生理学实验五
动物生理学实验课件(五) 鱼类胃肠道运动的观察
1.操作要细心，不要损伤迷走神经；不要损伤迷走神经与 胃的联系。
2.注意经常用任氏液湿润神经和胃肠道，以防止干燥，但 应注意不要让电极短路。
3.每次刺激前后，应仔细比较胃肠道运动的变化情况。
实验五 鱼类胃肠道运动的观察
六.作业与思考
1.胃肠道肌肉有什么生理特性？ 2.胃肠道运动有哪些形式？你观察到有哪些？ 3.比较刺激胃肠道前后胃肠道运动有什么不同，并分析其
实验五 鱼类胃肠道运动的观察
三.实验材料与用具
胡子鲶或乌鳢，培养皿、烧杯、滴管，烧瓶夹，注射 器1支，生理试验多用仪1台，刺激用保护电极1根，普通 电极1根，支架、常用手术器械、蛙板、蛙心夹、污物缸、 纱布1块、棉线、抹布1块，鱼用任氏液，肾上腺素（1： 10000），乙酰胆碱（1：10000）。
7.当胃肠道强烈运动时，将肾上腺素溶液滴加在胃肠道上， 观其反应。完成后用鱼用任氏液清洗腹腔。
8.当胃肠道运动减弱后，将乙酰胆碱溶液滴加在胃肠道上， 观其反应。完成后用鱼用任பைடு நூலகம்液清洗腹腔。
实验五 鱼类胃肠道运动的观察
9.重复第7项内容。
10.按第6项的刺激参数，对胃肠道肌肉直接进行电刺激， 观其反应。
四.实验操作与观察
1.破坏延脑等脑组织。
2.打开腹腔，暴露其内脏。不拨动胃肠道的条件下观察胃 肠道运动形式和运动程度。
实验五 鱼类胃肠道运动的观察
3.拨动胃肠道之后，再观察胃肠道的运动情况。
4.小心地摘除掉肝脏和胆囊。
5.观察食道左侧迷走神经的走向和分布。分离该迷走神经， 穿线备用。
6.电刺激迷走神经，观察胃肠道运动情况的变化。
实验五 鱼类胃肠道运动的观察
课件制作 吴洪流
植物生理学实验
实验五种子活力的测定（红墨水法）一、实验目的掌握快速测定种子活力的方法二、实验原理种子生命力是指种子能够萌发的潜在能力或种胚具有的生命力。
它是决定种子品质和实用价值大小的主要依据，与播种时的用种量直接有关。
活细胞的原生质膜具有选择性吸收物质的能力，而死的细胞原生质膜丧失这种能力，于是红墨水染料可进入死细胞而使其染色。
活细胞不能吸收红墨水所以不染色。
三、试剂、材料5%红墨水、培养皿、刀片青稞种子四、实验过程1、将随机购买的种子用温水浸泡3-6小时，使其充分吸胀。
2、吸胀后的种子挑选50粒，沿胚中心线纵切为两半。
3、一半至于培养皿中，用红墨水浸泡染色10分钟，染色后倒去红墨水，用清水冲洗至液体无色。
4、另取50粒种子吸胀，沸水煮熟成死种子，重复步骤3，作为空白对照。
五、计算结果未被染色的种子数目种子活力＝*100％总种子数目实验一植物组织水势的测定--小液流法一、实验目的1、掌握植物细胞水势概念及计算公式；2、了解小液流法测定植物组织水势的方法。
二、实验原理1、植物细胞、组织之间以及植物体和环境间的水分间移动方向都由水势差决定；2、当植物细胞或组织放在外界溶液中时：A、ψw＜ψs，则植物组织吸水，C外↑，液滴↓；B、ψw＞ψs，则植物组织失水，C外↓，液滴↑；C、ψw＝ψs，则二者水分保持动态平衡，C外不变，液滴不动。
三、试剂、材料试管、试管架、滴管、打孔器、蔗糖溶液菠菜四、实验过程1、取出8支试管，依次编号1、用1mol/l的蔗糖溶液配制0.10、0.20、0.30、0.40、0.50M、0.60M、0.70M、0.80M一系列不同浓度的蔗糖溶液，取出8支试管用力混匀。
五、实验结果根据公式计算叶片细胞的水势公式：ψw =-RTiC式中：ψw为细胞水势，R为摩尔气体常数，0.083×105（L٠Pa）/（mol٠K）；T为热力学温度，单位K；即273+t ，t为实验温度，单位是℃；i为解离系数，蔗糖为1；C为等渗溶液的质量摩尔浓度，单位是mol/L。
生理学实验实验报告总结(3篇)
第1篇一、实验目的本次生理学实验旨在通过一系列的实验操作，加深对生理学基本理论的理解，掌握实验技能，培养科学思维和实验操作能力。
通过本次实验，我们学习了生理学实验的基本原则和方法，了解了生理学实验的基本步骤和注意事项。
二、实验内容1. 神经反射实验- 实验目的：观察和分析神经反射的基本现象，了解反射弧的组成和功能。
- 实验方法：采用小鼠作为实验动物，通过电刺激法刺激坐骨神经，观察肌肉的收缩反应。
- 实验结果：成功观察到电刺激坐骨神经后，肌肉出现明显的收缩反应，证实了神经反射的存在。
2. 血压测量实验- 实验目的：学习血压测量的原理和方法，了解血压的正常范围及其生理意义。
- 实验方法：使用血压计对实验动物进行血压测量，并记录血压数据。
- 实验结果：成功测量了实验动物的血压，结果显示血压在正常范围内。
3. 呼吸生理实验- 实验目的：观察和分析呼吸运动的基本规律，了解呼吸系统的生理功能。
- 实验方法：通过观察呼吸肌的收缩和舒张，以及肺容积的变化，分析呼吸运动的机制。
- 实验结果：观察到呼吸肌的规律性收缩和舒张，以及肺容积的变化，证实了呼吸运动的规律性。
4. 消化生理实验- 实验目的：观察和分析消化系统的生理功能，了解食物的消化和吸收过程。
- 实验方法：通过观察消化液的分泌和消化器官的活动，分析消化系统的生理过程。
- 实验结果：观察到消化液分泌的增加和消化器官的活动增强，证实了消化系统的生理功能。
三、实验过程1. 实验前准备：了解实验原理，熟悉实验器材，做好实验记录表格。
2. 实验操作：严格按照实验步骤进行操作，注意实验安全和数据记录。
3. 实验观察：仔细观察实验现象，及时记录实验数据。
4. 实验结果分析：对实验数据进行整理和分析，得出结论。
四、实验结果分析1. 神经反射实验：通过电刺激坐骨神经，成功观察到肌肉的收缩反应，证实了神经反射的存在。
2. 血压测量实验：血压测量结果显示在正常范围内，说明实验动物的生理状态良好。
生理学实验报告
生理学实验报告实验一坐骨神经-腓肠肌标本制备[1] 实验目的1.学习机能学实验基本的组织分离技术；2.学习和掌握制备蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的方法；3.了解刺激的种类。
[2] 实验原理蛙类的一些基本生命活动和生理功能与恒温动物相似，若将蛙的神经-肌肉标本放在任氏液中，其兴奋性在几个小时内可保持不变。
若给神经或肌肉一次适宜刺激，可在神经和肌肉上产生一个动作电位，肉眼可看到肌肉收缩和舒张一次，表明神经和肌肉产生了一次兴奋。
在机能学实验中常利用蛙的坐骨神经-腓肠肌标本研究神经、肌肉的兴奋、兴奋性，刺激与反应的规律和肌肉收缩的特征等，制备坐骨神经腓肠肌标本是机能学实验的一项基本操作技术。
[3] 实验对象蛙[4] 实验药品任氏液[5] 仪器与器械普通剪刀、手术剪、眼科镊（或尖头无齿镊）、金属探针（解剖针）、玻璃分针、蛙板（或玻璃板）、蛙钉、细线、培养皿、滴管、电子刺激器。
[6] 实验方法与步骤①破坏脑、脊髓取蛙一只，用自来水冲洗干净（勿用手搓）。
左手握住蛙，使其背部向上，用大拇指或食指使头前俯(以头颅后缘稍稍拱起为宜)。
右手持探针由头颅后缘的枕骨大孔处垂直刺入椎管（图3-1-1）。
然后将探针改向前刺入颅腔内，左右搅动探针2～3次，捣毁脑组织。
如果探针在颅腔内，应有碰及颅底骨的感觉。
再将探针退回至枕骨大孔，使针尖转向尾端，捻动探针使其刺入椎管，捣毁脊髓。
此时应注意将脊柱保持平直。
针进入椎管的感觉是，进针时有一定的阻力，而且随着进针蛙出现下肢僵直或尿失禁现象。
若脑和脊髓破坏完全，蛙下颌呼吸运动消失，四肢完全松软，失去一切反射活动。
此时可将探针反向捻动，退出椎管。
如蛙仍有反射活动，表示脑和脊髓破坏不彻底，应重新破坏。
图2-1-1 捣毁蟾蜍脊髓②剪除躯干上部、皮肤及内脏用左手捏住蛙的脊柱，右手持粗剪刀在前肢腋窝处连同皮肤、腹肌、脊柱一并剪断（图3-1-2），然后左手握住蛙的后肢，紧靠脊柱两侧将腹壁及内脏剪去（注意避开坐骨神经），并剪去肛门周围的皮肤，留下脊柱和后肢（图2-1-3）。
生理学实验报告
生医2012秋生理学实验报告指导教师：实验员：学号：联系方式：实验一骨骼肌的观察及骨骼肌的单收缩与强直收缩目标要求1.掌握蛙类动物单毁髓的实验方法;2.掌握坐骨神经-腓肠肌标本和坐骨神经干标本的制备方法;3.学习肌肉收缩的记录方法;4.观察与分析肌肉单收缩的三个时相,分析骨骼肌收缩形式与刺激频率之间的关系;基本原理蛙类动物的某些基本生命活动,如神经的生物电活动、肌肉收缩等与哺乳动物相似;其离体组织所需的生活条件比较简单,易于控制和掌握,而且动物来源丰富,因此在生理学实验中常用蟾蜍的坐骨神经—腓肠肌标本永和坐骨神经标本来观察组织的兴奋性、刺激与反应的规律以及骨骼肌收缩的特点等;肌肉受到一次阈上刺激而产生的一次收缩为单收缩,其过程可分为三个时相,即潜伏期、缩短期与舒张期;肌肉收到连续的阈上刺激时,如果刺激间隔小于单收缩的时程,相邻两单收缩的时相会出现融合,表现为强直收缩现象;如果表现为每次收缩的开始发生在上次收缩的舒张期,称不完全强直收缩,如果表现为每次收缩的开始发生在上次收缩的缩短期,称完全强直收缩;躯体运动是以骨为杠杆,以关节为枢纽,由肌肉收缩产生动力完成的;材料与器械蟾蜍或蛙,蛙类手术器械手术剪、手术镊、眼科剪、眼科镊、金冠剪、毁髓针、玻璃针、固定针,蛙板,玻璃板,锌铜弓,小烧杯,滴管,纱布,细棉线,任氏液;BL-420生物机能实验系统或其他生理记录仪,张力换能器;实验步骤1.双毁髓的方法一手握蟾蜍,食指按压头部前端,拇指压住躯干背部,令其背部向上,头向前俯；另一手持毁髓针在左右耳后腺之间,背部的凹陷处将毁髓针垂直刺入,然后将针尖向前刺入颅腔,搅动以捣毁脑组织,此时的动物为单毁髓动物;彻底捣毁脊髓时,可见蟾蜍后肢突然蹬直,然后瘫软;如动物仍表现四肢肌肉紧张或活动自如,表明未毁坏脊髓,必须重新毁髓;2.剥制后肢标本将双毁髓的蟾蜍背面向上放在蛙板上,一手持手术镊轻轻提起两前肢之间背部的皮肤,另一手持手术剪横向剪开皮肤,暴露脊柱;用金冠剪横向剪断脊柱;一首持手术镊提起断开的脊柱后端,另一手用金冠剪沿脊柱两侧剪开体壁,再剪断下腹壁肌肉,使头部、前肢及内脏自然下垂,将其自腹后壁剪除;然后用蘸有任氏液的左手捏住断开的脊柱后端,右手向后方撕剥皮肤,将剥干净的后肢放入盛有任氏液的培养皿中;弃其头部、内脏及剥下的皮肤,清洗手及手术器械上的污物;3.分离两后肢左手托起去皮的标本,右手持金冠剪直接剪开耻骨联合,随后剪开两后肢相连的肌肉组织,并纵向剪开脊柱尾杆骨留在一侧,将标本一分为二,一只继续剥制标本,另一只放入任氏液中备用;4.分离坐骨神经取一侧后肢的脊柱端腹面向上,趾端向外侧翻转,使其足底朝上,用固定针将标本固定在玻璃板下面的蛙板上;用玻璃针沿脊神经向后剥离坐骨神经;沿腓肠肌正上方的股二头肌和半膜肌之间的肌缝找出股部的坐骨神经,坐骨神经基部有一梨状肌盖住神经,用玻璃针轻轻挑起此肌肉,便可看清其深层穿行的坐骨神经;剪断梨状肌,完全暴露坐骨神经,再用玻璃针轻轻挑起神经,自上而下剪去支配腓肠肌之外的其他分支,将坐骨神经游离至腘窝处;用金冠剪剪去多余的脊柱骨及肌肉,只保留坐骨神经发出部位的一小块脊柱骨;取下脊柱端的固定针,用手术镊轻轻提起脊柱骨的骨片,将神经搭在腓肠肌上;5.游离腓肠肌用玻璃针将腓肠肌与胫腓骨分离开,用手术刀片将腓肠肌跟腱与胫腓骨分离开一段,用手术镊在腓肠肌跟腱下穿线并结扎,提起结扎线,剪断跟腱与胫腓骨的联系,游离腓肠肌;6.分离股骨一手捏住股骨,沿膝关节剪去股骨周围的肌肉,用金冠剪刮干净股骨上的肌肉,保留股骨的远端二分之三,剪断股骨;剪去膝关节下部的后肢,保留腓肠肌与股骨的联系;7.检验标本用手术镊轻轻提起标本的脊柱骨片,使神经离开玻璃板,持经任氏液蘸湿的锌铜弓,使其两极轻触神经,如腓肠肌反生收缩,则表示标本机能正常;提起腓肠肌上的结扎线,勿使神经收到牵拉,轻轻将标本放入任氏液中,稳定5-10min,即可用于实验;8.将坐骨神经-腓肠肌标本的股骨部分插入肌槽的固定孔内,拧紧固定螺丝,将坐骨神经放在电极上,将跟腱上的结扎线与张力换能器相连;9.用BL-420生物机能实验系统或其他类型的生理记录仪记录单收缩和强直收缩,步骤如下：（1）将张力换能器在肌槽上方与肌槽平行地固定于铁支架上,将标本上的结扎线缚于张力换能器悬梁壁上,将换能器输出的插头连于BL-420生物机能实验系统;（2）将BL-420生物机能实验系统的输出电极连于肌槽电极上;选择采样频率、显示方式、显示通道、时间常数、高频滤波,必要时还要选择50Hz陷波；记录时选择刺激标记;（3）选择单刺激方式,合适的刺激强度、刺激时间、扫描速度、纵向放缩和刺激标记,记录单收缩曲线;记录曲线参考图;（4）选择连续刺激方式,参考单刺激的刺激强度、刺激时间、纵向放缩、刺激标记、调节刺激时间间隔和扫描速度,分别记录不完全强直收缩曲线和完全强直收缩曲线;记录曲线参考图;（5）将记录曲线存盘,根据需要进行剪辑和编辑,最后导出另存或输出打印;实验记录分析：刺激电压低于阈上刺激,神经不兴奋,肌肉也不会收缩;当电压达到阈强度,神经开始兴奋,肌纤维才开始收缩;当刺激频率增大时,如果刺激频率小于骨骼肌收缩舒张频率就可以看到数个比较完整的收缩舒张波从零电位到峰值,再由峰值回到零电位,而当刺激频率大于骨骼肌收缩舒张频率时,骨骼肌一次收缩后还没来得及舒张完全就又受到电刺激重新达到收缩峰值,刺激频率增大到一定强度时就几乎看不到骨骼肌舒张的波形,持续收缩直至僵直;注意事项1.双毁髓时应注意使蟾蜍头部前俯,用纱布盖在耳后大腺上,防止耳后腺分泌物射入眼内;如分泌物射入眼内,应立即用生理盐水冲洗眼睛;标本制备过程中应经常滴加任氏液,防止标本干燥;思考题1、剥去皮肤的后肢,能用自来水冲洗吗为什么2、答：不能;自来水是低渗溶液,会使肌细胞失水萎缩,影响活性和实验结果;3、金属器械碰压、触及或损伤神经及腓肠肌,可能引起哪些不良后果答：金属器械碰压神经与腓肠肌,会引起肌肉收缩,如果碰的较重,损伤部位及近端的神经就死亡了,以后刺激只能从损伤处向肌肉处之间的部分;另外容易使标本疲劳,失去活性;4、如何保持标本的机能正常答：金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌,保持湿润,常加任氏液,最好先泡一会;实验二蟾蜍离体蛙心灌流目的要求1.学习两栖类动物离体心脏的灌流方法,掌握斯式插管法；2.证明心肌具有自动节律性收缩的生理特征；3.观察钠离子、钙离子、钾离子、肾上腺素、乙酰胆碱对心脏活动的影响；4.理解内环境各种理化因素的相对恒定对于细胞进行正常生命活动的重要意义;基本原理心脏离体后,仍能有节律地自动收缩、舒张,此为心肌的自动节律性;两栖类动物的心脏没有冠状动脉,心肌细胞直接从心腔中的血液中获得营养物质和氧气,因而可用斯式插管法进行离体心脏灌流;灌流液的成分应同动物内环境的成分基本一致,用于两栖类动物心脏的灌流液为任氏液;始终有任氏液灌流于心腔,离体心脏可长时间地活动,改变灌流液的成分则可引起心脏活动的改变;材料与器械蟾蜍或蛙,蛙心套管,套管夹,支架,双凹夹,滑轮,烧杯,常用手术器械,蛙板,蛙心夹,微机记录系统或二道记录仪,张力传感器,滴管,小烧杯,纱布,棉线,任氏液,%NaCl,5%NaCl,2%CaCl2,1%KCl,1/5000肾上腺素,1/10000乙酰胆碱;实验步骤1.暴露心脏取一只蟾蜍,用探针破坏脑和脊髓;双毁髓后,将其仰卧于蛙板上;一手持手术镊提起胸骨后方的皮肤,另一手持解剖剪剪开一个小口,然后将剪刀由开口处伸入皮下,向左、右两侧下颌角方向剪开皮肤;将皮肤掀向头端,再用手术镊提起胸骨后方的腹肌,在腹肌上剪开一口,将解剖剪紧贴体壁向前伸入,并沿皮肤切口方向剪开体壁,剪断乌喙骨和锁骨,使创口呈一倒三角形;一手持眼科镊,提起心包膜,另一手用眼科剪剪开心包膜,暴露心脏;在腹面可以看到一个心室,其上方有两个心房;心室右上角连着一个动脉干,其根部膨大为动脉圆锥;动脉干向上分成左、右两支主动脉;用玻璃针从动脉干背部穿过,将心脏翻向头侧;在心脏背面两心房下面,有一个呈紫红色的膨大部分,为静脉窦,是两栖类动物心脏的起搏点;静脉窦连左、右前腔静脉,后连一个后腔静脉；后腔静脉近窦处,有左、右肝静脉汇入;2.离体心脏制备斯式插管法分四步：1）动脉切口：在动脉干分支处下方穿过一线,并打一活结留作固定套管用;在左主动脉下方穿过一线,稍离动脉干分支处结扎;左手提起左主动脉上的结扎线,右手用眼科剪在结扎线下方近动脉圆锥处、沿向心方向将左主动脉壁剪一“V”斜口;2）套管入室：取一尖端大小适宜的斯式蛙心套管,加入少量任氏液,达套管内2~3cm高度即可;左手用小镊子夹住切口缘,轻轻上提,使切口扩大；右手持蛙心套管,自切口处插入动脉圆锥;然后,左手持主动脉上的结扎线向后拉,右手推送蛙心套管,使之进入动脉圆锥;当套管尖端到达动脉圆锥基部时,将套管稍稍后退,使尖端向动脉圆锥的背部后下方及心尖方向推进;在心室收缩时,将套管经主动脉瓣间隙插入心室腔内;进入心室后,血液冲入套管,并使液面随心脏波动而上下移动;如果套管没有顺利插入心室,应改变方向慢慢试插,不用蛮力;插入心室后不可插得过深,以免心室壁堵住套管口;3）固定套管：待套管尖端插入心室后,轻轻提起备用线,将左、右主动脉连同插入的套管用双结扎紧,再将结扎线固定在套管的小玻璃钩上,以防标本滑脱;用滴管吸去套管中的血液,更换新鲜任氏液;4）游离心脏：先将结扎线上方的左、右主动脉剪断;然后轻轻提起套管和心脏,看清静脉窦的位置;于静脉窦下方剪断所有的组织,使心脏离体;在结扎和剪断时,切勿损伤静脉窦;用任氏液反复冲洗心室内的余血,使套管内的灌流液中不再有残留的血液;套管内任氏液面高度应尽量保持一致,控制在2cm左右较为适宜;3.固定蛙心标本将插好离体心脏的套管固定在支架上,用蛙心夹夹住少许心尖部的肌肉;为了不使灌流液滴到传感器上,将蛙心夹上的系线绕过一个定滑轮与张力传感器相连;4.开启仪器打开计算机采集系统,接通张力传感器输入通道;打开matlab,选择“蛙心灌流”实验;5.实验记录1）记录正常心搏曲线;2）改用%NaCl溶液灌流,并作好加药记号,观察心搏变化;待曲线出现明显变化时,立即吸去套管中的灌流液,同时做好冲洗标记,并用新鲜任氏液清洗2~3次,待心搏恢复正常;3）向套管内加入2~6滴5%NaCl溶液,作好加药记号,观察心搏曲线的频率及振幅变化;当曲线出现明显变化时应立即吸去套管中的灌流液,并做好冲洗标记,迅速用新鲜任氏液清洗2~3次,待心搏恢复正常;4）同法向套管内加入1~3滴2%CaCl2溶液,观察并记录心搏的变化;当出现明显变化时,立即更换任氏液,待心搏恢复正常;5）向套管中加入1~2滴1%KCl溶液,记录心搏曲线变化;当心搏曲线变化时同法更换灌流液,待心搏恢复正常;6）同法记录套管中加入1~2滴肾上腺素溶液1/5000后心搏曲线的变化;7）同法记录套管中加入1~2滴乙酰胆碱溶液1/10000后的心搏曲线的变化;实验结果实验结果如下：1、正常心搏曲线2、用%NaCl溶液灌流分析：由图可知,Na离子会使心肌活动强度减弱,原因是用NaCl溶液灌注蛙心时,由于灌注液中缺乏Ca离子,以致心肌细胞动作电位2期内流钙离子减少,细胞质Ca离子浓度减少,心肌的收缩活动也随之减弱;3、用2%CaCl2溶液灌流分析：细胞外Ca离子在细胞膜上对Na离子内流有竞争性抑制作用,称为膜屏障作用;钙离子浓度增高时,钠离子内流受抑制,细胞0期除极速度与幅度减小,使兴奋性及传导性均降低;钙离子浓度增高使钙离子内流增多,因此慢反应细胞0期去极化加快加强,传导性增高,而快反应细胞平台期缩短,复极加速;钙离子内流增多,使心肌收缩能力增强;钙离子浓度降低时,所引起的变化与高钙时相反;因此加入氯化钙后,心率减少、振幅减少,基线上移;5、用KCl灌流分析：滴加氯化钾后的心搏曲线发现,曲线的频率逐渐减小,愈来愈疏,幅度逐渐下降,因为当细胞钾离子浓度增高时,钾离子与钙离子有竞争性拮抗作用,钾离子抑制细胞膜对钙离子的转运,使进入细胞内钙离子减少,心肌的兴奋—收缩偶联过程减弱,心肌收缩能力降低;所以心搏曲线振幅减小;6、用肾上腺素灌流分析：滴加肾上腺素后,蛙心收缩增强,心脏舒张完全,描记的心搏曲线幅度明显增大;其作用机理是,肾上腺素可与心肌细胞膜上的B受体结合,提高心肌细胞和肌浆网膜钙离子通透性,导致肌浆中钙离子浓度增高,使心肌收缩增强;另外,肾上腺素还有降低肌钙蛋白与钙离子亲和力,促使肌钙蛋白对钙离子的释放速率增加,提高肌浆网膜摄取钙离子的速度,刺激钠离子与钙离子交换,使复极期向细胞外排出钙离子的作用加速,这样,将使心肌舒张速度增快,整个舒张过程明显增加;6、加入乙酰胆碱灌流分析：上图可示,蛙心收缩减弱,心率减慢,最后出现蛙心停止舒张阶段;其机理为：乙酰胆碱与心肌细胞膜M受体结合,一方面提高心肌细胞膜钾离子通道的通透性,促使钾离子外流,将引起：1窦房强细胞复极时钾离子外流增多,最大复极电位绝对值增大；衰减过程减弱,自动除极速度减慢;这两方面因素导致窦房自律性降低,心率减慢;2复极过程中钾离子外流增加,动作电位2、3期缩短,钙离子进入细胞内减少,使心肌收缩减弱；另一方面乙酰胆碱可直接抑制钙离子通道,减少钙离子内流,进而使心肌收缩减弱;注意事项1.剪开动脉管壁时,不能只剪开其外的薄膜,而要彻底将血管内膜剪破,但不要把血管剪断;2.使用蛙心夹夹心尖时,不可夹得过多,以免因夹破心室而漏液;3.每种试剂使用后,都要用新鲜任氏液冲洗2~3次,以待心搏恢复正常;4.各种试剂的滴管不能混淆;5.每项实验都要有相应的对照;思考题根据实验结果,分析钠离子、钾离子、钙离子对心肌有何作用分析如上文;实验三小鼠脊髓半横切实验目的观察小白鼠脊髓半横断后的表现,加深对脊髓的认识;实验原理神经系统基本的活动形式是反射;简单的反射由脊髓完成,如膝反射,而复杂的反射则涉及到大脑皮层;脊髓把感受器接受到的信息传到大脑；大脑发出的信息又通过脊髓传到相应的效应器;这种传导机能主要由脊髓的白质来完成;白质是由神经元发出的长突起神经纤维组成的;脊髓中的神经纤维按不同的机能顺序排列;一旦脊髓被切断,则可导致切口以下相应部位的感觉或运动功能的丧失;实验对象小白鼠实验器材及药物改进的蛙板蛙板两边各钉两枚小元钉、小烧杯、药棉、手术缝针、丝线、解剖刀、剪刀、眼科手术刀、镊子、乙醚;实验方法及步骤1.用乙醚麻醉小鼠;2.把小白鼠俯卧和固定在改装了的蛙板上,剪去胸腰部背面的毛,在正中处用解剖刀纵切皮肤,划一个长的切口;3.紧贴第1~3节腰椎的棘突,用解剖刀切断椎上的肌腱,并用药棉球分离肌肉,暴露椎骨;4.用镊子夹住第二腰椎,另一个拿剪刀剪去棘突和椎弓,暴露白色的脊椎;5.在脊椎背面正中有一条纵向的血管,叫脊髓后静脉,以此为标志,用柳叶刀将一半脊髓从中央向外侧完全切断;6.松绑四肢,待其苏醒进行下列观察小白鼠在实验桌上运动状况;实验结果及分析当手术成功时,可观察到如下结果：小白鼠在运动时,与脊髓损伤同侧的后肢不能运动,呈现出以脊髓损伤侧为轴的转圈运动;结论：由大脑发出的运动指令到达脊髓后,通过脊髓白质的神经纤维继续向下传送,脊髓两侧的运动神经纤维大都在本侧里行走即不交叉到对侧;在脊髓被损伤的一侧,运动指令无法传到横切以下的部位,该侧后肢得不到运动指令,因而不能随意运动；脊髓未遭横切的一侧,大脑发出的运动指令,可以通过脊髓白质的神经纤维传到后肢肌肉,所以这一侧后肢运动如常;注意事项1.本实验成功的关键在于手术;首先麻醉要适度,麻醉过深小白鼠易死亡,过浅小白鼠易苏醒;其次用柳叶刀横切一侧脊髓时要防止损坏对侧脊髓;2.半横切部位必须在相当于第二腰椎的脊髓处,实验效果才好;手术中要防止出血过多;实验四心血管活动的神经体液调节实验目的学习哺乳动物动脉血压的直接测定方法和间接或直接地观察心血管活动的神经体液性调节;实验原理正常情况下,哺乳动物的血压是相当恒定的,这种相对恒定是通过神经和体液性的调节而实现的;心脏受交感神经和副交感神经的双重支配,心交感神经使心跳加快加强,传导加速,从而使心输出量增加;支配心脏的副交感神经是心迷走神经,兴奋时使心率减慢,心房收缩力减弱,房室传导减慢,从而使心输出量减少;支配血管的植物性神经,绝大多数属于交感缩血管神经,中枢通过反射作用调节心血管的活动改变心输出量和外周阻力,从而调节动脉血压;本实验是通过动脉血压的变化来反映心血管活动的变化的;实验用品家兔、D-95生理记录系统、血压换能器、塑料动脉插管、动脉夹、三通管、刺激器、保护电极、兔手术台、哺乳动物手术器械、手术灯、注射器、肝素生理盐水、40%酒精生理盐水、生理盐水、纱布、棉球、丝线、%肾上腺素、%乙酰胆碱等;实验步骤和项目一、手术准备1、麻醉并固定动物：耳缘静脉缓慢注入麻醉剂将兔子麻醉;注射时应密切观察动物的肌张力、心跳、呼吸、瞳孔大小、角膜反射等,以免麻醉过深;将动物仰卧于手术合上．固定好头部和四肢,注意颈部必须放正拉直;2、分离颈部神经和血管：剪去颈部的毛,沿正中线作一5～7厘米的切口,钝性分离皮下组织和肌肉,暴露气管,将气管两旁的肌肉拉开,便可在气管的二侧深部找到包在颈动脉鞘内的颈总动脉、迷走神经、颈交感神经和减压神经;在分离颈总动脉前,仔细识别以上三条神经,其中迷走神经最粗,交感神经较细,减压神经最细,且常与交感神经紧贴在一起,分离时不要过度牵拉,以免使神经受损;并在各神经下分别穿过一有色标记的用生理盐水浸湿的线备用;然后分离出左侧颈总动脉,并向头端追索一直到甲状软骨的上缘,此时可见到颈总动脉分支为颈内和颈外动脉;在颈内动脉的基部有一膨大处,此即颈动脉窦;在右颈总动脉下穿过二根用生理盐水浸湿的线,作结扎和固定动脉插管用;并以同样方法分离出右侧的迷走神经、交感神经和减压神经,穿线备用;3、动脉插管：在右侧颈总动脉的近心端夹一动脉夹,然后结扎其远心端,在动脉夹与结扎之间一般应相距2cm左右;在结扎的下方用锐剪朝向心端做一“V”切口,将动脉插管向心脏方向插入,用丝线将其敷紧结扎固定,以防插管滑出;二、观察项目：1、牵动颈总动脉;手持左侧颈总动脉上的穿线牵拉5秒;同时记录刺激记号,以下各项亦同,不另,观察心搏与动脉血压有何变化2、夹闭颈总动脉用动脉夹夹闭左颈总动脉5-10秒,观察心搏与血压有何变化3、静脉注射%肾上腺素,观察心搏与血压有何变化;注意事项1、本实验麻醉应适量,过浅动物挣扎,过深则反射不灵敏;2、动脉插管应始终保持与动脉方向一致,防止插管刺破动脉管壁;3、进行每一项目后,必须待心搏与血压恢复正常后方可进行下一项;实验结果牵动颈总动脉：注射肾上腺素：实验五影响尿液生成的因素实验目的学习用膀胱套管或输尿管套管引流的方法,观察不同生理因素对动物尿量的影响;加深对尿生成调节的理解;实验原理尿是血液流过肾单位时经过肾小球滤过,肾小管重吸收和分泌而形成的,凡对这些过程有影响的因素都可影响尿的生成;肾小球的滤过作用取决于肾小球的有效滤过压,其大小取决于肾小球毛细血管血压,血浆的胶体渗透压和肾小囊内压;影响肾小管重吸收作用主要是管内渗透压和肾小管上皮细胞的重吸收能力,后者又为多种激素所调节;实验对象家兔实验器材及药物20%氨基甲酸乙酯、肝素生理盐水溶液100u/ml、生理盐水、呋塞米、38度生理盐水;计算机生物信号采集处理系统、压力换能器、保护电极、兔手术台、气管插管、膀胱导管或输尿管导管、动脉插管、注射器1ml、20ml及枕头、烧杯;实验步骤及方法1.标本的制备1实验兔在实验前应给予足够的菜和饮水;2称重动物,耳缘静脉注射20%的氨基甲酸乙酯溶液5ml·kg-1体重进行麻醉,待动物麻醉后仰卧固定于手术台上;。
植物生理学实验：实验五 丙二醛含量测定
实验原理
丙二醛在高温及酸性环境下可与2-硫代巴比妥酸（ TBA）反应产生红棕色的三甲基复合物（3,5,5´-三 甲基恶唑2,4-二酮），该物质的吸光系数为 155mmol/(L·cm)，在532 nm处有最大吸收峰， 并且在600nm处有最小光吸收。
O
O
OH
HN 2
+
S NO H
硫代巴比妥酸
OO
100 OC
HN
N
H
H
丙二醛
HS
N H
O HO
N H
S
3,5,5´-三甲基恶唑2,4-二酮
（三甲川）
实验原理
可溶性糖对此反应有干扰，为消除这种干扰可使用以 下公式算出MDA浓度（μmol/L），并进一步算出单 位质量组织中MDA含量（μmol/g）。
C（μmol/L）=6.45（A532-A600）-0.56A450 A450、A532和A600分别表示在三种波长处的吸光度值
1. 取0.5g叶片材料，加2mL5%TCA研磨后将匀浆转入离 心管，再用3mL5%TCA洗涤研钵后转入离心管。将匀 浆在3000r/min下离心10min。
2. 取上清液2mL，加0.67%TBA2mL，混合后在100℃水 浴上煮沸30min，冷却后再离心一次。
3. 分别测定上清液在450nm，532nm和600nm处的吸光 度值（以0.67 %硫代巴比妥酸溶液为空白），按公式 计算MDA浓度
实验目的；实验材料、仪器设备与试剂
目的：学习和掌握丙二醛法测定植物叶片中过氧化脂质 含量的原理和方法。
仪器 分光光度计、离心机、电炉； 研钵、天平、试管架、离管、移液管、滤纸等。
试剂 5%三氯乙酸（TCA）；0.67%硫代巴比妥酸（用 10%TCA配制）；石英砂。
生理学实验
一、神经和肌肉实验1 坐骨神经腓肠肌标本的制备坐骨神经干标本的制备【实验目的】学习坐骨神经腓肠肌和坐骨神经干标本的制备方法。
【实验原理】两栖类动物的一些基本生命活动和生理功能与温血动物类似，但其离体组织所需存活条件比较简单，易于控制和掌握。
因此在生理实验中常用蛙或蟾蜍的离体组织或器官作为实验标本来观察组织的兴奋性、兴奋过程、兴奋性的变化以及骨骼肌的收缩特点等。
【实验对象】蟾蜍(或蛙)。
【器材和药品】蛙类手术器械一套(蛙板、玻璃板、探针、粗剪刀、组织剪、眼科剪、眼科镊、大头针、玻璃分针、搪瓷碗、培养皿、滴管、纱布、丝线)、锌铜弓、任氏液。
【操作步骤和观察项目】(1)破坏脑和脊髓：左手持蛙，用食指下压头部，拇指按压背部，使头前俯。
右手持探针从枕骨大孔处垂直刺入，再将针插向前方刺入颅腔搅碎脑组织。
将探针退回进针处，向下刺入椎管捣毁，待蛙四肢松软，表明脑和脊髓已完全破坏（图5-1）。
图5-1 破坏蛙脑和脊髓图5-2 横断脊柱图5-3 剪断躯干上部及内脏图5-4 剥离皮肤(2)剪除躯干上部及内脏：在骶髂关节水平以上1cm处剪断脊柱，将头、前肢及内脏一并剪除，保留腰骶部脊柱及后肢。
在腹部脊柱的两旁可以见到坐骨神经丛(图5-2、图5-3)。
(3)剥皮：左手捏紧脊柱断端，右手捏住断端处皮肤边缘，用力向下剥掉全部后肢皮肤(肛门皮肤粘膜移行处先行剪开)，把标本放入任氏液中，洗净手及所有用过的器械(图5-4)。
(4)游离坐骨神经：将后肢标本腹面向上用大头针固定于蛙板上，沿脊柱两侧用玻璃分针分离坐骨神经，用普通剪刀剪下一小段与神经相连的脊柱，提起脊柱，逐一剪去神经分支。
从耻骨联合处将两下肢分开。
将一侧下肢背面向上，用玻璃分针划开梨状肌及附近的结缔组织，循坐骨神经沟(股二头肌与半膜肌之间)找出坐骨神经的大腿部分，提起坐骨神经，小心剪断坐骨神经的所有分支，一直游离到膝关节(图5-5)。
图5-5 坐骨神经走向示意图图5-6 蛙坐骨神经腓肠肌标本示意图(5)游离腓肠肌：将分离干净的坐骨神经搭于腓肠肌，在膝关节周围剪掉全部大腿肌肉，并用普通剪刀将股骨刮干净，在股骨中部剪去上段股骨。
实验五、植物呼吸速率的测定
具体反应式：
Ba(OH)2+CO2 Ba(OH)2+H2C2O4
• 以酚酞指示滴定终点。
BaCO3 +H2O BaC2O4 +2H2O
• 1mL的1/44mol/L草酸溶液中的草酸与1mg的CO2等摩尔 数。
• 空白和样品二者消耗的草酸溶液的mL数差值
= Ba(OH)2溶液吸收的CO2 mg数 = 种子呼吸作用释放的CO2 mg数
=(V1-V2)/(W× t)
六、思考题
1. 在本实验呼吸测定怎样排除不应有的干扰因素？ 2. 在实验过程中为什么要轻摇广口瓶数次？
3. 就计算公式而言，为什么草酸的用量可代表种子呼 吸放出的CO2的量？
4. 草酸（1/44 mol/L）滴定Ba(OH)2 (0.05 mol/L)，酚 酞作指示剂，溶液由紫色变成无色，滴定至终点后， 马上颜色又由无色变成紫色，原因是什么？
三、实验材料与试剂
•材料 浸种和催芽不同时间的小麦或绿豆种子；
•试剂 0.05mol/L的Ba(OH)2； 1/44mol/L的草酸； 酚酞指示剂。
四、实验步骤
1. 取具玻璃塞和橡皮塞的500mL广口瓶各1只，分别编 号1#、2#；
种子
1#
2#
•实验装置图
2. 称取10g不同萌发阶段的种子，以纱布包 裹，悬挂在橡皮塞下方；
5. 白天在实验室测定植物茎叶的呼吸速率会受到什么 影响？如何解决？
6. 如果实验材料选择的是不同萌发阶段的小麦种子及 幼芽，哪一阶段的呼吸速率最大？
• 葡萄糖+6O2
6CO2 +6H2O+能量
• 意义： 代谢的中心
有机物转化的枢纽
能量的主要供应渠道
实验报告血液凝固及其影响因素
实验五：血液凝固及其影响因素实验人：同组人：【实验目的】1．学习血液凝固的基本过程2．了解加速或延缓血液凝固的一些因素【实验原理】血液凝固是一个酶的有限水解激活过程，在此过程中有多种凝血因子参与。
根据凝血过程起动时激活因子来源不同，可将血液凝固分为内源性激活途径和外源性激活途径。
内源性激活途径是指参与血液凝固的所有凝血因子在血浆中，外源性激活途径是指受损的组织中的组织因子进入血管后，与血管内的凝血因子共同作用而启动的激活过程。
【实验材料和用具】家兔清洁小试管7个、小烧杯2个、竹签、秒表、试管架、哺乳动物手术器械一套、兔手术台、动脉夹、塑料动脉插管、线、棉花、水浴槽、冰盒液状石蜡、肝素、草酸钾1~2mg、脑匀浆液、生理盐水【实验过程】1、动物麻醉及颈部手术（此部由助教老师操作）取一只动物，称重。
按1g/kg体重的剂量将乌拉坦（氨基甲酸乙酯）由耳缘静脉缓慢注入，观察动物肌张力、呼吸与角膜反射的变化。
动物麻醉后背位固定于兔手术台上。
剪去颈部手术野的毛，沿颈正中线在喉头上一指至锁骨上一指的地方作一5～7cm的皮肤切口。
分离皮下组织及肌肉。
2、颈总动脉插管（此部由助教老师操作）在气管两侧辨别并分离颈总动脉，颈总动脉下方穿两条线备用。
在左侧颈总动脉的近心端夹一动脉夹，在动脉夹远心端距动脉夹约3cm处结扎。
用小剪刀在结扎线的近侧（结扎线与动脉夹之间）沿向心方向剪一小斜口（约占管径的一半），向心脏方向插入动脉插管，由备用的线结扎固定。
取血时将动脉夹松开即可。
3、血液凝固的加速和延缓观察1.打开兔颈总动脉夹，血液从动脉插管流出，弃去第一份1mL动脉血后，向每个试管中注入1mL兔动脉血，并摇匀。
2.自血液流出动脉插管开始计时。
除第1管外，其他各管每隔15秒钟将试管倾斜一次，观察液面是否倾斜即血液是否流动，直到试管内血液不再流动为止，记录凝血时间。
3.当第2管已经凝固时，再倾斜第1管看血液是否凝固，若尚未凝固则按上述方法每隔15秒钟倾斜一次，直到血液凝固为止，记录凝血时间，即为该兔血的凝固时间。
《生理学》实验报告
一、实验目的1. 熟悉心脏解剖结构。
2. 掌握心脏生理功能实验方法。
3. 了解心脏搏动的基本原理。
4. 分析心脏功能与人体健康的关系。
二、实验时间2023年X月X日三、实验地点生理学实验室四、实验对象健康成年志愿者五、实验器材1. 心脏解剖模型2. 心电图机3. 动物心脏生理学实验装置4. 心电图记录纸5. 激光笔6. 计时器7. 记录本六、实验步骤1. 观察心脏解剖结构，了解心脏的四个腔室、瓣膜、冠状动脉等部位。
2. 在动物心脏生理学实验装置上，连接心电图机，记录心脏搏动情况。
3. 观察并记录心脏搏动的周期、频率、幅度等参数。
4. 通过调整实验装置上的旋钮，观察心脏搏动的变化，分析心脏功能与外界刺激的关系。
5. 记录实验数据，绘制心脏搏动曲线。
七、实验结果与分析1. 心脏解剖结构观察结果：心脏由四个腔室组成，分别是左心房、左心室、右心房和右心室。
左右心房之间有房中隔，左右心室之间有室中隔。
心脏瓣膜包括二尖瓣、三尖瓣、主动脉瓣和肺动脉瓣。
冠状动脉负责心脏的血液供应。
2. 心脏搏动观察结果：心脏搏动周期为0.8秒，频率为75次/分钟，幅度约为0.5V。
3. 调整实验装置观察结果：当调整实验装置上的旋钮，增加心脏搏动频率时，心脏搏动周期缩短，频率增加，幅度略有减小；当调整实验装置上的旋钮，降低心脏搏动频率时，心脏搏动周期延长，频率降低，幅度略有增加。
4. 心脏功能与外界刺激关系分析：心脏搏动受到多种因素的影响，如神经调节、体液调节等。
实验结果表明，心脏搏动与外界刺激密切相关，调整实验装置上的旋钮可以模拟外界刺激对心脏功能的影响。
八、实验结论1. 本实验成功观察了心脏解剖结构和心脏搏动情况，掌握了心脏生理功能实验方法。
2. 通过实验数据分析，了解了心脏功能与人体健康的关系，认识到心脏健康的重要性。
3. 本实验有助于提高学生对生理学知识的理解，培养学生的实验操作技能和观察能力。
九、实验讨论1. 心脏搏动受哪些因素影响？如何通过实验观察心脏搏动变化？2. 心脏功能与人体健康有何关系？如何保持心脏健康？3. 实验过程中遇到的问题及解决方法。
生理学实验报告B5--3
生理学实验手册EXPERIMENT MANUAL FORPHYSIOLOGY专业及班级：学号：姓名：组别：天津医科大学临床医学院生理学实验室实验一标本制备及BL-410生物机能实验系统的使用Experiment 1 Preparation of specimens and the use of BL-410 biological function of experimental system同组人姓名（the name of the students in the same group）。
日期（date）：年月日【实验目的】掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的操作技术，为此后有关的神经肌肉实验打下基础；熟悉BL-410生物机能实验系统的使用。
【实验原理】蛙或两栖类动物的一些基本生命活动及生理功能与温血动物近似，而且其离体组织需要的生活条件非常简单，易于控制和掌握。
因此在生理学实验中，坐骨神经-腓肠肌标本是研究神经肌肉生理最常用的对象，经常用来研究神经肌肉的兴奋性、刺激与反应的规律、肌肉收缩的特点、兴奋性的周期性变化等。
【实验器材和药品】蛙类手术器械一套（金属探针1根，粗剪刀、眼科剪刀各1把，圆头镊子、眼科镊子各1把，玻璃分针2根），蛙板和玻璃板各1块，培养皿，滴管，废物缸、锌铜弓，丝线，棉花；任氏液。
【实验对象】蟾蜍或蛙。
【实验方法和步骤】1．破坏脑和脊髓（常用的有三种方法）(1) 俯式捣毁法：是最常用的方法。
以左手持蟾蜍，将其腹面朝向手心，前肢夹在食指和中指之间固定，后肢夹在无名指和小指之间固定，并用拇指按压蟾蜍头部使之下俯30~40度角；然后右手持金属探针沿蟾蜍头部的中线下划，可触及一凹陷处即为枕骨大孔。
将探针从枕骨大孔垂直刺入1~1.5mm，再向前刺入颅腔，左右搅动（可感觉到探针与颅骨壁的碰击），破坏脑组织；再将探针退回至进针处，但不拔出而是转向后方刺入椎管，破坏脊髓。
(2) 仰式捣毁法：将蟾蜍仰卧于蛙板上，拉开下颌，右手持探针在颅底两眼之间向前下刺入颅腔，用探针在颅腔内向四周捣毁脑组织，然后将探针退至粘膜下，针尖向后平行刺入椎管内以破坏脊髓。
生理学实验5-2 家兔呼吸运动的影响因素观测
实验5-2 家兔呼吸运动的影响因素观测一、目的要求1. 学习记录家兔呼吸运动的方法。
2. 观察并分析肺牵张反射及其他因素对呼吸运动的影响。
二、基本原理人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地、节律性地进行，是由于体内调节机制的存在。
正常节律性呼吸运动是在中枢神经系统参与下，通过多种传入冲动的作用，反射性调节呼吸的频率和深度来完成的。
体内外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同的感受器，反射性地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。
肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。
三、实验材料家兔，家兔手术台，手术器械，带输液管的粗针头，张力传感器与滑轮或，压力传感器，生理信号采集系统，20ml注射器，橡皮管（长1.5m，内径1cm），纱布，3%乳酸溶液，50mg/ml尼可刹米注射液，生理盐水。
四、方法与步骤依实验4-8的方法，将动物麻醉、固定，进行颈部气管及神经分离术，插入气管插管，分离出一侧颈总动脉和双侧迷走神经，穿线备用。
1.剑突软骨手术。
2.开启计算机采集系统。
3.将系有长线的金属钩，钩住游离的剑突软骨中间部位，线的另一端通过万能滑轮系于张力传感器的应变梁上，然后把张力传感器与采集系统第1通道连接。
4.将粗针头上的输液管与压力传感器相通，剪开右侧胸部下方的皮肤，在右腋前线第4、5肋骨之间将针头垂直刺入胸膜腔内。
将压力传感器的侧支封闭，然后与采集系统第2通道连接，注意：针头的斜面应朝向头侧。
刺入时可先用较大的力量穿透皮肤，然后控制进针力量，以防进针过深。
5.点击采集系统菜单“输入信号”，输入“1通道-呼吸，2通道-压力”，调节系统参数，使呼吸曲线清楚地显示在显示器上，而压力扫描曲线随呼吸搏动而变化。
6.实验观察（1）记录平静呼吸的运动曲线的大小，并仔细识别吸气或呼气运动与曲线方向的关系。
（2）增加无效腔对呼吸运动的影响。
（3）气道阻力对呼吸运动的影响。
（4）肺牵张反射对呼吸运动的影响。
（5）血中H+增多对呼吸运动的影响。
生理学实验报告
生理学实验报告封面信息丢失实验一刺激频率对骨骼肌收缩的影响一、实验目的及要求1、学习蛙类动物双毁髓的方法2、掌握制备坐骨神经—腓肠肌标本的操作技术，为此后有关的神经肌肉实验打下基础。
二、实验原理蛙类的一些基本生命活动和生理功能与恒温动物相似，将蛙的神经-肌肉标本放在任氏液中，其兴奋性在几个小时内可保持不变。
若给神经或肌肉一次适宜刺激，可在神经和肌肉上产生一个动作电位，肉眼可看到肌肉收缩和舒张一次，表明神经和肌肉产生了一次兴奋。
在机能学实验中常利用蛙的坐骨神经-腓肠肌标本研究神经、肌肉的兴奋、兴奋性，刺激与反应的规律和肌肉收缩的特征等。
三、实验对象、器材及药品实验对象：蛙实验药品：任氏液实验器材：普通剪刀、手术剪、眼科镊（或尖头无齿镊）、金属探针（解剖针）、玻璃分针、蛙板（或玻璃板）、蛙钉、细线、培养皿、滴管、电子刺激器。
四、实验方法及步骤1、双毁髓：左手握蟾蜍，背部向上。
用食指按压其头部前端，拇指压住躯干的背部，使头向前俯；右手持毁髓针，由两眼之间中线向后方划触，触及两耳后腺之间的凹陷处即是枕骨大孔的位置。
将毁髓针由凹陷处垂直刺入枕骨大孔，然后针尖向前刺入颅腔，在颅腔内搅动，以毁脑组织。
再将毁髓针退至枕骨大孔，针尖转向后方，与脊柱平行刺入椎管，以捣毁脊髓。
脊髓彻底捣毁时，可看到蟾蜍后肢突然蹬直，然后瘫软，此时的动物为双毁髓动物。
2、剥制后肢标本：左手持手术镊提起两前肢之间背部的皮肤，右手持手术剪横向剪断皮肤，然后往后肢方向撕剥皮肤。
剪开腹壁肌肉，用手术镊提起内脏，翻向头部，在看清支配后肢的脊神经发出部位后，于其前方剪断脊柱。
3、分离两后肢：将去皮的后肢腹面向上置于解剖盘上，右手持金冠剪纵向剪开脊柱，再剪开耻骨联合，使两后肢完全分离。
4、分离坐骨神经：将一侧后肢的脊柱端腹面向上，用玻璃分针沿脊神经向后分离坐骨神经，股部沿腓肠肌正前方的股二头肌和半膜肌之间的裂缝，找出坐骨神经，剪断盖在上方的梨状肌，完全暴露坐骨神经，剪去支配腓肠肌之外的分支，再剪去脊柱及肌肉，只保留坐骨神经发出部位的一小块脊柱骨。
植物生理学实验
植物⽣理学实验实验⼀植物细胞渗透势的测定（质壁分离法）实验⼆钾离⼦对⽓孔开度的影响实验三希尔反应的观察实验四植物种⼦⽣命⼒的快速测定实验五单盐的毒害作⽤及离⼦间的对抗作⽤实验六⽔稻种⼦萌发对氧的需要实验七⽣长素对绿⾖苗发根的影响实验⼋光对植物⽣长的影响实验九脱落酸对植物叶柄的脱落效应实验（上⾯实验中选4个+1个学⽣⾃⼰设计的实验）实验⼀植物细胞渗透势的测定（质壁分离法）植物细胞的渗透势主要取决于液泡的溶质浓度，因此⼜称溶质势。
渗透势与植物⽔分代谢、⽣长及抗逆性等有密切关系。
已知在⼲旱、盐渍等条件下，⼀些植物常在细胞内主动积累溶质，以降低其渗透势，增加吸⽔能⼒，⽽在⼀定程度上维持细胞膨压，保障细胞的⽣长和⽓孔的开放，这种现象叫做渗透调节作⽤。
渗透调节能⼒的⼤⼩可以⽤逆境条件下细胞的渗透势的降低值来表⽰，在⽔分⽣理与抗逆性⽣理研究中经常需要测定。
⼀、原理将植物组织放⼊⼀系列不同浓度的蔗糖溶液中，经过⼀段时间，植物细胞与蔗糖溶液间将达到渗透平衡状态。
如果在某⼀溶液中细胞脱⽔达到平衡时刚好处于临界质壁分离状态，则细胞的压⼒势（Ψ p ）将下降为零。
此时细胞液的渗透势（Ψs ）等于外液的渗透势Ψs 0 。
此溶液称为该组织的等渗溶液，其浓度称为该组织的等渗浓度，即可计算出细胞液的渗透势（Ψs ）。
实际测定时，因为临界质壁分离状态难以在显微镜下直接观察到，所以⼀般均以初始质壁分离作为判断等渗浓度的标准。
处于初始质壁分离状态的细胞体积，⽐吸⽔饱和时略⼩，故细胞液浓缩⽽渗透势略低于吸⽔饱和状态时的渗透势称基态渗透势。
⼆、实验材料、试剂与仪器设备（⼀）实验材料洋葱鳞茎、紫鸭跖草、苔藓、红⽢蓝或⿊藻、丝状藻等。
（⼆）试剂1 ． 1 mol/kg 蔗糖⽔溶液：称取预先在 60 ～ 80 ℃下烘⼲的蔗糖 34.2 g 溶于100 g 蒸馏⽔中，即为 1 质量摩尔浓度的蔗糖溶液。
2 ．％中性红溶液。
3 ．蔗糖系列标准液：取⼲燥洁净的⼩试剂瓶 9 ⽀编号，⽤ 1 mol/kg 蔗糖⽔溶液依据 C 1 V 1 =C 2 V 2 公式配制 mol/kg 、mol/kg 、 mol/kg 、 mol/kg 、mol/kg 、 mol/kg 、 mol/kg 、 mol/kg 、 mol/kg 等⼀系列不同浓度的蔗糖⽔溶液（具体范围可根据材料不同⽽加以调整），贮于试剂瓶中，瓶⼝加塞以防蒸发浓缩。
生理学实验5 ABO血型的鉴定
ABO血型的鉴定
西北民族大学实验中心
【实验目的】
1. 学习ABO血型的鉴定方法，掌握血型 的鉴定原理; 2. 了解ABO血型的分型依据； 3. 观察红细胞凝集现象。
【实验原理】
为保证输血安全，输血前必须认真做好 血型鉴定。将受试者的红细胞加入抗A血清 （含抗A凝集素）和抗B血清（含抗B凝集素） 中，观察有无凝集反应，从而测定受试者红 细胞上有无凝集原A或B来测定血型。
【实验方法】
1.双凹片上分别注明抗A和抗B；
2.在抗A和抗B 圈中分别滴入抗A血型试剂，抗B血型试剂各 一滴； 3.用75%酒精消毒耳垂或手指，用采血针刺破皮肤采血于玻 片上，分别用蘸有生理盐水的玻棒搅匀，数分钟后观察。
【注意事项】
1. 实验用具严格消毒，请勿污染，采血针要做到一人一 针，不能混用。 2. 用过的物品弃入垃圾桶，不要放回消毒器皿内，以免 污染其他物品。 3. 乙醇消毒部位自然风干后再采血，血液容易聚集成滴， 便于取血。 4. 取血不宜太少，以免影响观察结果。采血后要迅速与 标准血清混匀，以防血液凝固。
5. 消毒玻棒在血清内搅过后，切勿再到采血部位采血， 以免污染伤口｡
ABO血型的鉴定结果
与被检红细胞混合后的反应
抗A血型试 剂 含抗A抗体） 抗B血型 Nhomakorabea 剂 含抗B抗体） 被检人血型
+
A
+ B
+
+ AB
O
注：“+”表示有凝集反应，“-”表示无凝集反应。
分析讨论
判断A B AB和O型血的原理
思考题
若无抗血清，但已知某人为A型（或B 型）血，能否用来鉴定其他人的血型？
运动性生理学实验报告
《运动生理学》实验报告学院：重庆工商大学学院：体育学院班级：2011级2班本组成员：宋东来、涂志国、方博、落实中、刘绍雄、肖曦实验名称：实验五：运动性疲劳的特征、诊断与消除实验【目的】学生熟练掌握和了解运动疲劳的特征、诊断与消除方法【原理】运动性疲劳是指人体进行连续多次的大负荷运动后，机体在“预定或特定”时间、空间里不能重新建立适应平衡的、复杂的功能变化过程。
由于运动的负荷和性质不同，会对人体功能产生不同的影响。
因此，运动型疲劳的诊断须依据运动负荷的性质决定。
不同时间的全力运动和不同代谢类型的运动项目，疲劳特征不同。
短时间最大强度运动型疲劳，是由于肌细胞代谢导致ATP转换速率下降所致。
长时间中等强度运动型疲劳，往往与能源贮备运用过程受抑制相关。
非周期性练习和混合练习，其技术动作的不断变化是加深运动性疲劳的重要因素。
要求精力高度集中一级运动中动作多变的练习，则较容易疲劳。
静力性练习时中枢神经系统的相应部位持续兴奋，肌肉中血液供应减少以及憋气引起心血管系统功能下降是产生疲劳的主要原因。
消除疲劳的基本原则：依据恢复过程的一般规律和机体能源贮备的恢复特点及促进人体功能恢复的措施进行。
【对象】正常人【器材】反应时测定仪闪烁值测定仪两脚规旋转椅肺活量计血压计听诊器心电图等【试验方法与步骤】一、1、肺活量的测定：○1仪器归零，令受试者取站立位，竭力深吸气后，由吹气口向筒内作最大限度的呼气，记录数据，连续测量三次，取最大一次的数值作为肺活量值。
○2运动后连续肺活量的测定（在较大运动负荷后测试或技术课后另行测量），连续5次肺活量，肺活量的变化。
1、心率血压的测定：○1静坐五分钟。
以10秒为单位，连续测量三次，其中两次相同并与另一次相差不超过1次，即认为是相对安静状态。
○2运动后，以10秒为单位，连续测量三次，观察心率变化特征。
2、血压的测定：运动前后分别测试受试者的血压变化，观察运动对人体血压的影响。
3、心电图：运动前后分别对受试者进行心电图扫面，观察运动后心电图的变化。
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【思考题】
1.分析讨论各项处理对动脉血压的影响及机 制
2.去甲肾上腺素和肾上腺素对血压的影响有 何不同
实验五 影响动脉血压的因素
目的：
观察体内外各种神经体液因素对家兔 动脉血压的影响，从而加深对动脉血压调 节及作用机制的理解。
原理：
流动的血液对血管壁的侧压力就是动脉 血压，是衡量心血管活动的重要指标，
影响因素：心脏每搏输出量、心率、 血管外周阻力、动脉血管壁弹性、全血量、 体液因子等。
正常动物体内，心血管的活动受神经体液因素的 调节
各种心血管反射调节动脉血压，其中最重要的反射是 颈动脉窦和主动脉弓压力感受性反射。
家兔的主动脉神 经为独立的一条 神经，又称减压 神经，易于分离 和观察其作用。 在人、犬等动物， 主动脉神经与迷 走神经混为一条， 不能分离。
材料：
实验对象：体重2～3kg家兔 (rabbit)，雌雄不拘。
实验器材和药品：去甲肾上腺素 肾上腺素 乙酰胆碱
压力换能器
方法:
1. 称重 2. 麻醉 药物---- 20 %乌拉坦 (5 ml/kg) 位置----远离耳根部的耳缘静脉（先2/3快后1/3慢） 观察----呼吸/心跳/肌张力/角膜反射 3. 固定：仰卧，四肢和门牙用绳子固定
4. 动脉插管与压力换能器连接后灌注肝素化的 生理盐水，检查是否漏液 5. 颈部备皮/手术
7. 动脉插管
分离一侧颈总动脉3～4 cm， 近心端用动脉夹夹闭，再 结扎其远心端，在结扎处 稍下用剪刀呈30°角剪开 血管直径的1/3，然后向心 脏方向插入已注满肝素生 理盐水的动脉插管，在近 心端结扎固定，两点固定。 缓慢放开动脉夹，观察动 脉血压。
【观察项目】
1. 描记一段正常血压曲线 2. 夹闭另一侧颈总动脉5~10秒 3. 牵拉插管侧颈总动脉中枢端5~10秒 4. 刺激插管侧迷走神经外周端 （80HZ,2V,连续单刺激） 5. 刺激插管侧减压神经中枢端 6. 由耳缘静脉注射去甲肾上腺素0.3ml 7. 由耳缘静脉注射肾上腺素0.3ml 8. 由耳缘静脉注射乙酰胆碱0.3ml
心脏的传入神经有交感神经和迷走神经，心交感神经 兴奋时心率加快，心肌收缩力增强，使心输出量增加， 动脉血压升高；心迷走神经兴奋时心率减慢，心肌收 缩力减弱，心输出量降低，动脉血压降低。
支配血管平滑肌的神经有缩血管神经和舒血管神经， 交感缩血管神经兴奋时血管平滑肌收缩，血管口径变 小，外周阻力增大，动脉手拇指插入气管一侧， 其余四指放在颈部外侧并 轻轻向上顶起，将气管一 侧肌肉拉开，暴露颈总动 脉鞘。
鞘内的有颈总动脉、最粗 的迷走神经、颈交感神经 和最细减压神经。
先分离减压神经，然后分 离迷走神经。长度2～3 cm，穿线备用。
分离该侧的颈总动脉，各 长约2～3 cm，穿两根线 线备用。
注：每次注射药物后立即注入少量生理盐水（0.5ml），以防止药液残留 影响到下一种药物效果。
实验结束后，必须结扎颈总动脉近心端后再拔除动脉插管。
观察实验前后家兔血压有何变化
小结
正常动脉血压的稳定和维持取决于心输出 量和适当的外周阻力，各种神经--体液因素 通过调节心率、心肌收缩力和外周阻力， 保持动脉血压稳定。