ERF转录因子
ERF转录因子研究进展
ERF转录因子研究进展高浩;竺锡武【摘要】ERF(Ethylene-responsive factor)转录因子是AP2/ERF大家族中的一个大的亚家族,仅含1个AP2/ERF结构域,每个成员都含有1个由大约60个氨基酸组成的非常保守的DNA结合域.有研究表明,每种植物有100种以上ERF转录因子,其功能各不相同,分别具有调节植物生长发育、抗生物胁迫和非生物胁迫的作用等.本文就ERF转录因子的研究现状及发展趋势进行分析,以期为ERF转录因子的应用提供参考.【期刊名称】《现代农业科技》【年(卷),期】2017(000)008【总页数】3页(P130-131,134)【关键词】ERF转录因子;功能;作用机理【作者】高浩;竺锡武【作者单位】湖南人文科技学院,湖南娄底 417000;湖南人文科技学院,湖南娄底417000【正文语种】中文【中图分类】Q943随着环境条件的恶化,植物在生长发育过程中受到的非生物因素和生物因素影响会更多,如高温、低温、干旱、盐碱、病虫害等。
在不断适应环境和进化过程中,植物形成了复杂有效的逆境胁迫应答体系,可以调节植物使其能够适应新的生长环境。
其中,在转录水平的调控过程中转录因子发挥了非常重要的作用[1]。
转录因子又称反式作用因子,是一群能与真核基因启动子区域中的顺式作用元件发生特异性结合,从而保证目的基因以特定的强度、在特定的时间与空间表达的蛋白质分子[2]。
AP2/ERF家族转录因子对植物非常重要,可以调控植物整个生命周期的生长发育和逆境[3-7]。
根据AP2结构域的数目和结构特点,AP2/ERF家族转录因子可分为4个亚族(ERF、DREB、AP2、RAV)和单独成员(Soloist)[4-5,8]。
ERF(Ethylene-responsive factor)转录因子是 AP2/ERF大家族中的一个大的亚家族,仅含1个AP2/ERF结构域,在结构域序列的第14位和第19位分别是丙氨酸和天冬氨酸。
ERF转录因子cDNA的分离及表达载体的构建的开题报告
大白菜推定AP2/ERF转录因子cDNA的分离及表达载体的构建的开题报告一、背景与意义:AP2/ERF(Apetala2/ethylene-responsive factor)是一类植物特有的转录因子,它对植物的生长和发育、逆境响应和抗病性具有重要作用。
大白菜(Brassica napus L.)是全球重要的油料作物之一,其营养价值高且繁殖能力强,在我国原油缺乏的情况下,开发大白菜的深加工与利用具有重要的经济意义。
因此探究大白菜AP2/ERF的分子特性,并进一步研究其在逆境响应、生长发育和抗病防治中的作用,对推动大白菜的优良品种选育和农业可持续发展具有重要的理论和实际意义。
二、研究内容:本研究拟使用RT-PCR技术从大白菜中分离得到AP2/ERF转录因子的cDNA全长序列,并通过构建含有目标基因的表达载体来进一步研究其在大白菜中的表达特性。
研究具体流程如下:1、总RNA提取:从大白菜幼苗中提取总RNA。
2、逆转录反应:利用M-MLV逆转录酶逆转录RNA为cDNA。
3、AP2/ERF基因特异性引物的设计:根据靶标序列,设计特异性引物。
4、PCR扩增:采用特异性引物扩增目的基因。
5、克隆与测序:将PCR产物克隆到克隆载体pEASY-T1中,转化大肠杆菌进行测序。
6、序列分析:使用软件工具对序列进行分析和构建结构预测模型。
7、表达载体构建:将目标基因克隆到表达载体中,构建表达载体。
8、质粒转化:将表达载体转化到大白菜中。
9、PCR验证表达:采用基因特异性引物对转化的大白菜进行PCR检测,验证表达载体的构建是否成功。
三、研究意义与创新点:该研究通过分离大白菜中的AP2/ERF转录因子,在分子层次上揭示其生长发育、逆境响应和抗病性机制,为大白菜的品种选育提供新的理论参考和实践指导。
同时,建立含有目标基因的表达载体,为基因工程育种提供新的手段与途径,为农业生产的可持续发展做出贡献。
《花椰菜乙烯受体转录因子(ERF)的克隆及其在逆境应答中的功能研究》
《花椰菜乙烯受体转录因子(ERF)的克隆及其在逆境应答中的功能研究》摘要:本文旨在研究花椰菜乙烯受体转录因子(ERF)的克隆过程,并探讨其在逆境应答中的功能。
通过分子生物学技术,成功克隆了花椰菜ERF基因,并对其表达模式进行了分析。
研究结果表明,该基因在逆境条件下具有重要调控作用,对植物抗逆性具有潜在的应用价值。
一、引言乙烯是植物生长和发育过程中的重要激素之一,其信号转导途径在植物逆境应答中发挥着关键作用。
乙烯受体转录因子(ERF)作为乙烯信号转导途径的关键组成部分,在植物应对环境胁迫时起着重要的调控作用。
因此,研究花椰菜乙烯受体转录因子(ERF)的克隆及其在逆境应答中的功能具有重要意义。
二、材料与方法1. 材料准备实验所用材料为花椰菜组织,实验中所用的引物、试剂等均为市售高品质产品。
2. 方法(1)基因克隆:采用PCR技术,以花椰菜基因组DNA为模板,扩增ERF基因。
(2)序列分析:对克隆得到的ERF基因进行序列分析,确定其编码序列及结构特征。
(3)表达分析:采用实时荧光定量PCR技术,分析ERF基因在花椰菜不同组织及逆境条件下的表达模式。
(4)功能研究:通过转基因技术,研究ERF基因在植物逆境应答中的功能。
三、实验结果1. 基因克隆与序列分析通过PCR技术成功克隆了花椰菜ERF基因,序列分析表明该基因编码一个含有AP2结构域的转录因子。
该基因具有典型的ERF家族特征,表明其可能参与乙烯信号转导途径。
2. 表达分析实时荧光定量PCR结果显示,ERF基因在花椰菜不同组织中均有表达,且在逆境条件下表达量明显上升。
其中,在受到病原菌侵染、干旱、高温等逆境条件时,ERF基因的表达量显著增加。
3. 功能研究通过转基因技术,研究了ERF基因在植物逆境应答中的功能。
结果表明,过表达ERF基因的植物在逆境条件下的抗性明显增强,表现出更强的生长恢复能力和抗病能力。
这表明ERF基因在植物逆境应答中具有重要调控作用。
《ERF转录因子亚家族基因在甜瓜果实发育中的功能》范文
《ERF转录因子亚家族基因在甜瓜果实发育中的功能》篇一摘要:本文着重探讨了ERF(Ethylene Response Factor)转录因子亚家族基因在甜瓜果实发育过程中的功能。
通过实验手段,对相关基因的表达模式及对果实发育的调控机制进行了深入探究,以期为甜瓜种植与遗传改良提供理论支持。
一、引言甜瓜作为一种重要的果蔬作物,其果实的品质与产量的提升一直是农业生产研究的重点。
近年来,随着分子生物学技术的发展,越来越多的研究开始关注基因在果实发育过程中的作用。
ERF转录因子亚家族基因作为植物生长发育的重要调控因子,其在甜瓜果实发育中的作用及调控机制值得深入探讨。
二、ERF转录因子概述ERF转录因子是植物中广泛存在的一类转录调控因子,其能够通过与靶基因的启动子区域结合,进而调控基因的表达。
该亚家族基因在植物的生长、发育及对环境胁迫的响应中发挥着重要作用。
三、ERF基因在甜瓜果实发育中的表达模式本研究通过实时荧光定量PCR技术,对甜瓜果实发育过程中ERF基因的表达模式进行了分析。
结果显示,ERF基因在甜瓜果实的不同发育阶段表达量存在显著差异,尤其在果实成熟期表达量达到峰值。
这表明ERF基因在甜瓜果实发育过程中起到了重要的调控作用。
四、ERF基因对甜瓜果实发育的调控机制通过对ERF基因的过表达及抑制表达实验,我们发现该基因能够通过调控与果实发育相关的其他基因的表达,从而影响果实的品质及产量。
具体而言,ERF基因能够促进果实的成熟和糖分的积累,同时还能提高果实的抗逆能力。
此外,该基因还能通过调控果皮色泽、果肉质地等性状,进一步影响果实的品质。
五、讨论与展望本研究表明,ERF转录因子亚家族基因在甜瓜果实发育过程中发挥了重要的调控作用。
通过对该基因的表达模式及调控机制的研究,我们可以更好地了解甜瓜果实发育的遗传机制,为甜瓜种植与遗传改良提供理论支持。
然而,关于ERF基因在甜瓜果实发育中的具体作用机制仍有待进一步研究。
ERF植物转录因子与植物抗逆研究
酵母单杂交方法—体内分析转录因子与DNA结合特性或转录激活活性
(3)同源克隆 同源克隆的优点是在植物材料的基因信息未知的情况下,通过已知
(3)泛素介导的蛋白降解途径是翻译后调控转录因子蛋 白水平的另一个机制。
4、转录因子研究方法
4.1 克隆转录因子的方法
基于转录因子具有表达丰度低、与顺式元件特异性结合且DNA结合序 列保守等特点。目前,分离克隆转录因子常用的方法主要有以下几种:
(1)转座子标签法与RNA差异显示法 相结合的克隆方法
1、转录因子的结构特征
转录因子的三维结构中,N端通常含有与顺式作用元件 相结合的关键结构域。在转录调控过程中,转录因子通过 其 DNA结合域与靶序列特异结合,来实现对靶基因的精确 调控。
转录因子一般由4个功能区域组成: DNA结合区(DNA binding domain) 转录调控区(Transcription regulation domain)
(5)规模化分离、鉴定转录因子超家族成员 随着基因组测序技术的迅猛发展,多种植物的基因组已经测序完毕。
因此,利用生物信息学方法从全基因内分离、鉴定家族基因已成为研究 热点。这有助于全面系统深入解析基因的功能,在拟南芥、水稻、大豆 及其他一些作物的基因组中系统分析AP2/ERF家族基因已有报道。
总之,上述五种克隆转录因子的方法并不是孤立的, 需要结合实 验材料、实验目的等实际情况,综合采用上述一种或多种方法克隆目 的基因。
ERF植物转录因子研究与植物抗逆
转录因子在植物防卫反应和逆境胁迫应答过程中扮演着非 常重要的角色。在植物抗逆反应过程中,当植物受到外界环境 胁迫后,植物通过其信号传导途径有效地调控体内相关功能基 因的表达,进而引发一系列生理、生化反应,形成高效有序的 信号调控网络,以降低或消除给植株带来的危害。
《ERF转录因子亚家族基因在甜瓜果实发育中的功能》范文
《ERF转录因子亚家族基因在甜瓜果实发育中的功能》篇一摘要:本文通过对ERF(乙烯响应因子)转录因子亚家族基因在甜瓜果实发育过程中的表达与功能进行深入研究,旨在探讨该类基因在甜瓜果实成熟及品质形成中的作用机制。
本研究通过生物信息学分析、基因克隆、转基因等技术手段,系统解析了ERF转录因子亚家族基因在甜瓜果实发育过程中的调控作用。
一、引言甜瓜作为一种重要的经济作物,其果实的发育和品质的形成对农民的收入具有重大影响。
近年来,转录因子在植物生长发育及果实成熟过程中的调控作用受到了广泛关注。
其中,ERF转录因子亚家族基因因其与果实成熟和乙烯响应的紧密关联而备受瞩目。
因此,研究ERF转录因子亚家族基因在甜瓜果实发育中的功能具有重要的理论和实践意义。
二、材料与方法1. 材料本研究选用的材料为甜瓜果实及其相应组织样本,同时使用多种基因编辑技术和实验设备进行后续的实验分析。
2. 方法(1)生物信息学分析:通过数据库检索,获取ERF转录因子亚家族基因的序列信息,分析其结构特征及表达模式。
(2)基因克隆:采用PCR技术克隆目标基因,并构建相应的表达载体。
(3)转基因技术:通过遗传转化技术,将目标基因导入甜瓜中,获得转基因甜瓜植株。
(4)生理生化分析:测定转基因植株与野生型植株在果实发育过程中的生理生化指标,如糖分含量、酸度等。
(5)数据分析:运用统计学方法对实验数据进行处理和分析。
三、结果与分析1. ERF转录因子亚家族基因的表达模式分析通过生物信息学分析,我们发现ERF转录因子亚家族基因在甜瓜果实发育过程中呈现特定的表达模式。
在果实成熟阶段,这些基因的表达水平显著上升,表明它们可能参与果实的成熟过程。
2. 转基因甜瓜的获得与鉴定成功将ERF转录因子亚家族基因导入甜瓜中,获得了转基因甜瓜植株。
通过PCR和RT-PCR等方法,验证了目标基因的成功整合和表达。
3. 转基因甜瓜果实品质的分析与野生型甜瓜相比,转基因甜瓜果实在糖分含量、酸度等品质指标上表现出明显的差异。
根据 ERF 转录因子的结构特征可以将其分为四个亚类
根据ERF 转录因子的结构特征可以将其分为四个亚类。
第I 亚类:AP2/ERF结合域由59 个保守的氨基酸组成,位于蛋白的中部,转录调控域位于蛋白N 端;第II 亚类:AP2/ERF 结合域由58 个保守的氨基酸组成,位于蛋白的N 端,蛋白的C 末端存在一个EAR 基序;第III 亚类:AP2/ERF 结合域也由58 个氨基酸组成,其N 和C 两端各有一个酸性激活域,蛋白C 末端还有一个MAPK 作用位点。
第IV 类:AP2/ERF 结合域同样由58 个保守的氨基酸组成,位于蛋白的N 端,转录调控域位于C 端,此外N 末端还具有一个保守的MCGGAI(I/L)元件[68]ERFs类转录因子可以受到多种胁迫的诱导表达,同时参与不同胁迫信号转导途径的交叉应答,所以它在非生物胁迫中有十分重要的调控作用番前的?STE/JF/基因可以提高番莉根系发育过程中的耐盐性,还可以在转基因植株中表现较高的相对含水量和较低的丙二酸含量及电解质外渗,同时可以积累游离脯氨酸和可溶性糖含量,此外还调节抗逆相关基因、P5CS、DREB3】、的激活表达(Lu et al.,2011)。
Gao等(Gao et al.,2008)将番燕基因转入水稻,经过干旱和高盐处理后,同对照相比转基因植株的抗旱以及耐盐能力增强,并积累了脯氨酸含量,降低了叶片的水分流失。
另外,基因不仅可以影响含有GCC-box或DRE/CRT顺式元件的Z//>5、Wcor413L OsPrx和等胁迫相关的功能基因表达,还影响Os-CDP欠7、OsCDPKlS和OsCDP欠/9等调节基因的表达。
ERF类基因WXPl和WXP2可以使叶蜡积累并提高拟南芥的抗旱性(Zhangetal.,2007)。
己有许多研宄表明胁迫相关基因可以受外源的诱导表达,也有-?些基因虽然ABA对其表达无影响,但是确可以受到干早和低温等的诱导,这就又涉及到ABA依赖和ABA非依赖的非生物胁迫的信号转导途径,Zhu等(Zhu ct al.,2010)通过EMSA试验证明RAP2.6可以与CE丨顺式元件结合,进而可以调控AtABI4等ABA相关基因的特异表达。
ERF转录因子
一、乙烯信号转导通路乙烯是一种非常重要的植物激素。
乙烯在植物生长发育和适应生物和非生物胁迫反应中起到了非常重要的作用。
种子萌发、开花、叶片衰老、果实成熟、根瘤、细胞程序性死亡以及对非生物胁迫和病原体入侵的反应等生理过程都与乙烯密切相关。
乙烯信号转导通路的最上游是位于内质网膜上的5个乙烯受体,分别被称为:ETR1、ETR2、ERS1、ERS2和EIN4。
位于乙烯受体下游的是一个负调节因子,蛋白激酶CTR1。
CTR1蛋白激酶通过与乙烯受体相结合定位在内质网上。
在没有乙烯存在的条件下,CTR1和受体的结合会协同抑制下游乙烯信号途径。
在CTR1负调控因子下游是一个正调控因子EIN2。
EIN2基因发生功能缺失突变会产生乙烯不敏感表型,显示出EIN2在乙烯信号通路中起到了核心作用。
EIN2的半衰期很短,两个F-Box蛋白ETP1和ETP2负责调控EIN2的泛素化降解。
位于EIN2下游的是正调控的转录因子家族EIN3及5个EILs。
研究发现,他们同样是受泛素化途径降解的,负责调控EIN3及EILs泛素化降解的F-Box蛋白是EBF1和EBF2。
EBF5是一种外切核酸酶它能够通过促进EBF1和EBF2的mRNA的降解来拮抗这两个蛋白对EIN3的负反馈调控。
EIN3和EIL1通过启动乙烯信号转导途径示意图转录级联反应来激活下游乙烯响应基因的表达。
二、乙烯响应因子(ethylene response factor、ERF)的结构特点及生物信息学分析ERF基因家族是一个很大的转录因子家族,属于AP2/ERF转录因子超家族。
Ohme-Takagi和Shinshi研究发现,GCC box是植物乙烯响应的DNA序列元件;同时他们在烟草(Nicotiana tabacuum)中发现了能特异性结合GCC box元件的数个乙烯响应元件结合蛋白(EREBPs),并发现,EREBPs同GCC元件相结合的结构域是59个保守的氨基酸残基。
小麦ERF_亚族转录因子参与逆境胁迫的研究进展
㊀山东农业科学㊀2024ꎬ56(2):176~180ShandongAgriculturalSciences㊀DOI:10.14083/j.issn.1001-4942.2024.02.024收稿日期:2023-03-05基金项目:国家自然科学基金项目(32001545)ꎻ山东省农业良种工程项目(2021LZGC013)ꎻ山东省农业科学院农业科技创新工程项目(CXGC2023A01)ꎻ农业农村部黄淮北片小麦种质资源精准鉴定项目作者简介:崔德周(1987 )ꎬ男ꎬ山东惠民人ꎬ博士ꎬ助理研究员ꎬ主要从事小麦种质资源与遗传育种研究ꎮE-mail:dezhoucui@126.com王丽丽(1989 )ꎬ女ꎬ山东郓城人ꎬ山东大学人居环境研究中心特约研究员ꎬ主要从事植物种质资源研究ꎮE-mail:565993570@qq.com∗同为第一作者ꎮ通信作者:樊庆琦(1978 )ꎬ男ꎬ山东郓城人ꎬ博士ꎬ研究员ꎬ主要从事小麦种质创新研究ꎮE-mail:fanqingqi@163.com小麦ERF亚族转录因子参与逆境胁迫的研究进展崔德周1ꎬ王丽丽2∗ꎬ陈祥龙3ꎬ李永波1ꎬ黄琛1ꎬ隋新霞1ꎬ楚秀生1ꎬ樊庆琦1(1.山东省农业科学院作物研究所/小麦玉米国家工程研究中心/农业农村部黄淮北部小麦生物学与遗传育种重点实验室/山东省小麦技术创新中心/济南市小麦遗传改良重点实验室ꎬ山东济南㊀250100ꎻ2.山东省林草种质资源中心ꎬ山东济南㊀250102ꎻ3.山东鲁研农业良种有限公司ꎬ山东济南㊀250100)㊀㊀摘要:小麦是中国三大粮食作物之一ꎬ其生长发育过程中会受到多种逆境胁迫的影响ꎮAP2/EREBP是植物特有的一个庞大的转录因子超家族ꎬ普遍参与生长发育和逆境胁迫应答等生物学进程ꎮERF类转录因子是AP2/EREBP转录因子超家族的一个亚族ꎮ本研究结合国内外相关研究进展ꎬ简要综述了小麦ERF亚族转录因子的结构特征与分布ꎬ重点阐述近年来小麦ERF亚族转录因子响应高盐㊁干旱㊁低温㊁重金属㊁病原菌侵染等逆境胁迫的功能和机制研究进展ꎬ最后展望了ERF亚族转录因子的研究方向和应用前景ꎮ关键词:小麦ꎻERF亚族ꎻ转录因子ꎻ胁迫响应ꎻ研究进展中图分类号:S512.1㊀㊀文献标识号:A㊀㊀文章编号:1001-4942(2024)02-0176-05AdvancesinResearchonFunctionofWheatERFTranscriptionFactorSubfamilyinStressResponseCuiDezhou1ꎬWangLili2∗ꎬChenXianglong3ꎬLiYongbo1ꎬHuangChen1ꎬSuiXinxia1ꎬChuXiusheng1ꎬFanQingqi1(1.CropResearchInstituteꎬShandongAcademyofAgriculturalSciences/NationalEngineeringResearchCenterofWheatandMaize/KeyLaboratoryofWheatBiologyandGeneticsandBreedinginNorthernHuang ̄HuaiRiverPlainꎬMinistryofAgricultureandRuralAffairs/ShandongTechnologyInnovationCenterofWheat/JinanKeyLaboratoryofWheatGeneticImprovementꎬJinan250100ꎬChinaꎻ2.ShandongProvincialCenterofForestandGrassGermplasmResourcesꎬJinan250102ꎬChinaꎻ3.ShandongLuyanAgriculturalCo.ꎬLtd.ꎬJinan250100ꎬChina)Abstract㊀WheatisoneofthethreemajorgraincropsinChinaꎬbutitsgrowthanddevelopmentmightbeaffectedbymultipleadversestresses.AP2/EREBPisasuperfamilyofplantspecifictranscriptionfactorswhicharewidelyinvolvedinbiologicalprocessesessuchasgrowthꎬdevelopmentandstressresponse.TheERFtranscriptionclassisasubfamilyoftheAP2/EREBPsuperfamily.Hereꎬthestructuralcharacteristicsanddis ̄tributionsofERFsubfamilytranscriptionfactorsinwheatwerebrieflyintroduced.Andtherecentresearchpro ̄gressesofthefunctionsandmechanismsofERFsubfamilytranscriptionfactorsinwheatwasemphasizedinre ̄sponsetostressessuchashighsaltꎬdroughtꎬlowtemperatureꎬheavymetalandpathogeninfection.FinallyꎬtheresearchdirectionandapplicationprospectofERFsubfamilytranscriptionfactorswereprospected.Keywords㊀WheatꎻERFsubfamilyꎻTranscriptionfactorꎻStressresponseꎻResearchprogress㊀㊀小麦(TriticumaestivumL.)是世界上最重要的粮食作物之一ꎬ是全球三分之一以上人口的主食ꎮ中国是世界上最大的小麦生产国和消费国ꎬ小麦的高产稳产对保障国家粮食安全至关重要ꎮ小麦生长发育周期长ꎬ期间干旱㊁盐碱㊁低温㊁高温㊁重金属㊁病虫害等生物㊁非生物胁迫都会不同程度地威胁小麦的高产稳产ꎮ近年来ꎬ得益于小麦基因组学的飞速发展ꎬ小麦响应逆境胁迫的分子调控网络被逐步阐明ꎬ转录因子在功能基因表达调控中的关键作用进一步凸显[1-4]ꎮ根据DNA结合域的特性ꎬ转录因子可分成若干家族ꎬ包括MYB㊁WRKY㊁bZIP㊁NAC㊁AP2/EREBP等[5-7]ꎮAP2/EREBP转录因子是植物特有的一类转录因子ꎬ广泛参与小麦逆境胁迫应答[8-10]ꎮERF转录因子是AP2/EREBP转录因子超家族的一个亚族ꎬ最早从烟草中分离得到[11]ꎮ本研究综述小麦ERF亚族转录因子在逆境胁迫应答中的作用及可能机制ꎬ以期为深入研究小麦ERF亚族的分子功能及其抗逆遗传改良提供参考ꎮ1㊀ERF亚族转录因子的特征AP2/EREBP是一个庞大的基因家族ꎬ因含有60~70个氨基酸组成的AP2/EREBP结构域而得名[12]ꎮ在拟南芥中ꎬSakuma等[13]根据序列相似性和AP2/EREBP结构域的数量ꎬ将其分为5个亚族 ERF亚族㊁DREB亚族㊁RAV亚族㊁AP2亚族和其他ꎮAP2亚族含有2个AP2/EREBP结构域ꎬ主要在细胞生长发育过程中发挥调控作用[14-15]ꎻRAV亚族含有1个AP2/EREBP结构域和1个B3结构域ꎬ在乙烯㊁油菜素内酯和胁迫响应过程中发挥重要作用[14ꎬ16-17]ꎻDREB亚族和ERF亚族均属于EREBP型转录因子ꎬ都仅含1个AP2/EREBP结构域ꎬ在调控植物细胞发育及对病原菌㊁干旱㊁高盐㊁低温㊁激素等胁迫的应答反应中发挥作用[14ꎬ18-22]ꎬ但AP2/EREBP结构域的第14位和第19位氨基酸存在差异ꎬDREB亚族分别是缬氨酸和谷氨酸ꎬ而ERF亚族则分别是丙氨酸和天冬氨酸ꎮERF亚族转录因子还可与乙烯诱导顺式作用元件GCC-box结合ꎬ抵御植物逆境胁迫[23-26]ꎮ2㊀小麦ERF亚族转录因子鉴定分析目前正式命名的小麦ERF亚族转录因子基因只有8个ꎬ而从全基因组水平分析ꎬ符合ERF亚族特征的基因则有上百个之多[27-28]ꎮZhuang等[29]在全基因组水平鉴定到47个小麦ERF亚族转录因子成员ꎬ根据拟南芥和水稻同源基因分类ꎬ将其分为B1㊁B2㊁B3㊁B4和B6五个亚组ꎮ随着二代测序技术及小麦基因组学研究的飞速发展ꎬRiaz等[30]鉴定到138个ERF亚族转录因子成员ꎬ分为6个亚组ꎬ主要定位于细胞核ꎻMagar等[2]鉴定到238个成员ꎬ其中ꎬ174个基因不含内含子㊁3个基因含3个内含子ꎬ鉴定数量有了质的飞跃ꎮ李世姣等[31]利用隐马尔可夫模型文件检索中国春数据库ꎬ筛选到229条小麦ERFsꎬ通过分析A/B/D同源关系ꎬ将其归为96个ERF亚族成员ꎮ此外ꎬFaraji等[32]在硬粒小麦中鉴定到185个ERF亚族成员ꎮ3㊀小麦ERF亚族转录因子参与逆境胁迫的分子机制3.1㊀非生物胁迫越来越多的研究表明ꎬ大部分小麦ERF亚族成员在对高盐㊁干旱㊁低温㊁重金属等非生物胁迫抗性调控中发挥重要作用(表1)ꎮ位于小麦7A染色体上的TaERF1ꎬ通过结合GCC-box和DRE/CRT元件㊁激活启动子区含GGCC-box的PR蛋白(pathogenesisrelatedpro ̄teinꎬ病程相关蛋白)㊁磷酸化TaMAPK1等方式ꎬ参与干旱㊁高盐㊁低温等代谢途径ꎬ过表达TaE ̄RF1可显著提高转基因拟南芥对干旱㊁高盐和低温的耐受能力[33]ꎮTaERF2基因受干旱㊁高盐㊁低温和湿害强烈诱导ꎬ过表达后可提高转基因拟南芥对干旱㊁低温等非生物胁迫的抗性[34-35]ꎮTaERF3通过特异结合GCC-boxꎬ正向调控LEA3㊁GST6等抗逆相关基因表达ꎬ过表达TaERF3可增加叶片脯氨酸㊁叶绿素含量ꎬ降低过氧化氢含量ꎬ增强小麦对高盐㊁干771㊀第2期㊀㊀㊀㊀㊀㊀崔德周ꎬ等:小麦ERF亚族转录因子参与逆境胁迫的研究进展旱胁迫的耐受能力ꎻ而经病毒诱导基因沉默(VIGS)干扰后的小麦植株则表现为盐和干旱敏感[36]ꎮTaERF4是一个具有EAR基序的转录抑制因子ꎬ过表达TaERF4抑制AtNHX1㊁AtNHX2等钠离子转运相关基因的表达ꎬ通过非ABA依赖的信号通路降低拟南芥耐盐性[37]ꎮTaERF5受高盐㊁渗透胁迫㊁乙烯㊁ABA和茉莉酸甲酯诱导表达ꎬ遗传学证据显示ꎬTaERF5-B过表达增强了转基因水稻的耐盐性[38]ꎮ叶片TaERF7表达受温度和日照调控ꎬ进而影响小麦百农不育系育性[27]ꎮTaE ̄RF8-2D的表达受高盐胁迫诱导持续上调ꎬ其分子机制有待进一步研究[39]ꎮZhu等[40]研究发现ꎬTaPIEP1/TaPIE1通过激活乙烯合成基因ꎬ增强小麦对冷害胁迫的抗性ꎮTaERFL1a受低温㊁高盐㊁干旱㊁ABA等胁迫诱导表达ꎬVIGS干扰该基因降低小麦对干旱胁迫的抗性[41]ꎮDu等[42]研究表明ꎬTaERF87通过与Ta ̄AKS1互作ꎬ协同增强TaP5CS1和TaP5CR1的表达ꎬ提高脯氨酸的生物合成ꎬ进而增强小麦抗旱性ꎮ此外ꎬ在硬粒小麦(TriticumturgidumL.sub ̄sp.durum)中ꎬTdERF1响应高盐和干旱胁迫[43-44]ꎬTdSHN1受高盐㊁干旱㊁低温㊁ABA和重金属胁迫强烈诱导表达ꎬ过表达TdSHN1可显著提高酵母对非生物胁迫的耐受性[45-46]ꎮ㊀㊀表1㊀参与非生物胁迫的小麦ERF亚族转录因子基因结合元件分子功能参考文献TaERF1GCC-box/DRE/CRT提高拟南芥对干旱㊁高盐和低温的耐受能力[33]TaERF2GCC-box/ERE提高拟南芥对干旱㊁低温的耐受能力ꎬ响应小麦湿害胁迫[34-35]TaERF3GCC-box提高小麦对高盐㊁干旱胁迫的耐受能力[36]TaERF4 降低拟南芥对高盐胁迫的耐受能力[37]TaERF5 提高水稻对高盐胁迫的耐受能力[38]TaERF6 与TdERF1高度同源[47]TaERF7GCC-box/DRE/CRT控制百农不育系小麦育性[27]TaERF8-2D 高盐胁迫下持续上调表达[39]TaPIEP1/TaPIE1GCC-box提高小麦对冷害胁迫的耐受能力[40]TaERFL1a 提高小麦对干旱胁迫的耐受能力[41]TaERF87GCC-box/E-box提高小麦对干旱胁迫的耐受能力[42]TdERF1GCC-box/DRE响应高盐和干旱胁迫[43-44]TdSHN1GCC-box/DRE提高酵母对高盐㊁干旱㊁重金属胁迫的耐受能力[45-46]3.2㊀生物胁迫小麦生育期遭遇的生物胁迫主要包括病原菌侵染和植食性害虫啃食ꎬ而小麦响应生物胁迫的转录因子研究主要集中在前者ꎮ研究表明ꎬERF亚族转录因子可以提高小麦对病原菌的抗性(表2)ꎮTaERF1的表达受白粉病菌侵入的诱导ꎬ过表达TaERF1可提高转基因拟南芥对真菌㊁细菌病害的抗性[33]ꎮ病原菌侵染下ꎬTaERF3可激活防御基因表达ꎬ其中ꎬ在白粉病菌侵染早期主要通过水杨酸途径ꎬ而在镰刀菌㊁纹枯病菌侵染晚期主要通过乙烯/茉莉酸途径[48]ꎮ过表达TaPIEP1/TaPIE1可大量激活下游防卫基因的表达ꎬ进而提高小麦对纹枯病㊁根腐病的抗性[40ꎬ49]ꎮChen等[50]从中间偃麦草中分离了一个新的ERF基因TiERF1ꎬ该基因主要通过依赖乙烯的信号转导途径激活病程蛋白相关基因的表达ꎬ提高转基因小麦对纹枯病的抗性ꎮ㊀㊀表2㊀参与生物胁迫的小麦ERF亚族转录因子基因结合元件分子功能参考文献TaERF1GCC-box/DRE/CRT提高拟南芥对真菌㊁细菌病害的抗性[33]TaERF3GCC-box参与对小麦白粉病菌㊁镰刀菌㊁纹枯病菌的防卫[48]TaPIEP1/TaPIE1GCC-box提高小麦对纹枯病㊁根腐病的抗性[40ꎬ49]TiERF1GCC-box提高小麦对纹枯病的抗性[50]871山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第56卷㊀4㊀展望近年来ꎬ极端天气频发ꎬ低温㊁干旱㊁高盐等非生物胁迫及病原菌侵染等生物胁迫严重制约小麦的安全生产ꎬ给粮食安全带来了严峻挑战ꎮ作为AP2/EREBP转录因子超家族的一个亚族ꎬERF类转录因子连接上游信号和下游功能基因ꎬ在小麦抵御逆境胁迫中具有关键作用ꎮ基因组学分析表明ꎬ小麦ERF亚族基因有200余个ꎬ但目前只克隆鉴定了部分基因ꎬ并且已经投入育种应用的转基因材料也鲜有报道ꎬ后续仍需进一步深入挖掘具有重要抗逆功能的ERF亚族基因ꎮ此外ꎬ目前的研究多集中在转录因子基因的克隆及转录调节功能的鉴定分析上ꎬERF亚族转录因子自我调节的模式及其同其他转录因子间的相互作用关系尚未完全了解ꎮ相信随着基因组学㊁分子生物学技术的发展ꎬ对小麦ERF亚族转录因子的抗逆网络解析会更加深入ꎬ从而为小麦抗逆遗传改良提供更坚实的理论依据和更强有力的基因工具ꎮ参㊀考㊀文㊀献:[1]㊀GahlautVꎬJaiswalVꎬKumarAꎬetal.Transcriptionfactorsinvolvedindroughttoleranceandtheirpossibleroleindevelo 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ERF转录因子
一、乙烯信号转导通路乙烯是一种非常重要的植物激素。
乙烯在植物生长发育和适应生物和非生物胁迫反应中起到了非常重要的作用。
种子萌发、开花、叶片衰老、果实成熟、根瘤、细胞程序性死亡以及对非生物胁迫和病原体入侵的反应等生理过程都与乙烯密切相关。
乙烯信号转导通路的最上游是位于内质网膜上的5个乙烯受体,分别被称为:ETR1、ETR2、ERS1、ERS2和EIN4。
位于乙烯受体下游的是一个负调节因子,蛋白激酶CTR1。
CTR1蛋白激酶通过与乙烯受体相结合定位在内质网上。
在没有乙烯存在的条件下,CTR1和受体的结合会协同抑制下游乙烯信号途径。
在CTR1负调控因子下游是一个正调控因子EIN2。
EIN2基因发生功能缺失突变会产生乙烯不敏感表型,显示出EIN2在乙烯信号通路中起到了核心作用。
EIN2的半衰期很短,两个F-Box蛋白ETP1和ETP2负责调控EIN2的泛素化降解。
位于EIN2下游的是正调控的转录因子家族EIN3及5个EILs。
研究发现,他们同样是受泛素化途径降解的,负责调控EIN3及EILs泛素化降解的F-Box蛋白是EBF1和EBF2。
EBF5是一种外切核酸酶它能够通过促进EBF1和EBF2的mRNA的降解来拮抗这两个蛋白对EIN3的负反馈调控。
EIN3和EIL1通过启动乙烯信号转导途径示意图转录级联反应来激活下游乙烯响应基因的表达。
二、乙烯响应因子(ethylene response factor、ERF)的结构特点及生物信息学分析ERF基因家族是一个很大的转录因子家族,属于AP2/ERF转录因子超家族。
Ohme-Takagi和Shinshi研究发现,GCC box是植物乙烯响应的DNA序列元件;同时他们在烟草(Nicotiana tabacuum)中发现了能特异性结合GCC box元件的数个乙烯响应元件结合蛋白(EREBPs),并发现,EREBPs同GCC元件相结合的结构域是59个保守的氨基酸残基。
ERF转录因子在农作物中的研究进展
农业资讯NONGYEZIXUN农业信息ERF转录因子在农作物中的研究进展林珊珊(福建省种子管理总站,福建福州 350000)摘 要 ERF转录因子是调控乙烯信号转导途径的转录因子,参与植物对生物和非生物胁迫的响应机制,在植物的生长发育过程中起到不可或缺的作用。
因此,阐述ERF转录因子的结构特征以及在抗逆性方面上的研究进展,能够为培育农作物抗逆新品种提供重要的参考依据,对改进农作物抗逆性具有指导意义。
关键词 ERF转录因子;转基因;抗逆性植物的萌芽、生长发育及其繁殖极易受到外界环境的影响,因此,植物通过在生理和生化水平上进化出各种响应环境机制来适应环境。
ERF蛋白最初是在与逆境响应基因的启动区相结合的转录因子中鉴定出来的,诸多研究表明ERF基因能够响应生物胁迫及非生物胁迫。
ERF转录因子是参与乙烯信号转导途径的乙烯响应因子,可通过对乙烯响应基因进行正负调控影响乙烯水平,从而应对外界环境的刺激。
此外,与胁迫相关的激素如茉莉酸和脱落酸等也能够诱导ERF基因表达[1]。
因此接下来介绍ERF转录因子在抗逆基因工程方面的研究进展,为农作物抗逆基因的筛选范围提供了一个大方向。
1 ERF转录因子的结构特征ERF转录因子是AP2/ERF转录因子超家族中最主要的家族成员,仅包含一个非常保守的AP2/ERF结构域,普遍分布在所有农作物中[2],目前已经在水稻、小麦、番茄等农作物中得到功能上的验证。
ERF转录因子根据其激活或阻遏特定靶基因的转录功能分成激活因子和抑制因子两大类。
大多ERF抑制因子都含有EAR结构域,这些包含EAR结构域的转录因子都具有转录抑制活性。
但是去除EAR结构域的ERF转录因子则表现出转录激活活性,例如ERF3基因去除EAR结构域编码区后在番茄的过量表达能够激活抗病基因表达,从而提高植物的抗病性[3]。
然而植物转录因子的激活域并没有特定的保守序列,往往是集中在富含酸性氨基酸的区域。
2 ERF转录因子对生物抗性的作用诸多研究表明,ERF转录因子可通过对农作物中的抗病基因表达的正负调控来提高作物对病菌和病毒的抗性[3-4]。
水稻erf 结构域
水稻erf 结构域
水稻中的ERF(Ethylene Responsive Factor)结构域是一个重要的转录因子结构域,通常与植物的乙烯响应有关。
乙烯是一种植物激素,对植物的生长发育、逆境响应等多个方面发挥重要作用。
ERF结构域是一个AP2/ERF超家族的一部分,包含一个或多个AP2/ERF域,这些域通常由约60个氨基酸组成,包含一个由18个氨基酸组成的β-折叠和一个由α-螺旋组成的C端。
在水稻中,ERF结构域通常由多个基因编码,这些基因被划分为不同的亚族。
这些基因可以通过与乙烯响应元件(ERE)结合来调控植物对乙烯的响应。
ERF转录因子可以通过与ERE结合来激活或抑制乙烯响应基因的表达,从而调控植物的生长发育、逆境响应等方面。
除了乙烯响应外,ERF结构域还可能参与其他生物过程的调控,例如植物对病原菌的响应、对干旱和盐碱等逆境的适应等。
因此,对水稻中ERF结构域的研究不仅有助于深入了解植物对乙烯响应的分子机制,还有助于揭示植物适应环境的复杂机制。
小麦ERF亚族转录因子参与逆境胁迫的研究进展
小麦ERF亚族转录因子参与逆境胁迫的研究进展
崔德周;王丽丽;陈祥龙;李永波;黄琛;隋新霞;楚秀生;樊庆琦
【期刊名称】《山东农业科学》
【年(卷),期】2024(56)2
【摘要】小麦是中国三大粮食作物之一,其生长发育过程中会受到多种逆境胁迫的影响。
AP2/EREBP是植物特有的一个庞大的转录因子超家族,普遍参与生长发育和逆境胁迫应答等生物学进程。
ERF类转录因子是AP2/EREBP转录因子超家族的一个亚族。
本研究结合国内外相关研究进展,简要综述了小麦ERF亚族转录因子的结构特征与分布,重点阐述近年来小麦ERF亚族转录因子响应高盐、干旱、低温、重金属、病原菌侵染等逆境胁迫的功能和机制研究进展,最后展望了ERF亚族转录因子的研究方向和应用前景。
【总页数】5页(P176-180)
【作者】崔德周;王丽丽;陈祥龙;李永波;黄琛;隋新霞;楚秀生;樊庆琦
【作者单位】山东省农业科学院作物研究所/小麦玉米国家工程研究中心/农业农村部黄淮北部小麦生物学与遗传育种重点实验室/山东省小麦技术创新中心/济南市小麦遗传改良重点实验室;山东省林草种质资源中心;山东鲁研农业良种有限公司【正文语种】中文
【中图分类】S512.1
【相关文献】
1.ERF转录因子在植物抗逆境胁迫的研究进展
2.一个小麦AP2/ERF转录因子家族单独亚族基因的克隆及分析
3.棉花中ERF亚族转录因子抗逆育种潜力的研究进展
4.番茄2个ERF-B1亚族转录因子基因的克隆及其对生物和非生物胁迫响应
5.水稻AP2/ERF转录因子参与逆境胁迫应答的分子机制研究进展
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ERF转录因子StERF1的生物信息学分析
从 生 物 信 息 资 源 中 寻找 有 重 要 功 能 的 新 EF基 因 ,命 名 为 SE F ,用 生 物 信 息 学 方 法 对 其 主要 理 化 性 R tR 1
质 和 功 能 进 行 分 析 预 测 ,为 下 一 步 的 试 验 策 略 提 供 参 考 。SE F 编 码 一 个 由 2 7 氨 基 酸 组 成 的相 对 分 子 质 量 tR 1 4个 为 2 0 、 7 3 9的 蛋 白质 ,该 蛋 白 具 有 一 个 由 5 2 8个 氨 基 酸 残 基 组 成 的保 守 E F结 构 域 (1 ̄19 ,在 N端 有 一 个 可 R 12 6) 能 起 激 活 作 用 的 酸性 结 构 域 ,在 C端 有 一 个可 能作 为 核 定 位 信 号 (L) 碱性 结 构域 ,它 可 以结 合 G C b x顺 式 NS 的 C —o
c nansa c n e v d ERF DNA id n o i 1 21 9. Daa a e a ay i s g e t d t a he d d c d o ti o sre bn i g d man(1 —6 ) t b s n lss u g se h tt e u e
作 用 元 件 , 推测 SE F t R 1是 一 个 定 位 在 核 内发 挥 转 录 激 活 作 用 的 E F转 录 因 子 。它 可 能在 调 控 植 物 乙烯 信 号 途 R
径 、生物 胁 迫 或 非 生 物 胁迫 应答 过程 发 挥 重 要 作 用 。 关键词
分类号
SEF tR 1;转 录 因 子 ;生 物 信 息 学
E F 录 因子 S R 生 物 信 息 学 分 析 ① R 转 t F的 E 1
周 金 鑫 宁祖 林 田 云。 胡 新 文 ) ②
erf转录因子结合位点
erf转录因子结合位点
ERF(Ethylene Responsive Factor)转录因子是一类在植物中广泛存在的转录因子,它们能够响应乙烯信号并调节下游基因的表达。
ERF 转录因子通常具有一个保守的DNA 结合结构域,称为ERF 结构域,该结构域能够识别并结合特定的DNA 序列。
ERF 转录因子结合位点通常是一段特定的DNA 序列,该序列包含一个或多个ERF 结构域结合位点。
这些结合位点通常具有特定的碱基组成和排列方式,能够与ERF 转录因子的ERF 结构域相互作用,从而调节下游基因的表达。
ERF 转录因子结合位点的具体序列和结合方式可能因不同的ERF 转录因子而异。
一些常见的ERF 转录因子结合位点包括GCC-box、DRE (Dehydration Responsive Element)和CRT(C-repeat Element)等。
研究ERF 转录因子结合位点对于理解植物对乙烯信号的响应机制以及植物生长发育和胁迫响应的调控机制具有重要意义。
通过鉴定和研究ERF 转录因子结合位点,可以深入了解ERF 转录因子如何调节下游基因的表达,并为植物基因工程和育种提供重要的靶点。
乙烯响应转录因子
乙烯响应转录因子1 什么是乙烯响应转录因子?乙烯响应转录因子(Ethylene Response Factor,ERF)是一类重要的转录因子,参与了植物对乙烯的响应和植物生长发育过程中的调控。
ERF家族成员普遍存在于植物的各个组织中,在组织发生、花期调控、抗逆应答等方面发挥着重要的作用。
2 ERF基本结构ERF家族成员具有相似的结构,其N端包含一个DNA结合结构域(DNA binding domain,DBD),中间部分是一个高度保守的ERF域,可与ETA(ethylenes responsive element-binding factors,返应乙烯元件结合因子)结合。
C端是一段富含甘氨酸和丝氨酸残基的多聚性蛋白结构。
ERF家族成员的结构具备特异性并对相应靶基因起到最好的激活作用。
3 ERF功能与调控根据ERF家族成员不同的功能特点,可将其分为两大类:一类参与逆境响应,如干旱、高盐、低温等胁迫,并参与植物的抗性与适应性的调控,例如耐盐基因CNgene1(CsERF006)在盐胁迫情况下表达受到激活。
另一类参与植物的生长发育调控,例如ETS基因调控花器官发展以及EDF1/2基因与叶片衰老有关。
其中,ERF基因在植物的逆境胁迫响应中具有重要的作用。
许多实验表明,逆境胁迫条件下,ERF基因表达水平得到显著提升。
大量的分子生物学实验表明,在剧烈逆境条件下启动ERF基因以应对各种胁迫是与植物生存的关键因素之一。
4 ERF研究进展目前,ERF家族成员系统、深度的研究得到了越来越多的关注,ERF家族成员的生物学功能不断地被发掘和研究。
许多研究利用生物技术手段,成功地定位了ERFs在染色体上的位置,鉴定了其启动子和蛋白质互作网络,为进一步研究ERFs序列和功能研究提供了基础性的实验数据。
在逐渐加深对ERF家族成员功能的认识的同时,目前很多研究也关注于ERFs家族成员与植物异烟酸酯信号通路的交叉关系。
ERF家族成员的研究不仅对于揭示植物生长发育的基本调控机制有着重要意义,同时也为了基因工程改良植物抗旱、抗寒、耐盐等重要胁迫条件提供了一定的参考。
甜橙ERF B3亚组转录因子的鉴定和表达分析
引文格式:李玲,刘新军,张保莲,等.甜橙E R F B 3亚组转录因子的鉴定和表达分析[J ].赣南师范大学学报,2022,43(3):77-84.甜橙E R F B 3亚组转录因子的鉴定和表达分析*李 玲1,2,刘新军1,2,张保莲1,张斯羽1,欧阳智刚1,2,†(1.赣南师范大学生命科学学院;2.国家脐橙工程技术研究中心,江西赣州 341000)摘 要:E R F 转录因子是A P 2/E R F 转录因子大家族的一个主要亚家族,E R F 转录因子进一步分为包含B 3(I X )在内的6~7个亚组.研究表明E R F B 3亚组转录因子在植物抗病反应中发挥重要作用.文章在甜橙基因组数据库中筛选了21个C s E R F B 3亚组转录因子㊂通过分析感染黄龙病的柑橘转录组数据发现,有9个E R F B 3亚组转录因子在道县野橘㊁宜昌橙和/或甜橙中有差异表达㊂在外源激素诱导的表达分析中发现6个甜橙E R F B 3亚组转录因子有差异表达.进一步研究发现甜橙E R F B 3亚组转录因子为核定位蛋白,且具有转录激活活性.这为研究甜橙E R F B 3亚组转录因子在植物抗病反应中的功能分析提供理论基础.关键词:甜橙;E R F 转录因子;黄龙病;表达分析中图分类号:S 666 文献标志码:A 文章编号:2096-7659(2022)03-0077-08植物在生长发育过程中一直遭受干旱㊁高盐㊁低温及病虫害等各种生物和非生物胁迫的影响[1].在长期的协同进化中,植物形成了一个复杂㊁有效的信号传导网络,以抵抗外界不利环境[2].转录因子作为反式作用元件,通过与靶标基因上游的顺式作用元件特异性结合来调节基因表达,以转录水平的调控方式来精确地应答胁迫反应[3].近年来研究显示A P 2/E R F (A P E T A L A 2/e t h y l e n e -r e s p o n s i v e e l e m e n t b i n d i n g f a c t o r )㊁b Z -I P (B a s i c -d o m a i n l e u c i n e -z i p pe r )㊁WR K Y ㊁MY B ㊁N A C (N AM ㊁A T A F 1/2和C U C 2)㊁b H L H (B a s i c h e l i x -l o o p -h e l i x )㊁N F -Y (N u c l e a r F a c t o r Y )和C AMT A (C a M -b i n d i n g t r a n s c r i p t i o n a c t i v a t o r )等转录因子参与了调控植物多种逆境胁迫反应[4-11].其中A P 2/E R F 转录因子是最大的家族之一.A P 2/E R F 转录因子编码的蛋白含有高度保守的A P 2结构域.A P 2结构域包含58个或59个氨基酸,与靶标D N A 序列具有高亲和力.根据A P 2结构域的数量和特征,A P 2/E R F 家族可分为四个亚家族,包括A P 2(A P E T A L A 2)㊁R A V (r e l a t e d t o A B I 3/V P 1)㊁R E B (脱水反应性元素结合蛋白,d e h y d r a t i o n -r e s po n s i v e e l e m e n t b i n d i n g p r o t e i n )和E R F (乙烯反应因子,e t h y l e n e -r e s po n s i v e f a c t o r )[12].A P 2家族含2个A P 2/E R E B P 结构域,E R F 和D R E B 家族仅含1个A P 2/E R E B P 结构域,这两个家族均又进一步细分为6或7个亚组(A 1-A 6;B 1-B 6或-B 7).R A V 家族除含有一个A P 2/E R E B P 结构域外,还包含1个B 3结构域[13-14].E R F 家族是A P 2/E R F 转录因子大家族中的一个主要亚家族,E R F 蛋白可以与许多乙烯调节的防御基因启动子区域G C C 框(A G C C G C C )的顺式元件特异性结合,起转录激活因子或阻遏物的作用[15].E R F转录因子广泛分布于植物中,N a k a n o 等(2006)在拟南芥(A r a b i d o p s i s t h a l i a n a )和水稻(O r yz a s a t i v a )基因组中分别鉴定了65和77个E R F 转录因子[16-17].最近几年随着多种植物基因组测序完成,相继在凤梨(A n a n a s c o m o s u s )㊁芹菜(A p i u m g r a v e o l e n s )㊁二穗短柄草(B r a c h y p o d i u m d i s t a c h yo n )㊁甘蓝型油菜(B r a s -s i c a n a p u s )㊁棉花(G o s s s y p i u m r a i m o n d i i )㊁苹果(M a l u s ˑd o m e s t i c a )㊁甘蔗(S a c c h a r u m s po n t a n e u m )㊁番茄(S o l a n u m l y c o p e r s i c u m )㊁绿豆(V i g n a r a d i a t a )㊁葡萄(V i t i s v i n i f e r a )和玉米(Z e a m a ys )等中筛选和鉴定了E R F 转录因子[18-28].E RF 亚家族不同亚组中的成员具有不同的功能.研究表明E R F B 3亚组转录因子在植物防御病菌的反2022年 赣南师范大学学报 ɴ.3第三期 J o u r n a l o f G a n n a n N o r m a l U n i v e r s i t y M a y.2022*收稿日期:2021-03-24 D O I :10.13698/j.c n k i .c n 36-1346/c .2022.03.017 基金项目:江西省重点研发计划项目(20171A C F 60022) 作者简介:李玲(1997-),女,江西新余人,赣南师范大学生命科学学院硕士研究生,研究方向:园艺植物病理. †通讯作者:欧阳智刚(1984-),男,江西新余人,赣南师范大学生命科学学院讲师,博士,研究方向:植物病理学.87赣南师范大学学报2022年应中发挥重要作用.本文根据E R F B3亚组转录因子的结构特点,在甜橙基因组数据库中筛选和鉴定了21个E R F B3亚组转录因子,进一步分析了甜橙E R F B3亚组转录因子受黄龙病菌和外源激素的诱导表达情况.同时研究了甜橙E R F B3亚组转录因子的亚细胞定位及转录激活活性.本文的研究可以为甜橙E R F B3亚组转录因子的功能分析提供理论参考.1材料与方法1.1供试材料和前处理本试验所用柑橘材料为赣南早(C i t r u s s i n e n s i s O s b e c k c v.G a n n a n z a o)幼苗,均由赣南师范大学国家脐橙工程与技术研究中心提供.激素诱导处理:分别用1mM S A,100μM J A,100μM A B A喷雾处理赣南早幼苗,对照为等量喷无菌水,恒温保湿培养[29].分别于0h㊁24h和48h后采集样品叶片,-80ħ下保存. 1.2植物叶片总R N A提取将植物叶片置于液氮中磨碎,每0.5g叶片加入1m L T r i z o l,震荡混匀,并室温放置5m i n,4ħ10000g 离心10m i n,取上清,每使用1m L T r i z o l加入0.2m L氯仿,剧烈振荡15s,于室温放置5m i n.4ħ10000g 离心10m i n,取上清,重复加入0.2m L和0.5m L氯仿萃取2次.离心后把水相转移到新管中,等体积加入异丙醇,于室温放置10m i n.4ħ10000g离心10m i n,弃上清.用75%乙醇洗涤R N A沉淀.每使用1m L T r i z o l至少加1m L75%乙醇.4ħ不超过5000g离心5m i n,弃上清.室温放置干燥5m i n,再加入20μL~ 30μL无R N a s e的水溶解R N A,置于-80ħ下保存.1.3柑橘E R F B3亚组转录因子的系统筛选从柑橘基因组数据库(h t t p s://w w w.c i t r u s g e n o m e d b.o r g/)下载甜橙全基因组1.0(f t p://f t p.b i o i n f o. w s u.e d u/w w w.c i t r u s g e n o m e d b.o r g/C i t r u s_s i n e n s i s/C.s i n e n s i s_H z a u_v1.0_g e n o m e/a n n o t a t i o n/)蛋白组数据.利用HMM E R3.1b2软件包中的h mm b u i l d程序对E R F结构域种子序列(P F04404)建立隐马尔可夫模型,利用h mm s e a r c h程序在甜橙蛋白组数据中进行搜索(E-v a l u e<10-3),获得含E R F结构域蛋白.将挖掘出的所有含E R F结构域蛋白和已报道的893条真核及原核生物中的含E R F结构域蛋白序列一起利用h mm a l i g n程序基于P F04404的隐马尔可夫模型进行多重序列比对,得到比对序列.利用M E G A7软件打开比对文件,并人工调整.利用S m a r t m o d e l s e l e c t i o n软件对比对序列最适的最大似然法建树模型进行检测.根据最适建树模型,利用P h y M L3.0对比对文件建立系统发生关系,利用外群法确定树根.系统发生树上,与植物含E R F结构域序列形成单系群的甜橙含E R F结构域序列为甜橙的E R F B3亚组转录因子.1.4甜橙E R F B3亚组转录因子亚细胞定位以甜橙c D N A为模板,根据数据库序列设计引物,特异性扩增目的基因全长序列(引物见附表1),将P C R产物插入瞬时表达载体p G R106中,分别命名为p G R106:C s E R F B3-9/10/13/20/21并转入农杆菌G V3101中.将携带p G R106:C s E R F B3-9/10/13/20/21的农杆菌在含有50m g/L卡那霉素(K a n)㊁50m g/L氯霉素(C h o l)和25m g/L庆大霉素(G e n)的Y E P平板上划线,放置于28ħ恒温培养箱内培养2d,并采用菌落P C R验证转化结果.按1:50~1:100的比例接种于10m L含相同抗生素的Y E P中,28ħ㊁220r p m培养8h~12h扩大培养至O D600=0.8~1.2,4000r p m,4ħ离心10m i n收集菌体,弃上清,用含有乙酰丁香酮(50mm o l/L,A S)的侵染液(1mm o l/L M g C l2,1mm o l/L M E S,p H5.6)悬浮菌体,使其O D600=1.0~1.5,室温放置3h后,以携带p G R106:G F P载体的G V3101为阴性对照,用不带针头的1m L 针管抵住烟草叶片的背面,注入叶片,48h后在激光共聚焦显微镜下观察蛋白定位.1.5甜橙E R F B3亚组转录因子的转录活性分析以甜橙c D N A为模板,根据数据库序列设计C s E R F B3-9/10/13/20/21引物特异性P C R扩增其全长序列(引物见附表1),将P C R产物酶切插入载体p G B K T7中.将重组质粒和p G B K T7空白载体分别转入酵母菌株Y R G-2中.酵母转化方法:用Y P D A固体培养基(10g/L Y e a s t e x t r a c t,20g/L T p y p t o n e,20g/L A g a r,2%d e x t r o s e g l u c o s e)培养酵母菌株2d~3d后,刮取25μL酵母菌落悬于1m L d d H2O中,高速离心5s后,用1m L100mM L i A c悬浮沉淀;30ħ水浴中温育5m i n,高速离心5s,弃上清;在沉淀物中按顺序分别加入以下液体:240μL P E G(50%w/v,重量/体积),36μL L i A c(1.0M)㊁50μL s s D N A(2.0m g/m L)㊁5μL p l a s m i d D N A(100n g至5μg)㊁20μL d d H2O;涡旋1m i n,42ħ温育40m i n后;12000r p m离心10s,弃去上清,用200μL~400μL d d H2O重悬沉淀,取适量涂于S D/-T r p培养基上,30ħ培养2d.挑单菌落分别划线于S D/-T r p/-H i s培养基上,2d后观察转录因子活性结果.1.6 R T -qP C R 按S u p e r S c r i p t I I I K i t (I n v i t r o ge n ,中国上海)方法对提取的R N A 进行反转录合成c D N A.根据数据库中的E R F B 3亚组转录因子的序列设计R T -qP C R 特异性引物(引物见附表1),以基因C i t E F 1作为内参.每个R T -q P C R 反应体系包含12.5μL S Y B R P r e m i x E x T a qT M ㊁1μL 正反向引物(10μm o l /L )㊁1μL c D -N A 模板和9.5μL R N A s e -f r e e 水.反应程序为94ħ5m i n ;94ħ45s ,58ħ45s ,72ħ45s ,34个循环.图1 甜橙(C .s i n e n s i s )㊁拟南芥(A .t h a l i a n a )㊁番茄(S .l y c o p e r s i c u m )㊁甘蔗(S .s p o n t a n e u m )㊁玉米(Z .m a y s s s p )和葡萄(V .v i n i fe r a )E R F B 3亚组转录因子氨基酸序列系统进化树2 试验结果2.1 甜橙E R F B 3亚组转录因子系统进化分析本文在柑橘数据库中筛选和鉴定了21个甜橙E RF B 3亚组转录因子.根据染色体上的位置,我们将其分别命名为C s E R F B 3-1~21(对应的G e n eI D 分别为:C s 1g 03250_1㊁C s 1g03260_1㊁C s 1g 03270_1㊁C s 1g 03280_1㊁C s 1g03290_1㊁C s 1g 03300_1㊁C s 1g 03310_1㊁C s 2g 05270_1㊁C s 2g 05280_1㊁C s 5g 08360_1㊁C s 5g 23980_1㊁C s 5g 24010_1㊁C s 5g 29870_1㊁C s 5g 29880_1㊁C s 5g 29890_1㊁C s 5g 29900_1㊁C s 8g 12780_1㊁C s 9g 10680_1㊁C s 9g 13610_1㊁C s 9g13620_1㊁C s 9g13630_1).将C s E R F B 3亚组转录因子蛋白序列与拟南芥㊁甘蔗㊁番茄㊁玉米和葡萄共149个E R FB 3亚组转录因子蛋白序列构建亲缘关系进化树(如图1所示).E R F B 3亚组转录因子被分为4组,其中第1组中包括12个甜橙㊁4个拟南芥㊁5个甘蔗㊁12个番茄㊁5个玉米和6个葡萄E R F B 3亚组转录因子;第2组包括1个甜橙㊁1个甘蔗㊁1个番茄㊁1个玉米和1个葡萄E R F B 3亚组转录因子;第3组分别包括4个甜橙㊁10个拟南芥㊁5个甘蔗㊁11个番茄㊁2个玉米和20个葡萄E R F B 3亚组转录因子;第4组4个甜橙㊁3个拟南芥㊁5个番茄㊁12个甘蔗㊁10个玉米和14个葡萄E R F B 3亚组转录因子.此外我们发现几个甜橙E R F B 3亚组转录因子与番茄已报道的具有抗病功能的转录因子聚类关系比较近,比如C s E R F B 3-10和番茄S l E R F .A 1㊁C s E R F B 3-17和番茄S l E R F .C 3㊁C s E R F B 3-19与C s E R F B 3-20和S l E R F .B 4㊁C s E R F B 3-21和S l E R F .A 4以及C s E R F B 3-13和拟南芥A t E R F 93/94等.图2 甜橙E R F B 3亚组转录因子在不同组织中的表达分析2.2 甜橙E R F B 3亚组转录因子在不同组织中的表达特征我们在柑橘基因组数据库(h t t p://c i t r u s .h z a u .e d u .c n /o r a n ge /)中下载甜橙E R F B 3亚组转录因子在愈伤组织㊁花㊁叶和果实中的表达数据进行分析,发现甜橙E R F B 3亚组转录因子在不同组织中的表达模式不一样(如图2所示.C a l -l u s :愈伤组织;F l o w e r :花;L e af :叶;F r u i t :果实).C s E R F B 3-3/7/8/11/12/14/15/16/17/18在愈伤组织㊁花㊁叶和果实这四个组织中表达均很低.在其余的C s E R F B 3亚组转录因子中,除了C s E R F B 3-19之外,其他C s E R F B 3亚组转录因子均在果实中表达最高,叶片中的表达量次之.2.3 甜橙E R F B 3亚组转录因子在感染黄龙病不同柑橘品种的表达特征甜橙E R F B 3亚组转录因子对黄龙病菌有着不同的响应,相同基因在不同的品种中也存在差异表达.我们根据不同品种感染黄龙病的转录组数据[30],分析了柑橘E R F B 3亚组转录因子在道县野橘(C .d a o x i a n e n s i s )㊁宜昌橙(C .97第3期 李 玲,刘新军,张保莲,等 甜橙E R F B 3亚组转录因子的鉴定和表达分析i c h a n g e n s i s )和甜橙中应答黄龙病侵染的表达特征(如图3所示.F P KM.C D-H L B :道县野橘黄龙病患病植株F P KM 值;F P KM.C D-MO C K :健康道县野橘F P KM 值;F P KM.C I -H L B :宜昌橙黄龙病患病植株F P -KM 值;F P KM.C D-MO C K :健康宜昌橙F P KM 值;F P KM.C S _H L B :甜橙黄龙病患病植株F P KM 值;F P -KM.C D _MO C K :健康甜橙F P KM 值).图3 甜橙E R F B 3亚组转录因子受H L B 病原菌诱导的表达分析图4 甜橙E R F B 3亚组转录因子受激素诱导的表达分析该转录组数据显示,C s E R F B 3-1/2/3/7/8/11/12/14/15/16/17/18这12个基因的表达丰度在3个品种中表达都非常低,F P KM (F r a g m e n t s P e r K i l o b a s e M i l l i o n )值大部分为0或接近于0,这与柑橘基因组数据库中的表达情况相似(图2).在道县野橘中,C s E R F B 3-2/5/6/21这四个基因在感染黄龙病后上调表达显著,相反C s E R F B 3-10和C s E R F B 3-13两个基因下调表达显著;在宜昌橙中,C s E R F B 3-5和B 3-6两个基因是上调表达,C s E R FB 3-19/20/21为下调表达;在甜橙中,C s E R F B 3-5/6/9/19/20/21六个基因显著上调表达,只有C s E R F B 3-1一个基因下调表达.同时还发现C s E R F B 3-5和B 3-6这两个基因在3个品种中均呈上调表达,但C s E R F B 3-21在道县野橘和甜橙中上调表达显著,而在宜昌橙中则为下调表达显著.2.4 激素诱导E R F B 3亚组转录因子的表达特征根据柑橘感染黄龙病菌的转录组数据,我们挑选了表达相对较高的C s E R F B 3亚组转录因子(C s E R F B 3-4/5/6/9/10/13/19/20/21)进行外源激素诱导表达分析(如图4所示).通过荧光定量P C R 技术分析激素处理后甜橙E R F B 3亚组转录因子表达情况,结果显示C s E R F B 3-9/10/13/20/21基因在12h 和24h 两个时间点受S A 诱导上调表达显著,而C s E R F B 3-4显著下调表达.受J A 诱导12h 或/和24h 后C s E R F B 3-10/13/20/21四个基因显著上调表达,同样C s E R FB 3-4基因下调表达显著.A B A 诱导对C s E R F B 3亚组转录因子的表达影响较小,只有在24h 时,C s E R F B 3-4和C s E R F B 3-21分别下调和上调表达显著.另外C s E R F B 3-5/6/19这三个基因在3种激素诱导下表达均无差异.2.5 甜橙E R F B 3亚组转录因子亚细胞定位为了明确甜橙E R F B 3亚组转录因子的亚细胞定位,根据E R F B 3亚组转录因子应答黄龙病病原菌的表达情况,我们挑选了C s E R F B 3-9/10/13/20/21五个转录因子进行亚细胞定位研究.结果显示:在对照组中,本氏烟细胞核和细胞膜上均可观察到G F P 信号,而C s E R F B 3-9/10/13/20/21-G F P 融合蛋白则只08赣南师范大学学报 2022年定位在细胞核上(如图5所示),表明C s E R F B 3-9/10/13/20/21-G F P 为核定位蛋白.图5 甜橙E R F B 3亚组转录因子亚细胞定位图6 甜橙E R F B 3亚组转录因子转录激活活性检测2.6 甜橙E R F B 3亚组转录因子转录活性分析在携带对照载体p G B K T 7的酵母细胞中,载体上酵母转录激活因子G A L 4D N A 结合域(D N A b i n d i n g do m a i n ,B D )可以和上游激活序列结合,但不能引起报告基因L a c Z转录.如将一段具有转录激活活性的转录因子构建到pG B K T 7载体上,其表达产生的B D 与上游激活序列结合,同时引起下游报告基因L a c Z 的转录,进而水解培养基上的x -α-G a l,使菌落产生蓝斑.利用这一原理,我们对C s E R F B 3-9/10/13/20/21进行了转录活性验证.结果表明(如图6所示),携带p G B K T 7:C s E R F B 3-9/10/13/20/21的酵母均能在双缺培养基S D /-T r p /-H i s 上正常生长,并且双缺培养基中加入x -α-ga l 后显示蓝色反应,说明C s E R F B 3-9/10/13/20/21均具有转录激活活性.3 讨论E RF 转录因子是植物A P 2/E R F 转录因子家族中最大的亚家族之一,根据其结构特点又进一步分为6~7个亚组(B 1~B 7)不等,比如在拟南芥㊁水稻㊁番茄㊁葡萄和玉米等植物中分为6个亚组[16-17,25,27-28],而在二穗短柄草和棉花等植物中则分为7个亚组[20,22].在E R F 亚家族中,E R FB 3亚组成员相对较多.比如在小麦中有22个,在拟南芥中有18个,葡萄有37个[16,27-28].本文在柑橘基因组数据库中筛选鉴定了21个E R F B 3亚组成员.我们进一步对植物E R F B 3亚组转录因子进行了聚类分析,发现甜橙E R F B 3亚组转录因子与番茄和拟南芥中已报道的具有抗病功能的转录因子聚类关系比较近,比如C s E R F B 3-10和番茄S l E R F .A 1㊁C s E R F B 3-17和番茄S l E R F .C 3㊁C s E R F B 3-19与C s E R F B 3-20和S l E R F .B 4㊁C s E R F B 3-21和S l E R F .A 4以及C s E R F B 3-13和拟南芥A t E R F 93/94等.聚类关系较近的基因在功能上具有相似性,我们推测与报道的具有抗病功能的转录因子聚类关系较近的甜橙C s E R F B 3亚组转录因子可能在抗病反应中也发挥作用.植物E R F 蛋白可以作为转录激活物或抑制因子发挥作用[31].顺式作用元件G C C 盒是E R F 转录因子的主要靶位点,E R F 转录因子能结合启动子中G C C 盒调控靶标基因的表达.研究表明拟南芥A t E R F 15(A t E R F 93)㊁T E R F 1㊁番茄S l E R F .A 1㊁S l E R F .B 4和S l E R F .C 3在酵母细胞中均具有转录激活活性[29,32-33].此外拟南芥E R F 1和O R A 59可以和J A /E T 响应的病原相关基因P D F 1.2和b -C H I 上的C G G b o x 结合来诱导其表达[34-35].本文中,C s E R F B 3-9/10/13/20/21等5个甜橙E R F B 3亚组转录因子也均有转录激活作用,并且位于细胞核内,因此我们推测该5个甜橙E R F B 3亚组转录因子也具有诱导含有C G G b o x 基因表达的能力.植物激素水杨酸㊁茉莉酸和乙烯在抗生物胁迫信号转导途径的调节中起主要作用.这种调节是通过连接不同途径的复杂调节网络来实现的,从而使每个途径根据需要协助或拮抗其他途径来微调对单个病原体的防御反应.一般认为S A 在激活对活体营养性病原菌的防御中起主要作用,而J A 和E T 则对坏死性病原菌攻击的防御相关,此外S A 抗病信号途径和J A /E T 抗病信号途径间存在相互拮抗的关系.比如S A 可以通过下调O R A 59的表达拟制J A 应答相关基因的表达.E F R B 3亚组转录因子能通过依赖S A 和/或J A 途径18第3期 李 玲,刘新军,张保莲,等 甜橙E R F B 3亚组转录因子的鉴定和表达分析28赣南师范大学学报2022年激活植物对病原菌的抵抗力.研究表明G b E R F b㊁G m E R F113㊁拟南芥E R F1(A t E R F92)㊁A t E R F15 (A t E R F93)㊁O R A59(A t E R F94)㊁A T E R F14(A t E R F97)㊁N b E R F173㊁番茄S l E R F.A1㊁S l E R F.B4㊁S l E R F.C3㊁Z m E R F105㊁小麦T a E R F3和T a A P2-155等E F R B3亚组转录因子参与了植物对病原菌的防御反应[29,33,35-36].反过来E R F B3亚组转录因子受病原菌诱导存在差异表达,例如S l E R F.A1㊁S l E R F. B4和S l E R F.C3受病原菌的诱导上调表达显著[29].本文C s E R F B3-9/10/13/20/21被S A和/或J A诱导表达,同时也受黄龙病菌的诱导上调表达显著.我们推测这5个E R F B3亚组转录因子可能通过依赖S A 和J A信号传导途径正调控甜橙对黄龙病菌的抗性反应.然而要证明这些推测,还需要通过进一步的实验验证,比如通过过表达或基因沉默来验证基因功能.参考文献:[1] S A I J O Y,L O O E P I.P l a n t i mm u n i t y i n s i g n a l i n t e g r a t i o n b e t w e e n b i o t i c a n d a b i o t i c s t r e s s r e s p o n s e s[J].N e w P h y t o l o g i s t,2020,225(18):87-104.[2]S T A V R I D O U E,V O U L G A R I G,B O S MA L I I,e t a l.P l a n t a d a p t a t i o n t o s t r e s s c o n d i t i o n s:t h e c a s e o f g l u t a t h i o n e s t r a n s f e r a s e s(G S T s)[J].B i o t i c a n d A b i o t i c S t r e s s T o l e r a n c e i n P l a n t s,2018,52:173-202.[3] L A T A C,P R A S A D M.R o l e o f D R E B s i n r e g u l a t i o n o f a b i o t i c s t r e s s r e s p o n s e s i n p l a n t s[J].J o u r n a l o f E x p e r i m e n t a l B o t a n y,2011,62(14):4731-4748.[4] MY E R S Z A,HO L T B F.N U C L E A R F A C T O R-Y:s t i l 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n -t r i g g e r e d i mm u n i t y[J ].J o u r n a l o f E x p e r i m e n t a l B o t a n y,2019,70(3):1033-1047.[32] Z HA N G H ,L I A ,Z H A N G Z ,e t a l .E t h y l e n e r e s p o n s e f a c t o r T E R F 1,r e g u l a t e d b y ET H Y L E N E -I N S E N S I T I V E 3-l i k e f a c t o r s ,f u n c -t i o n s i n r e a c t i v e o x y g e n s p e c i e s (R O S )s c a v e n g i n g i n t o b a c c o (N i c o t i a n a t a b a c u m L .)[J ].S c i e n t i f i c R e po r t s ,2016,6:29948.[33] Z HA N G H J ,HU A N G L ,D A I Y ,e t a l .A r a b i d o p s i s A t E R F 15p o s i t i v e l y r e g u l a t e s i mm u n i t y a g a i n s t P s e u d o m o n a s s y r i n ga e p v .t o -m a t o D C 3000a n d B o t r yt i s c i n e r e a [J ].F r o n t i e r s i n P l a n t S c i e n c e ,2015,6:686.[34] L O R E N Z O O ,P I Q U E R A S R ,S A N C H E Z -S E R R A N O J J ,e t a l .E t h y l e n e r e s p o n s e f a c t o r 1i n t e g r a t e s s i g n a l s f r o m e t h yl e n e a n d j a s -m o n a t e p a t h w a ys i n p l a n t d e f e n s e [J ].T h e P l a n t C e l l ,2003,15(1):165-178.[35] P R éM ,A T A L L A H M ,C H AM P I O N A ,e t a l .T h e A P 2/E R F d o m a i n t r a n s c r i p t i o n f a c t o r O R A 59i n t e g r a t e s j a s m o n i c a c i d a n d e t h yl -e n e s i g n a l s i n p l a n t d e f e n s e [J ].P l a n t P h y s i o l o g y,2008,147(3):1347-1357.[36] L I U J G ,WA N G Y Q ,Z H A O G Y ,e t a l .A n o v e l G o s s y pi u m b a r b a d e n s e E R F t r a n s c r i p t i o n f a c t o r ,G b E R F b ,r e g u l a t i o n h o s t r e s p o n s e a n d r e s i s t a n c e t o V e r t i c i l l i u m d a h l i a e i n t o b a c c o [J ].P h y s i o l o g y a n d M o l e c u l a r B i o l o g y of P l a n t s ,2017,23(1):125-134.I d d e n t i f i c a t i o n a n d E x p r e s s i o n A n a l y s i s o f E R F B 3S u bg r o u pT r a n s c r i p t i o n F a c t o r s i n S w e e t O r a n ge (C i t r u s s i n e n s i s )L I L i n 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ERF转录因子
一、乙烯信号转导通路乙烯是一种非常重要的植物激素。
乙烯在植物生长发育和适应生物和非生物胁迫反应中起到了非常重要的作用。
种子萌发、开花、叶片衰老、果实成熟、根瘤、细胞程序性死亡以及对非生物胁迫和病原体入侵的反应等生理过程都与乙烯密切相关。
乙烯信号转导通路的最上游是位于内质网膜上的5个乙烯受体,分别被称为:ETR1、ETR2、ERS1、ERS2和EIN4。
位于乙烯受体下游的是一个负调节因子,蛋白激酶CTR1。
CTR1蛋白激酶通过与乙烯受体相结合定位在内质网上。
在没有乙烯存在的条件下,CTR1和受体的结合会协同抑制下游乙烯信号途径。
在CTR1负调控因子下游是一个正调控因子EIN2。
EIN2基因发生功能缺失突变会产生乙烯不敏感表型,显示出EIN2在乙烯信号通路中起到了核心作用。
EIN2的半衰期很短,两个F-Box蛋白ETP1和ETP2负责调控EIN2的泛素化降解。
位于EIN2下游的是正调控的转录因子家族EIN3及5个EILs。
研究发现,他们同样是受泛素化途径降解的,负责调控EIN3及EILs泛素化降解的F-Box蛋白是EBF1和EBF2。
EBF5是一种外切核酸酶它能够通过促进EBF1和EBF2的mRNA的降解来拮抗这两个蛋白对EIN3的负反馈调控。
EIN3和EIL1通过启动乙烯信号转导途径示意图转录级联反应来激活下游乙烯响应基因的表达。
二、乙烯响应因子(ethylene response factor、ERF)的结构特点及生物信息学分析ERF基因家族是一个很大的转录因子家族,属于AP2/ERF转录因子超家族。
Ohme-Takagi和Shinshi研究发现,GCC box是植物乙烯响应的DNA序列元件;同时他们在烟草(Nicotiana tabacuum)中发现了能特异性结合GCC box元件的数个乙烯响应元件结合蛋白(EREBPs),并发现,EREBPs同GCC元件相结合的结构域是59个保守的氨基酸残基。
ERF转录因子亚家族基因在甜瓜果实发育中的功能
ERF转录因子亚家族基因在甜瓜果实发育中的功能甜瓜(Cucumis melo L.)是全世界广泛栽培的一种重要的经济类瓜果作物,贮藏性是甜瓜经济价值最重要的影响因素之一。
乙烯在甜瓜果实成熟过程中发挥重要作用,而ERF又是乙烯信号转导途径中重要的转录因子,然而ERF在甜瓜果实发育过程中的功能仍然未知。
本研究利用生物信息学方法分析了甜瓜ERF转录因子亚家族64个成员蛋白序列特性及其基因的启动子元件。
以甜瓜品种河套蜜瓜为试材,使用实时定量PCR的方法构建了该亚家族成员在不同组织和不同发育时期果实中的表达谱,获得了 8个在果实发育中高表达的候选基因。
利用瞬时表达的方法分析了候选基因的功能,进一步用候选基因的过表达、RNAi和基因编辑载体进行稳定遗传转化甜瓜,分析其在果实发育过程中的功能。
主要结果如下:1.生物信息学分析发现甜瓜64个ERF蛋白的分子量介于14.00 kDa~46.62 kDa;40个蛋白的理论等电点小于7;预测所有蛋白均为亲水性蛋白;除CmERFIV-5,其他蛋白都是不稳定蛋白;58个蛋白定位于细胞核内、1个蛋白位于细胞质、5个蛋白定位于叶绿体;28个蛋白含有信号肽;64个基因获得83种启动子元件,其中包含赤霉素、茉莉酸、生长素、水杨酸、脱落酸和乙烯的不同应答元件,还包括厌氧、低温、热、干旱、创伤和真菌胁迫的不同应答元件;进化分析发现ERF在不同物种间相对保守;64个基因在12条染色上呈不均匀分布。
2.实时定量PCR检测64个CmERFs在根、茎、叶,9 d、18 d、27 d、36 d、呼吸跃变期和跃变后期果实中的表达量,发现8个基因在呼吸跃变期高表达,且在跃变期和跃变后期的表达量存在显著差异,其中(CmERFⅠ-15、CmERⅡ-9、CmERF Ⅳ-2、CmERFⅣ-3在呼吸跃变后期的表达量显著高于根、茎、叶中的表达量。
3.利用瞬时表达分析8个基因在果实发育中的功能,发现过表达CmERFⅠ-15、CmERF Ⅱ-9、CmERFⅢ-1、CmERFⅣ-2、CmERFⅣ-3、CmERFⅤ-4促进成熟,RNAi抑制其表达则延迟成熟;过表达CmERFI-18和CmERFⅢ-13延迟成熟,RNAi抑制其表达则促进成熟。
erf转录因子结合的顺式作用元件
erf转录因子结合的顺式作用元件下载提示:该文档是本店铺精心编制而成的,希望大家下载后,能够帮助大家解决实际问题。
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一、乙烯信号转导通路乙烯是一种非常重要的植物激素。
乙烯在植物生长发育和适应生物和非生物胁迫反应中起到了非常重要的作用。
种子萌发、开花、叶片衰老、果实成熟、根瘤、细胞程序性死亡以及对非生物胁迫和病原体入侵的反应等生理过程都与乙烯密切相关。
乙烯信号转导通路的最上游是位于内质网膜上的5个乙烯受体,分别被称为:ETR1、ETR2、ERS1、ERS2和EIN4。
位于乙烯受体下游的是一个负调节因子,蛋白激酶CTR1。
CTR1蛋白激酶通过与乙烯受体相结合定位在内质网上。
在没有乙烯存在的条件下,CTR1和受体的结合会协同抑制下游乙烯信号途径。
在CTR1负调控因子下游是一个正调控因子EIN2。
EIN2基因发生功能缺失突变会产生乙烯不敏感表型,显示出EIN2在乙烯信号通路中起到了核心作用。
EIN2的半衰期很短,两个F-Box蛋白ETP1和ETP2负责调控EIN2的泛素化降解。
位于EIN2下游的是正调控的转录因子家族EIN3及5个EILs。
研究发现,他们同样是受泛素化途径降解的,负责调控EIN3及EILs泛素化降解的F-Box蛋白是EBF1和EBF2。
EBF5是一种外切核酸酶它能够通过促进EBF1和EBF2的mRNA的降解来拮抗这两个蛋白对EIN3的负反馈调控。
EIN3和EIL1通过启动乙烯信号转导途径示意图转录级联反应来激活下游乙烯响应基因的表达。
二、乙烯响应因子(ethylene response factor、ERF)的结构特点及生物信息学分析ERF基因家族是一个很大的转录因子家族,属于AP2/ERF转录因子超家族。
Ohme-Takagi和Shinshi研究发现,GCC box是植物乙烯响应的DNA序列元件;同时他们在烟草(Nicotiana tabacuum)中发现了能特异性结合GCC box元件的数个乙烯响应元件结合蛋白(EREBPs),并发现,EREBPs同GCC元件相结合的结构域是59个保守的氨基酸残基。
AP2/ERF转录因子超家族的共同特征是都具有保守的AP2/ERF结构域。
根据AP2/ERF结构域的个数以及是否含有其他的结构域,将AP2/ERF转录因子超家族分为三个家族:AP2家族,含有两个重复的AP2/ERF结构域;ERF家族,只含有一个AP2/ERF结构域;RA V家族,除了含有一个AP2/ERF结构域以外,还有另外的一个B3结构域。
另外,根据AP2/ERF 结构域保守氨基酸的不同,又将ERF转录因子家族分为ERF亚家族和CBF/DREB亚家族。
Sakuma等根据DNA结合结构域的序列相似性将CBF/DREB 亚家族分为6个group:A-1~A-6,将ERF亚家族分为6个group:B-1~B-6。
ERF转录因子能够识别两种DNA序列顺式作用元件,即GCC box和CRT/DRE 元件。
GCC box的保守序列为AGCCGCC。
ERF转录因子的N端的59个氨基酸残基是识别GCC box所必须的。
Allen等研究了ERF结构域的3D结构,发现ERF结构域中有一个三条链的反向平行的β折叠和一个α螺旋,通过β折叠与DNA顺式元件相结合。
Hao等发现,GCC box的第一个G、第四个GERF结构域的三级结构和第六个C是ERF结构域识别所必须的;同时,N端的侧翼序列是ERF结构域结合GCC box所必须的。
CRT/DRE元件的保守序列为A/GCCGAC,在DREB蛋白的AP2/ERF结构域中,β折叠中的第14位缬氨酸和19位谷氨酸是结合顺式元件所必需的;而在ERF蛋白中,丙氨酸和天冬氨酸占据了同样的位置。
这两个氨基酸位于AP2/ERF结构域中的β折叠上。
Nakano等在拟南芥基因组中共发现了147个基因属于AP2/ERF超家族,其中有122个基因属于ERF基因家族。
对ERF家族的122个成员进行AP2/ERF结构域的氨基酸序列的多重比对分析发现,GLY-4、Arg-6、Glu-16、Trp-28、Leu-29、Gly-30和Ala-38完全保守,而Arg-8、Gly-11、Ile-17、Arg-18、Arg-26、Ala-39、Asp-43和Asn-57存在于超过95%的ERF家族成员中。
Nakano等对其中115个成员进行了系统发育分析,建立了系统发育树,并根据intron和extron结构和额外的结构域特征将115个ERF基因家族成员分成了12个group:group I - group X、group VI-L和group Xb-L。
同时,又对水稻基因组进行了分析,共发现有139个基因属于ERF基因家族。
对这些水稻基因进行系统发育分析,将其分成了15个group,其中11个group和拟南芥相同。
ERF基因家族在植物中广泛存在。
到目前为止已经有许多物种进行了全基因组或转录组的ERF基因家族筛选,并分别进行了系统发育分析。
结果如下表(不同的研究结果分别采用了Sakuma和Nakano的分类方法):Family Group 拟南芥水稻高粱玉米烟草葡萄白菜橡胶树Arabidopsis thaliana OryzasatavaSorghum Zea maysNicotianatabacuumVitisviniferaBressica rapaHeveabrasiliensisERF I 10 9 5 1512 II 15 16 8 297III 23 27 22 3911IV 9 6 5 223V 5 8 11 115VI 8 6 5 135VII 5 15 3 1623VIII 15 15 11 2715IX 17 18 40 2319X 8 12 10 99VI-L 4 3 2 66Xb-L 3 10 0 90合计122 145 105 151 239 122 236141部分AP2/ERF结构域26 RA V 6 5 4 2 6 144AP2 18 29 16 31 35 20 3025 Soloist 1 1 1 1 1 13总计147 180 126 185 149 281173 Family Group拟南芥水稻杨树大豆葡萄小麦番茄Arabidopsis thaliana OryzasatavaPopulustricocarpaGlycine max Vitis viniferaTriticumaestivumLycopersicumesculentumDREB subfamily A1 6 10 6 7 39A2 8 4 18 4 5A3 16 1 2 0 0A4 16 15 26 13 1A5 16 13 14 7 4A6 10 9 2 5 8总57 52 77 36 36 5748ERF subfamily B1 15 16 19 7 7B2 5 16 6 3 19B3 18 18 35 37 8B4 7 9 7 4 4B5 8 6 8 4 0B6 12 14 16 18 9总65 79 91 62 73 4777单个不完全的AP2/ERF结构域22AP2 18 26 26 26 18 918RA V 6 7 5 2 4 33 Soloist 1 0 1 1 1总计147 164 200 148 132 117146三、ERF转录因子的功能ERF转录因子最初发现是在烟草中,作为转录因子同乙烯响应元件GCC box 相结合,参与乙烯信号途径,因此被命名为乙烯响应元件结合蛋白(Ethylene response element binding factor、EREBP),后又被重新命名为Ethylene response factor(ERF)转录因子。
然而后来的研究过程中发现,ERF家族的成员很多,如拟南芥和水稻中分别共有122和145个,并且不都参与乙烯反应,且DNA结合元件并不直接接受乙烯信号刺激。
DREB亚家族成员通常会和CRT/DRE元件(保守序列为A/GCCGAC)结合,参与ABA信号途径和干旱、低温胁迫等反应;而ERF亚家族成员通常会结合GCC box(保守序列为AGCCGCC),参与乙烯信号途径、低氧胁迫反应、病原体胁迫反应、伤害反应等过程。
1.ERF转录因子在植物生长发育过程中的作用在AP2/ERF转录因子超家族中,AP2类的转录因子主要在调节发育过程中起作用,如花发育、果实成熟、种子发育等过程;而ERF转录因子家族主要参与环境胁迫和激素刺激的过程,如低温胁迫、干旱胁迫、低氧胁迫以及病原体侵染过程。
在拟南芥中,AP2-13、AP2-05和AP2-09分别调节花的生长和卵细胞的发育。
在水稻中,AP2/ERF转录因子家族成员SNORKELs在水淹条件下会对乙烯作出反应,诱导节间伸长,使水稻逃离水淹的低氧环境。
几个AP2/ERF基因的异常的表达会影响植株的形态建成。
如在拟南芥中,TINYT、ERF1和DREB1的异常表达会导致矮化表型的产生;DREB2的表达会延缓植株的生长。
Xueping Li等从番木瓜(Carica papaya)中克隆到了4个ERF 基因(cpERF1-4),并进行了分析,研究了在不同发育阶段中这四个基因的表达模式。
结果发现,在果实成熟过程中,cpERF1和cpERF2的转录水平增加,而cpERF3和cpERF4相反,在果实成熟过程中转录水平下降。
同时,他们发现,cpERF1、cpERF3和cpERF4的表达量被1-MCP诱导,而cpERF2的表达量被1-MCP抑制;乙烯会诱导cpERF2的表达,抑制cpERF1、cpERF3和cpERF4的表达。
结果说明,cpERF2的表达和番木瓜果实的成熟呈正相关,而cpERF1、cpERF3和cpERF4的表达和番木瓜果实成熟呈负相关。
Ying Zhou等从棉花中分离到了一个ERF基因,即GhERF12基因。
将这一基因在拟南芥中过表达,发现转基因植株生长的更慢,且出现了矮化的现象。
进一步研究发现,许多乙烯相关基因和生长素相关基因快速上调表达,因此推测GhERF12作为转录因子通过激活保守的乙烯响应和生长素生物合成及信号转导来调节植物的生长和发育。
2.ERF转录因子在植物非生物胁迫中的作用研究发现,DREB1/CBF(A-1)亚组成员与冷胁迫响应相关。
拟南芥DREB1亚组由6个成员组成,其中DREB1A/CBF3、DREB1B/CBF1和DREB1C/CF2在冷胁迫反应中被快速诱导。
过度表达的转基因拟南芥植株表现出抗性明显提高,而DREB1A/CBF3和DREB1B/CBF1活性的抑制会导致冷胁迫忍耐性的降低。
许多冷胁迫诱导的基因被上调表达。
与之相对,DREB2亚组的大多数成员于干旱和热激胁迫反应相关。
拟南芥DREB2A和DREB2B被干旱、高盐和热诱导表达,DREB2C、DREB2D和DREB2F被高盐诱导表达,DREB2E被ABA诱导表达。