小鼠心脏取血心得体会
对动物的心得体会5篇
对动物的心得体会5篇对动物的心得体会篇1实验目的：通过实际操作，掌握小鼠的一般操作方法，包括小鼠的抓拿、标记、给药(灌胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血(眶后静脉丛，摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。
二、实验动物：昆明小鼠2只(1雌1雄)三、实验步骤1、抓取和固定，标记2、去毛3、给药：消化道、腹腔往射、尾静脉注射4、取血：眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法5、麻醉：氯胺酮腹腔麻醉6、处死：脊椎脱臼法7、解剖：雄性：睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方，胶质状，透明)雌性：双角子宫、卵巢肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺四、实验结果1、抓取和固定标记：抓取：抓小鼠的尾根部固定：抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。
2、灌胃法：左手抓取小鼠固定后，右手持特制灌胃针，沿一侧口角进针，紧贴咽后壁，头后仰以便伸直消化道，进针2/3后灌生理盐水0.5ml3、注射给药：腹腔注射：从下腹部的两侧进针，进针时针与腹部成45°。
进针后稍微晃动针，如无粘滞感则可注射药物。
尾静脉注射：一人固定小鼠，另一人用左手中指和拇指将尾拉直，食指托住尾部在尾动脉位置进针注射0.5ml生理盐水。
注射完毕拔出针头，用无菌棉球压迫止血。
4、采从眼角内侧0.5cm处进针眼球摘除法：左手抓取用固定小鼠，右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除，头朝下，眼眶内血迅速流出。
5、麻醉：0.5%氯胺酮腹腔麻醉：本小鼠重22g，按100mg/kg的药量给药，2分钟麻醉成功6、处死：脊椎脱臼法：按住头部，将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死7、解剖：雄性：寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺雌性：双角子宫、卵巢3.7.2肾上腺：米粒大小胰腺：位于胃下方，类似于脂肪组织，浑浊状3.7.4，胆囊：芝麻大小，浅绿色，半透明，甲状腺：紧贴环状软骨，另可解剖出胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏。
小鼠实验心脏实验报告
一、实验目的1. 了解心脏生理学的基本知识，掌握心脏功能实验的基本操作技能。
2. 探讨心脏在生理和病理状态下的功能变化，为心脏疾病的研究提供实验依据。
二、实验原理心脏是维持血液循环的泵，具有收缩和舒张功能。
通过实验，可以观察心脏在生理和病理状态下的功能变化，如心率、心输出量、心肌收缩力等。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：成年雄性小鼠，体重20-25g。
2. 仪器：手术显微镜、心室灌流装置、生理信号记录仪、电子天平、注射器、手术刀、缝针、缝线、生理盐水、0.1%肝素钠溶液、10%福尔马林固定液等。
四、实验方法1. 动物麻醉：将小鼠用麻醉剂（如戊巴比妥钠）进行麻醉，保持动物呼吸平稳。
2. 心脏暴露：在手术显微镜下，沿小鼠左侧第四肋间进行开胸手术，暴露心脏。
3. 心脏固定：将心脏用缝线固定在心室灌流装置上。
4. 心肌收缩力测定：向心室灌流装置中注入0.1%肝素钠溶液，排除血液，然后注入生理盐水进行灌流。
使用生理信号记录仪记录心脏的收缩曲线，计算心肌收缩力。
5. 心输出量测定：记录心脏在灌流过程中，单位时间内通过心脏的血液量。
6. 心率测定：观察心脏在灌流过程中的跳动频率。
7. 实验结果分析：对实验数据进行统计分析，比较不同处理组之间的差异。
五、实验结果1. 生理状态下，小鼠心脏的收缩曲线呈规律性波动，心肌收缩力、心输出量和心率均处于正常范围。
2. 在病理状态下，小鼠心脏的收缩曲线出现异常，心肌收缩力降低，心输出量和心率下降。
3. 与对照组相比，病理组小鼠心脏的收缩曲线、心肌收缩力、心输出量和心率均有明显差异。
六、实验讨论1. 本实验通过观察小鼠心脏在生理和病理状态下的功能变化，为心脏疾病的研究提供了实验依据。
2. 实验结果表明，心脏在病理状态下，其功能受到严重影响，表现为心肌收缩力降低、心输出量和心率下降。
3. 本实验结果与相关文献报道一致，为心脏疾病的研究提供了参考。
七、实验结论1. 心脏在生理和病理状态下具有不同的功能变化。
药理课小白鼠实验心得
药理课小白鼠实验心得药理学是医学中非常重要的一个学科，它研究药物的作用机制、药物代谢和药物副作用等方面。
而小白鼠实验则是药理学中最常见的实验方法之一，通过对小白鼠进行实验，可以更好地了解药物的作用和副作用。
在我的药理学课程中，我也进行了小白鼠实验，今天我来分享一下我的心得体会。
首先，我要说的是小白鼠实验并不是一件简单的事情。
在实验前，我们需要做好充足的准备工作，如准备好实验器材和药物，仔细阅读实验指南等。
在实验中，我们需要非常细心地观察小白鼠的反应，以便及时记录实验数据。
此外，我们还需要注意保护小白鼠的生命安全，避免对它们造成伤害。
在实验中，我们进行了多组不同的实验。
其中，最让我印象深刻的是一组实验，我们用不同剂量的药物给小白鼠注射，观察它们的反应。
在这个实验中，我们使用了两种不同的药物，一种是对中枢神经系统有影响的药物，另一种是对心血管系统有影响的药物。
我们首先给小白鼠注射一定剂量的药物，然后通过观察它们的反应来判断药物的作用。
如果小白鼠出现了异常反应，我们就需要及时记录下来，并适当调整药物的剂量。
通过这个实验，我深刻体会到了药物对生物体的影响是非常复杂的。
同一种药物在不同剂量下会产生不同的效果，而不同种类的药物对生物体的影响也是各不相同的。
因此，在进行药物治疗时，我们需要根据具体情况来选择合适的药物和剂量，以避免产生不良反应。
除了对药物的作用进行实验外，我们还进行了一些对药物副作用的实验。
在这些实验中，我们使用了一些常见的药物，如阿司匹林、对乙酰氨基酚等，并通过观察小白鼠的反应来判断药物的副作用。
这些实验让我更加深入地了解了药物的副作用对生物体的影响，也让我更加重视药物治疗中的安全问题。
总的来说，小白鼠实验是一种非常重要的药理学实验方法，通过实验可以更好地了解药物的作用和副作用。
在实验中，我们需要充分准备，并且非常细心地观察小白鼠的反应。
通过这些实验，我深刻体会到了药物治疗的复杂性和安全性问题，也让我更加认识到了药理学在医学中的重要性。
小白鼠眼球采血实训报告
一、实训目的1. 掌握小白鼠眼球采血的方法和技巧。
2. 了解小白鼠眼球采血的适应症和禁忌症。
3. 培养无菌操作意识和实验技能。
二、实训时间2021年X月X日三、实训地点实验室四、实训材料1. 小白鼠2. 无菌操作台3. 10号金属针头4. 生理盐水5. 无菌棉球6. 采血管7. 麻醉剂（可选）五、实训步骤1. 准备工作（1）将小白鼠放置在实验台上，用棉球轻轻擦拭眼部，确保眼部清洁。
（2）打开无菌操作台，准备好实验器材。
2. 固定小白鼠（1）用一只手轻轻抓住小白鼠的颈部皮肤，使其头部向上抬起。
（2）用另一只手轻轻向下压迫颈两侧，使眼球充血。
3. 采血操作（1）用10号金属针头垂直插入内眦，向眼底方向转动，以便切开静脉丛。
（2）血液便会连续不断地滴入采血管。
4. 采血完毕（1）拔出针头，用无菌棉球压迫止血。
（2）将小白鼠放回笼子，观察其状态。
5. 无菌操作（1）在实验过程中，始终保持无菌操作，避免细菌污染。
（2）实验完毕后，对实验台、器材进行清洁和消毒。
六、实训结果1. 采血成功，血液质量良好。
2. 小白鼠状态稳定，无不良反应。
七、实训讨论1. 眼球采血是一种常用的动物采血方法，具有操作简单、采血量较大、成功率高等优点。
2. 在采血过程中，应注意以下几点：（1）确保小白鼠眼部清洁，避免细菌污染。
（2）固定小白鼠时，力度适中，避免造成伤害。
（3）采血时，保持针头垂直，避免损伤眼部组织。
（4）采血完毕后，及时止血，避免出血过多。
3. 眼球采血的禁忌症：（1）眼部有炎症或感染的小白鼠。
（2）有严重心脏病或血液病的小白鼠。
4. 在实训过程中，发现以下问题：（1）部分小白鼠在采血过程中出现挣扎，影响采血效果。
（2）个别小白鼠采血后出现眼部出血现象。
八、实训总结本次小白鼠眼球采血实训，使我掌握了小白鼠眼球采血的方法和技巧，提高了无菌操作意识和实验技能。
在实训过程中，我深刻体会到以下几点：1. 眼球采血是一种实用的动物采血方法，具有广泛的应用前景。
小鼠解剖实验报告总结(3篇)
第1篇一、实验目的本次实验旨在通过对小鼠进行解剖，了解小鼠的主要器官位置和结构，掌握解剖技巧，提高实验操作能力，为后续的生物学和医学研究打下基础。
二、实验材料与工具1. 实验动物：成年小鼠（体重约20-30g）2. 实验器材：解剖台、剪刀、镊子、解剖刀、解剖针、解剖剪、解剖显微镜、生理盐水、酒精、碘酒、棉球等三、实验步骤1. 实验动物准备：将小鼠置于解剖台上，用棉球蘸取适量的生理盐水湿润小鼠的皮肤，以便于解剖操作。
2. 解剖过程：（1）切开皮肤：用剪刀沿小鼠腹部正中线剪开皮肤，注意避免损伤内脏器官。
（2）暴露内脏：用镊子提起皮肤，显露内脏器官，包括心脏、肺、肝脏、胃、小肠、大肠、肾脏、膀胱、生殖器官等。
（3）解剖器官：用解剖刀和剪子依次解剖各个器官，观察其位置、形态和结构特点。
（4）记录数据：详细记录每个器官的位置、形态、大小等数据。
3. 实验结果分析：（1）心脏：心脏位于胸腔中央，呈红褐色，分为左右两个心房和两个心室，心脏壁由心肌组成。
（2）肺：肺位于胸腔两侧，呈粉红色，肺泡是肺的基本结构单位，肺泡壁与毛细血管壁紧密相连，有利于气体交换。
（3）肝脏：肝脏位于腹腔右上侧，呈红褐色，具有解毒、代谢和储存营养物质等功能。
（4）胃：胃位于腹腔左侧，呈粉红色，分为贲门、胃底、胃体和幽门，胃壁具有分泌胃酸和消化酶的功能。
（5）小肠：小肠位于腹腔中部，分为十二指肠、空肠和回肠，是消化吸收的主要场所。
（6）大肠：大肠位于腹腔右下方，分为盲肠、阑尾、结肠和直肠，主要吸收水分和电解质。
（7）肾脏：肾脏位于腹腔腰部，呈红褐色，具有过滤血液、生成尿液和调节体内水分和电解质平衡等功能。
（8）膀胱：膀胱位于腹腔底部，呈粉红色，是储存尿液的器官。
（9）生殖器官：雄性小鼠的生殖器官包括睾丸、附睾、阴茎等；雌性小鼠的生殖器官包括卵巢、输卵管、子宫和阴道等。
四、实验心得体会1. 解剖操作过程中，要熟练掌握解剖刀、剪子等工具的使用方法，注意操作规范，避免损伤内脏器官。
小鼠采血方式实验报告
一、实验目的1. 掌握小鼠采血的基本操作方法。
2. 比较不同小鼠采血方式对小鼠的应激反应和血液质量的影响。
3. 为后续实验选择合适的采血方法提供依据。
二、实验材料1. 实验动物：昆明种小鼠，体重20-25g，雌雄各半。
2. 采血工具：眼眶后静脉丛采血器、剪尾采血器、注射器、酒精棉球、无菌手术刀、无菌棉球、消毒液等。
3. 实验试剂：抗凝剂、生理盐水、实验所需试剂等。
三、实验方法1. 将小鼠随机分为四组，每组5只，分别为A组（眼眶后静脉丛采血）、B组（剪尾采血）、C组（注射器采血）、D组（心脏采血）。
2. 对各组小鼠进行适应性饲养，观察其健康状况。
3. 对A组小鼠进行眼眶后静脉丛采血，B组小鼠进行剪尾采血，C组小鼠进行注射器采血，D组小鼠进行心脏采血。
4. 采集血液后，观察各组小鼠的应激反应，如呼吸、心率等。
5. 对采集的血液进行质量检测，包括血常规、凝血功能等。
6. 比较不同采血方式对小鼠的应激反应和血液质量的影响。
四、实验结果1. 各组小鼠的应激反应A组：眼眶后静脉丛采血过程中，小鼠出现轻微的挣扎，采血结束后迅速恢复。
B组：剪尾采血过程中，小鼠出现明显的挣扎，采血结束后出现短暂的不适。
C组：注射器采血过程中，小鼠出现轻微的挣扎，采血结束后迅速恢复。
D组：心脏采血过程中，小鼠出现剧烈的挣扎，采血结束后出现明显的不适。
2. 各组小鼠的血液质量A组：血液质量良好，各项指标正常。
B组：血液质量较差，部分指标异常。
C组：血液质量良好，各项指标正常。
D组：血液质量良好，各项指标正常。
五、实验结论1. 眼眶后静脉丛采血和注射器采血对小鼠的应激反应较小，血液质量良好，适合进行实验研究。
2. 剪尾采血对小鼠的应激反应较大，血液质量较差，不适合进行实验研究。
3. 心脏采血对小鼠的应激反应和伤害较大，不适合进行实验研究。
六、实验建议1. 在进行小鼠采血实验时，应根据实验目的和动物福利原则，选择合适的采血方法。
2. 采血过程中，应注意减轻小鼠的应激反应，尽量减少对动物的伤害。
药理课小白鼠实验心得
药理课小白鼠实验心得作为一名医学专业的学生，药理学是我们必须要学习的重要课程之一。
在药理学的学习中，小白鼠实验是不可或缺的一部分。
在这篇文章中，我将分享我在小白鼠实验中的心得体会。
首先，小白鼠实验是药理学中最基础的实验之一，它是我们了解药物作用机制的必要手段。
在实验中，我们需要仔细观察小白鼠的反应，记录每一项指标，以此来评估药物的疗效和毒副作用。
在实验前，我们需要对小白鼠进行麻醉和固定，以保证实验的准确性和安全性。
在实验过程中，我们需要耐心地观察小白鼠的反应，并且要注意细节。
比如说，在给小白鼠注射药物时，我们需要掌握好药物的剂量和注射位置，以免对小白鼠造成不必要的伤害。
同时，我们还需要注意小白鼠的饮食和环境，保证它们的健康和舒适。
在实验结束后，我们需要对实验数据进行分析和总结。
需要注意的是，实验数据的准确性和可靠性对于药物研究的重要性不言而喻。
因此，在实验中，我们需要认真记录每一个指标，并且对实验数据进行统计和分析，以便更好地了解药物的作用机制和疗效。
通过小白鼠实验，我深刻地认识到了药物研究的重要性和复杂性。
药物的研究需要我们有扎实的医学基础和科研能力，更需要我们对于生命的尊重和责任感。
只有在这样的前提下，我们才能更好地为人类的健康事业做出贡献。
在实践中，我也遇到了一些挑战和困难。
比如说，在实验中，我需要面对小白鼠的死亡和痛苦，这对我来说是一种巨大的考验。
但是，我相信只有通过这样的挑战和困难，我们才能更好地成长和进步。
综上所述，小白鼠实验是药理学中不可或缺的一部分。
通过实验，我们可以更好地了解药物的作用机制和疗效，为人类的健康事业做出贡献。
同时，我们也需要认真对待实验中遇到的挑战和困难，不断提高自己的专业素养和科研能力。
小鼠采血方法实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 掌握小鼠采血的方法和技巧。
2. 了解不同采血方法的特点和适用范围。
3. 提高动物实验操作的规范性和安全性。
二、实验材料1. 实验动物：健康小鼠若干只。
2. 实验器材：解剖显微镜、手术刀、剪刀、镊子、无菌手术器械、无菌棉球、液体火棉胶、注射器、无菌生理盐水、消毒液等。
三、实验方法1. 采血方法：本次实验主要采用剪尾采血和眼眶后静脉丛采血两种方法。
（1）剪尾采血：a. 将小鼠置于实验台上，用左手拇指和食指抓住小鼠颈部皮肤，将其头朝下。
b. 将小鼠尾巴浸泡于50℃热水中数分钟，使尾部血管充盈。
c. 擦干尾部，用剪刀或手术刀剪去尾尖1-2mm。
d. 用注射器吸取无菌生理盐水，注入伤口处，使血液流出。
e. 用无菌棉球压迫伤口处止血，并涂上液体火棉胶。
（2）眼眶后静脉丛采血：a. 将小鼠置于实验台上，用左手拇指和食指抓住小鼠颈部皮肤，将其头朝下。
b. 将麻醉药物滴入采血侧眼球，对小鼠眼部进行局部麻醉。
c. 用左手拇指和食指压迫小鼠颈部两侧，阻碍静脉回流，使眼球充分外突，眼眶后静脉丛充血。
d. 右手持硬质毛细玻璃管，沿眼角刺入眼眶底部，轻轻捻动毛细管，使其刺入眼眶静脉丛，可见血液流出。
e. 采集到所需血量后，用无菌棉球压迫伤口处止血。
2. 血液样本处理：a. 将采集到的血液样本注入无菌试管中。
b. 混匀血液样本，按照实验要求进行分离、检测等后续处理。
四、实验结果与分析1. 剪尾采血：a. 采血量：约0.1-0.2mL。
b. 采血时间：约5-10分钟。
c. 采血成功率：95%。
2. 眼眶后静脉丛采血：a. 采血量：约0.2-0.3mL。
b. 采血时间：约10-15分钟。
c. 采血成功率：90%。
五、实验讨论1. 剪尾采血方法操作简便，适用于少量多次采血，但可能导致小鼠尾部疼痛，影响动物福利。
2. 眼眶后静脉丛采血方法适用于中等量采血，成功率较高，但需要局部麻醉，可能对小鼠造成一定程度的刺激。
小鼠心脏灌流实验报告
一、实验目的1. 掌握小鼠心脏灌流实验的操作步骤。
2. 学习通过心脏灌流获得良好的形态学观察结果。
3. 探究心脏灌流在保存脑、肾、心脏和其他器官中的应用。
二、实验材料与仪器1. 实验动物：成年小鼠2. 仪器：解剖器械、23-G针头、注射管、解剖显微镜3. 药品：1PBS、4%PFA固定液、CO2气体4. 其他：标记玻璃瓶、冰块三、实验方法1. 处死小鼠：将小鼠放入袋中，用CO2气体处死，停止吸呼后，立刻背朝下放平小鼠。
2. 解剖：小心剖开胸腔，防止过多出血。
迅速切开肋骨，剪去横隔膜，暴露心脏。
3. 心脏灌流：a. 一支针管吸满1PBS，另一支吸4%PFA固定液，搁置待用。
b. 将吸有1PBS的针管刺入左心室，剖开右心室排液。
c. 缓慢但持续将1PBS灌入心脏，直至多数血液流出。
d. 拨去1PBS的针管，将吸有4%PFA固定液的针管插入左心室同一进针处。
e. 以20 ml 固定液缓慢灌流小鼠。
4. 器官采集：灌流后，剖下器官或组织，放入盛有4%PFA固定液的标记玻璃瓶中，于冰上保存。
四、实验结果1. 通过心脏灌流，成功置换了小鼠体内的血液，保证了器官的良好形态学观察结果。
2. 灌流过程中，观察到小鼠器官如肝脏、脾脏和肾脏逐渐转呈灰白色，表明灌流效果良好。
五、实验讨论1. 实验过程中，操作人员应熟练掌握解剖技巧，避免损伤心脏和相关血管。
2. 灌流过程中，应保持液体的恒定流速，避免过快或过慢，影响灌流效果。
3. 实验操作应在无菌条件下进行，以减少污染和交叉感染的风险。
4. 心脏灌流实验在保存器官、获得良好的形态学观察结果等方面具有重要意义。
六、实验结论本次实验成功完成了小鼠心脏灌流实验，验证了心脏灌流在保存器官、获得良好的形态学观察结果等方面的有效性。
实验过程中，操作人员应掌握相关技能，确保实验顺利进行。
七、实验建议1. 加强对实验操作人员的培训，提高其操作技能。
2. 优化实验流程，提高实验效率。
3. 探索心脏灌流在其他领域的应用。
实验动物心得体会5篇
实验动物心得体会5篇_实验动物心得1_实验动物学就这样匆匆结束了,总觉得时间过得很快,心里有种说不出的不舍.记得最初选修这门课的时候,心里很是没低,因为以前从来没有接触过动物实验,(由于专业的原因吧)虽然很想学,可又担心会跟不上其他同学,甚至会考试不过影响学位.不过最后还是选了,如果不学也许就永远不知道它其中所蕴含的乐趣和那种追求医学研究时所必须的严谨,现在想想当时的选择是多么的正确,,正是因为这次犹豫中的选择,让我爱上了这门课.记得第一次实验课是让学捕捉实验鼠,并做常用的给药方式,第一次抓到老鼠时的兴奋至今还难忘,这个实验还算简单,所以很顺利就做完了老师所要求的,同时也给了我很大的信心去学好这门课.以后每次试验课我都会早早的去,很用心的去记录老师讲的每个实验细节,直至最后一节课.有时候看到那些可爱的实验动物总不忍心去实施残忍,每当看到因为自己操作失误而致动物大出血,最后挣扎到死亡时,心中都有种莫名的难受.也有同学对我说既然选择去做实验就不能有怜悯,手要狠,我知道她说的是对的,可是我需要去慢慢的适应.后来我就笑着对同学说,如果不能避免残忍,那就让我们认真的去做好每个实验,合理的去利用每一个实验动物,在不影响实验结果的前提下最好一鼠多用,虽然最终都是要处死的,但至少死有所值吧.随着对医学研究的不断深入,动物实验在医学.药学中的应用也会越来越广,它的重要性将会被更加重视.医学的发展历史告诉我们:有些问题单凭临床经验积累需要花费很长时间才能得到解决,或者虽花费很长时间,问题仍得不到解决,而通过动物实验有些问题就可以得到迅速解决.在我们追逐科研成果的同时,也一定不要忘记去适时的保护这些为我们做出了巨大贡献的动物,如果说,实验是为了更长远的社会利益,那几乎所有的医学科研成果是以无数动物的生命作为代价的,所以请让我们用仁慈的心去善待那些有生命的动物们吧.通过学习这门课,最大的收获我觉得并不是学会了多少种实验的操作(当然这是最基本的要求),而是通过实验更让我们受益的是它需要的这种执着,细心和认真严谨的态度,还有那种团队合作的精神.任何一个实验都是需要大家共同努力去完成,任何一个细节出了问题都会导致最终的失败,所以就要求我们去负责的对待每个环节,每一个步骤.只要把握好整个过程,就会顺利的达到预期的目的.最后,更要感谢的就是这么多天来一直陪伴我们,不厌其烦.耐心教诲的所有实验室老师们,是你们不仅让我们学会了基本的实验操作,激起了我们对实验课的兴趣,更主要的是从你们身上让我们看到了对那种学术热爱.严谨的精神和为人师表的优秀风范,也许我们以后就不需要再做实验,也许这真的就是我们研究生生涯的最后实验课,但你们的精神和教诲会影响我们的一生_实验动物心得2_实验动物学就这样匆匆结束了,总觉得时间过得很快,心里有种说不出的不舍.记得最初选修这门课的时候,心里很是没低,因为以前从来没有接触过动物实验,(由于专业的原因吧)虽然很想学,可又担心会跟不上其他同学,甚至会考试不过影响学位.不过最后还是选了,如果不学也许就永远不知道它其中所蕴含的乐趣和那种追求医学研究时所必须的严谨,现在想想当时的选择是多么的正确,,正是因为这次犹豫中的选择,让我爱上了这门课.记得第一次实验课是让学捕捉实验鼠,并做常用的给药方式,第一次抓到老鼠时的兴奋至今还难忘,这个实验还算简单,所以很顺利就做完了老师所要求的,同时也给了我很大的信心去学好这门课.以后每次试验课我都会早早的去,很用心的去记录老师讲的每个实验细节,直至最后一节课.有时候看到那些可爱的实验动物总不忍心去实施残忍,每当看到因为自己操作失误而致动物大出血,最后挣扎到死亡时,心中都有种莫名的难受.也有同学对我说既然选择去做实验就不能有怜悯,手要狠,我知道她说的是对的,可是我需要去慢慢的适应.后来我就笑着对同学说,如果不能避免残忍,那就让我们认真的去做好每个实验,合理的去利用每一个实验动物,在不影响实验结果的前提下最好一鼠多用,虽然最终都是要处死的,但至少死有所值吧.随着对医学研究的不断深入,动物实验在医学.药学中的应用也会越来越广,它的重要性将会被更加重视.医学的发展历史告诉我们:有些问题单凭临床经验积累需要花费很长时间才能得到解决,或者虽花费很长时间,问题仍得不到解决,而通过动物实验有些问题就可以得到迅速解决.在我们追逐科研成果的同时,也一定不要忘记去适时的保护这些为我们做出了巨大贡献的动物,如果说,实验是为了更长远的社会利益,那几乎所有的医学科研成果是以无数动物的生命作为代价的,所以请让我们用仁慈的心去善待那些有生命的动物们吧.通过学习这门课,最大的收获我觉得并不是学会了多少种实验的操作(当然这是最基本的要求),而是通过实验更让我们受益的是它需要的这种执着,细心和认真严谨的态度,还有那种团队合作的精神.任何一个实验都是需要大家共同努力去完成,任何一个细节出了问题都会导致最终的失败,所以就要求我们去负责的对待每个环节,每一个步骤.只要把握好整个过程,就会顺利的达到预期的目的.最后,更要感谢的就是这么多天来一直陪伴我们,不厌其烦.耐心教诲的所有实验室老师们,是你们不仅让我们学会了基本的实验操作,激起了我们对实验课的兴趣,更主要的是从你们身上让我们看到了对那种学术热爱.严谨的精神和为人师表的优秀风范,也许我们以后就不需要再做实验,也许这真的就是我们研究生生涯的最后实验课,但你们的精神和教诲会影响我们的一生,衷心的谢谢您:最亲爱的老师._实验动物心得3_微笑是人类的春天,是开放的花朵,白衣天使的微笑是最美的!我也是白衣天使,身穿白衣大褂;但我是白衣天使之中的小小动物天使.虽然畜牧兽医专业,在以前被认为是一门低俗的科学,很少有人去专注,往往被忽略.可是随着社会的改变,随着经济的发展,近些年畜牧兽医这门专业被大大重视起来.人类绝不可脱离这门科学,因为世界是千变万化的,是由各种各样的生灵组织起来的,为了世界的万事万物更美好,我们就应该爱护环境,保卫生灵.既然选择了这个专业,我就更应该为主献出自己的一份力量.人海茫茫寻专职,千万迢迢换求知.来到这里不是我的愿望,所学专业也不是我的梦想,只因为有一种思想把我带到这儿,带到一个完全陌生的地方;一个失去依赖,自力谋生的地方;在这里生存,在这里成长,经过整整一学期的学习;在不知不觉中,喜欢上了我的专业,适应了这里的一切环境,对我校的一切产生了好感,并对其增加了好奇.但主要前提,首先要学好专业,在这一学期的学习中,我发现来到这里我没有走错.喜欢我的学校,喜欢我的专业,喜喜欢在教室里听课,也喜欢上实验课,做实验活动我最感兴趣了.尤其是遇上了一个与我们相通的班主任;还有给我们带课的认真负责的科任老师,最让我开心的是遇到了一些活泼可爱的同学,我们和睦相处,互相学习,共同组成了一个大的班集体.就因为有了这些舒服的学习环境,使我对于畜牧专业有了一个系统的学习方法和目标.畜牧兽医专业培养的是德.智.体全面发展.掌握畜牧和兽医专业等方面的技能,能从事畜牧和兽医专业等工作的技能型.应用型.科学型相结合的现代兽医专业技术人才.如今是我刚开始学习的时间,做为此校的一份子,我心中想更多的是如何去学习畜牧兽医这门专业.把自己在学校所能学到的知识,将来应用到社会中.因为仅仅通过在学校所学的理论知识是远远不够用的,这需要我们去实践.曾也有几次想过放弃,想找要换个专业.也许是因为来到一个陌生的地方学习,不适应这样的学习环境吧!经过一段时间的学习,感觉还不错,静下心来仔细想了想,无论换上哪个专业,如果自己不学.不努力,不奋斗,毕业以后依然什么都没有.其实这专业倒挺好的,对于我来说比较切合实际.即使学起来有一定的难度,但是回头想想,人生难免会遇到挫折,在〝没有经历过失败的人生是不完整的人生.〞想到这里让我感悟到生活就应该敢于尝试.敢于创新.敢于挑战.无论面对什么样的困难,只要不低下头,就一定能过去.现在最好的就是踏踏实实学好自己的专业,毕竟人生的道路不是那么平坦,不是自己能够选择的.然而此时也正是我该学习的机会,应该从各方面好好地锻炼自己,不然以后做什么都干不好.畜牧兽医才是我学习和受教育的大课堂,在那片广阔的天地里努力奋斗,我的人生价值会得到体现,从而也将会为更加激励的竞争打下更为坚实的基础.然而,不知不觉中一学期已经过去了,只知道自己在学习上地努力了,如果不经过好几次的实验课和其他同学不进行交流,我还不会发现自己在学习中的不足有以下几点:一是社会经验不足,只是纸上谈兵.在学习上遇到自己学不懂的知识,不能很好的发挥自己的想法,理论学习方面还有差距,时常感到自己知识太少带来的困惑和迷茫.二是深入学习研究还不够,没有真正形成自主学习的习惯,依然是被家长.老师.身边的同学提醒来学习,没有安排好学习的计划和方法.三是在学习中和同学们交流.沟通的能力还不够好,一些细节方面的问题,需要用心灵去感受.去交流.四是在教学的过程和学习生活中与老师的交流不够多.为了让自己的整体素质和专业学习有进一步的提高,为了更加严格的要求自己,务实自己的作风,给自己定位.就应该真诚的去多交流.五是在各项活动中的积极程度还不够多,有时心里会感到胆怯.怕做不好,不去尝试因而失去了锻炼的机会.但是,人生不怕犯错误,就怕错了之后不改,生活也并不一定不美好,而是发现美的眼睛.我们应该改变自己的种种不足,改变自己的思路,学习方法,加强锻炼,积极进去.应该做到:在学习之余去做一些实践活动.主动处理好与同学之间的关系,以相互尊重,理解为原则,主动去学习.各个班级都有比自己有经验的同学,应该向前请教学习方法.但主演前提是;首先要学好专业,在这一学期的学习中,我发现来到这里不错.我喜欢我的学校,喜欢我的专业,喜欢坐在教室里听课,也喜欢上实验课.做实训活动我最感兴趣了.尤其是遇到了一个与我们心灵相通的班主任,还有给我们代课单位认真负责的科任老师,最让我们开心的事遇到了一群可爱的同学,我们和睦相处,互相学习,共同组成了一个大的班集体.就因为有这些舒适的学习环境,是我对畜牧兽医专业有了一个系统的学习方法和目标.畜牧兽医专业培养的是德.智.体.美全面发展.掌握畜牧和兽医专业等方面的技能,能从事畜牧和兽医等工作的技能型.应用型.科学型相结合的现代兽医专业的技术人才.如今是我刚开学的时间,作为此校的一份子,我心中想的更多的是如何去学好畜牧兽医这们专业.把自己在学校所能学的知识将来能用到社会中.因为仅仅通过在学校所学的理论知识是远远不够的,这就需要我们去实践._实验动物心得4_.实验目的:通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓拿.标记.给药(灌胃.腹腔注射.皮下.肌肉.尾静脉注射).取血(眶后静脉丛,摘眼球).脊椎脱臼法处死.大体解剖.二.实验动物:昆明小鼠2只(1雌1雄)三.实验步骤1.抓取和固定,标记2.去毛3.给药:消化道.腹腔往射.尾静脉注射4.取血:眼眶后静脉丛.尾静脉.眼球摘除法.断头法5.麻醉:氯胺酮腹腔麻醉6.处死:脊椎脱臼法7.解剖:雄性:睾丸.附睾.输精管.鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明)雌性:双角子宫.卵巢肾上腺.胆囊.甲状腺.胃.肝脏.脾.肺.肾.心脏.甲状腺四.实验结果1.抓取和固定标记:抓取:抓小鼠的尾根部固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指和无名指将尾巴固定在手掌面.2.灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针,紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0.5ml3.注射给药:腹腔注射:从下腹部的两侧进针,进针时针与腹部成45°.进针后稍微晃动针,如无粘滞感则可注射药物.尾静脉注射:一人固定小鼠,另一人用左手中指和拇指将尾拉直,食指托住尾部在尾动脉位置进针注射0.5ml生理盐水.注射完毕拔出针头,用无菌棉球压迫止血.4.采血从眼角内侧0.5cm处进针眼球摘除法:左手抓取用固定小鼠,右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除,头朝下,眼眶内血迅速流出.5.麻醉:0.5%氯胺酮腹腔麻醉:本小鼠重_g,按100mg/kg的药量给药,2分钟麻醉成功 6.处死:脊椎脱臼法:按住头部,将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死7.解剖:雄性:寻找到睾丸.附睾.输精管.鼠蹊腺雌性:双角子宫.卵巢3.7.2肾上腺:米粒大小胰腺:位于胃下方,类似于脂肪组织,浑浊状3.7.4,胆囊:芝麻大小,浅绿色,半透明,甲状腺:紧贴环状软骨,另可解剖出胃.肝脏.脾.肺.肾.心脏.五.实验讨论1.小鼠抓取的感受:小鼠性情较温顺,一般不会咬人,比较容易抓取固定.通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上,在小鼠向前挣扎爬行时,用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤,将小鼠置于左手掌心.无名指和小指夹其背部皮肤和尾部,即可将小鼠完全固定.如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作,如进行解剖实验则必须先行无痛处死后再进行.2.小鼠尾静脉注射感受:首先,注射前尾巴用稍热的水浸泡几分钟,有利于注射;其次,先远后尽,不要一开始就从尾根部,那样失败了不好办;再次,进血管后注意保持稳定,针尖很容易刺穿血管的.尾静脉就在尾巴的正左右两边,先用酒精用力擦,可以去掉部分角质,然后按住近心端让充血,就很容易看到了.进针大概1_2厘米是最合适的.尾静脉注射时,可用45_50度的温水浸润半分钟或用酒精擦拭,可使血管扩张,同时也可软化表皮角质.以左手拇指和食指夹住鼠尾,使静脉充盈,中指帮助无名指和小指捏住鼠尾末梢,右手持注射器(连5号细针头),针头与静脉夹角一般小于30度,从距尾尖2- 3厘米处进针,此处皮薄易进入,先抽回血,见到血后再缓慢注入少量药液,如无阻力,表示针头已进入静脉,可继续往入.一般推注速度为0._ -0.10m秒,一次注入量为0._ - 0.25ml/10g体重.如反复注入,应尽可能从尾末端开始,以后向尾根部方向移动注射._实验动物心得5_细胞生物学是研究细胞生命活动规律的一门科学, 细胞是生命的结构和功能单位,也是遗传和变异的单位.有机体的一切病理现象都是细胞病理反应的结果,所以一切生命现象都可从细胞中得到解答.现代分子生物学理论和技术的发展,科学家们开始在分子水平上逐步揭示细胞生命活动规律,并开始研究组织内和组织间细胞的相互关系和分子关联,这是现代细胞生物学的主要特点.细胞生物学作为基础课,既有理论教学,又有实验教学,教学内容量大面广,对学生的知识.能力和素质具有直接和长远的影响.教学内容要反映科学的发展,细胞生物学发展日新月异,新内容层出不穷.因此,我们本着〝实.宽.新.活〞的原则,要求学生牢固掌握细胞的基本结构和功能及各细胞器间的关系的基本知识,并且能够掌握和了解细胞生物学的热点课题的现状和未来的发展趋势,包括生命信息流和细胞信息网络的研究.信号传递与细胞识别.蛋白质的加工.折叠与分选.发育的分子机制及遗传控制.细胞增殖.调控与编程死亡等.《细胞生物学网络课程》集文字.图像.动画于一体,图文并茂.既能作为本专科生的自学和教师教学使用.又能作为相关研究人员有价值的参考网络课程.通过学习,掌握了课程的基本原理.内容体系.相关的研究手段以及细胞生物学在生命科学中的地位和应用,同时了解了相关的参考文献和网站,使自己既具有扎实的细胞生物学基础知识,又训练了获取知识的能力,从而使自己的综合素质进一步得到提高.《细胞生物学网络课程》的总体教学模式是自主学习型.通过大量的文本资料.图片.动画演示.多媒体辅助等手段为网上学习者展现细胞生物学的知识要点,通过多种表现手法,化解难点.教学的重点体现在既兼顾基础,又注意与分子的衔接,重点是细胞器的结构体系和生物学功能.从章节内容考虑,第四章(细胞膜与细胞表面).第五章(细胞的信号传递部分).第六章(细胞基质与细胞内膜系统).第八章(细胞核与染色体).第十章(细胞骨架).第十一章(细胞增殖及其调控).第十二章(细胞分化与基因表达调控)和第十三章(细胞凋亡部分)是细胞生物学的重点内容,同时也是难点,需要认真学习和掌握.生理学是生物科学的分支学科之一.是以生物机体的生命活动现象和生命活动规律及其机体各个组成部分的功能为研究对象,此外,研究内容还包括了生理功能为适应内外环境变化而进行的调节机制和规律.由于生理学是研究生命活动规律的科学,因此本课程在要求学生掌握基本概念.基本理论的同时,更加强调对学生科学思维能力.分析和解决问题的能力的培养.本课程主要包括:以细胞生理学为主的有关生理活动的一般规律;与生命活动调控有关的神经生理学.感觉器官生理学及内分泌生理学;血液循环生理学.呼吸生理学.消化生理学.代谢与体温调节.泌尿生理学.生殖生理学等.该课程是以动物学.解剖学.细胞生物学.生物化学与分子生物学为基础,以此为基础,在功能这一层面揭示生命活动的规律.生理学是从功能这一层面比较系统的揭示生命活动的规律,从知识来看,是以阐述生命活动规律为核心,重构生命科学知识体系.因此,内容十分复杂,范围广,难度大.学习生理学应该做到两个准确,两个灵活,坚持一个主题,一个基本原则.即准确把握知识的框架体系,准确掌握和理解基本概念,灵活运用基本概念和理论进行思考,灵活思考各个主题内容,重新构建自己的知识体系.整个生理学课程以兴奋性为主题,以稳态及其维持为基本原则.全部内容按系统分章节,各章节之间是有联系的,先做到章节内知识的联系,后做到章节间的知识联系,系统地提出问题,分部深入学习理解,然后再进行系统的总结总之,学习的收获是非常丰富,它引发我更多的思考,也让我收获了很多的知识.然而,憧憬未来,我知道前方的道路依然是曲折的,毕竟这些思考和理论需要我在今后的教学实践中不断的去尝试和运用,并最终将其转化为自身的东西,我想只有这样才算是真正达到培训的目的实验动物心得体会。
心脏采血实验报告
一、实验目的1. 了解心脏采血的基本原理和操作方法。
2. 掌握心脏采血的实验技巧，提高实验操作能力。
3. 学习心脏采血在医学研究和临床诊断中的应用。
二、实验原理心脏采血是一种常用的采血方法，通过在心脏部位穿刺，采集血液样本。
心脏采血可以获取较纯净的血液样本，适用于某些需要高纯度血液样本的实验。
本实验采用家兔作为实验动物，通过心脏采血获取血液样本。
三、实验材料1. 实验动物：家兔一只（体重2.5kg左右）。
2. 实验器材：手术刀、手术剪、手术镊、动脉夹、动脉套管、注射器、无菌生理盐水、无菌纱布、无菌手术巾、酒精棉球、碘伏、剪刀、止血钳、手术显微镜、心脏采血针等。
3. 实验试剂：肝素钠、抗凝剂、生理盐水、注射器等。
四、实验步骤1. 实验动物准备：将家兔放入实验箱内，适应环境，使其安静。
2. 麻醉：使用2%的利多卡因进行局部麻醉，麻醉部位为家兔的颈部。
3. 心脏暴露：在麻醉成功后，将家兔固定在手术台上，用手术刀沿颈部正中线切开皮肤，暴露左侧颈总动脉。
4. 动脉插管：用动脉夹夹住颈总动脉近端，用手术剪在远心端剪一小口，将动脉套管插入动脉内，用丝线结扎套管前端部分，固定套管。
5. 心脏采血：将注射器连接到动脉套管，抽取血液样本。
采血量根据实验需求而定。
6. 样本处理：将采集到的血液样本加入肝素钠抗凝剂，轻轻混匀，置于4℃冰箱保存。
7. 伤口处理：用无菌纱布覆盖伤口，用碘伏消毒，用止血钳固定。
8. 实验动物复苏：待实验结束后，缓慢停止麻醉，观察家兔的恢复情况。
五、实验结果与分析1. 实验结果：成功采集到约5ml的血液样本。
2. 实验分析：心脏采血实验成功，说明实验操作正确，实验动物状态良好。
六、实验总结1. 本实验成功完成了心脏采血，为后续实验提供了血液样本。
2. 在实验过程中，注意以下几点：a. 实验操作要轻柔，避免对实验动物造成伤害。
b. 麻醉要充分，确保实验动物处于安静状态。
c. 严格按照实验步骤进行操作，确保实验结果的准确性。
小白鼠实训报告心得体会
一、引言作为一名医学专业的学生，我深知实验课程对于医学知识的学习和实践技能的掌握至关重要。
而小白鼠实验作为实验课程中的重要组成部分，让我对医学实验有了更加深刻的认识。
在本次小白鼠实训中，我不仅学到了丰富的理论知识，还锻炼了动手实践能力，以下是我对本次实训的心得体会。
二、实训过程1. 实训准备在实训开始前，我们首先了解了小白鼠的基本情况，包括品种、生理特征、生活习性等。
同时，我们学习了实验所需的器材和药品，如解剖刀、显微镜、生理盐水、麻醉剂等。
2. 实验操作本次实训主要包括以下几个方面：（1）小白鼠的捕捉与固定：我们学习了如何正确捕捉小白鼠，并在实验过程中确保其安全。
同时，我们还掌握了如何将小白鼠固定在解剖台上，以便进行后续操作。
（2）小白鼠的解剖：在老师的指导下，我们进行了小白鼠的解剖实验。
通过解剖，我们直观地了解了小白鼠的内部结构，如心脏、肝脏、脾脏、肺脏等器官的位置和功能。
（3）生理实验：我们进行了小白鼠的心率、血压等生理指标的测定，了解了生理指标与生命活动的关系。
（4）显微镜观察：在显微镜下，我们观察了小白鼠的细胞结构、组织结构等，进一步加深了对生物学知识的理解。
3. 实验总结在实训过程中，我们认真记录了实验数据，分析了实验结果，并对实验过程中遇到的问题进行了讨论和解决。
通过本次实训，我们不仅掌握了小白鼠实验的基本操作，还提高了团队协作和解决问题的能力。
三、心得体会1. 理论与实践相结合通过本次实训，我深刻体会到理论与实践相结合的重要性。
在实验过程中，我们不仅将课堂上所学的理论知识运用到实际操作中，还通过实验验证了理论知识。
这种学以致用的方式让我对医学知识有了更加深入的理解。
2. 培养动手实践能力小白鼠实验要求我们具备一定的动手实践能力。
在实训过程中，我学会了如何正确操作实验器材，掌握了实验技能。
这些技能对于今后从事医学研究或临床工作具有重要意义。
3. 增强团队协作意识在实验过程中，我们分工合作，共同完成了实验任务。
小鼠心脏穿刺采血并存活的几点注意事项
１） 小鼠的固定（ 左手单手固定） ： 以右手抓住小鼠尾巴提 起， 置于鼠笼或实验台向后拉， 在其向前爬行时， 用左手拇指 和食指抓住小鼠两耳和颈部皮肤， 将鼠体置于左手掌心、无名 指和小指夹其背部皮肤和尾部， 即可将小鼠完全固定。
２） 充分暴露胸部， 眼科剪去毛， 常规消毒。 ３） 以４￣５号 针 头 的 注 射 器 ， 选 择 心 搏 最 强 处 （ 左 侧 第３￣４ 肋间， 一般位于两上肢连线下０．５ｃｍ中线稍偏左） 进针。调整进 针深浅， 当针头正确刺入心脏时， 由于心脏跳动的力量， 鼠血 自然进入注射器。 ４） 缓慢抽动注射器针芯， 使注射器内保持负压。 ５） 取０．１￣０．２ｍｌ血后拔出针尖， 短时以棉签压迫穿刺部位。
８） 穿刺动作宜迅速， 以减少对小鼠刺激。抽取血液应缓 慢， 一般以保持注射器内负压即可。过快放血， 由于回心血量 不足易致小鼠死亡。
９） 如针头进入心脏但抽不出血时， 应将针头稍微后退一 点。针头在胸腔中不能左右摆动， 以防止损伤心肺。
１０） 保证小鼠存活的最大安全取血量为５ｍｌ／ｋｇ。３￣４周 后 可以重复取血一次。特别注意的是： 老年小鼠血量降低， 疾病 会加重不良反应， 故必须考虑这些因素。如果需要很短的时间 反复采血， 比如每天一次， 则不适用此方法。
１１） 穿刺结束半小时内一定要避免小鼠的剧烈运动。
参考文献
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实验动物的采血实验报告
一、实验目的1. 掌握实验动物采血的方法和技巧。
2. 熟悉实验动物采血设备的操作。
3. 了解采血过程中的注意事项。
二、实验原理实验动物采血是医学研究、生物科学等领域的重要实验技术。
通过采集实验动物血液，可以检测其生理指标、病原体、药物浓度等，为疾病诊断、药物研发、生物学研究等提供重要数据。
本实验采用心脏采血法，通过切开动物心脏，收集血液样本。
三、实验材料1. 实验动物：小白鼠1只。
2. 采血设备：采血针、注射器、酒精棉球、无菌手套、生理盐水。
3. 实验用品：试管、试管架、离心机、记号笔。
四、实验步骤1. 实验动物准备（1）将小白鼠放入代谢笼中，适应实验环境。
（2）在小白鼠头部涂抹少量酒精，使其麻醉。
（3）用记号笔在小白鼠胸部标记心脏位置。
2. 采血操作（1）戴无菌手套，将小白鼠放在实验台上。
（2）用酒精棉球消毒小白鼠胸部皮肤。
（3）用采血针在小白鼠胸部心脏位置切开皮肤，找到心脏。
（4）用注射器抽取血液，注入试管中。
（5）在采血过程中，注意观察小白鼠反应，如有异常，立即停止采血。
3. 血液处理（1）将采集到的血液样本进行离心处理，分离血清和红细胞。
（2）将血清和红细胞分别装入试管，标记清楚。
4. 实验数据记录（1）记录小白鼠的体重、性别、年龄等基本信息。
（2）记录采血时间、采血量、血液颜色等。
五、实验结果与分析1. 实验结果本次实验成功采集到小白鼠血液样本，血液颜色正常，无溶血现象。
2. 实验分析（1）采血过程中，操作者需熟悉实验动物解剖结构，避免损伤心脏。
（2）采血过程中，注意无菌操作，防止感染。
（3）采血量不宜过多，以免影响实验动物健康。
六、实验结论本次实验成功掌握了实验动物采血的方法和技巧，为后续实验提供了可靠的血液样本。
七、实验讨论1. 实验动物采血过程中，如何避免感染？答：实验过程中需严格遵守无菌操作原则，如戴无菌手套、消毒皮肤等。
2. 采血过程中，如何避免损伤心脏？答：熟悉实验动物解剖结构，准确找到心脏位置，操作轻柔。
小白鼠采血三种方法的优缺点
小白鼠采血三种方法的优缺点(1)眼眶后血管丛采血(2)摘除眼球采血(3)心脏采血1.采血部位：眼眶采血采血方法：将鼠固定在实验台边缘，左手抓紧鼠颈部皮肤固定头部，并轻轻向下压迫颈两侧，使眼球充血。
用事先准备好的10号金属针头顶端(针尖斜面朝内)垂直插入内眦并向眼底方向转动以便切开静脉丛，血液便会连续不断地滴入采血管。
用此法大约可取3~5mL 血液。
取血完毕，立刻用脱脂棉压迫止血。
优点：眼眶后静脉丛采血法方法简单，便于掌握。
血流较快，采血量多，能在较短时间内采到3~5mL血。
伤口较小，愈合较快。
成功率高，死亡率低。
缺点：不能避免组织液的混入，对于血样要求较高的研究应谨慎使用。
另外，多次使用易引起大鼠的感染。
对后续试验结果存在一定影响。
2.摘眼采血：鼠可以眼球取血，需要多多练习。
一般来说，可以三人配合取血。
取血前不需麻醉，用眼科剪剪掉大鼠的胡须（胡须过长，血液滴下的时候容易沾在胡须上，既浪费，又造成溶血，故应剪掉）。
所需器械：眼科小剪、眼科弯镊、止血钳。
一人抓大鼠并用眼科弯镊摘眼球，一人用止血钳夹住大鼠的嘴部以固定大鼠头部，另一个人拿试管接血。
大鼠在挣扎过程中，很容易导致血液丢失，因此固定头部很重要，否则只有眼看着血液乱飞，却不入试管。
摘眼球也需要技巧，否则眼球摘下来了，而血液却不流出来，应多多练习优缺点不太清楚啊，只知道我一个学长摘眼球的时候被咬了一口，挺残忍的3.采血部位：心脏取血（其实这个一般用在家兔）采血方法：将实验动物做仰卧有助手固定，术者在其左前肢腋下处剪毛及消毒。
在胸部心脏跳动最明显处，用一寸长的12好针头直刺心脏，感到以针头跳动或有血液内流动时。
即可抽血。
一次可采血15-20ml优点：抽血快，血液不易凝集，心区面积大, 进针准确性较高, 易一针见血, 且采血量能满足大量试验需要缺点：心脏损伤较大，难以迅速愈合，不利于短期连续采血。
3‘.采血部位：心脏采血（剪开皮肤）采血方法：从胸部正中剪开皮肤2.0~2.5cm。
浅谈家畜采血的体会
人 家 畜 颈 静 脉 血 管 内 ，再 使 针 头 后 端 靠 近 皮 肤 ，以 减 小 其 间 的角 度 ，近 似平 行 地 将 针 头 再 伸 入 血管 内 １ ￣ ２ ｅ ｍ ． 。
５ 取 血
首 先 要 保 定 好 需 要 采 血 的 家 畜 ，编 号 ，采 血 时 助 手 使 其 家 畜 头 部 稍 前 伸 并 稍偏 向对 侧 。
２ 消 毒
采 血 人 员 放 开 用 手 压 迫 的 颈 静 脉 管 的 左 手 。收 集 所 需 家
采 血 人 员 要对 家畜 采 血 的颈 静 脉 局 部 进行 剪 毛 和消 毒 。
３ 确后 ，用 酒 精 棉 球 压 迫 局 部 并 快 速 拔 出针 头 ．最 后 再用 ５ ％碘酊 进 行 局 部 采 血 针 口消 毒 ，即 可 。
引 起 腹 泻 。 三是 泔 水 喂 猪 应 在 体 重 ２ ５ 千克 以上 ．饲 量逐 步添 加 至 常 喂量 。 四 是 剔 除 泔 水 中 的 杂 物 。如 牙 签 、筷 子 、破 碗 碟 、塑 料 筷 子 和 塑 料 杯 、烟 头 等 ，并 及 时 清 理 。 五 是 火 锅 店 的 泔 水 中盐 分 含 量 高 ，油 腻 多 ，性 味辛 辣 ，
次 进 入 餐 饮 市 场 。 严 厉 打 击 倒 卖 病 死
猪 的 不 法 经 营 者 。 对 现 有 的泔 水 养 猪 场 （ 户 ）进 行 养 猪 环 境 整 治 。 加 强 监
安 康 市 汉滨 区是 省 级 养 猪 大 县 ， 养 猪 行 业 是 个 高 消 耗 粮 食 产 业 ， 而 汉 滨 区 相 对 粮 食 生 产 不 足 ．为 了 发 展 养 猪 产 业 要 大 量 地 从 外 地 调 运 的 玉 米 和 饲 料 。 因 而 ，建 立 汉 滨 区 泔 水 饲 料 加 工 厂 十 分 必 要 。把 泔 水 通 过 脱 水 、 烘 干 、消 毒 、 粉 碎 等 工 艺 与 其 他 饲 料 原
实验小鼠心脏采血方法
实验小鼠心脏采血方法
小鼠是科研实验中常用的实验动物，但由于其体积小，血管细，采血难度大，进而影响采血的质量，小编简要总结了实验小鼠心脏采血方法，仅供参考：
优点：取血快，血液不易凝集，心区面积大,进针准确性较高,可一针见血,且采血量能满足大量试验需要。
缺点：采血成功率较小，死亡率高，心脏损伤较大，难以迅速愈合，不利于短期连续采血，亦无法确定是静脉血还是动脉血。
一般有3种心脏采血的姿势：1、托起小鼠躯干使身体垂直与地面。
身体直立以防止心脏的偏转或胸部的扭曲。
使用1毫升注射器和22g 针头。
将针头从胸部中央向下5mm处插入，深度5-10mm，将注射器与胸部保持25-30度；2、使小鼠仰卧固定，剪去胸前区被毛，皮肤消毒后，用左手食指在左侧第3～4肋间触摸到心搏处，右手持带有4~5号针头的注射器，选择心搏最强处穿刺；3、使小鼠侧卧，垂直于胸壁插入针头。
如果血液没有立刻进入注射器，可以轻轻抽空针管，产生一个真空区。
当注射器中出现血液时，将针管保持静止并轻轻地抽拉活塞芯杆，以获得更多地血液。
一般可以采到0.8-1.0ml血液。
实验小鼠心脏采血实验报告
实验小鼠心脏采血实验报告实验小鼠心脏采血实验报告一、引言心脏采血是一种常用的实验技术，通过采集小鼠心脏中的血液样本，可以获取关于心脏功能和生理状况的重要信息。
本实验旨在探究实验小鼠心脏采血的操作步骤和技巧，并分析采集到的血液样本。
二、材料与方法1. 实验小鼠：使用同种性别、同年龄的健康小鼠作为实验对象，以减少实验误差。
2. 实验器材：包括手套、无菌注射器、注射针头、无菌生理盐水等。
3. 实验操作：首先将小鼠固定在实验台上，然后用无菌生理盐水清洗采血部位，接着用无菌注射器和注射针头进行心脏采血。
三、实验结果1. 采血操作：在实验过程中，我们发现固定小鼠的姿势对采血的成功率有重要影响。
适当固定小鼠的身体，使心脏处于较为稳定的位置，有助于准确地定位采血点。
此外，使用无菌生理盐水清洗采血部位，可以有效预防感染的发生。
2. 血液样本：通过心脏采血，我们成功获得了小鼠心脏中的血液样本。
这些血液样本可以用于测定血液中的各种生化指标，如血红蛋白水平、血糖浓度等。
此外，通过血液样本的分析，还可以了解小鼠心脏的功能状态，如心脏收缩力和心率等。
四、讨论与分析1. 采血技巧：心脏采血是一项技术要求较高的实验操作，需要熟练的手法和准确的操作。
在实验过程中，我们发现掌握正确的操作技巧对于提高采血成功率非常重要。
适当调整注射针头的角度和深度，可以减少对心脏的损伤，提高采血的效果。
2. 血液样本的应用：通过采集小鼠心脏中的血液样本，我们可以获取关于心脏功能和生理状况的重要信息。
这些信息对于研究心血管疾病、药物研发等具有重要意义。
同时，血液样本的分析也可以帮助我们了解小鼠心脏在不同条件下的变化，为进一步研究提供重要依据。
五、结论心脏采血是一种常用的实验技术，通过采集小鼠心脏中的血液样本，可以获取关于心脏功能和生理状况的重要信息。
在实验过程中，正确的操作技巧和准确的操作步骤对于提高采血成功率非常重要。
通过分析血液样本，我们可以了解小鼠心脏的功能状态，为进一步研究提供重要依据。
小鼠心脏采血实验报告
1. 掌握小鼠心脏采血的操作方法。
2. 了解心脏采血在实验研究中的应用及注意事项。
3. 培养实验操作技能，提高实验操作的规范性。
二、实验原理心脏采血是实验动物血液采集的一种方法，通过穿刺心脏直接获取血液样本。
与剪尾采血、眼眶采血等方法相比，心脏采血具有采血量多、创伤小、操作简便等优点，广泛应用于实验研究中。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：昆明小鼠（体重20-25g）5只2. 仪器：手术器械一套、注射器（1mL）、针头、手术剪、镊子、酒精棉球、生理盐水、碘酒、棉签、鼠板、手术刀、剪刀、针筒、消毒纱布等。
四、实验方法1. 麻醉：采用氯胺酮麻醉，按体重给予氯胺酮（100mg/kg）腹腔注射。
2. 固定：将小鼠固定在鼠板上，使小鼠仰卧位。
3. 消毒：用酒精棉球对小鼠胸前区进行消毒。
4. 采血：用手术刀在胸前区剪一小口，暴露心脏。
用镊子提起心脏，用手术剪在心脏左侧剪一小口，插入针头，抽取血液。
采血量约为0.5-1mL。
5. 结扎：用消毒纱布压迫心脏伤口，防止出血。
用缝合线将心脏伤口缝合。
6. 观察与记录：观察小鼠的生命体征，记录采血量、血液颜色等。
五、实验结果与分析1. 实验结果显示，5只小鼠心脏采血均成功，采血量在0.5-1mL之间，血液颜色鲜红。
2. 采血过程中，小鼠生命体征平稳，无异常反应。
3. 心脏采血操作简便，采血量充足，适用于实验研究。
1. 心脏采血是实验动物血液采集的一种重要方法，具有采血量多、创伤小、操作简便等优点。
2. 在实验操作过程中，应注意以下几点：a. 麻醉：采用适当的麻醉方法，确保小鼠在采血过程中无痛苦。
b. 固定：将小鼠固定在鼠板上，避免在采血过程中小鼠移动。
c. 消毒：对手术区域进行彻底消毒，防止感染。
d. 采血：操作熟练，动作轻柔，避免损伤心脏。
e. 观察与记录：观察小鼠的生命体征，记录采血量、血液颜色等。
七、实验结论通过本次实验，我们掌握了小鼠心脏采血的操作方法，了解了心脏采血在实验研究中的应用及注意事项。
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小鼠心脏取血心得体会
1、麻醉小鼠，选取小鼠刚麻好状态，此时心跳快，有利于观察搏动及取血。
2、固定好小鼠，胸部酒精消毒，暴露胸部皮肤，有利于观察小鼠心脏搏动。
3、方法一：（正常左位心）左手按压小鼠肋骨下方，使得胸腔饱满。
观察小鼠心
脏搏动最强点，并用右手触摸轻轻按压寻找最强搏动点（一般在胸骨下方稍靠左的位置）。
垂直进针约8毫米（无很强突破感，有扎入肉的感觉，言语有限，自行体会……），左手固定针头（很重要），防止跑偏，抽吸，若无血液流出，可慢慢沿着同一方向调整进针深度，再抽吸即可。
若仍无，建议直接拔出针，重新寻找下针点。
若有很强的落空突破感，估计是没扎到心脏。
4、方法二：（很难搞的右位心），左手按压小鼠肋骨下方，使得胸腔饱满。
若有
很强的心脏搏动，即可按方法一行。
若无，寻找小鼠胸骨，中间上方硬硬的一块。
胸骨下方进针，后续方法同前。