兔子心脏采血的实验报告范文
家兔动脉实验报告
一、实验目的1. 熟悉动脉的解剖结构；2. 掌握动脉的生理特性；3. 了解动脉疾病的发生机制；4. 培养动手能力和实验操作技能。
二、实验原理动脉是人体循环系统中的一种血管，主要负责将心脏泵出的血液输送到全身各个器官和组织。
动脉壁主要由三层组成：内膜、中层和外膜。
本实验通过对家兔动脉的解剖观察，了解动脉的解剖结构、生理特性以及疾病的发生机制。
三、实验材料1. 家兔尸体1具；2. 刀片、剪刀、镊子、针筒、注射器、生理盐水、酒精、碘酒、生理盐水等；3. 显微镜、载玻片、盖玻片等。
四、实验步骤1. 解剖准备（1）将家兔尸体放置于解剖台上，用剪刀剪开颈部皮肤，暴露出气管和食管；（2）用镊子将气管和食管轻轻挑起，剪断气管和食管；（3）将家兔尸体翻转，剪开腹部皮肤，暴露出内脏器官；（4）用剪刀剪开胸膜，暴露出心脏和肺脏。
2. 解剖动脉（1）找到主动脉弓，用剪刀剪断主动脉弓与心脏的连接；（2）分离主动脉弓与头臂动脉的连接；（3）用剪刀剪断头臂动脉与颈总动脉的连接；（4）分离颈总动脉与颈外动脉的连接；（5）分离颈外动脉与颈内动脉的连接；（6）分离颈内动脉与大脑中动脉的连接；（7）分离大脑中动脉与大脑前动脉的连接；（8）分离大脑前动脉与大脑后动脉的连接；（9）分离大脑后动脉与基底动脉的连接；（10）分离基底动脉与脊髓动脉的连接。
3. 观察动脉结构（1）观察动脉内膜，注意其光滑度、完整性；（2）观察动脉中层，注意其厚度、弹性；（3）观察动脉外膜，注意其完整性、厚度。
4. 观察动脉生理特性（1）用注射器抽取动脉血液，观察血液颜色、黏稠度；（2）将动脉剪成小段，用生理盐水冲洗，观察动脉的弹性、脆性。
5. 观察动脉疾病（1）观察动脉内膜有无斑块形成；（2）观察动脉中层有无病变；（3）观察动脉外膜有无炎症。
五、实验结果与分析1. 解剖结果本实验成功解剖出家兔的主动脉、头臂动脉、颈总动脉、颈外动脉、颈内动脉、大脑中动脉、大脑前动脉、大脑后动脉和基底动脉等。
兔子心脏实验报告
一、实验目的1. 观察兔子心脏的结构特点，了解心脏的基本构造。
2. 学习心脏搏动和血流动力学的基本原理。
3. 掌握心脏采血的方法和技巧。
4. 分析心脏功能与血压、呼吸运动的关系。
二、实验原理心脏是高等动物循环系统的核心器官，负责将血液泵送到全身各部位，维持生命活动。
心脏由四个腔室组成：左心房、左心室、右心房和右心室。
心脏的搏动通过心肌的收缩和舒张来完成，从而推动血液流动。
动脉血压是血液在动脉内的压力，是心血管功能活动的综合指标。
呼吸运动与心脏搏动密切相关，共同维持机体代谢水平。
三、实验器材1. 实验动物：一只健康兔子（体重约2.88Kg）2. 实验试剂：20%的乌拉坦、肝素、生理盐水、肾上腺素3. 实验设备：兔箱、电子称、手术灯、兔解剖台、压力换能器、呼吸流量换能器、金属碗、纱布、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子、输液夹、皮剪、眼科剪、托盘金属、托盘陶瓷、一次性静脉输液针四、实验步骤1. 实验动物准备：将兔子放入兔箱中，用电子称称量体重，并做好标记。
2. 麻醉：用20%的乌拉坦对兔子进行全身麻醉，确保实验过程中兔子处于无痛苦状态。
3. 心脏暴露：打开兔子胸腔，暴露心脏。
4. 心脏采血：用注射器从心脏采血，观察血液颜色、粘稠度等特征。
5. 动脉血压测量：将动脉插管插入兔子动脉，连接压力换能器，观察动脉血压变化。
6. 呼吸运动观察：将气管插管插入兔子气管，连接呼吸流量换能器，观察呼吸运动。
7. 药物处理：向兔子体内注射肾上腺素，观察心脏搏动、动脉血压和呼吸运动的变化。
8. 数据记录：详细记录实验过程中观察到的各种生理指标。
五、实验结果与分析1. 心脏结构：兔子心脏由四个腔室组成，与人类心脏结构相似。
心脏表面有心肌层、心外膜和心内膜等结构。
2. 心脏搏动：兔子心脏搏动规律，每次搏动产生明显的动脉血压升高和呼吸运动增强。
3. 心脏采血：兔子血液呈红色，粘稠度适中，与人类血液相似。
家兔动脉血压实验报告
家兔动脉血压实验报告家兔动脉血压实验报告概述：本实验旨在研究家兔的动脉血压变化规律及其与心脏功能之间的关系。
通过测量家兔在不同状态下的动脉血压，我们可以了解到动脉血压的变化对心脏功能的影响，为进一步研究心血管疾病提供参考。
实验方法：我们选取了10只健康的家兔作为实验对象，分为两组。
第一组是安静组，将家兔放置在安静的环境中，记录其静息状态下的动脉血压。
第二组是运动组，将家兔进行适度的运动，如跳跃、奔跑等，记录其运动状态下的动脉血压。
实验结果：在安静组中，我们发现家兔的动脉血压维持在一个相对稳定的水平。
在运动组中，家兔的动脉血压明显升高，这是因为运动时心脏需要更多的血液供应，从而增加了动脉血压。
此外，我们还观察到运动后动脉血压在一定时间内逐渐恢复到静息水平，这表明家兔的心脏具有较好的代偿能力。
讨论与分析：通过这次实验，我们可以得出以下结论：1. 运动对动脉血压有显著影响：运动会导致动脉血压升高，这是因为心脏需要更多的氧气和养分供应，从而增加了心脏的收缩力和心排血量。
2. 动脉血压的变化与心脏功能密切相关：动脉血压的升高反映了心脏的负荷增加，而动脉血压的恢复则表明心脏具有较好的代偿能力。
3. 家兔的心血管系统具有一定的调节能力：运动后动脉血压能够在一定时间内逐渐恢复到静息水平，这说明家兔的心血管系统具有一定的调节能力，能够适应不同的生理状态。
结论：通过本次实验，我们对家兔的动脉血压变化规律及其与心脏功能之间的关系有了初步的了解。
家兔的动脉血压在不同状态下呈现出不同的变化趋势，这与心脏的功能密切相关。
进一步研究家兔动脉血压的变化规律，有助于我们更好地理解心血管系统的功能及其与心血管疾病的关系。
家兔心脏采血实验报告
实验报告——家兔心脏采血实验日期：2012/3/20~4/23 报告日期：4/25【实验目的】学习家兔心脏采血技术并熟练掌握其操作步骤及要领。
【实验原理】血液是制备血清、血浆、血球的原始材料，其质量好否直接影响实验的准确性，而采血方法与技术又直接影响到血液的数量和质量。
心脏采血与传统耳缘静脉采血相比，心脏位于第2 一4 肋间, 心区面积大, 进针准确性较高, 易一针见血, 且采血量能满足大量试验需要,只要注意抽血部位消毒, 避免采血次数过多而损伤组织, 下次采血时, 即可在原针口处进针。
耳静脉采血量少, 针头刺人时, 血管滑动不易固定, 在寒冬或家兔处于安静状态时, 血液回流缓慢, 血管扩张不充分, 进针点难确定。
在采血过程中, 兔一旦挣扎针头易滑出血管, 引起皮下大量癖血, 看不清楚位置, 继续采血很困难, 因此家兔宜心脏采血优点突出。
【实验材料】1.动物：健康家兔2.用具：试验台，0.1%新洁尔灭溶液，3%碘酊，75%酒精，烧杯，注射器及针头。
【实验方法】1．家兔选择采血兔选骨骼粗壮、肌丰满, 肢形步态正常, 被毛光泽、丰厚, 举止灵活, 头颈姿势端正, 眼睛亮而有神, 无眼、鼻分泌物的健康雄性家兔。
2.采血条件在光线充足和清洁的室内采血。
冬季室内温度应保持在巧一20 ℃ , 手术台(桌面), 地面均用0. 1% 新洁尔灭溶液消毒。
3．采血方法（1）固定:取仰卧保定于固定台, 用绳系牢四肢, 使头颈伸直. 为防止采血时兔挣扎, 助手一手拽耳固定头部, 另一手抓住兔腿, 固定后躯。
（2）判断心脏位置：家兔左侧胸部剪去被毛, 用0. 1% 新洁尔灭溶液消毒胸腹壁后, 再用3 % 碘配和75 % 酒精涂搽消毒左胸壁至左前肢腋下,从左前腋水平向上2 一2.5 cm (3 一4 肋骨间) , 用左手拇指按触家兔胸部左侧，觉察心脏跳动最明显部位, 即为体表进针点。
（3）采血：确定进针点后以左手拇指左侧放在进针点的外侧, 手掌以弧形手势扶住心脏处, 同时手腕及小臂贴靠在家兔的左体侧, 以似压非压姿势, 以防兔在采血中可能发生的突然骚动。
兔采血实验报告
一、实验目的1. 掌握兔采血的基本操作技术。
2. 了解兔采血的不同方法及其适用范围。
3. 熟悉采血过程中的注意事项和并发症的预防。
二、实验原理兔采血是生物学实验中常用的技术，通过采集兔血液，可以检测兔的生理指标，如红细胞计数、白细胞计数、血小板计数、血糖等。
兔采血的方法主要有耳缘静脉采血、耳中央动脉采血、颈静脉采血和心脏采血等。
三、实验材料1. 实验动物：健康成年兔（体重2.5-3.0kg）2. 实验试剂：生理盐水、肝素、消毒剂3. 实验器材：手术剪、手术刀、注射器、针头、止血钳、棉球、酒精棉球、兔固定箱、兔固定板、显微镜、计数板、计数器等四、实验方法1. 耳缘静脉采血- 将兔固定在兔固定箱内，使兔头部露出。
- 消毒兔耳，拔去耳缘静脉附近的被毛。
- 用手指轻弹兔耳，使静脉扩张。
- 用手术剪剪去兔耳缘静脉末端的一小段皮肤。
- 将针头插入剪开的皮肤，使针头进入静脉内。
- 用注射器抽取所需血液量，拔出针头后用棉球压迫止血。
2. 耳中央动脉采血- 将兔固定在兔固定箱内，使兔头部露出。
- 消毒兔耳，拔去耳中央动脉附近的被毛。
- 用手指轻弹兔耳，使动脉扩张。
- 用手术剪剪去兔耳中央动脉末端的一小段皮肤。
- 将针头插入剪开的皮肤，使针头进入动脉内。
- 用注射器抽取所需血液量，拔出针头后用棉球压迫止血。
3. 颈静脉采血- 将兔固定在兔固定箱内，使兔头部露出。
- 消毒兔颈，拔去颈静脉附近的被毛。
- 用手指轻轻触摸兔颈静脉，使其扩张。
- 用手术剪剪去颈静脉末端的一小段皮肤。
- 将针头插入剪开的皮肤，使针头进入静脉内。
- 用注射器抽取所需血液量，拔出针头后用棉球压迫止血。
4. 心脏采血- 将兔固定在兔固定箱内，使兔头部露出。
- 消毒兔胸，拔去心脏部位的被毛。
- 用手术剪剪去兔心脏部位的一小段皮肤。
- 用手术刀切开兔心脏，使血液流入注射器。
- 用注射器抽取所需血液量，拔出针头后用棉球压迫止血。
五、实验结果1. 成功采集到所需血液量。
家兔血管综合实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 掌握家兔血管生理学的基本知识，了解家兔血管的结构和功能。
2. 熟悉血管生理学实验的基本操作方法，提高实验技能。
3. 通过实验观察家兔血管在不同生理和病理状态下的变化，加深对血管生理学理论的理解。
二、实验原理家兔血管是维持血液循环的重要组成部分，包括动脉、静脉和毛细血管。
血管的舒缩活动受神经和体液因素的调节，以维持血压和血流量的相对稳定。
本实验通过对家兔血管的观察和分析，了解血管的结构、功能及其调节机制。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔一只2. 实验仪器：手术显微镜、手术器械、动脉夹、血压计、注射器、试管等3. 实验试剂：生理盐水、肝素、肾上腺素、去甲肾上腺素等四、实验方法1. 家兔麻醉：使用戊巴比妥钠进行家兔全身麻醉，维持麻醉深度。
2. 暴露血管：在手术显微镜下，切开家兔颈部皮肤，暴露颈动脉和颈静脉。
3. 动脉插管：用动脉夹夹闭颈动脉，剪断动脉，插入动脉插管，连接血压计，观察血压变化。
4. 观察血管舒缩：观察颈动脉和颈静脉在不同生理和病理状态下的舒缩活动，记录血管直径、血压等指标。
5. 药物处理：给予家兔肾上腺素、去甲肾上腺素等药物，观察血管舒缩变化，分析药物对血管的影响。
6. 收集数据：记录实验过程中各项指标的变化，分析结果。
五、实验结果与分析1. 家兔血管结构：家兔血管分为动脉、静脉和毛细血管。
动脉壁厚，具有收缩和舒张功能；静脉壁薄，具有储存血液功能；毛细血管壁薄，是血液与组织细胞进行物质交换的场所。
2. 血管舒缩：在生理状态下，家兔血管具有一定的舒缩性。
给予肾上腺素后，血管收缩，血压升高；给予去甲肾上腺素后，血管舒张，血压降低。
3. 药物对血管的影响：肾上腺素和去甲肾上腺素对血管的影响与实验结果一致。
肾上腺素使血管收缩，血压升高；去甲肾上腺素使血管舒张，血压降低。
4. 血管在不同生理和病理状态下的变化：给予肝素后，家兔血管出现出血现象，说明肝素具有抗凝血作用。
兔子血液制备实验报告
一、实验目的1. 学习动物血液采集方法。
2. 掌握血液分离、制备和保存技术。
3. 了解血液成分及其生理功能。
二、实验原理血液是动物体内重要的液体组织，由血浆和血细胞组成。
血浆中含有多种营养物质、激素、电解质等，对维持生命活动具有重要意义。
血细胞包括红细胞、白细胞和血小板，它们分别负责运输氧气、免疫和凝血等功能。
本实验通过采集兔子血液，分离制备血浆和血细胞，为进一步研究血液成分和功能提供实验材料。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：健康成年兔子一只2. 采血管：5ml、10ml各一支3. 针头：5号、7号各一支4. 生理盐水：100ml5. 抗凝剂：EDTA-K26. 采血针：一次性采血针7. 移液器：1ml、5ml各一支8. 离心机：低速离心机9. 灭菌器：高压蒸汽灭菌器10. 实验室工作台、无菌操作台四、实验步骤1. 准备工作：将实验动物固定在实验台上，用生理盐水湿润皮肤，消毒后选择耳静脉作为采血部位。
2. 采血：用7号针头连接5ml采血管，抽取EDTA-K2抗凝剂，沿耳静脉方向刺入，缓慢注入抗凝剂，使血液与抗凝剂充分混合。
然后继续采集血液，直至采集到10ml血液。
3. 分离血液：将采集到的血液立即转移到无菌操作台中，将10ml血液加入5ml采血管中，充分混匀，防止凝固。
将混匀的血液加入离心管中，室温下低速离心10分钟。
4. 制备血浆：离心后，将上层血浆小心转移到另一支无菌试管中，封口备用。
5. 制备血细胞：离心后的沉淀物即为血细胞，将其转移到另一支无菌试管中，封口备用。
6. 血浆和血细胞的保存：将制备好的血浆和血细胞分别放入-20℃冰箱中保存，备用。
五、实验结果与分析1. 血浆制备：成功制备出10ml血浆，色泽正常，无杂质。
2. 血细胞制备：成功制备出约5ml血细胞，色泽暗红，无杂质。
六、实验总结本次实验成功采集了兔子血液，并成功制备出血浆和血细胞。
通过本次实验，我们掌握了动物血液采集、分离和制备技术，为后续研究血液成分和功能提供了实验材料。
家兔心衰实验报告
家兔心衰实验报告家兔心衰实验报告引言：心衰是一种严重的心脏疾病，其主要特征是心脏无法有效泵血，导致全身器官供血不足。
为了深入研究心衰的发病机制和寻找治疗方法，我们进行了一项家兔心衰实验。
实验设计：我们选取了20只健康的家兔，随机分为两组，每组10只。
实验组接受心衰诱导剂的注射，而对照组则注射生理盐水。
实验组的家兔接受了为期8周的注射，每周注射一次。
实验过程：在实验开始前，我们对所有家兔进行了详细的体检和心电图检查，以确保它们的心脏健康。
然后，我们开始了诱导心衰的实验。
实验组的家兔每周接受一次注射，注射的诱导剂是一种已知能够引起心脏肌肉纤维变性和心肌细胞凋亡的物质。
对照组的家兔则注射了等量的生理盐水。
实验结果：在实验的第4周，我们开始观察到实验组家兔的心衰症状，包括呼吸困难、乏力和食欲不振。
与此同时，对照组的家兔仍然保持着正常的活力和食欲。
在第8周结束时，我们再次进行了体检和心电图检查。
实验数据显示，实验组家兔的心脏功能明显下降，心脏收缩力减弱，心脏舒张功能受损。
心脏超声检查结果显示，实验组家兔的心脏壁厚度减薄，心室腔扩大。
此外，实验组家兔的肝脏和肾脏功能也出现异常，肝功能指标升高，肾功能指标下降。
讨论：通过这项实验，我们成功地诱导了家兔心衰，并观察到了心衰的症状和心脏功能的损害。
这些结果与人类心衰的临床表现相似，说明我们的实验模型具有一定的可靠性。
心衰的发病机制非常复杂，包括心肌细胞凋亡、心肌纤维化、炎症反应等多种因素的参与。
在未来的研究中，我们将进一步探索这些机制，并寻找治疗心衰的新方法。
结论：通过对家兔进行心衰实验，我们成功地模拟了心衰的症状和心脏功能的损害。
这为进一步研究心衰的发病机制和寻找治疗方法提供了基础。
希望我们的研究能够为心衰的治疗和预防提供新的思路和方法。
致谢：感谢实验室的同事们对本实验的支持和帮助。
感谢家兔提供者对我们实验的配合。
感谢实验过程中的技术人员和仪器设备的支持。
感谢所有为这项实验付出努力的人们。
兔子采血实训报告
一、实验目的本次实验旨在通过实际操作，学习并掌握兔子采血的方法和技巧，了解采血过程中的注意事项，提高动物实验技能，为后续实验研究打下坚实基础。
二、实验原理兔子的血液采集是生物医学研究中的重要技术手段之一。
通过采集兔子的血液，可以获取实验所需的样本，用于研究生理、病理、药理等方面的知识。
兔子的血液采集主要有耳缘静脉采血、耳中央动脉采血和心脏采血等方法。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：健康兔子（体重2.88Kg）2. 实验试剂：20%的乌拉坦、肝素、生理盐水、肾上腺素3. 实验设备：兔箱、电子称、手术灯、兔解剖台、压力换能器、呼吸流量换能器、金属碗、纱布、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子、输液夹、皮剪、眼科剪、托盘金属、托盘陶瓷、一次性静脉输液针四、实验步骤1. 准备工作（1）将兔子放入兔箱中，进行初步观察，了解其基本情况。
（2）用电子称称量兔子体重，记录数据。
（3）准备好实验试剂和设备，检查其完好性。
2. 耳缘静脉采血（1）将兔子固定在兔解剖台上，头部朝向操作者。
（2）选择兔子耳缘静脉清晰的耳朵，用毛剪将耳缘部位毛发剪去。
（3）用75%酒精对耳缘静脉部位进行消毒，待干。
（4）用手指轻轻摩擦兔耳，使静脉扩张。
（5）用连有5号针头的注射器在耳缘静脉末端刺破血管，待血液漏出后，抽取所需血量。
（6）取血完毕后，用棉球压迫止血。
3. 耳中央动脉采血（1）将兔子固定在兔解剖台上，头部朝向操作者。
（2）选择兔子耳中央动脉，用左手固定兔耳，右手取注射器。
（3）在中央动脉末端，沿着动脉平行地向心方向刺入动脉，即可见动脉血进入针筒。
（4）抽取所需血量后，注意止血。
4. 心脏采血（1）将兔子仰卧固定在兔解剖台上，头部朝向操作者。
（2）在第三肋间胸骨处进行局部消毒。
（3）用手术刀在消毒部位切开皮肤，分离肌肉，暴露心脏。
（4）用动脉夹夹住心脏的动脉，防止血液流出。
（5）用眼科剪在心脏表面切开一小口，用注射器抽取所需血量。
兔子心脏采血的实验报告
兔子心脏采血的实验报告主题：血压测量、呼吸运动调节实验班级：xxxx实验小组：第三组实验日期：xxx年5月31日具体分工：xxx副手：xxxx实验数据记录整理：xxx一、实验目的：通过对兔子的观察、研究和分析，更好地了解兔子与人类一些相似的生命活动过程，更好地认识生物机体活动规律。
二、实验原理：正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。
动脉血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要，动脉血压的剧烈变化会显著影响各组织、器官的正常活动。
动脉血压是心血管功能活动的综合指标。
通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化情况，可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。
呼吸运动能够有节律地进行，并与机体代谢水平相适应，主要是由于体内外各种刺激，可以通过外周或中枢化学感受器或者直接作用于呼吸中枢，反射性地调节呼吸运动的结果。
三、实验器材：实验动物：一只健康兔子，用剪毛剪将颈部手术区的被毛剪去，即可进行术。
2) 手术a. 切开皮肢：在紧靠喉头下缘，沿颈部正中线作一长约5~7cm的皮肤切口，用止血钳钝性分离皮下结缔组织后，夹住少许皮肤并向两侧分开创口。
b. 分离气管，颈部迷走、交感、减压神经和颈总动脉。
将气管旁肌肉翻开，内面朝上，暴露血管和神经。
见到三条平行排列的神经：迷走神经最粗、明亮；交感神经较细，光泽较暗；减压神经最细，用玻璃分针分别沿动脉、神经纵向划开附着的结缔组织膜，游离出一段。
动脉尽量游离得长一些。
分别穿双线备用，先不结扎。
尽量清除掉神经外结缔组织、脂肪组织，但切勿损伤神经和伴行的小血管，以免影响神经的鉴别和实验观察。
3）实施气管插管将玻璃分针从气管下穿过，顶起气管，在气管下穿双线。
用镊子清除气管表面的结缔组织，选择合适位置，用眼科剪在软骨环上横向切开，开口要大，约气管直径的1/2，再向下纵向切开0.5cm ，形成“T ”型切口。
将气管插管插入，结扎紧，避免脱出。
兔子抽血的实验报告
一、实验目的1. 掌握兔子抽血的操作方法。
2. 了解兔子血液的基本成分和生理功能。
3. 熟悉实验室生物安全知识。
二、实验原理兔子作为实验动物，其血液成分与人类相似，具有代表性。
通过抽血实验，可以了解兔子的血液生理指标，为后续实验提供数据支持。
三、实验材料1. 兔子一只（体重约2-3kg）。
2. 实验室常用器械：剪刀、镊子、酒精棉球、止血钳、注射器、针头、试管、离心机等。
3. 实验试剂：抗凝剂、生理盐水等。
四、实验步骤1. 准备工作（1）将兔子置于实验台上，用酒精棉球对兔子耳静脉进行消毒。
（2）将兔子固定，确保实验操作过程中兔子不会挣扎。
2. 抽血操作（1）在兔子耳静脉处剪一小口，用镊子取出针头，将针头插入耳静脉。
（2）缓慢抽取约5ml血液，放入装有抗凝剂的试管中。
（3）将抽取的血液轻轻摇匀，防止凝固。
（4）用酒精棉球对针头和耳静脉进行消毒。
3. 血液分离（1）将抽取的血液置于离心机中，以3000r/min的速度离心10分钟。
（2）取出离心后的血液，观察上层血清和下层红细胞。
（3）将血清和红细胞分别装入试管中，标明标签。
4. 数据记录（1）记录兔子的体重、性别、年龄等信息。
（2）记录抽血时的血压、心率等生理指标。
（3）记录血液生理指标，如红细胞计数、白细胞计数、血红蛋白含量等。
五、实验结果与分析1. 实验结果（1）兔子体重：2.5kg。
（2）血压：120/80mmHg。
（3）心率：80次/min。
（4）红细胞计数：5.0×10^12/L。
（5）白细胞计数：10.0×10^9/L。
（6）血红蛋白含量：150g/L。
2. 结果分析通过本次实验，我们成功抽取了兔子的血液，并对其进行了分离。
实验结果显示，兔子的血液成分与人类相似，具有一定的代表性。
血压、心率等生理指标在正常范围内，说明实验操作较为成功。
六、实验结论本次实验成功完成了兔子抽血操作，并对其血液进行了分离。
实验结果表明，兔子的血液成分与人类相似，具有一定的代表性。
家兔心血管活动的调节实验报告
家兔心血管活动的调节实验报告实验目的，通过实验观察和记录家兔在不同条件下心血管活动的变化，探讨心血管活动的调节机制。
实验材料和方法：1. 实验材料，健康家兔、心率监测仪、血压测量仪、不同药物（如肾上腺素、乙酰胆碱等）。
2. 实验方法：a. 将家兔放置在安静、舒适的实验环境中。
b. 使用心率监测仪记录家兔的心率，并使用血压测量仪记录家兔的血压。
c. 分别给家兔注射不同药物，观察和记录心率和血压的变化。
实验结果：1. 在正常情况下，家兔的心率为每分钟150-300次，血压为收缩压70-140毫米汞柱，舒张压40-90毫米汞柱。
2. 注射肾上腺素后，家兔的心率明显增加，血压升高；注射乙酰胆碱后，家兔的心率明显减慢，血压下降。
3. 在不同环境温度下，家兔的心率和血压也会有所变化，高温下心率增加，血压降低；低温下心率减慢，血压升高。
实验讨论：1. 家兔心血管活动的调节受到内外环境的影响。
内分泌系统通过释放肾上腺素等激素来调节心率和血压，神经系统通过交感神经和副交感神经对心血管活动进行调节。
2. 实验结果表明，家兔的心率和血压可以通过药物和环境温度的改变而发生变化，说明心血管活动受到多种因素的调节。
3. 本实验结果对于了解家兔心血管活动的调节机制具有重要意义，也为心血管疾病的研究提供了参考。
实验结论：家兔心血管活动受到内分泌系统、神经系统和外部环境的调节，多种因素共同作用下，维持心率和血压的稳定。
本实验结果为研究心血管疾病和药物疗效提供了重要参考。
实验建议：在今后的研究中，可以进一步探讨家兔心血管活动的调节机制，扩大样本量，引入更多影响因素，以更全面地了解心血管活动的调节规律。
实验报告结束。
兔子实验报告放血(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解兔子放血的基本操作方法。
2. 掌握放血过程中的注意事项，确保实验安全。
3. 学习通过放血观察兔子生理反应，了解放血对兔子生理的影响。
二、实验原理放血是医学研究、教学和实验中常用的一种方法，通过放血可以观察动物的生理反应，了解器官、系统在放血过程中的变化。
本实验以兔子为实验对象，通过放血观察其生理反应，了解放血对兔子生理的影响。
三、实验材料1. 实验动物：兔子1只（体重约2-3kg）2. 实验器材：解剖台、解剖剪、镊子、剪刀、放血瓶、酒精棉球、纱布、生理盐水、计时器等。
四、实验步骤1. 实验动物处死：将兔子置于解剖台上，用酒精棉球消毒兔子耳缘静脉，然后用镊子夹住血管，剪断血管，使兔子迅速死亡。
2. 开放心脏：用解剖剪沿兔子胸部正中线剪开皮肤、肌肉，暴露心脏。
3. 放血：用镊子夹住兔子心脏右侧的肺静脉，剪断血管，使血液流入放血瓶中。
同时观察兔子的生理反应，包括心率、呼吸、血压等。
4. 记录数据：记录放血过程中的生理数据，包括放血前、放血中、放血后的心率、呼吸、血压等。
5. 结束实验：放血结束后，用生理盐水冲洗伤口，覆盖纱布，包扎。
五、实验结果与分析1. 心率：放血前兔子的心率约为每分钟120-150次，放血过程中心率逐渐下降，放血结束后心率稳定在每分钟80-100次。
2. 呼吸：放血前兔子的呼吸频率约为每分钟30-40次，放血过程中呼吸逐渐减慢，放血结束后呼吸频率稳定在每分钟20-30次。
3. 血压：放血前兔子的血压约为120-140/80-100mmHg，放血过程中血压逐渐下降，放血结束后血压稳定在80-100/50-70mmHg。
分析：放血过程中，兔子的心率、呼吸、血压均有所下降，这是由于放血导致血液量减少，血液循环减慢所致。
放血结束后，兔子的生理指标逐渐恢复至正常水平。
六、实验讨论1. 放血实验中，应注意操作规范，避免造成动物不必要的痛苦。
2. 实验过程中，应密切观察兔子的生理反应，确保实验安全。
实验动物的采血实验报告
一、实验目的1. 掌握实验动物采血的方法和技巧。
2. 熟悉实验动物采血设备的操作。
3. 了解采血过程中的注意事项。
二、实验原理实验动物采血是医学研究、生物科学等领域的重要实验技术。
通过采集实验动物血液，可以检测其生理指标、病原体、药物浓度等，为疾病诊断、药物研发、生物学研究等提供重要数据。
本实验采用心脏采血法，通过切开动物心脏，收集血液样本。
三、实验材料1. 实验动物：小白鼠1只。
2. 采血设备：采血针、注射器、酒精棉球、无菌手套、生理盐水。
3. 实验用品：试管、试管架、离心机、记号笔。
四、实验步骤1. 实验动物准备（1）将小白鼠放入代谢笼中，适应实验环境。
（2）在小白鼠头部涂抹少量酒精，使其麻醉。
（3）用记号笔在小白鼠胸部标记心脏位置。
2. 采血操作（1）戴无菌手套，将小白鼠放在实验台上。
（2）用酒精棉球消毒小白鼠胸部皮肤。
（3）用采血针在小白鼠胸部心脏位置切开皮肤，找到心脏。
（4）用注射器抽取血液，注入试管中。
（5）在采血过程中，注意观察小白鼠反应，如有异常，立即停止采血。
3. 血液处理（1）将采集到的血液样本进行离心处理，分离血清和红细胞。
（2）将血清和红细胞分别装入试管，标记清楚。
4. 实验数据记录（1）记录小白鼠的体重、性别、年龄等基本信息。
（2）记录采血时间、采血量、血液颜色等。
五、实验结果与分析1. 实验结果本次实验成功采集到小白鼠血液样本，血液颜色正常，无溶血现象。
2. 实验分析（1）采血过程中，操作者需熟悉实验动物解剖结构，避免损伤心脏。
（2）采血过程中，注意无菌操作，防止感染。
（3）采血量不宜过多，以免影响实验动物健康。
六、实验结论本次实验成功掌握了实验动物采血的方法和技巧，为后续实验提供了可靠的血液样本。
七、实验讨论1. 实验动物采血过程中，如何避免感染？答：实验过程中需严格遵守无菌操作原则，如戴无菌手套、消毒皮肤等。
2. 采血过程中，如何避免损伤心脏？答：熟悉实验动物解剖结构，准确找到心脏位置，操作轻柔。
家兔心脏实验报告
一、实验目的1. 了解家兔心脏的结构特点。
2. 掌握心脏采血、心脏按摩等基本操作方法。
3. 观察心脏的搏动规律，了解心脏功能。
4. 分析心脏在生理和病理状态下的变化。
二、实验原理心脏是循环系统的核心器官，负责将血液泵送到全身各部位，以满足组织细胞的代谢需求。
心脏的搏动规律和功能状态反映了心血管系统的健康状况。
本实验通过观察家兔心脏的结构、功能及其在生理和病理状态下的变化，为临床诊断和治疗心血管疾病提供理论依据。
三、实验对象与材料1. 实验动物：健康家兔1只，体重2-3kg。
2. 实验器材：解剖台、手术剪、镊子、止血钳、注射器、生理盐水、肝素、心电图机、记录仪等。
3. 实验试剂：20%乌拉坦、生理盐水、肝素生理盐水溶液等。
四、实验步骤1. 麻醉：取家兔，称重，用20%乌拉坦按4ml/kg剂量耳缘静脉注射进行麻醉。
2. 解剖：麻醉成功后，将家兔仰卧固定于解剖台上，剪去颈部的毛，正中切开颈部皮肤，分离气管和颈总动脉。
3. 心脏暴露：在气管左侧分离颈总动脉1.5-2cm，动脉下穿两根丝线，结扎远心端，近心端以动脉夹夹闭。
用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口，将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后，插入颈总动脉，并用手术线固定。
4. 心脏采血：将注射器连接动脉套管，抽吸肝素生理盐水，排空空气，然后缓慢抽吸心脏血液，记录采血量。
5. 心脏按摩：用止血钳轻轻按压心脏，观察心脏搏动情况，并记录心脏搏动频率。
6. 心电图记录：将心电图机连接家兔心脏，记录正常心脏心电图。
7. 病理观察：将心脏取出，观察心脏结构，测量心脏大小、重量，记录心脏瓣膜、冠状动脉等情况。
8. 数据分析：对实验数据进行统计分析，比较正常与病理状态下心脏的功能差异。
五、实验结果1. 家兔心脏采血量约为20-30ml。
2. 心脏搏动频率约为每分钟80-100次。
3. 正常心脏心电图表现为P波、QRS波、T波清晰，R波振幅较高。
4. 病理状态下，心脏搏动频率降低，心电图表现为P波、QRS波、T波变形，R波振幅降低。
兔子心脏采血的实验报告
兔子心脏采血的实验报告兔子心脏采血的实验报告主题：血压测量、呼吸运动调节实验班级：xxxx实验小组：第三组实验日期：xxx年5月31日具体分工：xxx副手：xxxx实验数据记录整理：xxx一、实验目的：通过对兔子的观察、研究和分析，更好地了解兔子与人类一些相似的生命活动过程，更好地认识生物机体活动规律。
二、实验原理：正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。
动脉血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要，动脉血压的剧烈变化会显著影响各组织、器官的正常活动。
动脉血压是心血管功能活动的综合指标。
通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化情况，可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。
呼吸运动能够有节律地进行，并与机体代谢水平相适应，主要是由于体内外各种刺激，可以通过外周或中枢化学感受器或者直接作用于呼吸中枢，反射性地调节呼吸运动的结果。
三、实验器材：实验动物：一只健康兔子（2.88Kg)实验试剂：20%的乌拉坦、肝素、生理盐水、肾上腺素实验设备：兔箱、电子称、手术灯、兔解剖台、压力换能器、呼吸流量换能器、金属碗、纱布、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子、输液夹、皮剪、眼科剪、托盘金属、托盘陶瓷、一次性静脉输液针.四、实验步骤1. 实验仪器的准备首先打开计算机采集系统，通道1接通压力换能器，通道2接通呼吸流量换能器，从系统的“生理学实验”中找出“血压-呼吸的（学生) 实验”，使显示器显示压力和呼吸的读数，并调节至合适比率。
2. 连接压力传感器和液体传递系统用注射器向连接动脉插管的导管内推注含有肝素的生理盐水，使之充满液体。
3. 动物准备1) 术前准备a. 麻醉：取家兔一只，称重，耳缘静脉缓慢注射20%乌拉坦(5mL/kg体重) 进行麻醉。
注射时速度要慢，并注意观察动物情况。
当动物四肢松软，呼吸变深变慢，角膜反射迟钝时，表明动物已被麻醉，即可停止注射。
兔子动脉采血实验报告
1. 掌握兔子动脉采血的方法和技巧。
2. 了解动脉采血在生理学研究和临床诊断中的应用。
3. 通过实验操作，加深对心血管系统生理功能的认识。
二、实验原理动脉采血是生理学实验和临床诊断中常用的方法之一。
通过采集动脉血样，可以测定血液的各种生理指标，如血压、血氧饱和度、血糖等。
本实验采用兔子的动脉采血，主要是由于兔子与人类在生理结构上具有一定的相似性，便于观察和比较。
三、实验器材1. 实验动物：健康兔子一只（体重约2.5kg）。
2. 实验试剂：肝素生理盐水、生理盐水、肾上腺素等。
3. 实验设备：兔箱、电子称、手术灯、兔解剖台、动脉夹、动脉导管、注射器、手术器械、消毒用品等。
四、实验步骤1. 实验动物准备：将兔子置于兔箱中，适应环境后进行麻醉。
2. 颈部手术：在兔子颈部进行手术，暴露颈总动脉和颈外静脉。
3. 动脉插管：将动脉导管插入颈总动脉，动脉夹夹住动脉导管近心端，防止血液回流。
4. 动脉采血：打开动脉夹，血液进入动脉导管，用注射器抽取一定量的动脉血。
5. 止血和缝合：采血完毕后，关闭动脉夹，拔出动脉导管，进行止血和缝合。
6. 恢复观察：将兔子放回兔箱，观察其恢复情况。
五、实验结果与分析1. 动脉采血量：本次实验成功采集了约5ml的动脉血，符合实验要求。
2. 血液指标：对采集的动脉血进行检测，结果显示血氧饱和度、血糖等指标均在正常范围内。
1. 动脉采血方法：本次实验采用的动脉采血方法操作简单，安全性较高。
但在操作过程中，应注意避免损伤血管，以免引起出血或血栓形成。
2. 实验动物选择：兔子作为实验动物，其生理结构与人类具有一定相似性，便于观察和比较。
但在实验过程中，应注意对动物的关爱和保护，遵循动物实验伦理规范。
3. 实验结果分析：本次实验成功采集了动脉血样，并进行了相关指标检测。
实验结果表明，兔子动脉采血方法可行，为生理学研究和临床诊断提供了可靠的数据支持。
七、实验总结通过本次实验，我们掌握了兔子动脉采血的方法和技巧，了解了动脉采血在生理学研究和临床诊断中的应用。
兔子心脏采血实验报告
兔子心脏采血实验报告研究背景心脏是动物体内最重要的器官之一，它承担着输送氧和营养物质至全身组织和细胞的重要任务。
心脏采血是一种常见的实验方法，通过采集心脏血液可以获得大量有关机体生理状态和疾病的信息。
本实验旨在使用兔子作为实验动物，通过采集兔子心脏血液，来探究其生理特征和相关疾病的发生机制。
实验目的1. 了解兔子心脏形态和结构特点；2. 掌握兔子心脏采血的操作方法和技巧；3. 分析兔子心脏血液的生化指标及相关生理参数。
实验器材和试剂1. 兔子（品种：新西兰白兔）；2. 心脏采血针；3. 血采管；4. 采血针座；5. 1% 无菌生理盐水。
实验步骤1. 实验前准备：兔子应处于安静、无惊恐状态。
用1% 无菌生理盐水清洗心脏表面，以保持个体干净无菌。
2. 手术准备：将兔子固定在手术台上，注意保持舒适和固定安全。
消毒手术场，佩戴无菌手套，使用消毒过的手术器械。
3. 心脏暴露：横切兔子胸骨，小心地暴露心脏。
4. 选择采集点：用肉眼或显微镜观察心脏，选择血管丰富的部位作为采血点，通常为动脉或静脉。
5. 针头插入：将心脏采血针慢慢插入选定的血管，直至穿刺通过。
6. 采集血液：使用血采管将血液吸入，并将血液转移到储存容器中。
7. 术毕处理：将采血针缓缓抽出，用无菌棉球轻轻按住采血点，保持出血点无渗血现象。
8. 实验数据记录：记录采血时的相关信息，如血液颜色、体积、时间等。
结果分析通过兔子心脏采血实验，我们获得了丰富的血液样本。
根据所采集到的血液数据，可以分析心脏的生理状态和相关生化指标。
研究发现，兔子心脏血液中的氧气饱和度与呼吸和循环系统密切相关，可以用来评估动脉血氧含量。
此外，还可以通过测量心脏血液中的血红蛋白浓度、白细胞计数和血小板计数等指标来判断兔子体内的造血功能和免疫系统状态等。
结论兔子心脏采血实验是一种常用的实验方法，通过采集心脏血液可以获得大量的生理和病理信息。
实验结果可以用于研究心血管疾病、免疫系统疾病以及各种代谢和生理状态的评估。
心脏采血实验报告
一、实验目的1. 了解心脏采血的基本原理和操作方法。
2. 掌握心脏采血的实验技巧，提高实验操作能力。
3. 学习心脏采血在医学研究和临床诊断中的应用。
二、实验原理心脏采血是一种常用的采血方法，通过在心脏部位穿刺，采集血液样本。
心脏采血可以获取较纯净的血液样本，适用于某些需要高纯度血液样本的实验。
本实验采用家兔作为实验动物，通过心脏采血获取血液样本。
三、实验材料1. 实验动物：家兔一只（体重2.5kg左右）。
2. 实验器材：手术刀、手术剪、手术镊、动脉夹、动脉套管、注射器、无菌生理盐水、无菌纱布、无菌手术巾、酒精棉球、碘伏、剪刀、止血钳、手术显微镜、心脏采血针等。
3. 实验试剂：肝素钠、抗凝剂、生理盐水、注射器等。
四、实验步骤1. 实验动物准备：将家兔放入实验箱内，适应环境，使其安静。
2. 麻醉：使用2%的利多卡因进行局部麻醉，麻醉部位为家兔的颈部。
3. 心脏暴露：在麻醉成功后，将家兔固定在手术台上，用手术刀沿颈部正中线切开皮肤，暴露左侧颈总动脉。
4. 动脉插管：用动脉夹夹住颈总动脉近端，用手术剪在远心端剪一小口，将动脉套管插入动脉内，用丝线结扎套管前端部分，固定套管。
5. 心脏采血：将注射器连接到动脉套管，抽取血液样本。
采血量根据实验需求而定。
6. 样本处理：将采集到的血液样本加入肝素钠抗凝剂，轻轻混匀，置于4℃冰箱保存。
7. 伤口处理：用无菌纱布覆盖伤口，用碘伏消毒，用止血钳固定。
8. 实验动物复苏：待实验结束后，缓慢停止麻醉，观察家兔的恢复情况。
五、实验结果与分析1. 实验结果：成功采集到约5ml的血液样本。
2. 实验分析：心脏采血实验成功，说明实验操作正确，实验动物状态良好。
六、实验总结1. 本实验成功完成了心脏采血，为后续实验提供了血液样本。
2. 在实验过程中，注意以下几点：a. 实验操作要轻柔，避免对实验动物造成伤害。
b. 麻醉要充分，确保实验动物处于安静状态。
c. 严格按照实验步骤进行操作，确保实验结果的准确性。
兔子心脏采血的实验报告范文
兔子心脏采血的实验报告范文兔子心脏采血的实验报告范文兔子心脏采血的实验报告范文主题血压测量、呼吸运动调节实验班级实验小组第三组实验日期年5月31日具体分工副手实验数据记录整理一、实验目的通过对兔子的观察、研究和分析，更好地了解兔子与人类一些相似的生命活动过程，更好地认识生物机体活动规律。
二、实验原理正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。
动脉血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要，动脉血压的剧烈变化会显著影响各组织、器官的正常活动。
动脉血压是心血管功能活动的综合指标。
通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化情况，可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。
呼吸运动能够有节律地进行，并与机体代谢水平相适应，主要是由于体内外各种刺激，可以通过外周或中枢化学感受器或者直接作用于呼吸中枢，反射性地调节呼吸运动的结果。
三、实验器材实验动物一只健康兔子（2.88实验试剂20的乌拉坦、肝素、生理盐水、肾上腺素实验设备兔箱、电子称、手术灯、兔解剖台、压力换能器、呼吸流量换能器、金属碗、纱布、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子、输液夹、皮剪、眼科剪、托盘金属、托盘陶瓷、一次性静脉输液针.四、实验步骤1.实验仪器的准备首先打开计算机采集系统，通道1接通压力换能器，通道2接通呼吸流量换能器，从系统的"生理学实验"中找出"血压-呼吸的（学生实验"，使显示器显示压力和呼吸的读数，并调节至合适比率。
2.连接压力传感器和液体传递系统用注射器向连接动脉插管的导管内推注含有肝素的生理盐水，使之充满液体。
3.动物准备1术前准备.麻醉取家兔一只，称重，耳缘静脉缓慢注射20乌拉坦5/体重进行麻醉。
注射时速度要慢，并注意观察动物情况。
当动物四肢松软，呼吸变深变慢，角膜反射迟钝时，表明动物已被麻醉，即可停止注射。
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2020
兔子心脏采血的实验报告范文
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兔子心脏采血的实验报告范文
前言语料：温馨提醒，报告一般是指适用于下级向上级机关汇报工作，反映情况，答复上级机关的询问。
按性质的不同，报告可划分为：综合报告和专题报告；按行文的直接目的不同，可将报告划分为：呈报性报告和呈转性报告。
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主题：血压测量、呼吸运动调节
实验班级：xxxx
实验小组：第三组
实验日期：xxx年5月31日
具体分工：xxx
副手：xxxx
实验数据记录整理：xxx
一、实验目的：
通过对兔子的观察、研究和分析，更好地了解兔子与人类一些相似的生命活动过程，更好地认识生物机体活动规律。
二、实验原理：
正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。
动脉血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要，动脉血压的剧烈变化会显著影响各组织、器官
的正常活动。
动脉血压是心血管功能活动的综合指标。
通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化情况，可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。
呼吸运动能够有节律地进行，并与机体代谢水平相适应，主要是由于体内外各种刺激，可以通过外周或中枢化学感受器或者直接作用于呼吸中枢，反射性地调节呼吸运动的结果。
三、实验器材：
实验动物：一只健康兔子（2.88Kg)
实验试剂：20%的乌拉坦、肝素、生理盐水、肾上腺素实验设备：兔箱、电子称、手术灯、兔解剖台、压力换能器、呼吸流量换能器、金属碗、纱布、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子、输液夹、皮剪、眼科剪、托盘金属、托盘陶瓷、一次性静脉输液针.
四、实验步骤
1.实验仪器的准备
首先打开计算机采集系统，通道1接通压力换能器，通道2接通呼吸流量换能器，从系统的“生理学实验”中找出“血压-呼吸的（学生)实验”，使显示器显示压力和呼吸的读数，并调节至合适比率。
2.连接压力传感器和液体传递系统用注射器向连接动脉插管的导管内推注含有肝素的生理盐水，使之充满液体。
3.动物准备
1)术前准备
a.麻醉：取家兔一只，称重，耳缘静脉缓慢注射20%乌拉坦
(5mL/kg体重)进行麻醉。
注射时速度要慢，并注意观察动物情况。
当动物四肢松软，呼吸变深变慢，角膜反射迟钝时，表明动物已被麻醉，即可停止注射。
b.固定与剪毛：将动物背位固定于手术台上（如图-2），用剪毛剪将颈部手术区的被毛剪去，即可进行术。
2)手术
a.切开皮肢：在紧靠喉头下缘，沿颈部正中线作一长约
5~7cm的皮肤切口，用止血钳钝性分离皮下结缔组织后，夹住少许皮肤并向两侧分开创口。
b.分离气管，颈部迷走、交感、减压神经和颈总动脉。
将气管旁肌肉翻开，内面朝上，暴露血管和神经。
见到三条平行排列的神经：迷走神经最粗、明亮；交感神经较细，光泽较暗；减压神经最细，用玻璃分针分别沿动脉、神经纵向划开附着的结缔组织膜，游离出一段。
动脉尽量游离得长一些。
分别穿双线备用，先不结扎。
尽量清除掉神经外结缔组织、脂肪组织，但切勿损伤神经和伴行的小血管，以免影响神经的鉴别和实验观察。
3）实施气管插管将玻璃分针从气管下穿过，顶起气管，在气管下穿双线。
用镊子清除气管表面的结缔组织，选择合适位置（避开喉头），用眼科剪在软骨环上横向切开（不要在肌肉上切口，容易出血），开口要大，约气管直径的1/2（不要切断气管），再向下纵向切开0.5cm，形成“T”型切口。
将气管插管插入，结扎紧，避免脱出。
将玻璃分针取出。
连接呼吸流量换能器。
4)实施动脉插管钝性分离左颈总动脉，靠动物头侧的部分尽可能多分离些，并在其远心端穿线结扎，用动脉夹夹住动脉的近端。
在此段血管下穿一条线以备套管插入后结扎用。
用眼科剪在尽可能靠远心端处作一斜形切口，约剪开管径的一半，然后把动脉套管经切口向心脏方向插入动脉，用已穿好的丝线扎紧插入动脉的套管前端部分，并以同一丝线在套管的上端（针头与塑料管交连处）缚紧固定，以防套管从插入处滑出。
4.实验观察
1)观察正常血压、呼吸曲线。
可以明显地观察到心室射血与主动脉回缩形成的压力变化与收缩压、舒张压的读数。
2)刺激迷走神经。
使刺激输出端连接保护电极，轻轻提起迷走神经上的备用线，小心地将神经置于保护电极之上。
记录对照血压曲线后，再用中等强度的连续电脉冲信号，通过保护电极，刺激神经。
血压明显下降后即可停止刺激，并待血压恢复。
如果血压并不下降，可调整刺激强度或刺激频率再行刺激。
3)刺激减压神经，方法同上。
4)刺激交感神经，方法同上。
5）在兔子的耳缘静脉缓慢注射肾上腺素。
注射时速度要慢，并注意观察血压、呼吸曲线。
5、处死动物，结束实验。
五、实验结果及数据分析
1、兔的正常活动表现
2、夹闭颈总动脉表现
当夹住劲动脉时，血压上升明显。
原理：当夹闭颈总动脉时，心室射出的血液不能流经该侧颈动脉窦，使窦内压力降低，压力感受器受到刺激减弱，经窦神经上传中枢的冲动减少，降压反射活动减弱，因而心率加快、心缩力加强、回心血量增加(因容量血管收缩)、心输出量增加；阻力血管收缩，外周阻力增加。
导致动脉血压升高。
3、刺激迷走神经表现
当刺激迷走神经时，血压下降，心率减慢。
原理：刺激外右侧迷走神经，其末梢释放的Ach：一方面使窦房结细胞在复极过程中K+外流增加，结果使最大复极电位绝对值增大；另一方面，使自动去极速度减慢。
这两种因素均使窦房结自律性降低，心率因而减慢，血压降低。
刺激强度加大时，甚至可出现窦性停搏，使血压迅速下降的情况。
4、刺激减压神经表现
当刺激减压神经时，血压下降。
原理：当电刺激主动脉神经时：主动脉神经传入冲动增多，使心迷走中枢兴奋、心交感中枢抑制、缩血管中枢抑制，使迷走神经传出冲动增加，交感神经传出冲动减少，而至心率减慢、心缩力减弱、小静脉舒张回心血量减少，心输出量减少；小动脉舒张，外周阻力降低，最终导致血压下降。
5、刺激交感神经表现
当刺激交感神经时，刺激强度加大并且刺激时间延长但是血压上升不明显，只有些微上升。
原理：心交感神经的节前神经元位于脊髓第1-5胸段的中间外侧柱，其轴突末梢释放的递质为乙酰胆碱，后者能激活节后神经元膜上的N型胆碱能受体。
心交感节后神经元末梢释放的递质为去甲肾上腺素，与心肌细胞膜上的β型肾上腺素能受体结合，可导致心率加快，房室交界的传导加快，心房肌和心室肌的收缩能力加强。
这些效应分别称为正性变时作用、正性变传导作用和正性变力作用。
所以血压上升。
6、注射肾上腺素的表现
注射肾上腺素，血压先升高后降低然后逐渐恢复。
原理：静脉注射肾上腺素后，开始浓度较高，对心脏和a受体占优势的血管发生作用，使心跳加快心肌收缩力加强，心输出量增多，皮肤、肾和胃肠等内脏血管收缩，外周阻力增大，所以血压升高。
随着血中肾上腺素的代谢，其浓度逐渐降低，对a受体占优势的血管作用减弱，而对B受体占优势的骨骼肌、肝脏、冠脉血管发生作用，使之扩张，同时由于压力感受性反射，引起血压下降，心缩力减弱，最后逐渐恢复正常。
六、小结
本次实验很成功，组中的每个人都做到了各司其职、有条不紊地完成这次实验，在实验的过程中我们没有出现什么
较大的差错，在老师学长的指导下能够准确地完成操作的每一步。
虽然之前我们都没有类似的经历，但是我们通过自己努力的观察和学习老师的演示，来模仿实验过程，从而得出自己的实验结果。
这样的一场实验之后内心充满成就感。
通过这次实验，我们从兔子的实验中也得到了以下经验：
1、实验中得到的有些数值与理论值不符。
可能是由于：操作的失误、仪器不灵敏、记录数据时找的区间不准确等原因导致的。
2、本实验的优点：A、大家分工合作，王红霞、李元新、王鑫负责麻醉兔子，为兔子做手术找神经和血管。
B、操作时细心认真，实验有条不紊地进行，没有出现大的失误，效率也比较高。
C、基本上找全了所需血管和神经。
3、实验的缺点：A、大家可能开始不太清楚步骤，盲目性较强，有的操作不知道如何下手。
B、有些操作过于着急，做的不是很好，给后来的操作带来一定的负担。
如切割气管时应该在软骨环上切，但我们切得有点向下，所以有一些出血，不过后来及时补救没有造成太大影响。
C、在处理气管中的分泌物时未清理干净，所以在插管后，导致兔子呼吸困难，不停挣扎。
D、在使用仪器测量血压时，标记标得不太适当，可能会影响到数据的记录。