Matrigel体外侵袭实验,划痕实验,MTT试验的详细步骤及试剂
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五、Matrigel体外侵袭实验所需:
1、Transwell 小室
2、上层培养液:含10g/L BSA的无血清培养液
3、细胞:实验细胞
4、基质胶:Matrigel基质胶为了方便运输和保存,一般是在-20℃(至少保存3个月),呈固体状态。使用前要将Matrigel提前放入4℃冰箱冰上过夜(12h),Matrigel即融化为液体状态备用,避免反复冻融。在冰冻和解冻过程中可能会发生颜色变化属正常现象,一旦解冻,晃动瓶子使其分散均匀。Matrigel冰上维持液态,22~35℃可迅速凝结成胶,使用前接触Matrigel的试管、移液吸头等均须4℃预冷。
5、下层培养液:含FBS或趋化因子的培养液
6、细胞培养板:12孔板,24孔板等
十二、Matrigel 体外侵袭实验
1.实验前的准备
(1)使用前要将Matrigel提前放入4℃冰箱过夜,溶胶。
(2)接触Matrigel的试管、移液吸头等均须4℃预冷。
2.包被基底膜(冰上进行)
(1)冻融后,用预冷的移液枪头混匀Matrigel基质成匀浆状。
(2)根据使用需要,用无血清的冷细胞培养基稀释Matrigel胶(稀释比例根据不同细胞系,比例约为1:6~1:3)。
(3)将稀释胶包被于所需的Transwell上室中,包被量至少覆盖整个生长表面,例120μl稀释胶加到12孔transwell上室中。
(4)37℃孵育1小时。
(5)去除未结合的Matrigel,用无血清培养基轻轻冲洗。
3.水化基底膜
吸出培养板中残余液体,每孔加入50μl含10g/L BSA的无血清培养液,37℃,30min。
4.制备细胞悬液
(1) 制备细胞悬液前可先让细胞撤血清饥饿12~24h,进一步去除血清的影响。
(2)常规消化细胞,终止消化后离心收集细胞沉淀,PBS洗1~2遍,用含10g/L BSA
的无血清培养基重悬。调整细胞密度至1~10×105个/ml(一般不超过5×105个/ml)。
5.接种细胞
(1)取细胞悬液加入transwell小室。不同公司不、同大小的transwell小室对细胞悬液量有不同要求,请参考说明书。24孔板小室一般200μl,12孔板加
400μl。
(2)下室加入含FBS或趋化因子的培养基,24孔板一般加入500μl,12孔板加入800μl。特别注意的是,下层培养液和小室间常会有气泡产生,下层培养液的趋化作用就减弱甚至消失,一旦出现气泡,要将小室提起,去除气泡,再将小室放进培养板。
6.培养细胞
常规培养12~48小室(主要依据肿瘤细胞侵袭能力而定)。
7.染色和计数
(1)湿润的棉签擦去上室上面的费侵袭细胞
(2)用95%的无水乙醇或甲醛固定10分钟,在用蒸馏水洗3次。
(3)移去transwell,倒置风干。
(4)用0.005%结晶紫染色40分钟,蒸馏水洗3次。
(5)切膜,用液体石蜡固定,封片,显微镜观察。
十三、划痕实验
1、在6孔板底面利用直尺用记号笔每隔0.5~1cm均匀的划横线,每孔至少穿
过5条线。
2、在6孔板中加入5~8×105个细胞/孔,掌握为过夜能铺满。
3、第二天用无菌10μl枪头比着直尺,尽量垂直于背后的横线划痕,枪头要垂
直,不能倾斜。
4、分别在孵育0h、4h、8h、12h、24h时光学显微镜下测量伤痕距离并记录,
倒置显微镜下采集图像,观察各组细胞迁移情况。
5、绘制折线图,横坐标为时间,纵坐标为距离。
十四、MTT实验
1、接种细胞:用含10%FBS的培养液配成细胞悬液,以每孔1000~10000
个细胞接种96孔板,每孔体积200μl.
2、培养细胞:同一般培养条件,培养3~5天(可根据实验目的和要求决定
培养时间)。
3、呈色:培养3~5天后,每孔加MTT溶液(5mg/ml用PBS配)20μl。继
续孵育4小时,终止培养,小心吸弃孔内培养上清液,对于悬浮细胞需
要离心后再吸弃孔内培养上清液。每孔加150μlDMSO,振荡10分钟,
使结晶物充分溶解。
4、比色:选择572nm波长,在酶联免疫监测仪上测定各孔光吸收值,记录
结果,以时间为横坐标,吸光值为纵坐标绘制细胞生长曲线。
注意事项:
1、选择适当的细胞接种浓度。
2、避免血清干扰:一般选小于10%的胎牛血清的培养液进行实验。在呈色
后尽量吸尽孔内残余培养液。
3、设空白对照:与实验平行不加细胞只加培养液的空白对照。其他实验步骤
保持一致,最后比色以空白调零。
MTT实验吸光度最后要在0~0.7之间,超出这个范围就不是直线关系。
IC50是半抑制率,是抑制50%的时候的药物浓度。把药品稀释成不同的浓度,然后计算各自的抑制率,以药品浓度为横坐标,抑制率为纵坐标,然后得到50%%抑制率时候的药品浓度,就是IC50。