得辅酶Q10 脂质体混悬液。

2.1.2 挤出法分离游离药物参考文献[3],将制得的脂质体混悬液在0.5 MPa、室温条件下过0.45 m 微孔滤膜,挤出3 遍。

未包封的游离药物残留在膜上,通过膜的脂质体混悬液为脂质体成品。

2.2 包封率及含药量测定辅酶Q10 脂质体成品经滤膜过滤分离后,本文作者采用高效液相检测方法对辅酶Q10 脂质体的包封率进行了测定。

聚合物修饰长循环脂质体研究进展

聚合物修饰长循环脂质体研究进展
生物应用于其它新型脂质体, 如磁性脂质体、免疫脂质体、pH 敏感脂质体、温敏脂质体等, 可获得具有双重作用的脂质体。张 景京力等 [12 ] 制备了紫杉醇磁性长循环脂质体, 外磁场导向定位
效果好且体内滞留时间长, 这种将主动与被动靶向相结合的双 重靶向性质, 有利于紫杉醇的体内靶向转运, 对恶性肿瘤的治 疗更 为有利。李占山等 [13] 将含有精氨 酸甘氨酸- 天冬氨 酸
( 收稿日期: 2008- 05- 29 修回日期: 2008- 09- 25)
中国药房 2008 年第 19 卷第 34 期
Ch ina Pharmacy 2008 V ol. 19 No. 34 2709
聚乙二醇 ( PEG ) 是水溶性、无生物活性、无毒的柔软线形
分子, 在体温时不熔但在体液中能渐渐溶解, 释放药物而发挥 作用, 可制成 PEG - 磷脂衍生物作为脂质体的成膜材料。常用 的 有 P EG- 磷脂酰胆碱 ( P EG - PC) 、P EG - 磷脂酰乙醇 胺
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脂质体的研究与应用概况

脂质体的研究与应用概况

脂质体(“liposome)是由脂质双分子层构成的内部为水相的封闭囊泡。

Bangham等在20世纪60年代发现磷脂分子分散在水相中能形成封闭的囊泡,囊泡的内相与外相均为水溶液,在双分子膜之间有一个疏水区,这种囊泡状结构就被称为脂质体。

脂质体可依其所包含的脂质双分子层的的层数,分为单室脂质体和多室脂质体。

含有单一双分子层的囊泡称为单室脂质体,粒径在0.02~0.08μm为小单室脂质体,粒径在0.1~1.0μm者为大单室脂质体。

含有多层双分子层的囊泡称为多室脂质体,粒径在1~5um。

最初,脂质体由于它的磷脂双分子膜与细胞膜结构类似,使其具有某些与生物体相似的性质,从而作为细胞模型,用于生物膜及膜蛋白的研究。

在70年代有人根据脂质体的主要原料磷脂是细胞的固有组分,有良好的生物相容性而没有免疫原性的特点,将脂质体用作药物的载体。

随后人们对脂质体进行了广泛和深入的研究,本文就其组成、特点、种类、制备方法以及应用作一介绍。

1.脂质体的组成多种脂质和脂质混合物均可用于制备脂质体,最常用的是磷脂。

磷脂包括卵磷脂、脑磷脂、大豆磷脂以及合成磷脂等,主要成分有磷脂酰胆碱(PC),磷脂酰乙醇胺(PE),磷脂酰丝氨酸,磷脂酰甘油,磷脂酸等。

其结构由一个离子型基团(或是强极性)的“极性端”和两条疏水性高级脂肪烃长链组成,在某一特定浓度条件下,其极性端部分与另分子的极性端相结合,非极性端与非极性端相结合,形成一个稳定的双分子层结构。

构成中脂质的另一种物质是胆固醇,它在膜中主要起着调节磷脂双分子膜“流动性”的作用。

当低于相变温度(脂质双分子层中脂酰基侧链从有序排列变为无序排列时的温度)时,胆固醇可使膜减少有序排列,增加流动性;高于相变温度时,胆固醇可增加膜的有序排列而减少膜的流动性。

2 脂质体的特点脂质体的研究与应用概况脂质体有包封脂溶性药物或水溶性药物的特性,药物被脂质体包封后,在体内呈现出与药物本身不同的特点。

2.1 靶向性和淋巴定向性 脂质体进入体内后,集中于肝、脾、骨髓等内皮网状系统丰富的组织,呈现被动靶向性;当脂质体经肌肉、皮下或腹腔注射后,首先进入局部淋巴结中,表现出淋巴的定向性。

pH敏感脂质体

pH敏感脂质体

pH-敏脂质体研究的最新进展王弘王志清王升启脂质体是具有双层膜的封闭式粒子。

脂质体技术主要是利用生物膜的物理化学性质作为药物载体。

脂质体转运DNA原理是脂质体加速大分子、荷电多的分子透过细胞膜。

此过程相当复杂,尤其在包封较大片段上。

由于这种技术在实践中只在体外使用且要用融合剂,荷电越多用途越少;同时由于脂质体稳定性和在环境中相互作用的特点而不能广泛使用。

采用pH敏脂质体可以改善转运并且不改变方向。

立体稳定性的pH-敏脂质体在血循环中极稳定,避免了在血循环中被迅速清除,可在血管部位渗出并在肿瘤组织发挥作用,已成功地用于人体肿瘤治疗的临床前和临床试验。

pH-敏脂质体是一种具有细胞内靶向和控制药物(如基因、核酸、肽、蛋白质)释放的功能性脂质体。

其原理是pH低时可导致脂肪酯羧基的质子化而引起六角晶相的形成,这是膜融合的主要机制。

在酸性条件下,即在核内体(endosome)形成后几分钟内,进入溶酶体之前, pH从7.4减至5.3~6.3左右时,pH-敏脂质体膜发生结构改变,促使脂质体膜与核内体/溶酶体膜的融合,将包封的物质导入胞浆及主动靶向病变组织,避免网状内皮系统的清除。

制成pH敏脂质体可在一定程度上避免溶酶体降解并增加包封物摄取量和稳定性,有效地将包封物转运到胞浆。

转染技术上应用pH-敏脂质体是目前生物大分子转运的重要手段,在体外实验成功的同时,显示体内基因靶向的特点;经结合抗体或采用特殊组成制备的特殊pH-敏脂质体能达到提高靶向、延长体内循环时间等目的。

1 pH-敏脂质体减少病毒介导基因转染的方法是采用非病毒载体。

采用脂质体介导DNA进入细胞已有19年历史。

根据与溶酶体融合前的细胞内空泡融合而设计的pH-敏脂质体,DNA释放入胞浆而不被溶酶体的降解酶破坏。

pH-敏脂质体的组成影响pH-敏脂质体的pH敏感性。

由于脂膜中含有不饱和PE(磷脂酰乙醇胺),不易水化,它在中性生理环境下可形成六角晶相,须加入某些脂肪酸以制成稳定的脂质。

脂质体实验报告

脂质体实验报告

一、实验目的1. 学习脂质体的制备方法。

2. 探究不同制备方法对脂质体特性的影响。

3. 分析脂质体的稳定性及释药特性。

二、实验原理脂质体是一种由磷脂双分子层组成的球形囊泡,具有生物相容性好、靶向性强、载药量高等优点,在药物递送、基因治疗等领域具有广泛的应用前景。

本实验采用薄膜分散法、逆相蒸发法和超声波分散法制备脂质体,并对其特性进行研究。

三、实验材料1. 脂质体制备原料:大豆卵磷脂、胆固醇、二氯甲烷、橄榄油等。

2. 脂质体特性检测材料:荧光素、荧光分光光度计、紫外-可见分光光度计等。

四、实验方法1. 薄膜分散法制备脂质体(1)将大豆卵磷脂和胆固醇溶解于二氯甲烷中,形成均匀的溶液。

(2)将橄榄油加入上述溶液中,充分振荡混合。

(3)将混合液倒入蒸发皿中,于60℃水浴加热蒸发溶剂,形成薄膜。

(4)用适量磷酸盐缓冲溶液(pH 7.4)洗涤薄膜,收集脂质体。

2. 逆相蒸发法制备脂质体(1)将大豆卵磷脂和胆固醇溶解于二氯甲烷中,形成均匀的溶液。

(2)将橄榄油加入上述溶液中,充分振荡混合。

(3)将混合液倒入旋转蒸发仪中,于40℃下蒸发溶剂,形成薄膜。

(4)用适量磷酸盐缓冲溶液(pH 7.4)洗涤薄膜,收集脂质体。

3. 超声波分散法制备脂质体(1)将大豆卵磷脂和胆固醇溶解于二氯甲烷中,形成均匀的溶液。

(2)将橄榄油加入上述溶液中,充分振荡混合。

(3)将混合液倒入超声波处理仪中,于50℃下进行超声波处理,制备脂质体。

五、实验结果与分析1. 脂质体形态观察采用荧光显微镜观察不同制备方法制备的脂质体形态。

结果显示,薄膜分散法制备的脂质体呈球形,粒径分布均匀;逆相蒸发法制备的脂质体呈不规则形状,粒径分布不均匀;超声波分散法制备的脂质体呈球形,粒径分布均匀。

2. 脂质体粒径及粒径分布采用动态光散射仪测定不同制备方法制备的脂质体粒径及粒径分布。

结果显示,薄膜分散法制备的脂质体平均粒径为(100±5)nm,粒径分布范围为(50~150)nm;逆相蒸发法制备的脂质体平均粒径为(150±10)nm,粒径分布范围为(100~200)nm;超声波分散法制备的脂质体平均粒径为(120±8)nm,粒径分布范围为(80~160)nm。

脂质体实验报告

脂质体实验报告

脂质体实验报告脂质体实验报告引言:脂质体是一种由磷脂和胆固醇等成分组成的微小球状结构,具有良好的生物相容性和生物降解性。

由于其独特的结构和性质,脂质体在药物传递、基因治疗和化妆品等领域中得到广泛应用。

本实验旨在研究脂质体的制备方法和性质,以期为进一步应用脂质体提供实验依据。

实验一:脂质体的制备方法一般来说,脂质体的制备方法主要包括薄膜溶解法、乳化法和胶束法等。

本实验选择薄膜溶解法制备脂质体。

实验材料:1. 磷脂(如卵磷脂)2. 胆固醇3. 乙醇4. 磷酸缓冲液实验步骤:1. 将磷脂和胆固醇按照一定比例称取,并加入乙醇中,制备脂质体溶液。

2. 将脂质体溶液用玻璃棒搅拌均匀,使磷脂和胆固醇充分溶解。

3. 将脂质体溶液转移到磷酸缓冲液中,使脂质体形成。

实验结果:经过制备,我们成功得到了形态规整、粒径均一的脂质体。

实验二:脂质体的性质研究为了研究脂质体的性质,我们进行了一系列实验。

实验一:脂质体的稳定性我们将制备好的脂质体溶液放置在不同温度下,观察其稳定性。

结果显示,脂质体在室温下稳定性较好,但在高温下容易发生相互融合。

实验二:脂质体的药物传递性能我们选择一种常用的抗癌药物,并将其包载到脂质体中。

通过体外释放实验发现,脂质体具有较好的药物缓释性能,能够延长药物的释放时间。

实验三:脂质体的细胞摄取能力我们将标记有荧光染料的脂质体与细胞共同培养,并观察细胞对脂质体的摄取情况。

结果表明,脂质体能够有效地被细胞摄取,并释放荧光染料。

实验四:脂质体的毒性研究为了评估脂质体的安全性,我们进行了细胞毒性实验。

结果显示,脂质体对细胞没有明显的毒性作用,具有较好的生物相容性。

结论:通过本实验,我们成功制备了形态规整、粒径均一的脂质体,并研究了其性质。

脂质体具有良好的稳定性、药物传递性能和细胞摄取能力,并且对细胞没有明显的毒性作用。

这些结果为脂质体在药物传递和其他领域的应用提供了实验基础。

未来,我们将进一步研究脂质体的制备方法和性质,以期推动其在临床和科研中的广泛应用。

一种脂质体的制备方法[发明专利]

一种脂质体的制备方法[发明专利]

(19)中华人民共和国国家知识产权局(12)发明专利申请(10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201810063281.3(22)申请日 2018.01.23(66)本国优先权数据201710059556.1 2017.01.24 CN(71)申请人 江苏恒瑞医药股份有限公司地址 222047 江苏省连云港市经济技术开发区昆仑山路7号申请人 上海恒瑞医药有限公司(72)发明人 仝新勇 李杰 邹爱峰 周银 王燕平 (74)专利代理机构 北京戈程知识产权代理有限公司 11314代理人 程伟(51)Int.Cl.A61K 9/127(2006.01)A61K 31/4745(2006.01)A61K 47/24(2006.01)A61P 35/00(2006.01)A61L 2/02(2006.01)(54)发明名称一种脂质体的制备方法(57)摘要本发明涉及一种脂质体的制备方法。

具体而言,本发明涉及医药领域中一种脂质体的制备方法,考察盐酸伊立替康脂质体注射液制备方法的除菌过滤系统中有关过滤时滤芯干燥的水分含量等实验条件对样品、辅料含量是否损失,本发明通过除菌过滤时对滤芯进行充分干燥、控制其水分残留量可有效降低过滤时药物含量损失(提高样品的过滤通量)和辅料含量损失、提高包封率进而提高终产品的质量;该方法提高药物过滤通量、简单易操控、利于工业扩大生产。

权利要求书2页 说明书7页CN 108338973 A 2018.07.31C N 108338973A1.一种制备脂质体的方法,在制得含有药物活性成分的脂质体溶液后过滤除菌,其特征在于,所述除菌过滤步骤使用滤芯过滤,且过滤时控制单支滤芯的含水量。

2.如权利要求1所述的制备脂质体的方法,其特征在于,所述单支滤芯的含水量小于等于10g。

3.如权利要求2所述的方法,其特征在于,所述含水量控制方法为:滤芯在使用前需灭菌,灭菌后浸泡在水中以检查气泡点是否合格,然后放入烘箱中干燥;将干燥之后的过滤器,按标记安装到相应的位置,打开压缩口气换热及其过滤器进口相关阀门,对每一个滤芯吹扫,结束后取出过滤器称重,分别计算各滤芯前后的重量差异。

脂质体的稳定性研究及稳定策略

脂质体的稳定性研究及稳定策略

脂质体的稳定性研究及稳定策略摘要:脂质体作为药物传递系统, 在生物医学和药学领域中倍受青睐。

针对其化学、物理稳定性方面,国内外学者进行了大量研究,本文就其研究方法和已有的提高其稳定性的策略进行概述。

关键词:脂质体;稳定性;磷脂;粒径Abstract: The Liposome, as a drug delivery system, is widely acclaimed in the biomedical and pharmaceutical fields. In terms of its chemical and physical stabilities, domestic and foreign scholars have conducted a lot of research. The present review is aimed to overview those research methods and common strategies to improve the stability of liposomes.Keywords: Liposomes; Stability; Phospholipid;Particle size1 引言脂质体(Liposomes)是磷脂分散在水中形成的类球状的、包封一部分水相的、有单层或多层脂质双分子层的封闭囊泡。

其基本组成包括磷脂和胆固醇,药物包封或镶嵌在泡囊中构成脂质体制剂。

脂质体属于热力学不稳定体系,脂质的微粒形态、分布、相转变温度、动电电位的大小、流体学性质等显著影响其物理稳定性,而脂质的氧化、水解等是限制其化学稳定的主要因素,因而脂质体的稳定性研究在脂质体制剂的开发中具有重要现实意义。

据Chang等[1]的统计数据,截至2012年,已批准上市的12种注射脂质体制剂中4种为冻干固体制剂,包括AmBisome、Amphotec、Myocet、visudyne,说明其液体制剂的长期稳定性问题可能尚未能很好解决。

脂质体组合物、其制备方法及其应用[发明专利]

脂质体组合物、其制备方法及其应用[发明专利]

(19)中华人民共和国国家知识产权局(12)发明专利申请(10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201811349909.2(22)申请日 2018.11.14(66)本国优先权数据201711143351.8 2017.11.17 CN(71)申请人 和龙地址 100176 北京市大兴区隆庆街6号77文创223室申请人 毛文学 吕丕平 许敏 冉文萍(72)发明人 毛文学 和龙 (74)专利代理机构 北京科石知识产权代理有限公司 11595代理人 高元吉(51)Int.Cl.A61K 9/127(2006.01)A61K 45/00(2006.01)A61K 47/24(2006.01)A61K 47/28(2006.01)A61K 31/475(2006.01)A61P 35/00(2006.01)(54)发明名称脂质体组合物、其制备方法及其应用(57)摘要本发明涉及一种含有药物的脂质体组合物、其制备方法及其应用,该脂质体中含有鞘磷脂、脂质体稳定剂、胆固醇类成分和聚阴离子化的有机化合物。

权利要求书1页 说明书4页 附图1页CN 109364025 A 2019.02.22C N 109364025A1.一种脂质体组合物,其含有药物和脂质体,所述药物包裹在所述脂质体中,其中所述脂质体包括鞘磷脂、脂质体稳定剂、胆固醇类成分和聚阴离子化的有机化合物。

2.权利要求1所述的脂质体组合物,其中所述鞘磷脂选自神经鞘磷脂或鸡蛋鞘磷脂。

3.如权利要求1或2所述的脂质体组合物,其中所述脂质体稳定剂选自N -(甲氧基-聚(乙二醇)-氧羰基)-二硬脂酰磷脂酰乙醇胺、二硬脂酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇、二肉豆蔻酰磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇和磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇中的一种或几种。

4.如权利要求1-3中任一所述的脂质体组合物,其中所述胆固醇类成分选自胆固醇及其衍生物、胆甾烷、胆酸和胆汁酸中的一种或几种。

5.如权利要求1-4中任一所述的脂质体组合物,其中所述的聚阴离子化的有机化合物是非聚合的聚阴离子化的有机羟基化的有机化合物,例如是蔗糖八硫酸三乙胺,或者所述的聚阴离子化的有机化合物是聚阴离子化的多硫酸化糖或多元醇,优选是硫酸化的蔗糖,例如是六硫酸蔗糖、五硫酸蔗糖或八硫酸蔗糖。

ruixi-DSPE-PEG2000 二硬脂酰磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇

ruixi-DSPE-PEG2000 二硬脂酰磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇

DSPE-PEG2000 二硬脂酰磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇PEG衍生化磷脂在新型脂质体中的应用——阳离子脂质体当药物的电性与脂质体膜电性相反时,药物包封率高且稳定。

结合不同类型的PEG聚合物可制得中性、负电性、正电性脂质体。

如一种新型的结合阳离子PEG-磷脂(CPL)的脂质体,能插入已形成的囊泡中并增强脂质体的稳定性。

对以4种端基上含有不同正电荷的CPL(分别为CPL~CPL)制得的阳离子LUVs的胶束溶液的研究发现,CPL插入LUVs外部小叶上的方式在某种程度上取决于温度、时间、CPL/磷脂的比例和LUVs的结构,同时也与LUVs中的CPL种类有关。

CPL可使脂质体与细胞的粘附增加3倍,而CPL可增加10倍。

同时,磷脂摄取的增加与总的表面电荷无关,而与CPL末梢端基上增加的正电荷的密度有关。

产品名称:二硬脂酰磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇英文名称:DSPE-PEG别称:磷脂-聚乙二醇、DSPE-PEG10K、DSPE-PEG1K、DSPE-PEG3.4K、DSPE-PEG5K、DSPE-PEG2000状态:固体/粉末/溶液产品规格:mg保存:冷藏储藏条件:-20℃储存时间:1年用途:科研温馨提醒:仅供科研,不能用于人体实验相关产品:DSPE-SS-PEG1K-FITCDSPE-PEG5K-FITCDSPE-PEG1K-FITCDSPE-PEG2K-FITCDOPE-PEG2K-FITCDSPE-PEG2k-Gel1-FITC磷脂-聚乙二醇-荧光素磷脂-双硫键-荧光素DSPE-PEG1K-GlucoseDSPE-PEG2K-壳寡糖DSPE-PEG3.4K-MannoseDSPE-PEG2K-GlucoseDSPE-PEG5K-MannoseDSPE-PEG1K-MannoseDSPE-PEG2k-Mannose瑞禧WFF.2023.5。

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摘 要 : 述 了聚 乙二 醇 (E 衍 生 化 磷 脂 的 种 类 、 分 子 量 、用 量 等 对 脂 质 体 立 体 稳 定性 的 影 响 , 明 了 P G 衍 生化 磷 脂 改 善 综 P G) 阐 E 脂 质 体 稳 定 性 的 机 理 , 对 其 在 延长 脂 质 体 体 内循 环 时 间及 在 新 型 脂质 体 中 的 应 用 作 了简 要 介 绍 。 并 关 键 词 : 乙 二 醇 衍 生 化 磷 脂 ; 脂 质 体 ; 立 体 稳 定 性 ; 长 循 环 聚 中 图分 类号 :9 49 R4. 文献标识码 : A 文 章 编 号 :1 0 —2 52 0 )10 5 —4 0 18 5 (0 40 —0 50
脂质 体 具 有靶 向、长 效 、可 降低 药物 毒性 及 增加
加 。理 论上 , 离粒子 表面 S 距 处既存 在 着范 德华 引力 , 又
存 在 着粒 子 间斥 力 , 当斥 力大 于 或 等 于 引 力 时, 子稳 粒 定 ;反之 , 脂质 体 聚集 。如 当 S 为粒 子直径 的 11 则 约 /0
时发 现,%摩 尔分 数 以上 的 P G(0 0 3 0 )二棕 榈 酰 7 E 10  ̄ 0 0.
磷 脂 酰 乙醇 胺 ( P ) 1 % 摩 尔分 数 的 P G( 0 0 . DP E 和 1 E 5 0)
脂 质 微 粒 ( 室 、 小 单 室 、大 单 室 脂 质 体 )稳 定 性 较 多 , 好 :半年 后 P G. 脂 脂质 体在 缓冲溶 液 中释 出的 亲水 E 磷 性标 记 物小 于 5 在 血浆 中 t2 %, l 长达 几天 f / l 。L tig r i n e z 等}】 l制备 了> 0 h 、10 2 0 m ̄ < O m 的 3 粒 径 7 3Om 5  ̄ 0n D 7n 种
的 L Vs U 在体 内却极 少 发生 P G衍 生 化磷 脂层 的化 学 E
破 坏 , 环 时 间 显 著 延 长 。 可 见 DS E较 P E 与 P G 循 P OP E
( 0 0 结合 的效 果 更优 。 20) 24 P G. . E 磷脂 脂质 体 的粒径
研 究 表 明 , 不 同 的 P G. 脂 可 制 备 不 同粒 径 的 用 E 磷
性研 究。
T l 7 . 5 4 2 2 7 4 6 0 e : 31 5 2 2 2* 2 5. 43 72 0
E ma :igs2 1 6 . r - i dn j 2 @1 3cn l 0 o
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中国 医药 工业 杂 志 C i ee o r a o a c ui l 2 0 . ( ) h s J un l f h r e t as 0 4 5 1 n P ma平衡 和 P G链 在溶 液 中 自由运 E
动 的能 量有 关 [。B l t [ 电子 自旋共振 ( S 和 5 ] es o等 6 i ] 用 E R) 光 密度测 量 法研 究 了水分散 体 中P G.E与卵磷 脂 的相 E P
互 作 用, 实 了构 象 云结 构 的存 在 。 证
体 的 保 存 。
P G. E 磷脂 在脂 质体 的脂 质双 分子 层表 面形 成聚合 物 保 护 层 , 粒 子 间斥 力增 加 , 而 使 脂质 体 稳 定性 增 使 从
收 稿 日期 :0 2 .6 2 0  ̄7 1
作者简介: 丁劲 松 (9 2 , 男 , 师 , 从 事 药物 新 剂 型 及 其 生物 有 效 17 ) 讲
中, 哚 美辛 的长 循环 脂 质 体 【 脂 酰胆 碱( C) C : 吲 磷 P : H P G 衍 生化 磷脂 酰 乙醇 胺 ( E . E =1: . 0 1 1 E P GP ) 05: .6 比 传统 脂质 体 (C : H : E 1: . 0 1 ) P C P = 05: .6 的清 除减慢 , A 0显著 增大, 明P G. c 表 E 磷脂 衍 生物 能明显延 长脂 质 体 的 体循 环 时 间 。
性。
克服 以上不 足 , 体稳 定 脂质 体应 运 而生 。立 体 稳定 脂 立
质体 是一种表面含 有天然或合 成聚合物 修饰 的类 脂衍生
物 的 新 型 脂 质 体 。 修 饰 聚 合 物 的 种 类 有 聚 乙 二 醇
(E 、聚 丙烯 酰胺 ( P 、聚 乙烯 毗 咯烷 酮 (VP 等, P G) P A) P ) 其 中 P G 是最 常用 的一 种 。P G分 子与磷 脂 分子通 过 E E
2 影 响 P G 衍生 化磷 脂脂 质体 稳定 性 的因素 E
21 P G 分 子 量 . E
单 体 的速 率较 快 。而 P G. P E DS E的强疏 水 作用 使其 结 合 率常 数 比 P G. P E大 。P G. P E D P E DS E和 C 。 的组合 膜 为 最 佳 的热 力 学 稳 定 配 对 … 】 a r等 【 】 究 表 明 。P r 1研 5
1 水 化 膜 结 构 . 3
1P EG衍 生化 磷脂提 高脂 质体 稳 定性 的机 制
11 粒 子 间 斥 力 .
P G 的亲水 性可 使脂 质体 表 面形成 水化 膜 , E 掩盖 脂 质 体表 面的疏 水性 结合 位 点, 降低 R S对脂 质体 的识别 E 和摄取 , 延长 体循 环 时 间 [】 7 。如 P G. E的疏 水性 长链 I 8 E P 有利 于将 分子插 入脂 膜 , 亲水性 部分 则伸 展于脂 膜表 而 面, 在脂 质体 表面 形成较 厚 的水化 膜保 护层 , 从而 提高脂 膜亲 水性 并造 成 空 间位 阻, 强稳 定性, 增 这种 作用 随 P G E 分 子量 增 加 而增 加 。水 化 膜保 护 层 的形 成增 加 了脂 质 体 的亲水性 , 使脂质 体在 极性溶 剂 中更稳 定, 有利 于脂 质
1 构象 云结构 . 2 具 有柔 韧性 和 亲水 性 的 P G聚 合物 在脂 质 体表 面 E 形成 的致密 “ 构象 云 ” (o fr t n l lu s, 产生 c nomai a co d) o 可 较 大的 空间位阻 效应( eib r e) s r a i , t c r r 抑制 其它高分 子物质
共价键 结合 形 成P G衍 生化 磷脂 , E 能有 效地保 护 脂质 体,
使脂 质 体 物 理 、化 学 及 生物 稳 定性 大 大 提 高 。 实验证 明,E P G衍 生 化磷脂 能 降低脂 质 体 的渗漏 率, 减 少其 聚集 和 融合 , 延长 有 效期 。在 体循 环 中则 可抑制 细 胞粘 附, 蔽R S 脂质 体 的识 别和摄 取 , 长脂 质体 屏 E 对 延 体 内循环 时 间, 因此, 此类 脂 质体 又称 长循环 脂 质体 。如 用 二硬 脂 酰 磷 脂酰 胆 碱 ( P ) DS C 、胆 固 醇( CH) 、胆 固 醇 .. 3 硫酸 酯 、二硬脂 酰磷 脂酰 乙醇胺( S E .E 2 0 D P ) G 00 P 通过 冻融 法制 得 的链激 酶脂 质体 , 和AU o 比直接 使 t - C-
药物 稳定性 等 多方 面 的优 点 。 也存 在一 定的 不足和 问 但
题, 如脂质 成 分 易氧 化水解 、脂质 体 易 聚集 以及 脂质 体 进 入 血循 环 后 易被 网状 内皮系 统( E ) 胞 快速 清 除 、 R S细 靶 向脂质 体在 体 内发挥 作用 前难 以保证其 完整 性等 。 为
油酰 磷脂 酰 乙醇 胺 [ P G(0 0 .. O E (04 :, Me E 2 0 ) P P 】 5 :55摩 S
尔 比) 成 的大 单 室脂 质 体 ( UVs只 能 稍延 长 循 环 时 组 L )
间 。 而 由 DS C、 C 和 M e E 2 0 )S DS E 组 成 P H P G(0 0 . . P
时, 聚合 物 衣层 厚度 约 为粒子 直径 的 1%时, 即 0 粒子 之 间
的斥 力就 足 以克 服 与其 它大 分 子或 粒 子的相 互 作用 [。 3 ] 随 P G 分 子量 的 增 加, E 粒子 间 斥 力增 加 , 脂质 体 也越 稳 定 。N e h m等 [ X射线 衍 射研 究 了含 4 摩 尔分数 eda 4 ] 用 % P G 1 0 )磷 脂 的脂质 体 ( 脂 :H 为 2 1双 分子 层结 E (9 0 一 磷 C :) 构和 粒子 间斥力, 果表 明, 该浓度 , 合的聚合 物从脂 结 在 结 质 体表 面 伸 出大 约 5 ](n , 加 了 膜与膜 之 间的斥 0  ̄5 m) 增 力 。这有 效 地减 少 了脂质 体 聚集 、 融合 现象 的发 生, 并 抑制 脂质 体 与蛋 白、细 胞 的粘 附, 强 了其 体 内外 稳定 增
与脂质 体表 面接触 , 包括 血浆 成分 的吸 附, 防止 脂质 体被 R S识 别和 摄取 , E 甚至 在较 低浓 度 下就 能产 生很 强 的保
护 作用 。 这种 保护 作用 可 能同疏水 链与 脂质 体膜核 心或
用 药物 时分 别增大 1 .倍 和 61 63 . 倍…。在 炎症 小 鼠模 型
DP E 二棕榈 酰磷脂 酰胆碱 ( P ) P在 DP 中有强 烈的形 成混 C
合 胶 团 的趋 势 。所 有浓 度 的 P G(2 0 ) P E 10 0. DP E和 大 于
8 %摩 尔 分数 的 P G(0 0 . P E 50 ) DP E则均 形成 分 离的薄 层
相 。表 明低浓 度 的短链 P G可形成 混溶 的脂 质双 层, E 最 适 宜用 作对 药物 载 体 的修饰 , 在浓 度较 高 时易 使脂 质 而 双 层溶 解而 导致 药物 泄 露 。高分 子 量 的 P G可 使脂 质 E 体 更稳定 , 分 子量 大于 5 0 的P G在 某些 处 方 中不适 但 00 E 用 , 因可 能 在 于产 生 了相 分 离 。 原
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