酵母菌酒精发酵实验报告
酒精发酵实验报告结果
一、实验目的1. 掌握酒精发酵的基本原理和实验操作步骤。
2. 了解酵母菌在酒精发酵过程中的作用。
3. 通过实验掌握酒精发酵过程中主要参数的测定方法。
二、实验原理酒精发酵是一种生物化学过程，在厌氧条件下，酵母菌将葡萄糖分解为乙醇和二氧化碳，并释放出能量。
该过程主要分为糖化阶段和发酵阶段。
三、实验材料与仪器材料：- 酵母菌- 葡萄糖- 水浴锅- pH计- 滴定管- 漏斗- 玻璃棒- 实验试管仪器：- 721型分光光度计- 烧杯- 烧瓶- 酒精灯- 滴定管四、实验步骤1. 将葡萄糖溶液稀释至一定浓度，用于酵母菌的活化。
2. 将活化后的酵母菌接种到葡萄糖溶液中，进行酒精发酵实验。
3. 在发酵过程中，每隔一定时间取样，测定pH值、葡萄糖浓度和乙醇浓度。
4. 根据实验数据，绘制葡萄糖消耗曲线、乙醇生成曲线和pH变化曲线。
五、实验结果与分析1. pH变化曲线实验结果显示，在酒精发酵过程中，溶液的pH值逐渐降低。
这是因为酵母菌在发酵过程中产生二氧化碳，导致溶液的酸性增强。
2. 葡萄糖消耗曲线实验结果显示，在酒精发酵过程中，葡萄糖浓度逐渐降低。
这说明酵母菌在发酵过程中消耗了葡萄糖。
3. 乙醇生成曲线实验结果显示，在酒精发酵过程中，乙醇浓度逐渐升高。
这说明酵母菌在发酵过程中产生了乙醇。
4. 酒精发酵效率根据实验数据，计算酒精发酵效率如下：酒精发酵效率 = (发酵前葡萄糖浓度 - 发酵后葡萄糖浓度) / 发酵前葡萄糖浓度× 100%实验结果显示，酒精发酵效率为 85%。
六、结论通过本次实验，我们掌握了酒精发酵的基本原理和实验操作步骤，了解了酵母菌在酒精发酵过程中的作用。
实验结果表明，在适宜的条件下，酵母菌能够有效地将葡萄糖转化为乙醇和二氧化碳。
七、讨论1. 实验过程中，酵母菌的生长和代谢受到多种因素的影响，如温度、pH值、营养物质等。
因此，在酒精发酵过程中，需要严格控制实验条件，以提高酒精发酵效率。
2. 本次实验中，酒精发酵效率为 85%，说明仍有部分葡萄糖未被利用。
生物实验报告_发酵现象
一、实验背景发酵现象是指微生物在无氧或低氧条件下，通过代谢活动将有机物质转化为其他物质的过程。
发酵现象在食品、药品、能源等领域有着广泛的应用。
本实验旨在探究酵母菌在发酵过程中的现象，并分析其代谢产物。
二、实验目的1. 观察酵母菌发酵现象；2. 分析酵母菌发酵产物的性质；3. 掌握发酵实验的基本操作。
三、实验原理酵母菌是一种兼性厌氧型微生物，在有氧条件下，酵母菌通过有氧呼吸将葡萄糖分解成二氧化碳和水；在无氧条件下，酵母菌通过无氧呼吸将葡萄糖分解成酒精和二氧化碳。
四、实验材料1. 实验仪器：锥形瓶、胶头滴管、玻璃棒、酒精灯、烧杯、试管、试管架、培养皿、培养箱等；2. 实验试剂：葡萄糖、酵母粉、蒸馏水、pH试纸、澄清石灰水、重铬酸钾溶液、浓硫酸等。
五、实验步骤1. 准备实验材料，将葡萄糖和酵母粉按照一定比例混合；2. 将混合好的葡萄糖和酵母粉溶解于蒸馏水中，搅拌均匀；3. 将溶液分装于锥形瓶中，用酒精灯加热至沸腾，杀死微生物；4. 冷却锥形瓶，将溶液转移至烧杯中；5. 将烧杯中的溶液用pH试纸检测，记录初始pH值；6. 将烧杯中的溶液倒入锥形瓶中，用胶头滴管滴加澄清石灰水，观察现象；7. 将锥形瓶放入培养箱中，在适宜温度下培养一段时间；8. 每隔一段时间，观察锥形瓶中的溶液变化，记录气泡产生情况；9. 培养结束后，将锥形瓶中的溶液转移至试管中，用重铬酸钾溶液检测酒精含量；10. 分析实验结果，得出结论。
六、实验结果与分析1. 初始pH值：实验开始时，溶液的pH值为6.5；2. 气泡产生：在培养过程中，锥形瓶中的溶液产生大量气泡，说明酵母菌在发酵过程中产生了气体；3. 澄清石灰水反应：在滴加澄清石灰水后，溶液中出现白色沉淀，说明溶液中含有二氧化碳；4. 酒精含量：通过重铬酸钾溶液检测，发现溶液中含有一定量的酒精。
七、结论1. 酵母菌在发酵过程中产生了大量气泡，说明酵母菌通过无氧呼吸产生了气体；2. 澄清石灰水反应结果表明，溶液中含有二氧化碳；3. 酒精含量检测结果显示，溶液中含有一定量的酒精；4. 本实验验证了酵母菌在发酵过程中产生了气体、二氧化碳和酒精，证实了发酵现象的存在。
微生物的发酵实验报告
一、实验目的1. 熟悉微生物发酵的基本原理和操作流程。
2. 掌握微生物接种、培养、发酵等实验技术。
3. 学习如何观察和记录发酵过程中的现象，分析发酵效果。
二、实验原理微生物发酵是指利用微生物的代谢活动，将有机物质转化为人类所需的产物，如酒精、有机酸、酶等。
发酵过程中，微生物通过分解底物产生能量，同时合成目标产物。
本实验以酒精发酵为例，探究微生物发酵的基本原理和操作方法。
三、实验材料与仪器材料：1. 酵母菌（Saccharomyces cerevisiae）2. 葡萄糖3. 酵母膏4. 灭菌水5. 酒精计6. 硅胶仪器：1. 烧杯2. 研钵3. 玻璃棒4. 移液管5. 恒温水浴锅6. 烧瓶7. 玻璃漏斗8. 紫外线灯四、实验步骤1. 酵母菌活化：- 将酵母菌菌种接种于含有葡萄糖和酵母膏的培养基中，置于28℃恒温培养箱中培养24小时。
- 取活化后的酵母菌，用无菌移液管转移至另一无菌培养基中，继续培养。
2. 发酵液制备：- 将葡萄糖和酵母膏溶解于灭菌水中，配制成一定浓度的发酵液。
- 将活化后的酵母菌接种于发酵液中，充分搅拌均匀。
3. 发酵：- 将发酵液置于28℃恒温培养箱中发酵，每隔一定时间取样测定酒精含量。
4. 酒精含量测定：- 用酒精计测定发酵液中的酒精含量。
- 记录酒精含量随时间的变化。
5. 发酵结束：- 当酒精含量达到预期值时，停止发酵。
- 将发酵液过滤，去除菌体。
6. 酒精含量分析：- 对发酵液中的酒精含量进行分析，确定发酵效果。
五、实验结果与分析1. 发酵曲线：实验结果表明，发酵液中的酒精含量随时间逐渐增加，并在发酵后期达到峰值。
发酵过程中，酒精含量变化曲线呈S型，符合微生物发酵的一般规律。
2. 酒精含量分析：通过酒精计测定，发酵液中的酒精含量为5.6%。
六、讨论1. 本实验成功实现了酒精的发酵，验证了微生物发酵的基本原理和操作方法。
2. 发酵过程中，酵母菌通过分解葡萄糖产生酒精和二氧化碳。
牛乳的酒精实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解牛乳酒精发酵的原理和过程；2. 掌握牛乳酒精发酵实验的操作步骤；3. 分析牛乳酒精发酵的结果，并探讨影响发酵的因素。
二、实验原理牛乳酒精发酵是一种利用微生物将牛乳中的糖类转化为酒精的过程。
实验中，将牛乳与酵母菌混合，酵母菌在适宜的条件下将牛乳中的糖类分解为酒精和二氧化碳。
实验过程中，通过观察酒精生成情况，可以了解牛乳酒精发酵的效果。
三、实验材料1. 牛乳：市售全脂牛乳；2. 酵母菌：市售活性干酵母；3. 温度计；4. 量筒；5. 玻璃棒；6. 100mL锥形瓶；7. 酒精计；8. 滤纸；9. 水浴锅。
四、实验步骤1. 将牛乳倒入100mL锥形瓶中，用温度计测量牛乳温度，控制在25-30℃；2. 将酵母菌加入牛乳中，搅拌均匀；3. 将锥形瓶放入水浴锅中，保持25-30℃恒温发酵；4. 每隔一定时间（如每隔24小时），用酒精计测量锥形瓶中的酒精含量；5. 发酵过程中，观察并记录酒精生成情况；6. 实验结束后，将发酵液过滤，得到酒精溶液；7. 对酒精溶液进行鉴定，确认酒精含量。
五、实验结果与分析1. 实验结果在实验过程中，每隔24小时测量酒精含量，记录如下：时间（h）酒精含量（vol%）0 024 0.548 1.072 1.596 2.02. 结果分析从实验结果可以看出，牛乳酒精发酵过程中，酒精含量随时间逐渐增加。
发酵96小时后，酒精含量达到2.0vol%，说明牛乳酒精发酵效果较好。
影响牛乳酒精发酵的因素有：（1）酵母菌的种类和数量：不同种类的酵母菌对酒精发酵的效果有差异，适量增加酵母菌数量可以提高酒精产量。
（2）发酵温度：发酵温度对酒精发酵效果有较大影响，一般在25-30℃范围内，酒精产量较高。
（3）牛乳的酸度：牛乳的酸度对酒精发酵有一定影响，酸度较低有利于酒精发酵。
（4）发酵时间：发酵时间过长或过短都会影响酒精产量，适宜的发酵时间应在72-96小时。
六、实验结论通过牛乳酒精发酵实验，我们了解了牛乳酒精发酵的原理和过程，掌握了牛乳酒精发酵实验的操作步骤。
发酵现象实验报告
发酵现象实验报告探究酵母菌在无氧条件下发酵作用产生二氧化碳和酒精。
试验仪器及用品：1.试验仪器：带胶塞和胶管的锥形瓶、小气球、Y形管、大烧杯、温度计、试管、比色板、小烧杯、玻璃棒。
2.试验用品: 白糖〔100g〕、一小包干酵母〔约30g〕、澄清的石灰水、酒精、橙色的重铬酸钾溶液。
〔检测酒精的试剂。
0.5ml的浓硫酸溶有0.1g重铬酸钾，体积分数为95％—97％，在酸性条件下与酒精发生化学反应由橙色变为灰绿色〕试验装置及说明：澄清的石灰水可以检测气体中有二氧化碳，重铬酸钾溶液遇到酒精由橙色变为灰绿色。
试验操作：1.将〔100ml〕40℃温水倒入锥形瓶，再用汤匙将一大勺糖及适量干酵母加进来，搅拌匀称后，将锥形瓶放在大烧杯中水浴保温温度保持在30—40 ℃左右。
〔先让酵母菌进行有氧呼吸，是酵母菌快速繁殖，并把葡萄糖分解成二氧化碳和水。
〕2. 观测到酵母菌培育液有气泡产生，塞上橡胶塞〔这样做既可以避开气体散失，影响后面试验效果，也为酒精的产生提供保障〕。
过一段时间后就可看到干瘪的气球渐渐膨胀起来了。
〔酵母菌的无氧呼吸〕3.将夹子打开，挤压气球，使瓶内产生的气体缓缓通过胶管导入试管内的澄清石灰水中，石灰水变浑浊了(检测气体中有二氧化碳。
原理：二氧化碳遇石灰水，石灰水变浑浊)。
4.将重铬酸钾试剂分别滴在比色板的凹槽内，并分别标注1号、2号〔作对比〕、3号。
在3号试剂上滴1滴酒精，在1号试剂上滴1滴酵母菌发酵液。
发觉1号和3号都由橙色变成了灰绿色。
试验创新点及意义：通过上述试验，让我们对酵母菌“发酵现象”所需要的原料、条件及产生的物质都有了较直观的感受，比较简单理解课本上阐述的“酵母菌可以把葡萄糖转化为酒精和二氧化碳”等有关内容，而且印象深刻。
使我们养成很好的节省意识。
试验现象：1. 闻到了发酵后非常的甜酒的芳香气味。
2. 详见【试验操作4】3. 澄清的石灰水变浑浊发酵现象试验报告范文2一、试验目的〔1〕掌控摇床发酵法制备糖化酶的工艺流程及操作方法〔2〕了解利用黑曲霉菌菌种发酵时的生长条件及考前须知〔3〕娴熟掌控试验过程中的无菌操作和培育条件的选择二、试验仪器及试剂菌种：黑曲霉仪器：锥形瓶〔500ml)、移液管、恒温水浴锅、秒表、50mL比色管、牛皮纸、纱布〔8层〕、pH计。
乙醇发酵制备实验报告
乙醇发酵制备实验报告实验目的本实验旨在探究乙醇的发酵制备方法，并通过实验验证发酵过程中乙醇生成的条件和效率。
实验原理乙醇的发酵是一种常见的生物化学反应，其反应方程式如下：葡萄糖（C6H12O6）→[酵母]→乙醇（C2H5OH）+ 二氧化碳（CO2）酵母通过酵母菌进行代谢，将葡萄糖分解为乙醇和二氧化碳。
在发酵过程中，乙醇是通过酵母菌降解葡萄糖产生的，而二氧化碳则是产生的副产物。
实验材料和设备- 葡萄糖溶液- 酵母粉- 实验瓶- 水槽- 酒精计实验步骤1. 准备工作：将葡萄糖溶液稀释至适宜浓度。
2. 取适量的酵母粉，加入葡萄糖溶液中。
根据葡萄糖和酵母的比例，可以控制发酵的速率和产物的质量。
3. 将酵母与葡萄糖溶液搅拌均匀，然后将混合液倒入实验瓶中。
4. 在实验瓶上盖上气球或装上气密塞，以防止二氧化碳逸出。
将实验瓶放置在水槽内进行发酵。
5. 观察实验过程中气球的膨胀情况，这是由于发酵过程中产生的二氧化碳生成，使得气球膨胀。
6. 实验结束后，将实验瓶从水槽中取出。
使用酒精计来测定实验瓶内的酒精浓度。
7. 计算得到乙醇的产率，并与理论值进行比较。
结果与分析通过实验，我们观察到在发酵过程中，随着时间的推移，实验瓶中的气球膨胀逐渐增大，这表明发酵反应正常进行。
实验结束后，我们使用酒精计测定了实验瓶内的酒精浓度，并计算得到乙醇的产率。
乙醇的产率可以通过以下公式计算：乙醇产率（%）= 实际乙醇产量（g）/理论乙醇产量（g）×100%通过比较实际产量和理论产量，我们可以评估发酵过程的效率和酵母的活性。
如果乙醇产率接近100%，表明酵母的发酵效率很高。
结论与讨论通过本实验，我们验证了乙醇的发酵制备方法，并从实验结果中计算得到了乙醇的产率。
实验结果与理论值相比较，得出了发酵过程的效率和酵母的活性。
然而，本实验仍存在一些不确定的因素。
例如，实验中没有对发酵温度、PH值和搅拌速度等参数进行控制。
这些因素对发酵过程有重要影响，可能对实验结果产生一定影响。
酵母发酵实验报告
酵母发酵实验报告实验目的：本实验旨在探究酵母在不同条件下的发酵过程，并研究对酵母发酵活性的影响因素。
实验器材：- 平衡称- 试管架- 筷子- 试管- 酵母- 糖- 温水- 酒精计- 温度计实验步骤：1. 准备工作- 将试管架放在平稳的桌面上。
- 准备干净的试管。
- 使用平衡称称取适量的酵母和糖。
- 准备温水。
2. 实验组设置- 将酵母和糖按一定比例加入试管中，并混合均匀。
- 将温水加入试管中，使试管内液体的温度保持在适宜的范围（一般为35-40摄氏度）。
- 用筷子轻轻搅拌试管中的液体。
3. 对照组设置- 准备另外一支试管，只加入温水，不加入酵母和糖。
- 使对照组试管内液体的温度与实验组相同。
4. 观察和记录- 使用酒精计测量酵母发酵所产生的酒精量。
- 使用温度计测量试管中液体的温度。
- 在规定的时间间隔内，记录酒精量和温度变化。
实验结果：通过实验观察和记录，我们得到了以下结果：时间（分钟）温度（摄氏度）酒精量（毫升）----------------------------------------------0 37 010 38 220 39 330 40 440 39 5实验分析：根据实验结果，我们可以得出以下结论：1. 酵母的发酵活性随温度的升高而增加。
在适宜的温度范围内，酵母的发酵效果最佳。
2. 酵母的发酵速度随时间的增加而增加，但在一定时间后发酵速度趋于稳定。
3. 酒精的产生量与酵母的发酵活性密切相关，酒精的产生量与温度变化趋势相似。
实验结论：通过实验我们可以得出如下结论：酵母的发酵活性受温度的影响较大，温度的变化会直接影响酵母的发酵速度和产生的酒精量。
实验总结：在本实验中，我们通过观察和实验数据分析得出了酵母的发酵活性与温度之间的关系。
酵母在适宜的温度范围内可以快速进行发酵，并产生大量的酒精。
此外，在实验过程中，我们也注意到了一些问题，例如实验组和对照组的温度控制不够严格，可能会对实验结果产生一定的影响。
酒精发酵实验
酵母菌酒精发酵的条件研究一、实验目的1.了解酒精发酵的主要类型及其控制条件。
2.熟悉酒母的培养方法。
3.掌握酒精发酵的操作方法。
二、实验原理在厌氧条件下，己糖分解为乙醇并放出二氧化碳的作用，成为酒精发酵作用。
酒精发酵的类型有三种：1、通过EMP途径的酵母菌酒精发酵；2、通过HMP 途径的细菌酒精发酵；3、通过ED途径的细菌酒精发酵。
在工业酒精和各种酒类的生产中，酒精发酵作用主要是由酵母菌完成的，因此酵母菌的酒精发酵作用是它们的工艺基础。
酵母菌通过EMP途径分解己糖生成丙酮酸，在厌氧条件和微酸性条件下，丙酮酸继续分解为乙醇。
但是如果在碱性条件或培养基中加有亚硫酸盐时，产物就主要是甘油，这也就是工业上的甘油发酵。
因此，如果酵母菌要进行酒精发酵，就必须控制发酵液在微酸性条件。
三、实验材料3.1 试剂：酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)菌种，红糖、硫酸铵、磷酸二氢钾、黄豆芽、葡萄糖、琼脂、蒸馏水、无菌水。
仪器：铝锅、电炉、电子天平、摇床、水浴锅、培养箱、高压蒸汽灭菌锅、UV-754 紫外可见分光光度计。
3.2 培养基配方1、固体斜面培养基。
豆芽汁葡萄糖培养基的配制：黄豆芽10g、葡萄糖5g、琼脂1.5~2g、水100ml，pH自然2、液态发酵培养基。
红糖100g，硫酸铵2.0g，磷酸二氢钾1.0g，自来水1000ml,pH自然。
配好后的发酵培养基分装入250ml三角瓶中，每瓶100ml，湿热灭菌30min。
四、实验方案4.1 菌种活化把实验室保存的菌种在无菌室接种于固体斜面培养基中，于恒温箱37℃，培养2~3d，取出生长状况较好、齿状清晰的斜面为下一步接种的对象。
4.2 种子培养挑取菌种，接种于液体种子培养基中，种子液装液量为100ml，摇床培养37℃,24h，120r/min，对比培养24h的种子培养液，选取液体较为浑浊的接种对象。
4.3 发酵培养把选中的种子液用移液管按发酵液100ml10%的比例接种，恒温培养24h。
探究酵母菌发酵的最佳条件实验报告
探究酵母菌发酵的最佳条件实验报告
实验原理：酵母菌通过葡萄糖耗氧酶催化发酵，利用葡萄糖水解成乙醇和二氧化碳，即酒精发酵。
实验温度：室温20℃-30℃ ID
实验浓度：酵母种类、温度、葡萄糖浓度、KH2PO4及酒精浓度
实验准备：
（1）蝌蚪型酵母菌乙酸菌1.0g；
（2）蒸馏水1000ml；
（3）铝盖15个；
（4）烧杯3只；
（5）荧光灯管2条；
（6）蒸发器2只；
（7）葡萄糖2克；
（8）KH2PO4 2克；
（9）醋酸4毫升。
实验过程：
（1）将1000 ml蒸馏水放入5000mL烧杯，加入2克葡萄糖和2克KH2PO4 制作培养液；
（2）将1.0g酵母菌乙酸菌置于500ml烧杯中，加入醋酸4毫升；
（3）采用荧光灯管照射酵母菌，用蒸发器进行浓缩；
（4）将酵母菌充分的悬浮在营养液中，用留盖在锅盖上，放置室温20℃-30℃环境下发酵24小时。
实验数据：
发酵1小时pH值下降0.02；
发酵2小时乙醇产量达到2.2g/L；
发酵3小时气泡达到最大；
发酵4小时二氧化碳释放量达到最大20.4g/L。
实验结论：实验结果表明，酵母菌在室温20-30℃、酵母菌浓度2%、营养培养液中葡萄糖浓度2%、KH2PO4浓度2%的环境下，发酵最高。
实验建议：为了更好的控制发酵过程，在发酵过程中应增加对培养液中葡萄糖浓度及高磷酸盐浓度的检测，以提高发酵产品质量。
实验一 固定化生长酵母发酵酒精
本实验载体的特点
材料 海藻酸钠凝胶 原理 优点 缺点 抗微生物分解能力弱， 机械强度较低（在高浓 度的单价金属离子和磷 酸盐缓冲液的作用下， 凝胶结构会破坏） 海藻酸钠是一种天然高分子多糖， 操作方便，毒 能够于Ca2+螯合形成不溶于水的 性小， 海藻酸钙凝胶。 调节海藻酸钠溶液的浓度可改变 固定化颗粒的机械强度和传质阻 力， 调节CaCl2溶液浓度可改变固定 化颗粒的机械强度。
三、材料和方法
• • • • • • • • （一）材料 1.菌种：酒精酵母（Saccharomyces erevisiae) . Rasses Ⅶ 2.海藻酸钠 3.淀粉水解糖液（10·BX）。 4.其他：注射器、针头、波美计等。 （二）培养基 1.斜面培养基：麦芽汁琼脂斜面 2.酵母细胞培养基 ：葡萄糖 20g,蛋白胨2g，酵母膏2g，硫酸镁0.05g ,自 来水1000毫升，pH5.0。 • 3.固定化酵母增殖培养基：葡萄糖50g, 蔗糖50g, 酵母膏2g, 蛋白胨3g, 硫酸二氢钾1.5g, 氯化铵1.5g, 硫酸镁0.5g, 二氯化锰0.02g, 含水氯化钙 5g, 自来水1000ml, pH5.0. • 4.乙醇发酵培养基：10 ·BX 淀粉水解糖液, 尿素0.2%, 磷酸二氢钾0.01%, pH 5.0.
包埋法载体的选择
• 包埋法较适合于固定化生长态的细胞，细胞可在凝胶网格或微囊中生 长繁殖，细胞大多聚集在载体内表面，提高了细胞密度、减少了传质 阻力。 但由于活细胞生长代谢，载体会受到物理、生物破坏。 • 要求：1、有一定的机械强度； 要求： 2、对酶、微生物、酸碱有耐受力； 3、固定化过程尽量温和，避免酶、细胞损伤； 4、凝胶网格通透性好，其孔径可调节； 5、廉价易得，无毒。 • 常用的载体：天然高聚物——卡拉胶、海藻酸钙、醋酸纤维素酯等； 常用的载体： 合成高聚物——聚丙烯酰胺、聚乙烯醇等。
酒精的发酵实验报告
1. 掌握酒精发酵的基本原理和实验方法。
2. 了解酒精发酵过程中微生物的生长规律和代谢产物。
3. 掌握实验仪器的使用和数据处理方法。
二、实验原理酒精发酵是利用微生物将糖类物质转化为酒精和二氧化碳的过程。
本实验采用酵母菌作为发酵微生物，酵母菌在适宜的条件下，将葡萄糖分解成乙醇和二氧化碳。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：- 酵母菌：活化酵母菌- 葡萄糖：分析纯- 酒精：分析纯- 二氧化碳：分析纯- 澄清石灰水：分析纯- 重铬酸钾溶液：分析纯2. 实验仪器：- 50ml锥形瓶：4个- 玻璃棒：4根- 温度计：1支- 移液管：1支- pH计：1台- 恒温水浴锅：1台- 烧杯：1个- 滤纸：1张1. 准备实验材料：将活化酵母菌、葡萄糖、酒精、二氧化碳、澄清石灰水和重铬酸钾溶液分别准备好。
2. 配制培养基：取50ml锥形瓶4个，分别加入5g葡萄糖，然后加入50ml蒸馏水，搅拌均匀。
3. 接种：将活化酵母菌用移液管取适量接种到锥形瓶中，用玻璃棒搅拌均匀。
4. 发酵：将锥形瓶放入恒温水浴锅中，维持温度在30℃左右，进行发酵。
5. 检测酒精浓度：在发酵过程中，每隔一定时间取出锥形瓶，用pH计测定发酵液的pH值，同时取少量发酵液，用重铬酸钾溶液检测酒精浓度。
6. 检测二氧化碳浓度：将发酵瓶中的气体导入澄清石灰水中，观察石灰水的变化，判断二氧化碳的产生。
7. 记录实验数据：记录发酵过程中酒精浓度、二氧化碳浓度和pH值的变化。
8. 实验结束：发酵结束后，将锥形瓶中的发酵液过滤，收集滤液，用于后续实验。
五、实验结果与分析1. 酒精浓度：通过pH计和重铬酸钾溶液检测，发酵过程中酒精浓度逐渐增加，说明酵母菌在发酵过程中产生了酒精。
2. 二氧化碳浓度：通过澄清石灰水检测，发酵过程中二氧化碳浓度逐渐增加，说明酵母菌在发酵过程中产生了二氧化碳。
3. pH值：发酵过程中pH值逐渐降低，说明酵母菌在发酵过程中消耗了培养基中的营养物质，产生了酸性物质。
酒精发酵实验报告
篇一：酵母菌酒精发酵实验报告实验方案酵母菌酒精发酵的条件研究学院（部）：生物与化学工程学院专业：生物工程学生姓名：鑫学号：11018150 班级：生物工程二班指导教师：肖一、实验目的1、学会实验的设计和操作过程2、找到酵母菌发酵时的最优条件二、培养基和实验方法及材料的确定 1、玉米粉的糖化方法玉米粉的糖化采用双酶法，其工艺流程如下玉米粉→加水→液化→糖化→发酵→蒸馏→成品酒精试验中，发酵培养按照三角瓶100ml培养。
本次工做20组是要，共需发酵液20*100=2000ml。
培养液按照100g玉米粉、300ml水。
所以共需玉米粉700g。
液化：取１００ｇ玉米粉，加入３００ｍｌ的水，液化温度为９０℃，ｐｈ值为５．５，液化时间为３．５ｈ，液化酶的添加量为０．０３５ｇ／１００ｇ玉米粉糖化：糖化时的工艺条件为：糖化温度为５８℃，ｐｈ值为４．５，糖化时间为３．５ｈ，糖化酶的添加量为０．３ｇ／１００ｇ玉米粉。
2、活化培养基本实验在进行实验时采用察氏(czapck)培养基的配制，配方如下表一：表一3、扩大培养基扩大培养仍然用察氏(czapck)培养基，由于要用液体的，所以将其中的琼脂配料去掉。
4、发酵培养基糖化液稀释至l0%浓度，添加辅料（硫酸铵0.4%），ph5.5灭菌三、培养基的制备及酵母的活化1、准备酵母母菌一支常温下存放一天，增加菌种的活力。
在母菌存放期间制作各时期培养基2、准备固体培养基（察氏培养基）50ml，做成8支试管斜面，扩大培养基800ml（做扩大培养时使用）。
做成8个三角瓶，每瓶200ml。
120℃灭菌30min。
3、发酵液的制备（1）玉米粉的筛选实验前准备粉碎后的玉米粉700g。
（2）玉米粉的液化按照100g玉米粉、300ml水的配比对玉米粉进行液化，液化方案上文已经交代。
在1000ml 烧杯里，或者500ml烧杯分两次，水浴液化。
器材：烧杯500ml两个，玻璃棒一个，水浴锅一个，糖化酶0.225g 步骤：1、将糖化酶，玉米粉，水按照比例配置好在烧杯里。
生物发酵酒精实验报告
一、实验目的1. 了解酒精发酵的基本原理和过程。
2. 掌握酵母菌酒精发酵的实验操作方法。
3. 探究不同条件对酒精发酵的影响，如温度、pH值、葡萄糖浓度等。
4. 分析实验结果，得出结论。
二、实验原理酒精发酵是酵母菌在无氧条件下，将葡萄糖分解成酒精和二氧化碳的过程。
实验中常用的菌种为酿酒酵母，其代谢方程式如下：\[ C_6H_{12}O_6 \rightarrow 2C_2H_5OH + 2CO_2 + 能量 \]三、实验材料与仪器1. 实验材料：- 酵母菌- 葡萄糖- pH试纸- 温度计- 广口瓶- 移液管- 烧杯- 滤纸- 澄清石灰水- 重铬酸钾溶液2. 实验仪器：- 烧杯- 移液管- 广口瓶- 温度计- pH计- 分析天平- 滤纸四、实验步骤1. 准备培养基：将葡萄糖溶解于水中，制成一定浓度的葡萄糖溶液，加入适量的酵母菌，搅拌均匀。
2. 将培养基分装于广口瓶中，每个瓶子中加入pH试纸，检测pH值，调整至适宜酵母菌生长的pH范围（通常为4.5-5.5）。
3. 将广口瓶置于恒温水浴锅中，调节温度至适宜酵母菌生长的温度（通常为30-35℃）。
4. 定时记录温度、pH值和葡萄糖浓度，观察酵母菌的生长情况。
5. 将发酵后的溶液过滤，收集滤液。
6. 使用澄清石灰水检测二氧化碳的产生，观察溶液变浑浊的现象。
7. 使用重铬酸钾溶液检测酒精的产生，观察溶液由橙色变为灰绿色的现象。
五、实验结果与分析1. 在实验过程中，观察到酵母菌在适宜的温度和pH值下，能够迅速繁殖并产生大量的酒精和二氧化碳。
2. 随着发酵时间的延长，葡萄糖浓度逐渐降低，酒精浓度逐渐升高。
3. 当葡萄糖浓度降至一定程度时，酒精发酵基本停止，此时酒精浓度达到最大值。
4. 通过实验结果分析，得出以下结论：- 温度对酒精发酵有显著影响，适宜的温度有助于酵母菌的生长和酒精的产生。
- pH值对酒精发酵也有一定影响，适宜的pH值有利于酵母菌的生长和代谢。
- 葡萄糖浓度是影响酒精发酵的重要因素，随着葡萄糖浓度的降低，酒精浓度逐渐升高。
酒精发酵项目实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解酒精发酵的基本原理和过程。
2. 掌握酵母菌在酒精发酵中的重要作用。
3. 学习酒精发酵实验的操作方法和注意事项。
4. 分析影响酒精发酵的因素，优化发酵条件。
二、实验原理酒精发酵是指酵母菌在无氧条件下，将葡萄糖分解为乙醇和二氧化碳的过程。
其化学反应式如下：C6H12O6 → 2C2H5OH + 2CO2三、实验材料与仪器材料：1. 干酵母粉2. 葡萄糖3. 硫酸铜溶液4. 澄清石灰水5. 橙色的重铬酸钾溶液6. 温度计7. 锥形瓶8. 橡胶塞9. 小气球10. Y形管11. 大烧杯12. 试管13. 比色板14. 小烧杯15. 玻璃棒四、实验步骤1. 酵母菌活化：- 将少量干酵母粉加入温水中，搅拌均匀，使其活化。
- 将活化后的酵母液倒入锥形瓶中。
2. 葡萄糖溶液的制备：- 将葡萄糖溶解于温水中，配制成一定浓度的葡萄糖溶液。
- 将葡萄糖溶液倒入锥形瓶中。
3. 发酵过程：- 将锥形瓶置于水浴中，保持温度在30-40℃。
- 观察酵母菌进行发酵，产生气泡。
- 在发酵过程中，塞上橡胶塞，避免气体散失。
4. 二氧化碳检测：- 将澄清石灰水倒入试管中。
- 将Y形管的一端插入锥形瓶中，另一端插入试管中。
- 观察石灰水是否变浑浊，以检测二氧化碳的产生。
5. 酒精检测：- 将橙色的重铬酸钾溶液倒入试管中。
- 将产生的气体导入试管中。
- 观察溶液颜色是否变为灰绿色，以检测酒精的产生。
6. 发酵结束：- 当不再产生气泡，石灰水不再变浑浊，溶液颜色不再变化时，表示发酵结束。
五、实验结果与分析1. 二氧化碳检测：在发酵过程中，石灰水逐渐变浑浊，说明产生了二氧化碳。
2. 酒精检测：在发酵结束后，溶液颜色变为灰绿色，说明产生了酒精。
六、影响酒精发酵的因素1. 温度：酵母菌在适宜的温度下发酵效果最佳，通常为30-40℃。
2. 葡萄糖浓度：葡萄糖浓度越高，酒精产量越高，但过高浓度会影响酵母菌的生长。
3. pH值：酵母菌在pH值约为4.5-5.5的条件下发酵效果最佳。
酒精发酵实验报告
篇一：酵母菌酒精发酵实验报告实验方案酵母菌酒精发酵的条件研究学院（部）：生物与化学工程学院专业：生物工程学生姓名：鑫学号：11018150 班级：生物工程二班指导教师：肖一、实验目的1、学会实验的设计和操作过程2、找到酵母菌发酵时的最优条件二、培养基和实验方法及材料的确定 1、玉米粉的糖化方法玉米粉的糖化采用双酶法，其工艺流程如下玉米粉→加水→液化→糖化→发酵→蒸馏→成品酒精试验中，发酵培养按照三角瓶100ml培养。
本次工做20组是要，共需发酵液20*100=2000ml。
培养液按照100g玉米粉、300ml水。
所以共需玉米粉700g。
液化：取１００ｇ玉米粉，加入３００ｍｌ的水，液化温度为９０℃，ｐｈ值为５．５，液化时间为３．５ｈ，液化酶的添加量为０．０３５ｇ／１００ｇ玉米粉糖化：糖化时的工艺条件为：糖化温度为５８℃，ｐｈ值为４．５，糖化时间为３．５ｈ，糖化酶的添加量为０．３ｇ／１００ｇ玉米粉。
2、活化培养基本实验在进行实验时采用察氏(czapck)培养基的配制，配方如下表一：表一3、扩大培养基扩大培养仍然用察氏(czapck)培养基，由于要用液体的，所以将其中的琼脂配料去掉。
4、发酵培养基糖化液稀释至l0%浓度，添加辅料（硫酸铵0.4%），ph5.5灭菌三、培养基的制备及酵母的活化1、准备酵母母菌一支常温下存放一天，增加菌种的活力。
在母菌存放期间制作各时期培养基2、准备固体培养基（察氏培养基）50ml，做成8支试管斜面，扩大培养基800ml（做扩大培养时使用）。
做成8个三角瓶，每瓶200ml。
120℃灭菌30min。
3、发酵液的制备（1）玉米粉的筛选实验前准备粉碎后的玉米粉700g。
（2）玉米粉的液化按照100g玉米粉、300ml水的配比对玉米粉进行液化，液化方案上文已经交代。
在1000ml 烧杯里，或者500ml烧杯分两次，水浴液化。
器材：烧杯500ml两个，玻璃棒一个，水浴锅一个，糖化酶0.225g 步骤：1、将糖化酶，玉米粉，水按照比例配置好在烧杯里。
酵母菌产生乙醇实验报告
一、实验目的1. 了解酵母菌产生乙醇的基本原理和过程；2. 掌握酵母菌产生乙醇的实验操作步骤；3. 分析实验结果，探讨影响酵母菌产生乙醇的因素。
二、实验原理酵母菌是一种单细胞真菌，具有无性繁殖和有性繁殖两种繁殖方式。
在无氧条件下，酵母菌通过糖酵解途径将葡萄糖分解为丙酮酸，丙酮酸在脱羧酶的作用下生成乙醛和二氧化碳，乙醛在还原酶的作用下还原为乙醇。
该过程称为乙醇发酵。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：（1）酵母菌：酿酒酵母；（2）葡萄糖；（3）蒸馏水；（4）酒精计；（5）锥形瓶；（6）玻璃棒；（7）试管；（8）酒精灯；（9）试管架；（10）滴定管。
2. 实验仪器：四、实验步骤1. 酵母菌活化：将酵母菌菌种接种于含有葡萄糖和蒸馏水的锥形瓶中，置于37℃恒温培养箱中培养24小时。
2. 制备发酵液：取活化后的酵母菌液，按照1%的比例接种于含有葡萄糖的锥形瓶中，加入适量蒸馏水，搅拌均匀。
3. 调节pH值：用氢氧化钠或盐酸调节发酵液的pH值至4.5-5.0。
4. 控制温度：将发酵液置于37℃恒温培养箱中发酵。
5. 测定乙醇浓度：发酵过程中，每隔一定时间取出少量发酵液，用酒精计测定乙醇浓度。
6. 记录数据：记录发酵过程中乙醇浓度的变化情况。
7. 分析实验结果：分析影响酵母菌产生乙醇的因素，如温度、pH值、葡萄糖浓度等。
五、实验结果与分析1. 实验结果：（1）在发酵过程中，乙醇浓度随时间逐渐升高，发酵至第5天时，乙醇浓度达到最高值；（2）在37℃恒温培养箱中，发酵效果最佳；（3）pH值为4.5-5.0时，发酵效果最佳；（4）葡萄糖浓度为10%时，发酵效果最佳。
2. 分析：（1）温度对酵母菌产生乙醇的影响：实验结果表明，37℃恒温培养箱中发酵效果最佳，说明酵母菌在适宜的温度范围内，发酵效率较高；（2）pH值对酵母菌产生乙醇的影响：实验结果表明，pH值为4.5-5.0时，发酵效果最佳，说明酵母菌在适宜的pH值条件下，发酵效率较高；（3）葡萄糖浓度对酵母菌产生乙醇的影响：实验结果表明，葡萄糖浓度为10%时，发酵效果最佳，说明酵母菌在适宜的葡萄糖浓度条件下，发酵效率较高。
酒精发酵的实验报告
一、实验目的1. 了解酒精发酵的基本原理和过程。
2. 掌握酒精发酵实验的操作步骤。
3. 学习使用相关仪器和试剂。
4. 分析实验结果，验证实验原理。
二、实验原理酒精发酵是指酵母菌在无氧条件下，将葡萄糖分解成酒精和二氧化碳的过程。
其化学反应式如下：C6H12O6 → 2C2H5OH + 2CO2三、实验材料与仪器材料：1. 酵母菌：酿酒酵母2. 葡萄糖：分析纯3. 水浴锅4. 锥形瓶（250ml）5. 移液管6. pH计7. 滴定管8. 酒精计9. 澄清石灰水10. 重铬酸钾溶液仪器：1. 烧杯2. 玻璃棒3. 滤纸4. 烘箱5. 电子天平6. 移液器7. 恒温水浴锅四、实验步骤1. 酵母菌活化：将酵母菌接种于葡萄糖溶液中，置于37℃水浴锅中培养1小时。
2. 葡萄糖溶液配制：称取5g葡萄糖，加入50ml蒸馏水，溶解后备用。
3. 发酵液制备：将活化后的酵母菌接种于葡萄糖溶液中，置于37℃水浴锅中发酵24小时。
4. pH值测定：使用pH计测定发酵液的pH值。
5. 酒精含量测定：使用酒精计测定发酵液的酒精含量。
6. 二氧化碳生成量测定：将发酵液过滤，收集滤液，加入澄清石灰水，观察石灰水是否变浑浊，以判断二氧化碳的生成量。
7. 重铬酸钾法测定酒精含量：取少量发酵液，加入重铬酸钾溶液，观察颜色变化，根据颜色变化计算酒精含量。
五、实验结果与分析1. pH值测定：发酵液的pH值为4.5，说明发酵过程中产生了酸性物质。
2. 酒精含量测定：发酵液的酒精含量为6%，说明酵母菌成功地将葡萄糖转化为酒精。
3. 二氧化碳生成量测定：发酵液过滤后，加入澄清石灰水，石灰水变浑浊，说明发酵过程中产生了二氧化碳。
4. 重铬酸钾法测定酒精含量：根据颜色变化，计算出发酵液的酒精含量为6%，与酒精计测定结果一致。
六、实验结论通过本次实验，我们成功地将葡萄糖转化为酒精，验证了酒精发酵的基本原理。
实验过程中，我们掌握了酒精发酵实验的操作步骤，学习了使用相关仪器和试剂，并分析了实验结果。
甜酿酒发酵实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解甜酿酒发酵的基本原理和过程；2. 掌握甜酿酒发酵的实验操作方法；3. 分析甜酿酒发酵过程中影响产酒质量的因素；4. 探讨提高甜酿酒产酒质量的方法。
二、实验原理甜酿酒发酵是指利用酵母菌将含有糖分的原料（如葡萄汁、果浆等）转化为酒精和二氧化碳的过程。
发酵过程中，酵母菌通过代谢产生酒精和二氧化碳，同时产生一些风味物质，使酒具有独特的口感。
三、实验材料1. 原料：葡萄汁、果浆等；2. 仪器：发酵罐、温度计、pH计、酒精计、玻璃棒、漏斗、纱布等；3. 试剂：酵母菌活化剂、糖化酶、醋酸菌抑制剂等。
四、实验步骤1. 酵母菌活化：将酵母菌活化剂加入一定量的葡萄糖溶液中，搅拌均匀，置于30℃恒温培养箱中活化30分钟；2. 糖化：将葡萄汁或果浆加入糖化酶，搅拌均匀，置于60℃水浴锅中糖化30分钟；3. 调pH：用pH计检测糖化液pH值，调整至4.5-5.5；4. 发酵：将活化后的酵母菌加入糖化液中，搅拌均匀，置于25℃恒温培养箱中发酵；5. 检测酒精浓度：每隔一定时间，用酒精计检测发酵液酒精浓度；6. 检测pH值：每隔一定时间，用pH计检测发酵液pH值；7. 降温：发酵至酒精浓度达到预定值后，将发酵液降温至15℃；8. 稳定：将发酵液置于4℃冰箱中稳定24小时；9. 过滤：用纱布过滤发酵液，去除沉淀物；10. 装瓶：将过滤后的发酵液装入瓶中，密封。
五、实验结果与分析1. 发酵过程中，酒精浓度逐渐上升，直至达到预定值；2. 发酵过程中，pH值逐渐下降，直至稳定；3. 发酵过程中，发酵液颜色逐渐变浅，透明度逐渐提高；4. 发酵结束后，酒体稳定，无沉淀物。
六、影响甜酿酒产酒质量的因素1. 酵母菌种类：不同种类的酵母菌对糖的发酵能力不同，影响产酒质量；2. 糖源：不同糖源对酵母菌的发酵能力不同，影响产酒质量；3. 发酵温度：发酵温度过高或过低都会影响酵母菌的发酵效果；4. pH值：pH值对酵母菌的发酵效果有较大影响，过高或过低都会抑制酵母菌的生长和代谢；5. 氧气：氧气会影响酵母菌的发酵过程，过高或过低都会影响产酒质量。
发酵原理实验报告
一、实验目的1. 了解发酵的基本原理和过程。
2. 掌握微生物发酵实验的操作方法。
3. 分析发酵过程中微生物的生长变化和代谢产物。
二、实验原理发酵是一种生物化学过程，主要指微生物在无氧条件下，将有机物质转化为其他物质的过程。
发酵过程中，微生物通过代谢活动产生各种代谢产物，如酒精、乳酸、醋酸等。
本实验通过观察微生物发酵过程中的生长变化和代谢产物，了解发酵原理。
三、实验材料与仪器1. 材料：葡萄糖、酵母粉、乳酸菌、醋酸菌、酒精发酵装置、乳酸发酵装置、醋酸发酵装置。
2. 仪器：酒精计、pH计、恒温培养箱、显微镜、培养皿、试管、移液器、滴定管等。
四、实验步骤1. 酒精发酵实验（1）将葡萄糖溶液与酵母粉按比例混合，装入酒精发酵装置中。
（2）将发酵装置置于恒温培养箱中，控制温度在25℃左右。
（3）定时取样，用酒精计测定酒精浓度。
（4）观察发酵过程中酵母菌的生长变化。
2. 乳酸发酵实验（1）将葡萄糖溶液与乳酸菌按比例混合，装入乳酸发酵装置中。
（2）将发酵装置置于恒温培养箱中，控制温度在37℃左右。
（3）定时取样，用pH计测定溶液pH值。
（4）观察发酵过程中乳酸菌的生长变化。
3. 醋酸发酵实验（1）将葡萄糖溶液与醋酸菌按比例混合，装入醋酸发酵装置中。
（2）将发酵装置置于恒温培养箱中，控制温度在30℃左右。
（3）定时取样，用pH计测定溶液pH值。
（4）观察发酵过程中醋酸菌的生长变化。
五、实验结果与分析1. 酒精发酵实验实验结果显示，酒精浓度在发酵过程中逐渐增加，发酵至第5天时，酒精浓度达到最大值。
在发酵过程中，酵母菌数量逐渐减少，说明酵母菌在发酵过程中被消耗。
2. 乳酸发酵实验实验结果显示，溶液pH值在发酵过程中逐渐降低，发酵至第3天时，pH值达到最低值。
在发酵过程中，乳酸菌数量逐渐增加，说明乳酸菌在发酵过程中繁殖。
3. 醋酸发酵实验实验结果显示，溶液pH值在发酵过程中逐渐降低，发酵至第7天时，pH值达到最低值。
在发酵过程中，醋酸菌数量逐渐增加，说明醋酸菌在发酵过程中繁殖。
发酵实验探究实验报告
一、实验目的1. 了解发酵现象的基本原理；2. 掌握发酵实验的基本操作方法；3. 通过实验探究酵母菌在无氧条件下发酵作用产生二氧化碳和酒精的现象。
二、实验原理发酵现象是指微生物在无氧条件下，利用有机物质产生能量的过程。
酵母菌是一种广泛应用的微生物，其在无氧条件下能将葡萄糖分解为二氧化碳和酒精，这一过程称为酒精发酵。
本实验通过观察酵母菌在无氧条件下发酵作用产生的二氧化碳和酒精，来验证发酵现象的存在。
三、实验仪器及用品1. 实验仪器：带胶塞和胶管的锥形瓶、小气球、Y形管、大烧杯、温度计、试管、比色板、小烧杯、玻璃棒。
2. 实验用品：白糖（100g）、一小包干酵母（约30g）、澄清的石灰水、酒精、橙色的重铬酸钾溶液（0.5ml的浓硫酸溶有0.1g重铬酸钾，体积分数为95％—97％，在酸性条件下与酒精发生化学反应由橙色变为灰绿色）。
四、实验步骤1. 准备实验材料：将100ml的40温水倒入锥形瓶中，加入一大勺白糖，用汤匙搅拌均匀，再加入一小包干酵母，继续搅拌均匀。
2. 保温：将锥形瓶放入大烧杯中，用水浴保温，保持温度在30—40℃左右。
3. 观察现象：观察酵母菌培养液是否有气泡产生，并塞上橡胶塞，以避免气体散失。
4. 发酵：过一段时间后，观察干瘪的气球是否膨胀，表明酵母菌已进行无氧呼吸，产生二氧化碳。
5. 检测二氧化碳：将夹子打开，挤压气球，使瓶内产生的气体通过胶管导入试管内的澄清石灰水中，观察石灰水是否变浑浊，以验证二氧化碳的产生。
6. 检测酒精：取少量发酵液，加入橙色的重铬酸钾溶液，观察颜色变化，若变为灰绿色，则表明酒精的产生。
五、实验结果与分析1. 观察到酵母菌培养液有气泡产生，塞上橡胶塞后，干瘪的气球逐渐膨胀，表明酵母菌已进行无氧呼吸，产生二氧化碳。
2. 将气球内的气体导入澄清石灰水中，石灰水变浑浊，证实了二氧化碳的产生。
3. 取少量发酵液，加入橙色的重铬酸钾溶液，溶液变为灰绿色，表明酒精的产生。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
酵母菌酒精发酵实验报告
实验方案
酵母菌酒精发酵地条件研究
学院（部）：生物与化学工程学院
专业：生物工程
学生姓名：鑫
学
班
指导
1
2
ｇ玉米粉
糖化：糖化时地工艺条件为：糖化温度为５８℃，ｐＨ值为４．５，糖化时间为３．５ｈ，糖化酶地添加量为０．３ｇ／１００ｇ玉米粉.
活化培养基
本实验在进行实验时采用察氏(czapck)培养基地配制，配方如下表一：
表一
扩大培养基
扩大培养仍然用察氏(czapck)培养基，由于要用液体地，所以将其中地琼脂配料去掉.
1
2
3
（1
（2
按照
中90℃液化3.5h.边液化边搅拌.
（3）玉米粉地糖化
将液化后地玉米液中按照0.3g/100ml加入液化液中.再在水浴锅中，58℃糖化3.5h.
（4）过滤
糖化后地糖化液有可能有没有彻底液化地玉米颗粒，会造成浑浊，这时需要对糖化液进行过
滤操作.
操作步骤：
最后与以上培养基一起进行灭菌处理.灭菌时，清洗16支移液管，与培养基一起灭菌.
（5）活化步骤
器材：酒精灯，接种针，母菌，斜面培养基，消毒酒精.
步骤：1、将器材放于实验台上.对双手合桌面进行灭菌.对接种针进行灼烧灭菌.2、在酒精灯旁按照无菌操作步骤在酒精灯火焰旁取下试管棉塞.3、将灼烧后地接种针伸入母菌试管取粘
培养.
，
不同菌量下地发酵
器材：扩大菌种，移液管四个，酒精灯，发酵液，洗耳球.
步骤：1、将实验器材放于实验台上.2、用移液管移取8%地扩大菌种到发酵液中.3、塞好棉塞，将发酵液存放于30℃条件下发酵2d.4、按照以上步骤，分别移取10%、12%、14%地扩大菌种到发酵液中，30℃培养2d，之后进行酒精检测.
不同醪液浓度下地发酵
器材：扩大菌种，移液管四个，酒精灯，发酵液，洗耳球.
步骤：1、将实验器材放于实验台上.2、用移液管移取10%地扩大菌种到4个发酵液中.3、制作不同浓度地醪液，分别按照1:2,1:3,,1:4，1:5.3、塞好棉塞，将四个发酵液三角瓶编号1、2、3、4.将发酵液按照序号存放于30℃条件下发酵2d.4、对发酵后地发酵液进行酒精检测.
不同发酵时间下地发酵
器材：扩大菌种，移液管四个，酒精灯，发酵液，洗耳球.
二
料液比1:21:31:41:5
产量
D/d2 2.53 3.5
产量
注：发酵温度：T 发酵时间：D 接种量：S 菌龄：H
进行发酵培养是，除变量以外，其他条件按照，T=30℃、S=10%、H=20~24h、D=2d
七、最优条件地培养及最优条件确定
以上四种最优条件共同作用下地发酵
器材：扩大培养液20~24h菌龄，发酵液，移液管，洗耳球
步骤：1、将实验器材放于实验台上.2、用移液管移取8%地扩大菌种到发酵液中.3、塞好棉
6/9
6/10
6/11
6/12
6/13
6/14。