免疫组化超详细步骤

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超详细的免疫组化步骤

超详细的免疫组化步骤免疫组化步骤操作步骤取出细胞-------PBS冲洗3次，每次5分钟-------用预冷的丙酮或甲醇溶液固定10分钟----PBS 冲洗3次，每次5分钟-----每张爬片加50ul非免疫性动物血清（封闭液）室温下10分钟---甩掉封闭液-----加一抗50ul，37℃培养箱孵育60分钟，或4℃过夜--------PBS冲洗3次，每次5分钟----每张爬片加二抗50ul,37℃或室温30--60分钟---PBS冲洗3次，每次5分钟----显色，酶标二抗加酶的底物（如DBA）染色，显微镜下观察3--10分钟，控制染色情况---自来水冲洗，苏木素复染，中性胶固定-------金标记或荧光标记在显微镜下直接观察。

结果判读：根据阳性对照和阴性对照，判断免疫染色是否成功。

阳性细胞定位是否明确，是胞膜，胞浆还是胞核阳性，间质是否清晰，无背景着色，同时阳性细胞达5%以上，方为阳性。

注意：浓缩型抗体应根据厂家提供的抗体效价，进行分装，按50ul或100ul分装，放入-20---70℃冰箱保存1--5年。

用PBS稀释抗体在4℃可放1--3天。

使用时必须按不同免疫染色方法找出抗体最佳稀释度。

即用型抗体可直接使用，无需稀释阴性对照可以使用PBS或10%的正常非免疫动物血清。

（用PBS 或非一抗替代一抗来进行反应，其余步骤均一致，排除有无一抗外的非特异性染色。

）阳性对照可使用自己收集或购买的阳性切片。

假阳性：抗体的稀释度不正确，浓度太高；部分多克隆抗体的特异性问题。

假阴性：抗体和检测试剂盒配对不合理。

如单克隆抗体（多为鼠）试剂盒应为鼠用试剂盒；多克隆抗体（多为兔）试剂盒应为兔用试剂盒。

抗体浓度太低；孵育时间太短(SP法一抗孵育时间为1小时，二抗，三抗为10分钟；PAP 法或ABC法一抗为1小时或过夜，二抗，三抗为30分钟)；染色步骤错误；染色过程爬片过分干燥。

封闭液：封闭血清一般是和二抗同一来源的，血清中动物自身的抗体，预先能和组织中有交叉反应的位点发生结合；也可以用小牛血清、BSA、羊血清等，但不能与一抗来源一致。

免疫组化实验的详细步骤

免疫组化实验的详细步骤1. 制备组织切片- 将组织固定在适当的固定液中(如甲醛溶液)- 通过脱水、清理和浸蜡等步骤制备石蜡包埋块- 使用切片机将包埋块切成4-6微米厚的切片- 将切片贴附到载玻片上2. 脱蜡和水化- 将载玻片浸入二甲苯或者相似的溶液中,去除石蜡- 使用梯度浓度的乙醇溶液(100%,95%,70%)逐步水化切片3. 抗原修复- 抗原修复是一个关键步骤,可以暴露被固定过程掩盖的抗原表位 - 常用的方法包括加热诱导抗原修复和酶促抗原修复4. 内源性过氧化物酶或者生物素的封闭- 使用3%的过氧化氢溶液处理切片,以封闭内源性过氧化物酶活性 - 对于利用生物素-亲和素系统的实验,需要使用生物素封闭试剂进行封闭5. 加入封闭液- 使用含有蛋白质成分的封闭液(如牛血清白蛋白)处理切片- 这一步可以阻止抗体的非特异性结合6. 加入一抗- 将特异性的一抗(如小鼠抗人蛋白单克隆抗体)稀释至适当浓度- 滴加到切片上,在湿盒中于4℃过夜或37℃温育1-2小时7. 加入二抗- 洗去未结合的一抗- 加入与一抗种属相匹配的二抗(如生物素标记的羊抗小鼠抗体)8. 加入探针- 对于酶促反应型免疫组化,加入酶标记的亲和素(如过氧化物酶-亲和素复合物)- 对于荧光免疫组化,加入荧光标记的亲和素9. 显色- 酶促反应型:加入适当的染色底物(如),产生可见的棕黄色沉淀- 荧光免疫组化:不需要此步骤10. 染色和封片- 用苏木素对细胞核进行复染- 用封片剂和覆盖玻片封闭切片,制成永久装片11. 观察结果- 使用光学显微镜或荧光显微镜观察目的蛋白的分布和表达情况以上是免疫组化实验的一般步骤,具体操作细节可能因实验目的和具体方法而有所调整。

准确无误的实验步骤需要参考相关文献和说明。

免疫组化详细步骤

免疫组化步骤取组织、固定、制片（脱水、透明、浸蜡、包埋）、切片、烤片、抗原修复、滴加抗体一、取组织二、固定三、制片1、脱水透明的酒精梯度和时间70%酒精20min 80%酒精1h90%酒精1h 95%酒精Ⅰ2h95%酒精Ⅱ2h 无水乙醇Ⅰ15min无水乙醇Ⅱ15min 无水乙醇Ⅲ15min二甲苯酒精1:1 15min 二甲苯Ⅰ25min二甲苯Ⅱ25min 二甲苯Ⅲ15min2、浸蜡：石蜡融化后，在石蜡Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ中各浸蜡1h3、包埋四、切片烤片用切片机切片，取完整组织切片放于37℃温水中展片，取完整组织于载玻片上，并放入到60℃的烤箱中烤6个小时五、脱蜡至水六、抗原修复配置柠檬酸抗原修复液于微波中煮沸，在高压锅内放入自来水煮沸（不盖锅盖），将装有煮沸的抗原修复液的烧杯置于高压锅内，将水化后的玻片放入煮沸的抗原修复液中，盖上锅盖，待其压力达到最大时维持三分钟七、取出玻片，水浴逐渐降温直至完全冷却八、将玻片放置于塑料板上，滴加3%的过氧化氢室温孵育10min，以阻断内源性过氧化氢酶，10min过后PBS冲洗2次×3分钟九、除去PBS（甩干或者吸水纸吸干），每张切片滴加第一抗体（稀释相应倍数），4℃过夜十、PBS冲洗3次×2分钟，除去PBS液，每张切片滴加聚合物增强剂，室温孵育10min十一、PBS冲洗2分钟×3次，除去PBS，每张切片滴加酶标抗兔聚合物，室温孵育10min十二、PBS冲洗2分钟×3次，除去PBS，每张切片滴加新配制的DAB（二氨基联苯胺），室温孵育2~10分钟，显微镜观察十三、苏木精复染：苏木精复染5min，水洗3min，0.1%HCl浸提两次，水洗3min，反蓝液数秒，水洗十四、脱水透明：70%酒精3min、80%酒精3min、90%酒精3min、无水乙醇3min、二甲苯Ⅰ3min、二甲苯Ⅱ3min十五、封片。

免疫组化步骤

取组织：1.心脏灌注将小鼠在肋弓下缘剪开，夹住胸骨角，向上翻开，暴露胸腹膜，从右向左剪开胸腹膜，暴露心脏，剪开右心耳（在心尖靠右一点）插入针管，先打入10ml水，再注入10%甲醛约10ml，（可重复一次），至肝脏发白，四肢有抽搐为成功。

2.取脑取脑后放入4%多聚甲醛中，固定保存24h3.梯度脱水(不是必须步骤，但做的效果可能更好，但标本脱片是否与之有关系？)将脑放入5%蔗糖 48h----2.5%蔗糖 48h----1%蔗糖48h后放入4%多聚甲醛中，固定保存，制成切片。

4. 自制蜡块三步法，sp试剂盒，需要摸浓度，还有PBS自己配免疫组化1.常规石蜡切片，石蜡脱水60℃烤片30min脱蜡：二甲苯Ⅰ 5min二甲苯Ⅱ 10min无水乙醇—95%酒精Ⅰ—95%酒精Ⅱ—80%酒精各5sPBS液洗3次，每次5min2.抗原修复①枸橼酸盐微波修复（冷却与小火之间） 13min 室温冷却至常温②枸橼酸盐微波修复（冷却与小火之间） 2 x 10min（10min后加少许冷枸橼酸）室温冷却至常温（此步作为①未作出时的办法，最大可以尝试到3x 10min）③枸橼酸盐微波修复（高火） 4 x 6min 室温冷却至常温（此步作为①②均未作出时的办法）3. 3%H2O2 10min（买30%的回来自己稀释）PBS液洗3次，每次3min4.封闭用正常山羊血清工作液室温孵育20min5.一抗 4℃过夜，第二天将过夜片放入37℃温箱孵育1hPBS液洗3次，每次3min6.生物素化二抗工作液37℃温箱孵育 30minPBS液洗3次，每次3min7.辣根酶标记链霉卵白素工作液37℃温箱孵育 30minPBS液洗3次，每次3min8.DAB显色（此步最重要，一定要摸出最佳显色时间，要浪费三张片子，一张显过了，一张未显出来，一张介于二者之间）9.自来水终止显色10.苏木素染色2min，自来水冲洗（8次以上，不能怕麻烦），盐酸酒精分化，自来水冲洗（6次以上），PBS返蓝20min（PBS要预热15min）11.脱水，透明（80%酒精—95%酒精Ⅱ—95%酒精Ⅰ—无水乙醇—二甲苯Ⅱ—二甲苯Ⅰ各5秒，就是将脱蜡反过来了）12.树胶封片（就滴很少，用手按压可以顺便将气泡压出，滴多了，树胶容易翻上盖玻片，那就麻烦了）注：95%酒精Ⅱ95%酒精Ⅰ二甲苯Ⅱ二甲苯Ⅰ都有卖的PBS自己配很划算（下页是配制方法）A液：0.1mol/L磷酸二氢钾：磷酸二氢钾（KH2PO4，MW136.09）1.361g，加双蒸水至100ml。

免疫组化实验步骤完整版

免疫组化实验步骤完整版步骤1：标本采集和固定首先，需要从待检测样本中采集组织或细胞。

可以使用手术切片、活体组织、培养的细胞等作为标本。

然后，将采集的样本固定在载玻片或切片上，以保持其结构和形态的完整性。

步骤2：抗原暴露和体细胞抗原消除接下来，需要处理标本以使抗原裸露出来，并消除非特异性的抗体结合和细胞膜结合的抗原。

这一步骤常常涉及对组织或细胞的预处理，例如用石蜡脱脂、酶解抗体和孵化等。

步骤3：抗体特异性结合选择特异性的抗体用于检测待测蛋白质。

这些抗体可以是直接标记的一抗，或间接标记的二抗。

一抗是专门与目标抗原结合的抗体，而二抗则可以与一抗结合，以提高信号的灵敏度和特异性。

这一步骤中还需要选择适当的阴性对照，即未携带待检测抗原的样本。

步骤4：探针检测根据需要，可以使用不同的探针来检测目标分子。

常用的探针有标记的一抗、荧光探针、放射性标记物等。

标记的一抗可以直接结合抗原，然后使用染色剂进行可视化；荧光探针则通过荧光显微镜进行检测；放射性标记物可以通过放射自显影等方法进行检测。

步骤5：显色和对比计数将荧光、酶标记或放射性标记的物质显色，以便于检测和计数。

在染色的过程中，需要防止非特异性的染色，例如使用阻断剂、胶原等。

步骤6：结果分析根据观察到的染色强度、分布模式等结果，分析待测蛋白质在样本中的表达情况。

这可能需要与阴性对照和阳性对照进行比较，以确定实验结果的可靠性。

步骤7：图像捕获和分析使用显微镜或其他成像设备，将荧光、染色或放射性标记的图像捕获下来。

可以使用图像分析软件来计算和比较样本中的染色强度、面积等参数。

步骤8：数据统计和结果报告根据实验结果进行数据统计和分析，并将结果记录在报告中。

报告应包括样本信息、实验方法、结果和结论等内容，并根据需要进行解释和讨论。

总结：免疫组化实验是一种广泛应用于研究、诊断和治疗的方法。

它的步骤包括标本采集和固定、抗原暴露和体细胞抗原消除、抗体特异性结合、探针检测、显色和对比计数、结果分析、图像捕获和分析、数据统计和结果报告。

免疫组化超详细步骤

免疫组化超详细步骤免疫组化（immunohistochemistry，IHC）是一种通过使用抗体来检测组织或细胞中特定蛋白质的方法。

该技术的原理基于抗体与其特异性抗原结合的特性。

下面将详细介绍免疫组化的步骤。

第一步，固定组织：将待检测的组织或细胞固定在载玻片上。

常用的固定剂包括甲醛和乙醛，可通过浸泡、喷洒或滴加等方式施加在组织上，使细胞和蛋白质保持其形态和结构。

第二步，脱水：将固定的组织经过一系列浓度逐渐升高的酒精溶剂中处理，以去除水分，使组织逐渐与酒精混合。

第三步，脱脂：将组织在适当的溶剂（如二甲苯或苯）中脱脂，以去除酒精和脂质。

第四步，石蜡浸渍：将脱脂的组织浸泡在液态石蜡中，使其渗透并替代脱脂剂和二甲苯，然后固化组织。

第五步，切片：使用微tome切割固化的样本，制备出薄片，常见的切片厚度为4-5μm。

第六步，脱离：将切好的薄片与载玻片分离，常用的方法是利用热水浸泡薄片，使其松散分离。

第七步，抗原修复：利用高温和压力的方法，如蒸汽煮沸或压力锅，对薄片上的蛋白质进行解散，以恢复其免疫活性。

第八步，阻断非特异性结合：使用一些蛋白质如牛血清蛋白、动物血清或其他蛋白质来包裹薄片上的非特异性结合位点，以减少假阳性反应。

第九步，抗体处理：将特异性抗体加到薄片上，与待检测的蛋白质结合。

抗体可以是原代抗体（直接与靶蛋白质结合）或二抗（与原代抗体结合）。

第十步，洗涤：用缓冲液洗去未结合的抗体，并去除阻断剂和非特异性结合物。

第十一步，检测：将检测试剂滴加到薄片上，以产生特定色素或荧光信号。

常用的检测方法包括酶标法（如辣根过氧化物酶法，HRP法）和荧光标记（如荧光素酶法，AP法）。

第十二步，显微镜检查：使用显微镜观察薄片上的染色结果，评估标记物的定位和表达情况。

通过上述步骤，免疫组化技术可以帮助研究人员检测并定位组织或细胞中感兴趣的蛋白质。

其广泛应用于生物医学研究、临床诊断以及药物研发等领域，为揭示疾病的分子机制和开发新的治疗手段提供了重要的工具。

免疫组化法实验操作步骤

免疫组化法实验操作步骤步骤一：取材固定1.将需要处理的组织或细胞样本，如切片或离心沉淀等，放置在含有适当浓度的固定试剂（如4%的中性缓冲甲醛）中，使其固定。

2.这一步的目的是保持蛋白质的结构和形态，使其对后续步骤的抗体反应更加稳定。

步骤二：脱水和包埋1.将样本从固定试剂中洗涤，并逐渐转移到乙醇溶液中，以脱水。

2.将样本转移到适当浓度的透明剂（如甲基丙烯酸甲酯）中，使其透明化。

3.最后，将样本包埋在合适的固化剂（如尼龙、蜡、树脂等）中，以便后续的切片操作。

步骤三：切片和烘干1.使用组织切片机将样本以适当的厚度切成切片。

2.将切片放置在加热平台上，烘干以去除切片中的水分。

步骤四：抗体处理1.使用适当的抗体稀释液将抗体与切片接触。

抗体可为一抗或二抗，具体选择取决于实验需求。

2.将切片放置在含有抗体的湿润孵育盒中，使其与抗体反应。

孵育温度和时间取决于抗体的要求，一般在4℃下孵育过夜。

步骤五：洗涤1.将切片取出，并置于洗涤缓冲液中，用于去除未结合的抗体。

2.反复洗涤3-4次，每次至少5分钟，确保切片完全清洗。

步骤六：标记1.添加适当浓度的二抗，如辣根过氧化物酶（HRP）标记的二抗，与已经结合的一抗反应。

2.孵育切片与二抗共反应，孵育温度和时间根据试剂的要求进行。

步骤七：显色和染色1.使用合适的显色剂将切片进行显色。

常见的显色剂有DAB（二氨基联苯氧化物）和VIP（有机磷染料）等。

2.彩色染色可根据实验需求进行，可以使用核染料如伊红、快速伊红等对细胞核进行染色。

步骤八：石蜡去除和封片1.将切片浸入去石蜡溶液中，去除石蜡。

2.使用适当稀释的巴豆胶溶液将切片封闭，确保切片在显微镜下观察时保持湿润。

步骤九：显微镜观察1.将封片放置在显微镜载物台上，使用适当放大倍率的显微镜观察切片。

2.观察切片的染色情况、抗体标记的结果等，记录并进行分析。

这些是一般的免疫组化法实验操作步骤，根据具体实验需求和试剂要求，可能会有一些细微的差异和额外的步骤。

免疫组化超详细步骤

免疫组化超详细步骤免疫组化是一种常用的实验方法，用于检测细胞或者组织中特定的分子，如蛋白质、核酸和糖等。

下面是免疫组化的详细步骤：1.样本准备：a.细胞或组织准备：首先需要获取细胞或组织样本，可以通过培养细胞或直接取得组织切片。

b.保存和处理：细胞或组织样本需要保存在合适的液体中，如福尔马林或液氮，以保证样本的完整性和保存时间。

c.切片：对于组织样本，需要将其切割成薄片，常用的方法是冰冻切片或石蜡包埋切片。

2.抗原的暴露：a.反应原位：对于固定的细胞或组织样本，可以直接进行免疫组化实验。

b.透化处理：对于未固定的细胞或组织样本，需要进行透化处理，以使抗体能够穿透细胞膜或组织间隙。

3.抗原检测步骤：a.抗原恢复：有时，抗原可能会受到固定或透化处理的损伤，需要进行抗原恢复步骤。

常见的方法有热处理、酶消化和抗体消除等。

b.阻断非特异性结合：为了减少非特异性结合，需要对样本进行阻断处理，可以使用一些蛋白质，如牛血清白蛋白（BSA）或鱼胶。

4.抗体标记检测：a.一抗：选择特异对应抗原的一抗（原抗体），将其加入到样本中，与样本中的特定抗原结合。

b.二抗：将含有特异对一抗的二抗（辅助抗体）标记的溶液加入到样本中，与一抗结合。

二抗通常会与荧光染料、酶或金颗粒等标记结合。

5.洗涤：a.用缓冲液洗涤样本，以去除未结合的抗体和其他非特异性的结合物。

6.反应可视化：a.荧光标记：对于荧光染料标记的样本，可以通过荧光显微镜观察到标记物的信号。

b.酶标记：对于酶标记的样本，需要使用合适的基质使酶产生染色反应，并通过显微镜观察到染色的结果。

7.整理和分析：a.包装：用透明性的封片将样本封装，以便保存并观察。

b.分析：使用显微镜分析样本的结果，例如观察染色的细胞或组织的形态、信号定位等。

免疫组化详细步骤

免疫组化步骤取组织、固定、制片(脱水、透明、浸蜡、包埋）、切片、烤片、抗原修复、滴加抗体一、取组织二、固定三、制片1、脱水透明的酒精梯度和时间70％酒精20min 80%酒精1h90%酒精1h 95％酒精Ⅰ2h95％酒精Ⅱ2h 无水乙醇Ⅰ15min无水乙醇Ⅱ15min 无水乙醇Ⅲ15min二甲苯酒精1：1 15min 二甲苯Ⅰ25min二甲苯Ⅱ25min 二甲苯Ⅲ15min2、浸蜡:石蜡融化后，在石蜡Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ中各浸蜡1h3、包埋四、切片烤片用切片机切片，取完整组织切片放于37℃温水中展片，取完整组织于载玻片上，并放入到60℃的烤箱中烤6个小时五、脱蜡至水六、抗原修复配置柠檬酸抗原修复液于微波中煮沸，在高压锅内放入自来水煮沸(不盖锅盖），将装有煮沸的抗原修复液的烧杯置于高压锅内，将水化后的玻片放入煮沸的抗原修复液中，盖上锅盖，待其压力达到最大时维持三分钟七、取出玻片，水浴逐渐降温直至完全冷却八、将玻片放置于塑料板上，滴加3％的过氧化氢室温孵育10min，以阻断内源性过氧化氢酶，10min过后PBS冲洗2次×3分钟九、除去PBS（甩干或者吸水纸吸干），每张切片滴加第一抗体（稀释相应倍数），4℃过夜十、PBS冲洗3次×2分钟，除去PBS液,每张切片滴加聚合物增强剂，室温孵育10min十一、PBS冲洗2分钟×3次，除去PBS，每张切片滴加酶标抗兔聚合物，室温孵育10min十二、PBS冲洗2分钟×3次，除去PBS，每张切片滴加新配制的DAB（二氨基联苯胺)，室温孵育2～10分钟，显微镜观察十三、苏木精复染:苏木精复染5min，水洗3min，0。

1%HCl浸提两次,水洗3min，反蓝液数秒，水洗十四、脱水透明：70％酒精3min、80％酒精3min、90％酒精3min、无水乙醇3min、二甲苯Ⅰ3min、二甲苯Ⅱ3min十五、封片。

免疫组化步骤

步法免疫组化实验步骤详解: 1•脱蜡：脱蜡要达到将原组织玻片上的石蜡充分脱掉的目的，加热只是为了加速石蜡的溶解；
二甲苯1（15min 60 度）--二甲苯15min 60 度）--100% 乙醇
（10min）--90% 乙醇（5min） --80%乙醇（5min）--70% 乙醇（5min）--
蒸馏水（5min）
2•抗原修复（微波修复法）：目的是让蛋白抗原充分暴露
1）柠檬酸盐溶液：（PH: 6.0） 500ml不同的蛋白应采用不同的抗原修复条件，比如说膜蛋白PDGFRA的煮沸时间不能过长；核蛋白KI67 及包浆蛋白应充分煮沸；
2）E DTA修复液（PH: 9.0）稀释后体积是 500ml cox2 及 PDGFRA!
白的抗原修复的效果较好；
3.清洗：PBS 5min*3 次；
4.去除组织 H2O2 酶：3%H2O2 37 度 10min ；
5.清洗：PBS 5min*3 次；
6•—抗孵育：4度过夜；
过夜--过夜--过夜--过夜--过夜
7•取出玻片盒，放置于室温复温 30min （—般不做此步骤）；
8•—抗回收：将一抗回收标记清楚以备进行其他实验；
9.清洗：PBS 5min*3 次；
10•孵育二抗：37度30min ；二抗的添加主要是根据一抗的来源，抗
鼠、抗兔或者其他；
11.清洗： PBS 5min*3 次
12.DAB显色：DAB的显色时间主要取决于棕色颗粒的数目和浓度; 一般在3min-10min之间；
13•复染：用苏木精染色，根据显微镜下核的深度来判断；
14.蓝化：将染过的核放在水中10min左右；
15透明、封片：蓝化后的玻璃切片滴加中性树脂透明后封片；16•放置于65度烤箱，烘干，观察实验结果。

蛋白实验技术——免疫组化实验步骤

蛋白实验技术——免疫组化实验步骤免疫组化（immunohistochemistry，IHC）是一种常用的分子生物学研究手段，用于检测和定位特定蛋白质在组织或细胞中的表达和分布情况。

以下是免疫组化实验的常见步骤：1.材料准备：-组织样本：一般使用福尔马林固定、石蜡包埋的组织切片。

-抗体：根据要检测的蛋白质选择特异性和高亲和力的一抗。

还需选取对该抗体特异性有所了解的阴性对照抗体作为对照。

-二抗：选择特异性与一抗结合的二抗，二抗常标记有荧光素、酶或金颗粒等。

-染色剂：包括染色素、转化底物和显色剂等。

2.样本处理：-脱蜡：将石蜡包埋的组织切片放置在58-60℃热箱中，反复浸泡于甲醇和乙醇中将石蜡脱除。

-抗原修复：使用热蒸汽或酶解剂等方法，将福尔马林固定的组织切片中的抗原开放，以方便抗体与抗原结合。

-除脂：用乙醚或甲醚等化学溶剂洗涤，去除脂肪质的干扰。

3.抗体处理：-阻断剂处理：使用阻断剂（如牛血清蛋白）阻断切片中非特异性结合位点。

-一抗处理：将选择的抗体稀释于阻断液中，加到组织切片上，保持温度和湿度有利于抗原结合。

-二抗处理：根据实验需要，选择将一抗特异性结合的二抗标记，加到组织切片上。

二抗的选择需要根据实验所用的检测方法进行确定。

4.检测与显色：-荧光染色：使用激光产生的特定波长的光源，观察组织中特异性荧光的发光。

-酶联免疫组化：在二抗的标记中常使用辣根过氧化物酶（HRP），添加辣根过氧化氢-二甲基氨基甲酸酯（DAB）进行染色反应。

-光镜观察：使用透射光镜观察染色的结果。

通过比较阳性对照和阴性对照组织切片，可以确定染色结果的特异性。

5.结果分析：-显微镜下观察：根据阳性对照组织切片和实验组织切片的染色情况进行观察和比较。

-计算和分析：可以根据染色结果的强度和程度进行定量研究，使用图像分析软件进行图像处理和数据分析。

此外，免疫组化实验还需要注意以下几点：-尽可能使用正常组织作为阳性对照，使用未加抗体或添加非特异性免疫血清的组织作为阴性对照，以确保实验结果的准确性。

免疫组化超详细步骤

免疫组化超详细步骤免疫组化是用抗体识别特定蛋白质来检测组织和细胞中的蛋白质表达。

其可广泛应用于病理学、生理学和生物学等领域中。

下面将详细介绍免疫组化的步骤。

1. 组织处理首先，需要采集样本组织，常见的样本来源包括活体组织、固定组织和石蜡包埋切片。

不同的组织来源需要采用不同的处理方法。

对于新鲜的活体组织，可以通过切片、离心、冷冻等手段进行处理。

而对于已固定的组织，需要进行脱水、清洗、去蜡等前处理步骤。

同时，还需要注意保护蛋白质的完整性，以免影响后续细胞学的表达情况。

2. 抗原修复样本经过前处理后，可能会发生抗原损失或失活现象。

为了提高蛋白质的表达和稳定性，需要进行抗原修复处理。

一般采用的方法包括微波处理、煮沸处理、酶切处理等。

3. 样本烘干对于已经进行过前处理和抗原修复的样本，需要进行烘干处理，以免影响后续染色结果。

常见的方法包括空气干燥、乙醇除水、真空蒸发等。

4. 抗体选择根据实验需求，选择合适的一抗和二抗。

一抗是特异性识别目标抗原的抗体，一般是单克隆或多克隆的小鼠、兔、鸡等动物来源。

二抗是与一抗特异亚型相对应的抗体，主要用于增强信号。

二抗一般来自于不同阳性动物中。

5. 抗体稀释选定好的一抗和二抗，需要进行适当的稀释。

稀释倍数应根据抗体的浓度来控制，以获得最佳的信号与噪声比。

6. 组织切片将已处理好的组织切片成合适的大小，并摆放到载玻片上。

可以选用切片机、剪刀、切片钳等工具进行处理。

7. 抗体染色将稀释好的一抗液滴加到组织切片上，尽量润滑整个切片表面。

然后将切片在湿润的环境中孵育2-6小时，让一抗充分和目标蛋白质结合。

之后，将二抗液滴加到组织切片上，孵育30-60分钟。

通过荧光、酶标记、颜色标记等方式进行检测。

8. 洗涤处理组织切片在染色过程中会出现背景颜色可能会较强，影响实验结果的情况。

为了去除这些杂质，需要对切片进行洗涤处理。

一般采用的方法为不同性质的缓冲液进行多次反复的洗涤处理。

9. 封片组织切片染色完毕后，需要经过封片过程。

免疫组化的步骤

免疫组化的步骤
1、吸去培养基，每孔每次用300μl PBS (Na2HPO4 1.44g，KH2PO4 0.24g，
KCl 0.2g，NaCl 8g加蒸馏水定容至1000mL, pH7.4)漂洗2×10min；(延壁加入PBS后在摇床上摇晃)；
2、100%甲醇-20℃预冷，每孔300μl 甲醇-20℃固定细胞8min；
3、每孔每次有300μl 0.2% Triton PBS(0.2ml Triton/100ml PBS)漂洗3×5min；
4、每孔每次有300μl 0.5% Triton PBS(0.5ml Triton/100ml PBS)破膜8min；
5、每孔每次有300μl 0.2% Triton PBS漂洗3×5min，每孔每次有300μl 5%
BSA(5gBSA/100mlPBS)封闭1h保持湿度，每孔每次100μl I抗4℃过夜(一抗用5% BSA稀释)；
6、每孔每次有300μl 0.2% Triton PBS漂洗3×10min；
7、每孔每次100μl II抗室温孵育37度1h(避光，免疫双标时两种荧光II抗一起加入，II抗用5% BSA稀释）；
8、每孔每次有300μl 0.2% Triton PBS漂洗3×10min；
9、每孔每次有100μl Hoechst(1μg/ml) 复染核15min后，每孔每次有300μl 0.2% Triton PBS漂洗3×10min后置于荧光显微镜下观察、照相；。

超详细的免疫组化步骤

免疫组化步骤操作步骤取出细胞-------PBS冲洗3次，每次5分钟-------用预冷的丙酮或甲醇溶液固定10分钟----PBS 冲洗3次，每次5分钟-----每张爬片加50ul非免疫性动物血清（封闭液）室温下10分钟---甩掉封闭液-----加一抗50ul，37℃培养箱孵育60分钟，或4℃过夜--------PBS冲洗3次，每次5分钟----每张爬片加二抗50ul,37℃或室温30--60分钟---PBS冲洗3次，每次5分钟----显色，酶标二抗加酶的底物（如DBA）染色，显微镜下观察3--10分钟，控制染色情况---自来水冲洗，苏木素复染，中性胶固定-------金标记或荧光标记在显微镜下直接观察。

结果判读：根据阳性对照和阴性对照，判断免疫染色是否成功。

阳性细胞定位是否明确，是胞膜，胞浆还是胞核阳性，间质是否清晰，无背景着色，同时阳性细胞达5%以上，方为阳性。

注意：浓缩型抗体应根据厂家提供的抗体效价，进行分装，按50ul或100ul分装，放入-20---70℃冰箱保存1--5年。

用PBS稀释抗体在4℃可放1--3天。

使用时必须按不同免疫染色方法找出抗体最佳稀释度。

即用型抗体可直接使用，无需稀释阴性对照可以使用PBS或10%的正常非免疫动物血清。

（用PBS或非一抗替代一抗来进行反应，其余步骤均一致，排除有无一抗外的非特异性染色。

）阳性对照可使用自己收集或购买的阳性切片。

假阳性：抗体的稀释度不正确，浓度太高；部分多克隆抗体的特异性问题。

假阴性：抗体和检测试剂盒配对不合理。

如单克隆抗体（多为鼠）试剂盒应为鼠用试剂盒；多克隆抗体（多为兔）试剂盒应为兔用试剂盒。

免疫组化实验具体步骤及说明

免疫组化实验具体步骤及说明免疫组化（Immunohistochemistry，IHC）是一种用于检测组织部分或特定分子的表达、定位和定量的技术。

它基于抗原抗体相互作用的原理，通过特异性的抗体与目标分子结合形成复合物，再通过染色反应显示出目标分子的位置和数量。

IHC广泛应用于癌症诊断、疾病研究和药物开发等领域。

以下是免疫组化实验的具体步骤及说明：1.标本制备：首先，取得切片的组织标本，通常是经过固定和包埋的组织。

然后，将组织切片取下玻片，用去离子水处理。

最后，将切片分别置于乙醇溶液中进行脱水，再用苯酚或其他抗氧化剂处理，以保护切片的蛋白质结构。

2.去蜡：将切片置于细胞清洗液中，用搅拌器在室温下搅拌，去除蜡层。

然后，分别使用乙醇降级脱水和再次用去离子水处理，以去除残留的蜡。

3.抗原检出：使用特定的抗体来检测目标分子。

首先，在切片中添加抗原修复溶液，进行退火和抗原修复，以恢复抗原的免疫原性。

然后，用PBS洗涤切片，去除剩余的抗原修复液，并将切片与蛋白质阻断剂孵育，以防止非特异性结合。

最后，将切片与特异性的初级抗体孵育，以形成抗原-抗体复合物。

4.特异性结合检测：添加特异性的二级抗体，如辣根过氧化物酶（HRP）标记的抗鼠IgG，与初级抗体特异性结合。

此外，还可以使用荧光标记的二级抗体，以便通过显微镜直接检测目标蛋白质的荧光信号。

完成二级抗体与抗原复合物的结合后，用PBS洗涤切片。

5.信号放大与检测：对于HRP标记的二级抗体，使用辣根过氧化物酶底物，如DAB（二氨基苯类胺）或TMB（3,3',5,5'-四甲基联苯胺）。

这些底物在酶作用下会形成可见的棕色沉积物。

对于荧光标记的二级抗体，在显微镜下直接检测荧光信号。

6.染色和显微镜观察：将切片用PBS洗涤，然后用余晖蓝染色溶液浸泡，以增强显微镜下观察的对比度。

最后，用水轻轻冲洗切片，除去多余的染色剂。

用显微镜观察切片，评估目标蛋白质的表达和定位。

超详细的免疫组化步骤

超详细的免疫组化步骤免疫组化是一种在细胞或组织中检测和定位特定蛋白质或抗原的常用方法。

它结合了抗体的特异性识别和化学染色的敏感性，可用于研究疾病机制、病理诊断以及新药的有效性评估。

下面将详细介绍典型的免疫组化步骤。

1.材料准备收集所需的材料，包括标本（细胞或组织切片）、抗体、试剂、缓冲液等。

确保材料的新鲜性和质量。

2.样本制备将组织或细胞样本固定在载玻片上，常用的固定剂包括福尔马林、乙醇、乙酸等。

固定时间和方式根据实验需求而定。

3.抗原修复将固定的样本进行抗原修复，以恢复被固定过程中可能损失的抗原活性。

常见的抗原修复方法包括热解固定、酶解和酸解等。

4.渗透化用洗涤缓冲液（如Tris缓冲液或磷酸盐缓冲液）对样本进行渗透化处理，以增加抗体对检测目标的进入。

这可以通过在洗涤缓冲液中加入表面活性剂（如Tween-20）来实现。

5.阻断非特异性结合使用阻断剂，如牛血清蛋白（BSA）、鱼胶蛋白或干奶粉，封闭未特异性结合位点，以减少背景信号。

6.抗体孵育加入一定浓度的特异性一抗（一抗），并在恰当的温度和时间下进行孵育，使抗体与目标抗原发生特异性结合。

此过程可通过在一抗溶液中加入低浓度的特异性二抗来增强信号。

7.洗涤使用洗涤缓冲液洗涤孵育后的样本，以去除未结合的抗体和其他非特异性反应物。

大约3-5次洗涤，每次持续几分钟。

8.抗原-抗体结合信号的检测根据一抗特异性结合后产生的信号进行检测。

常用的方法有酶标记法（如辣根过氧化物酶（HRP）或碱性磷酸酶（AP）标记的二抗）或荧光标记法（如荧光素二亚胺酸（FITC）或荧光素异硫氰酸酯（TRITC）标记的二抗）。

9.信号放大根据检测方法的要求，使用合适的信号放大试剂增强信号的灵敏度。

常见的方法有酶偶联信号放大（如使用酶标记的亲和二抗和酶底物）或荧光信号放大（如使用荧光放大试剂）。

10.染色在信号放大后使用染色试剂进行染色，以显示和定位目标抗原。

染色试剂的选择取决于检测方法，如DAPI（细胞核染色）、H&E（常规染色）、DAB（酶标记方法）等。

免疫组化实验步骤

免疫组化实验步骤1.血样制备：-采集血液样本，离心分离血浆或血清。

-用PBS洗涤血浆或血清，去除杂质。

2.组织固定：-采集待检组织样本，用缓冲福迪液进行固定。

常用的福迪液包括4%的甲醛和10%的中性缓冲福迪液。

-将组织固定在玻片上，通常通过石蜡包埋来保护组织样本。

3.切片：-使用旋转式或电动切片机将固定的组织切割成5-10μm厚的切片。

-将切片放置在带有去福迪剂密封的玻片上，然后进行脱脂和重水处理。

4.抗原恢复：-将切片浸泡在适当的抗原恢复缓冲液中，以恢复切片中的抗原结构。

-常用的抗原恢复方法包括热敏感抗原恢复、酶消化抗原恢复和酸碱抗原恢复等。

5.阻断非特异性结合位点：-使用适当浓度的蛋白抑制剂（如牛血清蛋白）在切片上进行阻断，防止非特异性结合。

-将切片在室温下孵育一段时间，以使蛋白抑制剂有效阻断非特异性结合。

6.抗体染色：-添加特定的初级抗体到切片上，与待检测的特定抗原结合。

-孵育切片，使初级抗体与抗原结合。

-将切片用PBS或缓冲盐水洗涤去除未结合的抗体。

7.信号放大：-添加合适的二级抗体到切片上，与初级抗体结合。

二级抗体可标记有荧光染料、酶或金粒等。

-孵育切片，使二级抗体与初级抗体结合。

-将切片用PBS或缓冲盐水洗涤去除未结合的二级抗体。

8.检测与成像：-根据二级抗体标记的方式，使用合适的检测方法进行信号放大。

-如果使用荧光标记的二级抗体，可以利用荧光显微镜观察和拍摄图像。

-如果使用酶标记的二级抗体，可以使用底物和显色试剂进行检测和成像。

9.结果分析：-观察并分析免疫组化染色结果，评估抗原的定位和表达情况。

-可以使用计算机图像分析系统进行定量分析和比较。

10.结论和报告：-根据实验结果，得出结论并撰写实验报告。

-将实验结果与已知文献资料进行对比和解释，讨论可能的研究价值和应用前景。

注意事项：-实验过程中需严格遵守无菌操作规范，以避免交叉污染和误差。

-选用合适的正对照和阴性对照，以确保实验结果的准确性和可靠性。

免疫组化实验步骤

免疫组化实验步骤
1 前期准备
免疫组化实验试验主要是利用细胞中含有特定标志物的抗体，来观察细胞中某些特定蛋白质的位置和分布情况，其前期准备工作有以下几点需要考虑：
1、要做免疫组化实验必须首先准备一些*抗体,即抗特定标志物的抗体；
2、准备标本培养环境，保证细胞存活活跃；
3、清点实验要用到的必要物质，检查是否所有实验材料都已准备就绪；
4、准备实验记录，如实验方案、实验步骤、实验结果等，以保证实验数据的准确性和可比性。

2 具体实验步骤
免疫组化实验是实验员非常关注的一个实验，下面罗列出其具体实验步骤：
1、将标本培养到细胞形成一定规模的培养皿；
2、冷冻切割：将细胞悬停的溶液，用-20度的硫酸乙酸或三氯甲烷冷冻，然后将其分割为明显的薄片；
3、将冷冻标本培养到特定的沉淀液中，然后以石蜡改变其物理性质，使蛋白质定置固定；
4、将固定的载体实验片上滴涂稀释的抗体，经一定的反应时间，使其与抗原结合；
5、以使抗体以及它所结合的标志物发挥发色效果，得以定位特定的蛋白质。

免疫组化实验往往被用来观察某个蛋白质在不同细胞水平和组织水平分布情况，从而形成具有一定科学依据性的认识，为临床医学研究和药物方案提供可靠的指导和依据。

免疫组化实验步骤及配方

免疫组化实验步骤及配方免疫组化实验是一种用于检测和定位特定蛋白质在细胞、组织或器官中表达的技术。

免疫组化实验包括一系列步骤，如抗原修复、非特异性结合抑制、免疫原和次级抗体处理、显色/荧光染色等。

下面将详细介绍免疫组化实验的步骤及配方。

1.抗原修复：抗原修复是为了恢复因组织固定而引起的抗原性损失。

一般使用高温或酶解方法进行抗原修复。

-高温方法：将组织切片置于高温缓冲液中加热，一般在95°C下加热15-20分钟。

-酶解方法：如胰酶消化、蛋白酶消化等。

例如，可以使用0.1%胰酶在37°C下进行酶解。

2.非特异性结合抑制：非特异性结合抑制是为了防止免疫试剂（如次级抗体）与非特异性蛋白结合，从而降低假阳性结果。

一般使用正常动物血清或胶体等进行非特异性结合抑制。

-正常动物血清：根据动物源种类（如小鼠、兔子等）选择相应的正常动物血清。

-胶体：如牛血清蛋白、牛血清白蛋白等。

可以在最终稀释液中加入1-2%的胶体。

3.免疫原处理：免疫原处理是为了增强目标抗原与抗体的结合效率，一般通过与次级抗体或酵素结合。

根据具体实验需求，可以选择荧光标记、酶标记或金标记等不同的方式进行免疫原处理。

-荧光标记：如荧光素等。

-酶标记：如辣根过氧化物酶（HRP）、碱性磷酸酶（AP）等。

-金标记：如胶体金、纳米金等。

4.次级抗体处理：次级抗体处理是为了增强免疫原与目标抗原之间的结合效应。

一般使用来自其他物种的抗体作为次级抗体。

根据不同实验需求，可以选择与荧光标记、酶标记或金标记结合的次级抗体。

-荧光标记：如青蒿素标记的抗兔荧光标记抗体等。

-酶标记：如HRP标记抗体、AP标记抗体等。

-金标记：如碳标记抗体、金标记抗体等。

5.显色/荧光染色：显色/荧光染色是为了可视化目标抗原的分布和定位。

根据不同的免疫标记试剂，可以选择适当的染色方法。

-显色：如DAB（3,3'-二氨基联苯）染色。

-荧光染色：根据使用的荧光标记试剂选择相应的染色方法，如DAPI 染色、FITC染色等。